JP6253986B2 - コレクション及びその使用方法 - Google Patents
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Description
本願は、2011年6月8日に出願された米国仮特許出願第61/494,452号明細書、及び2010年11月19日に出願された米国仮特許出願第61/415,367号明細書の利益を主張し、これらの仮特許出願は、双方とも、全体として参照により援用される。
本願は配列表を含み、この配列表は、EFS−WebからASCII形式で提出されたもので、本明細書によって全体として参照により援用される。2011年2月15日に作成された前記ASCII複製物の名称はMS130US.txtであり、サイズは229,568バイトである。
本発明の理解を促進するため、以下の定義及び説明を提供する。
a)VHについて:リーダー配列(表1に示されるとおりNheI制限部位を組み込む修飾phoA);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBssHII制限部位(GCGCGC)を組み込む);Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553において使用されるとおりの4D5抗体のCDR−H3(WGGDGFYAMDY)(配列番号1);及びJH4 FR4(図1に示されるとおりXhoI制限部位(CTCGAG)を組み込む);
b)Vkについて:リーダー配列(表2に示されるとおりNdeI制限部位を組み込むompA);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBbsI制限部位(GAAGAC)を組み込む)、Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553によるκ様CDR−L3(QQHYTTPPT)(配列番号2);及びJk1 FR4(図1に示されるとおりKpnI/Acc65I制限部位(GGTACC)を組み込む);及び
c)Vλについて:リーダー配列(表2に示されるとおりNdeI制限部位を組み込むompA);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBbsI制限部位(GAAGAC)を組み込む)、Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553によるλ様CDR−L3(QSYDSSLSGVV)(配列番号3);及びJl2/3 FR4(図1に示されるとおりKpnI/Acc65I制限部位(GGTACC)を組み込む)。
a)VHについて:リーダー配列(表1に示されるとおりNheI制限部位を組み込む修飾phoA);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBssHII制限部位(GCGCGC)を組み込む);Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553において使用されるとおりの4D5抗体のCDR−H3(WGGDGFYAMDY)(配列番号1);及びJH4 FR4(図1に示されるとおりXhoI制限部位(CTCGAG)を組み込む);
b)Vkについて:リーダー配列(表2に示されるとおりNdeI制限部位を組み込むompA);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBbsI制限部位(GAAGAC)を組み込む)、Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553によるκ様CDR−L3(QQHYTTPPT)(配列番号2);及びJk1 FR4(図1に示されるとおりKpnI/Acc65I制限部位(GGTACC)を組み込む);及び
c)Vλについて:リーダー配列(表2に示されるとおりNdeI制限部位を組み込むompA);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBbsI制限部位(GAAGAC)を組み込む)、Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553によるλ様CDR−L3(QSYDSSLSGVV)(配列番号3);及びJl2/3 FR4(図1に示されるとおりKpnI/Acc65I制限部位(GGTACC)を組み込む)。
MSGSHHHHHHGTMVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGHKFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHMKQHDFFKSAMPEGYVQERTIFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFKEDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQQNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAGITLGMDELYKDI。下線及び斜体のアミノ酸はHisタグを表し、下線のみのアミノ酸は、制限酵素認識配列の付加を表す。
本開示は、任意の標的に対する治療用抗体の同定に使用することのできる抗体又はその機能断片及びかかる抗体又は断片をコードする核酸のコレクションを可能にし、ここで抗体又は断片は、臨床的に開発可能で、患者において安全且つ有効である。背景として、本発明者らは、ヒト免疫レパートリーにおいて豊富な可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列遺伝子対(VH3−23/VK1−5など)が、より効率的な開発をもたらし、且つ得られる抗体の患者における安全性及び有効性を高め得る好ましい生物物理学的特性を有する可能性が高いと想定した。かかる好ましい生物物理学的特性には、以下が含まれ得る:a)Fabフォーマットにおける高い相対提示率;b)高い相対Fab発現収率;c)Fab及びIgGの両フォーマットにおける温度安定性;d)Fab及びIgGの両フォーマットのウシ/マウス血清安定性;e)高いIgG1発現収率;e)Fab及びIgGの両フォーマットにおけるSEC単量体含量(%単量体);及び/又はf)高いIgG1等電点(pI)。
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも98%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;及び
vi)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)。
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i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
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iii)SECにより決定するとき少なくとも98%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;及び
vii)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)。
i)Fabフォーマットにおける発現収率は、紫外分光測定法により、1.538mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定した。
ii)Fabフォーマットにおける熱安定性は、示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定した。
iii)Fabフォーマットにおける単量体含量(%単量体)は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、Superdex75 HR10/30カラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定した。
iv)IgG1フォーマットにおける発現収率は、紫外分光測定法により、1.369mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定した。
v)IgG1フォーマットにおける熱安定性は、示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定した。
vi)IgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、Tosoh TSK−Gel G3000SWxlカラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定した。
i)紫外分光測定法により、1.538mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定するとき少なくとも2.5mg/lのFabフォーマットにおける発現収率、
ii)示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定するときFabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性、
iii)サイズ排除クロマトグラフィーにより、Superdex75 HR10/30カラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定するとき少なくとも98%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体)、
iv)紫外分光測定法により、1.369mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定するとき少なくとも30mg/lのIgG1フォーマットにおける発現収率、
v)示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定するときIgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性、及び
vi)サイズ排除クロマトグラフィーにより、Tosoh TSK−Gel G3000SWxlカラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)。
i)紫外分光測定法により、1.538mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定するとき少なくとも2.5mg/lのFabフォーマットにおける発現収率、
ii)示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定するときFabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性、
iii)サイズ排除クロマトグラフィーにより、Superdex75 HR10/30カラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定するとき少なくとも98%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体)、
iv)紫外分光測定法により、1.369mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定するとき少なくとも30mg/lのIgG1フォーマットにおける発現収率、
v)示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定するときIgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性、及び
vi)サイズ排除クロマトグラフィーにより、Tosoh TSK−Gel G3000SWxlカラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)。
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも99%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;
vi)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)、及び
vii)少なくとも8.3のIgG1フォーマットにおける等電点。
i)Fabフォーマットにおける発現収率は、紫外分光測定法により、1.538mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定した。
ii)Fabフォーマットにおける熱安定性は、示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定した。
iii)Fabフォーマットにおける単量体含量(%単量体)は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、Superdex75 HR10/30カラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定した。
iv)IgG1フォーマットにおける発現収率は、紫外分光測定法により、1.369mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定した。
v)IgG1フォーマットにおける熱安定性は、示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定した。
vi)IgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、Tosoh TSK−Gel G3000SWxlカラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定した。
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも99%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;
vi)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)、及び
vii)少なくとも8.3のIgG1フォーマットにおける等電点。
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも99%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;
vi)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)、及び
vii)少なくとも8.3のIgG1フォーマットにおける等電点。
i)紫外分光測定法により、1.538mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定するとき少なくとも2.5mg/lのFabフォーマットにおける発現収率、
ii)示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定するときFabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性、
iii)サイズ排除クロマトグラフィーにより、Superdex75 HR10/30カラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定するとき少なくとも99%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体)、
iv)紫外分光測定法により、1.369mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定するとき少なくとも30mg/lのIgG1フォーマットにおける発現収率、
v)示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定するときIgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性、及び
vi)サイズ排除クロマトグラフィーにより、Tosoh TSK−Gel G3000SWxlカラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)。
vii)少なくとも8.3のIgG1フォーマットにおける等電点。
ある態様は、本明細書に記載されるコレクションの作製方法を含む。
a)ヒト免疫レパートリーに存在する可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列遺伝子対を同定するステップ;
b)ステップa)で同定された可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列タンパク質対を、以下の特性について試験するステップ:
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも98%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;及び
vii)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体);及び
c)コレクションを作成するステップにおいて、抗体又はその機能断片の実質的に全て、又は少なくとも50%、又は少なくとも60%、又は少なくとも70%、又は少なくとも80%、又は少なくとも90%又は少なくとも95%又は各々、又は抗体又はその機能断片が、可変重鎖と可変軽鎖との対を含み、可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域が、ステップb)の特性を満たす生殖系列タンパク質対の生殖系列タンパク質配列を含む、ステップ
を含む。
i)Fabフォーマットにおける発現収率は、紫外分光測定法により、1.538mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定した。
ii)Fabフォーマットにおける熱安定性は、示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定した。
iii)Fabフォーマットにおける単量体含量(%単量体)は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、Superdex75 HR10/30カラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定した。
iv)IgG1フォーマットにおける発現収率は、紫外分光測定法により、1.369mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定した。
v)IgG1フォーマットにおける熱安定性は、示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定した。
vi)IgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、Tosoh TSK−Gel G3000SWxlカラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定した。
aa)サンプルからヒトB細胞を単離するステップ;
ab)B細胞からcDNAを作成するステップ;
ac)B細胞からcDNAをPCR増幅するステップ;
ad)PCR産物を配列決定するステップ;
ae)各PCR産物の生殖系列遺伝子を同定するステップ
をさらに含む。
ba)ヒト免疫レパートリーに存在する対を代表する可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列タンパク質対を含む抗体又はその機能断片をコードするDNAを合成するステップ;
bb)ba)で合成された生殖系列タンパク質対を発現させるステップ;及び
bc)bb)の生殖系列タンパク質対を特性の各々について試験するステップ
をさらに含む。
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも99%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;及び
vii)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)
viii)少なくとも8.3のIgG1フォーマットにおける等電点。
ある態様は、抗原に特異的な抗体又は断片を同定するための本明細書に記載されるコレクションの使用方法を含む。
(a)抗原を抗体又はその機能断片のコレクションと接触させるステップにおいて、コレクションの抗体又は機能断片の実質的に全て、又は少なくとも50%、又は少なくとも60%、又は少なくとも70%、又は少なくとも80%、又は少なくとも90%又は少なくとも95%又は各々、又は抗体又は機能断片が、可変重鎖と可変軽鎖との対を含み、可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域が、以下の特性を含む生殖系列タンパク質対の生殖系列タンパク質配列を含む、ステップ:
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも98%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;及び
vii)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)、及び
(b)前記抗原に結合する1つ以上の抗体又は抗体断片を選択するステップ
を含む。
i)Fabフォーマットにおける発現収率は、紫外分光測定法により、1.538mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定した。
ii)Fabフォーマットにおける熱安定性は、示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定した。
iii)Fabフォーマットにおける単量体含量(%単量体)は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、Superdex75 HR10/30カラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定した。
iv)IgG1フォーマットにおける発現収率は、紫外分光測定法により、1.369mL/mgの吸光係数を使用して、且つ280nmでの吸光度を計測して決定した。
v)IgG1フォーマットにおける熱安定性は、示差走査型蛍光定量法によりPBS緩衝液を使用して決定した。
vi)IgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)は、サイズ排除クロマトグラフィーにより、Tosoh TSK−Gel G3000SWxlカラム及びpH7.4のGibco D−PBS緩衝液を使用して決定した。
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも99%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;
vii)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体);及び
viii)少なくとも8.3のIgG1フォーマットにおける等電点。
本明細書に開示される方法のさらなる態様において、コレクションは、それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含む1つ以上の相補性決定領域を含む合成抗体若しくはその機能断片又はかかる抗体若しくは機能断片をコードする合成核酸を含み、ここで可変重鎖及び可変軽鎖の相補性決定領域のアミノ酸配列は、図25〜図33に示す。より具体的には、この方法のある実施形態では、コレクションは、それぞれの可変重鎖及び/又は可変軽鎖対由来の生殖系列タンパク質配列を含むCDR1領域を含む抗体若しくはその機能断片又はかかる抗体若しくは機能断片をコードする合成核酸を含み、ここで可変重鎖及び可変軽鎖のCDR1領域のアミノ酸配列及び核酸配列は、図25、図28及び図31及び対応する配列番号204〜265に示す。この方法のある実施形態では、コレクションは、それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含むHCDR1領域を含む抗体若しくはその機能断片又はかかる抗体若しくは機能断片をコードする合成核酸を含み、ここで可変重鎖及び可変軽鎖のHCDR1領域のアミノ酸配列及び核酸配列は、図25及び対応する配列番号204〜229に示す。この方法のある実施形態では、コレクションは、それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含むLCDR1領域を含む抗体若しくはその機能断片又はかかる抗体若しくは機能断片をコードする合成核酸を含み、ここで可変重鎖及び可変軽鎖のLCDR1領域のアミノ酸配列及び核酸配列は、図28及び図31及び対応する配列番号230〜265に示す。この方法のさらなる実施形態では、コレクションは、それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含むCDR2領域を含む抗体若しくはその機能断片又はかかる抗体若しくは機能断片をコードする合成核酸を含み、ここで可変重鎖及び可変軽鎖のCDR2領域のアミノ酸配列及び核酸配列は、図26、図29及び図32及び対応する配列番号204〜265に示す。この方法のさらなる実施形態では、コレクションは、それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含むHCDR2領域を含む抗体若しくはその機能断片又はかかる抗体若しくは機能断片をコードする合成核酸を含み、ここで可変重鎖及び可変軽鎖のHCDR2領域のアミノ酸配列及び核酸配列は、図26及び対応する配列番号204〜229に示す。この方法のさらなる実施形態では、コレクションは、それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含むLCDR2領域を含む抗体若しくはその機能断片又はかかる抗体若しくは機能断片をコードする合成核酸を含み、ここで可変重鎖及び可変軽鎖のLCDR2領域のアミノ酸配列及び核酸配列は、図29及び図32及び対応する配列番号230〜265に示す。
別の態様では、本開示は、合成抗体若しくはその機能断片又はかかる抗体若しくは機能断片をコードする合成核酸を提供し、ここで抗体又は機能断片は、可変重鎖と可変軽鎖との対を含み、ここで可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域は、可変重鎖と可変軽鎖との対VH1−18(配列番号204)/VK1−39(配列番号236);VH1−18(配列番号204)/VK3−15(配列番号238);VH1−18(配列番号204)/VK3−20(配列番号239);VH1−46(配列番号205)/VK3−15(配列番号238);VH1−46(配列番号205)/VL1−51(配列番号252);VH1−46(配列番号205)/VL3−21(配列番号257);VH1−69*01(配列番号206)/VL1−51(配列番号252);VH3−07(配列番号207)/VK1−12(配列番号233);VH3−07(配列番号207)/VK1−16(配列番号234);VH3−07(配列番号207)/VK1−27(配列番号235);VH3−07(配列番号207)/VK1−39(配列番号236);VH3−07(配列番号207)/VK3−15(配列番号238);VH3−07(配列番号207)/VL1−47(配列番号251);VH3−07(配列番号207)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VK1−05(配列番号230);VH3−11(配列番号208)/VK1−39(配列番号236);VH3−11(配列番号208)/VK3−15(配列番号238);VH3−11(配列番号208)/VL1−40(配列番号250);VH3−11(配列番号208)/VL1−47(配列番号251);VH3−11(配列番号208)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VL2−23(配列番号255);VH3−15(配列番号209)/VK1−05(配列番号230);VH3−15(配列番号209)/VK1−06(配列番号231);VH3−15(配列番号209)/VK1−12(配列番号233);VH3−15(配列番号209)/VK1−16(配列番号234);VH3−15(配列番号209)/VK1−27(配列番号235);VH3−15(配列番号209)/VK3−11(配列番号237);VH3−15(配列番号209)/VL1−40(配列番号250);VH3−15(配列番号209)/VL1−47(配列番号251);VH3−15(配列番号209)/VL1−51(配列番号252);VH3−15(配列番号209)/VL2−14(配列番号254);VH3−21(配列番号210)/VK1−12(配列番号233);VH3−21(配列番号210)/VK1−27(配列番号235);VH3−21(配列番号210)/VL2−11(配列番号253);VH3−23(配列番号211)/VK1−39(配列番号236);VH3−23(配列番号211)/VK3−15(配列番号238);VH3−23(配列番号211)/VL2−23(配列番号255);VH3−23(配列番号211)/VL3−1(配列番号256);VH3−30(配列番号212)/VK3−20(配列番号239);VH3−53(配列番号213)/VK3−15(配列番号238);VH3−53(配列番号213)/VL2−11(配列番号253);VH3−74(配列番号214)/VK1−05(配列番号230);VH3−74(配列番号214)/VK1−06(配列番号231);VH3−74(配列番号214)/VK1−12(配列番号233);VH3−74(配列番号214)/VK1−27(配列番号235);VH3−74(配列番号214)/VK3−20(配列番号239);VH3−74(配列番号214)/VL1−51(配列番号252);VH5−51(配列番号215)/VK1−39(配列番号236);VH5−51(配列番号215)/VL1−40(配列番号250);VH5−51(配列番号215)/VL1−51(配列番号252);VH6−1(配列番号216)/VK1−09(配列番号232);VH6−1(配列番号216)/VK3−15(配列番号238);VH6−1(配列番号216)/VK3−20(配列番号239)及びVH6−1(配列番号216)/VL1−51(配列番号252)から選択される生殖系列タンパク質配列を含む。
一態様において、本開示は、生殖系列タンパク質配列を含むフレームワーク領域、特にFR1を含む抗体又はその断片のコレクションについて記載する。生殖系列配列を有することで、ヒトにおける投与時の抗体の免疫原性リスクが低下するものと予想される。しかしながら、抗体を免疫原に対してスクリーニングすることができるように、ディスプレイ及び/又は発現ベクターへの抗体のコレクションをコードする核酸の標準的なクローニングを可能にするため、適合性のある制限部位を使用しなければならない。過去には、クローニングに利用される制限部位は多くの場合にフレームワーク領域内に置かれ、従って核酸及び/又はアミノ酸配列が生殖系列から離れるように修飾された。本開示の抗体の各々の少なくともフレームワーク1(FR1)領域が生殖系列タンパク質配列を維持することを確実にするためには、FR1内に、生殖系列アミノ酸配列からのずれをもたらし得るいかなる制限部位も存在してはならない。従って、本開示のある態様は、原核生物シグナル配列及びヒトリーダー配列のC末端内、特にC末端の3残基内における同一の又は少なくとも適合性のある制限部位の組み込みである。加えて、同一の又は適合性のある制限部位を含む原核生物シグナル配列及びヒトリーダー配列は、原核生物及び哺乳動物の双方の発現系において機能性で、且つ抗体又はその断片の良好な提示及び発現収率をもたらすものでなければならない。
その最も広義の意味で、本発明者らは、本質的にヒト免疫系を模倣する抗体コレクションが有利であり得るという構想から出発した。本発明者らは、ヒト免疫レパートリーで豊富に発現する可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列遺伝子対が、より効率的な臨床開発につながり、且つ得られる抗体の患者における安全性及び有効性を高めるであろう好ましい生物物理学的特性を有する可能性が高いという自らの仮説から取り組んだ。この仮説を証明するための第1のステップは、ヒト免疫レパートリーで顕著に発現する可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列遺伝子対を同定することであった。
ヒト免疫レパートリーから優位に発現するVH/VL生殖系列遺伝子対を同定するため、公的に利用可能なデータを分析し、及びヒトB細胞をサンプリングした。第1のステップとして、公的に利用可能なデータをレビューすることにより、ヒトB細胞から単離されるVH/VL生殖系列遺伝子対について記載している論文を特定した。記載されるとおり、多くの公的に利用可能なデータベースが抗体配列を提供しているが、しかしながら、多くは、いずれかの可変ドメイン、VH或いはVLの配列のみを提供し、VH/VL生殖系列遺伝子対の関連付けを提供するものはほとんどない。以下の論文を特定し、詳細に分析した:Wardemann H.et al.(2003)Science 301,1374−1377及び任意の添付表;Yurasov S.et al.(2005)J.Exp.Med.201,703−712及び任意の添付表;Tsuiji M.et al.(2006)J.Exp.Med.203,393−401及び任意の添付表;Yurasov S.et al.(2006)J.Exp.Med.203,2255−2262及び任意の添付表、Tiller T.et al.(2007)Immunity 26,205−213及び任意の添付表、及びMietzner B.et al.(2008)PNAS 105,9727−9732及び任意の添付表(これらは全て、全体として参照により援用される)。以下に記載するとおり、さらなるVH/VL対データをヒトB細胞のサンプルから同定した。
さらなるVH/VL生殖系列遺伝子対利用データを得るため、PBMCをヒト宿主から単離した。PBMCは分取し、PCRを用いてB細胞のcDNAを増幅し、B細胞由来のDNAを配列決定し、次にそれらの配列をIgBLAST(NCBI)でブラストにかけて、各B細胞からVH/VL生殖系列遺伝子対を同定した。
実施例2.1に記載するとおり公的に利用可能な文献から同定したVH/VL生殖系列遺伝子対データを、実施例2.2に記載するとおりヒトサンプルから同定したデータと共にプールした。プールしたデータを分析し、表6における順位、すなわちヒト免疫レパートリーにおいて同定されたVH/VL生殖系列遺伝子対の百分率/割合(%)の順位として示す。
表6のレビューは、ヒト免疫レパートリーでは、生殖系列遺伝子の総数に比して少数のVH/VL対が支配的であることを示す。Wildt et al.895〜896頁がこの現象について記載している。Wildt et al.はまた、多くの場合に高頻度で発現する重鎖及び軽鎖遺伝子セグメントが対を形成することも記載し、サンプリングされた対形成の半数が僅か5つのVH/VL生殖系列遺伝子対に対応したことを観察した。
次のステップとして、ヒト免疫レパートリーには約2500対あり、且つ本発明者らの目標は、生殖系列タンパク質対のうちどれが選択及び開発に役立ち得る好ましい生物物理学的特性を含むかを同定することであったため、どの生殖系列タンパク質対を試験すべきであるかを決定しなければならなかった。一つの方法は、ヒト免疫レパートリーに最も顕著に現れる可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列タンパク質対を試験することであり得た(例えば、表6を参照のこと)。例えば、上位400個の対を試験用に選択するか、又は特定の閾値数を上回って存在する可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列タンパク質対を選択することができた。この手法は、多数の異なる可変重鎖及び可変軽鎖生殖系列タンパク質対配列の合成及び試験を必要とするものと思われた;従って、かかる手法はあまり効率的とは言えない。
次のステップとして、20個のVH、12個のVκ及び8個のVλの選択されたVH、Vκ、及びVλ生殖系列遺伝子を合成し、組み合わせて、400個のVH/VL生殖系列遺伝子対を生成し、続いてこれらの対をその生物物理学的特性について試験した。表6は、機能試験用に生成した400個のVH/VL生殖系列遺伝子対が、実際に、ヒト免疫レパートリーにおいて顕著なVH/VL生殖系列遺伝子対の大部分を確かに正確に再現し、又は網羅することを示す。表6は、ヒト免疫レパートリーで発現するVH/VL対の順位を示し、ここで試験した400個のVH/VL対は太字及び下線で示す。
次のステップとして、表5に示されるとおり、組み合わせ及び続く試験用に選択されたVH、Vλ、及びVκ生殖系列遺伝子を、Geneart(Regensburg,Germany)に送り、それぞれ大腸菌(E.coli)発現に対してコドンを最適化し(哺乳動物発現に対しては中立的で、まれなヒトコドンを含まない)、遺伝子を最適化して潜在的な阻害又はスプライスモチーフを取り除き、及び合成した。
a)VHについて:リーダー配列(表1に示されるとおりNheI制限部位を組み込む修飾phoAシグナル配列);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBssHII制限部位(GCGCGC)を組み込む);Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553において使用されるとおりの4D5抗体のCDR−H3(WGGDGFYAMDY)(配列番号1);及びJH4 FR4(図1に示されるとおりXhoI(CTCGAG)制限部位を組み込む);
b)Vkについて:リーダー配列(表2に示されるとおりNdeI制限部位を組み込む修飾ompAシグナル配列);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBbsI制限部位(GAAGAC)を組み込む)、Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553によるκ様CDR−L3(QQHYTTPPT)(配列番号2);及びJk1 FR4(図1に示されるとおりKpnI/Acc65I制限部位(GGTACC)を組み込む);
c)Vλについて:リーダー配列(表2に示されるとおりNdeI制限部位を組み込む修飾ompAシグナル配列);生殖系列FR1、CDR1、FR2、CDR2及びFR3(図1に示されるとおりBbsI制限部位(GAAGAC)を組み込む)、Ewert S.et al.,J.Mol.Biol.(2003)325,531−553によるλ様CDR−L3(QSYDSSLSGVV)(配列番号3);及びJl2/3 FR4(図1に示されるとおりKpnI/Acc65I制限部位(GGTACC)を組み込む)。
次に、400個の生殖系列タンパク質対を、Fab又はヒトIgG1のいずれかのフォーマットでファージディスプレイ、大腸菌(E.Coli)及び哺乳動物(mamallan)発現ベクターに挿入し、次に以下の特性について試験した:a)Fabフォーマットにおけるファージ産生及びファージELISA後の相対提示;b)大腸菌(E.coli)でのFab産生、大腸菌(E.coli)細胞溶解及び産生されたFabのELISA検出後の相対Fab発現収率;c)大腸菌(E.coli)でのFab産生、大腸菌(E.coli)細胞溶解及び高温でインキュベートした後の非変性FabのELISA検出後のFabの温度安定性;d)ウシ/マウス血清中でインキュベートした後の非変性FabのELISA検出による大腸菌(E.coli)ライセートからのFabのウシ/マウス血清安定性;e)哺乳動物細胞におけるIgG1産生及び細胞培養上清由来の分泌IgG1のELISA検出後の相対ヒトIgG1発現収率;及びf)ウシ/マウス血清中でインキュベートした後の非変性IgGのELISA検出によるヒトIgG1のウシ血清安定性。
表5に示される、実施例5で合成した抗体又は抗体断片を、機能試験のため、トリシストロンFabディスプレイベクターpJPd1(図9)にクローニングした。20個のVHの、8個のVλ及び12個のVκとの組み合わせである主遺伝子の各々の組み合わせを含んだFabプールを作成し、表6に示される400個の組み合わせが得られた。
実施例6.1に記載されるとおり調製したファージ上清を使用して、ファージELISAにおいてFabファージ提示を順位付けした。ファージELISAにおいて、2つの異なる捕捉抗体を使用してFab断片の提示を評価した:
(1)主要コートタンパク質g8pを介したファージ粒子の捕捉用に、抗M13抗体(Amersham #27−9420−01)を使用した;従って、ファージ力価を決定することができる。
(2)抗Fd抗体(The Binding Site #PC075)を使用した。これは提示されたFabに結合する;従って、主遺伝子を含むファージを提示するFabのみが捕捉される。
Fab発現ベクターpJPx1(図10に示される)におけるVH/VLの組み合わせのプールにより形質転換したクローンを2YT/Cam/1%Gluc培地/ウェルに選び取ることにより、マスタープレート(MP)を接種した。これらのプレートを振盪しながら37℃で一晩インキュベートした。発現プレート(EP)は、MPの2.5μlの培養物で2YT/Cam/0.1%グルコース/ウェルに接種した。対照(表8を参照)は、グリセロールストックから接種した。これらのプレートを37℃で振盪しながら6時間インキュベートし、次にIPTGを添加することによりFab発現を誘導し、振盪しながら22℃で一晩インキュベートした。ホウ素/酸/EDTA/リゾチーム緩衝液をEPに添加することにより大腸菌(E.coli)細胞溶解物を作製し(振盪しながら22℃で1時間インキュベーション)、続いて細菌ライセートを12.5%MPBSTで、室温で振盪しながら少なくとも30分間ブロックした。発現プレートからの大腸菌(E.coli)ライセートを、0.5%MPBSで適切に希釈し、以下のアッセイで使用した。
実施例6.3のとおり発現プレートを作成した。発現プレートからの希釈した大腸菌(E.coli)ライセートを様々な温度で45分間インキュベートし、以下のアッセイで使用した。表9は、使用した非標識コーティング抗体及びAP標識検出抗体を示す。
実施例6.3のとおり発現プレートを作成した。Fabを含む大腸菌(E.coli)ライセートを希釈し、以下のステップを用いてウシ及びマウス血清中でインキュベートした:発現プレートからの大腸菌(E.coli)ライセートを50%血清に希釈し(全容積100μl)、1:1000 Camを添加することにより細菌の増殖を防止し、ライセートを2つの96ウェルプレートに分割し、及び両プレートとも凍結した。第1のプレートを解凍し、37℃で12〜13日間インキュベートした。第2のプレートは、ELISAの実施まで(37℃で0日間インキュベーション)、−80℃で保存した。
400個のIgG1生殖系列タンパク質対を生成するため、20個の可変領域重鎖遺伝子を、図13に示されるヒトIgG1発現ベクターpJP_hIgG1fにサブクローニングした。同時に、12個の可変領域κ遺伝子を、図14に示される哺乳動物κ軽鎖発現ベクターpJP_hIgκにサブクローニングし、及び8個の可変領域λ遺伝子を、図15に示される哺乳動物λ軽鎖発現ベクターpJP_hIgλ2にサブクローニングした。
コレクションに含めるVH/VL対の選択基準の一つは、IgG1フォーマットにおける400個の異なるVH/VL対の発現レベルである。ヒトIgG1フォーマットにおける各VH/VL対の発現レベルを、サンドイッチELISAにより評価した。従って、HEK.EBNA細胞にヒトIgG1フォーマットで400個全てのVH/VLの組み合わせをトランスフェクトし、小規模で発現させた。数日後、細胞培養上清を回収し、IgGレベルを評価した。
コレクションに含める可変重鎖と可変軽鎖との対の選択基準の一つは、IgG1フォーマットにおける400個の異なる可変重鎖と可変軽鎖との対の血清安定性である。各IgG抗体上清の血清安定性を、50%マウス血清中での14日間のインキュベーションと、続くマウス抗ヒトIgG(CH2)クローンR10Z8E9によるサンドイッチELISAにより評価した。ここでもヒトIgG1フォーマットにおける400個全てのVH/VLの組み合わせをHEK.EBNA細胞にトランスフェクトし、小規模で発現させた。数日後に細胞培養上清を回収し、上清中のIgGを血清安定性について試験した。
400個の生殖系列タンパク質対を以下の特性について試験した後:a)Fabフォーマットにおけるファージ産生及びファージELISA後の相対提示;b)大腸菌(E.coli)でのFab産生、大腸菌(E.coli)細胞溶解及び産生されたFabのELISA検出後の相対Fab発現収率;c)大腸菌(E.coli)でのFab産生、大腸菌(E.coli)細胞溶解及び高温でインキュベートした後の非変性FabのELISA検出後のFabの温度安定性;d)ウシ/マウス血清中でインキュベートした後の非変性FabのELISA検出による大腸菌(E.coli)ライセートからのFabのウシ/マウス血清安定性;e)哺乳動物細胞におけるIgG1産生及び細胞培養上清由来の分泌IgG1のELISA検出後の相対ヒトIgG1発現収率;及びf)ウシ/マウス血清中でインキュベートした後の非変性IgG1のELISA検出によるヒトIgG1のウシ血清安定性;その後、次のステップは、どのVH/VL生殖系列対をコレクションに組み込むかを選択することであった。各VH/VL生殖系列タンパク質対の機能試験の結果を表12に示す。
相対FAB提示、相対FAB発現及び相対IGG1発現について、値は対照と比較したときのレベルを示す。大きい数値ほど高いレベルを示す。
上記の試験した400個の生殖系列タンパク質対のうち(結果は表12に示される)、さらなる試験用に95個を選択した。前出の、提示、発現収率、熱安定性及び血清安定性についての400個の生殖系列タンパク質対の試験は、治療薬開発に好都合と思われる特性を有しない生殖系列タンパク質対を除去する予備的なフィルタリングとして機能した。目標は、好ましい開発可能特性を有すると同時に、コレクションを使用して任意の抗原に対する開発可能な候補を同定することができるようにコレクション内で高度な多様性を維持する生殖系列タンパク質対のサブ群を選択することであった。
さらなる試験用に選択された95個の生殖系列タンパク質対の各々を表すFab断片を、大腸菌(E.coli)で発現させ、精製した。大腸菌(E.coli)TG−1 F細胞におけるFab断片の発現は、0.1%グルコース及びクロラムフェニコールを補足した2xYT培地の500ml培養物において実施した。培養物を、OD600nmが0.5に達するまで振盪した。IPTG(イソプロピル−β−D−チオガラクトピラノシド)を添加して、さらに一晩培養することにより、Fab発現を誘導した。細胞を回収し、リゾチームを使用して破壊した。His6タグ付き(配列番号203)Fab断片をIMAC(Bio−Rad,Munich,Germany)により単離し、イミダゾールを使用して溶離した。PD10カラム(GE Healthcare,Munich,Germany)を使用して、1×ダルベッコPBS(pH7.2、Invitrogen,Darmstadt,Germany)との緩衝液交換を実施した。サンプルを無菌ろ過した(0.2μm)。
95個の生殖系列タンパク質対の各々を表す精製Fab断片のタンパク質濃度を、紫外分光測定法(Nanodrop,peqlab,Erlangen,Germany)により決定した。使用した吸光係数は1.538mL/mgであり、280nmの吸光度を計測した。結果は図16〜図18に示す。
95個の生殖系列タンパク質対の各々を表す精製Fab断片の熱安定性を、示差走査型蛍光定量法(DSF)により決定した。示差走査型蛍光定量法(DSF)は、目的のタンパク質の熱的なアンフォールディング(融点)を観察する蛍光色素ベースの技法である。アンフォールディングしたタンパク質の疎水性アミノ酸側鎖と相互作用する疎水性色素の蛍光の温度勾配に伴う変化が観察される。
95個の生殖系列タンパク質対の各々を表す精製Fab断片の単量体含量(%単量体)を、サイズ排除クロマトグラフィー(SEC)により決定した。SECは、AEKTA精製システム(GE Healthcare Europe GmbH,Freiburg,Germany)で実施した。分離には、Superdex75 HR 10/30カラム(GE Healthcare Europe GmbH,Freiburg,Germany)を使用した。各サンプルについて、10μlのタンパク質をカラムに負荷し、0.05ml/分の流量で分離を実施し、260及び280nmでの紫外吸収を記録、分析した。ランニング緩衝液は、Gibco D−PBS、pH7.4(Invitrogen,Paisley,USA)から構成された。結果は図16〜図18に示す。
さらなる試験用に選択された95個の生殖系列タンパク質対の各々を表すIgG1を、HKB11細胞で発現させた。真核生物HKB11細胞に、1:1の比のIgG重鎖及び軽鎖発現ベクターDNAをトランスフェクトした。トランスフェクション後3〜4日目に細胞培養上清を回収し、プロテインAアフィニティークロマトグラフィー(MabSelect SURE,GE Healthcare,Munich,Germany)に供した。1×ダルベッコPBS(pH7.2、Invitrogen,Darmstadt,Germany)で緩衝液交換を実施し、サンプルを無菌ろ過した(0.2μm孔径)。
95個の生殖系列タンパク質対の各々を表す精製IgG1のタンパク質濃度を、紫外分光測定法(Nanodrop,peqlab,Erlangen,Germany)により決定した。使用した吸光係数は1.369mL/mgであり、280nmの吸光度を計測した。結果は図16〜図18に示す。
精製IgG1のIgG1熱安定性を、方法9.1.2に記載されるとおり、示差走査型蛍光定量法(DSF)により決定した。各IgGについて示される値は、IgGの可変領域内で起こるアンフォールディングイベントを示す。Fc部分のアンフォールディングを表す値は、概して各ヒトIgG1について同じであるため、示さない。結果は図16〜図18に示す。
95個の生殖系列タンパク質対の各々を表す精製IgG1の単量体含量(%単量体)を、サイズ排除クロマトグラフィー(SEC)により決定した。HP−SECは、Wyatt miniDAWN Treos及びWyatt Optilab rEX(Wyatt Technology Europe,Dernbach,Germany)と組み合わせたDionex UltiMate 3000チタンHPLCシステム(Dionex Corporation,Germering,Germany)で実施した。分離には、Tosoh TSK−Gel G3000SWxlカラム(Tosoh Bioscience,Stuttgart,Germany)を使用した。各サンプルについて15μgのタンパク質をカラムに負荷し、分離を0.5ml/分の流量で実施し、280nmの紫外吸収を記録、分析した。ランニング緩衝液は、Gibco D−PBS、pH7.4(Invitrogen,Paisley,USA)から構成された。結果は図16〜図18に示す。
IgG1フォーマットにおける各生殖系列タンパク質対の等電点を計算した。タンパク質のpIの決定方法は、当業者に周知されている。例えば、以下のツールを使用することができる:http://www.expasy.org/tools/pi_tool.html;Vector NTI(Invitrogen,Carlsbad,California)。結果は図16〜図18に示す。
化学、製造及び品質管理(Chemistry,Manufacturing and Control:CMC)の下流処理加工(DSP)ではウイルス不活化ステップが標準的であるため、pHを降下させ、IgG1の各々についての凝集感度データを記録することにより、95個の生殖系列タンパク質対の酸に耐える能力を試験した。生殖系列タンパク質対の各々を96ディープウェルプレートフォーマットにおいて2mg/mLの濃度で供給した。各150μLを96ウェルプレートに移した。初期の特性決定は、吸収、動的光散乱(DLS)、示差走査型蛍光定量法(DSF)の計測及び粒子染色により実施した。1.8μLの1Mクエン酸塩、pH2.3を使用して、サンプルを酸性化した。2.5時間後、1Mトリス、pH9.0を使用して、サンプルを中和した。
さらなる試験用に選択された95個の生殖系列タンパク質対の各々を表すIgG1の酸への曝露前及び曝露後の熱安定性を評価するため、実施例9.1.2に記載されるとおり示差走査型蛍光定量法(DSF)を実施した。各IgGについて示される値は、IgGの可変領域内で起こるアンフォールディングイベントを示す。Fc部分のアンフォールディングを表す値は、概して各IgGについて同じであるため、示さない。酸への曝露前及び曝露後のTm(見かけの融点)値が等しい場合、抗体の分子構造が酸によって影響を受けなかったか、又は曝露後に効率的にリフォールディングすることが可能であったかのいずれかであった。結果は図19、図21、及び図23に示す。
凝集性のサンプルを同定するため、320nmで濁度を記録した。さらなる試験用に選択された95個の生殖系列タンパク質対の各々を表す酸への曝露前及び曝露後のIgG溶液の濁度を評価した。結果は図19、図21、及び図23に示す。ベースライン吸収は、透明な溶液について予想される0.035吸光単位(extincition units)であった。吸収の増加は光散乱によって引き起こされ、その結果、吸光が増加する。0.039を上回る値は、凝集物を含む可能性が高い。0.045を上回る値は、凝集物の明らかな存在を示す。0.06を上回る値は、極めて好ましくない安定性を有する分子に認められたクリティカルな凝集レベルに相当する。
加えて、選択された95個の生殖系列タンパク質対を表す各IgG1に対する動的光散乱(DLS)を実施した。動的光散乱(DLS)は、溶液中における粒子の流体力学半径を評価する分光法である。全てのDLS実験は、DynaPro Titanキュベットシステム(Wyatt Technology Europe,Dernbach,Germany)を使用して実施した。
可視凝集物の量及び形態を評価するため、選択された95個の生殖系列タンパク質対を表す各IgG1に対して酸への曝露前及び曝露後に粒子染色を実施した。以下の試薬を使用して、IgG調製物中の粒子をろ過及び染色した:Ultrafree−CL 0.22μm無菌フィルタ(Millipore,#UFC40GV0S);抗ヒトλ軽鎖、APコンジュゲート(Sigma #A−2904);APコンジュゲート用の発色剤、Fast BCIP/NBT(Sigma #B−5655);Roti(登録商標)−ImmunoBlock(Roth #T144.1);アルカリホスファターゼ停止液(Sigma #A5852−100ML);TBS:0.05Mトリス;0.15M NaCl;TBS、0.1%Tween 20含有;及び5M NaCl溶液。
処理加工においてろ過工程は避けることができないため、抗体又は抗体断片の剪断力(sheer forces)に耐える能力は、有用な基準である。従って、ディープウェルプレートにおいて550rpmのオービタルシェーカー上の96ウェルプレート内で加速させたガラスパールを使用して、IgG1フォーマットで95個の生殖系列タンパク質対を試験した。350μlの各IgGを、この処理に供した。各150μLを96ウェルプレートに移した。初期の特性決定は、吸収、動的光散乱(DLS)、示差走査型蛍光定量法(DSF)の計測及び粒子染色により実施した。
凝集性のサンプルを同定するため、320nmで濁度を記録した。さらなる試験用に選択された95個の生殖系列タンパク質対の各々を表すIgG溶液の濁度を、ストレス曝露前及び曝露後に評価した。結果は、図49、図51及び図53に示す。ベースライン吸収は、透明な溶液について予想される0.035吸光単位(extincition units)であった。吸収の増加は光散乱によって引き起こされ、その結果、吸光が増加する。0.039を上回る値は、凝集物を含む可能性が高い。0.045を上回る値は、凝集物の明らかな存在を示す。0.06を上回る値は、極めて好ましくない安定性を有する分子に認められたクリティカルな凝集レベルについて認められた。
さらなる試験用に選択された95個の生殖系列タンパク質対の各々を表すIgG1の酸への曝露前及び曝露後の熱安定性を評価するため、実施例9.1.2に記載されるとおり、示差走査型蛍光定量法(DSF)を実施した。各IgGについて示される値は、IgGの可変領域内で起こるアンフォールディングイベントを表す。Fc部分のアンフォールディングを表す値は、概して各ヒトIgG1について同じであるため、示さない。結果は、図50、図52及び図54に示す。
加えて、選択された95個の生殖系列タンパク質対を表す各IgG1に対する動的光散乱(DLS)を実施した。動的光散乱(DLS)は、溶液中における粒子の流体力学半径を評価する分光法である。全てのDLS実験は、DynaPro Titanキュベットシステム(Wyatt Technology Europe,Dernbach,Germany)を使用して実施した。
可視凝集物の量及び形態を評価するため、選択された95個の生殖系列タンパク質対を表す各IgG1に対してストレス曝露前及び曝露後に粒子染色を実施した。以下の試薬を使用して、IgG調製物中の粒子をろ過及び染色した:Ultrafree−CL 0.22μm無菌フィルタ(Millipore,#UFC40GV0S);抗ヒトλ軽鎖、APコンジュゲート(Sigma #A−2904);APコンジュゲート用の発色剤、Fast BCIP/NBT(Sigma #B−5655);Roti(登録商標)−ImmunoBlock(Roth #T144.1);アルカリホスファターゼ停止液(Sigma #A5852−100ML);TBS:0.05Mトリス;0.15M NaCl;TBS、0.1%Tween 20含有;及び5M NaCl溶液。
酸への曝露及びガラスビーズによる撹拌の双方のストレス試験結果の評価を補助するため、生殖系列タンパク質対を比較できるようなスコアリングシステムを作成した。実施例9.2.5(a〜d)(結果は図19〜図24に示す)及び実施例9.2.6(a〜d)(結果は図49〜図54に示す)で得られた各データ点に0〜100の範囲のスコア(0、25、75又は100)を付け、それらのスコアを足し合わせて累積スコアを求めた。実施例9.2.5(a)及び実施例9.2.6(b)で特定された熱安定性の値には、スコアを付けなかった。
要約すれば、実施例4に記載されるとおり、400個の生殖系列タンパク質対が選択された。これらの400個は、ヒト免疫レパートリーに存在する生殖系列タンパク質対の多様性を表すものである。400個の生殖系列タンパク質対を、実施例6〜7に記載されるとおり試験した。400個のうち95個を、実施例9に記載されるとおりさらに試験した。
コレクション設計の有効性を確認するため、それぞれが一つの生殖系列タンパク質対を含むサブコレクション又はサブコレクションのプールを作成し、抗原に対して選択した。次に選択された抗体を、Fab及びIgG1の両フォーマットで、開発可能特性、例えば、Fabフォーマットにおける熱安定性、IgG1フォーマットにおけるpI、Fab及びIgG1の両フォーマットにおける発現収率、IgG1フォーマットにおける熱安定性、及びSECにより決定するときのIgG1フォーマットにおける%単量体について試験した。加えて、ある場合には、Fabフォーマットでの抗原に対する親和性を決定した。
生殖系列タンパク質対を含むサブコレクションは、以下のとおり合成した:図25〜図33に示されるそれぞれの生殖系列タンパク質配列のFR1−CDR1−FR2−CDR2−FR3領域を、GeneArt(Regensburg,Germany)により合成した。pJPd1ディスプレイベクターに、NheI及びSalIを用いてVHを、及びNdeI及びAcc65Iを用いてVLをクローニングした。定常FR4領域を含むCDR−H3カセットを、BssHII及びXhoIを用いて挿入し、理論上の多様性を5.5×105〜1.9×1019の範囲とした。6〜17アミノ酸のCDR−H3長さのCDR−H3カセットをSloning(Martinsried,Germany)により合成した。CDR−L3多様性は、ELLA Biotech(Martinsried,Germany)により合成したκ又はλのいずれかのTRIMカセットを導入することにより実現し、理論上の多様性を4.6×106〜2.5×109の範囲とした。
(1)抗M13抗体(Amersham #27−9420−01)を使用した。これは主要コートタンパク質g8pによりファージ粒子を捕捉する;従って、ファージ力価を決定することができる。
(2)抗Fd抗体(The Binding Site #PC075)を使用した。これは提示されたFabに結合する;従って、Fabを提示するファージのみが捕捉される。
個別のサブコレクション又はサブコレクションのプールによる並行パニング戦略を実施することにより、所望の生物物理学的特性を有する多様な結合抗体を同定する可能性を最大化した。ヒトDickkopf−3(DKK3)(遺伝子番号27122)、組換えヒト(rh)ErbB4/Her4(遺伝子番号2066)_Fc融合物タンパク質、rhFZD−4(遺伝子番号8322)Fc融合物及びeGFP(高感度緑色蛍光タンパク質;配列は上記に提供)を、コレクションの妥当性検証用のモデル抗原として選択した。以下に記載される磁気Dynabeads(登録商標)(Dynal/Invitrogen 製品番号140.11)と共有結合したそれぞれの抗原によるM−450エポキシビーズベース溶液パニングにおいて、コレクションスクリーニングを実施した。
DKK3及び対照BSAでコーティングしたカルボキシルビーズ(Dynal)を、室温(RT)においてMPBSTでブロックした後、予め吸収させたファージと共にインキュベートした。数回の洗浄ステップの後、結合したファージを溶離し、次の選択ラウンドのため、TG1F+細胞を感染させることにより増幅した。選択を3ラウンド行った後、pJPd1(図9に示される)ファージミドDNAを単離し、Fabコード断片(修飾ompA−VL及び修飾phoA−Fd)をXbaI及びEcoRIによる制限消化により切り出し、発現ベクターpJPx1(図10に示される)にライゲートして、大腸菌(E.coli)TG1 F−に形質転換した。次に感染培養物を大型LB/Cam/Glucプレートに播き、一晩成長させた。シングルクローンを単離し、Fab発現収率及び抗原結合性についてELISAにより試験した。ヒツジ抗ヒトFd(The Binding Site カタログPC075)でコーティングしたELISAプレートでFabを含む細胞抽出物をインキュベートし、続いて、アルカリホスファターゼ(AP)(Jackson カタログ109−055−097)とコンジュゲートしたヤギ抗ヒトIgG F(ab’)2断片特異的抗体を用いて検出することにより、Fab発現を検出した。ビーズベースアッセイ(Applied Biosystems 8200細胞検出システム/PE Biosystems)用の蛍光定量的なマイクロボリュームアッセイ技術(FMAT(登録商標))によってDKK3結合カルボキシルビーズ及びBSA結合カルボキシルビーズ(Dynal)でFabを含む細胞抽出物をスクリーニングすることにより、抗原特異性を試験した。一次ヒットは、200の値に設定されたバックグラウンドを少なくとも5倍上回るFMAT平均蛍光シグナルをもたらすFabとして定義した。DKK3に対する特異性は、同種抗原としてのDKK3及び陰性対照抗原としてのCD38_Fcを用いた二次ELISAで確認した。VH3−23/VK1−39、VH3−23/VL3−1及びHuCAL Platinum(登録商標)VH3−23/κサブライブラリについての63個、43個及び44個のクローンの重鎖及び軽鎖CDR3領域を配列決定用に選ぶことにより、DKK3結合抗体の配列多様性を推定した。選択した結合体のCDR−H3及びCDR−L3の配列は、図86に示される。VH3−23/VK1−39、VH3−23/VL3−1及びHuCAL−Pt VH3−23/κサブライブラリについて、合計で、それぞれ56個の成功した配列のうち31個(55%)、35個の配列のうち20個(47%)及び44個の配列のうち17個(39%)が異なったことから、構築されたライブラリがDKK3結合体の多様なレパートリーを含んだことが示された。結果は表14に示す。
rhErbB4/Her4_Fc融合物、rhFZD−4 Fc融合物又はeGFP及び対照BSAエポキシM450ビーズ(Dynal)を、室温(RT)で2時間、Chemiblockerによりブロックした後、予め吸収させたファージと共に室温で2時間インキュベートした。数回の洗浄ステップの後、結合したファージを溶離し、次の選択ラウンドのため、TG1F+細胞を感染させることにより増幅した。選択を3ラウンド行った後、pJPd1(図9に示される)ファージミドDNAを単離し、Fabコード断片(修飾ompA−VL及び修飾phoA−Fd)をPCRにより増幅し、精製し、XbaI及びEcoRIで消化して発現ベクターpJPx1(図10に示される)にライゲートし、大腸菌(E.coli)TG1 F−に形質転換した。次に感染培養物を大型LB/Cam/Glucプレートに播き、一晩成長させた。シングルクローンを単離し、Fab発現収率及び抗原結合性についてELISAにより試験した。ヒツジ抗ヒトFd(The Binding Site カタログPC075)でコーティングしたELISAプレートでFabを含む細胞抽出物をインキュベートし、続いて、アルカリホスファターゼ(AP)(Jackson カタログ109−055−097)とコンジュゲートしたヤギ抗ヒトIgG F(ab’)2断片特異的抗体を用いて検出することにより、Fab発現を検出した。MaxiSorpプレートに直接コーティングしたrhErbB4/Her4_Fc抗原、rhFZD−4_Fc抗原又はeGFPでのFabを含む細胞抽出物によるELISAスクリーニングにより、抗原特異性を試験した。バックグラウンドを少なくとも5倍上回るELISAシグナルをもたらすFabとして一次ヒットを定義した。結果は図61A〜図61Dに示す。
MaxiSorpプレート(Nunc)上のヤギ抗ヒトIgG Fc特異的(Jackson;カタログ109−005−098)又はマウス抗ヒトIgG Fc特異的(Jackson;カタログ209−005−098)を用いて捕捉することにより固定化したヒトErbB4/Her4組換えFcタグ付きタンパク質を用いて、3ラウンドの固相Fc捕捉パニングを実施した。各選択ラウンドの前に、ファージを0.1mg/mlのMPBST/BSA中ヒト、ヤギ及びマウス免疫グロブリンでブロックした。数回の洗浄ステップの後、結合したファージを溶離し、次の選択ラウンドのため、TG1F+細胞を感染させることにより増幅した。3回目の選択ラウンドの後、pJPd1(図9に示される)ファージミドDNAを単離し、Fabコード断片(修飾ompA−VL及び修飾phoA−Fd)をXbaI及びEcoRIによる制限消化により切り出し(exise)、発現ベクターpJPx1(図10に示される)にライゲートしてTG1F−に形質転換した。次に感染培養物を大型LB/Cam/Glucプレートに播き、一晩成長させた。シングルクローンを単離し、Fab発現収率及び抗原結合性についてELISAにより試験した。ヒツジ抗ヒトFd(The Binding Site カタログPC075)でコーティングしたELISAプレートでFabを含む細胞抽出物をインキュベートし、続いて、アルカリホスファターゼ(AP)(Jackson カタログ109 055 097)とコンジュゲートしたヤギ抗ヒトIgG F(ab’)2断片特異的抗体によって検出することにより、Fab発現を検出した。抗原特異性を、MaxiSorpプレートにコーティングしたヤギ抗ヒトIgG抗体(Jackson;カタログ109−005−098)により捕捉されたErbB4/Her4_Fc抗原でのFabを含む細胞抽出物によるELISAスクリーニングによって試験した。一次ヒットは、バックグラウンドを少なくとも5倍上回るELISAシグナルをもたらすFabとして定義した。ErbB4/Her4_Fcに対する特異性を、同種抗原としてErbB4/Her4_Fc及び陰性対照抗原としてCD38_Fcを用いた二次Fc捕捉ELISAで確認した。
単量体Fab画分の結合(分析的SECにより分析;Superdex75,Amersham Pharmacia)による抗原の捕捉を、以下のとおり分析した:CM5チップ(Biacore/GE Healthcare)上で、適切な抗抗原タグ捕捉抗体を、EDC/NHSケミストリーを用いて共有結合的に固定化した。抗原を捕捉し、続いて6つの異なるFab濃度(2n段階希釈)を注入することにより、動態計測を行った。サイクルが終わるごとに、センサーチップは再生した。二重参照のため、ランニング緩衝液のブランク注入を用いた。全てのセンサグラムは、BIA評価ソフトウェア3.2(Biacore/GE Healthcare)を用いてフィッティングすることによりkon及びkoff速度定数を決定し、これを用いてKDを計算した。
開発可能特性、例えば、Fabフォーマットにおける熱安定性、Fabフォーマットにおける親和性、IgG1フォーマットにおけるpI、Fab及びIgGの両フォーマットにおける発現収率、IgG1フォーマットにおける熱安定性、及びSECにより決定するときのIgG1フォーマットにおける%単量体について、抗原に特異的な抗体又は断片をFab及びIgG1の両フォーマットで試験した。IgG1フォーマットにおける血清安定性は、実施例7.2に記載されるとおり試験した。Fab及びIgG1フォーマットにおける熱安定性試験は、実施例9.1.2及び9.2.2に記載されるとおり完了した。IgG1フォーマットにおけるpIは、実施例9.2.4に記載されるとおり完了した。IgG1フォーマットにおける発現収率は、実施例9.2.1に記載されるとおり完了した。SECにより決定するときのIgG1フォーマットにおける%単量体は、実施例9.2.3に記載されるとおり完了した。結果は、図37〜図39、図45〜図48及び図62に示す。
Claims (25)
- 合成抗体又はその機能断片のコレクションにおいて、前記抗体又は機能断片が可変重鎖と可変軽鎖との対を含み、前記可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域が、可変重鎖と可変軽鎖との対VH1−18(配列番号204)/VK1−39(配列番号236);VH1−18(配列番号204)/VK3−15(配列番号238);VH1−18(配列番号204)/VK3−20(配列番号239);VH1−46(配列番号205)/VK3−15(配列番号238);VH1−46(配列番号205)/VL1−51(配列番号252);VH1−46(配列番号205)/VL3−21(配列番号257);VH1−69*01(配列番号206)/VL1−51(配列番号252);VH3−07(配列番号207)/VK1−12(配列番号233);VH3−07(配列番号207)/VK1−16(配列番号234);VH3−07(配列番号207)/VK1−27(配列番号235);VH3−07(配列番号207)/VK1−39(配列番号236);VH3−07(配列番号207)/VK3−15(配列番号238);VH3−07(配列番号207)/VL1−47(配列番号251);VH3−07(配列番号207)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VK1−05(配列番号230);VH3−11(配列番号208)/VK1−39(配列番号236);VH3−11(配列番号208)/VK3−15(配列番号238);VH3−11(配列番号208)/VL1−40(配列番号250);VH3−11(配列番号208)/VL1−47(配列番号251);VH3−11(配列番号208)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VL2−23(配列番号255);VH3−15(配列番号209)/VK1−05(配列番号230);VH3−15(配列番号209)/VK1−06(配列番号231);VH3−15(配列番号209)/VK1−12(配列番号233);VH3−15(配列番号209)/VK1−16(配列番号234);VH3−15(配列番号209)/VK1−27(配列番号235);VH3−15(配列番号209)/VK3−11(配列番号237);VH3−15(配列番号209)/VL1−40(配列番号250);VH3−15(配列番号209)/VL1−47(配列番号251);VH3−15(配列番号209)/VL1−51(配列番号252);VH3−15(配列番号209)/VL2−14(配列番号254);VH3−21(配列番号210)/VK1−12(配列番号233);VH3−21(配列番号210)/VK1−27(配列番号235);VH3−21(配列番号210)/VL2−11(配列番号253);VH3−23(配列番号211)/VK1−39(配列番号236);VH3−23(配列番号211)/VK3−15(配列番号238);VH3−23(配列番号211)/VL2−23(配列番号255);VH3−23(配列番号211)/VL3−1(配列番号256);VH3−30(配列番号212)/VK3−20(配列番号239);VH3−53(配列番号213)/VK3−15(配列番号238);VH3−53(配列番号213)/VL2−11(配列番号253);VH3−74(配列番号214)/VK1−05(配列番号230);VH3−74(配列番号214)/VK1−06(配列番号231);VH3−74(配列番号214)/VK1−12(配列番号233);VH3−74(配列番号214)/VK1−27(配列番号235);VH3−74(配列番号214)/VK3−20(配列番号239);VH3−74(配列番号214)/VL1−51(配列番号252);VH5−51(配列番号215)/VK1−39(配列番号236);VH5−51(配列番号215)/VL1−40(配列番号250);VH5−51(配列番号215)/VL1−51(配列番号252);VH6−1(配列番号216)/VK1−09(配列番号232);VH6−1(配列番号216)/VK3−15(配列番号238);VH6−1(配列番号216)/VK3−20(配列番号239)及びVH6−1(配列番号216)/VL1−51(配列番号252)の20個以上から選択される生殖系列タンパク質配列を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1に記載の合成抗体又はその断片のコレクションにおいて、前記可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域が、前記可変重鎖と可変軽鎖との対VH1−18(配列番号204)/VK1−39(配列番号236);VH1−18(配列番号204)/VK3−15(配列番号238);VH1−18(配列番号204)/VK3−20(配列番号239);VH1−46(配列番号205)/VK3−15(配列番号238);VH1−46(配列番号205)/VL1−51(配列番号252);VH1−46(配列番号205)/VL3−21(配列番号257);VH1−69*01(配列番号206)/VL1−51(配列番号252);VH3−07(配列番号207)/VK1−12(配列番号233);VH3−07(配列番号207)/VK1−16(配列番号234);VH3−07(配列番号207)/VK1−27(配列番号235);VH3−07(配列番号207)/VK1−39(配列番号236);VH3−07(配列番号207)/VK3−15(配列番号238);VH3−07(配列番号207)/VL1−47(配列番号251);VH3−07(配列番号207)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VK1−05(配列番号230);VH3−11(配列番号208)/VK1−39(配列番号236);VH3−11(配列番号208)/VK3−15(配列番号238);VH3−11(配列番号208)/VL1−40(配列番号250);VH3−11(配列番号208)/VL1−47(配列番号251);VH3−11(配列番号208)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VL2−23(配列番号255);VH3−15(配列番号209)/VK1−05(配列番号230);VH3−15(配列番号209)/VK1−06(配列番号231);VH3−15(配列番号209)/VK1−12(配列番号233);VH3−15(配列番号209)/VK1−16(配列番号234);VH3−15(配列番号209)/VK1−27(配列番号235);VH3−15(配列番号209)/VK3−11(配列番号237);VH3−15(配列番号209)/VL1−40(配列番号250);VH3−15(配列番号209)/VL1−47(配列番号251);VH3−15(配列番号209)/VL1−51(配列番号252);VH3−15(配列番号209)/VL2−14(配列番号254);VH3−21(配列番号210)/VK1−12(配列番号233);VH3−21(配列番号210)/VK1−27(配列番号235);VH3−21(配列番号210)/VL2−11(配列番号253);VH3−23(配列番号211)/VK1−39(配列番号236);VH3−23(配列番号211)/VK3−15(配列番号238);VH3−23(配列番号211)/VL2−23(配列番号255);VH3−23(配列番号211)/VL3−1(配列番号256);VH3−30(配列番号212)/VK3−20(配列番号239);VH3−53(配列番号213)/VK3−15(配列番号238);VH3−53(配列番号213)/VL2−11(配列番号253);VH3−74(配列番号214)/VK1−05(配列番号230);VH3−74(配列番号214)/VK1−06(配列番号231);VH3−74(配列番号214)/VK1−12(配列番号233);VH3−74(配列番号214)/VK1−27(配列番号235);VH3−74(配列番号214)/VK3−20(配列番号239);VH3−74(配列番号214)/VL1−51(配列番号252);VH5−51(配列番号215)/VK1−39(配列番号236);VH5−51(配列番号215)/VL1−40(配列番号250);VH5−51(配列番号215)/VL1−51(配列番号252);VH6−1(配列番号216)/VK1−09(配列番号232);VH6−1(配列番号216)/VK3−15(配列番号238);VH6−1(配列番号216)/VK3−20(配列番号239)及びVH6−1(配列番号216)/VL1−51(配列番号252)の25個以上から選択される生殖系列タンパク質配列を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1又は2に記載の合成抗体又はその機能断片のコレクションにおいて、前記可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域が、前記可変重鎖と可変軽鎖との対VH1−18(配列番号204)/VK1−39(配列番号236);VH1−18(配列番号204)/VK3−15(配列番号238);VH1−18(配列番号204)/VK3−20(配列番号239);VH1−46(配列番号205)/VK3−15(配列番号238);VH1−46(配列番号205)/VL1−51(配列番号252);VH1−46(配列番号205)/VL3−21(配列番号257);VH1−69*01(配列番号206)/VL1−51(配列番号252);VH3−07(配列番号207)/VK1−12(配列番号233);VH3−07(配列番号207)/VK1−16(配列番号234);VH3−07(配列番号207)/VK1−27(配列番号235);VH3−07(配列番号207)/VK1−39(配列番号236);VH3−07(配列番号207)/VK3−15(配列番号238);VH3−07(配列番号207)/VL1−47(配列番号251);VH3−07(配列番号207)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VK1−05(配列番号230);VH3−11(配列番号208)/VK1−39(配列番号236);VH3−11(配列番号208)/VK3−15(配列番号238);VH3−11(配列番号208)/VL1−40(配列番号250);VH3−11(配列番号208)/VL1−47(配列番号251);VH3−11(配列番号208)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VL2−23(配列番号255);VH3−15(配列番号209)/VK1−05(配列番号230);VH3−15(配列番号209)/VK1−06(配列番号231);VH3−15(配列番号209)/VK1−12(配列番号233);VH3−15(配列番号209)/VK1−16(配列番号234);VH3−15(配列番号209)/VK1−27(配列番号235);VH3−15(配列番号209)/VK3−11(配列番号237);VH3−15(配列番号209)/VL1−40(配列番号250);VH3−15(配列番号209)/VL1−47(配列番号251);VH3−15(配列番号209)/VL1−51(配列番号252);VH3−15(配列番号209)/VL2−14(配列番号254);VH3−21(配列番号210)/VK1−12(配列番号233);VH3−21(配列番号210)/VK1−27(配列番号235);VH3−21(配列番号210)/VL2−11(配列番号253);VH3−23(配列番号211)/VK1−39(配列番号236);VH3−23(配列番号211)/VK3−15(配列番号238);VH3−23(配列番号211)/VL2−23(配列番号255);VH3−23(配列番号211)/VL3−1(配列番号256);VH3−30(配列番号212)/VK3−20(配列番号239);VH3−53(配列番号213)/VK3−15(配列番号238);VH3−53(配列番号213)/VL2−11(配列番号253);VH3−74(配列番号214)/VK1−05(配列番号230);VH3−74(配列番号214)/VK1−06(配列番号231);VH3−74(配列番号214)/VK1−12(配列番号233);VH3−74(配列番号214)/VK1−27(配列番号235);VH3−74(配列番号214)/VK3−20(配列番号239);VH3−74(配列番号214)/VL1−51(配列番号252);VH5−51(配列番号215)/VK1−39(配列番号236);VH5−51(配列番号215)/VL1−40(配列番号250);VH5−51(配列番号215)/VL1−51(配列番号252);VH6−1(配列番号216)/VK1−09(配列番号232);VH6−1(配列番号216)/VK3−15(配列番号238);VH6−1(配列番号216)/VK3−20(配列番号239)及びVH6−1(配列番号216)/VL1−51(配列番号252)の30個以上から選択される生殖系列タンパク質配列を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至3の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体又は機能断片が、生殖系列タンパク質対の生殖系列タンパク質配列を含む可変重鎖及び可変軽鎖フレームワーク領域を含み、前記生殖系列タンパク質対が、以下の特性:
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも98%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;及び
vi)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)
を含むことを特徴とするコレクション。 - 請求項1乃至4のいずれか1項に記載のコレクションにおいて、前記可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域が、前記可変重鎖と可変軽鎖との対VH1−18(配列番号204)/VK3−20(配列番号239);VH1−46(配列番号205)/VK3−15(配列番号238);VH1−46(配列番号205)/VL1−51(配列番号252);VH1−69*01(配列番号206)/VL1−51(配列番号252);VH3−07(配列番号207)/VK1−12(配列番号233);VH3−07(配列番号207)/VK1−27(配列番号235);VH3−07(配列番号207)/VK3−15(配列番号238);VH3−07(配列番号207)/VL1−47(配列番号251);VH3−07(配列番号207)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VL1−40(配列番号250);VH3−11(配列番号208)/VL1−47(配列番号251);VH3−11(配列番号208)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VL2−23(配列番号255);VH3−15(配列番号209)/VK1−05(配列番号230);VH3−15(配列番号209)/VK1−06(配列番号231);VH3−15(配列番号209)/VK1−12(配列番号233);VH3−15(配列番号209)/VK1−27(配列番号235);VH3−15(配列番号209)/VK3−11(配列番号237);VH3−15(配列番号209)/VL1−51(配列番号252);VH3−21(配列番号210)/VK1−12(配列番号233);VH3−23(配列番号211)/VK1−39(配列番号236);VH3−23(配列番号211)/VK3−15(配列番号238);VH3−23(配列番号211)/VL2−23(配列番号255);VH3−23(配列番号211)/VL3−1(配列番号256);VH3−53(配列番号213)/VK3−15(配列番号238);VH3−53(配列番号213)/VL2−11(配列番号253);VH3−74(配列番号214)/VK1−05(配列番号230);VH3−74(配列番号214)/VK1−06(配列番号231);VH3−74(配列番号214)/VK1−12(配列番号233);VH3−74(配列番号214)/VK3−20(配列番号239);VH5−51(配列番号215)/VK1−39(配列番号236);VH5−51(配列番号215)/VL1−40(配列番号250);VH5−51(配列番号215)/VL1−51(配列番号252);VH6−1(配列番号216)/VK1−09(配列番号232);VH6−1(配列番号216)/VK3−20(配列番号239)及びVH6−1(配列番号216)/VL1−51(配列番号252)の生殖系列タンパク質配列を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至4のいずれか1項に記載の合成抗体又はその機能断片のコレクションにおいて、前記可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域が、可変重鎖と可変軽鎖との対VH1−18(配列番号204)/VK3−20(配列番号239);VH1−46(配列番号205)/VK3−15(配列番号238);VH1−46(配列番号205)/VL1−51(配列番号252);VH1−69*01(配列番号206)/VL1−51(配列番号252);VH3−07(配列番号207)/VK1−12(配列番号233);VH3−07(配列番号207)/VK1−27(配列番号235);VH3−07(配列番号207)/VK3−15(配列番号238);VH3−07(配列番号207)/VL1−47(配列番号251);VH3−07(配列番号207)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VL1−40(配列番号250);VH3−11(配列番号208)/VL1−47(配列番号251);VH3−11(配列番号208)/VL1−51(配列番号252);VH3−11(配列番号208)/VL2−23(配列番号255);VH3−15(配列番号209)/VK1−05(配列番号230);VH3−15(配列番号209)/VK1−06(配列番号231);VH3−15(配列番号209)/VK1−12(配列番号233);VH3−15(配列番号209)/VK1−27(配列番号235);VH3−15(配列番号209)/VK3−11(配列番号237);VH3−15(配列番号209)/VL1−51(配列番号252);VH3−21(配列番号210)/VK1−12(配列番号233);VH3−23(配列番号211)/VK3−15(配列番号238);VH3−53(配列番号213)/VK3−15(配列番号238);VH3−53(配列番号213)/VL2−11(配列番号253);VH3−74(配列番号214)/VK1−05(配列番号230);VH3−74(配列番号214)/VK1−06(配列番号231);VH3−74(配列番号214)/VK1−12(配列番号233);VH3−74(配列番号214)/VK3−20(配列番号239);VH5−51(配列番号215)/VK1−39(配列番号236);VH5−51(配列番号215)/VL1−40(配列番号250);VH5−51(配列番号215)/VL1−51(配列番号252);VH6−1(配列番号216)/VK1−09(配列番号232);VH6−1(配列番号216)/VK3−20(配列番号239)及びVH6−1(配列番号216)/VL1−51(配列番号252)の生殖系列タンパク質配列を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項6に記載のコレクションにおいて、前記抗体又は機能断片が、生殖系列タンパク質対の生殖系列タンパク質配列を含む可変重鎖及び可変軽鎖フレームワーク領域を含み、前記生殖系列タンパク質対が、以下の特性:
i)少なくとも2.5mg/LのFabフォーマットにおける発現収率;
ii)Fabフォーマットにおける70℃以上での熱安定性;
iii)SECにより決定するとき少なくとも99%のFabフォーマットにおける単量体含量(%単量体);
iv)少なくとも30mg/LのIgG1フォーマットにおける発現収率;
v)IgG1フォーマットにおける73℃以上での熱安定性;
vi)SECにより決定するとき少なくとも99%のIgG1フォーマットにおける単量体含量(%単量体)、及び
vii)少なくとも8.3のIgG1フォーマットにおける等電点
を含むことを特徴とするコレクション。 - 請求項7に記載のコレクションにおいて、前記可変重鎖と可変軽鎖との対のフレームワーク領域が、可変重鎖と可変軽鎖との対VH3−23(配列番号211)/VK1−39(配列番号236);VH3−23(配列番号211)/VL2−23(配列番号255);及びVH3−23(配列番号211)/VL3−1(配列番号256)からさらに選択される生殖系列タンパク質配列を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至8の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、前記それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含む1つ以上の相補性決定領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至9の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、前記それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含むCDR1領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至10の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、前記それぞれの可変重鎖と可変軽鎖との対由来の生殖系列タンパク質配列を含むCDR2領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至11の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、潜在的な翻訳後修飾部位を取り除くアミノ酸修飾を含む1つ以上の相補性決定領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項12に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、配列番号266〜278に示されるそれぞれの可変重鎖の相補性決定領域配列を含む1つ以上の重鎖相補性決定領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項13に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、配列番号266〜278に示されるそれぞれのHCDR1領域由来のHCDR1領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項13又は14に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、配列番号266〜278に示されるそれぞれのHCDR2領域由来のHCDR2領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至15の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、JH4(配列番号293)、Jκ1(配列番号297)、及びJλ2/3(配列番号301)からなる群から選択されるFR4領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至16の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、多様化されたHCDR3領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至17の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体又はその機能断片が、多様化されたLCDR3領域を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至18の何れか1項に記載のコレクションにおいて、少なくとも1×104個の抗体又はその機能断片を含むことを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至19の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体が、ヒトIgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA、IgE、IgM及びIgDからなる群から選択されることを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至20の何れか1項に記載のコレクションにおいて、前記抗体の前記機能断片が、Fab、F(ab’)2、Fab’、Fv、及びscFvからなる群から選択されることを特徴とするコレクション。
- 請求項1乃至21の何れか1項に記載の抗体又はその機能断片のコレクションをコードすることを特徴とする核酸のコレクション。
- 請求項22に記載の核酸のコレクションを含むことを特徴とするベクター。
- 請求項22に記載の核酸又は請求項23に記載のベクターを含むことを特徴とする組換え宿主細胞。
- 抗原に特異的な抗体又は抗体断片の同定方法において、
(a)前記抗原を、請求項1−21の何れか1項に記載の抗体又はその機能断片のコレクションと接触させるステップ、及び
(b)前記抗原に結合する1つ以上の抗体又は抗体断片を選択するステップ
を含むことを特徴とする方法。
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