JP6509745B2 - 標的細胞の選択的富化のための方法、組成物、キット、及びシステム - Google Patents
標的細胞の選択的富化のための方法、組成物、キット、及びシステム Download PDFInfo
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Description
本出願は、2013年1月25日付で出願された米国仮特許出願第61/756,993号の利益を主張し、また2013年2月4日付で出願された米国仮特許出願第61/760,626号の利益を主張し、これらの出願は参照により本明細書に援用される。
本出願は、EFS−WebによりASCIIフォーマットで提出された配列表を含み、その全体が参照により本明細書に援用される。前記ASCIIコピーは、2014年1月22日に作成され、43382701601Seqlist.txtと名付けられ、11キロバイトのサイズである。新規事項は追加されていない。
本明細書で言及される全ての出版物、特許及び特許出願は、各々個別の出版物、特許、又は特許出願が具体的且つ個別に参照により援用されると示される場合と同じ程度に参照により本明細書に援用される。
本出願を通して、本発明の様々な実施形態が範囲フォーマットで提示される場合がある。範囲フォーマットの記載は、単に便宜上及び簡潔のためにすぎず、本発明の範囲の変更の余地のない限定と解釈されるべきではないことが理解される。したがって、範囲の記載は、具体的に開示される全ての可能性のある部分範囲、並びにその範囲内の個々の数字を有するものとする。例えば、1〜6等の範囲の記載は、1〜3、1〜4、1〜5、2〜4、2〜6、3〜6等の具体的に開示される部分範囲、また同じく、その範囲内の個々の数字、例えば、1、2、3、4、5及び6を有するものとする。これはその範囲の幅にかかわらず適用される。
本発明の実施は、別段の指示がない限り、当該技術分野の技術に含まれる、免疫学、生化学、化学、分子生物学、微生物学、細胞生物学、遺伝学及び組換えDNAの従来技術を採用する。例えば、参照により本明細書に援用される、Sambrook,Fritsch and Maniatis,MOLECULAR CLONING:A LABORATORY MANUAL,4th edition(2012);CURRENT PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY(F.M.Ausubel,et al.eds.,(1987));the series METHODS IN ENZYMOLOGY(Academic Press,Inc.):PCR 2:A PRACTICAL APPROACH(M.J.MacPherson,B.D.Hames and G.R.Taylor eds.(1995))、及びCULTURE OF ANIMAL CELLS:A MANUAL OF BASIC TECHNIQUE AND SPECIALIZED APPLICATIONS,6th Edition(R.I.Freshney,ed.(2010)を参照されたい。
本明細書及び特許請求の範囲で使用される「一つの(a)」、「一つの(an)」及び「その(the)」の単数形は、別段の明確な指示がない限り、複数の参照を含む。例えば、「一つの細胞(a cell)」は、その混合物を含む、複数の細胞を含む。
5−FU−フィブリノーゲン、アカンサス葉酸、アミノチアジアゾール、ブレキナールナトリウム、カルモフール、シクロペンチルシトシン、リン酸ステアリン酸シタラビン、シタラビン複合体、デザグアニン、ジデオキシシチジン、ジデオキシグアノシン、ジドックス、ドキシフルリジン、ファザラビン、フロクスウリジン、リン酸フルダラビン、5−フルオロウラシル、N−(2’−フラニジル)−5−フルオロウラシル、必須アミノ酸の阻害剤、イソプロピルピロリジン、メトベンザプリム、メトトレキサート、ノルスペルミジン、オルニチン脱炭酸阻害剤、ペントスタチン、ピリトレキシム、プリカマイシン、チオグアニン、チアゾフリン、トリメトレキサート、チロシンキナーゼ阻害薬、及びウリシチンが挙げられる。
本発明は、不均一細胞集団から1又は複数の標的細胞亜集団を検出し、単離し、捕捉し、富化し、培養し、及び/又は特性評価することができる方法、装置、組成物、及びキット、また同様にそれらの適用を提供する。標的細胞亜集団は、任意の種類の生存細胞を含み得る。生存細胞は、付着特性を備え得る。付着特性は、例えば、細胞外マトリクス、他の細胞等の固体又は半固体の表面、又は本明細書に記載される基材に付着する細胞の能力により証明され得る。付着特性を有する細胞は、1又は複数の接着分子を発現し得る。接着分子の例として、例えば、とりわけ、セレクチン、インテグリン、カドヘリン、シンデカン、上皮細胞接着分子(EpCAM)、cd133、cd44、cd166が挙げられ得る。接着分子の発現は、遺伝子発現研究、免疫組織化学、免疫ブロッティング等を含むがこれらに限定されない、当該技術分野で既知の任意の手段により判定することができる。標的細胞亜集団は、任意の種類の初代細胞を含んでもよい。初代細胞は、例えば、とりわけ、初代ニューロン、初代グリア、初代心筋細胞、初代肝細胞、初代肺細胞、初代軟骨細胞、初代内皮細胞、初代線維芽細胞、初代胃腸細胞、初代免疫細胞、初代ケラチノサイト、初代骨芽細胞、初代膵臓細胞、初代前立腺細胞、初代腎細胞、初代網膜細胞、初代筋細胞、初代セルトリ細胞、胎児細胞等の哺乳動物の初代細胞であってもよい。標的細胞亜集団は、高い増殖特性及び再生特性を有する。標的細胞亜集団の或る非限定的な例として、例えば、循環腫瘍細胞(CTCs)、癌幹細胞(CSCs)、造血幹細胞(HSCs)、血管内皮前駆体細胞(EPCs)、胎児細胞、幹細胞、免疫細胞、上皮細胞、血管内皮細胞、癌細胞、白血球、成人幹細胞、初代細胞(例えば、本明細書に記載される初代細胞)、固形腫瘍に由来する細胞、及び/又は上皮前駆細胞が挙げられる。或る実施形態では、標的細胞亜集団は、CTCs、CSCs、EPCs、幹細胞、上皮細胞及び癌細胞から選択される。標的細胞亜集団は、CTCs及び/又はCSCsを含んでもよい。CTCs及び/又はCSCsは、腫瘍開始細胞であってもよい。CTCs及び/又はCSCsは、転移性細胞であってもよい。標的細胞亜集団が固形腫瘍に由来する細胞を含む場合では、細胞は、固形腫瘍の形態のままであってもよい(例えば、本明細書に記載される方法、装置、組成物、及びキットを固形腫瘍生検を培養する目的に使用することができる)。或る実施形態では、標的細胞亜集団は、不死化細胞株由来の細胞を含まない。或る実施形態では、標的細胞亜集団は、白血球を含まない。標的細胞亜集団は、初代標的細胞亜集団であってもよい。
被験体105(図1に示される)は、一般的には生体である。被験体は、1又は複数の標的細胞亜集団を含むことができる。被験体が標的細胞亜集団を含むかどうかわからない場合がある。或る実施形態では、本開示の方法及び装置は、被験体が1又は複数の標的細胞亜集団を含むかどうかを決定するために使用されてもよい。例えば、被験体を、1又は複数の標的細胞亜集団の存在又は不在についてスクリーニングしてもよい。
生体試料110(図1に示される)は、被験体から取得され得る。1又は複数の試料を被験体から1又は複数の時間点で被験体から取得してもよい。単一の試料を被験体から一度し採取することができる。複数の試料を或る期間に亘って被験体から採取することができる。
試料115の1又は複数の成分を分離する工程(図1に示される)は、その本来の試料の濃度に対して1.5倍、2倍、4倍、6倍、8倍、10倍、20倍、50倍、100倍、200倍、500倍、1,000倍、2,000倍、5,000倍、10,000倍、20,000倍、50,000倍、100,000倍、200,000倍、500,000倍、1,000,000倍、2,000,000倍、5,000,000倍、10,000,000倍、20,000,000倍、50,000,000倍、100,000,000倍、200,000,000倍、500,000,000倍、1,000,000,000倍、2,000,000,000倍、又は5,000,000,000倍の因数で標的細胞亜集団の濃度を増加することができる。また、試料115の1又は複数の成分を分離する工程は、本来の試料の容量を減少することにより(例えば、流体の除去により)細胞亜集団の濃度を増加することができる。一例に過ぎないが、亜集団の細胞を含む10mL、15mL、20mL、50mL、又は100mLの総容量より多い体液試料(例えば、血液試料)を、それぞれ、0.5mL、1mL、2mL、3mL、5mL、又は10mL未満の総容量の溶液へと濃縮することができる。
本明細書に記載されるin vitroシステムは、標的細胞亜集団の選択的付着を促進することができる。標的細胞亜集団は、生存能を維持することができ、細胞の増大を経る。in vitroシステムを、例えば、標的細胞亜集団の付着及び成長を選択的に促進する条件を提供することにより標的細胞亜集団の選択的な付着及び成長を促進するように構成することができる。上記条件は、生理学的に関連のある条件(例えば、in vivo環境条件に似た環境条件)であってもよい。
基材120(図1に示され、本明細書では「「本発明の基材(substrate of the invention)」、「本発明の基材(invention substrate)」又は単に「基材」と同義に参照される)は、細胞の不均一な集団を含む試料から標的細胞亜集団を捕捉することができる。本発明の基材は、非標的細胞亜集団(例えば、付着性ではない、及び/又は非生存細胞)と比べて、標的細胞亜集団(例えば、付着性の、及び/又は生存細胞)の選択的な付着及び成長を促進することができる。例えば、基材は、他の種類の細胞と比べて、循環腫瘍細胞(CTCs)、癌細胞(CSCs)、造血幹細胞(HSCs)、血管内皮前駆細胞(EPCs)、初代細胞、胎児細胞、幹細胞、免疫細胞、上皮細胞、血管内皮細胞、癌細胞、白血球、成人幹細胞、及び/又は上皮前駆細胞(EPCs)の選択的な付着及び成長を促進することができる。本発明の基材を、特定の種類の標的細胞亜集団の選択的な付着及び成長を促進するように構成することができる。基材は、他の種類の細胞と比べて、CTCs、CSCs、EPCs、幹細胞、上皮細胞、初代細胞又は癌細胞の選択的な付着及び成長を促進することができる。基材は、他の種類の細胞と比べて、CTCs及び/又はCSCsの選択的な付着及び成長を促進することができる。したがって、本発明の基材は、標的細胞亜集団を更に富化する場合がある。本発明の基材は、標的細胞亜集団/非標的細胞亜集団の比率を、本来の比率に対して少なくとも1.5倍、2倍、4倍、6倍、8倍、10倍、20倍、50倍、100倍、200倍、500倍、1,000倍、2,000倍、5,000倍、10,000倍、20,000倍、50,000倍、100,000倍、200,000倍、500,000倍、1,000,000倍、2,000,000倍、5,000,000倍、10,000,000倍、20,000,000倍、50,000,000倍、100,000,000倍、200,000,000倍、500,000,000倍、1,000,000,000倍、2,000,000,000倍、又は5,000,000,000倍の因数で富化することができる。
本発明の基材の多くの構成が本発明に包含される。図5は、捕捉した標的細胞亜集団505により説明される基材構成の種々の例を説明する。パネル510は、本発明の基材の「単層」構成の例を示し、結合表面層515が唯一の層である。パネル520は、結合表面層515に隣接する基底層530を含む本発明の基材の「二層」構成の例を示す。パネル540は、基底層530、1又は複数の中間層550、及び結合表面層515を含む本発明の基材の「中間層」構成の例を示す。パネル560は、2つの基底層530、結合表面層515、及びフィーディング層570を含む本発明の基材の「逆位」構成の例を示す。逆位構成は、外層が互いに向かい合い、2つの基材間の距離は0.1mm〜20mm程度、1mm〜10mm程度、又は1mm〜5mm程度の範囲であってもよく、およそ0.1mm、1mm、2mm、3mm、4mm、5mm、6mm、7mm、8mm、9mm、10mm、12mm、15mm、17mm、又は20mmであってもよい、半密封チャンバ作成することができる。
基底層530は、プラスチック、ガラス、ゼラチン、基底膜、ポリアクリルアミド又はそれらの組み合せを含む成分で作製され得る。基底膜を含む成分の例として、限定されないが、ラミニン、IV型コラーゲン、エンタクチン、及びペルレカンが挙げられる。基底層は、硬度を有するように構成され得る。場合によっては、基底層の硬度は、脳組織等の軟組織の硬度を疑似する。かかる場合では、基底層の硬度は、0.02キロパスカル(kPa)〜20kPa、0.05kPa〜1.5kPa、又は0.1kPa〜1.0kPaである。場合によっては、基底層の硬度は骨組織の硬度を疑似する。かかる場合では、硬度は30kPa〜150kPa、40kPa〜125kPa、又は50kPa〜100kPaであってもよい。場合によっては、基底層の材料は、器具として構成されてもよい。かかる商業的に利用可能な機器の例として、顕微鏡スライド、培養プレート/皿、ペトリ皿、顕微鏡カバースリップ、密閉した培養皿、及びマルチウェル培養皿(例えば、EMD Millipore CorporationのMillicell Cell Culture Inserts(商標))が挙げられる。
結合表面層515は、例えば細胞単相、細胞内成分(例えば、細胞溶解物から得られる)、細胞外マトリクス(ECM)と関連する生体材料、ゼラチンの1若しくは複数、又はそれらの任意の組み合せを含むことができる。
基材が「中間層」構成540である場合、基材は1又は複数の中間層を有することができる。「中間層」構成540では、基底層530と結合表面層515の間に1又は複数の中間層550が存在してもよい。サンドイッチの中間層(複数の場合がある)は、1又は複数の細胞の単層であってもよい。単相の細胞は、様々な起源であってもよい。中間層の或る一つの非限定的な例は、基底層上でマウス胚線維芽細胞のコンフルエントな単相を成長させた後、別の細胞層である結合表面層をコンフルエントなマウス胚線維芽細胞の頂部で成長させることにより作製される。
「逆位」構成を有する基材560は、フィーダー層570を含むことができる。フィーダー層570は、基底層に隣接し得る。フィーダー層は、結合表面層から分離され得る。或る実施形態では、標的細胞亜集団505は、フィーダー層570と比較して結合表面層515に優先的に結合する。フィーダー層570は、フィーダー細胞の単層を含み得る。単層の細胞は任意の起源であってもよい。フィーダー細胞の例は、本明細書に記載される。フィーダー細胞の或る一つの非限定的例は、ヒト血管内皮細胞又はマウス胚線維芽細胞の単層を基底層上で成長させることにより作製される。
分析に十分な標的亜集団細胞のメンバー、例えば、CTCs又はCSCs等を提供する挑戦の一つは、長期間、細胞生存能を維持できないことである。したがって、本発明は、標的細胞亜集団の長期間のin vitroでの生存能及び増大を促進する培養方法を提供する。培養方法は、標的細胞亜集団の成長に適した環境条件において標的細胞亜集団をインキュベートすることを含むことができる。したがって、本発明は、閉鎖環境チャンバを含む細胞培養インキュベータも提供し、そのインキュベータは、標的細胞亜集団の成長に適した環境条件を維持するように構成される。環境条件は、in vivo血管構造系を疑似するように構成され得る。本明細書に記載される1又は複数の環境条件下での標的細胞亜集団のインキュベーションは、非標的細胞亜集団と比較して基材への標的細胞亜集団の付着を高めることができる。本明細書に記載される1又は複数の環境条件下での標的細胞亜集団のインキュベーションは、少なくとも1%、5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、又は95%超の標的細胞亜集団の基材への付着をもたらすことができる。本明細書に記載される1又は複数の環境条件下での標的細胞亜集団のインキュベーションは、標的細胞亜集団の生存能を促進する。例えば、標的細胞亜集団は、本明細書に記載される1又は複数の環境条件下でのインキュベーションにより、1週間、2週間、3週間、4週間、5週間、6週間、7週間、8週間、9週間、10週間、11週間、12週間、又は12週間超に亘る培養で生存し得る。本明細書に記載される1又は複数の環境条件下での標的細胞亜集団のインキュベーションは、少なくとも1週間の培養において少なくとも15%、20%、25%%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、又は95%超の生存する標的細胞亜集団を生じることができる。本明細書に記載される1又は複数の環境条件下での標的細胞亜集団のインキュベーションは、少なくとも2週間の培養において少なくとも15%、20%、25%%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、又は95%超の生存する標的細胞亜集団を生じることができる。本明細書に記載される1又は複数の環境条件下での標的細胞亜集団のインキュベーションは、少なくとも4週間の培養において少なくとも15%、20%、25%%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、又は95%超の生存する標的細胞亜集団を生じることができる。本明細書に記載される1又は複数の環境条件下での標的細胞亜集団のインキュベーションは、無期限の培養において少なくとも15%、20%、25%%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、又は95%超の生存する標的細胞亜集団を生じることができる。
本発明は、1又は複数の細胞培養培地125(図1に示され、本明細書において「富化培地」とも呼ばれる)を具体的な富化標的細胞亜集団に対して提供することができる。例えば、他の種類の細胞と比べて、循環腫瘍細胞(CTCs)、癌幹細胞(CSCs)、造血幹細胞(HSCs)、血管内皮前駆細胞(EPCs)、胎児細胞、幹細胞、免疫細胞、上皮細胞、血管内皮細胞、癌細胞、白血球、成人幹細胞、及び/又は上皮前駆細胞の成長を選択的に促進するように細胞培養培地を処方することができる。特定の実施形態では、細胞培養培地は、他の種類の細胞と比べて、CTCs、CSCs、EPCs、幹細胞、上皮細胞、又は癌細胞の選択的な成長を促進する。細胞培養培地は、本発明の培地中の培養前の本来の比率に対して、少なくとも1.5倍、2倍、4倍、6倍、8倍、10倍、20倍、50倍、100倍、200倍、500倍、1,000倍、2,000倍、5,000倍、10,000倍、20,000倍、50,000倍、100,000倍、200,000倍、500,000倍、1,000,000倍、2,000,000倍、5,000,000倍、10,000,000倍、20,000,000倍、50,000,000倍、100,000,000倍、200,000,000倍、500,000,000倍、1,000,000,000倍、2,000,000,000、又は5,000,000,000倍の因数で標的細胞亜集団及び/又は非標的細胞集団の比率を富化し得る。
本明細書に記載される基材、細胞培地、環境条件、及び/又は細胞培養方法は、標的細胞亜集団が1又は複数の異なる形態学的特性及び/又は動態学的性質をとることを可能とする。異なる形態学的特性及び/又は動態学的性質のいずれかを標的細胞亜集団のメンバーを区別及び/又は同定するために使用することができる。形態学的特性及び/又は動態学的性質の例は本明細書に記載される。したがって、本発明は、本発明の基材上への播種に際して、本明細書に記載される細胞培養培地における培養に際して、及び/又は本明細書に記載される環境条件下での培養に際して、標的細胞によって採用される1又は複数の異なる形態学的特性及び/又は動態学的性質の提示に基づいて標的細胞亜集団のメンバーを同定及び/又は選択する方法を提供する。
また、本発明は、本明細書に記載されるいずれかの方法を実行するように構成されるコンピュータによる遂行可能なコードを含むコンピュータ可読媒体を提供する。上記コンピュータ可読媒体は、標的細胞亜集団の半自動化又は自動化された同定、列挙、及び/又は分類のための方法を実行することができる。標的細胞亜集団の同定、列挙、及び/又は分類は、本明細書に記載される条件下での培養に際して細胞がとる1又は複数の形態学的特性及び/又は動態学的特性に基づいてもよい。標的細胞亜集団の同定、列挙、及び/又は分類は、本明細書に記載される本発明の基材上への播種に際して細胞がとる1又は複数の形態学的特性及び/又は動態学的特性に基づいてもよい。細胞の1又は複数の形態学的特性及び/又は動態学的特性は、経時的に評価されてもよい。例えば、細胞の1又は複数の形態学的特性及び/又は動態学的特性は、図9に示される座標システム900において経時的に評価されてもよい。上記ソフトウェアは、培養皿又はウェル910中の基材上に検出された標的細胞亜集団の場所を参照するため仮想の座標システム920を作るように構成される。仮想座標システムは使用者が規定した原点(「原点」)930に培養皿を並べることにより伝播され、計測可能なベクター象限で作製された仮想グリッド920が900の上に置かれる。最も好ましい実施形態では、仮想座標システムを画像取得システムにより使用して、培養皿の表面全体に亘って自動化タイムラプス取込みを促進する。使用されている標準サイズの培養皿及び/又はウェルの幾つかの例として、10mm、35mm、60mm、及び100mm、並びに高度なマルチウェルプレート(例えば、6ウェル、12ウェル、24ウェル、96ウェル、384ウェル、1056ウェル、1536ウェル、又は3456ウェル)のウェルが挙げられるが、他のサイズの培養皿も考慮される。或る一つの実施形態では、操作者は、特定の目的の具体的なコロニーの場所に立ち戻ることができ、細胞をマイクロマニピュレーター及びトランスジェクタの使用により採取することができる。個別の細胞を、標的化生体医学研究における使用のために捕捉してもよく、又は更なる培養実験のために回収して使用することができる。
コンピュータ可読媒体は、標的細胞亜集団を同定し、特性評価するため、本明細書に記載される細胞の形態学的特性及び/又は動態学的特性のいずれかを使用するソフトウェアを含むことができる。例えば、コンピュータ可読媒体は、標的細胞亜集団を同定し、分類するために下記パラメーター、すなわち、細胞サイズ、細胞形状、細胞運動、核サイズ及び細胞分裂速度を使用してもよい。上記ソフトウェアは、標的細胞亜集団を分類するためにかかるパラメーターをアルゴリズムへと統合することができる。上記ソフトウェアは、周期的にパラメーターを加工することができ、例えば、マルチコアコンピュータチップを使用して順次に又は接線方向のいずれかに加工することができる。使用者は、前記パラメーターの各々に対して異なる重み付けをしてもよい。
或る実施形態では、標的細胞亜集団の可視化は、細胞透過性色素及び/又は細胞付着タンパク質に対する抗体の使用により増強され得る。細胞透過性蛍光色素を、全般的な細胞及び核の形状、大きさ、及び数を特定するための分析ソフトウェアを支援するために使用してもよい。当業者に既知の幾つかの細胞透過性色素が存在する。或る非限定的な例として、カルシウム系色素(例えば、Life TechnologiesのCalcium−Green−1 AM)又は蛍光複合でキストランが挙げられる。
また、本発明は、本開示の方法を実行するように構成されるコンピュータシステムを提供する。上記システムは、本明細書に記載される方法を実行するようにプログラムされたコンピュータサーバー(「サーバー」)を含むことができる。図11は、使用者が細胞の画像を検出、分析及び加工することが可能なように適合されたシステム1100を示す。システム1100は、本明細書に記載される例示的方法を実行するようにプログラムされた中央コンピュータサーバー1101を含む。サーバー1101は、シングルコアプロセッサ、マルチコアプロセッサ、又は複数の並行処理用プロセッサであってもよい、中央処理装置(CPU、「プロセッサ」とも呼ぶ)1105を含む。また、サーバー1101は、メモリ1110(例えば、ランダムアクセスメモリ、読み取り専用メモリ、フラッシュメモリ)、電子記憶装置1115(例えば、ハードディスク)、1又は複数の他のシステムと通信するための通信用インターフェース1120(例えば、ネットワークアダプタ)、並びにキャッシュ、他のメモリ、データ記憶装置、及び/又は電子ディスプレイアダプタを含み得る周辺機器1125を含む。メモリ1110、記憶装置1115、インターフェース1120、及び周辺機器1125は、マザーボード等の通信バス(実線)を通じてプロセッサ1105と通信状態にある。記憶装置1115は、データを記憶するためのデータ記憶装置であってもよい。サーバー1101、通信インターフェース1120の支援によりコンピュータネットワーク(「ネットワーク」)1130に制御可能に連結される。ネットワーク1130は、インターネット、イントラネット及び/又はエクストラネット、インターネット、テレコミュニケーション、若しくはデータネットワークと通信状態にあるイントラネット及び/又はエクストラネットであってもよい。ネットワーク1130は、場合によっては、サーバー1101の支援により、サーバー1101に連結されたデバイスをクライアント又はサーバーとして振る舞うことを可能とし得る。顕微鏡及びマイクロマニピュレーターは、周辺機器1125又はリモートコンピュータシステム1140であってもよい。
また、本発明は細胞画像化システムを提供する。細胞画像化システムは、細胞集団の細胞に対応する画像データを作成するように構成されてもよい。細胞画像化システムは、初代細胞に対応する画像データを作成するように構成されてもよい。細胞画像化システムは、標的細胞亜集団のハイコンテント分析用に構成されてもよい。
システム1300は、プレートローダー1330を備えてもよい。プレートローダー1330は、最小で1、2、3、4、5、6、10、15、20、25、又は30のプレートを保持する能力を有することができる電動式プレートコンテナを備えてもよい。プレートローダーは、追加のプレートの収容力を可能とするモジュール構成を有することができる。場合によっては、プレートローダーは、ロボット制御でプレートを操作し、例えば、画像化のため顕微鏡のX−Yステージにプレートを置くことができる(例えば、ASIのロボットプレートローダー)。
システム1300は、液体操作モジュール1375を備えてもよい。液体操作モジュール1375を液体(例えば、媒体、廃棄媒体)用の貯蔵槽として使用することができる。液体操作モジュール1375を1又は複数の液体を支持するために使用することができる。液体操作モジュール1375は、場合によっては、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、及び/又は20の溶液を支持することができる。或る実施形態では、液体操作モジュール1375は、自動化滅菌キャピラリを備えることができる。
また、本発明は、本発明の1又は複数の方法を実施するのに有用なキット及び/又は細胞培養システムを提供する。キット及び/又は細胞培養システムは、(i)本明細書に記載される基材を含む細胞培養プレート、(ii)本明細書に記載される細胞培養培地、若しくはその成分、(iii)本明細書に記載される細胞培養インキュベータ、(iv)本明細書に記載される細胞画像化システム、及び/又は(v)本明細書に記載される基材、若しくはその成分の組み合せを含むことができる。また、キットは、標的細胞亜集団の培養及び/又は同定のための細胞培養プレート、細胞培養培地、インキュベータ、及び画像化システムの1又は複数の使用に関する指示書を含んでもよい。上記指示書は、標的細胞亜集団の成長に適した環境条件における指示培養を含んでもよい。環境条件は本明細書に記載される。例えば、指示書は、陽圧条件下で標的細胞を培養するための指示文を含んでもよい。圧力条件の例は、本明細書に記載される。例えば、指示書は、低酸素条件下で標的細胞を培養する指示文を含んでもよい。低酸素条件の例は本明細書に記載される。
本発明の実用的な適用が幾つか存在する。希少な標的亜集団の細胞を富化する能力は、基礎研究、医療、医学研究、薬物及び生物製剤の開発及び発見、ハイスループットスクリーニング、抗体開発、並びにワクチン開発に使用される商品として価値を有する。CTCs、CSCs、HSCs及びEPCsは、血液中を循環する細胞の例であるが、実用的な実験目的又は医療目的に十分な量で単離及び富化することが困難であった。本発明の方法、キット及び/又はシステムのいずれかの使用により、試料1ml当たり10個、9個、8個、7個、6個、5個、4個、3個、2個、又は1個の濃度の標的細胞、又は試料1ml当たり平均1個未満の標的細胞の濃度で標的細胞が試料中に存在する場合に体液試料又はその派生物からの標的細胞の単離及び富化を可能とする。例えば、本発明の方法、キット、及び/又はシステムのいずれかは、標的細胞が、試料1ml当たり約0.8個の標的細胞(例えば、20mlの血液中に16個の標的細胞)、又は血液1ml当たり0.6個の標的細胞(例えば、20mlの血液中に12個の標的細胞)の濃度で試料中に存在する場合に、体液試料又はその派生物から標的細胞亜集団の単離及び富化を可能とする。本発明の別の適用では、変化する機能的特性を有する培養した標的細胞亜集団は、高度に標的化されたバイオマーカーの開発用プラットフォームを提供することができる。ゲノム分析、プロテオーム分析、及び代謝分析をこれらの培養細胞に行うことができ、これらの希少な細胞の商業的に入手可能な供給源を作製する能力は、癌治療法の開発(例えば、創薬)、癌クチン、癌スクリーニング及び診断、個別化抗体の開発、造血幹細胞の移植、臓器移植、並びに心臓血管疾患の治療に使用される新規なバイオマーカーの同定に重要である。
標的細胞亜集団を個別化医療に使用することができる。CTCs及びCSCsの例では、細胞を化学感受性試験に使用することにより、培養したCTCsについて、また、所与の薬物の有効性を決定するための細胞生存能及び細胞分裂速度の計測を含むCTCsに対する化学療法薬物の効果の決定に対して標準的及び探索の化学療法計画を試験することができる。本発明の別の適用は、患者が治療を経るにつれて患者のCTC集団の連続的なモニタリングによって、行われる所与の癌治療に対する患者の反応をモニターすることである。血液試料を、治療の前、その間、及びその後に定期的に分析することができ、結果として、治療法に対する陽性反応はCTC生存能の減少及びより遅い分裂速度を生じるであろう。
本開示の別の適用は、ハイコンテントスクリーニング分析(例えば、ハイスループット創薬)のため、また基礎研究用の直接研究プラットフォームとしてである。特定の細胞の種類に対する薬物の効能について有意義な研究を行うためには、細胞の大量供給が必要とされる。更に、異なる種類の細胞に対する異なる薬物処理の有効性を比較することは、大量の細胞を必要とする。本開示は、科学者に細胞種を単離するプロセスを自動化又は一部自動化を可能とする基礎研究用の研究プラットフォームを提供し、それにより、ハイスループットな実験を可能とする。かかる研究プラットフォームは、創薬プラットフォームとしての実用性を有し得る。したがって、本発明は、(a)本明細書に記載される方法を使用して標的細胞亜集団を培養すること、(b)前記標的細胞亜集団と試験薬剤を接触させること、(c)前記標的細胞亜集団の生存能及び/又は成長をアッセイすること、並びに(d)前記アッセイに基づいて前記試験薬剤を抗癌治療法として選択することを含む、抗癌治療法を開発する方法を提供する。或る実施形態では、標的細胞亜集団はCTCs及び/又はCSCsを含む。或る実施形態では、複数の試験薬剤を標的細胞亜集団に適用する。(例えば、併用療法を試験する)。或る実施形態では、標的細胞亜集団をマルチウェルプレートで培養する。或る実施形態では、マルチウェルプレートは、6ウェル、12ウェル、24ウェル、48ウェル、96ウェル、384ウェル、1536ウェル、又は3456ウェルを備える。或る実施形態では、上記方法は、前記標的細胞亜集団と複数の試験薬剤を接触することを含み、各試験薬剤はマルチウェルプレートの単一のウェルに適用される。或る実施形態では、上記方法は、マルチセルプレートのウェルを同時にアッセイすることを含む。或る実施形態では、試験薬剤は、その薬剤が標的細胞亜集団の生存能、増大又は成長を低減する場合、抗癌治療法として選択される。
本明細書に記載される発明は、被験体を治療するために医療専門家に使用され得るデータを提供することができる。好ましい実施形態では、細胞の分類は、被験体の治療を対象とすることができる。被験体の治療として、診断、予後又はセラノシスが挙げられ得る。診断は、被験体の状態を決定することを含む。診断は、1つの時間点又は継続的に行われ得る。例えば、被験体を癌と診断することができる。別の例では、寛解期にある癌患者を日常的にスクリーニングして、癌の再発が起きたかどうかを特定してもよい。予後は、被験体の疾患の転帰、回復の可能性、又はどのようにして疾患が進行するかを決定することを含むことができる。例えば、特定の種類のCTCsを同定することにより、予後が基づく情報を提供することができる。セラノシスは、治療的処置を決定することを含むことができる。例えば、被験体の癌の治療的処置は、化学療法、放射線照射、薬物治療、治療なし、又はそれらの任意の組み合せで構成され得る。被験体を、被験体が治療を経る前、その間、及びその後のCTC集団を測定するため、例えば、連続的な血液検査によりモニターしてもよい。治療法に対する陽性反応は、CTCの生存能の減少及びより遅い分裂速度をもたらすであろう。
[実施例1]:本発明の基材例の調製:
基材調製:0.1%ブタゼラチンの基層を0.1mg/mlのポリ−L−オルニチン(例えば、ポリ−L−オルニチン塩酸塩又はポリ−L−オルニチン臭化水素酸塩)で前処理した。前処理の後、基層をおよそ0.1mg/ml〜およそ1.0mg/mlのI型コラーゲン、IV型コラーゲン、及びラミニンで処理した。
全血試料をMDA−MB231乳癌細胞でスパイクした。スパイクした血液試料を本明細書に記載されるフィコールに基づく密度遠心分離に供した。有核細胞画分を基材上に播種し、37℃、2%O2、及び16.7PSIAで培養した。白血球細胞(WBCs)を蛍光標識した抗CD45抗体で可視化した。図15は、標識化WBCs(パネルA)及び基材に付着した循環乳癌細胞(パネルB)を示す。付着した乳癌細胞は形態学によりWBCs(小さい矢印)と容易に区別できる。
GOL基材を0.1%ブタゼラチン、0.05mg/mLポリ−L−オルニチン塩酸塩、及び5%ウシ胎児血清(FBS)として調製する。GEL基材を0.1%ブタゼラチン、及び1又は複数の0.1mg/mLコラーゲン(例えば、SigmaC7774)、0.1mg/mLラミニン(例えば、SigmaL2020)、及び0.1mg/mLフィブロネクチン(例えば、SigmaF0895)として調製する。細胞培養プレートをGOL基材又はGEL基材で被覆し、基材が37℃で4時間以上に亘りウェルの表面全体を被覆することを確実にする。基材溶液をウェルから除去する。ウェルを滅菌蒸留水で2回洗浄した。1×リン酸緩衝食塩水(PBS)を各ウェルに添加した。その後、細胞培養プレートを室温でおよそ4時間以上に亘ってUV滅菌する。
GOL基材を調製し、実施例3に記載されるように組織培養プレートに被覆する。マウス胚線維芽細胞(MEFs)をGOL被覆プレートに播種し、約48時間に亘り培養するか、細胞が約70%培養密度になるまで培養する。別の実施形態では、MEFsをMillicellインサート(Millipore)上で培養し、ここで、インサートをGOL基材で処理した組織培養プレートのウェルへと挿入する。MEFsを細胞が70%以上の培養密度になるまで培養する(例えば、およそ48時間)。
20mlの末梢血をヒト被験体から採取した。末梢血有核細胞(PBNC)を、本明細書に記載されるフィコールに基づく密度遠心分離により精製した後、下記プロトコルに従って播種した。ポリ−L−オルニチンを含み、基材硬度を与えるゼラチン−寒天混合物で補足したコラーゲン系基材で被覆した細胞培養プレートの各ウェルに平板培養培地(例えば、6ウェルプレートの1ウェル当たり2mL、又は12ウェルプレートの1ウェル当たり1mL)を添加した。300μLのPBNC溶液(2mLの平板培養培地に再懸濁した20mLの末梢血から得た)を6ウェルプレートの各ウェルに添加した(12ウェルプレートについては150μL)。そのプレートを摂氏37度、5%CO2で1時間インキュベートした。最初の播種から1時間後に細胞培養プレートを数回軽く叩いてゆるく付着した細胞(例えば、白血球)を除去し、その細胞培養培地を予め温めておいた平板培養培地と交換した。その後、そのプレートを、5%CO2、2%O2、及び93%N2を含む加圧インキュベータにおいて、16.7PSIA、摂氏37度で24時間以上インキュベートした。24時間経過後に細胞培養プレートを数回軽く叩いてゆるく付着した細胞を除去し、予め温めておいた長期成長培地と培地を交換した。細胞を5%CO2、2%O2、及び93%N2を含む加圧インキュベータにおいて16.7PSIA、摂氏37度でインキュベートした。72時間毎におよそ3分の1から半分の長期成長培地を予め温めておいた新しい培地と置換した。このプロトコルを使用して、CTCsを検出し、培養中に樹立することに成功した。
癌を伴うヒト被験体に由来するCTC細胞でスパイクしたPBNCsをGOL基材上へのフィコールに基づく密度遠心分離を使用して精製した。新たに単離した細胞を平板培養培地に再懸濁した。6ウェル又は12ウェルの標準サイズの培養プレートを使用した。その培養プレートを放射線照射した又は放射線照射していないMEF細胞で、MEF細胞が少なくともおよそ70%の培養密度に達するまで、最低48時間に亘り前処理した。MEF富化培養培地を平板培養培地と交換した。MEF順化培養培地を保持した。末梢血有核細胞(PBNC)溶液を20mLの末梢血を使用して作製し、遠心沈殿し、2mLの平板培養培地に再懸濁した。PBNC溶液を培養皿の各ウェルに添加し、細胞を摂氏37度、5%CO2で1時間インキュベートした。最初の播種から1時間後、培養プレートを数回軽く叩いてゆるく付着した細胞を除去し、培地を以前に保持したMEF順化培養培地と交換した。そのプレートを以下:16.7PSIA、摂氏37度、5%CO2、2%O2、及び93%N2で最低48時間の条件のもと、加圧インキュベータでインキュベートした。48時間経過後、およそ3分の1から半分のMEF順化培地を予め温めておいたR型長期成長培地と交換した。その後、細胞を以下:16.7PSIA、摂氏37度、5%CO2、2%O2、及び93%N2で最低48時間の条件のもと、加圧インキュベータで再びインキュベートした。再度、半分から3分の1の培地を新しい、予め温めておいたR型長期成長培地と置換した。72時間毎に、およそ半分から3分の1のR型長期成長培地を予め温めておいた新しい培地と置換した。このプロトコルを使用して富化したCTCを図16に示す。パネルAは、倍率10倍のもとで患者から単離されたCTCsを示し、パネルBは、倍率20倍のもとで同じCTC細胞を示す。パネルCは、倍率20倍の多核化CTC細胞を示す。単一細胞内の1以上の核の存在は、癌と関連することが多い間違った細胞周期制御を示す可能性がある。これらの結果は、かかる培養条件が、非標的細胞亜集団(例えば、WBCs)に対して、標的細胞亜集団(例えば、CTCs)の選択的増加を促進することを実証する。かかる選択的増殖は、WBCsと比較して2倍を上回るCTC増殖の増加により証明された。
ImageJ(参照により本明細書で援用される、Collins(2007)ImageJ for microscopy.BioTechniques 43:S25−S30)を使用してソフトウェアパッケージの例を開発し、細胞増殖の検出及び測定のための新たなプラグインを作成する。ImageJ用の押ボタン式JAVAベースプラグインは、所与の画像シリーズについて細胞数及び細胞分裂速度を自動的に検出及び測定する。グラフィカルユーザーインターフェースベースのプラグインは、使用者の入力及びバッチ処理能力を支持する。上記ソフトウェアは、細胞総数を生じるために順次実行される4つの異なるスクリプト(又は処理)を含む。
後期の転移性去勢抵抗性前立腺癌(ステージ3より上、腺癌)を伴う60名の被験体を採用する。採用した被験体の大半は、骨への転移(最も一般的に前立腺癌と関連する)が確認された65歳以上の白人男性である。更に、10名の健康な成人ボランティア(男性5名、女性5名)を対照被験体として上記研究に採用する。
多様な転移性癌に由来する末梢血試料を、前立腺癌(2)、乳癌(4)、肺癌(4)、黒色腫(2)、大腸癌(2)、食道癌(2)、及び膵臓がん(2)を伴うヒト被験体から取得した。登録の主な決定因子として確認された転移巣により、患者の選択基準を幅広く維持した。血液の加工及びCTC培養方法を、実施例8に記載されるように行った。18の試料中10がEpCAM+、サイトケラチン+、CD45−細胞を含有したのに対し、18の試料中8が生存CTCコロニーを提示した。図19は、前立腺癌患者の全血から捕捉した培養物中のCTCsの顕微鏡写真を示す。パネルAは、EPCAM及びサイトケラチン8、18に対して陽性の前立腺癌CTCの明視野及び蛍光画像を示す。パネルBは、転移性前立腺癌を伴う患者に由来する急速に成長するCTC培養物を示す。その患者は、骨転移が確認されたステージIVの腺癌を有した。パネルBに示される細胞培養物は、EpCAMの発現が低いか又は発現を呈さず、CD45に陰性であり、播種から5日未満で100%培養密度に達する速い細胞分裂速度を呈した。これらのコロニー内の個別の細胞は、サイズ及び形状が異なり、また高い膜ラフリング活性を呈した。更に、細胞は、一斉に分裂する複数の近辺の細胞と同調的に分裂することが明らかとなった。分裂細胞は、四方八方の上方に延びることが多く、「泡立った」外観をとる。このCTC培養は、全エキソームシーケンシング及びトランスクリプトーム分析を経る10の試料の一部としてPersonalisによる本発明者らの遺伝子特性研究に含まれる。
スパイクした血液に由来する癌細胞を本明細書に記載されるように単離し、富化し、培養した(例えば、実施例2及び実施例6を参照されたい)。細胞をRhoキナーゼ阻害剤であるY−27632(本明細書において参照により援用されるIshizaki et al.2000 Pharmacological Properties of Y−27632,a specific inhibitor of rho−associated kinases.Mol Pharmacol.57(5):976−83)で処理した。抗癌剤感受性試験の結果を図20に示す。パネルAは、Y−27632処理前の単一細胞を示す。パネルBは、Y−27632の添加の際の細胞の画像を示す。上記細胞の形質膜は、薬物処理の2分後(パネルCに示す)及び5分後(パネルDに示す)に際して縮んだ。
本発明は一態様において、以下を提供する。
[項目1]
生体試料に由来する不均一細胞集団からの標的細胞亜集団の選択的富化のための方法であって、(a)前記不均一細胞集団と基材とを接触させる工程、並びに(b)前記標的細胞集団の成長を可能とするのに十分な条件下で前記不均一細胞集団をインキュベートする工程であって、前記条件は、陽圧条件及び/又は低酸素条件下で前記不均一細胞集団をインキュベートすることを含み、前記インキュベートが結果として前記標的細胞亜集団の選択的富化を生じる工程、を含む前記方法。
[項目2]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーによって1又は複数の形態学的特徴及び/又は動態学的特性の表示の際に前記標的細胞亜集団のメンバーを同定する工程を更に含み、前記1又は複数の形態学的特徴及び/又は動態学的特性がコロニー形成、増殖、非標的細胞の表面積と比べて大きな表面積、非標的細胞の前記基材に対する付着と比べて前記基材への付着の増加、急速な細胞分裂、及び多核細胞化からなる群から選択される、項目1に記載の方法。
[項目3]
前記標的細胞亜集団が初代細胞を含む、項目1又は2に記載の方法。
[項目4]
前記標的細胞亜集団が、循環腫瘍細胞(CTCs)、癌幹細胞(CSCs)、固形腫瘍に由来する細胞、造血幹細胞(HSCs)、初代神経細胞、胎児細胞、初代肝細胞、初代心筋細胞、血管内皮前駆細胞(EPCs)、及び上皮前駆細胞からなる群から選択される細胞を含む、項目1〜3のいずれかに記載の方法。
[項目5]
前記標的細胞亜集団がCTCs又はCSCsを含む、項目4に記載の方法。
[項目6]
前記CTCsが転移性CTCを含む、項目5に記載の方法。
[項目7]
前記CTCsが生存CTCを含む、項目5に記載の方法。
[項目8]
前記CTCsが、急性白血病細胞、急性T細胞白血病細胞、急性リンパ性白血病細胞、急性骨髄性白血病細胞、骨髄芽球性白血病細胞、前骨髄球性白血病細胞、骨髄単球性白血病細胞、単球性白血病細胞、赤白血病細胞、慢性白血病細胞、慢性骨髄性(顆粒球性)白血病細胞、慢性リンパ球性白血病細胞、真性多血症細胞、リンパ腫細胞、多発性骨髄腫細胞、ヴァルデンストレームマクログロブリン血症細胞、重鎖病細胞、肉腫細胞、線維肉腫細胞、粘液肉腫細胞、脂肪肉腫細胞、軟骨肉腫細胞、骨肉腫細胞、リンパ管肉腫細胞、中皮腫細胞、ユーイング腫瘍細胞、平滑筋肉腫細胞、横紋筋肉腫細胞、結腸癌細胞、大腸癌細胞、膵臓癌細胞、乳癌細胞、卵巣癌細胞、前立腺癌細胞、去勢抵抗性前立腺癌細胞、扁平上皮癌細胞、基底細胞癌細胞、腺癌細胞、汗腺癌細胞、皮脂腺癌細胞、乳頭癌細胞、乳頭腺癌細胞、嚢胞腺癌細胞、髄様癌細胞、気管支細胞、腎細胞癌細胞、肝癌細胞、胆管癌細胞、絨毛癌細胞、セミノーマ細胞、胚性癌腫細胞、ウィルムス腫瘍細胞、子宮頸癌細胞、子宮癌細胞、精巣腫瘍細胞、肺癌細胞、小細胞肺癌細胞、膀胱癌細胞、上皮癌細胞、神経膠腫細胞、頭蓋咽頭腫細胞、上衣腫細胞、松果体腫細胞、血管芽腫細胞、聴神経腫細胞、乏突起神経膠腫細胞、髄膜腫細胞、黒色腫細胞、神経芽細胞、網膜芽腫細胞、子宮内膜癌細胞、非小細胞肺癌細胞、頭頸部癌細胞、又は腎臓癌細胞を含む、項目5に記載の方法。 [項目9]
前記同定が抗体又はポリヌクレオチドマーカーの使用を含まない、項目1〜8のいずれかに記載の方法。
[項目10]
前記生体試料が体液、又はその派生物を含む、項目1〜9のいずれかに記載の方法。
[項目11]
前記体液が、血液、血漿、血清、リンパ、唾液、尿、汗、又は腹水から選択される、項目10に記載の方法。
[項目12]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーが前記体液又はその派生物1ml当たり1個以下の標的細胞の濃度で存在する、項目10又は11に記載の方法。
[項目13]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーが前記体液又はその派生物1ml当たり0.8個以下の標的細胞の濃度で存在する、項目11に記載の方法。
[項目14]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーが前記体液又はその派生物1ml当たり0.6個以下の標的細胞の濃度で存在する、項目11に記載の方法。
[項目15]
前記生体試料が固体組織試料を含む、項目1〜14のいずれかに記載の方法。
[項目16]
前記基材がコーティングを含み、前記コーティングがGOL基材、GEL基材、1又は複数の層のフィーダー細胞、及びそれらの任意の組み合せからなる群から選択される、項目1〜15のいずれかに記載の方法。
[項目17]
前記基材の構成が、単層構成、二層構成、中間層構成(複数の場合がある)、及び逆位構成からなる群から選択される、項目1〜16のいずれかに記載の方法。
[項目18]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーを個別に単離及び培養することを更に含む、項目1〜17のいずれかに記載の方法。
[項目19]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーを単離することを更に含む、項目1〜18のいずれかに記載の方法。
[項目20]
前記単離が顕微操作器具の使用を含む、項目19に記載の方法。
[項目21]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーを2週間を超えて細胞培養物として培養することを含む、項目1〜20のいずれかに記載の方法。
[項目22]
前記低酸素条件が10%未満のO 2 レベルの下で培養することを含む、項目1〜21のいずれかに記載の方法。
[項目23]
前記O 2 レベルが1%である、項目22に記載の方法。
[項目24]
前記陽圧条件が、14.7PSIAを超える加圧条件下で前記メンバーを培養することを含む、項目1〜23のいずれかに記載の方法。
[項目25]
前記陽圧条件が、15PSIA以上の加圧条件下で前記メンバーを培養することを含む、項目24のいずれかに記載の方法。
[項目26]
前記陽圧条件が、15.7PSIA以上の加圧条件下で前記メンバーを培養することを含む、項目24に記載の方法。
[項目27]
前記陽圧条件が16.7PSIA以上の加圧条件下で前記メンバーを培養することを含む、項目24に記載の方法。
[項目28]
前記陽圧条件が19.7PSIAの加圧条件下で前記メンバー培養することを含む、項目24に記載の方法。
[項目29]
前記条件が、平板培養培地、R型長期成長培地、DF型長期成長培地、D型長期成長培地、MEF−順化培地、及びそれらの任意の組み合せからなる群から選択される細胞培養培地中で前記標的細胞亜集団の前記メンバーを培養することを更に含む、項目1〜28のいずれかに記載の方法。
[項目30]
前記条件が、EGF、ヒドロコルチゾン、プロゲステロン、ジヒドロテストステロン及び/又はそれらの任意の組み合せを含む細胞培養培地中で前記標的細胞亜集団の前記メンバーを培養することを更に含む、項目1〜29のいずれかに記載の方法。
[項目31]
前記条件が、細胞の表面張力を調節する化合物を含む細胞培養培地中で前記メンバーを培養することを含む、項目1〜30のいずれかに記載の方法。
[項目32]
前記化合物がRhoキナーゼ阻害剤である、項目31に記載の方法。
[項目33]
前記化合物が
からなる群から選択される、項目31に記載の方法。
[項目34]
前記条件が、前記メンバーにおいて低酸素誘導因子の発現を増加する薬剤と共に前記メンバーを培養することを含む、項目1〜33のいずれかに記載の方法。
[項目35]
前記低酸素誘導因子が、低酸素誘導因子1α(HIF−1α)、低酸素誘導因子−1β(HIF−1β)、低酸素誘導因子2α(HIF−2α)、低酸素誘導因子−2β(HIF−2β)、低酸素誘導因子−3α(HIF−3α)、低酸素誘導因子−3β(HIF−3β)、又はそれらの任意の組み合せを含む、項目34に記載の方法。
[項目36]
前記低酸素誘導因子がHIF−1αを含む、項目35に記載の方法。
[項目37]
前記低酸素誘導因子の発現を増加する薬剤がベクターを含み、前記ベクターが前記低酸素誘導因子をコードするポリヌクレオチドを含む、項目34〜36のいずれかに記載の方法。
[項目38]
前記ベクターが発現ベクターである、項目37に記載の方法。
[項目39]
前記低酸素誘導因子が配列番号1に対して少なくとも70%以上の相同性を含むアミノ酸配列を含む、項目37に記載の方法。
[項目40]
前記ポリヌクレオチドが配列番号2に対して少なくとも70%以上の相同性又は相補性を含む、項目37に記載の方法。
[項目41]
前記細胞培養培地とフィーダー細胞とを接触させることを含む、項目1〜40のいずれかに記載の方法。
[項目42]
前記フィーダー細胞が、ヒト臍帯静脈内皮細胞(HUVEC)、ヒト肺微小血管内皮細胞(HLMVEC)、及びマウス胚線維芽細胞(MEF)からなる群から選択される、項目41に記載の方法。
[項目43]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーをシーケンシングすることを更に含む、項目1〜42のいずれかに記載の方法。
[項目44]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーにおける1又は複数の遺伝子の発現を特定することを更に含む、項目1〜43のいずれかに記載の方法。
[項目45]
前記標的細胞亜集団の前記メンバーにおける1又は複数のタンパク質の発現を特定することを更に含む、項目1〜44のいずれかに記載の方法。
[項目46]
前記同定が、
(a)前記メンバーの画像を得ること、及び
(b)コンピュータ可読媒体を使用して前記メンバーが前記標的細胞亜集団に属すると自動的に分類すること、を含む、項目1〜45のいずれかに記載の方法。
[項目47]
前記コンピュータ可読媒体が、循環腫瘍細胞(CTCs)、癌幹細胞(CSCs)、造血幹細胞(HSCs)、及び血管内皮前駆細胞(EPCs)を自動的に分類するように構成される、項目46に記載の方法。
[項目48]
前記コンピュータ可読媒体が前記標的亜集団の細胞の物理的特性に基づいてパラメーターを統合するように構成され、前記パラメーターが細胞の外形サイズ、細胞形状、細胞運動、細胞核サイズ、及び細胞分裂からなる群から選択される、項目46に記載の方法。
[項目49]
前記コンピュータ可読媒体が細胞の蛍光標識を検出するように構成される、項目46に記載の方法。
[項目50]
治療を必要とする被験体において癌を治療する方法であって、
前記被験体に由来する生体試料における標的細胞の検出に際して、前記被験体に抗がん剤を投与することを含み、前記標的細胞が項目1〜49のいずれかの方法により検出される、治療を必要とする、被験体において癌を治療する方法。
[項目51]
抗がん剤をそれを必要とする患者に投与する方法であって、
(a)前記抗がん剤を複数の時間点で前記被験体に投与すること、
(b)前記投与の少なくとも第1及び第2の時間点で前記被験体から得られた生体試料に由来する標的細胞を分析することであって、前記分析が項目1〜50のいずれかの方法を含み(c)前記分析に基づいて、投与のため前記抗凝集剤の用量を調整すること、及び/又は異なる抗凝集剤を選択すること、を含む前記方法。
[項目52]
転移性癌を発症していない被験体において前記転移性癌の発症見込みの増加を検出する方法であって、(a)項目1〜51のいずれかに記載の方法を使用して前記被験体に由来する不均一細胞集団から標的細胞亜集団を単離すること、(b)前記標的細胞亜集団を検出すること、及び(c)前記検出に際し、前記被験体を前記転移性癌の発症見込みが増加していることを示すこと、を含む前記方法。
[項目53]
個別化された疾患治療法をそれを必要とする被験体に対して選択する方法であって、(a)項目1〜49のいずれかに記載の方法を使用して前記被験体に由来する標的細胞亜集団を培養すること、(b)前記標的細胞亜集団のメンバーに由来する核酸をシーケンシングして前記標的細胞亜集団の前記メンバーの遺伝子プロファイルを作成すること、及び(c)前記標的細胞亜集団の前記メンバーの前記遺伝子プロファイルに基づいて前記被験体に対して個別化された疾患治療法を選択することを含む前記方法。
[項目54]
(d)前記個別化された疾患治療法を前記被験体に提案することを更に含む、項目53に記載の方法。
[項目55]
前記個別化された疾患治療法が個別化された癌治療法である、項目53に記載の方法。
[項目56]
閉鎖環境チャンバを備えた細胞培養インキュベータであって、
前記細胞培養インキュベータが(i)前記閉鎖環境チャンバの気体組成、(ii)前記閉鎖環境チャンバの使用者によって制御される大気圧、及び(iii)前記閉鎖環境チャンバの内部周囲温度、を維持するように構成される、細胞培養インキュベータ。
[項目57]
細胞培養基材を備えた細胞培養プレートであって、前記基材が標的細胞の前記基材への付着を促進するために選択され、前記標的細胞が付着性の生存細胞であり、前記基材が細胞外マトリクスタンパク質を含む、細胞培養プレート。
[項目58]
キットであって、
(a)項目1〜57に記載の細胞培養インキュベータと、
(b)前記インキュベータの閉鎖環境チャンバ内で15.7PSIA以上の大気圧を維持する指示文を含む、標的細胞亜集団の培養における使用に関する指示書とを含むキット。
[項目59]
キットであって、
(a)項目1〜58に記載の細胞培養インキュベータと、
(b)標的細胞亜集団の培養における使用に関する指示書であって、前記インキュベータの閉鎖環境チャンバ内で10%以下のO 2 レベルを維持する指示文を含む前記指示書とを含むキット。
[項目60]
キットであって、
(a)項目1〜59に記載の基材を含む細胞培養プレートと、
(b)前記標的細胞亜集団を10%以下のO 2 レベルで培養する指示文を含む、標的細胞亜集団を培養するための前記プレートの使用に関する指示書とを含むキット。
[項目61]
キットであって、
(a)項目1〜60に記載の基材を含む細胞培養プレートと、
(b)前記標的細胞亜集団を15.7PSIA以上の大気圧で培養する指示文を含む、標的細胞亜集団を培養するための前記プレートの使用に関する指示書とを含むキット。
[項目62]
キットであって、
(a)項目1〜61のいずれかに記載の細胞培養培地と、
(b)10%以下のO2レベルで前記標的細胞亜集団を培養する指示文を含む、標的細胞亜集団を培養するための前記細胞培養物の使用に関する指示書とを含むキット。
[項目63]
キットであって、
(a)項目1〜62のいずれかに記載の細胞培養培地と、
(b)前記標的細胞亜集団を15.7PSIA以上の大気圧で培養する指示文を含む、標的細胞亜集団を培養するための前記細胞培養培地の使用に関する指示書とを含むキット。
[項目64]
キットであって、
(a)前記メンバーにおいて低酸素誘導性因子の発現を増加する薬剤と、
(b)標的細胞亜集団を培養するための前記薬剤の使用に関する指示書と
を含むキット。
[項目65]
コンピュータ可読媒体であって、1又は複数の初代細胞の画像データを受け取る際に、下記の工程、(a)前記画像データから前記1又は複数の初代細胞のサイズを決定する工程、及び(b)前記サイズが腫瘍に起因しない細胞よりも少なくとも1.5倍大きい場合に初代細胞が腫瘍に起因すると分類する工程を実行するコードを含み、
前記1又は複数の初代細胞が生体細胞から得られ、前記1又は複数の初代細胞を前記標的細胞亜集団の成長が十分可能な条件下で培養し、前記条件が陽圧条件及び/又は低酸素条件下で前記1又は複数の初代細胞をインキュベートする、前記コンピュータ可読媒体。
[項目66]
コンピュータ可読媒体であって、生体試料から得られた1又は複数の初代細胞の画像データを受け取る際に、下記の工程、(a)前記画像データから平滑な固体又は半固体の基材に付着した三次元コロニーの存在又は不在を検出する工程、及び(b)前記三次元コロニーの存在を検出する際に、前記生体試料が腫瘍細胞を含むと分類する工程を実行するコードを含み、
前記1又は複数の初代細胞を、前記標的細胞亜集団の成長を可能とするのに十分な条件下で培養し、前記条件が陽圧条件及び/又は低酸素条件下で前記1又は複数の初代細胞をインキュベートすることを含む、前記コンピュータ可読媒体。
[項目67]
コンピュータ可読媒体であって、生体試料から得られた1又は複数の初代細胞の画像データを受け取る際に、下記の工程、(a)前記画像データから複数の核を含む初代細胞の存在又は不在を検出する工程、及び(b)前記複数の核の存在を検出する際に、前記生体試料を腫瘍細胞を含むと分類する工程を実行するコードを含み、
前記1又は複数の初代細胞を前記標的細胞亜集団の成長を可能とするのに十分な条件下で培養し、前記条件が陽圧条件及び/又は低酸素条件下で前記1又は複数の初代細胞をインキュベートすることを含む、前記コンピュータ可読媒体。
[項目68]
コンピュータ可読媒体であって、生体試料から得られた1又は複数の初代細胞の画像データを受け取る際に、下記の工程、(a)前記画像データから負の正味表面電荷を含む初代細胞の存在又は不在を検出する工程、及び(b)負の正味表面電荷を含む前記初代細胞の存在を検出する際に、前記生体試料が腫瘍細胞を含むと分類する工程を実行するコードを含み、
前記正味の負の表面電荷が、非腫瘍細胞の前記正電荷固体又は半固体の基材への付着と比べた前記初代細胞の正電荷固体又は半固体の基材への付着性の増加により証明される、前記コンピュータ可読媒体。
[項目69]
コンピュータ可読媒体であって、生体試料から得られた1又は複数の初代細胞の画像データを受け取る際に、下記の工程、(a)前記画像データから急速に分裂する細胞の存在又は不在を検出する工程、及び(b)前記急速に分裂する細胞の存在を検出するに際し、前記生体試料が腫瘍細胞を含むと分類する工程を実行するコードを含み、
前記1又は複数の初代細胞を、前記標的細胞亜集団の成長を可能とするのに十分な条件下で培養し、前記条件が陽圧条件及び/又は低酸素条件下で前記1又は複数の初代細胞をインキュベートすることを含む、前記コンピュータ可読媒体。
[項目70]
コンピュータシステムであって、
(a)試料に関連するデータセットを記憶する記憶メモリと、
(c)前記記憶メモリに通信可能に連結されたプロセッサであって、項目1〜69のいずれかに記載のコンピュータ可読媒体を含む前記プロセッサと、(c)前記データセットとを含む前記コンピュータシステム。
[項目71]
細胞画像化システムであって、
(a)細胞からの画像データを作成するように構成された顕微鏡と、
(b)前記顕微鏡から画像データを受け取るように構成されたコンピュータシステムであって、前記顕微鏡が項目1〜70のいずれかに記載のコンピュータ可読媒体を含む前記コンピュータシステムと、を含む前記細胞画像化システム。
[項目72]
標的細胞集団を培養するシステムであって、
(a)項目1〜71のいずれかに記載の細胞培養インキュベータと、
(b)少なくとも1つの(i)細胞培養プレート、(ii)細胞培養培地、及び(iii)細胞画像化システムと、を含む前記システム。
Claims (14)
- 生体試料に由来する不均一細胞集団からの循環腫瘍細胞(CTCs)の選択的富化のための方法であって、
前記不均一細胞集団と基材を接触させる工程と、
前記CTCsの成長を可能とするのに十分な条件下で前記不均一細胞集団をインキュベートする工程であって、前記条件は、大気圧より約2PSI高い陽圧条件かつ5%酸素を超えない低酸素条件下で前記不均一細胞集団をインキュベートすることを含み、前記インキュベートが結果として前記CTCsの選択的富化を生じる工程、を含む前記方法。 - 前記CTCsのメンバーの1又は複数の形態学的特徴及び/又は動態学的特性が表示される際に、前記CTCsのメンバーを同定する工程を更に含み、前記1又は複数の形態学的特徴及び/又は動態学的特性がコロニー形成、増殖、非CTC細胞の表面積と比べて大きな表面積、非CTC細胞の基材に対する付着と比べて増加した基材への付着、急速な細胞分裂、及び多核細胞化からなる群から選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記同定が抗体又はポリヌクレオチドマーカーの使用を含まない、請求項1〜2のいずれか一項に記載の方法。
- 前記生体試料が体液、又はその派生物を含む、請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記基材がコーティングを含み、前記コーティングがゼラチンと血清を含むGOL基材、ゼラチン及び細胞外マトリクス(ECM)と関連する1又は複数の生体材料を含むGEL基材、1又は複数の層のフィーダー細胞、及びそれらの任意の組み合せからなる群から選択される、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。
- 前記基材の構成が、単層構成、二層構成、中間層構成(複数の場合がある)、及び逆位構成からなる群から選択される、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記CTCsを個別に単離及び培養することを更に含む、請求項2に記載の方法。
- 前記CTCsを2週間を超えて細胞培養物として培養することを含む、請求項2に記載の方法。
- 前記条件が、細胞の表面張力を調節する化合物を含む細胞培養培地中で培養することを含み、前記化合物がRhoキナーゼ阻害剤を含む、請求項2に記載の方法。
- 前記同定が、
(a)前記メンバーの画像を得ること、及び
(b)コンピュータ可読媒体を使用して前記メンバーが前記CTCsに属すると自動的に分類すること、を含む、請求項2〜10のいずれか一項に記載の方法。 - 前記コンピュータ可読媒体が前記CTCsの物理的特性に基づいたパラメーターを統合するように構成され、前記パラメーターが細胞の外形サイズ、細胞形状、細胞運動、細胞核サイズ、及び細胞分裂からなる群から選択される、請求項11に記載の方法。
- 前記コンピュータ可読媒体が細胞の蛍光標識を検出するように構成される、請求項11に記載の方法。
- 抗癌治療法を開発する方法であって、
(a)請求項1〜13のいずれか一項に記載の方法を用いて、CTCを培養すること、
(b)CTCと試験薬剤を接触させること、
(c)CTCの生存能及び/又は成長をアッセイすること、および
(d)CTCの生存能及び/又は成長が、試験薬剤と接触していないCTCと比較して減少される場合に、試験薬剤を抗癌治療法として選択することを含む方法。
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