JP6261097B2 - 水素水及びその製造方法 - Google Patents

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Description

本発明は、水素を豊富に含む水素水に関するもので、特に、長い間水素濃度を高くできる水素水及びその製造方法に関するものである。
近年、還元力が高い水素（水素分子、原子状水素、マイナス水素イオン、水素化物イオン）には、強い酸化力によってタンパク質やＤＮＡ等に損傷を与えて癌、糖尿病、高血圧、心臓病等の生活習慣病を引き起こすとされている活性酸素を除去する働きがあることがわかってきており、健康志向の高まりと相俟って、水素が含まれている水（所謂、水素水、活性水素水と呼ばれるものである）に高い注目が集められている。
このような水素水、活性水素水（以下、両者を区別することなく単に水素水とする）への関心が高まるにつれ、それらの製造手法も様々開発されており、例えば、水の電気分解により水素水を製造する方法、マグネシウム等の金属と水の反応により水素水を製造する方法、水素ガスを加圧等により水に溶解させることで水素水を製造する方法（加圧溶解法／マイクロ・ナノバブル法）等が知られている。
ところが、一般的に、水素分子は分子が小さく水に溶けにくくて様々な材質を透過しやすいため、上述した従来の方法により製造された水素水では、工場で水素水を調製し、それを安価で取扱い易いＰＥＴ（ポリエチレンテレフタレート）容器に充填しても、水素分子がＰＥＴ容器から容易に抜け出てしまい、水素濃度を高い状態で長期間維持することは非常に困難で、ＰＥＴ容器での長期保管や流通には向かないとされていた。
また、従来の方法により製造された水素水では、ＰＥＴ容器よりも水素が抜け難いとされているアルミパウチ等のアルミ容器に充填した場合でも、容器を開封した直後から水素が大気中に散逸してしまい、開封後直ぐに一気に飲まなければ水素が急激に減って殆どなくなってしまっていた。
商品形態が電解等により水素を生成する家庭用や工業用の所謂、水素水サーバー等の設置型のものでも、水素が生成直後から散逸してしまうことは同様である。
したがって、従来、水素水の水素濃度を高いままで長い間維持するのは難しく、水素濃度が高い状態で摂取することは困難であった。このため、水素を効率的に体内に取り入れて水素による病気予防や健康増進等といった有用な効能効果を得るのは難しいとされていた。
ここで、水素の寿命を長くする技術として、特許文献１及び特許文献２において、フッ素系カチオン交換膜からなる隔膜でアノード室とカソード室に分けてアノード電極及びカソード電極をフッ素系カチオン交換膜からなる隔膜に密着させた構造の電解槽にてカソード電解により生成した水素と、糖類やポリフェノールからなる還元性ヒドロキシル基を有する物質（細胞抽出成分）とを水に含有させた水素水が開示されている。この特許文献１及び特許文献２の水素水によれば、糖類やポリフェノールからなる還元性ヒドロキシル基を有する物質を溶存水素分子安定化剤として、水素分子を含有する電解還元水素水と相互作用させることで、溶存水素の寿命を長くできるとされている。
また、水素を含有する飲料に関し、更に還元力を高めるとして、特許文献３では、アミノ酸、アスコルビン酸、フェノール化合物、オキシ酸類、リン酸、リン酸誘導体、コーヒ‐酸誘導体、及びフラボノイドのうち少なくとも一種を用いる抗酸化物質を水素ガスと接触させる前の原水に添加することにより、また、特許文献４では、茶類、果実・野菜・植物類、糖・甘味料類、ポリフェノール類、ビタミン及び補酵素類、アミノ酸・タンパク質類、酸化還元酵素、クエン酸及び酵母エキスからなる群から選択される少なくとも一種の機能性原料を水素を含有する水素水に添加することにより、還元性の持続性を高めた還元性の高い飲料が開示されている。
特開２０１５‐００９１７５号公報 再表２００８／０６２８１４号公報 特開２００５‐２９６７９４号公報 特開２０１３‐１６９１５３号公報
しかしながら、特許文献１及び特許文献２では、実施例において、細胞抽出物質が添加されていないものと比較して、細胞抽出物質が添加されているものは製造から２４時間後において、酸化還元電位の増大が少なくなっているが、２４時間後以降は不明である。また、ＰＥＴ容器に入れた６カ月後においても、細胞抽出物質（実施例ではグルコース、ショ糖、オリゴ糖、ＣＭＣ）が添加されていないものと比較して、酸化還元電位の増大が少なくなってはいるものの、製造直後の酸化還元電位は維持されていない。特に、還元性ヒドロキシル基を有する物質を添加しているため、酸化還元電位の指標のみでは、溶存水素量が不明である。
また、特許文献３及び特許文献４においては、所定物質の添加により酸化還元電位の上昇が抑制されているが、所定物質の添加は、飲料の還元力を高めて、酸化還元電位を低い値に維持し飲料自体の還元性の持続性を高めるためのものであり、水素濃度の維持を図るものではない。
そこで、本発明は、長い間水素濃度を高くでき、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする水素水及びその製造方法の提供を課題とするものである。
請求項１の水素水は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とが混合されてなり、酸処理により沈殿物のない分散液を、それに浸漬させた陽極及び陰極の電極間への所定の電圧印加により励起してなる水素水であって、植物エキスが添加されたものである。
ここで、上記酸処理は、酸と混合して好ましくは、ｐＨ１以上、ｐＨ５以下、より好ましくは、ｐＨ２以上、ｐＨ４以下とする。上記酸には、好ましくは有機酸が使用される。そして、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水との混合により生じる沈殿物を、酸を混合することによる酸処理によって溶解（分散）するものである。
更に、上記励起は、分散液に陰極及び陽極を浸漬し、その両極を繋ぐ直流電源により直流電圧を印加することにより行われ、このときの陰極及び陽極の電圧は、例えば、水の電気分解に適した値に設定される。
そして、上記植物エキスとしては、例えば、野菜類、ハーブ・薬草類、果実類、大豆類、花木類のエキスが挙げられる。
ここで、上記「エキス」は、広義に捉え、植物成分を水やエタノール等の溶媒に浸して抽出したものに限定されず、植物から搾取した搾汁液等も含まれる。
特に、本発明にかかる水素水は、前記植物エキスが、野菜類、果実類、ハーブ・薬草類、豆類、木の実類、花木類から選ばれる少なくとも１種のエキスであるものである。
請求項２の水素水は、請求項１の構成において、前記植物エキスが植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスであるものである。
上記食用部位としては、例えば、植物の実、花のつぼみ、茎（地下の茎を含む）、葉、根が挙げられる。
請求項３の水素水の製造方法は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とを混合して調製した分散液に酸を混合して沈殿物を溶解（分散）し、更に、陰極及び陽極を浸漬し、それら電極間に所定の電圧を印加する水素水の製造方法であって、植物エキスを添加したものである。
ここで、上記酸と混合は、酸と混合して分散液を好ましくは、ｐＨ１以上、ｐＨ５以下、より好ましくは、ｐＨ２以上、ｐＨ４以下とする。上記酸には、好ましくは有機酸が使用される。そして、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水との混合により生じる沈殿物を、酸を混合することによる酸処理によって溶解（分散）するものである。
更に、上記励起は、分散液に陰極及び陽極を浸漬し、その両極を繋ぐ直流電源により直流電圧を印加することにより行われ、このときの陰極及び陽極の電圧は、例えば、水の電気分解に適した値に設定される。
そして、上記植物エキスとしては、例えば、野菜類、ハーブ・薬草類、果実類、大豆類、花木類のエキスが挙げられる。植物エキスを添加するタイミングは、好ましくは、電圧印加の後に行われるが、電圧印加の前であってもよく、分散液を調整する段階や、酸処理後の段階で添加してもよい。
ここで、上記「エキス」は、広義に捉え、植物成分を水やエタノール等の溶媒に浸して抽出したものに限定されず、野菜から搾取した搾汁液等も含まれる。
特に、本発明にかかる水素水の製造方法は、前記植物エキスが野菜類、果実類、ハーブ・薬草類、豆類、木の実類、花木類から選ばれる少なくとも１種のエキスであるものである。
請求項４の水素水の製造方法は、請求項３の構成において、前記植物エキスは、植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスであるものである。
上記食用部位としては、例えば、植物の実、花のつぼみ、茎（地下の茎を含む）、葉、根が挙げられる。
請求項１の発明の水素水は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とが混合されてなり、酸処理により沈殿物のない分散液を、それに浸漬させた陽極及び陰極の電極間への所定の電圧印加により励起してなる水素水であって、植物エキスが添加されてなるものである。
本出願人は先に、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とが混合されてなり、酸処理により沈殿物のない分散液を、それに浸漬させた陽極及び陰極の電極間への所定の電圧印加により励起してなる水素水では、既存の一般的なＰＥＴ等の容器に入れて密封し、長期間保管後に開封しても溶存水素が検出されることを確認した。
そして、本発明者らは更に鋭意実験研究を積み重ねた結果、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とが混合されてなり、酸処理により沈殿物のない分散液をそれに浸漬させた陽極及び陰極の電極間への所定の電圧印加により励起してなる水素水に植物エキスが添加されると、植物エキスを添加しない場合よりも溶存水素濃度が顕著に増大し、長い間溶存水素濃度が高くなることを見出し、この知見に基づいて本発明を完成させたものである。
したがって、請求項１の発明の植物エキスが添加されてなる水素水によれば、水素濃度を長い間高くでき、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
特に、本発明にかかる水素水によれば、前記植物エキスは、柑橘類、緑黄色野菜類、ハーブ・薬草類、果実類、大豆類、花木類から選ばれる少なくとも１種である。
本発明者らの実験研究により、植物エキスの中でも柑橘類、緑黄色野菜類、ハーブ・薬草類、果実類、大豆類、花木類から選ばれる少なくとも１種の植物エキスでは、安定的に高い水素濃度が検出された。
よって、安定的に水素濃度を高くできる。
請求項２の発明の水素水によれば、植物エキスは、植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスである。
本発明者らの実験研究により、植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスでは、安定的に高い水素濃度が長く検出された。
よって、請求項１に記載の効果に加えて、安定的に長く水素が高い濃度となる。
請求項３の発明の水素水の製造方法は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とを混合して調製した分散液に酸を混合し沈殿物を溶解（分散）し、更に、陰極及び陽極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起する水素水の製造方法であって、植物エキスを添加するものである。
本出願人は先に、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とを混合して調製した分散液に酸を混合し沈殿物を溶解（分散）し、更に、陰極及び陽極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起して製造した水素水では、既存の一般的なＰＥＴ等の容器に入れて密封し、長期間保管後に開封しても溶存水素が検出されることを確認した。
そして、本発明者らは更に鋭意実験研究を積み重ねた結果、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とを混合して調製した分散液に酸を混合し沈殿物を溶解（分散）し、更に、陰極及び陽極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起して得られる水素水に植物エキスを添加することにより、植物エキスを添加しない場合よりも溶存水素濃度が顕著に増大し、長い間溶存水素濃度が高くなることを見出し、この知見に基づいて本発明を完成させたものである。
したがって、請求項３の発明の植物エキスを添加した水素水の製造方法によれば、水素濃度を長い間高くでき、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
特に、本発明の水素水の製造方法によれば、前記植物エキスは、柑橘類、緑黄色野菜類、ハーブ・薬草類、果実類、大豆類、花木類から選ばれる少なくとも１種である。
本発明者らの実験研究により、植物エキスの中でも柑橘類、緑黄色野菜類、ハーブ・薬草類、果実類、大豆類、花木類から選ばれる少なくとも１種の植物エキスの添加では、安定的に高い水素濃度が検出された。
よって、安定的に水素濃度を高くできる。
請求項４の発明の水素水の製造方法によれば、植物エキスは、植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスである。
本発明者らの実験研究により、植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスの添加では、安定的に高い水素濃度が長く検出された。
よって、請求項３に記載の効果に加えて、安定的に長く水素が高い濃度となる。
図１は本発明の実施の形態に係る水素水の製造工程を示すフローチャートである。 図２は本実施の形態の実施例１‐１に係る水素水のサンプル１〜サンプル３について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図３は本実施の形態の実施例１‐１に係る水素水のサンプル４及びサンプル５について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果を示すグラフである。 図４は本実施の形態の実施例１‐１に係る水素水のサンプル６〜サンプル１１について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランクと比較して示すグラフである。 図５は本実施の形態の実施例１‐１に係る水素水のサンプル１２〜サンプル１４について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果を示すグラフである。 図６は本実施の形態の実施例１‐２に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図７は本実施の形態の実施例１‐３に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図８は本実施の形態の実施例１‐４に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図９は本実施の形態の実施例１‐５に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図１０は本実施の形態の実施例２‐１に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図１１は本実施の形態の実施例２‐１Ａ〜実施例２‐１Ｃに係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランクと比較して示すグラフである。 図１２は本実施の形態の実施例２‐１に係る水素水のサンプル１〜３について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランクと比較して示すグラフである。 図１３は本実施の形態の実施例２‐１に係る水素水のサンプル４及びサンプル５について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランクと比較して示すグラフである。 図１４は本実施の形態の実施例２‐２に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランクと比較して示すグラフである。 図１５は本実施の形態の実施例２‐３に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランクと比較して示すグラフである。 図１６は本実施の形態の実施例２‐４に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図１７は本実施の形態の実施例２‐５に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図１８は本実施の形態の実施例３‐１に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図１９は本実施の形態の実施例３‐２に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図２０は本実施の形態の実施例４‐１に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図２１は本実施の形態の実施例４‐２に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図２２は本実施の形態の実施例４‐３に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図２３は本実施の形態の実施例４‐４に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図２４は本実施の形態の実施例４‐５に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図２５は本実施の形態の実施例４‐６に係る水素水について、溶存水素濃度を経時的に測定した結果をブランク及び対照と比較して示すグラフである。 図２６は本実施の形態に係る水素水を加熱殺菌した後に容器に充填して密封することにより、加熱殺菌して密封容器入り水素水を製造する製造工程を示すフローチャートである。 図２７は本実施の形態に係る水素水を加熱殺菌することなく容器に充填して密封することにより非加熱で密封容器入り水素水を製造する製造工程を示すフローチャートである。
以下、本発明の実施の形態について、図面を参照しながら説明する。
なお、実施の形態において、図示の同一記号及び同一符号は、同一または相当する機能部分であるから、ここではその重複する詳細な説明を省略する。
［実施の形態］
まず、本発明の実施の形態に係る水素水１００の製造方法について、図１を参照して説明する。
図１に示すように、本実施の形態においては、始めに水素原液１が作製され、それに植物エキス７０が添加される。
本実施の形態の水素原液１の製造方法は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩のリン酸／リン酸塩２０と、水３０とを混合して分散液４０を調製する混合工程（ステップＳ１０）と、調製した分散液４０に有機酸５０を添加する酸混合工程（ステップＳ２０）と、酸が添加された分散液４０にアルカリ６０を混合するアルカリ混合工程（ステップＳ３０）と、アルカリ６０が混合された分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起する電圧印加工程（ステップＳ４０）を具備する。
以下、図１のフローチャートを参照して、本実施の形態の水素原液１の製造方法を具体的に説明する。
本実施の形態では、最初に、混合工程（ステップＳ１０）にて、マグネシウム／カルシウム１０と、リン酸／リン酸塩２０と、水３０とを混合して分散液４０を調製する。
ここで、マグネシウム／カルシウム１０は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物から選ばれる１種または２種以上であればよく、マグネシウム化合物としては、例えば、酸化マグネシウム（ＭｇＯ）、炭酸マグネシウム（ＭｇＣＯ3）、塩化マグネシウム（ＭｇＣｌ2）等が挙げられ、カルシウム化合物としては、炭酸カルシウム（ＣａＣＯ3）、水酸化カルシウム（Ｃａ（ＯＨ）2）等が挙げられる。本実施の形態の水素水１００を飲用とする場合には、食品添加物として許可されているものが使用される。
本発明を実施する場合、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物は、そのままの形態で添加することも可能であるし、水と混合しマグネシウム／カルシウム分散液の形態で添加することも可能である。
リン酸／リン酸塩２０は、リン酸またはリン酸塩のうちの何れか１種以上が使用され、リン酸塩としては、リン酸マグネシウム、リン酸カルシウム、リン酸鉄、リン酸亜鉛等が挙げられる。本実施の形態の水素水１００を飲用とする場合には、食品添加物として許可されているものが使用される。
本発明を実施する場合、リン酸、リン酸塩は、そのままの形態で添加することも可能であるし、水と混合しリン酸／リン酸塩水溶液として添加することも可能である。
また、本実施の形態で使用する水３０としては、天然水（ナチュラルウォータ、ナチュラルミネラルウォータ、ミネラルウォータ等）や、純水、滅菌水、蒸留水、イオン交換水、濾過水等の精製水、水道水等が挙げられる。但し、後述するように水素水１００の分散媒がミネラル分を含む天然水（ナチュラルミネラルウォータ等）であれば確実に水素濃度を高くできることから、全体の溶液量等を考慮して水の種類が選択される。
そして、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して調製する分散液４０を１００重量部とするとき、マグネシウム／カルシウム１０が、５〜２０重量部の範囲内で配合され、リン酸／リン酸塩２０が、１０〜３０重量部の範囲内で配合されるのが好ましい。上記範囲内の配合であれば、確実に長い間水素濃度を高くでき、かつ、風味や透明性が良好で飲用に好適な水素水１００が得られる。
なお、本発明者らの実験研究によれば、マグネシウム／カルシウム１０としてマグネシウム化合物、特に酸化マグネシウムを使用した場合、溶存水素濃度の測定ピーク値（最高値）が高い水素水１００が得られることを確認している。カルシウム及び／またはその化合物よりもマグネシウム及び／またはその化合物の方が反応性が高くなると考えている。
続いて、本実施の形態では、酸混合工程（ステップＳ２０）にて、混合工程（ステップＳ１０）で調製した分散液４０に有機酸５０を混合し、沈殿物を溶解（分散）する。好ましくは、ｐＨ１以上、ｐＨ５以下、より好ましくは、ｐＨ２以上、ｐＨ４以下の酸性とされる。
ここで、分散液４０のｐＨは、ｐＨメータよりもｐＨ試験紙で測定することで、共存イオンの影響を排除して正確なｐＨを測定できることから、ｐＨ試験紙で測定したものである。
有機酸５０としては、クエン酸、乳酸、酒石酸、フマル酸、リンゴ酸、コハク酸、酢酸、グルコン酸、アスコルビン酸やそれらの水溶性の塩等が挙げられ、本実施の形態の水素水１００を飲用とする場合には、食品添加物として許可されているものが使用される。有機酸５０は１種を単独で用いてもよいし、２種以上を併用することも可能である。
ここで、有機酸５０の添加量は、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０との合計配合量１００重量部に対して、１００〜２００重量部の範囲内とするのが好ましい。
また、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して作製した分散液（４０）１００重量部に対して、２０〜５０重量部の範囲内とするのが好ましい。
有機酸５０の添加量を上記範囲内とすることで、その後の処理操作性も高くなり、確実に水素濃度を高くすることができ、また、風味や透明性が良好で飲用に好適なものとなる。
なお、有機酸５０は、取扱い性や分散性等の観点から、水と混合して有機酸水溶液（例えば、３〜２０質量％濃度）の形態で、混合工程（ステップＳ１０）で調製した分散液４０と混合させてもよい。
酸混合工程（ステップＳ２０）において、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して調製した分散液４０を有機酸５０で酸処理して酸性にすることで、分散液４０の分散性が高まり、沈殿物が溶解して、その後の処理操作性も良く、水素水１００の水素濃度を高くできる。また、濁度が低下して透明度が増す。
次いで、本実施の形態では、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）にて、酸混合工程（ステップＳ２０）で酸処理した分散液４０にアルカリ６０を混合する。好ましくは、ｐＨ試験紙による測定でｐＨ１以上、ｐＨ１０以下の分散液４０とする。より好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ８以下、更に好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下とする。
アルカリ６０としては、水酸化ナトリウム（ＮａＯＨ）、水酸化カリウム（ＫＯＨ）、水酸化カルシウム（Ｃａ（ＯＨ）2）等が挙げられ、本実施の形態の水素水１００を飲用とする場合には、食品添加物として許可されているものが使用される。アルカリ６０は１種を単独で用いてもよいし、２種以上を併用することも可能である。
なお、アルカリ６０の添加量は、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と有機酸５０の合計配合量１００重量部に対して、２０〜５０重量部の範囲内とするのが好ましい。
アルカリ６０の添加量を上記範囲内とすることで、確実に水素濃度が高い水素水１００が得られ、特にｐＨ５以上、ｐＨ８以下であれば風味や透明性が良好で飲用にも好適なものとなる。
アルカリ６０は、取扱い性や分散性等の観点から、水と混合してアルカリ水溶液（例えば、１〜１２質量％濃度）の形態で、酸混合工程（ステップＳ２０）で酸性にした分散液４０と混合させてもよい。
アルカリ混合工程（ステップＳ３０）において、酸性にした分散液４０にアルカリ６０を混合することで、確実に安定して長い間水素濃度が高い水素水１００が得られ、また、風味が良好で飲用に好適な水素水１００とすることができる。
なお、本発明を実施する場合には、酸処理後の分散液４０にアルカリ６０を混合することなく、次の電圧印加工程（ステップＳ４０）に供することも可能であり、電圧印加する分散液４０のｐＨが好ましくはｐＨ１以上、ｐＨ１０以下であればよい。ｐＨ１以上、ｐＨ１０以下であれば、確実に水素濃度を長い間高くできる。より好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ８以下、更に好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下であれば、より水素濃度を高くできる。酸処理された分散液４０がそのまま電圧印加に供されることもあれば、酸処理後にアルカリ６０を混合してｐＨの調整を行っても良い。
次に、本実施の形態では、電圧印加工程（ステップＳ４０）にて、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）でアルカリ６０が混合された分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけ、励起している。
このときの陰極及び陽極は、不活性な電極であれば良く、例えば、白金や炭素電極を用いることができる。陰極及び陽極の電圧は、水の電気分解に適した値に設定すれば良く（例えば、３〜２０Ｖ）、電流は、電極の面積や溶液量等を考慮して適宜設定される（例えば、５〜１０Ａ）。電圧を印加し、励起する時間は、溶液量、溶液中の成分量、電圧をかけた後の所望とする溶存水素濃度（例えば、１００〜１，５００μｇ／Ｌ）等を考慮して適宜設定される（例えば、１〜２００分間）。
なお、電圧印加工程（ステップＳ４０）において、アルカリ６０混合後の分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に電圧を印加し、励起することで、水が電気分解され、水の電気分解により水素が生成することが考えられる。また、電荷（電子）移動が生じ、水素のキャリアーやドナーとなる微粒子（例えば、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０の混合により生じるマグネシウム／カルシウムーリン酸系の錯体状物や、電極から溶出した電極材料からなる金属粒子や、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水３０に含まれているミネラル分の粒子等が考えられる）が生成されたり、その電荷バランスが調整されたり、または、水との反応で水素を生成するマグネシウムやカルシウムが化学的に安定な状態となったりする等のことが考えられる。
このように、本実施の形態では、混合工程（ステップＳ１０）において、マグネシウム／カルシウム１０と、リン酸／リン酸塩２０と、水３０とを混合して分散液４０を調製し、酸混合工程（ステップＳ２０）において、調製した分散液４０を有機酸５０との混合により酸処理し、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）において、酸処理した分散液４０にアルカリ６０を混合し、電圧印加工程（ステップＳ４０）において、アルカリ６０混合後の分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけ励起する。
ここで、本発明を実施する場合、電圧印加工程（ステップＳ４０）後に、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水で、例えば、１０〜１０００倍に希釈してもよい。
例えば、マグネシウム／カルシウム１０と、リン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して調製する分散液４０を１００重量部とするとき、マグネシウム／カルシウム１０が５〜２０重量部の範囲内で混合され、リン酸／リン酸塩２０が１０〜３０重量部の範囲内で混合され、また、有機酸５０の添加総量が、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０の合計配合量１００重量部に対して１００〜２００重量部の範囲内とした水素原液１にそれの９〜９９９倍の水を混合して、水素原液１を１０〜１０００倍に希釈することで、風味や透明性が良好な飲料水として好適なものとなる。
そして、特に、本発明者らの実験研究により、水素水１００（水素原液１）の分散媒を主に天然水(ナチュラルミネラルウォータ等)、好ましくは、ｐＨ１０以下の軟水とすることにより水素濃度が高くなることを確認しており、希釈された水素原液１は、好ましくは、ｐＨ１以上、ｐＨ１０以下、より好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ８以下であれば、確実に水素濃度が高くなる。ｐＨ５以上、ｐＨ８以下であれば、飲用にも適する。
なお、このような希釈を行った場合には、再度、陰極及び陽極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起する第２の電圧印加工程を実施してもよい。これにより、より安定的に水素水１００の水素濃度が高くなる。
こうして、本実施の形態の水素原液１が製造される。
このようにして製造した水素原液１は、既存の一般的なＰＥＴ容器等に入れて密封保管し、長期間（例えば１２カ月以上）経過後に容器を開封して溶存水素濃度を測定しても、所定濃度の溶存水素が検出される。
この理由について科学的な根拠は未詳であるが、例えば、容器開封による圧力変化や振動、振とう、攪拌等の外力をきっかけに水素生成反応が生じるためと考えられる。或いは、水素原液１中の水素のキャリアーやドナーとなる微粒子に、生成した水素が吸着・固定されるためと考えられる。例えば、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０の混合によりマグネシウム／カルシウムーリン酸系の錯体状物（一例として、ヒドロキシアパタイト（Ｃａ10（ＰＯ4）6（ＯＨ）2の錯体状物や、Ｍｇ10（ＰＯ4）6（ＯＨ）2の錯体状物等）が生成され、このマグネシウム／カルシウムーリン酸系の錯体状物に生成した水素が吸着・固定されることで、或いは、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水に含まれているミネラル分の粒子等に水素が吸着・固定されることで水素が散逸し難くなり、また、ＰＥＴ容器に充填して密封しても、水素が吸着固定されている微粒子がＰＥＴ容器のＰＥＴ樹脂よりも高分子であることで水素がＰＥＴ容器から抜け難くなっていることが考えられる。
なお、本発明者らの実験研究では、このようにして製造された水素原液１について、市販の一般的なＰＥＴ容器に入れて密封保管し、所定期間経過後に開封して測定した溶存水素濃度が、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水で希釈する前の電圧印加工程（ステップＳ４０）直後に測定した溶存水素濃度に対して希釈倍率で換算した値と比較して、高くなることを確認しており、このことからも、生成した水素が上記のキャリアーやドナーとなる微粒子に吸着・固定されて散逸し難くなっていること、或いは、開封による圧力変化や振動、振とう、攪拌等の外力をきっかけに水素生成反応が生じることを裏付けできる。
因みに、本実施の形態の水素原液１においては、分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に電圧を印加し、励起することで水が電気分解され、水の電気分解により水素が生成されたことが考えられる。
また、混合工程（ステップＳ１０）におけるマグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０の混合により、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０の反応でＭｇ2+、Ｃａ2+が生じ（以下、Ｍｇ2+の例で示すが、Ｃａ2+も同様である）、例えば、以下の反応式（１）、（２）に示した反応によって水素が生成された可能性もある。
Ｍｇ2+＋４ｅ-＋Ｈ2０→２Ｈ2＋２ＭｇＯ・・・（１）
Ｍｇ2+＋２Ｈ2Ｏ＋２ｅ-→Ｍｇ（ＯＨ）2＋Ｈ2・・・（２）
または、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水に含まれるミネラルが同様に反応した可能性もある。
更に、酸混合工程（ステップＳ２０）での有機酸５０による酸処理で、ＭｇＨ2（ＰＯ4）、Ｍｇ8Ｈ2（ＰＯ4）6が生じ、その後のアルカリ混合工程（ステップ３０）でのアルカリ６０の混合によって以下の反応式（３）と（４）に示した反応が生じ、この反応によっても水素が生成された可能性もある。
Ｍｇ8Ｈ2（ＰＯ4）6＋５Ｈ2０＋Ｍｇ2＋４Ｈ+
→Ｍｇ10（ＰＯ4）6（ＯＨ）2＋１２Ｈ+・・・（３）
１２Ｈ+＋１２ｅ-→６Ｈ2・・・（４）
その他、水素化マグネシウムや水素化カルシウム等と水との反応により水素が生成された可能性や、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水と水素原液１との反応による水素生成の可能性や、マグネシウム／カルシウムーリン酸系の錯体状物等の触媒的作用によって、以下の反応式（５）と（６）に示した反応が促進されて水素が生成された可能性もある。
２Ｈ2Ｏ→２Ｈ+＋２ＯＨ-・・・（５）
２Ｈ+＋２ｅ-→Ｈ2・・・（６）
このように本実施の形態の水素原液１は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して調製した分散液４０を酸としての有機酸５０と混合して沈殿物を溶解（分散）し、また、アルカリ６０と混合し、その後、分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけ、励起することにより得られたものである。
また、本実施の形態の水素原液１の製造方法は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して分散液４０を調製する混合工程（ステップＳ１０）と、調製した分散液４０を酸としての有機酸５０の混合により酸処理して沈殿物を溶解（分散）する酸混合工程（ステップＳ２０）と、酸処理した分散液４０をアルカリ６０と混合するアルカリ混合工程（ステップＳ３０）と、アルカリ６０混合後の分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけ、励起する電圧印加工程（ステップＳ４０）を具備するものである。
ところで、本発明を実施する場合には、混合工程（ステップＳ１０）で分散液４０を調製するときに、及び／または、混合工程（ステップＳ１０）、酸混合工程（ステップＳ２０）、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）、電圧印加工程（ステップＳ４０）の何れか１以上の工程後の分散液４０に、更に、鉄、鉄化合物、亜鉛、亜鉛化合物のうちの少なくとも１種の鉄／亜鉛を添加してもよい。鉄／亜鉛を混合することで、水素濃度が増大し、より高い溶存水素濃度の測定ピーク値が得られ、かつ、長い間水素濃度を高くできる。
このときの鉄／亜鉛は、鉄、鉄化合物、亜鉛、亜鉛化合物から選ばれる１種または２種以上であればよく、鉄化合物としては、例えば、塩化鉄（II）（ＦｅＣｌ2）、塩化鉄（III）（ＦｅＣｌ3）、硫酸第１鉄（ＦｅＳＯ4・７Ｈ2Ｏ）、酸化鉄（II）（ＦｅＯ）、四酸化三鉄（Ｆｅ3Ｏ4）、クエン酸鉄ナトリウム、クエン酸鉄アンモニウム等が挙げられる。亜鉛化合物としては、塩化亜鉛（ＺｎＣｌ2）、酸化亜鉛（ＺｎＯ）、硫酸亜鉛（ＺｎＳＯ4）、グルコン酸亜鉛（Ｃ12Ｈ22Ｏ14Ｚｎ）等が挙げられる。水素水１００を飲用とする場合には、食品添加物として許可されているものが使用される。また、本発明を実施する場合、鉄／亜鉛は、そのまま添加することも可能であるし、水と混合し鉄／亜鉛水溶液として添加することも可能である。
鉄／亜鉛を添加するタイミングは、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して分散液４０を調製するときでも良いし、これらを混合して分散液４０を調製した後でも良いし、有機酸５０と混合して酸性の分散液４０とした後でも良いし、アルカリ６０と混合した後の分散液４０であっても良いし、陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけて励起した後の分散液４０であっても良い。
特に、分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけて励起することによって電子の移動（供受）が生じることから、電圧印加を行う前までに分散液４０に鉄／亜鉛を添加した場合、鉄／亜鉛による高い水素濃度の増大効果が期待できる。更には有機酸５０と混合する前の分散液４０を調製する段階で添加した場合、鉄／亜鉛によるより高い水素濃度の増大効果が期待できる。
鉄／亜鉛は、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水で希釈される前の水素原液（１）１Ｌに対して１〜１００ｍｇの範囲内で配合されることが好ましい。鉄／亜鉛の配合を上記範囲内とすることで、風味や透明性の低下を招くことなく顕著に水素濃度を高くすることができ、飲用にも適する。
また、本発明を実施する場合には、混合工程（ステップＳ１０）で分散液４０を調製するときに、及び／または、混合工程（ステップＳ１０）、酸混合工程（ステップＳ２０）、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）、電圧印加工程（ステップＳ４０）の何れか１以上の工程後の分散液４０に、糖類及び／または多糖類を添加してもよい。糖類及び／または多糖類を添加することによっても、水素濃度が増大し、より高い溶存水素濃度の測定ピーク値が得られ、かつ、長い間水素濃度を高くできる。
このときの糖類／多糖類としては、例えば、ブドウ糖、果糖、砂糖、乳糖、麦芽糖等の糖類や、オリゴ糖、デキストリン、でんぷん等の多糖類が挙げられ、これらの１種を単独で用いてもよいし、２種以上を併用することも可能である。
本発明を実施する場合、糖類／多糖類は、そのまま添加することも可能であるし、水と混合して糖類／多糖類水溶液の形態で添加することも可能である。
糖類／多糖類を添加するタイミングは、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して分散液４０を調製するときでも良いし、これらを混合して分散液４０を調製した後でも良いし、有機酸５０が混合されて酸性の分散液４０とした後でも良いし、アルカリ６０混合後の分散液４０であっても良いし、電圧印加後の分散液４０であっても良い。
特に、電圧の印加によって電子の移動（供受）が生じることから、電圧印加を行う前までに分散液４０に糖類／多糖類を添加した場合、糖類／多糖類による高い水素濃度の増大効果が期待できる。更には有機酸５０と混合する前の分散液４０を調製する段階で添加した場合、糖類／多糖類によるより高い水素濃度の増大効果が期待できる。
糖類／多糖類の配合は、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水で希釈される前の水素水原液（１）１Ｌに対して１０〜１００ｍｇの範囲内で配合されるのが好ましい。
糖類／多糖類の配合を上記範囲内とすることで、風味や透明性の低下を招くことなく顕著に水素濃度を高くすることができ、飲用にも適する。
更に、本発明を実施する場合には、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）と電圧印加工程（ステップＳ４０）との間に、アルカリ６０混合後の分散液４０に再度、有機酸を混合する第２の酸混合工程を入れ、第２の酸混合工程（ステップ１２０）にてアルカリ６０混合後の分散液４０に再度、有機酸を混合し、そして、電圧印加工程（ステップＳ４０）にて、再度の有機酸混合後の分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけ、励起するようにしても良い。
第２の酸混合工程で使用する有機酸としては、酸混合工程（ステップ２０）で使用される有機酸５０と同様、クエン酸、乳酸、酒石酸、フマル酸、リンゴ酸、コハク酸、酢酸、グルコン酸、アスコルビン酸やそれらの水溶性の塩等が挙げられ、本実施の形態の水素水１００を飲用とする場合には、食品添加物として許可されているものが使用される。酸混合工程（ステップＳ２０）で使用した有機酸５０と同じものであっても良いし、異なるものであっても良い。
なお、第２の酸混合工程を実施する場合、有機酸の添加総量が、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩の合計配合量１００重量部に対して、１００〜２００重量部の範囲内とするのが好ましい。また、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０を混合して作製した分散液（４０）１００重量部に対して、２０〜５０重量部の範囲内とするのが好ましい。添加総量を上記範囲内とすることで、その後の処理操作性も高くなり、確実に水素濃度を高くできる水素水１００が得られ、また、風味や透明性が良好な飲用に好適なものとなる。
このように、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）後に、第２の酸混合工程として、アルカリ６０混合後の分散液４０に再度、有機酸を混合し、ｐＨ試験紙による測定でｐＨ１以上、ｐＨ５以下、好ましくはｐＨ３以上、ｐＨ５以下の分散液４０としてから、電圧印加工程（ステップＳ４０）にて、ｐＨ１以上、ｐＨ５以下とした分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけ、励起することによっても、水素濃度が増大する。
なお、第２の酸混合工程を実施した場合、本実施の形態の水素水１００の目的、用途等に応じて電圧印加工程（ステップＳ４０）後にｐＨ調整を行ってもよい。例えば、本実施の形態の水素水１００を飲用水として提供する場合には、電圧印加工程（ステップＳ４０）後に、第２のアルカリ混合工程を実施し、第２のアルカリ混合工程にて、陰極及び陽極が浸漬されてそれら電極間に所定の電圧がかけられた分散液４０に再度アルカリを混合して、ｐＨ試験紙による測定でｐＨ５以上、ｐＨ８以下として、風味が良好で飲用に好適な水素水１００とするｐＨ調整を行う。最終的に希釈された水素原液１は、好ましくはｐＨ１以上、ｐＨ１０以下、より好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ８以下であれば確実に水素濃度が高くなる。特に、ｐＨ５以上、ｐＨ８以下であれば飲用にも適する。
第２のアルカリ混合工程で使用するアルカリも、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）で使用されるアルカリ６０と同様、水酸化ナトリウム（ＮａＯＨ）、水酸化カリウム（ＫＯＨ）、水酸化カルシウム（Ｃａ（ＯＨ）2）等が挙げられ、水素水１００を飲用とする場合には、食品添加物として許可されているものが使用される。アルカリ混合工程（ステップＳ３０）で使用したアルカリ６０と同じものであっても良いし、異なるものであっても良い。
そして、この第２のアルカリ混合工程を実施した後、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水で、例えば、１０〜１０００倍に希釈することで、風味的に飲用に好適なものとなる。
加えて、本発明を実施する場合には、混合工程（ステップＳ１０）で分散液４０を調製するときに、及び／または、混合工程（ステップＳ１０）、酸混合工程（ステップＳ２０）、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）、電圧印加工程（ステップＳ４０）の何れか１以上の工程後の分散液４０に塩化マグネシウム（ＭｇＣｌ2）、塩化カルシウム（ＣａＣｌ2）、塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）等の金属の塩化物を混合してもよい。塩化マグネシウム（ＭｇＣｌ2）、塩化カルシウム（ＣａＣｌ2）、塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）等の金属の塩化物を混合することで、細菌、カビ等の微生物の増殖が抑制され保管性（日持ち）が向上することを確認している。
これは、塩化マグネシウム、塩化カルシウム等の塩化物イオンが細菌、カビ等の微生物の増殖抑制に関与しており、特に、上記のマグネシウム／カルシウム‐リン酸系の錯体状物等がイオン交換能を有し、この錯体状物に塩化物イオンが取り込まれることで、希釈しても微生物の増殖を抑制する効果が持続的に発揮されるものと思われる。
なお、塩化マグネシウム、塩化カルシウム等はマグネシウム／カルシウム１０として使用することも可能であり、マグネシウム／カルシウム１０として塩化マグネシウム、塩化カルシウム使用した場合でも同様の効果が得られる。塩化物として塩化マグネシウム、塩化カルシウムを使用する場合には、電圧印加工程（ステップ４０）に至るまでの間に分散液４０に混合されることで塩化マグネシウムのマグネシウムや塩化カルシウムのカルシウムが水素の生成や吸着・固定に関与し、水素濃度の増大を期待できる。
更に、本発明を実施する場合、電圧印加工程（ステップＳ４０）後の分散液４０にミネラルを添加することも可能である。ミネラルを添加することで、本実施の形態の水素水１００を飲用とした場合には、ミネラルの摂取による栄養補給が可能となる。特に、ミネラルとして硫酸銅を添加した場合、細菌、カビ等の微生物の増殖を抑制でき保管性（日持ち）を向上できる。例えば、硫酸銅を電圧印加工程（ステップＳ４０）後の分散液（４０）１００重量部に対し０．０００２重量部〜０．０２重量部の範囲内で添加することで、本実施の形態の水素水１００を製造後加熱することなく蓋をして放置した場合、６カ月経過後も濁度が上昇することなく微生物の増殖が抑制されることを確認している。
そして、本実施の形態に係る水素水１００は、図１で示したように、このようにして製造された水素原液１に植物エキス７０が添加されて製造されたものである。
植物エキス７０の植物としては、例えば、野菜類、果実類、穀物類、豆類、茶類、竹類、木の実類（種実類）、花木類等が挙げられる。
好適には、果実類、緑黄色野菜類、ハーブ・薬草類、木の実類（種実類）、花木類のエキスである。より好適には、柑橘類のエキスを添加することにより、安定的に水素濃度のピーク値が高くなり、長い間水素水１００の水素濃度が高くなる。
柑橘類としては、例えば、イヨカン、甘夏カン、ハッサク、柚子、キンカン、ミカン、ネーブル、グレープフルーツ、レモン、スダチ、ライム、ダイダイ、カボス、ザボン等が挙げられる。中でも、伊予柑、デコポン、柚子、グレープフルーツ、レモン等の添加により、極めて高い水素濃度のピーク値が得られ、安定的に長い間水素水１００の水素濃度が高くなる。
緑黄色野菜類としては、例えば、ブロッコリー、大麦若葉、ケール、カボチャ、ニラ、ニンジン、小松菜、トマト、ホウレンソウ、モロヘイヤ、小麦若葉、明日葉、クワ若葉、メキャベツ等が挙げられ、中でも、ブロッコリー、大麦若葉、ケール、カボチャ、ニラ等の添加により高い水素濃度のピーク値が得られ、安定的に長い間水素水１００の水素濃度が高くなる。
ハーブ・薬草類としては、例えば、カモミール、ドクダミ、セイヨウサンザシ、ブドウ葉、レモンバーム、ミント、シソ、エゴマ、ローズマリー、タイム、セージ、レモングラス等が挙げられ、中でも、カモミール、ドクダミ、セイヨウサンザシ、ブドウ葉、シソ等の添加により高い水素濃度のピーク値が得られ、安定的に長い間水素水１００の水素濃度が高くなる。
また、果実類としてはキウイ、イチゴ、リンゴ、ライチ等が挙げられ、豆類としては大豆等、木の実（種実類）としては胡桃等、花木類としては椿等が挙げられる。
植物エキス７０は、天然の植物から採取されたものが使用され、例えば、原料である植物から搾取した搾汁や、水やエタノール等の溶媒と混合し、必要に応じて加熱、加圧・減圧、乾燥、遠心分離等による固液分離、濃縮等を行って、抽出した抽出物が使用され、搾取や抽出方法については特に限定されない。添加する形態も粉末状等の固体形態であってもよいし液体等の流動体の形態であってもよい。
また、エキスを採取する植物の部位や成長時期は、特に限定されず、例えば、根、葉、実、実の皮、茎、枝、芽、種子等からの採取が可能であるが、好適には、食用とされる部位、または種子、または種子から発芽した芽（新芽）から採取されたエキスの添加により極めて高い水素濃度のピーク値が得られ、安定的に長い間水素水１００の水素濃度が高くなる。
このような植物エキス７０を、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して調製した分散液４０を有機酸５０と混合して酸処理した後、分散液４０に陽極及び陰極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起してなる水素原液１に添加することで、植物エキス７０を添加しなかったときよりも、溶存水素濃度の測定ピーク値が顕著に高くなり水素濃度が増大し、長い間水素濃度が高くなる。
特に、水素原液１に植物エキス７０を添加してなる水素水１００を既存の一般的なＰＥＴ容器に入れて密封し、長期間保管後（例えば、１２カ月後）に容器を開封して溶存水素濃度を測定しても、植物エキス７０が添加されていない場合と比較して、溶存水素濃度の測定ピーク値が顕著に高く、長い間水素濃度が高かった。
水素原液１に、上述の植物エキス７０を添加することにより、長く水素濃度を高くできる理由についての科学的な根拠は未詳であるが、例えば、植物エキス７０が添加されたことにより、水素生成反応や水素遊離反応が促進されたり、水素のキャリアーやドナーとなる微粒子の安定性が高められたり、植物エキス７０の添加に起因する酸素の消費により水素の消費が抑えられたりしたこと等が考えられる。または、植物エキス７０が水素源となったり水素原液１との反応により水素を生成したり、植物エキス７０由来の水素のキャリアーやドナーとなる微粒子に水素が吸着・固定されたりしたこと等も考えられる。
因みに、本発明者らの実験研究によれば、食品添加物として栄養強化等の用途で使用されている栄養素のビタミンＢ１、ビタミンＢ２、ビタミンＣ、パントテン酸、食物繊維や、香料（ストロベリーフレーバ、レモンフレーバ）等では、水素原液１に添加しても溶存水素濃度の顕著な増大を確認できなかった。
また、植物エキス７０の中でも、柑橘類を含む果実類、緑黄色野菜類、ハーブ・薬草類、胡桃等の木の実類のエキスの添加により、溶存水素濃度のピーク値がより高くなり、長く溶存水素濃度がより高いものとなる傾向にあった。
そして、これら柑橘類、緑黄色野菜、ハーブ・薬草、胡桃等はビタミンＣ（アスコルビン酸）、ビタミンＥ（トコフェロール、トコトリエノール）、ポリフェノール（レスベラトロール、アントシアニン、ケルセチン、ルチン、カテキン、カルコン、タンニン、ロズマリン酸、ヘスペリジン、テアフラビン、イソフランボン等のフラボノイド、クロロゲン酸、リグナン、クルクミン、レスベラトロール、クマリン等）、カロテノイド（リコペン、アスタキサンチン、カロテン、ルテイン）、ＣｏＱ、αリポ酸等の天然の植物由来の植物性抗酸化物質やナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム等のミネラルを多く含有するものである。
よって、溶存水素濃度の増大には、植物エキス７０に含有される様々な種類の抗酸化物質やミネラルが関与している可能性も考えられ、このように天然の抗酸化物質及び／またはミネラルを含有する植物エキス７０の添加により、水素濃度が高くなり、長く水素濃度がより高いものとなる。
また、特に柑橘類等のｐＨが低いものでは水素濃度が著しく増加したことから、ｐＨの低下の影響により水素濃度が高くなった可能性もある。
こうしてマグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して調製した分散液４０を有機酸５０と混合して沈殿物を溶解（分散）した後、アルカリ６０を混合してｐＨを調整してから分散液４０に陽極及び陰極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起してなる水素原液１に植物エキス７０を添加してなる本実施の形態の水素水１００によれば、溶存水素濃度が高くなり、安定して長く溶存水素濃度がより高いものとなる。そして、ＰＥＴ容器等の容器に入れ密封して長期保管を行っても、容器開封後の測定で水素濃度が高く、容器開封後も数日間の長い間高い溶存水素濃度が得られ、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。したがって、水素を効率的に体内に取り入れることが可能であり、水素の病気予防や健康増進等といった有用な効能効果が期待できる。
次に、本発明の実施の形態に係る水素水１００の実施例を具体的に説明する。
まず、本実施例に係る水素原液１は、図１のフローチャートにしたがい、表１に示した配合内容で製造した。なお、表１の数値は各配合成分を重量部で示したものである。
Figure 0006261097
具体的に、本実施例の水素原液１においては、まず、マグネシウム／カルシウム１０としての酸化マグネシウム（ＭｇＯ）と、水３０としての精製水とを混合して酸化マグネシウムの分散液Ａを作製し、この酸化マグネシウム分散液Ａを、リン酸／リン酸塩２０としてのリン酸（Ｈ3ＰＯ4）及び水３０としての精製水を混合して作製したリン酸水溶液Ｂに加えて攪拌した後、所定時間（例えば、１０〜３０分間）静置して分散液４０を調製することで、混合工程（ステップＳ１０）を実施した。得られた分散液４０全体は、混合直後はコロイド状に白濁し、静置後には白い沈殿物と透明な上澄みに分かれた。
次に、混合工程（ステップＳ１０）で調製した分散液４０と、有機酸５０としてのクエン酸及び精製水を混合して作製した有機酸水溶液Ｃとを混合し攪拌して酸処理を行うことで、酸混合工程（ステップＳ２０）を実施した。酸処理後の分散液４０は、沈殿物がなく殆ど透明であり、ｐＨ試験紙による測定でｐＨ＝２〜３であった。
続いて、酸混合工程（ステップＳ２０）で有機酸５０が添加された分散液４０と、アルカリ６０としての水酸化カリウム（ＫＯＨ）及び精製水を混合して作製したアルカリ水溶液Ｄとを混合し攪拌して、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）を実施した。アルカリ６０混合後の分散液４０全体は、沈殿物もなく殆ど透明であり、ｐＨ試験紙による測定でｐＨ＝３〜４であった。
次いで、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）でアルカリ６０が混合された分散液４０に対して４〜７Ｖで７Ａの直流を５分間流して電圧印加を行い、電圧印加工程（ステップＳ４０）を実施した。
本実施例では、電圧印加後に、岐阜県の奥長良川（岐阜県関市洞戸）で採水した地下水を原水として後述の図２６及び図２７で示すような所定の濾過や殺菌等を行った天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈して水素原液１を得た。
そして、１００倍希釈された水素原液１を９０℃で３０分加熱を行った後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後、１〜２カ月室温（１０〜２５℃程度）下で保管したものを使用した。なお、１００倍希釈した後の水素原液１は、ｐＨ試験紙による測定でｐＨ＝５〜８であり、透明で風味も良いことから飲料にも適する。
念のため、希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）の成分を表２に示す。
Figure 0006261097
次に、このようにして１００倍希釈された水素原液１に各種の植物エキス７０を添加することにより、実施例に係る水素水１００を得た。
そして、各実施例に係る水素水１００について、溶存水素濃度の測定を行った。
ここでは、１００倍希釈した水素原液１に各種の植物エキス７０を添加して得られた水素水１００について、９０℃で３０分加熱を行い、その後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、それを流水で冷却してサンプルを作製した。そして、作製した水素水１００のサンプルについて、所定期間経過後に開封し、ＰＥＴ容器に入れた水素水１００の溶存水素濃度の測定を経時的に行った。
溶存水素濃度は、共栄電子研究所製ＫＭ２１００ＤＨ(隔膜式ポーラロ方式、溶存水素を定量的に測定する)によって測定した。
溶存水素濃度の測定に際しては、水素水１００が入ったＰＥＴ容器のキャップを開け、ＰＥＴ容器内の水素水１００を測定用の容器に移し、磁気スターラで所定時間（３０秒〜１分程度）攪拌しながら、測定を行った。測定後の水素水１００はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで所定条件下で保管した。測定は、密封されたＰＥＴ容器の開封直後に初回測定を開始し、１日に１回とした。
〈実施例１〉
実施例１に係る水素水１００は、上述のようにして得られた１００倍希釈した水素原液１に植物エキス７０として柑橘類のエキスを添加したものである。
柑橘類のエキスとして、実施例１‐１では柚子、実施例１‐２では伊予柑、実施例１‐３ではデコポン、実施例１‐４ではグレープフルーツ、実施例１‐５ではレモンを用いた。
まず、実施例１‐１について説明する。実施例１‐１は、柑橘類として柚子を使用した事例である。
実施例１‐１として、１００倍希釈した水素原液１に柚子エキスを添加した水素水１００のサンプルを作製した。柚子エキスとしては、例えば、オリザ油化（株）製『柚子種子エキス（ＷＳＰ等）、油』や、柚子種子の搾汁等を使用した。
ここで、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスを５０ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は室温（１０〜２５℃程度）条件下で保管したものをサンプル１とした。
一方、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものをサンプル２とした。また、サンプル作製日から４日後に初めて開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものをサンプル３とした。
また、比較のために、ブランクとして、上記実施例１‐１で使用した１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却し、１〜２か月室温下で保管されたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
更なる比較として、水素原液１での希釈に使用した天然水（奥長良川で採水した地下水を原水として後述の図２６及び図２７で示すような所定の濾過や殺菌等を行ったナチュラルミネラルウォータ；表２）３５０ｍｌに対して、実施例１‐１と同様、柚子エキス５０ｍｇを添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それについても対照（コントロール）作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
溶存水素濃度の測定は初めに密封ＰＥＴ容器の開封直後に行い（初回測定）、１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで所定条件下で保管した。実施例１‐１のサンプル１、ブランク、対照は初回の溶存水素濃度測定が終わった後、室温（１０〜２５℃程度）下で保管し、実施例１‐１のサンプル２及びサンプル３では初回の溶存水素濃度測定が終わった後、３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
実施例１‐１のサンプル１〜３、ブランク、対照についての溶存水素濃度の測定結果を図２のグラフに示す。
図２のグラフに示したように、柚子エキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液（１））では、５回〜７回目の測定で、溶存水素濃度の測定値が１０〜３２ｐｐｂ（μｇ／Ｌ）であったのに対し、１００倍希釈した水素原液１に柚子エキスが添加された実施例１‐１のサンプル１の水素水１００では、４回目の測定で、溶存水素濃度の測定値が９５ｐｐｂ程度であり、５回目の測定で１４３ｐｐｂの測定ピーク値（最高値）となり、６回目の測定でも３５ｐｐｂ程度、７回目〜９回目の測定でも５ｐｐｂ〜２０ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く（約４倍に増大）、長い間溶存水素濃度が高かった。そして、開封後、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、測定ピーク値（最高値）が確認されているが、ピーク値検出後に急激に減少して測定値が０となることもなく、高い濃度の溶存水素が長く検出された。
また、サンプル作製日にＰＥＴ容器を開封し、開封後は３２℃条件下で保管を行った実施例１‐１のサンプル２においても、早くも２回目の測定で溶存水素濃度の測定値が１００ｐｐｂ程度、３回目に２１５ｐｐｂの測定ピーク値となり、４回目でも３５ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、高い濃度の溶存水素が長く検出された。
更に、サンプル作製日の４日後にＰＥＴ容器を開封し、開封後は３２℃条件下で保管を行った実施例サンプル１‐１のサンプル３においても、早くも２回目の測定で溶存水素濃度の測定値が４０６ｐｐｂの測定ピーク値となり、３回目でも１９５ｐｐｂ程度、４回目でも５０ｐｐｂ程度あり、サンプル作製日から４日後に開封しているにもかかわらず、ブランクよりも溶存水素濃度のピーク値が高い値を示し、高い濃度の溶存水素が長く検出された。
このように１００倍希釈した水素原液１に柚子エキスを添加した実施例１‐１の水素水１００のサンプル２及びサンプル３でも、柚子エキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液（１））と比較して、ＰＥＴ容器開封後に測定された溶存水素濃度の測定ピーク値（最高値）が高くなり（約７倍〜１２倍に増大）、高い濃度の溶存水素が長く検出された。
特に開封後に３２℃の温度条件下で保管を行ったサンプル２及びサンプル３では、開封後室温条件下で保管したサンプル１よりも、高い溶存水素濃度の測定ピーク値（最高値）が確認され、しかも、開封後早い段階で溶存水素濃度の増大が見られるが、ピーク値検出直後に急激に減少して測定値が０となることもなく、高い濃度の溶存水素が長く検出された。
こうして、１００倍希釈した水素原液１に柚子エキスを添加することにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度がより高くなり、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し保管した場合でも、容器開封後も数日間の長い間水素がより高い濃度で存在する。
念のため、図３において、柚子エキスを添加して１カ月経過後に容器を開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したサンプル５の溶存水素濃度の経時的な測定結果について、柚子エキスを添加してサンプルを作成した日に容器の開封を行ったサンプル４と比較して示す。
図３のサンプル４及びサンプル５では、柚子エキスを添加する水素原液１について、上述と同様に電圧印加（ステップＳ４０）を行ってから水（天然水）で１００倍に希釈した後、再び電圧印加（第２の電圧印加工程）を行い、更に９０℃で３０分加熱を行い、その後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月暗所室温下で保管したもの（後述する水素原液１ａ2）を使用している。
そして、このように１００倍希釈されて所定の処理を行った水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスを５０ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作成した当日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものをサンプル４とし、サンプルを作成してから常温で保管して１カ月後に初めて開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものをサンプル５とした。
測定条件は、上記と同様、初めにＰＥＴ容器開封直後に初回測定を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
図３に示したように、サンプル作成日から１カ月後に開封したサンプル５でも、サンプルを作成した当日に開封したサンプル４と同等以上の高い溶存水素濃度が長く検出された。
更に、本発明者らの実験研究によれば、１年以上もの長い間未開封の状態で常温保管し、長期間保管後に開封して溶存水素濃度を測定しても、開封後も長く水素が高い濃度で存在することを確認している。
したがって、実施例１‐１に係る水素水１００によれば、柚子エキスを添加したことにより、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し長期間保管した場合でも、容器開封後の溶存水素濃度がより高くなり、容器開封後も数日間の長い間溶存水素が高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
ここで、本発明者らは、図４に示すように、柚子エキスの添加量を様々変化させたときの溶存水素濃度の測定も行っている。
即ち、実施例１‐１Ａとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスを５０ｍｇ添加した水素水１００のサンプル６、サンプル７を作製した。
また、実施例１‐１Ｂとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスを３０ｍｇ添加した水素水１００のサンプル８、サンプル９を作製した。
更に、実施例１‐１Ｃとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスを１００ｍｇ添加した水素水１００のサンプル１０、サンプル１１を作製した。
なお、１００倍希釈した水素原液１は、上記のサンプル１〜サンプル３のときと同様、第２の電圧印加等の所定の処理を行っていないものを使用した。
そして、全て、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータに入れて保管した。
測定条件は、上記と同様、初めにＰＥＴ容器開封直後に初回測定を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
このときのサンプル６〜サンプル１１の溶存水素濃度の測定結果を、ブランクと比較して示したのが図４のグラフである。なお、ブランクについては、開封後室温条件下で保管を行ったときの測定値である。
図４のグラフに示したように、１００倍希釈した水素原液３５０ｍｌに柚子エキスを３０ｍｇ〜１００ｍｇ添加したサンプル６〜１１では、柚子エキスが添加されていない１００倍希釈した水素原液１のみのブランクと比較して、溶存水素濃度のピーク値（最大値）が増大（約３．４〜１１．６倍）しており、ＰＥＴ容器を開封した後も数日間の長い間溶存水素濃度が高かった。
このように、１００倍希釈した水素原液３５０ｍｌに対して柚子エキスの添加量が３０ｍｇ〜１００ｍｇの範囲内において、１００倍希釈した水素原液１（ブランク）と比較して、溶存水素濃度が顕著に増大し、長く水素濃度が高い濃度で存在することが確認された。
なお、ここでは、水素水１００を無味、無臭、無着色の飲用水に適用することを想定し、柚子エキスの添加量を３０ｍｇ〜１００ｍｇに設定した。つまり、水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスの添加量が３０ｍｇ〜１００ｍｇの範囲内であれば、柚子エキスに由来する風味の影響もなく、天然水本来の風味を生かすことができる。
しかし、本発明を実施する場合には、水素水１００の用途等に応じて、植物エキス７０の添加量は適宜設定される。本発明者らの実験研究では、更に、１００倍希釈した水素原液３５０ｍｌに対して柚子エキスの添加量を２００ｍｇとした場合、１，０００ｐｐｂを超えるピーク値になることを確認している。
ここで、実施の形態の水素水１００においては、容器開封直後の初回測定よりもその次回（開封日の翌日）以降の測定で溶存水素濃度の測定値の増大が確認されていることから、開封をきっかけに（例えば、開封時の圧力（気圧）変化や振動、振とう、攪拌等の外力が加わることにより、或いは、溶存水素量や溶存酸素量等の変化により）溶存水素濃度の変化が生じるものと推測される。
例えば、実施の形態の水素水１００においては、開封時の圧力（気圧）変化や振動、振とう、攪拌等の外力が加わること等により上記の反応式（１）〜（６）等で示したような水素生成反応が促進されることが考えられる。或いは、開封時の圧力（気圧）変化や振動、振とう、攪拌等の外力が加わること等により、上記の水素のキャリアーやドナーとなる微粒子（例えば、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０の混合により生じるマグネシウム／カルシウム‐リン酸系の錯体状物や、天然水等（ナチュラルミネラルウォータ等）の水に含まれているミネラル分の粒子等）に吸着・固定された水素の遊離が促進されて、溶存水素として検出されることが考えられる。また、これらの反応が持続的に生じることで、長く溶存水素が高い濃度で存在していることが考えれる。なお、外力を継続的に加えることで反応性や反応速度が高まり早くに水素濃度の増大が見られることが予測される。
更に、図２のグラフで示したように、本発明の水素水１００について、開封後に３２℃の温度条件下で保管を行ったサンプル２及びサンプル３では、室温（１０〜２５℃程度）条件下で保管したサンプル１と比較して、開封して早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、しかも、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が顕著に高く、ピーク後も水素が直ぐには消失しておらず長く溶存水素が高い濃度で存在した。
したがって、本発明の水素水１００によれば、図２で示したように、容器開封後の温度条件によって溶存水素濃度の測定値が変動することから、温度条件によっても上記反応性（水素生成、水素遊離の促進、酸素の溶解が少なくなることによる水素消費の低減化等）や、反応速度等が変化し、反応促進は温度依存性が高いものと考えている。
特に、本発明者らの究明により、２５℃〜３５℃の範囲内の常温下で、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が安定的に高くなり、長く溶存水素が高い濃度で存在することを確認している。また、容器開封後早い段階で溶存水素濃度の増大が見られることも確認している。より好ましくは３２℃±１℃の温度条件下とすることで、最もピーク値が高くなり、最も長い間高い濃度で水素が存在する。
即ち、本発明の水素水１００は、２５℃〜３５℃の範囲内の温度条件下で安定的に溶存水素濃度が高くなり、より好ましくは、３２℃±１℃の温度条件下で最も溶存水素濃度が高くなるものである。
因みに、図５は、１００倍希釈した水素原液１に柚子エキスを添加した実施例１‐１において、サンプル作成後の未開封の状態でも３２℃の保管を行い、サンプル作成日から所定日数経過後に開封して溶存水素濃度の測定を行ったサンプル１３、サンプル１４について、サンプル作成日に開封して溶存水素濃度の測定を開始したサンプル１２と比較して示したグラフである。
図５のサンプル１２は、１００倍希釈された水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスを５０ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプルを作成した当日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、初回測定後も３２℃に保温したインキュベータで保管を行ったものである。
一方で、サンプル１３は、１００倍希釈された水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスを５０ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作成後３２℃に保温したインキュベータで保管を行い、サンプル作成日から３日後に初めて開封して溶存水素濃度の測定を開始し、初回測定後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものである。
また、サンプル１４は、１００倍希釈された水素原液（１）３５０ｍｌに対して柚子エキスを５０ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作成後３２℃に保温したインキュベータで保管を行い、サンプル作成日の５日後に初めて開封して溶存水素濃度の測定を開始し、初回測定後も３２℃に保温したインキュベータで保管を行ったものである。
なお、１００倍希釈した水素原液１には、上記のサンプル１〜サンプル３のときと同様、第２の電圧印加等の所定の処理を行っていないものを使用した。
測定条件は、上記と同様、初めにＰＥＴ容器開封直後に初回の測定を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまでサンプル１２〜１４の何れも３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
図５に示したように、サンプルを作成してから３２℃条件下で保管を行い、サンプル作成日から数日経過後に開封したサンプル１３及びサンプル１４では、サンプル作成した当日に開封したサンプル１２と同等程度に溶存水素濃度の測定ピーク値が高く示され、開封後から数日間、溶存水素が高い濃度の状態にあった。また、開封後の早い段階で溶存水素濃度の測定ピーク値が確認された。
これより、本発明の水素水１００においては、ＰＥＴ等の容器に密封されて未開封の状態で単に特定温度条件下とするだけでは反応性が遅く水素が容器から抜け出ていく恐れも少なく、容器の開封をきっかけとする開封時の圧力（気圧）変化や振動、振とう、攪拌等の外力が加わること等により生じる反応の促進効果が特定温度条件下で高まるものと推測される。
なお、本発明者らの実験により、図２のグラフの天然水（ナチュラルミネラルウォータ）に柚子エキスを添加した対照（開封後常温保管）では溶存水素が検出されなかったが、天然水（ナチュラルミネラルウォータ）に柚子エキスを添加して開封後３２℃条件下の保管では水素濃度の増大が見られたことから、柚子エキスの添加による溶存水素濃度の増大は、柚子エキスと天然水（ナチュラルミネラルウォータ）、または、柚子エキスと天然水（ナチュラルミネラルウォータ）由来以外の水素原液１の成分との組み合わせによるものであることが考えられる。
以上、実施例１‐１の水素水１００によれば、水素原液１に柚子エキスが添加されたことにより、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在する。
次に、実施例１‐２について説明する。実施例１−２は、柑橘類として伊予柑を使用した事例である。
実施例１‐２として、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して伊予柑エキス（果実の食用部位の搾汁）を１．５ｇ（抽出物０．０３ｇ相当）添加した水素水１００のサンプルを作製した。
なお、ここでは、伊予柑エキスを添加する１００倍希釈した水素原液１について、実施例１‐１のときと同様、１００倍希釈後、９０℃で３０分加熱を行って直ぐに容器に充填し密封したもの（以下、水素原液１ａ1とする。また、特段に記載のない限り、下記の実施例でも水素原液１ａ1を使用している。）に加え、１００倍希釈後に後述の図２６、図２７で示したように、紫外線殺菌（ステップＳ１１３）、（第２の)電圧印加(ステップＳ１１４)、８５℃〜１３５℃の３０分の加熱殺菌（ステップＳ１１５）、精密濾過（ステップＳ１１４）を行ってからに容器に充填し密封したもの（以下、水素原液１ａ2とする）との２種類の水素原液１を用意した。
そして、前者の、希釈してから９０℃で３０分加熱を行って直ぐに容器に充填し密封して室温で保管しておいた１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対して伊予柑エキスを１．５ｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後（初回測定後）は３２℃に保温したインキュベータで保管したものを実施例１‐２ａ1とした。
また、後者の、希釈後第２の電圧印加等を行ってから所定の加熱をして容器に充填し密封して室温で保管しておいた１００倍希釈した水素原液（１ａ2）３５０ｍｌに対して伊予柑エキスを１．５ｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものを実施例１‐２ａ2とした。
更に、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。ブランクについても開封後３２℃で保管した。
更なる比較として、水素原液１（１ａ1、１ａ2）において希釈に使用した水（天然水）３５０ｍｌに対して、実施例１‐２と同様、伊予柑エキスを１．５ｇ添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それについても作製日（エキスを添加した日）に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
なお、上述したように、実施例１‐２ａ1及びブランクに使用した水素原液１ａ1については、電圧印加（ステップＳ４０）を行ってから天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、所定の加熱をしてからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用しており、実施例１‐２ａ2に使用した水素原液１ａ2については、電圧印加後（ステップＳ４０）に天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、再び電圧印加（第２の電圧印加工程）を行い、更に所定の加熱を行った後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用している。
これら実施例１‐２、ブランク、対照についての溶存水素濃度の測定結果を図６のグラフに示す。
図６のグラフに示したように、伊予柑エキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では、３回目の測定で１６２ｐｐｂの測定ピーク値となり、４回目の測定で９０ｐｐｂ程度、５回目の測定で４０ｐｐｂ程度であったのに対し、１００倍希釈した水素原液１（１ａ1、１ａ2）に伊予柑エキスが添加された実施例１‐２ａ1、実施例１‐２ａ2のサンプルの水素水１００では、何れも測定ピーク値がブランクよりも高く、また、長く溶存水素が高い濃度で存在した。
即ち、実施例１‐２ａ1の水素水１００では、２回目の測定で、溶存水素濃度の測定値が３９８ｐｐｂのピーク値となり、３回目の測定で２００ｐｐｂ程度、４回目〜６回目の測定でも６０ｐｐｂ〜８５ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、長い間溶存水素濃度が高く検出された。
また、実施例１‐２ａ2の水素水１００では、２回目の測定で、溶存水素濃度の測定値が１９０ｐｐｂ程度であり、３回目の測定で２３５ｐｐｂのピーク値となり、４回目〜５回目の測定でも１２０ｐｐｂ〜１９０ｐｐｂ程度あり、６回目〜７回目の測定でも１０ｐｐｂ〜３０ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、長い間溶存水素濃度が高く検出された。
このように、１００倍希釈した水素原液１（１ａ1、１ａ2）に伊予柑エキスが添加された実施例１‐２では、伊予柑エキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）と比較して、ＰＥＴ容器開封後に測定された溶存水素濃度の測定ピーク値（最高値）が高くなり（１．５倍〜２．５倍に増大）、ブランクよりも溶存水素が高い濃度で長く検出された。
以上、実施例１‐２の水素水１００においても、伊予柑エキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
次に、実施例１‐３について説明する。実施例１‐３は、柑橘類としてデコポンを使用した事例である。
実施例１‐３として、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してデコポンエキス（果実の食用部位の搾汁）を１．５ｇ（抽出物０．０３ｇ相当）添加した水素水１００のサンプルを作製した。
なお、ここでも、デコポンエキスを添加する１００倍希釈した水素原液１について、上記水素原液１ａ1と水素原液１ａ2の２種類を用意した。
そして、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対してデコポンエキスを１．５ｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後（初回測定後）は３２℃に保温したインキュベータで保管したものを実施例１‐３ａ1とした。
また、１００倍希釈した水素原液（１ａ2）３５０ｍｌに対してデコポンエキスを１．５ｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものを実施例１‐３ａ2とした。
更に、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対してデコポンエキスを１．５ｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管したものを実施例１‐３ｂとした。
加えて、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。ブランクについては開封後３２℃で保管した。
更なる比較として、水素原液１（１ａ1、１ａ2）において希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）３５０ｍｌに対して、実施例１‐３と同様、デコポンエキスを１．５ｇ添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それについても作製日（エキスを添加した日）に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで所定条件下で保管した。実施例１‐３ａ、ブランク、対照については開封後３２℃に保温したインキュベータで保管を行い、実施例１‐３ｂについては開封後室温（１０〜２５℃）下で保管を行った。
なお、上述したように、実施例１‐３ａ1、実施例１‐３ｂ、ブランクで使用した水素原液１ａ1については、電圧印加（ステップＳ４０）を行ってから天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、所定の加熱をしてからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用しており、実施例１‐３ａ2で使用した水素原液１ａ2については、電圧印加後（ステップＳ４０）に天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、再び電圧印加（第２の電圧印加工程）を行い、更に所定の加熱を行った後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用している。
これら実施例１‐３、ブランク、対照についての溶存水素濃度の測定結果を図７のグラフに示す。
図７のグラフに示したように、デコポンエキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では、３回目の測定で１６２ｐｐｂの測定ピーク値となり、４回目の測定で９０ｐｐｂ程度、５回目の測定で４０ｐｐｂ程度であった。
これに対し、１００倍希釈した水素原液１（１ａ1、１ａ2）にデコポンエキスが添加された実施例１‐３ａ1、実施例１‐３ａ2、実施例１‐３ｂの水素水１００では、何れも測定ピーク値がブランクよりも高く、また、長く溶存水素が高い濃度で存在した。
即ち、実施例１‐３ａ1（開封後は３２℃で保管）の水素水１００では、２回目の測定で、４３２ｐｐｂのピーク値となり、３回〜４回目の測定でも９０〜１６０ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、長い間溶存水素濃度が高く検出された。
また、実施例１‐３ａ2（開封後は３２℃で保管）の水素水１００でも、２回目の測定で９６８ｐｐｂのピーク値となり、３回目の測定でも８１０ｐｐｂ程度、４回〜６回目の測定でも７５ｐｐｂ〜２５０ｐｐｂあり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、ブランクより長い間溶存水素濃度が高かった。
更に、実施例１‐３ｂ（開封後は室温下で保管）の水素水１００でも、３回目〜６回目の測定で、５５０ｐｐｂ〜６１０ｐｐｂのピーク値となり、６回目〜７回目の測定でも５０ｐｐｂ〜７５ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、ブランクよりも長く溶存水素濃度が高かった。
このように、１００倍希釈した水素原液１にデコポンエキスが添加された実施例１‐３では、デコポンエキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）と比較して、ＰＥＴ容器開封後に測定された溶存水素濃度の測定ピーク値（最高値）が高くなり（２．５倍〜６倍に増大）、ブランクよりも溶存水素が高い濃度で長く検出された。
特に、開封後に３２℃の温度で保管を行った実施例１‐３1ａでは、室温（１０〜２５℃）下で保管した実施例１‐３ｂと比較して、開封して早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、しかも、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が顕著に高く、ピーク後も水素が直ぐには消失しておらず溶存水素が高い濃度で数日間の長い間存在した。
以上、実施例１‐３の水素水１００においても、デコポンエキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
次に、実施例１‐４について説明する。実施例１‐４は、柑橘類としてグレープフルーツを使用した事例である。
実施例１‐４として、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してグレープフルーツエキス（果実の食用部位の搾汁）を１．５ｇ（抽出物０．０３ｇ相当）添加した水素水１００のサンプルを作製した。
なお、ここでも、グレープフルーツエキスを添加する１００倍希釈した水素原液１について、上記水素原液１ａ1と水素原液１ａ2の２種類を用意した。
そして、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対してグレープフルーツエキスを１．５ｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後（初回測定後）は３２℃に保温したインキュベータで保管したものを実施例１‐４ａ1とした。
また、１００倍希釈した水素原液（１ａ2）３５０ｍｌに対してグレープフルーツエキスを１．５ｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものを実施例１‐４ａ2とした。
更に、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対してグレープフルーツエキスを１．５ｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管したものを実施例１‐４ｂとした。
加えて、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。ブランクについては開封後３２℃で保管した。
更なる比較として、水素原液１（１ａ1、１ａ2）において希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）３５０ｍｌに対して、実施例１‐４と同様、グレープフルーツエキスを１．５ｇ添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それについても作製日（エキスを添加した日）に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで所定条件下で保管した。実施例１‐４ａ、ブランク、対照については開封後３２℃に保温したインキュベータで保管を行い、実施例１‐４ｂについては開封後室温（１０〜２５℃）下で保管を行った。
なお、上述したように、実施例１‐４ａ1、実施例１‐４ｂ、ブランクの水素原液１ａ１1については、電圧印加（ステップＳ４０）を行ってから天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、所定の加熱をしてからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用しており、実施例１‐４ａ2の水素原液１ａ2については、第２の電圧印加工程を行い、更に所定の加熱を行った後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用している。
これら実施例１‐４、ブランク、対照についての溶存水素濃度の測定結果を図８のグラフに示す。
図８のグラフに示したように、グレープフルーツエキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では、３回目の測定で１６２ｐｐｂの測定ピーク値となり、４回目の測定で９０ｐｐｂ程度、５回目の測定で４０ｐｐｂ程度であった。
これに対し、１００倍希釈した水素原液１にグレープフルーツエキスが添加された実施例１‐４ａ1、実施例１‐４ａ2、実施例１‐４ｂの水素水１００では、何れも測定ピーク値がブランクよりも高く、また、長く溶存水素が高い濃度で存在した。
即ち、実施例１‐４ａ1（開封後は３２℃で保管）の水素水１００では、２回目の測定で、溶存水素濃度の測定値が１０４２ｐｐｂのピーク値となり、３回〜４回目の測定でも１００〜３５０ｐｐｂ程度、５回目の測定でも５０ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、ブランクより長い間溶存水素濃度が高く検出された。
また、実施例１‐４ａ2（開封後は３２℃で保管）の水素水１００では、２回目の測定で１１６０ｐｐｂのピーク値となり、３回目〜５回目の測定でも１８０ｐｐｂ〜６１０ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、ブランクより長い間溶存水素濃度が高かった。
更に、実施例１‐４ｂ（開封後は室温下で保管）の水素水１００でも、溶存水素濃度の測定値が３回目〜５回目の測定で２００ｐｐｂ〜２９９ｐｐｂのピーク値となり、６回目の測定でも７５ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、ブランクよりも長く溶存水素濃度が高かった。
このように、１００倍希釈した水素原液１にグレープフルーツエキスが添加された実施例１‐４では、グレープフルーツエキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）と比較して、ＰＥＴ容器開封後に測定された溶存水素濃度の測定ピーク値（最高値）が高くなり（１．８倍〜７．２倍に増大）、ブランクよりも溶存水素が高い濃度で長く検出された。
特に、開封後に３２℃の温度で保管を行った実施例１‐４ａでは、室温（１０〜２５℃）下で保管した実施例１‐４ｂと比較して、開封して早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、しかも、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が顕著に高く、ピーク後も水素が直ぐには消失しておらず溶存水素が高い濃度で数日間存在した。
以上、実施例１‐４の水素水１００においても、グレープフルーツエキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
次に、実施例１‐５について説明する。実施例１‐５は、柑橘類としてレモンを使用した事例である。
実施例１‐５として、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してレモンエキス（果実食用部位の搾汁）を１．５ｇ（抽出物０．０３ｇ相当）添加した水素水１００のサンプルを作製した。
ここでは、１００倍希釈した水素原液（１ａ2）３５０ｍｌに対してレモンエキスを１．５ｇを添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したものを実施例１‐５ａとした。なお、レモンエキスを添加した水素原液１ａ2については、電圧印加後（ステップＳ４０）に天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、再び第２の電圧印加を行い、更に所定の加熱を行った後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用している。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
実施例１‐５についての溶存水素濃度の測定結果をブランク、対照と比較して図９のグラフに示す。
なお、ここでは、ブランクとして１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）の経時的な溶存水素濃度の測定結果を図９に示した。ブランクについても開封後３２℃で保管したときの測定結果である。
また、対照（コントロール）としては、水素原液１において希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）３５０ｍｌに対して、実施例１‐５と同様、レモンエキスを１．５ｇ添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却したものについての経時的な溶存水素濃度の測定結果を図９に示した。対照についても、作製日（エキスを添加した日）に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管したとき測定結果である。
図９のグラフに示したように、レモンエキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では３回目の測定で１６２ｐｐｂの測定ピーク値となり、４回目の測定で９０ｐｐｂ程度、５回目の測定で４０ｐｐｂ程度であったのに対し、１００倍希釈した水素原液１ａ2にレモンエキスが添加された実施例１‐５ａの水素水１００では、２回目の測定で９５ｐｐｂ程度であり、３回目の測定で２１７ｐｐｂのピーク値となり、４回目〜５回目の測定でも８５ｐｐｂ〜１００ｐｐｂ程度あり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、ブランクよりも長い間溶存水素濃度が高く検出された。
このように、１００倍希釈した水素原液１ａ2にレモンエキスが添加された実施例１‐５では、レモンエキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）と比較して、ＰＥＴ容器開封後に測定された溶存水素濃度の測定ピーク値（最高値）が高くなり（１．３倍に増大）、ブランクよりも溶存水素が高い濃度で長く検出された。
以上、実施例１‐５の水素水１００においても、レモンエキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
こうして、柑橘類のエキスを添加することにより、長く水素が顕著に高い濃度で存在する。そして、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し長期間保管した場合でも、容器開封後に測定した水素濃度がより高くなり、容器開封後も数日間の長い間水素がより高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
なお、上記の実施例１‐２〜実施例１‐５では、天然水（ナチュラルミネラルウォータ）に柑橘類のエキスを添加した対照でも溶存水素が検出されたことから、植物エキス７０の添加による溶存水素量の増大は、植物エキス７０と天然水（ナチュラルミネラルウォータ）、または、植物エキス７０と天然水（ナチュラルミネラルウォータ）由来以外の水素原液１の成分との組み合わせによるものであることが考えられる。
〈実施例２〉
実施例２に係る水素水１００は、上述のようにして得られた１００倍希釈した水素原液１に植物エキス７０として緑黄色野菜類のエキスを添加したものである。
緑黄色野菜として、実施例２‐１ではブロッコリースプラウト、実施例２‐２では大麦若葉、実施例２‐３ではケール、実施例２‐４ではニラ、実施例２‐５ではカボチャを用いた。
まず実施例２‐１について説明する。実施例２‐１は、緑黄色野菜類としてブロッコリースプラウトを使用した事例である。
実施例２‐１として、１００倍希釈した水素原液１にブロッコリースプラウトエキス（オリザ油化（株）製の「ブロッコリースプラウトエキス」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
ここでは、ブロッコリースプラウトエキスを添加する１００倍希釈した水素原液１について、上記水素原液１ａ1と水素原液１ａ2の２種類を用意した。
そして、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスを１００ｍｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管したものを実施例２‐１ａ1とした。
また、１００倍希釈した水素原液（１ａ2）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスを１００ｍｇ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管したものを実施例２‐１ａ2とした。
加えて、比較のために、ブランクａ1として１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。また、ブランクａ2として１００倍希釈した水素原液（ａ1）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も同様に経時的に溶存水素濃度の測定を行った。これらのブランクについては開封後も室温で保管した。
更なる比較として、水素原液１（１ａ1、１ａ2）において希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）３５０ｍｌに対して、実施例２‐１と同様、ブロッコリースプラウトエキスを１００ｍｇ添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それについても作製日（エキスを添加した日）に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで所定条件下で保管した。
なお、上述したように、実施例２‐１ａ1、ブランクａ1の水素原液１ａ1については、電圧印加（ステップＳ４０）を行ってから天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、所定の加熱を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用しており、実施例２‐１ａ2、ブランクａ2の水素原液１ａ2については、電圧印加後（ステップＳ４０）に天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、再び電圧印加（第２の電圧印加工程）を行い、更に所定の加熱を行った後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管したものを使用している。
これら実施例２‐１、ブランク、対照についての溶存水素濃度の測定結果を図１０のグラフに示す。
図１０のグラフに示したように、ブロッコリースプラウトエキスを添加しなかったブランクａ1（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では、５回目の測定で５ｐｐｂ程度であり、６回目で３２ｐｐｂの測定ピーク値（最大値）が見られ、７回目の測定で８ｐｐｂに減少した。また、ブランクａ2（１００倍希釈した水素原液１ａ2）では、４回目の測定で溶存水素濃度が３０ｐｐｂの測定ピーク値（最大値）が見られ、５回目の測定で１０ｐｐｂに減少した。
これに対し、１００倍希釈した水素原液１ａ1にブロッコリースプラウトエキスを添加した実施例２‐１ａ1の水素水１００では、３回目の測定で５ｐｐｂ程度、４回目の測定で２２５ｐｐｂの測定ピーク値となり、５回目の測定で１６０ｐｐｂ程度、６回目で１２５ｐｐｂ程度、７回目でも７０ｐｐｂ程度、８回目でも１０ｐｐｂ程度あった。
また１００倍希釈した水素原液１ａ2にブロッコリースプラウトエキスを添加した実施例２‐１ａ2の水素水１００でも、２回目の測定で１０ｐｐｂ程度、３回目の測定で溶存水素濃度が１７８ｐｐｂの測定ピーク値となり、４回目〜７回目の測定でも４０ｐｐｂ〜１４０ｐｐｂ程度あり、８回目の測定でも２５ｐｐｂ程度あった。
このように、１００倍希釈した水素原液１にブロッコリースプラウトエキスが添加された実施例２‐１では、ブロッコリースプラウトエキスを添加しなかったブランク（１００倍希釈した水素原液１のみ）と比較して、ＰＥＴ容器開封後に測定された溶存水素濃度の測定ピーク値（最高値）が高くなり（６倍〜７倍に増大）、ブランクよりも溶存水素が高い濃度で長く検出された。
ここで、本発明者らは、図１１に示すように、ブロッコリースプラウトエキスの添加量を様々変化させたときの水素水１００の溶存水素濃度の測定も行っている。
即ち、実施例２‐１Ａとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスを１００ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを作製した。
また、実施例２‐１Ｂとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスを５０ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを同様に作製した。
更に、実施例２‐１Ｃとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスを１０ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを同様に作製した。
なお、ここでは、１００倍希釈した水素原液１は、上記の実施例２‐１ａ1、ブランクａ1と同様の第２の電圧印加を行っていない水素原液１ａ1を使用した。
そして、全て、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管した。
測定条件は、上記と同様、初めにＰＥＴ容器開封直後に初回測定を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで室温条件下で保管を行った。
このときの実施例２‐１Ａ，２‐１Ｂ，２‐１Ｃの溶存水素濃度の測定結果を、上記のブランクａ1と比較して示したのが図１１のグラフである
図１１のグラフに示したように、１００倍希釈した水素原液３５０ｍｌにブロッコリースプラウトエキスを３０ｍｇ〜１００ｍｇ添加した実施例２‐１Ａ，２‐１Ｂ，２‐１Ｃでは、ブロッコリースプラウトエキスが添加されていない１００倍希釈した水素原液１のみのブランクと比較して、長い間溶存水素濃度が高かった。しかも開封後早い段階で溶存水素濃度の増大が見られた。
即ち、１００倍希釈した水素原液１のブランクでは、５回目〜７回目の測定で溶存水素濃度の測定値が１０ｐｐｂ〜３２ｐｐｂであったのに対し、１００倍希釈した水素原液１にブロッコリースプラウトエキスを添加した実施例２‐１においては、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が３５ｐｐｂ〜２２５ｐｐｂとなっており、１００倍希釈した水素原液（ブランク）と比較して、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度が増大し、高い溶存水素濃度が長く存在した。
特に１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌにブロッコリースプラウトエキス１００ｍｇを添加した実施例２‐１Ａの水素水１００において、４回目の測定で２２５ｐｐｂあり、５回目〜７回目の測定でも６０ｐｐｂ〜１６０ｐｐｂ程度あり、溶存水素濃度が顕著に増大し、最も高い濃度の水素が長く検出された。
このように、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスの添加量が１０ｍｇ〜１００ｍｇの範囲内において、１００倍希釈した水素原液１（ブランク）と比較して、安定的に長く水素濃度が高い濃度で存在することが確認された。なお、ここではブロッコリースプラウトエキスの添加量が多いほど、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高くなる傾向にあり、ＰＥＴ容器開封後の数日間の長い間溶存水素濃度が高くなる傾向が示された。
因みに、ここでは、水素水１００を無味、無臭、無着色の飲用水に適用することを想定し、ブロッコリースプラウトエキスの添加量を１０ｍｇ〜１００ｍｇに設定した。つまり、水素原液（１）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスの添加量が１０ｍｇ〜１００ｍｇの範囲内であれば、ブロッコリースプラウトエキスに由来する風味の影響もなく、天然水本来の風味を生かすことができる。
しかし、本発明を実施する場合には、水素水１００の用途等に応じて、添加量は適宜設定される。
念のため、図１２及び図１３において、サンプルを作製してから所定の日数経過後にＰＥＴ容器を開封したときの溶存水素濃度の経時的な測定結果を示す。
まずは上記の実施例２‐１Ａの水素水１００が充填されたＰＥＴ容器の開封時期を、サンプル作製日、サンプル作製日から１週間後、サンプル作製日２週間後としたときの溶存水素濃度の測定結果について説明する。
具体的には、上記実施例２‐１Ａの水素水１００のサンプル、即ち、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスを１００ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填して、キャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日にＰＥＴ容器を開封し、溶存水素濃度の測定を開始したものをサンプル１とした。
また、サンプル作成後室温（１０〜２５℃）下で保管し、サンプル作製日から１週間後に初めてＰＥＴ容器を開封し、溶存水素濃度の測定を開始したものをサンプル２とした。
更に、サンプル作成後室温（１０〜２５℃）下で保管し、サンプル作製日から２週間後に初めてＰＥＴ容器を開封し、溶存水素濃度の測定を開始したものをサンプル３とした。
なお、サンプル１〜サンプル３は全て、開封後も室温（１０〜２５℃）下で保管を行った。
測定条件は、上記と同様、初めにＰＥＴ容器開封直後に初回測定を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで室温（１０〜２５℃）下で保管を行った。
このときのサンプル１〜３の溶存水素濃度の測定結果を、上記のブランクａ1と比較して示したのが図１２のグラフである。
図１２のグラフに示したように、サンプル作成日から１週間後に開封したサンプル２及び２週間後に開封したサンプル３でも、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、また、数日間の長い間溶存水素が高い濃度の状態となることが確認された。
続いて、実施例２‐１Ａ及び実施例２‐１Ｃの水素水１００が充填されたＰＥＴ容器の開封時期を、サンプル作製日から１カ月後としたときの溶存水素濃度の測定結果について説明する。
具体的には、上記実施例２‐１Ａの水素水１００のサンプル、即ち、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスを１００ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填して、キャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作成後室温（１０〜２５℃）下で保管し、サンプル作製日から１カ月後に初めてＰＥＴ容器を開封し、溶存水素濃度の測定を開始したものをサンプル４とした。
また、上記実施例２‐１Ｃの水素水１００のサンプル、即ち、１００倍希釈した水素原液（１ａ1）３５０ｍｌに対してブロッコリースプラウトエキスを１０ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填して、キャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作成後室温（１０〜２５℃）下で保管し、サンプル作製日から１カ月後に初めてＰＥＴ容器を開封し、溶存水素濃度の測定を開始したものをサンプル５とした。
なお、サンプル４及びサンプル５については、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
測定条件は、上記と同様、初めにＰＥＴ容器開封直後に初回測定を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで３２℃で保温されたインキュベータに入れて保管を行った。
このときのサンプル４及びサンプル５の溶存水素濃度の測定結果を、ブランクａ1と比較して示したのが図１３のグラフである。
図１３のグラフに示したように、サンプル作成日から１カ月後に開封したサンプル４及びサンプル５でも、ブランクよりも溶存水素濃度の測定ピーク値が高く、また、ブランクよりも長く溶存水素が高い濃度の状態にあった。
更に、本発明者らの実験研究によれば、１年以上もの長い間未開封の状態で常温保管し、長期間保管後に開封して溶存水素濃度を測定しても、開封後、数日間長い間水素が高い濃度で存在することを確認している。
このように、ブロッコリースプラウトエキスを添加した実施例２‐１についても、ブロッコリースプラウトエキスが添加されたことにより、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在する。そして、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し長期間保管した場合でも、容器開封後に測定した水素濃度がより高くなり、容器開封後も数日間の長い間水素がより高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
なお、図１０において、天然水（ナチュラルミネラルウォータ）にブロッコリースプラウトエキスを添加した対照との比較により、植物エキス７０の添加による溶存水素量の増大は、植物エキス７０と天然水（ナチュラルミネラルウォータ）、または、植物エキス７０と天然水（ナチュラルミネラルウォータ）由来以外の水素原液１の成分との組み合わせによるものであることが考えられる。
次に実施例２‐２について説明する。
実施例２‐２は、緑黄色野菜類として大麦若葉（青汁の一種）を使用した事例である。
実施例２‐２として、１００倍希釈した水素原液１に大麦若葉エキス（佐々木食品工業（株）製の「国産大麦若葉粉末」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
ここで、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して大麦若葉エキスを１００ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを実施例２‐２Ａとした。
また、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して大麦若葉エキスを５０ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを実施例２‐２Ｂとした。
更に、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して大麦若葉エキスを３０ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを実施例２‐２Ｃとした。
なお、ここでは、１００倍希釈した水素原液１への大麦若葉エキスの添加により、沈殿物が生じたことから、濾紙による濾過を行ってこの沈殿物を除去し、沈殿物が除去された濾過物について、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却してサンプルを作製した。
また、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
これら全て開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管した。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで室温（１０〜２５℃）下で保管を行った。
実施例２‐２、ブランクについての溶存水素濃度の測定結果を図１４のグラフに示す。
図１４のグラフに示したように、大麦若葉エキスを添加していないブランク（１００倍希釈した水素原液１のみ）では、３回目の測定で、６２ｐｐｂのピーク値となり、４回目の測定で４０ｐｐｂ程度に減少した。
これに対し、１００倍希釈した水素原液１に大麦若葉エキスを添加した実施例２‐２Ａ、実施例２‐２Ｂ、実施例２‐２Ｃの水素水１００では、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、２回目の測定で、８２〜１６５ｐｐｂのピーク値となり、３回目の測定でも何れも６５ｐｐｂ以上あり、４回目の測定でも１０ｐｐｂ〜４０ｐｐｂ程度あった。特に、実施例２‐２Ａでは、ブランクと比較して、ピーク値（最大値）の溶存水素濃度が２．５倍以上に増大した。
このように、１００倍希釈した水素原液１に大麦若葉エキスを添加した実施例２‐２でも、大麦若葉エキスを添加しなかったブランクと比較して、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高くなり、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。なお、ここでは大麦若葉エキスの添加量が多いほど、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高くなる傾向にあり、ＰＥＴ容器開封後の数日間の長い間溶存水素濃度が高くなる傾向が示された。
以上、実施例２‐２の水素水１００においても、大麦若葉エキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
なお、このように、１００倍希釈した水素原液３５０ｍｌに対して大麦若葉エキスの添加量が３０ｍｇ〜１００ｍｇの範囲内において、１００倍希釈した水素原液１（ブランク）と比較して、溶存水素濃度が顕著に増大し、長く水素濃度が高い濃度で存在することが確認されたが、水素原液（１）３５０ｍｌに対して大麦若葉エキスの添加量が３０ｍｇ〜１００ｍｇの範囲内であれば、大麦若葉エキスに由来する風味の影響もなく、天然水本来の風味を生かすことができる。しかし、本発明を実施する場合には、水素水１００の用途等に応じて、添加量は適宜設定される。
次に実施例２‐３について説明する。実施例２‐３は、緑黄色野菜類としてケール（青汁の一種）を使用した事例である。
実施例２‐３として、１００倍希釈した水素原液１にケールエキス（佐々木食品工業（株）製の「国産ケール粉末」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
ここで、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してケールエキスを１００ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを実施例２‐３Ａとした。
また、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してケールエキスを５０ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを実施例２‐３Ｂとした。
更に、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対してケールエキスを３０ｍｇ添加した水素水１００のサンプルを実施例２‐３Ｃとした。
また、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
これら全て開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管した。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで室温（１０〜２５℃）下で保管を行った。
実施例２‐３、ブランクについての溶存水素濃度の測定結果を図１５のグラフに示す。
図１５のグラフに示したように、ケールエキスを添加していないブランク（１００倍希釈した水素原液１のみ）では、３回目の測定で、６２ｐｐｂのピーク値となり、４回目の測定で４０ｐｐｂ程度に減少した。
これに対し、１００倍希釈した水素原液１にケールエキスを添加した実施例２‐３Ａ、実施例２‐３Ｂ、実施例２‐３Ｃの水素水１００では、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、２〜３回目の測定で、７０ｐｐｂ〜１５１ｐｐｂのピーク値となり、４回目の測定でも４５ｐｐｂ以上あり、５回目でも１５ｐｐｂ〜２５ｐｐｂ程度あった。
特に、実施例２‐３Ｂでは、ブランクと比較して、ピーク値（最大値）の溶存水素濃度が２．５倍以上に増大した。
このように、１００倍希釈した水素原液１にケールエキスを添加した実施例２‐３でも、ケールエキスを添加しなかったブランクと比較して、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高くなり、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
以上、実施例２‐３の水素水１００においても、ケールエキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
なお、このように、１００倍希釈した水素原液３５０ｍｌに対してケールエキスの添加量が３０ｍｇ〜１００ｍｇの範囲内において、１００倍希釈した水素原液１（ブランク）と比較して、溶存水素濃度が顕著に増大し、長く水素濃度が高い濃度で存在することが確認されたが、水素原液（１）３５０ｍｌに対してケールエキスの添加量が３０ｍｇ〜１００ｍｇの範囲内であれば、ケールエキスに由来する風味の影響もなく、天然水本来の風味を生かすことができる。しかし、本発明を実施する場合には、水素水１００の用途等に応じて、添加量は適宜設定される。
次に実施例２‐４及び実施例２‐５について説明する。
実施例２‐４は、緑黄色野菜類としてニラを使用した事例、実施例２‐５は、緑黄色野菜類としてカボチャを使用した事例である。
実施例２‐４として、１００倍希釈した水素原液１にニラエキス（オリザ油化（株）製の「ニラ種子エキスＷＳＰ」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
また、実施例２‐５として、１００倍希釈した水素原液１にカボチャエキス（アスク薬品（株）製の「西洋カボチャ種子乾燥エキスＧＭＰ９４０」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
なお、ここでは、水素原液１については、電圧印加後（ステップＳ４０）に天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、再び電圧印加（第２の電圧印加工程）を行い、更に所定の加熱を行った後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管した水素原液１ａ2を使用している。
このような１００倍希釈した水素原液（１ａ2）３５０ｍｌに対して、実施例２‐４ではニラエキスを８５．７ｍｇ／Ｌ添加、実施例２‐５ではカボチャエキスを８５．７ｍｇ／Ｌ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後（初回測定後）は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
更に、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液（ここでは水素原液１ａ1を使用）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。ブランクについても開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管した。
更なる比較として、水素原液１において希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）３５０ｍｌに対して、ニラエキス、カボチャエキスをそれぞれ８５．７ｍｇ／Ｌを添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それらについても作製日（エキスを添加した日）に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
実施例２‐４についての溶存水素濃度の測定結果を、ブランク、対照と比較して図１６のグラフに示す。
また、実施例２‐５についての溶存水素濃度の測定結果を、ブランク、対照と比較して図１７のグラフに示す。
図１６、図１７のグラフにおいて、各種エキスを添加していないブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では、３回目の測定で１４ｐｐｂ、４回目〜５回目の測定で３２〜４１ｐｐｂの測定ピーク値になり、６〜７回目の測定で１２〜１９ｐｐｂに減少した。
これに対し、図１６に示したように、１００倍希釈した水素原液１にニラエキスを添加した実施例２‐４の水素水１００では、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、測定開始から２回目の測定で２９２ｐｐｂのピーク値となり、３回目の測定でも１２５ｐｐｂあった。
また、図１７に示したように、１００倍希釈した水素原液１にカボチャエキスを添加した実施例２‐５の水素水１００でも、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、測定開始から２回〜３回目の測定で２０９〜２２５ｐｐｂの測定ピーク値となり、４回目の測定でも６５ｐｐｂあった。
このように、１００倍希釈した水素原液１にニラエキスを添加した実施例２‐４、カボチャエキスを添加した実施例２‐５でも、各種エキスを添加していない１００倍希釈した水素原液１のブランクと比較して、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高い値となり、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
以上、実施例２‐４の水素水１００においてもニラエキスが添加されたことにより、また実施例２‐５の水素水１００においても、カボチャエキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
こうして、緑黄色野菜類のエキスを添加することにより、長く水素が顕著に高い濃度で存在する。そして、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し長期間保管した場合でも、容器開封後に測定した水素濃度がより高くなり、容器開封後も数日間の長い間水素がより高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
〈実施例３〉
実施例３に係る水素水１００は、上述のようにして得られた１００倍希釈した水素原液１に植物エキス７０としてハーブ・薬草類のエキスを添加したものである。
まず、実施例３‐１について説明する。
実施例３‐１では、ハーブ・薬草エキスとして、キク科のカモミール、ドクダミ科のドクダミ、バラ科のセイヨウサンザシ、ブドウ科のブドウ葉の各エキスが混合された混合エキス（商品名『ＡＧハーブＭＩＸ』、アークレイ社製）を用いた。
実施例３‐１として、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌに対して上述したカモミール、ドクダミ、セイヨウサンザシ、ブドウ葉のハーブ・薬草の混合エキスを１００ｍｇ添加し、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填してキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルを作製し、サンプル作製日に容器を開封して溶存水素濃度の測定を開始したものをサンプル１、サンプル作製後室温（１０〜２５℃）下で保管を行い、サンプル作製日の２週間後に容器を開封して溶存水素濃度の測定を開始したものをサンプル２とした。
また、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液（１）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
更なる比較として、水素原液１において希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）３５０ｍｌに対して、実施例３‐１と同様、ハーブ・薬草の混合エキスを１００ｍｇ添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それについても作製日（エキスを添加した日）に開封して経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
これら全て開封後は室温（１０〜２５℃）下で保管した。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで室温（１０〜２５℃）下で保管を行った。
実施例３‐１、ブランク、対照についての溶存水素濃度の測定結果を図１８のグラフに示す。
図１８のグラフに示したように、ハーブ・薬草混合エキスを添加していないブランク（１００倍希釈した水素原液１のみ）では、５回目の測定で６６ｐｐｂのピーク値（最大値）となり、６回目の測定で４０ｐｐｂに減少し、７回目の測定で１５ｐｐｂ程度であった。
これに対し、１００倍希釈した水素原液１にハーブ・薬草混合エキスを添加した実施例３‐１のサンプル１水素水１００では、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度の増大が見られ、３〜４回目の測定で、１３０〜１４７ｐｐｂのピーク値となり、５回目の測定でも８０ｐｐｂ程度、６回目でも４０ｐｐｂ程度あり、ブランクと比較して、溶存水素濃度の測定ピーク値が高くなり（２．２倍に増大）、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
更に、１００倍希釈した水素原液１にハーブ・薬草混合エキスを添加した実施例３‐１のサンプル２の水素水１００でも、ブランク以上に長い間溶存水素濃度が高く検出された。
このように、１００倍希釈した水素原液１にハーブ・薬草混合エキスを添加した実施例３‐１でもブランクと比較して、高い溶存水素濃度が長く検出された。
以上、実施例３‐１においてもハーブ・薬草混合エキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し長期間保管した場合でも、容器開封後に測定した水素濃度がより高くなり、容器開封後も数日間の長い間水素がより高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
なお、図１８において、天然水（ナチュラルミネラルウォータ）にハーブ・薬草混合エキスを添加した対照との比較により、植物エキス７０の添加による溶存水素量の増大は、植物エキス７０と天然水（ナチュラルミネラルウォータ）、または、植物エキス７０と天然水（ナチュラルミネラルウォータ）由来以外の水素原液１の成分との組み合わせによるものであることが考えられる。
次に実施例３‐２について説明する。実施例３‐２は、ハーブ・薬草類としてシソを使用した事例である。
実施例３‐２として、１００倍希釈した水素原液１にシソエキス（オリザ油化（株）製の「シソの実エキスＷＳＰ」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
なお、ここでは、水素原液１については、電圧印加後（ステップＳ４０）に天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、再び電圧印加（第２の電圧印加工程）を行い、更に所定の加熱を行った後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管した水素原液１ａ2を使用している。
このような１００倍希釈した水素原液（１ａ2）３５０ｍｌに対して、実施例３‐２ではシソエキスを８５．７ｍｇ／Ｌ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
更に、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液１（ここでは水素原液（１ａ1）を使用）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。ブランクについても開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管した。
更なる比較として、水素原液１において希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）３５０ｍｌに対して、シソエキスをそれぞれ８５．７ｍｇ／Ｌを添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それについても作製日（エキスを添加した日）に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
実施例３‐２についての溶存水素濃度の測定結果を、ブランク、対照と比較して図１９のグラフに示す。
図１９のグラフに示したように、シソエキスを添加していないブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では、３回目の測定で１４ｐｐｂ、４回目〜５回目の測定で３２〜４１ｐｐｂの測定ピーク値になり、６〜７回目の測定１２〜１９ｐｐｂに減少した。
これに対し、１００倍希釈した水素原液１にシソエキスを添加した実施例３‐２の水素水１００では、測定開始から３回目の測定で、２６２ｐｐｂのピーク値となり、４回目の測定でも７４ｐｐｂあった。
このように、１００倍希釈した水素原液１にシソエキスを添加した実施例３‐２でもブランクと比較して、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高い値となり、また、高い濃度の溶存水素が長く検出された。
以上、実施例３‐２においてもシソエキスが添加されたことにより、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
こうして、ハーブ・薬草類のエキスを添加することにより、長く水素が顕著に高い濃度で存在する。そして、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し長期間保管した場合でも、容器開封後に測定した水素濃度がより高くなり、容器開封後も数日間の長い間水素がより高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
〈実施例４〉
実施例４に係る水素水１００は、上述のようにして得られた１００倍希釈した水素原液１に植物エキス７０として柑橘類以外の果実類、木の実類（種実類）、花木類、豆類のエキスを添加したものである。
果実類として、実施例４‐１では苺、実施例４−２ではキウイ、実施例４‐３ではライチを用いた。また、木の実類（種実類）として、実施例４‐４で胡桃を用いた。更に、花木類として実施例４‐５で椿を用いた。加えて、豆類として実施例４‐６で大豆を用いた
即ち、実施例４‐１は、果実類として苺を使用した事例であり、実施例４‐２は、果実類としてキウイを使用した事例であり、実施例４‐３は、果実類としてライチを使用した事例である。また、実施例４‐４は木の実類（種実類）として胡桃を使用した事例であり、実施例４‐５は花木類として椿を使用した事例であり、実施例４‐６は豆類として大豆を使用した事例である。
実施例４‐１として、１００倍希釈した水素原液１に苺エキス（オリザ油化（株）製の「イチゴ種子エキスＰ」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
また、実施例４‐２として、１００倍希釈した水素原液１にキウイエキス（オリザ油化（株）製の「キウイ種子エキスＷＳＰ」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
更に、実施例４‐３として、１００倍希釈した水素原液１にライチエキス（オリザ油化（株）製の「ライチ種子エキスＷＳＰ」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
また、実施例４‐４として、１００倍希釈した水素原液１に胡桃エキス（オリザ油化（株）製の「クルミポリフェノールエキスＷＳＰ１０」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
更に、実施例４‐５として、１００倍希釈した水素原液１に椿エキス（ビーエイチエヌ（株）製の「ツバキ種子エキスＣＤ２５」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
加えて、実施例４‐６として、１００倍希釈した水素原液１に大豆（胚芽）エキス（フジッコ（株）製の「フジフラボンＰ１０」）を添加し水素水１００のサンプルを作製した。
なお、ここでは、水素原液１については、電圧印加後（ステップＳ４０）に天然水（ナチュラルミネラルウォータ）で１００倍に希釈した後、再び電圧印加（第２の電圧印加工程）を行い、更に所定の加熱を行った後、精密濾過を行ってからＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却後１〜２カ月室温下で保管した水素原液１ａ2を使用している。
このような１００倍希釈した水素原液（１ａ2）３５０ｍｌに対して、実施例４‐１では苺エキスを８５．７ｍｇ／Ｌ、実施例４‐２ではキウイエキスを８５．７ｍｇ／Ｌ、実施例４‐３ではライチエキスを８５．７ｍｇ／Ｌ、実施例４‐４では胡桃エキスを８５．７ｍｇ／Ｌ、実施例４‐５では椿エキスを８５．７ｍｇ／Ｌ、実施例４‐６では大豆エキスを８５．７ｍｇ／Ｌ添加したのち、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した水素水１００のサンプルについて、サンプル作製日に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後（初回測定後）は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
更に、比較のために、ブランクとして、１００倍希釈した水素原液１（ここでは水素原液１ａ1を使用）３５０ｍｌについて（ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却して１〜２か月室温下で保管しておいたもの）も経時的に溶存水素濃度の測定を行った。ブランクについても開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管した。
更なる比較として、水素原液１において希釈に使用した天然水（ナチュラルミネラルウォータ）３５０ｍｌに対して、各種苺エキス、キウイエキス、ライチエキス、胡桃エキス、椿エキス、大豆エキスをそれぞれ８５．７ｍｇ／Ｌ添加し、そして、９０℃で３０分加熱を行い、その後、ＰＥＴ容器に充填しキャップをして密封し、流水で冷却した対照（コントロール）を用意し、それらについても作製日（エキスを添加した日）に開封して溶存水素濃度の測定を開始し、開封後は３２℃に保温したインキュベータで保管し、経時的に溶存水素濃度の測定を行った。
溶存水素濃度の測定は初めにＰＥＴ容器開封直後に測定（初回測定）を行い、測定は１日に１回とした。なお、溶存水素濃度を測定する際の攪拌時間は毎回３０秒〜１分程度とした。
毎度測定後の液はＰＥＴ容器に再度戻し、キャップを閉めて、次の測定時で使用するまで３２℃に保温したインキュベータで保管を行った。
実施例４‐１についての溶存水素濃度の測定結果をブランク、対照と比較して図２０のグラフに、実施例４‐２についての溶存水素濃度の測定結果をブランク、対照と比較して図２１のグラフに、実施例４‐３についての溶存水素濃度の測定結果をブランク、対照と比較して図２２のグラフに、実施例４‐４についての溶存水素濃度の測定結果をブランク、対照と比較して図２３のグラフに、実施例４‐５についての溶存水素濃度の測定結果をブランク、対照と比較して図２４のグラフに、実施例４‐６についての溶存水素濃度の測定結果をブランク、対照と比較して図２５のグラフに示す。
図２０、図２１、図２３、図２４のグラフにおいて、各種植物エキス７０を添加していないブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では、３回目の測定で１４ｐｐｂ、４回目〜５回目の測定で３２〜４１ｐｐｂの測定ピーク値になり、６〜７回目の測定１２〜１９ｐｐｂに減少した。
また、図２２、図２５のグラフにおいて、各種植物エキス７０を添加していないブランク（１００倍希釈した水素原液１ａ1）では、４回目の測定で１２ｐｐｂ、５回目の測定で２０ｐｐｂの測定ピーク値になり、６回目の測定で８ｐｐｂに減少した。
これに対し、図２０に示したように、１００倍希釈した水素原液１に苺エキスを添加した実施例４‐１の水素水１００では、３回目の測定で１７１ｐｐｂのピーク値となり、４回目の測定でも１２４ｐｐｂ、５回目の測定でも５４ｐｐｂあり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度のピークが見られ、ブランクと比較して溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高く、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
図２１に示したように、１００倍希釈した水素原液１にキウイエキスを添加した実施例４‐２の水素水１００においても、３回目の測定で１６８ｐｐｂ、４回目の測定で２９３ｐｐｂのピーク値となり、５回目の測定でも１１０ｐｐｂあり、ブランクと比較して溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高く、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
また、図２２に示したように、１００倍希釈した水素原液１にライチエキスを添加した実施例４‐３の水素水１００では、４回目の測定で４９ｐｐｂ、５回目の測定で７７ｐｐｂピーク値となり、ブランクと比較して溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高く、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
更に、図２３に示したように、１００倍希釈した水素原液１に胡桃エキスを添加した実施例４‐４の水素水１００においても、２回目の測定で２８０ｐｐｂのピーク値となり、３回目の測定でも１２６ｐｐｂあり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度のピークが見られ、ブランクと比較して溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高く、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
図２４に示したように、１００倍希釈した水素原液１に椿エキスを添加した実施例４‐５の水素水１００においても、２回目の測定で２５２ｐｐｂのピーク値となり、３回目の測定でも１２８ｐｐｂあり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度のピークが見られ、ブランクと比較して溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高く、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
また、図２５に示したように、１００倍希釈した水素原液１に大豆エキスを添加した実施例４‐６の水素水１００では３回目の測定で４１ｐｐｂのピーク値となり、３回目の測定でも３０ｐｐｂあり、ブランクよりも早い段階で溶存水素濃度のピークが見られ、ブランクと比較して溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高く、また、ブランクよりも高い濃度の溶存水素が長く検出された。
このように、１００倍希釈した水素原液１に苺エキスを添加した実施例４‐１、キウイエキスを添加した実施例４‐２、ライチエキスを添加した実施例４‐３、胡桃エキスを添加した実施例４‐４、椿エキスを添加した実施例４‐５、大豆エキスを添加した実施例４‐６でも、各種植物エキス７０を添加していない１００倍希釈した水素原液１のみのブランクと比較して、溶存水素濃度の測定ピーク値（最大値）が高い値となり、また、高い濃度の溶存水素が長く検出された。特に、苺エキス、キウイエキス、胡桃エキス、椿エキスの添加では、溶存水素濃度の増大が大きく、より長い間溶存水素濃度が高く検出された。
以上、実施例４‐１において苺エキス、実施例４‐２においてキウイエキス、実施例４‐３においてライチエキス、実施例４‐４において胡桃エキス、実施例４‐５において椿エキス、実施例４‐６において大豆エキスが添加されたことによっても、溶存水素濃度の測定ピーク値の増大が見られ、水素濃度が顕著に高くなり、長く水素が顕著に高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
こうして、苺、キウイ、ライチ等の果実類エキスや、胡桃等の木の実類のエキス、椿等の花木類のエキス、大豆等の豆類のエキスを添加することにより、長く水素が顕著に高い濃度で存在する。そして、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し長期間保管した場合でも、容器開封後に測定した水素濃度がより高くなり、容器開封後も数日間の長い間水素がより高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
なお、図２０〜図２５において、天然水（ナチュラルミネラルウォータ）に各種植物エキス７０を添加した対照（コントロール）では溶存水素が殆ど検出されなかったことから、苺、キウイ、ライチ等の果実類エキスや、胡桃等の木の実類のエキス、椿等の花木類のエキス、大豆等の豆類のエキスの各種植物エキス７０の添加による溶存水素量の増大は、天然水（ナチュラルミネラルウォータ）由来以外の水素原液１成分と植物エキス７０との組み合わせによるものであることが考えられる。
因みに、上記実施例１〜実施例４の水素水１００のサンプルにおいては、容器開封後の溶存水素濃度の測定値は経時的に増大したのち減少して０に収束していくが、溶存水素濃度の増大に伴い、酸化還元電位が減少し、また、溶存水素濃度の減少に伴い、酸化還元電位の増大が見られることを確認している。一方、容器開封後の経時的な測定でｐＨは徐々に上昇することを確認している。ｐＨが徐々に上昇したことから、圧力変化や攪拌、振とう、振動等の外力が加えられたことで、化学的反応が生じた可能性も考えられる。
なお、上記実施例で使用したエキスに限定されず、その他の市販の抽出物や、植物から搾取した搾取液等でも同様に有効な効果が得られる。
以上説明してきたように、上記実施の形態に係る水素水１００によれば、植物エキス７０が添加されたことで、数日間の長い間水素が顕著に高い濃度で存在する。このため、例えば、サーバー等の形態での提供にも適する。このとき、特に、上述したように、圧力（気圧）変化や振動、振とう、攪拌等の外力を加えることにより反応性、反応速度等が高まり、その反応促進効果は２５℃〜３５℃の常温の温度条件下、より好ましくは３２℃±１℃の温度条件下とすることで、更に高めることができ、溶存水素濃度が長い間高くなる。
また、既存の一般的なＰＥＴ等の容器に充填して密封し長期間保管した場合でも、容器開封後に水素が高い濃度で存在し、特に植物エキス７０が添加されたことで、容器開封後も数日間の長い間水素がより高い濃度で存在することから、ＰＥＴ等の容器に充填し密封した形態（密封容器入り水素水）での提供にも好適である。特に、上述したように、容器開封後は２５℃〜３５℃の常温の温度条件下、より好ましくは３２℃±１℃の温度条件下とすることで、より高い濃度で溶存水素が長く存在する。
そして、このように数日間の長い間水素が顕著に高い濃度で存在するため、飲用に好適とされるほか、化粧品（育毛剤、整髪料等を含む）、農業用水（植物の生育、肥料、活力用等）、精密機械部品（例えば、半導体用シリコン基板、液晶用ガラス基板等）の洗浄水（酸化防止用等）、食品の日持ち向上、酸化防止等の用途にも適する。
ここで、上述のようにして得られた実施の形態に係る水素水１００をＰＥＴ等の容器に充填して密封容器入り水素水を製造する方法について図２６及び図２７を参照しながら説明する。
最初に、加熱殺菌を行って密封容器入り水素水を製造する方法について、製造方法の概略工程図を示した図２６を参照して説明する。
加熱殺菌を行って密封容器入り水素水１００を製造する方法においては、汲み上げた地下水（天然水）Ｗを原水として例えば、３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３に通過させることにより濾過する原水濾過工程（ステップＳ１１１）と、このようにして濾過した水に上記図１に示した電圧印加工程(ステップＳ４０)後の水素原液１を混合し攪拌手段によって均一にする混合工程（ステップＳ１１２）と、混合工程（ステップＳ１１２）後の混合液に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起する（第２の）電圧印加工程（ステップＳ１１４）と、混合工程（ステップＳ１２２）から電圧印加工程（ステップＳ１１４）後の間に植物エキス７０を添加して水素水１００とし、得られた水素水１００を例えば、１μｍ以下のフィルタ１１４に通過させることにより精密濾過する精密濾過工程（ステップＳ１１６）と、精密濾過した水素水１００を容器１３０ａに充填し、容器１３０ａをキャップ１３０ｂで密封する容器充填工程（ステップＳ１１７）と、混合工程（ステップＳ１１２）で濾過された水、水素原液１及び植物エキス７０が混合された後から容器充填工程（ステップＳ１１７）に至る間に８５℃〜１３５℃、３０分の加熱殺菌を行う加熱殺菌工程（ステップＳ１１５）とを有する。
図２６において、原水の地下水Ｗは、所謂、天然水等であり、例えば鉱化された地下水等が使用される。地下水（天然水）Ｗは、地下水汲み上げ用の市販の汲み上げポンプ等によって汲み上げられ、１次フィルタ１１１に通過させる濾過工程（ステップＳ１１１）に入り、１次フィルタ１１１によって異物、不純物等が除去される。
１次フィルタ１１１は、例えば、濾過精度（ポアサイズ）が３０μｍ〜２０μｍ以下の１種または２種以上のフィルタからなり、殆どの地下水Ｗに入っている鉱物種類の粒子等の異物、不純物が除去できるようになっている。
この１次フィルタ１１１によって地下水Ｗ中の異物、不純物等を除去することにより、水素濃度を安定させることができる。また、下流側のフィルタの負荷を軽減する。更に、微生物の栄養源でもある地下水Ｗ中の異物、不純物等が除去されることで、後の製造工程における微生物の繁殖を抑制し、タンク、配管等の設備における衛生管理の負担を軽減できる。
そして、図２６においては、汲み上げポンプ等で汲み上げられ１次フィルタ１１１を通過して濾過された水は、一時的な汲み上げ用の天然水補助タンク１２１に収容される流れとなっている。
なお、天然水補助タンク１２１は、１次フィルタ１１１からの濾過水を逆流させて１次フィルタ１１１の洗浄、所謂、逆洗を行う容量を少なくとも有する濾過水のタンクであり、逆洗を行う１次フィルタ１１１を使用するために必要なもので、使い捨てのフィルタを使用する場合には必要でない。
一時的な汲み上げ用の天然水補助タンク１２１に収容され、所定容量を満たしたのちは、天然水補助タンク１２１の下流側に配設された混合タンク１２３に供給される。
本発明を実施する場合には、後述する１μｍ以下のファイナルフィルタ１１４の負荷を軽減して寿命を延ばすために、また、後の製造工程における微生物の繁殖を抑制し、タンク、配管等の設備における衛生管理の負担を軽減するために、必要に応じて、天然水補助タンク１２１と混合タンク１２３と間に、２次フィルタ１１２や３次フィルタ１１３が配設される。
２次フィルタ１１２は、１次フィルタ１１１よりも濾過精度の高いフィルタ、例えば、濾過精度（ポアサイズ）が３０μｍ〜１０μｍ以下の１種または２種以上のフィルタからなり、３次フィルタ１１３は、２次フィルタ１１２よりも更に濾過精度の高いフィルタ、例えば、濾過精度（ポアサイズ）が１０μｍ〜１μｍ以下の１種または２種以上のフィルタからなる。この２次フィルタ１１２や３次フィルタ１１３を１次フィルタ１１１の下流側で混合タンク１２３の直前の入力側に設けることによって、１次フィルタ１１１のときよりも更に細かい異物、不純物、細菌等が除去される。また、後述する１μｍ以下のファイナルフィルタ１１４の負荷を軽減して寿命を延ばすことができる。更に、微生物の栄養源でもある地下水Ｗ中の異物、不純物等が除去されることで、後の製造工程における微生物の繁殖を抑制し、タンク等の設備における衛生管理の負担をより軽減できる。
なお、１次フィルタ１１１、２次フィルタ１１２、３次フィルタ１１３の濾過精度（ポアサイズ）については、上述のサイズに限定されるものではなく、密封容器入り水素水の製造工程の各機能が効率よく動作するように設定されればよい。原水の汲み取り場所によっては、また、後述のファイナルフィルタ１１４を短期間に交換することを好む場合には、何れかを省略することも可能であり、結果的に、水素原液１と混合される前段階で地下水Ｗに入っている鉱物種類の粒子等の不純物を除去できていればよい。勿論、２次フィルタ１１２、３次フィルタ１１３についても逆洗可能なフィルタとすることも可能である。このような１次フィルタ１１１、２次フィルタ１１２、３次フィルタ１１３としては、例えば、ポリプロピレン製ワインドフィルタカートリッジ等を使用できる。各フィルタにおいて、２種以上のフィルタを組み合わせて使用する場合には、フィルタの負荷を軽減するために、上流側から下流側にむかってポアサイズが順に小さくなるように配置するのが望ましい。
このように汲み上げポンプ等で汲み上げられた地下水Ｗは、濾過工程（ステップＳ１１１）において、１次フィルタ１１１、２次フィルタ１１２、３次フィルタ１１３を順に通過させることにより濾過されたのち、混合タンク１２３に流れ込み、収容される。
そして、混合工程（ステップＳ１１２）において、１次フィルタ１１１、２次フィルタ１１２、３次フィルタ１１３にて濾過されて混合タンク１２３に収容された濾過水に、上述の図１に示した製造工程を経て製造され水素原液１及び植物エキス７０が混合される。即ち、上述した図１の製造工程を経て製造された水素原液１は、１次フィルタ１１１、２次フィルタ１１２、３次フィルタ１１３にて濾過されて混合タンク１２３に収容された濾過水と混合されることで希釈される。また、植物エキス７０が添加されることになる。
なお、図２６において、上述した図１の製造工程を経て製造された水素原液１は、一時的な貯留用の水素原液貯留タンク１２２ａに所定量収容され、この水素原液貯留タンク１２２ａから混合タンク１２３内へ供給される。
そして、濾過水と混合される水素原液１には、図１で示した混合工程（ステップＳ１０）、酸混合工程（ステップＳ２０）、アルカリ混合工程（ステップＳ３０）、電圧印加工程（ステップ４０）を経て得られたものが使用される。
また、植物エキス７０についても、一時的な貯留用の植物エキス貯留タンク１２２ｂに所定量収容され、この植物エキス貯留タンク１２２ｂから混合タンク１２３内へ供給される。
この混合工程（ステップＳ１１２）においては、例えば、上記図１の電圧印加工程後（ステップＳ４０）の水素原液１（電圧印加直後の測定で溶存水素濃度が例えば、１００〜１，５００μｇ／Ｌ）の総量１Ｌに対して、濾過水が９〜９９９Ｌ混合され、水素原液１が濾過された水との混合により１０〜１０００倍に希釈されるようにする。即ち、水素原液（１）１Ｌに対し、水素原液１の９〜９９９倍量の濾過水が混合される。これにより、地下水（天然水）Ｗ本来の風味が生かされて、かつ、水素濃度を長い間高くできる密封容器入りの水素水が得られる。
また、この混合工程（ステップＳ１１２）では、所定の容積を有し、１次フィルタ１１１、２次フィルタ１１２、３次フィルタ１１３を通過した濾過水が収容され、この濾過水に対応した供給量で水素原液貯留タンク１２２ａから水素原液１が、また、植物エキス貯留タンク１２２ｂから植物エキス７０が供給される。そして、混合タンク１２３において、電動機で回転させる攪拌ファン等からなる撹拌手段によって、濾過水、水素原液１及び植物エキス７０が撹拌され均一になるようにしている。
なお、ここでは、混合工程（ステップＳ１１２）にて、植物エキス７０を添加する添加工程が実施されるが本発明を実施する場合には、植物エキス７０の添加のタイミングは、水素原液１に添加してから濾過水と混合されてもよいし、水素原液１が濾過水Ｗと混合されてから添加してもよいし、水素原液１と濾過水Ｗを混合するタイミングで添加してもよい。
そして、混合タンク１２３にて濾過水、水素原液１及び植物エキス７０が混合されて水素水１００とされる。得られた水素水１００は、紫外線殺菌工程（ステップＳ１１３）にて、紫外線装置が組み込まれた紫外線タンク装置内に収容され、所定時間紫外線殺菌される。後述する加熱殺菌工程（ステップＳ１１５）前に紫外線殺菌工程（ステップＳ１１３）を組み込むことにより、後の製造工程における微生物の繁殖を抑制し、タンク、配管等の設備における衛生管理の負担を軽減でき、衛生面での製造管理が容易となる。
続いて、紫外線殺菌を終えた水素水１００は、（第２の）電圧印加工程（Ｓ１１４）にて、電圧印加装置が組み込まれたタンク装置内に収容され、陰極及び陽極が浸漬されてそれら電極間に所定の電圧が所定時間かけられ、励起される。陰極及び陽極は、不活性な電極であれば良く、例えば、白金や炭素電極を用いることができる。陰極及び陽極の電圧は、水の電気分解に適した値に設定すれば良く（例えば、３〜２０Ｖ）、電流は、電極の面積や溶液量等を考慮して適宜設定される（例えば、５Ａ〜１０Ａ）。電圧印加時間は、溶液量、溶液中の成分量、電圧をかけた後の所望とする溶存水素濃度等を考慮して適宜設定される（例えば、１〜２００分間）。
濾過水、水素原液１及び植物エキス７０を混合して水素水１００とした混合工程（Ｓ１１２）後に、電圧印加工程（Ｓ１１４）を組み込むことで、水素濃度が安定的に高くなり、安定した品質を確保できる。
そして、陰極及び陽極が浸漬されてそれら電極間に所定の電圧がかけられ励起された水素水１００は、加熱殺菌工程（Ｓ１１５）にて、プレートヒータや加熱管路が配設された加熱タンク内に収容され、例えば、８５〜１３５℃の温度で３０分間加熱殺菌される。
そして、加熱殺菌を終えた水素水１００は、精密濾過工程（Ｓ１１６）におけるファイナルフィルタ１１４に供給される。
ファイナルフィルタ１１４は、例えば、少なくとも精密濾過により異味、異臭、不純物や、水素水１００の製造段階で生じた沈殿物を除去できる程度の濾過性能を有していればよく、濾過精度（ポアサイズ）が１μｍ以下のフィルタを使用する。負荷の軽減のためには、例えば、１μｍ〜５μｍのフィルタと０．５μｍ以下のフィルタとが併用される。
このファイナルフィルタ１１４としては、例えば、濾材をポリサルホンとしたポリサルホン製のメンブレンフィルタカートリッジ等が使用できる。
特に、ファイナルフィルタ１１４の前に加熱殺菌を行っている場合には、加熱殺菌の余熱（例えば、８５℃〜１３５℃、３０分保持した余熱）が存在するから、ファイナルフィルタ１１４において微生物の繁殖が抑制され、長寿命化を図ることができる。
そして、精密濾過工程（Ｓ１１６）において、ファイナルフィルタ１１４を通過させることにより精密濾過された水素水１００は、クリーンルーム内の充填タンク１２４に供給される。
充填タンク１２４に収容された水素水１００は、容器充填工程（ステップＳ１１７）において、クリーンルーム内にて、所定の充填速度で、液体充填機１３０によりＰＥＴ容器、アルミニウム、スチール等の金属缶、ガラスや陶器のビン、アルミ等のラミネートフィルムからなる袋状容器等の容器１３０ａに充填される。そして、液体充填機１３０では、容器１３０ａに水素水１００を充填し、充填した後に容器１３０ａのキャップ１３０ｂで密封する。キャップ１３０ｂには、例えば、バキュームで異物を吸い取った後に、紫外線殺菌処理がなされたものが使用される。なお、必要に応じてスチーム殺菌や無菌エアーブロー処理が行われることもある。また、容器１３０ａは、例えば、消毒薬により殺菌洗浄がなされた後、殺菌洗浄液を除去する濯ぎ洗浄を行って薬剤等を完全に落とし、その後、ビンロウ紫外線処理がなされたものが使用される。このときの洗浄には、濾過水や水素水１００を使用できる。
このとき、好ましくは容器の空間容量の９０％〜１００％の範囲内、より好ましくは９５％〜１００％の範囲内に水素水１００が充填される。これによって、容器内での水素水１００の移動や内壁面の衝突を最小限にして、上記反応（水素の生成や水素の遊離の促進等）を抑えることができる。
更に、水素水１００が充填された容器１３０ａをキャップ１３０ｂで密封した後は、加熱殺菌の余熱（８５℃〜１３５℃、３０分保持した余熱）が存在するから、必要に応じて、水素水１００が充填された容器１３０ａを転倒することにより、キャップ１３０ｂの裏を殺菌することができる。また、図２６においては、低温殺菌・冷却工程（ステップＳ１１８）にて、パストライザー等を使用し時間をかけながら低温殺菌し、冷却する。これにより、水素水１００の味を変化させないようにすることできる。その他、キャップ１３０ｂで密栓した容器１３０ａごと水槽内を潜らせることにより、冷却を行っても良い。この低温殺菌・冷却工程（ステップＳ１１８）を経て出荷される。このようにして、密封容器入り水素水が製造される。
ここで、上述したように、本実施の形態の水素水１００においては、２５℃〜３５℃の範囲内、特に、３２℃±１℃の温度条件下で溶存水素濃度が高くなるから、品質の安定化を図るために、この一連の製造工程は、２０℃以下で行うのが望ましい。なお、上記の図１で示した製造方法で製造された水素原液１に植物エキス７０が添加された実施の形態に係る水素水１００は、殺菌の加熱温度（８５℃〜１３５℃、３０分保持）では、水素が消失してしまう可能性が低い。
こうして製造された密封容器入り水素水は、上記の図１で示した製造方法で製造された水素原液１に植物エキス７０が添加されたことで、長期間保管した場合でも、容器開封後の水素濃度が高く、数日間の長い間水素が高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
ところで、本発明を実施する場合には、植物エキス７０を添加するタイミングは、濾過水と水素原液１を混合する混合工程（ステップＳ１１２）に限定されず、混合工程（ステップＳ１１２）で濾過水と水素原液１が混合された後から加熱殺菌工程（ステップＳ１１５）に至るまでの間であればよく、電圧印加工程（ステップＳ１１４）後に植物エキス７０を添加してもよい。なお、植物エキス７０を添加するタイミングで適当な攪拌手段により均一な攪拌を行うのが望ましい。
また、本発明を実施する場合には、加熱殺菌のタイミングは、濾過水、水素原液１及び植物エキス７０を混合した後から、容器充填工程（ステップＳ１１７）に至るまでの間であればよく、例えば、混合タンク１２３にジャケットを有する加熱タンク等を使用して加熱殺菌を行ってもよいし、ファイナルフィルタ１１４を通過後に加熱殺菌を行っても良い。加熱手段も特に限定されることなく、例えば、ヒータや熱交換が可能な所定の蒸気圧の螺旋状の加熱管路をタンクに配設し加熱蒸気で加熱殺菌を行うことも可能である。加熱タンクには通常、温度を均一化するための撹拌手段が設けられる。
加熱殺菌工程（ステップＳ１１５）によって菌を死滅させることで、薬剤による殺菌処理を行うことなく容器入りを可能としており、地下水（天然水）Ｗの本来の風味を生かした密封容器入り水素水とすることができる。
次に、加熱殺菌を行わず非加熱で密封容器入り水素水を製造する方法について、製造方法の概略工程図を示した図２７を参照して説明する。
非加熱で密封容器入り水素水を製造する方法においては、汲み上げた地下水Ｗを３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３に通過させることにより濾過する原水濾過工程（ステップＳ１１１）と、濾過した水に水素原液１を混合し攪拌手段によって均一にする混合工程（ステップＳ１２２）と、混合工程（ステップＳ１２２）後の混合液に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起する電圧印加工程（ステップＳ１１４）と、混合工程（ステップＳ１２２）から電圧印加工程（ステップＳ１１４）後の間に植物エキス７０を添加して水素水１００とし、得られた水素水１００を０．２μｍ以下のフィルタ１１４Ａに通過させることにより除菌濾過する除菌濾過工程（ステップＳ１１６Ａ）と、除菌濾過した水素水１００を容器１３０ａに非加熱除菌常温充填し、容器１３０ａをキャップ１３０ｂで密封する容器充填工程（ステップＳ１１７）とを有する。
非加熱で密封容器入り水素水を製造する場合においては、ファイナルフィルタ１１４Ａに０．２μｍ以下のフィルタを使用して除菌機能を持たせることにより、水素水１００を非加熱除菌し、クリーンルーム内で容器１３０ａに充填した。
即ち、図２７に示したように、非加熱で密封容器入り水素水を製造する場合、加熱殺菌を行う図２６と比較して、電圧印加工程（ステップＳ１１４）までは形式的には同一であり、陰極及び陽極が浸漬されてそれら電極間に所定の電圧がかけられ励起された後に水素水１００を０．２μｍ以下のファイナルフィルタ１１４Ａを通過させることにより、異味、異臭、不純物の除去に加え除菌を行うことで、加熱殺菌工程を省略している。それ以降の処理は、図２６と同様、除菌されたクリーンルームで行われ、ファイナルフィルタ１１４Ａを通過した水素水１００は、クリーンルーム内の充填タンク１２４に収容され、所定の充填速度で、充填タンク１２４から液体充填機１３０で容器１３０ａとしてのＰＥＴ容器、アルミニウム缶、スチール缶等に非加熱状態の常温で充填され、充填後に容器１３０ａのキャップ１３０ｂで密封された後、出荷される。
このときのファイナルフィルタ１１４Ａは、例えば、非加熱で水素水１００の除菌効果があることが確認されている濾過精度（ポアサイズ）が少なくとも０．２μｍ以下のフィルタを使用することによって、異味、異臭、不純物の除去に加え除菌を行い、加熱殺菌工程を省略できる。この０．２μｍ以下のフィルタとしては、例えば、濾材をポリサルホンとしたポリサルホン製のメンブレンフィルタカートリッジ等が使用できる。
特に、０．２μｍ以下のフィルタの前に、それよりも２．５倍〜５倍以上の濾過精度の開きがあるフィルタを配設することにより、０．２μｍ以下のフィルタの負荷を軽減して非加熱での除菌効果を上げることができる。即ち、０．２μｍ以下のフィルタの負荷の軽減のためには、それの５倍以下の濾過精度のフィルタを前に配設するのが好適であり、それによって、水素水１００の非加熱での除菌効果を上げることができる。このため、０．２μｍ以下のフィルタの上流側に、１μｍ〜０．５μｍの濾過精度のフィルタを配設するのが好ましい。
しかし、ファイナルフィルタ１１４Ａについては、０．２μｍ以下のフィルタの機能があれば、フィルタの組合せは上記に限定されない。勿論、ファイナルフィルタ１１４Ａについても逆洗可能なフィルタとしてもよい。
このように、図２７では、０．２μｍ以下のファイナルフィルタ１１４Ａを通過させることによって除菌及び異味、異臭、不純物を除去し、塩素処理等の薬剤による殺菌処理及び加熱による殺菌処理を行うことなく容器１３０ａに非加熱除菌常温充填した。
特に、殺菌のために温度を上昇させないから、塩素処理等の薬剤処理及び加熱処理による風味の劣化もなく、天然水Ｗの本来の風味をより生かすことができる。また、より安定的に水素濃度が高くなることが期待できる。
加えて、除菌濾過工程（ステップ１１６Ａ）前に紫外線殺菌を行うことで、除菌濾過工程（ステップ１１６Ａ）前までの細菌の増殖を抑制でき、製造設備、衛生管理が容易となり、特に、０．２μｍフィルタ１１４Ａの長寿命化を図ることができる。
以上説明してきたように、図２６において、密封容器入り水素水は、原水濾過工程（ステップＳ１１１）で汲み上げた原水Ｗを３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３に通過させることにより濾過し、混合工程（ステップＳ１１２）で原水濾過工程（ステップＳ１１１）を経て濾過された水と水素原液１を混合し攪拌手段によって均一にして、電圧印加工程（ステップＳ１１４）で混合工程（ステップＳ１１２）後の混合液に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起し、また、これら混合工程（ステップＳ１１２）から電圧印加工程（ステップＳ１１４）後の間に植物エキス７０を添加し、こうして濾過水、水素原液１及び植物エキス７０が混合された水素水１００を精密濾過工程（ステップＳ１１６）で１μｍ以下のフィルタ１１４に通過させることにより精密濾過し、容器充填工程（ステップＳ１１７）で、精密濾過した水素水１００を容器１３０ａに充填し、容器１３０ａをキャップ１３０ｂで密封することにより製造される。また、この間の、濾過水、水素原液１及び植物エキス７０が混合された後から容器充填工程（ステップＳ１１７）に至る間に８５℃〜１３５℃の３０分の加熱殺菌工程（ステップＳ１１５）を設けて加熱殺菌する。
したがって、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合したのち、酸としての有機酸５０を混合して沈殿物をなくした分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極を所定の電圧で励起して得られた水素原液１に植物エキス７０が添加され、容器に充填され密封された密封容器入り水素水の製造方法であって、汲み上げた原水Ｗを３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３に通過させることにより濾過する原水濾過工程（ステップＳ１１１）と、このようにして濾過した水及び水素原液１を混合し攪拌手段によって均一にする混合工程（ステップＳ１１２）と、混合工程後（ステップＳ１１２）の混合液に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起する（第２の）電圧印加工程（ステップＳ１１４）と、混合工程（ステップＳ１１２）から電圧印加工程（ステップＳ１１４）後の間に植物エキス７０を添加して水素水１００とし、得られた水素水１００を１μｍ以下のフィルタ１１４に通過させることにより精密濾過する精密濾過工程（ステップＳ１１６）と、精密濾過した水素水１００を容器１３０ａに充填し、容器１３０ａをキャップ１３０ｂで密封する容器充填工程（ステップＳ１１７）と、濾過水Ｗ、水素原液１及び植物エキス７０が混合された後から容器充填工程（ステップＳ１１７）に至る間に８５℃〜１３５℃、３０分の加熱殺菌を行う加熱殺菌工程（ステップＳ１１５）とを具備する密封容器入り水素水の製造方法として捉えることができる。
また、図２７において、非加熱の密封容器入り水素水は、原水濾過工程（ステップＳ１１１）で汲み上げた天然水Ｗを３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３に通過させることにより濾過し、混合工程（ステップＳ１１２）で濾過した水と水素原液１を混合し攪拌手段によって均一し、電圧印加工程（ステップＳ１１４）で混合工程（ステップＳ１１２）後の混合液に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起し、また、混合工程から電圧印加工程後の間に植物エキス７０を添加して水素水１００とし、除菌濾過工程（ステップＳ１１６Ａ）で、水素水１００を０．２μｍ以下のフィルタ１１４Ａに通過させることにより除菌濾過し、容器充填工程（ステップＳ１１７）で、除菌濾過した水素水１００を容器１３０ａに非加熱除菌常温充填し、容器１３０ａをキャップ１３０ｂで密封することにより製造される。
即ち、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合したのち、酸としての有機酸５０を混合して沈殿物をなくした分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極を所定の電圧で励起して得られた水素原液１に植物エキス７０が添加され、容器に充填され密封された密封容器入り水素水の製造方法であって、汲み上げた天然水Ｗを３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３に通過させることにより濾過する原水濾過工程（ステップＳ１１１）と、このようにして濾過した水と水素原液１を混合し攪拌手段によって均一にする混合工程（ステップＳ１１２）と、混合工程後（ステップＳ１１２）の混合液に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起する電圧印加工程（ステップＳ１１４）と、混合工程（ステップＳ１１２）から電圧印加工程（ステップＳ１１４）後の間に植物エキス７０を添加して水素水１００とし、得られた水素水１００を０．２μｍ以下のフィルタ１１４Ａに通過させることにより除菌濾過する除菌濾過工程（ステップＳ１１６Ａ）と、除菌濾過した水素水１００を容器１３０ａに充填し、容器１３０ａをキャップ１３０ｂで密封する容器充填工程（ステップＳ１１７）を具備する密封容器入り水素水の製造方法として捉えることもできる。
ここで、上記原水濾過工程（ステップＳ１１１）は、汲み上げた原水としての地下水（天然水）Ｗを３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３に通過させることによって、殆どの地下水に含まれる鉱物種類の粒子等の異物、不純物を除去する工程である。汲み上げた原水は地下水であるか否かを問わず、湧水、井戸水、精製水、蒸留水、水道水等であっても良い。
上記３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３は、ここでは、不純物の除去の対象が、主に、地下水Ｗに含まれる鉱物種類等であることから、鉱物種類等を除去できる能力を持つフィルタとして、濾過精度が３０μｍ以下と規定したものである。なお、かかるフィルタとしては、２種以上（２段以上）を適宜組み合わせて用いてもよく、複数のフィルタを使用する場合には、原水が濾過性能の低いフィルタから濾過性能の高いフィルタへと順に通過すようにフィルタを配設してフィルタの負荷を軽減する構成とするのが望ましい。
上記混合工程（ステップＳ１１２）は、濾過された水、水素原液１等を混合し、撹拌手段によって均一な混合状態とする工程であり、上記攪拌手段は、濾過水と水素原液１等が均一な混合となるように攪拌するものであればよく、例えば、攪拌ファンを用いたり、超音波振動器を用いたりすることによって、均質にすることができる。
また、上記電圧印加工程（ステップＳ１１４）は、混合工程（ステップＳ１１２）後の混合液に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけて、励起する工程である。ここで、混合工程（ステップＳ１１２）後の混合液とは、電圧印加工程（ステップＳ１１４）前に植物エキス７０が添加される場合には、希釈された水素原液１に植物エキス７０が混合されて得られた水素水１００を示し、電圧印加工程（ステップＳ１１４）後に、植物エキス７０を添加する場合には、濾過水と水素原液１との混合により希釈された水素原液１を示す。
更に、図２６において、上記精密濾過工程（ステップＳ１１６）は、水素水１００を１μｍ以下のフィルタに通過させることによって精密濾過処理を施し異味、異臭、不純物を除去する工程である。
上記１μｍ以下のフィルタとは、本工程では、除去の対象が、主に、異味、異臭、不純物等の微粒子であることから、かかる微粒子を除去できる能力を持つフィルタとして、濾過精度が１μｍ以下と規定したものである。特に、０．２μｍ以下のフィルタを用いることで除菌も可能となる。なお、かかるフィルタとしては、２種以上（２段以上）を適宜組み合わせて用いてもよく、複数のフィルタを使用する場合には、フィルタの目詰まりを少なくして負荷が軽減されるよう、水素水１００が濾過性能の低いフィルタから濾過性能の高いフィルタへと順に通過すようにフィルタを配設する構成とし、順次細かいものを除去するのが望ましい。
一方、図２７において、上記除菌濾過工程（ステップＳ１１６Ａ）は、水素水１００を０．２μｍ以下のフィルタに通過させることによって精密濾過処理を施し除菌及び異味、異臭、不純物を除去する工程である。
上記０．２μｍ以下のフィルタとは、本工程での除去の対象が、主に、一般細菌及び真菌の微生物等であることから、一般細菌及び真菌の微生物等を除去できる能力を持つフィルタとして濾過精度が０．２μｍ以下と規定したものであり、除菌効果がある０．２μｍ以下のフィルタを使用することで、加熱殺菌を不要とすることができる。特に、０．２μｍ以下のフィルタの前に、０．２μｍ以下のフィルタの２．５倍〜５倍の濾過精度の開きがある１μｍ〜０．５μｍの範囲内のフィルタを設け、水素水を１μｍ〜０．５μｍの範囲内のフィルタ及び０．２μｍ以下のフィルタの順に通過させる２段構成とすることにより、０．２μｍ以下のフィルタの目詰まりを少なくして負荷を軽減し、非加熱で除菌効果を上げることができる。
加えて、図２６において、上記容器充填工程（ステップＳ１１７）は、水素水１００をＰＥＴ容器等の容器１３０ａに充填し、容器１３０ａをキャップ（栓）１３０ｂで密封する工程である。容器１３０ａの材質は特に問われず、ＰＥＴ等の樹脂、アルミやスチール等の金属、陶器、ガラス等が使用できる。特に、本発明の水素水１００によればＰＥＴ容器に入れて長期間保管後に開封したときでも、高い水素濃度が長く検出される。つまり、既存の一般的なＰＥＴ容器に充填して密封し長期間保存した場合でも、開封後、長い間水素が高い濃度で持続し、容器を特殊な構造とする必要もないため、低コストである。
また、図２７において、上記容器充填工程（ステップＳ１１７）は、水素水１００をＰＥＴ容器等の容器１３０ａに非加熱除菌常温充填し、１３０ａをキャップ（栓）１３０ｂで密封する工程である。上記非加熱除菌常温充填とは、水素水１００をクリーンルーム等の除菌された（無菌の）常温下で充填するものであればよい。なお、容器１３０ａの材質は特に問われず、ＰＥＴ等の樹脂、アルミやスチール等の金属、陶器、ガラス等が使用できる。特に、本発明の水素水１００によればＰＥＴ容器に入れて長期間保管後に開封したときでも、高い水素濃度が長く検出される。
また、図２６において、上記加熱殺菌工程（ステップＳ１１５）は、濾過水、水素原液１、及び植物エキス７０が混合された後から容器充填工程（ステップＳ１１７）に至る間に１３５℃、３０分の加熱を設け、そこで殺菌を行う工程である。
更に、図２６及び図２７において、混合工程（ステップＳ１１２）で濾過水と水素原液１が混合された後から電圧印加工程（ステップＳ１１４）に至るまでに混合液の紫外線殺菌を行う紫外線殺菌工程（ステップＳ１１３）を具備することから、混合工程後（ステップＳ１１２）の細菌の増殖が抑制され、衛生面での製造管理が容易となる。
特に、図２６において、加熱殺菌前に紫外線殺菌を行うことで、混合工程（ステップＳ１１２）後から加熱殺菌工程（ステップ１１５）までの細菌の増殖を抑制でき、製造設備の衛生管理が容易となる。
また、図２７において、除菌濾過工程（ステップ１１６Ａ）前に紫外線殺菌を行うことで、混合工程（ステップＳ１１２）後から除菌濾過工程（ステップ１１６Ａ）までの細菌の増殖を抑制でき、製造設備、衛生管理が容易となり、特に、０．２μｍフィルタ１１４Ａの長寿命化を図ることができる。
このように製造された密封容器入り水素水においては、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して調製した分散液４０を酸としての有機酸５０と混合して沈殿物をなくし、好ましくはｐＨ１以上、ｐＨ１０以下、より好ましくはｐＨ３以上、ｐＨ８以下、更に好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下とした分散液４０に陰極及び陽極を浸漬してそれら電極を所定の電圧で励起することによって得られた水素原液１に植物エキス７０が添加されたことで、水素濃度が増大し、ＰＥＴ等の容器に入れて密封し長期間保管した後開封したときでも、数日間の長い間水素濃度が高くなり、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
そして、上述した密封容器入り水素水によれば、３０μｍ以下のフィルタ１１１、１１２、１１３で濾過された水と水素原液１が混合されて攪拌手段によって攪拌された後、（第２の）電圧印加工程（ステップＳ１１４）で陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起することで、安定的に水素濃度が高くなり、安定した品質が得られる。
また、溶存水素濃度が１００〜１，５００μｇ／Ｌである水素原液１に対し、９〜９９９倍量の濾過された水（天然水）を混合することで水素原液１を１０〜１０００倍に希釈する。これにより、天然水Ｗ本来の風味が生かされ風味が良好で飲用に適し、かつ、長い間水素濃度を高くできる。特に、濾過された水（天然水）と混合して水素原液１を希釈した後、（第２の）電圧印加工程（ステップＳ１１４）で陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間を所定の電圧で励起することにより、安定して水素濃度を高くできる。
以上説明してきたように、上記実施の形態の水素水１００は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合してなり、酸としての有機酸５０の酸処理により沈殿物がなく、好ましくは更にアルカリと混合され、ｐＨ１以上、ｐＨ１０以下、より好ましくはｐＨ３以上、ｐＨ８以下、更に好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下とした分散液４０に陽極及び陰極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起してなる水素水１００であって、植物エキス７０が添加されてなるものである。
また、上記実施の形態は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して調製した分散液４０に酸としての有機酸５０を混合して好ましくはｐＨ１以上、ｐＨ５以下の酸性にして沈殿物を溶解（分散）し、好ましくはアルカリ６０と混合してｐＨ１以上、ｐＨ１０以下、より好ましくはｐＨ３以上、ｐＨ８以下、更に好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下とし、その後、陽極及び陰極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起し、植物エキス７０を添加した水素水１００の製造方法と捉えることもできる。
即ち、上記実施の形態の水素水１００の製造方法は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して分散液４０を調製する混合工程（ステップＳ１０）と、調製した分散液４０に酸としての有機酸５０を混合して沈殿物を溶解（分散）する酸混合工程（ステップＳ２０）と、沈殿物が溶解（分散）されて透明（または半透明）な分散液４０を電気分解する電気分解工程（ステップＳ４０）とを具備し、前記電圧印加工程により得られた水素原液１に植物エキス７０を添加するものである。好ましくは、酸混合工程（ステップＳ１０）と電気分解工程（ステップＳ４０）と間にアルカリ６０を混合するアルカリ混合工程（ステップＳ３０）とを具備する。
ここで、上記酸混合工程（ステップＳ２０）は、酸５０の混合により、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０との混合により生じた沈殿物を溶解（分散）させる工程であり、好ましくはｐＨ１以上、ｐＨ５以下、より好ましくは、ｐＨ２以上、ｐＨ４以下の酸性とする。
また、上記アルカリ混合工程（ステップＳ３０）では、アルカリ６０と混合しても好ましくは、ｐＨ１以上、ｐＨ１０以下とされ、より好ましくはｐＨ３以上、ｐＨ８以下、更に好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下とされる。
更に、上記電圧印加工程（ステップＳ４０）は、沈殿物が溶解（分散）された分散液４０に陰極及び陽極を浸漬し、その両極を繋ぐ直流電源により直流電圧を印加することにより行われ、このときの陰極及び陽極の電圧は、例えば、水の電気分解に適した値に設定される。
上記実施の形態の水素水１００によれば、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して調製した分散液４０に酸としての有機酸５０の混合により酸処理して沈殿物を溶解（分散）した後、好ましくはアルカリ６０と混合しｐＨ１以上、ｐＨ１０以下、より好ましくはｐＨ３以上、ｐＨ８以下、更に好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下とされた分散液４０に陽極及び陰極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起してなる水素原液１に植物エキス７０が添加されたことにより、植物エキス７０を添加しなかったときよりも、水素濃度が増大し、長い間水素濃度が高くなる。そして、ＰＥＴ容器等の容器に入れて密封し、長期保管後に開封したときでも、数日間の長い間水素濃度を高くできる。
したがって、上記実施の形態の水素水１００及びその製造方法によれば、長い間水素が高い濃度で存在し、水素濃度が高い状態での摂取を可能とする。
特に、上記実施例１乃至実施例４の水素水１００は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して調製した分散液４０を有機酸５０と混合して沈殿物を溶解（分散）した後、アルカリ６０と混合し、好ましくはｐＨ１以上、ｐＨ１０以下、好ましくはｐＨ３以上、ｐＨ８以下、より好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下とされた分散液４０に陽極及び陰極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起してなる水素水１００であって、植物エキス７０として柑橘類、緑黄色野菜類、ハーブ・薬草類、果実類、大豆類、花木類から選ばれる少なくとも１種のエキスが添加されたものであり、安定的に長く高い濃度で水素が存在する。
また、上記実施例１の水素水１００は、植物エキス７０として伊予柑、デコポン、柚子、グレープフルーツ、レモンから選ばれる少なくとも１種の柑橘類のエキスが添加されたことから、高い水素濃度となる。
即ち、上記実施例１の水素水は、植物エキスが伊予柑、デコポン、柚子、グレープフルーツ、レモンから選ばれる少なくとも１種の柑橘類のエキスであるものである。
本発明者らの実験研究により、植物エキスの中でも伊予柑、デコポン、柚子、グレープフルーツ、レモンから選ばれる少なくとも１種の柑橘類のエキスでは、より水素濃度が高くなった。
よって、水素濃度を高くできる。
また、上記実施例１の水素水の製造方法によれば、植物エキスは、伊予柑、デコポン、柚子、グレープフルーツ、レモンから選ばれる少なくとも１種の柑橘類のエキスである。
本発明者らの実験研究により、植物エキスの中でも伊予柑、デコポン、柚子、グレープフルーツ、レモンから選ばれる少なくとも１種の柑橘類のエキスの添加では、より水素濃度が高くなった。
よって、水素濃度を高くできる。
更に、上記実施例１乃至実施例４の水素水１００は、植物エキス７０が、植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスであることから、安定的に長く高い水素濃度となる。
ここで、上記実施の形態の水素水１００は、２５℃〜３５℃の範囲内の温度条件下、より好ましくは、３２±１℃範囲内の温度条件下とすることにより、早くに溶存水素濃度が増大し、溶存水素量を高くでき、また、長い間溶存水素濃度を高くできる。
よって、上記実施の形態の水素水１００は、３２℃±１℃範囲内の温度条件下で溶存水素濃度が最も高くなる発明として捉えることもできる。
この発明の水素水１００によれば、溶存水素濃度が増大し長い間溶存水素濃度が高くなる。特に、ＰＥＴ容器等の密封容器に入れて長期経過後に開封したときでも、水素濃度が高くなり、長い間高い濃度で水素が存在する。
ここで、上記溶存水素濃度が高くなるとは、３２℃±１℃の範囲内の温度条件下とすることにより、該温度の範囲外の温度条件と比較して、隔膜型ポーラログラフ法を用いた溶存水素濃度計により経時的に測定を行った際の測定ピーク値（最高値）が最も高くなることを意味する。
また、水素水１００をＰＥＴ等の容器に入れて密封した場合では、容器開封後に３２℃±１℃の範囲内の温度条件下で管理することにより、隔膜型ポーラログラフ法を用いた溶存水素濃度計により経時的に測定を行った際の測定ピーク値（最高値）が該温度の範囲外の温度条件と比較して最も高くなる。
因みに、上記３２℃±１℃の±１℃は、誤差範囲の問題である。
なお、上記実施の形態は、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して調製した分散液４０を酸としての有機酸５０と混合して沈殿物を溶解（分散）した後、アルカリ６０と混合し、好ましくは、ｐＨ１以上、ｐＨ１０以下、より好ましくはｐＨ３以上、ｐＨ８以下、更に好ましくは、ｐＨ３以上、ｐＨ５以下とされた分散液４０に陽極及び陰極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起して得られた水素原液１に植物エキス７０を添加する説明としたが、本発明を実施する場合には、植物エキス７０を添加するタイミングは、マグネシウム／カルシウム１０とリン酸／リン酸塩２０と水３０とを混合して分散液４０を調製するときでも良いし、これらを混合して分散液４０を調製した後でも良いし、有機酸５０と混合して酸性の分散液４０とした後でも良いし、アルカリ６０と混合した後の分散液４０であっても良いし、陰極及び陽極を浸漬してそれら電極間に所定の電圧をかけて励起した直後の分散液４０であっても良い。
しかし、マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種のマグネシウム／カルシウム１０と、リン酸及び／またはリン酸塩２０と、水３０とを混合して調製した分散液４０に酸としての有機酸５０を混合して、沈殿物が溶解（分散）された分散液４０に陽極及び陰極を浸漬し、それら電極間を所定の電圧で励起して得られた水素原液１に植物エキス７０を添加することで、植物エキス７０による水素濃度の増大効果が高くなる。
１ 水素原液
１０ マグネシウム／カルシウム
２０ リン酸／リン酸塩
３０ 水
４０ 分散液
５０ 有機酸
６０ アルカリ
７０ 植物エキス
１００ 水素水

Claims (4)

  1. マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とが混合されてなり、酸処理により沈殿物のない分散液に陽極及び陰極の電極を浸漬して前記陽極及び前記陰極の前記電極間へ電圧印加し、前記電圧印加により電気分解されて水素が生成されてなる水素水に対し、
    植物エキスとして、野菜類、果実類、ハーブ・薬草類、豆類、木の実類、花木類から選ばれる少なくとも１種のエキスが添加されてなることを特徴とする水素水。
  2. 前記植物エキスは、植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスであることを特徴とする請求項１に記載の水素水。
  3. マグネシウム、マグネシウム化合物、カルシウム、カルシウム化合物のうちの少なくとも１種と、リン酸及び／またはリン酸塩と、水とを混合して調製した分散液に酸を混合して沈殿物を溶解し、更に、陽極及び陰極の電極を浸漬して前記陽極及び前記陰極の前記電極間へ電圧印加し、前記電圧印加により電気分解されて水素が生成されてなる水素水に対し、
    植物エキスとして、野菜類、果実類、ハーブ・薬草類、豆類、木の実類、花木類から選ばれる少なくとも１種のエキスを添加したことを特徴とする水素水の製造方法。
  4. 前記植物エキスは、植物の食用部位、または種子、または種子から発芽した芽の何れかから採取されたエキスであることを特徴とする請求項３に記載の水素水の製造方法。
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