JP6234980B2 - 法医学的ｄｎａの定量化のための改善された方法 - Google Patents

Description

［政府からの助成金］
米国政府は、本発明における一括払いライセンスを有しており、米国司法省、司法プログラム局、国立司法研究所によって授与された（交付番号：ＮＩＪ ２００８−ＤＮ−ＢＸ−Ｋ００９）の条件により与えられるような適切な条件で他にライセンスを与えるために特許権者を必要とする限られた状況における権利を有している。
［関連出願］

本出願は、セルデン（Ｓｅｌｄｅｎ）らによって「法医学的ＤＮＡの定量のための改善された方法（Ｉｍｐｒｏｖｅｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ Ｆｏｒｅｎｓｉｃ ＤＮＡ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎ）」と題されて２００９年６月１５日に出願された米国特許仮出願番号第６１／２６８，７７０号（参考文献として本明細書に援用される）の権益を主張する。

本明細書に記載されるものは、核酸定量化のための進歩性のある方法およびデバイスであり、特に、核酸定量化のためのマイクロ流体方法およびデバイスである。

核酸定量化は、幅広い種類の分析およびアプリケーションにおいて重要または望ましいステップである。例えば、核酸定量化は、人間（ヒト）の法鑑定における重要なステップである。例えば、ＤＮＡの短鎖縦列反復配列（ＳＴＲ）解析は、多くの場合、多重化ＰＣＲ分析上に基づき、このような分析は、一般に、試料ＤＮＡ濃度の厳密に規定された範囲内において最も確実である。分析において試料ＤＮＡが用いられなさ過ぎると、対立遺伝子のピーク高さのインバランスと対立遺伝子のドロップアウトとを含むアーティファクトが生じる場合がある。試料ＤＮＡがあまりに用いられ過ぎると、増大したスタッター（ｓｔｕｔｔｅｒ）、非特異性のバンド生成、不完全な非鋳型添加、および不完全な色分解に起因するプルアップピークを含むアーティファクトが生じる場合がある。これらのアーティファクトは、ＳＴＲプロファイルの解釈の問題に結びつく場合があるが、試料ＤＮＡの適正量を用いることにより緩和することができる。別の例において、法医学的ケースワーク試料は、試料におけるＤＮＡ全体の一因となる（但し、存在する場合）人類以外の哺乳類、バクテリア、または菌のＤＮＡにより汚染されるポテンシャルを有する。したがって、犯罪現場試料の鑑定に対して、ＤＮＡ諮問委員会は、全体のＤＮＡ定量化よりむしろ、ヒトの特定の定量化の利用をＦＢＩに勧める。これは、バクテリア、菌、または他の人類以外のＤＮＡが試料に存在するとしてもヒトのＤＮＡの適正量が増幅されることを保証することができる。

本明細書に記載されるものは、核酸定量化のための進歩性のある方法およびデバイスであり、特に、核酸定量化のためのマイクロ流体方法およびデバイスである。

１つの態様において、標的核酸を含むまたは含むと推測される試料流体において標的核酸を定量化する方法が提供される。該方法は、マイクロ流体チャネルにおいて、試料流体とシグナリング部分を含む結合剤とを組み合わせるステップであって、結合剤は、試験液を形成するために標的核酸に対して固定化されるステップと、マイクロ流体チャネルにおける検出領域に試験液を配置するステップと、シグナリング部分を検出するステップと、試料流体と結合剤とを組み合わせてから１時間以内に試料流体における標的核酸を定量化するステップとを備える。

別の態様において、標的核酸を含むまたは含むと推測される試料流体において標的核酸を定量化する方法が提供される。該方法は、マイクロ流体チャネルにおいて、試料流体とシグナリング部分を含む結合剤とを組み合わせるステップであって、結合剤は、試験液を形成するために標的核酸に対して固定化されるステップと、マイクロ流体チャネルにおける検出領域に試験液を配置するステップと、シグナリング部分を検出するステップと、試料流体における標的核酸を定量化するステップとを備え、標的核酸は、１ナノグラム／マイクロリットル未満の濃度を有している、または試料流体中に合計量で１ナノグラム未満含まれる。

なお別の態様において、標的核酸を含むまたは含むと推測される法医学的試料流体において標的核酸を定量化する方法が提供される。該方法は、マイクロ流体チャネルにおいて法医学的試料流体とシグナリング部分を含む結合剤を含むプローブ流体とを組み合わせるステップであって、法医学的試料流体における標的核酸が増幅されていないステップと、マイクロ流体チャネルにおける検出領域に組み合わされた流体を配置するステップと、シグナリング部分を検出するステップと、試料流体における標的核酸を定量化するステップとを備える。

さらに別の態様において、標的核酸を含むまたは含むと推測され、混入するヒト以外の核酸をさらに含む試料流体において標的核酸を定量化する方法が提供される。該方法は、マイクロ流体チャネルにおいて、試料流体とシグナリング部分を含む結合剤を含むプローブ流体とを組み合わせるステップであって、試料流体における標的核酸が増幅されていないステップと、マイクロ流体チャネルにおける検出領域に組み合わされた流体を配置するステップと、シグナリング部分を検出するステップと、試料流体における標的核酸を定量化するステップとを備える。

なお別の態様において、標的核酸を含むまたは含むと推測される試料流体において標的核酸を定量化する方法が提供される。該方法は、統合化レーザーを備える検出器を備える電子装置に連結されたマイクロ流体デバイスを準備をするステップと、前記マイクロ流体デバイスのマイクロ流体チャネルにおいて前記試料流体とシグナリング部分を含む結合剤とを組み合わせるステップであって、結合剤は、標的核酸に対して固定化されるステップと、電子装置の検出器に作用する近接に配置されたマイクロ流体チャネルの検出領域に組み合わされる流体を配置するステップと、前記統合化レーザーを用いて、シグナリング部分を照射するステップと、試料流体における標的核酸を定量化するステップとを備える。

さらに別の態様において、標的核酸を含む試料流体において標的核酸を操作する方法が提供される。該方法は、検出器を備える電子装置に連結された、試料操作のための複数のマイクロ流体チャネルおよびアクティブな領域を備えるマイクロ流体デバイスを準備をするステップと、マイクロ流体デバイスのマイクロ流体チャネルにおいて試料流体とシグナリング部分を含む結合剤とを組み合わせるステップであって、結合剤は、標的核酸に対して固定化されるステップと、電子装置の検出器に作用する近接に配置されたマイクロ流体チャネルの検出領域に組み合わされる流体を配置するステップと、試料流体における標的核酸を定量化するステップと、バイオチップのアクティブな領域に、試料流体の選択された量を方向づけるステップであって、前記選択された量は、前記定量化ステップの結果に基づいて、少なくとも部分的に究明されるステップとを備える。

なお別の態様において、標的核酸の増幅のために標的核酸を備える試料を用意する方法が提供される。該方法は、試料操作のための少なくとも１つのマイクロ流体チャネルと、アクティブな領域とを備えるマイクロ流体デバイスを準備をするステップであって、少なくとも１つの領域は、試料から核酸を精製するように構成されたステップと、標的核酸の未知の可変量をもたらす収集方法によって試料を取得するステップと、マイクロ流体デバイスのマイクロ流体チャネルの中に試料を挿入するステップと、複製可能な量の精製された標的核酸を生成するために試料から核酸を精製するように構成されたマイクロ流体デバイスの領域で試料における標的核酸を精製するステップと、精製された標的核酸を定量化せずに、精製された標的核酸の複製可能な量を増幅するステップとを備える。

さらに別の態様において、標的核酸を含むまたは含むと推測される法医学的試料流体において標的核酸を定量化する方法が提供される。該方法は、マイクロ流体チャネルにおいて、法医学的試料流体と、シグナリング部分を備えかつ標的核酸のための独特の混成特異性を有する分子ビーコンプローブを含むプローブ流体とを組み合わせるステップであって、法医学的試料流体における標的核酸が増幅されていないステップと、マイクロ流体チャネルにおける検出領域に組み合わされた流体を配置するステップと、シグナリング部分を検出するステップと、試料流体における標的核酸を定量化するステップとを備える。

さらに別の態様において、バイオチップ内の複数の機能的な領域における蛍光団の励起および検出のための計器が提供される。該計器は、励起源と、励起源からバイオチップにおける複数の機能的な領域にビームを方向づける操縦エレメントであって、励起源は、複数の機能的な領域の少なくとも１つからの信号が核酸の定量化を可能にするように、検出される信号を生成する複数の機能的な領域における蛍光団を励起する操縦エレメントとを備える。

添付の図とともに検討される場合、本発明の他の有利性および新規の特徴は、本発明の様々な非制限的実施形態である以下の詳細な説明から明らかになるだろう。特に明記されていなければ、本明細書に引用された参考文献は、すべて、参考文献として全体に援用される。参考文献として援用された本明細書および文献が、矛盾する開示および／または一貫しない開示を含む場合、本明細書を優先する。

本発明の非制限的実施形態は、添付の図（それは概略で、縮尺比に従って拡大縮小するように描かれるようには意図されない）に関連して例として記載されるだろう。図において、図示された同一（または、ほぼ同一）のコンポーネントの各々は、典型的には、単一の符号によって表わされる。明瞭さの目的のため、図毎に各コンポーネントがラベル付けされるとは限らないし、当業者に本発明を理解させることが必要でない図に示される、本発明の各実施形態の各コンポーネントにもラベル付けされない。

図１は、１つの実施形態による、標的核酸分析の様々なステップを表すフローチャートを示す。 図２は、１つの実施形態による、４つの個体試料の解析のための典型的な統合化バイオチップの図を示す。 図３は、１つの実施形態による、実施例１０において記載されるような定量化モジュールの問い合わせチャンバ（Ｉｎｔｅｒｒｏｇａｔｉｏｎ Ｃｈａｍｂｅｒ）を励起し問い合わせるように構成されたデバイスの光学機器列の概略図を示す。 図４は、１つの実施形態による、実施例１０において記載されるような分離および検出モジュールの検出窓から励起し検出するように構成されたデバイスの光学機器列の概略図を示す。 図５は、１つの実施形態による、実施例１０において記載されるような定量化モジュールの問い合わせチャンバを励起し問い合わせるように構成された別の光学機器列の概略図を示す。 図６は、１つの実施形態による、実施例１０において記載されるような分離および検出モジュールの検出窓から励起し検出するように構成された別の光学機器列の概略図を示す。 図７は、１つの実施形態による、実施例１０において記載されるような分離および検出モジュールの検出窓から励起し検出し、かつ定量化モジュールの問い合わせチャンバを問い合わせるように構成された別の光学機器列の概略図を示す。 図８は、１つの実施形態による、典型的な励起および検出システムの図を示す。 図９は、１つの実施形態による、別の典型的な励起および検出システムの図を示す。 図１０は、１つの実施形態による、バイオチップの写真を示す。 図１１は、１つの実施形態による、チップ圧縮エレメントおよび温度制御エレメント（１００）、バイオチップ（１０１）、および温度センサ（１０２）を備える温度サイクラーの写真を示す。 図１２は、１つの実施形態による、明瞭さのためにチップ圧縮エレメントが取り除かれた場合のＴＣＥ（１１００）、バイオチップ（１１０１）、温度センサ（１１０２）、熱電冷却機（１１０３）、ヒートシンク（１１０４）、およびヒートシンク温度センサ（１１０５）を備える温度サイクラーの上から図の写真を示す。 図１３は、１つの実施形態による、２８サイクルのＴＨ０１ ＰＣＲ−ピコグリーン（Ｐｉｃｏｇｒｅｅｎ）反応のための投入ＤＮＡ（ナノグラム）対蛍光信号（ＲＦＵ）を減じたベースラインのプロットを示す。 図１４は、１つの実施形態による、（左から右へのピーク強度が０ナノグラム、０．４ナノグラム、１ナノグラム、４ナノグラム、１０ナノグラム、２０ナノグラム、および４０ナノグラムの投入テンプレートＤＮＡに対応する）ＴＨ０１ ＰＣＲレーザー検出からの出力蛍光信号の未加工データプロットを示す。 図１５は、１つの実施形態による、１５サイクルのＡｌｕ ＰＣＲ−ピコグリーン反応のための投入ＤＮＡ（ナノグラム）対蛍光信号（ＲＦＵ）を減じたベースラインのプロットを示す。 図１６は、１つの実施形態による、（左から右へのピーク強度が０ナノグラム、０．４ナノグラム、１ナノグラム、４ナノグラム、１０ナノグラム、２０ナノグラム、および４０ナノグラムの投入テンプレートＤＮＡに対応する）Ａｌｕ ＰＣＲレーザー検出からの出力蛍光信号の未加工データプロットを示す。 図１７は、１つの実施形態による、（エラーバーは１つの標準偏差を表わす）測定の再現性を示す１０サイクルのＡｌｕ ＰＣＲ反応のための蛍光信号（ＲＦＵ）を減じた投入ＤＮＡ（ナノグラム）対ベースラインのプロットを示す。 図１８は、１つの実施形態による、７サイクルのＡｌｕ ＰＣＲ−サイバーグリーン（ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ）分析のための投入ＤＮＡ（ナノグラム）対蛍光信号（ＲＦＵ）を減じたベースラインのプロットを示す。 図１９は、１つの実施形態による、実施例５において記載されるような分子ビーコンプローブ１を用いて実際に検出された、ベースラインを差し引いた蛍光信号（ＲＦＵ）対ゲノムＤＮＡ標的濃度（ｐｇ）のプロットを示す。 図２０は、１つの実施形態による、実施例５において記載されるような分子ビーコンプローブ２を用いて実際に検出された、ベースラインを差し引いた蛍光信号（ＲＦＵ）対ゲノムＤＮＡ標的濃度（ｐｇ）のプロットを示す。 図２１は、１つの実施形態による、実施例６において記載されるような分子ビーコンプローブ２での１分間のハイブリダイゼーションを用いて実際に検出された、ベースラインを差し引いた蛍光信号（ＲＦＵ）対ゲノムＤＮＡ標的濃度（ｐｇ）のプロットを示す。 図２２は、１つの実施形態による、実施例９において記載されるような複数の精製フィルター層の機能としてＤＮＡ結合「カットオフ」を実証する。 図２３は、１つの実施形態による、実施例９において記載されるような投入ＤＮＡの範囲にわたって直径１ｍｍのフィルターのＤＮＡ結合性能を実証する。 図２４は、１つの実施形態による、実施例１０において論じられるような作動範囲にわたって光電子増倍管（ＰＭＴ）ゲインが掃引される間の信号強度のプロットを示す。 図２５は、１つの実施形態による、実施例１０において論じられるような作動範囲にわたってＰＭＴゲインが掃引される間の信号対ノイズ比のプロットを示す。 図２６は、１つの実施形態による、実施例１０において論じられるようなレーザーパワーの機能としての信号強度のプロットを示す。 図２７は、１つの実施形態による、実施例１０において論じられるような励起準位による光退色現象を示す。［配列の概要］

配列ＩＤ番号：１は、配列５’−ＡＧＧ ＧＴＡ ＴＣＴ ＧＧＧ ＣＴＣ ＴＧＧ−３’を有するＴＨＯ１フォワードプライマー（Ｆｏｒｗａｒｄ Ｐｒｉｍｅｒ）である。
配列ＩＤ番号：２は、配列５’−ＧＣＣ ＴＧＡ ＡＡＡ ＧＣＴ ＣＣＣ ＧＡＴ ＴＡＴ−３’を有するＴＨＯ１リバースプライマー（Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｐｒｉｍｅｒ）である。
配列ＩＤ番号：３は、配列５’−ＧＴＣ ＡＧＧ ＡＧＡ ＴＣＧ ＡＧＡ ＣＣＡ ＴＣＣ Ｃ−３’を有するＡｌｕフォワードプライマーである。
配列ＩＤ番号：４は、配列５’−ＴＣＣ ＴＧＣ ＣＴＣ ＡＧＣ ＣＴＣ ＣＣＡ ＡＧ−３’を有するＡｌｕリバースプライマーである。
配列ＩＤ番号：
５は、配列５’−ＧＣＣ ＣＧＡ ＴＴＴ ＴＧＣ ＧＡＣ ＴＴＴ ＧＧＡ ＧＧＧ Ｃ−３’を有するＰＶ ９２ プローブ１である。
配列ＩＤ番号：
６は、配列５’−ＣＧＣ ＣＴＣ ＡＡＡ ＧＴＧ ＣＴＧ ＧＧＡ ＴＴＡ ＣＡＧ ＧＣＧ−３’を有するＡｌｕプローブ２である。

本明細書に記載されるものは、核酸定量化のための進歩性のある方法およびデバイスであり、一部の実施形態においては、核酸定量化のためのマイクロ流体方法およびデバイスである。１つの態様において、実施形態は、一般に、事前の増幅の必要性のない天然（すなわち、非合成）の核酸などの標的核酸を定量化する方法に関する。いくつかの実施形態において、方法は、結合剤が標的核酸に対して固定化されることを可能にすることを含む。あるケースでは、結合剤は、標的核酸の量を定量化するために用いることができるシグナリング部分を含む。一部の実施形態において、定量化は迅速に実行することができる。例えば、一部の実施形態において、定量化は１時間以下で完結することができる。一部の実施形態において、低い量の標的核酸を含む試料は、一部の実施形態において流入式マイクロ流体分析を用いて、定量化することができる。例えば、あるケースでは、１ナノグラム未満を含む試料が定量化されてもよい。一部の実施形態において、標的核酸は、非標的核酸の存在下で定量化されてもよい。また、デバイス、バイオチップ、およびキットなどが、本発明の方法を実行するために提供される。

いくつかの実施形態において、本明細書に記載された方法は、法医学的核酸分析において特に有用かもしれない。但し、当業者は、本方法が、法医学的分析に限定されず、解析するために標的核酸を含む（または、標的核酸を含むように思える）任意の適当な試料を用いることができることを理解するだろう。いくつかの実施形態において、臨床試料および環境試料が解析されてもよい。本明細書に記載された方法の一部の実施形態は、核酸の簡易化された定量化、マイクロ流体システムによる容易な統合化、低減された試薬の（すなわち、用いられる試薬の量および／または用いられる試薬の数）利用、酵素、ｄＮＴＰｓおよびＰＣＲバッファなどの特殊扱いおよび／または保存を必要とする試薬の回避、定量化の速度および定量化の感度、定量化の特異性、自動化を提供するための改善された能力の１つ以上を含む（但し、限定されない）、先行技術を超える利点を備えてもよい。また、好ましくは、本明細書に記載された方法の一部の実施形態は、それが１つ以上のＰＣＲ抑制剤（それらは例えば臨床の試料、環境試料、法医学的試料などにあり得る）を含んでいるにもかかわらず試料における標的核酸を解析するために用いることができる。

いくつかの実施形態において、本方法は、シグナリング部分を備える結合剤を、標的配列（すなわち標的核酸）を含む核酸ストランドを含むように推測される試料と組み合わせ、標的核酸が欠如している本質的に同じ状態下でその特性と比較して、シグナリング部分の測定可能な特性に変化があるか否かを判定することを含む。いくつかの実施形態において、標的を含まないコントロールを実行し、試料の応答をコントロールの応答と比較することは望ましいかもしれない。あるケースでは、信号のレベルが、定量のために測定されてもよい。一部のこのような実施形態において、測定用試料（Ｔｅｓｔ Ｓａｍｐｌｅ）により究明される信号のレベルは、標的配列を含む核酸ストランドの既知濃度を含む検量用試料（Ｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎ Ｓａｍｐｌｅ）を用いて用意された検量標準物質（Ｃａｌｉｂｒａｔｉｏｎ Ｓｔａｎｄａｒｄ）により比較されてもよい。いくつかの実施形態において、変化は、単に、標的核酸の存在または欠如を確認する目的で検出されてもよい。コントロールが用いられる実施形態において、試料とコントロールのと間の信号変化の差分が計算されてもよい。

いくつかの実施形態において、複数の核酸サンプルは、本質的には同時に解析および定量化することができる。より詳細に以下で論じられるように、複数の核酸サンプルは、計測を伴うマイクロ流体バイオチップとソフトウェアとを含むマイクロ流体システムを用いて平行に解析されてもよい。いくつかの実施形態において、マイクロ流体システムを用いることは、複数サンプルが、適合する操作のセットを用いて、各試料（または試料のサブセット）のために本質的には同一の操作のセットを用いて処理されることを可能にする。その上、あるケースでは、複数の独立した試料処理および／または法医学的分析は、所定の試料上の統合方式において実行することができる。例えば、法医学的試料は、ＤＮＡ（すなわち標的核酸）を連続的に分離し、分離されたＤＮＡを定量化し、定量化結果に基づいて多くのＤＮＡ溶液を自動的に計量し、その後、分離されたＤＮＡの短鎖縦列反復配列（ＳＴＲ）解析、一塩基変異多型（ＳＮＰ）解析、およびミトコンドリアの配列決定の１つ以上を実行することにより解析されてもよい。同様に、臨床の試料は、標的核酸を精製し、標的核酸を定量化し、定量化結果に基づいて多くの核の溶液を自動的に計量し、標的核酸のＰＣＲ、逆転写ＰＣＲおよび／またはＤＮＡ塩基配列決定を実行することにより解析されてもよい。いくつかの実施形態において、試料は、バイオチップ上の１つ以上の病原体、細胞過程、生理学のプロセス、薬剤および毒素のために本質的に同時に問い合わせられてもよい。いくつかの実施形態において、試料分析は、システムによって自動的に行われてもよい。

図１は、一部の実施形態による標的核酸分析の様々なステップを表すフローチャートを提供する。いくつかの実施形態において、標的核酸分析は、試料を取得することを含むステップ１００から開始される。一部の実施形態において、試料は、犯罪現場または証拠の試料などの法医学的試料を含んでもよい。あるケースでは、標的核酸は、例えば、ステップ１２０のシグナリング部分を含む結合剤により標的核酸の混合のための試料を用意するために、ステップ１１０に示すように試料から抽出されてもよい。本ステップは、ステップ１３０に示すように標的核酸に対して結合剤を固定化し、ステップ１４０に示すようにシグナリング部分を検出することを含んでもよい。次に、標的核酸は、より詳細に以下で記述される技術を用いて、ステップ１５０に示すように定量化されてもよい。いくつかの方法が、これらのステップのすべてを含むとは限らないこと、および／または図示されない付加的なステップを含んでもよいことは理解されるべきである。例えば、あるケースでは、標的核酸は抽出される必要がなく、それによって、ステップ１１０を回避する。

いくつかの実施形態において、試料はステップ１００に示すように取得されてもよい。試料は、任意の適当な方法によって取得されてもよい。例えば、口腔スワブが取得されてもよい。一般に、口腔スワブは、ほおの内面から細胞の試料を収集するために収集器具（例えば小筆または綿棒）を用いる。その代わりに、小量の口内洗浄液（すなわち塩性の口内洗浄液）が、細胞を収集するために口の中で振られてもよい。いくつかの実施形態において、血液、唾液、精液、羊水、髪、皮膚または他の適合する流体および／または組織の試料を収集するために、他の方法が用いられてもよい。広範囲の試料は、また、膣のスワブ、頚部のスワブ、尿道のスワブ、直腸のスワブ、鼻のスワブ、鼻咽頭のスワブ、傷スワブ、生検標本、骨髄穿刺液および唾液穿刺液を含む。試料は、いくつかの実施形態の中で、個人的なアイテム（例えば、歯ブラシ、カミソリ）個体によって触れられたアイテム（例えば、飲用のグラスの縁、シャツカラー、キャップのリム、ドアノブ、ウインドガラスまたはテーブル）、蓄積された試料（例えば、堆積する精子または生検組織）、死体、犠牲者、犯人、容疑者、犯罪現場、患者、または親類（すなわち血族）から取得されてもよい。あるケースでは、試料核酸は、精製されなくてもよいし、部分的に精製されるまたは精製されてもよい。いくつかの実施形態において、試料核酸は、本質的には、標的核酸の混入がなくてもよい。他の実施形態において、試料は、標的核酸および非標的核酸の混合物を含んでいてもよい（例えば、法医学的分析のためのヒトのＤＮＡ試料は、また犬のＤＮＡを含んでいてもよい）。例えば、試料は、生体外または生体内の試料であってもよい。一般に、試料は、標的核酸を含む、または標的核酸を含むように推測される。「試料」が、標的核酸、標的核酸を含む混合物（固体および／または液体）、または標的核酸を含むと推測される材料（固体および／または液体）を指してもよいことは理解されるべきである。

試料は、ある程度の標的核酸を少なくとも含んでもよいし、または、標的核酸を含まなくてもよい。いくつかの実施形態において、試料における標的核酸の量は、試料を取得するために用いられる方法（すなわち収集方法）に依存してもよい。いくつかの実施形態において、収集方法は、本質的には０〜１００マイクログラムの範囲内、１ピコグラム〜１００のマイクログラムの範囲内、１ナノグラム〜１００マイクログラムの範囲内、１０ナノグラム〜１００マイクログラムの範囲内、１００ナノグラム〜１００マイクログラムの範囲内、１ピコグラム〜１０マイクログラムの範囲内、１ナノグラム〜１０マイクログラムの範囲内、１０ナノグラム〜１０マイクログラムの範囲内、または１００ナノグラム〜１０マイクログラムの範囲内の標的核酸の量をもたらしてもよい。いくつかの実施形態において、収集方法によって収集された標的核酸の量は、少なくとも１０倍、少なくとも１００倍、少なくとも１０００倍、または少なくとも１００００倍で第１の試料から第２の試料に相違してもよい。

試料は、標的核酸以外の１つ以上の合成物（もし存在するならば）を含んでもよい。例えば、試料収集流体は、試料を集める、薄める、懸濁する、または溶かすために用いられてもよい。一般に、試料収集流体は、水性であってよい。但し、試料収集流体は、水性溶媒の代わりに、またはその水性溶媒に加えて、有機溶媒をまた含んでもよい。様々な他の実施形態において、試料収集流体は、１つ以上のバッファ、スタビライザ、酵素阻害剤（例えば、ヌクレアーゼ抑制剤）、キレート試薬、塩類または他の合成物を含んでもよい。別の実施形態（試料収集流体による以下の試料の収集）において、試料は、乾燥させられてもよい（例えば、法医学的スワブ試料は、後で乾燥させられ処理されてもよい）。さらに別の実施形態において、試料収集流体は、利用されなくてもよい（例えば、乾燥したスワブが用いられてもよい）。

いくつかの実施形態において、標的核酸は（存在するならば）、ステップ１１０に示すように試料から抽出（例えば、精製）されてもよい。あるケースでは、標的核酸は、マイクロ流体バイオチップの中で抽出されてもよい。但し、当業者は、当該技術分野の多くの既知の抽出方法（それらの多くは市販で入手可能である）のいずれかによって、標的核酸が抽出されてもよいことを認識するだろう。例えば、液液抽出技術は、フェノール−クロロホルム溶液を含むものなどのように、用いられてもよい。別の例において、液体の固形物抽出の技術は、試料が固体の基板上で収集され、標的核酸を分離するために（一般に複数の溶液とともに）洗浄される場合に用いられてもよい（例えば、キアゲン社（Ｑｉａｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）によって販売されているキットを参照）。核酸精製の他の例は、例えば「核酸精製（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ）」と題され、２０１０年２月３日にセルデン（Ｓｅｌｄｅｎ）らによって出願された米国特許出願番号第１２／６９９，５６４号（それは参考文献として本明細書に援用される）に見出される。

細胞試料（すなわち、細胞、複数の細胞、細胞の混合物、組織内の１つ以上の細胞）から標的核酸が分離される実施形態において、細胞は、破砕開口されて（例えば、分裂または溶解されて）もよい。いくつかの実施形態において、細胞の膜脂質は洗浄剤を用いて分裂されてもよい。あるケースでは、タンパク質は、１つ以上のプロテアーゼで試料を処理することにより分解されてもよい。いくつかの実例において、タンパク質は、例えば酢酸ナトリウムまたは酢酸アンモニウムなどの酢酸塩により、沈殿によって取り除かれてもよい。いくつかの実施形態において、タンパク質は、フェノール−クロロホルム相分離を用いて取り除かれてもよい。いくつかの実施形態において、標的核酸は、例えばエタノールまたはイソプロピルアルコールなどのアルコールを用いて、沈殿させてもよい。あるケースでは、グアニジンチオシアン酸塩−フェノール−クロロホルムは、例えば、ＲＮＡまたはＤＮＡの標的核酸を抽出するために用いられてもよい。部分的に精製された、または精製された標的核酸は、任意の適当な溶液（例えば、収集流体）、例えば、脱イオン水、トリスＥＤＴＡ（ＴＥ）などのバッファに可溶化することができる。ＤＮＡおよび／またはＲＮＡを精製するための他の技術は、当業者にとって既知であろう。

以上に論じられたように、標的核酸を含む（または含むと推測される）任意の試料が、解析されてもよい。標的核酸は、任意の核酸であってもよい。例えば、いくつかの実施形態において、標的核酸は、ＤＮＡ、ＲＮＡ、またはそれらの混合物もしくは共重合体であってもよい。いくつかの実施形態において、標的核酸（および、本明細書に記載されたような、核酸の他の型）は、ゲノムＤＮＡ、染色体ＤＮＡ、染色体外のＤＮＡ、プラスミドＤＮＡ、ミトコンドリアＤＮＡ、クロロプラストＤＮＡ、相補鎖ＤＮＡ、リボソームＲＮＡ、メッセンジャーＲＮＡ、またはその破片であってもよい。標的核酸は、自然源（すなわち天然）から分離される、組み換え技術によって生成される、または人工的に合成されてもよい。例えば、標的核酸は、ヒト細胞、細菌細胞、菌の細胞、真核細胞、原核細胞、またはウィルスから分離されてもよい。あるケースでは、標的核酸は、合成（すなわち、増幅によって生成された産物［例えば、ＰＣＲ、定量的ＰＣＲ、リバース転写ＰＣＲ］、結紮、または化学薬品合成）であってもよい。標的核酸は、タンパク質、酵素、抗体、レセプタ、リボザイム、リボソームなどの生物学的物体、またはその部分をコード化する核酸であってもよい。別の非限定の例として、標的核酸は、調節配列、または非コード化配列（例えば、小型干渉ＲＮＡ、ミクロＲＮＡ低分子ヘアピンＲＮＡなど）であってもよい。いくつかの実施形態において、標的は、特異的ゲノム配列または反復性ゲノム配列であってもよい。標的核酸および／または標的配列は、（例えば、およそ１２、１４、１６、１８、２０、２２、２５、３０、３５、４０、４５、５０、６０、７０、８０、９０、１００、２００、４００、８００、１６００、３２００、６４００、またはそれ以上の）の長さの任意の数のヌクレオチドでありえる。核酸は、天然由来の塩基（例えば、アデノシンまたは「Ａ」、チミジンまたは「Ｔ」、グアノシンまたは「Ｇ」、シチジンまたは「Ｃ」、またはウリジンまたは「Ｕ」）などの残基、またはメチル化された残基などの他の残基を含んでもよい。核酸は、ハイブリダイゼーションを容易にするために、いくつかのケースにおいて一本鎖であってもよい。

いくつかの実施形態において、標的核酸は、また、ＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）などの核酸増幅法を用いて増幅することもできる。標的核酸の様々な複製は、シグナル伝達物体（例えば、蛍光染料）により標識されることができる。例えば、シグナル伝達物体は、任意の適当な位置の核酸（例えば、核酸配列の５’末端部位、３’末端部位、または核酸の内部部位）内に含まれていてもよい。

いくつかの実施形態において、試料は、複数のソースに由来する標的核酸を含んでもよい。例えば、試料は、第１の標的核酸および第２の核酸を含んでもよい。あるケースでは、第１の標的核酸および第２の核酸の両方は、それぞれ第１のヒトおよび第２のヒトに由来してもよい。いくつかの実施形態において、第１の標的核酸は、ヒトに由来してもよいし。第２の標的核酸は、ヒト以外（例えば、バクテリア、マウス、犬、猫、爬虫類、ヘビ、昆虫、ヒト以外の霊長動物、など）に由来してもよい。あるケースでは、試料は、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、またはそれ以上の別の型の核酸（標的核酸の１つ、いくつか、または全部）を含んでもよい。

いくつかの実施形態において、試料は、試験液を形成するために、ステップ１２０に示すように、結合剤により組み合わされてもよい。試験液は、結合剤を含む任意の試料流体であってもよい。より詳細に以下で論じられるにように、結合剤は、標的核酸に対して特に固定化させることができる物体である。以上に論じられたように、あるケースでは、試料は流体（すなわち、試料流体）であってもよい。いくつかの実施形態において、結合剤は、流体（以下「プローブ流体」）内に含まれていてもよい。いくつかの実施形態において、試料流体および／またはプローブ流体は、水性および／または有機であってもよい。あるケースでは、試料流体および／またはプローブ流体は、１つ以上のバッファ、スタビライザ、酵素阻害剤（例えば、ヌクレアーゼ抑制剤）、キレート試薬、塩類、または他の合成物を含んでもよい。

いくつかの実施形態において、結合剤は、マイクロ流体デバイスに取り付けられてもよい。例えば、いくつかの実例において、結合剤は、マイクロ流体チャネルの壁に共有結合で取り付けられてもよい。あるケースでは、結合剤は、マイクロ流体チャネルの壁または機構に非共有結合で取り付けられてもよい。いくつかの実施形態において、標的核酸は、マイクロ流体デバイスに（すなわち、共有結合でまたは非共有結合で）取り付けられてもよい。いくつかの実施形態において、マイクロ流体チャネルは、結合剤および／または標的核酸を結合するために適した領域を有してもよい。例えば、結合剤および／または標的核酸は、機構には実質的に結合せずに、マイクロ流体チャネルの第１の領域を通じて流出され、マイクロ流体チャネルの第２の領域における機構に結合されてもよい。一部の実施形態において、標的核酸も結合剤も、分析の間に任意のマイクロ流体チャネルの壁に取り付けられない（または取り付けられるようにならない）が、むしろ試験液の中で懸濁され続ける。

いくつかの実例において、試料流体とプローブ流体が、組み合わせられてもよい。例えば、試料流体およびプローブ流体は、マイクロ流体システムにおいて（例えば、マイクロ流体チャネル、またはマイクロ流体チャネルを含むシステムの混合区画において）組み合わせられてもよい。試料および結合剤は、任意の適切な技術を用いて混合されてもよい。例えば、試料流体およびプローブ流体は、混合試料を攪拌またはピペットで取ることにより、混合されてもよい。いくつかの実施形態において、試料流体およびプローブ流体は、マイクロ流体システムにおいて混合されることができる。当業者は、マイクロ流体システムにおいて流体を混合するためのデバイスおよびチャネル構成に気づくだろう。それらの非限定の例は、「統合化核酸分析（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ａｎａｌｙｓｉｓ）」と題され、２００８年４月４日にタン（Ｔａｎ）らによって出願された国際特許出願第ＷＯ／２００８／１２４１０４号パンフレットに開示され、その文献は参考文献として本明細書に援用される。

結合剤は、標的配列を含む標的核酸に固定化することができる任意の物体であってもよい。いくつかの実施形態において、結合剤は、非共有結合を通じて標的核酸に固定化されるようになってもよい。例えば、非共有結合は、水素結合、ファン・デル・ワールス相互作用、疎水性相互作用などの１つ以上を含んでもよい。あるケースでは、結合剤は、１つ以上の共有結合を介して標的核酸に固定化されるようになってもよい。

いくつかの実施形態において、結合剤が、標的核酸の標的配列に特に固定化されることができてもよい（すなわち、結合剤は、標的核酸のための独特の特異性を有する特異的結合剤であってもよい）。例えば、結合剤は、第２の配列（第１の配列とは異なる第２の配列）を有する第２の標的核酸に関して、第１の配列を有する第１の標的核酸に優先的に固定化され（例えば、混成され）てもよい。あるケースでは、結合剤は、標的核酸に非特異的に固定化されることができてもよい。例えば、結合剤は、標的核酸配列から独立して、標的核酸に実質的に挿入されてもよい。いくつかの実施形態において、結合剤は、挿入染料、挿入蛍光染料であってもよいし、または二本鎖核酸により選択的に挿入することができる挿入蛍光染料であってもよい。

いくつかの実施形態において、結合剤は、核酸であってもよい（すなわち、結合剤は、核酸プローブであってもよい）。当業者は、核酸プローブが、所定のアニール条件の下で、核酸プローブの配列に対して少なくとも部分的に相補的な配列を有する標的核酸に混成することができる配列を有するように設計されてもよいことを認識するだろう。当業者は、また標的核酸と核酸プローブとの間の配列相同性が最適である必要がないことを認識するだろう。例えば、いくつかの実施形態において、標的核酸と核酸プローブとの対には、１つ以上のミスマッチがあってもよい。

いくつかの実施形態において、結合剤（例えば、核酸プローブ）および標的核酸は、結合剤および標的核酸を含む試料を第１の温度に加熱し、その後、その試料を第２の温度に冷却することにより混成されてもよい。あるケースでは、第１の温度は、第２の温度に冷却する前に一時的に維持されてもよい。例えば、第１の温度は、１秒未満、５秒未満、１０秒未満、３０秒未満、１分未満、または５分未満の間維持されてもよい。もちろん、これらの範囲外の温度が同様に用いられてもよい。いくつかの実施形態において、第１の温度が、混成された結合剤および標的核酸を溶かす温度（すなわち、混成された相補鎖が分離する温度Ｔ_ｍ）を超えてもよい。いくつかの実施形態において、第１の温度が、混成された結合剤および標的核酸のＴ_ｍ＝５℃以内であってもよい。いくつかの実施形態において、第１の温度は、少なくとも３０℃、少なくとも４０℃、少なくとも５０℃、少なくとも６０℃、少なくとも７０℃、少なくとも８０℃、少なくとも９０℃、または少なくとも９５℃であってもよい。第２の温度は、第１の温度未満である少なくとも５℃、少なくとも１０℃、少なくとも２０℃、少なくとも３０℃、少なくとも４０℃、少なくとも５０℃、少なくとも６０℃、少なくとも７０℃、少なくとも８０℃、または少なくとも９０℃であってもよい。いくつかの実施形態において、温度が第１の温度と第２の温度との間にサイクリングされるレートは、少なくとも１℃／秒、５℃／秒、１０℃／秒、２０℃／秒、３０℃／秒、５０℃／秒、１００℃／秒、または２００℃／秒であってもよい。一部のケースでは、本発明によれば、本発明の一部のシステムおよび方法によって提供される迅速な温度サイクリングは、少なくとも部分的に、標的核酸を典型的な従来手法よりも迅速に分析、検出および／または定量化することを可能にする。例えば、いくつかの実施形態において、迅速な温度サイクリングは、試料流体と結合剤とを組み合わせた後に、短期間で、試料流体における標的核酸の濃度が究明されることを可能にできる。

以上に論じられるように、標的核酸は、１つ以上の結合剤によって認識され（例えば、混成され）てもよい。核酸結合剤は、標的核酸内の一部の配列を標的とするために、様々な実施形態において用いることができる。多くの場合、標的核酸の短い部分は、核酸プローブ（例えば、５０残基未満、３０残基未満、２０残基未満、１５残基未満、１０残基未満、９残基未満、８残基未満、７残基未満、６残基未満、５残基未満、および４残基未満の配列）により関連づけられることができる。いくつかの実施形態において、核酸プローブは、少なくとも標的核酸の部分（すなわち、配列が、相補的、または少なくとも実質的に相補的である）を認識することができ、多くの場合、標的核酸の認識された部分と同様の長さを有する核酸残基の比較的短い配列を含んでもよい。例えば、核酸プローブは、１００００ヌクレオチド未満、１０００ヌクレオチド未満、５００ヌクレオチド未満、２５０ヌクレオチド未満、１００ヌクレオチド未満、７５、５０、４０、３５、３０、２５、２４、２２、２０、１８、１６、１４または１２ヌクレオチド未満の長さを有する配列を有してもよい。核酸プローブ配列の構造、配列、長さおよびアニール条件の選択は、当該技術分野において周知である。核酸プローブは、任意の適切な技術（例えば、固相ホスホロアミダイトトリエステル法）を用いて合成されてもよい。他の方法は、当業者にとって既知であろう。核酸プローブは、また、例えばインテグレイティッドＤＮＡテクノロジーズ社（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ， Ｉｎｃ）から市販で入手してもよい。

核酸プローブ内の核酸配列は、連続していてもよいし、またはその配列は非連続であってもよい。例えば、プローブ配列内に普遍的な残基またはギャップがあってもよい。さらに、ヘアピン、ループなどの二次構造は、あるケースにおいて存在してもよく、それは非連続配列を生成するために用いられてもよい。限定しない例として、核酸プローブは、標的核酸の連続配列に対して少なくとも実質的に相補的であって、かつ標的核酸の連続配列に対して相補的でない第３の領域によって分割される第１領域および第２領域を有してもよい。核酸プローブは、第３の領域がヘアピンを形成するように標的核酸に混成し、それによって、第１領域および第２領域が非連続型において連続した標的核酸配列に混成することを可能にする。

あるケースでは、核酸プローブは、オーバーハングを生成せずに（すなわち核酸プローブの内にある少なくともいくつかの残基が標的核酸の末端を通過するように延びずに）、実質的に相補配列に混成してもよい。その代わりに、いくつかの実例において、核酸プローブは、核酸プローブの少なくとも１つの残基が標的核酸の末端を越えて延びるように、標的核酸に混成してもよい。

核酸プローブは、標的核酸と完全に混成する必要はない。２つの核酸および／または核酸アナログの混成は、様々なファクタにより影響を与えられる場合があるし、所定の二本鎖内の特有の残基の混成の強度は、異なる場合がある。

本明細書に用いられるように、第２の配列に対して「実質的に相補的である」第１の配列は、第１配列および第２配列の少なくとも７５％が相補的な１つ（例えば、ワトソンクリック相補的対合を通じて）である。例えば、標的配列が長さ２４塩基である状態において、それらに最大６つのベース対ミスマッチがあっても、プローブ配列は「実質的に相補的」であろう。いくつかの実施形態において、２つの配列は、少なくとも８０％、８５％、９０％、または１００％の相補形であってもよい。

一部の実施形態において、核酸プローブは、残基の積層および／または骨格の前組織化を向上させることができる少なくとも１つの残基を含んでもよい。これは、いくつかのケースにおいて核酸プローブの熱的安定性（溶融温度）を著しく増大する場合がある。例えば、核酸プローブは、少なくとも１つのロックされた核酸（ＬＮＡ）残基を含んでもよい。ロックされた核酸残基は、自然に生じる核酸残基（例えば相補的な残基により２つまたは３つの水素結合を形成していることができる）に対して同様の化学的形状を有しているが、自然に生じる核酸残基と同じ寸法において自由に回転することができない核酸アナログである。例えば、あるケースでは、メチレン橋が３’−エンド構造的コンフォメーション（それは、多くの場合ＤＮＡまたはＲＮＡの一部の形式において見出される）においてリボースを「ロック」する場合に、ロックされた核酸残基は、２’−Ｏ、４’−Ｃメチレン橋を含んでもよい。あるケースでは、ロックされたリボース構成は、核酸プローブの熱的安定性を著しく増大してもよい。核酸配列の熱的安定性を増大することができる他の残基は、当業者にとって明らかである。例えば、ペプチド核酸は、あるケースにおいて核酸プローブとして用いられてもよい。

一部の実施形態において、核酸プローブは、普遍的な残基（それは１つ以上の自然のヌクレオチドとの（およびあるケースでは自然のヌクレオチドのすべてとの）残基対合の関係を保つことができる）を含むことができる。核酸塩基（例えば、ヌクレオチドまたはＰＮＡ）の形式の重合体構造に組み込まれた場合、普遍的な塩基または普遍的な残基（例えば「Ｎ」）は、本明細書に用いられるように、核酸塩基を有している相補的な重合体構造の塩基をはっきりとは区別しない塩基を指す。例えば、普遍的な塩基は、Ａ、Ｔ、ＣおよびＧから選択された１つ以上のヌクレオチドに混成することができる。普遍的な残基は、当業者または通常の技術者にとって既知であろう。普遍的な残基の非限定的な例は、デオキシイノシン、３−ニトロピロール、４−ニトロインドール、６−ニトロインドール、５−ニトロインドール、６−メチル−７−アザインドール、ピロロピリジン、イミダゾピリジン、イソカルボスチリル、プロピニル−７−アザインドール、プロピニルイソカルボスチリル、アレニル−７−アザインドール、８−アザ−７−デアザ−２’−デオキシグアノシン、８−アザ−７−デアザ−２’−デオキシアデノシン、２’−デオキシシチジン、２’−デオキシウリジン、２’−デオキシアデノシン、２’−デオキシグアノシン、７−デアザ−２’−デオキシイノシン、２’−アザ−２’−デオキシイノシン、３’−ニトロアゾール、４’−ニトロインドール、５’−ニトロインドール、６’−ニトロインドール、４−ニトロベンズイミダゾール、ニトロインダゾール（例えば５’−ニトロインダゾール）、４−アミノベンズイミダゾール、イミダゾ−４，５−ジカルボキサミド、３’−ニトロイミダゾール、イミダゾール−４−カルボキシアミド、３−（４−ニトロアゾール−１−イル）−１、２−プロパンジオール、および８−アザ−７−デアザアデニンを含む。本明細書に記載されたシステムおよび方法のための有用な他の普遍的な残基は、当業者にとって既知であろう。

いくつかの実施形態において、結合剤は、シグナリング部分を含んでもよい。シグナリング部分は、信号を生成することができる任意の物体であってもよい。いくつかの実施形態において、シグナリング部分は、結合剤に（すなわち、１つ以上の共有結合または非共有結合を通じて）取り付けられる。いくつかの実施形態において、シグナリング部分は、結合剤に取り付けられなくてもよい。例えば、あるケースでは、シグナリング部分は、標的核酸への結合剤の固定化の間に、またはその固定化の後に、結合剤により関連づけられてもよい。あるケースでは、シグナリング部分は、標的核酸により関連づけられてもよい。

いくつかの実施形態において、シグナリング部分は、蛍光団、蛍光団／消光剤対、発色団、放射性同位体、酵素基質、発色基質、スピン標識、非放射性の同位体または質量分析（例えば電気泳動質量標識（ＥＭＬ））によって検出可能な同位体などの同位体、標識抗体、酵素のための結合パートナーとして役立つことができるリガンド、標識リガンド、抗原のための結合パートナーとして機能することができる抗体、比反応性を有するグループ、および／または電気化学的に検出可能な部分を含んでもよい。いくつかの実施形態において、シグナリング部分は、粒子（例えば、蛍光性の粒子、量子ドット、など）であってもよい。当業者は、他の適切なシグナリング部分を識別することができるだろう。あるケースでは、シグナリング部分は、例えば光（例えば、蛍光団または発色団の場合）により、刺激の信号を生成してもよい。いくつかの実例において、シグナリング部分は、放射性同位体の場合などのように、自然発生的な信号を生成してもよい。一部の実施形態において、シグナリング部分が、検出可能な信号を生成する能力は、シグナリング部分の第１のコンポーネントおよび第２のコンポーネントの近接度に依存してもよい。第１のコンポーネントおよび第２のコンポーネントが、１つ以上の結合を通じて連結されてもよい、または連結されてはならない（すなわち、分離可能である）ことは理解されるべきである。

いくつかの実施形態において、シグナリング部分は、蛍光団を含んでもよい。蛍光団の非限定的な例は、市販で合成または入手することができる染料（例えば、オペロンバイオテクノロジー社（Ｏｐｅｒｏｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）、アラバマ州ハンツヴィル）を含む。（５０を超える）染料の多くは、蛍光励起アプリケーションにおいてアプリケーションのために利用可能である。これらの染料は、フルオレセイン、ローダミンアレクサフルオル（ｒｈｏｄａｍｉｎｅ ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ）、バイオジピ、クマリンおよびシアニン染料ファミリーに由来するものを含む。蛍光団の具体例は、ＦＡＭ、ＴＥＴ、ＨＥＸ、Ｃｙ３、ＴＭＲ、ＲＯＸ、Ｔｅｘａｓ ｒｅｄ、ＬＣ ｒｅｄ ６４０、Ｃｙ５、およびＬＣ ｒｅｄ ７０５を含むが限定されない。いくつかの実施形態において、４１０ｎｍ（例えば、Ｃａｓｃａｄｅ Ｂｌｕｅ）から７７５ｒｕｎ（例えば、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ７５０）への発光極大による染料は、有効であり、かつ用いることができる。もちろん、当業者は、これらの範囲外の発光極大を有する染料が、同様に用いられてもよいことを認識するだろう。あるケースでは、５００ｎｍから７００ｎｍの間の範囲の染料は、可視スペクトル内にあり、従来の光電子増倍管を用いて検出することができるという長所をもつ。いくつかの実施形態において、有効な染料の範囲は、検出範囲にわたって広がる発光波長を有する染料セットの選択を可能にする。多くの染料を識別することができる検出システムは、当該技術分野において知られている。

いくつかの実施形態において、シグナリング部分は、結合剤に結合されてもよい。例えば、シグナリング部分および核酸プローブは、例えば、核酸の３’水酸基と、シグナリング部分に取り付けられたリンカとの間のエステル結合を形成することにより、結合されてもよい。リンカは、任意の適切なリンカであってもよい。例えば、リンカは、核酸プローブが標的核酸に混成することを可能にするための十分な長さであってもよい。他の技術は、当業者にとって既知であろう。

いくつかの実施形態において、本明細書に別記されるように、消光剤は、背景蛍光を最小限にするためにオリゴ配列を標識するために、または蛍光団／消光剤対において利用するために用いることができる。消光剤は、当業者にとって既知である。消光剤の非限定的な例は、ＤＤＱ−Ｉ、Ｄａｂｃｙｌ、Ｅｃｌｉｐｓｅ、Ｉｏｗａ Ｂｌａｃｋ ＦＱ、ＢＨＱ−１、ＱＳＹ−７、ＢＨＱ−２、ＤＤＱ−ＩＩ、Ｉｏｗａ Ｂｌａｃｋ ＲＱ、ＱＳＹ−２１、およびＢＨＱ−３を含む。いくつかの実施形態において、消光剤には、４３０ｎｍ（例えば、ＤＤＱ−Ｉ）から６７０ｎｍ（例えば、ＢＨＱ−３）まで範囲内の吸収極大があってもよい。

いくつかの実施形態において、例えば、「探知できるように標識化されたデュアルコンフォメーションオリゴヌクレオチドのプローブ、分析、およびキット（Ｄｅｔｅｃｔａｂｌｙ Ｌａｂｅｌｅｄ Ｄｕａｌ Ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｐｒｏｂｅｓ， Ａｓｓａｙｓ ａｎｄ Ｋｉｔｓ）」題されて１９９９年７月２０日にチャギ（Ｔｙａｇｉ）らによって発行された米国特許第５，９２５，５１７号（その文献は参考文献として本明細書に援用される）において論じられるように、シグナリング部分を含む結合剤は、分子のビーコンであってもよい。結合剤（例えば、分子ビーコン）は、標的がない状態での分析状態の下で、ステム二本鎖を形成するために相互に作用する親和性対または腕の要素により側面に位置される標的核酸相補配列を有してもよい。その予め選ばれた標的配列に対する結合剤の混成は、腕を離れて押し進め、ステム二本鎖を除去して、結合剤における構造変化をもたらすことができる。結合剤の実施形態は、相互に作用する標識を利用する。それによって、その構造変化は、検出されることができる。いくつかの実施形態において、結合剤は、少なくとも所望の標的核酸に対して実質的に相補的な一本鎖核酸配列（「標的補数配列」として本明細書にて言及された）と、相補的な核酸配列または別の親和性対の付属の要素のいずれかによって可逆的に相互に作用する標的相補配列の側面に位置する５’および３’領域と、信号を生成するための相互に作用する標識部分を含むシグナリング部分とを含んでもよい。いくつかの実施形態において、結合剤は、標的相補配列が標的に結合されない場合に検出の状態の下で互いに混成することにより可逆的に相互に作用する、実質的に相補的な核酸配列、または「腕」を含む。いくつかの実施形態において、シグナリング部分を含む結合剤は、単分子であってもよい（すなわち、上記のコンポーネントのすべては、１つの分子内にあってもよい）。結合剤が２分子から成る実例において、標的相補配列の半分（またはおよそ半分）、親和性対の１つの部材および標識対の１つの要素は各分子にあってもよい。

シグナリング部分の標識部分を生成する信号は、近接内の場合で十分に分割されていない場合に、少なくとも１つの標識部分が別の標識部分の少なくとも１つの物理的に測定可能な特性を変更することができるように、相互に作用するマッチした標識「対」を有してもよい。いくつかの実施形態において、標識部分は、親和性対の相互作用の状態によって互いに標識部分の近接度を調整することができるように、プローブに結合してもよい。標的がない状態において、標識部分は、親和性対のリンク相互作用によって互い近接して維持されてもよい。このコンフォメーションは「閉ざされた（ｃｌｏｓｅｄ）」状態と呼ばれてもよい。シグナリング部分の検出可能な信号が、閉ざされた状態で生成されない場合（それは、一般に大部分の実施形態でのケースである）、閉ざされた状態は、「オフ」状態にあると見なすことができる。

標的相補配列がその標的に混成する実例において、構造変化が、親和性対および結果的に相互に作用する標識の標識部分を分割する結合剤内にて生じてもよい。このコンフォメーションは「開かれた」状態（それは、大部分の実施形態で「オン」状態にあると見なすことができる）と呼ばれてもよい理論に束縛されるものではないが、分離は、標的相補配列〜標的配列ヘリックスの形成の熱力学によって駆動されると考えられる。標的相補配列〜標的配列ヘリックスの形成は、完全であるか、または傷がついているかにかかわらず、分析状態下の親和性対の親和力を克服する。親和性対の分離が標識部分の相互作用を変更するので信号が生成され、結合剤に結合される少なくとも１つの標識部分の少なくとも１つの特性の差分が測定されてもよい。

いくつかの実施形態において、相互に作用する標識を有する結合剤は、結合剤が開かれたか閉ざされたかに依存して相違する測定可能な特性（例えば、検出可能な信号）を有する。一般に、測定可能な特性は、標識部分の相互作用の機能、および、それらの分離の機能として変化するそれらの部分間の相互作用の度合いである。

以上に論じられたように、結合剤は、閉ざされたコンフォメーションおよび開かれたコンフォメーションを有してもよい。閉ざされたコンフォメーションにおいて、標識部分は、互いに「隣接」していてもよい。すなわち、それらは、相互に作用しなくてもよい場合、信号が（例えば、検出量、品質、レベル、などにおいて）開かれたコンフォメーションとは異なるように、相互に作用するために十分に閉ざされてもよい。あるケースでは、差分が可能な限り大きなことは望ましいかもしれない。あるケースでは、「オフ」状態において、測定可能な特性が、限りなくゼロに近い信号であることは望ましいかもしれない。

いくつかの実施形態において、測定可能な特性（例えば、検出可能な信号）は、蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）対の少なくとも１つの要素の刺激に起因する特性的な光信号であってもよい。あるケースでは、信号は、例えば、検出可能な産物を形成するための基質上の酵素／抑制剤対または酵素／共同因子対の動作から結果として生じる色変化であってもよい。いくつかの実施形態において、シグナリング部分を含む結合剤は、標識部分が閉ざれた位置にある結合剤により隣接しているか、または開かれた位置にある結合剤により分割されるかに、そのレベルが依存する特性信号を有してもよい。

いくつかの実施形態において、標識部分の選択は、信号が生成される状態において、規定することができる。あるケースでは、標識部分の選択は、各状態において個別の信号が生成されると規定することができる。いくつかの実施形態において、相互に作用する標識部分は、蛍光団／消光剤対であってもよい。いくつかの実例において、相互に作用する標識部分は、結合剤に共有結合で結合されてもよい。あるケースでは、相互に作用する標識部分は、標的核酸に対して相補的でない結合剤の部分に付けるために結合されてもよい。一部の実例において、結合剤が開かれた状態における標的核酸に結合され、かつ適合する光源により刺激される場合、シグナリング部分は、特有の波長の正の蛍光信号を生成することができる。

以上に論じられたように、結合剤は、ステップ１３０に示すように、標的核酸に固定化されてもよい。固定化は、任意の適切な技術を用いて実行されてもよい。例えば、いくつかの実施形態において、結合剤および標的核酸は、固定化（例えば、混成）を容易にするために、一定期間にわたって加熱され、その後、冷却されてもよい。いくつかの実施形態において、固定化は、加熱／冷却サイクルの必要性なしで、生じてもよい。あるケースでは、標的核酸に結合剤を固定化する化学反応が生じてもよい。例えば、架橋試薬は、結合剤および標的核酸を共有結合で接合するために用いられてもよい。

固定化は、本発明の一部の実施形態によれば、短期間で達成されてもよい。いくつかの実施形態において、標的核酸を定量化するための全体の所要時間は、迅速な固定化時間のおかげで、著しく低減することができる。例えば一部の実施形態において、迅速な温度サイクラーを含むマイクロ流体システムは、１時間未満で（一部の実施形態においては３０分未満で、一部の実施形態においては２０分未満で、一部の実施形態においては１０分未満で、一部の実施形態においては５分未満で、一部の実施形態においては１分未満で、一部の実施形態においては３０秒未満で、一部の実施形態においては１０秒未満で、一部の実施形態においては５秒未満で、一部の実施形態においては１秒未満で、および一部の実施形態においては実質的に瞬間的に）反応が完了することができるように、結合剤および標的核酸が所望のターゲット温度を達成することを可能にするために用いられてもよい。温度サイクリングのためのデバイスおよび方法は、例えば、セルデン（Ｓｅｌｄｅｎ）らにより「標的核酸の迅速な多重化増幅のための方法（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ Ｒａｐｉｄ Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｅｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｔａｒｇｅｔ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ）」と題されて、２００８年４月４日に出願された米国特許出願第２００９／００２３６０３号公報（その文献は参考文献として本明細書に援用される）に記載されている。

いくつかの実施形態において、シグナリング部分は、検出可能な信号（すなわち、測定可能な特性）を生成してもよい。いくつかの実施形態において、検出可能な信号は、光信号（例えば、蛍光または化学発光）であってもよい。以上に論じられたように、いくつかの実施形態において、検出可能な信号は、蛍光共鳴エネルギー転移（ＦＲＥＴ）対の少なくとも１つの要素の刺激に起因する特性的な光信号であってもよい。いくつかの実施形態において、検出可能な信号は、特有の波長または波長領域を有する光の吸光度であってもよい。あるケースでは、信号は、例えば、検出可能な産物を形成するための基質上の酵素／抑制剤対または酵素／共同因子対の動作から結果として生じる色変化であってもよい。いくつかの実施形態において、検出可能な信号は、放射性同位体からなどの射光であってもよい。当業者は、他の適切な検出可能な信号を識別し、実施することができるだろう。

いくつかの実施形態において、標的核酸は、ステップ１５０に示すように、定量化されてもよい。いくつかの実施形態において、定量化は、例えば、標準曲線を標的核酸濃度対生成された検出可能な信号に用いて、シグナリング部分を含む結合剤により組み合わせた標的核酸の範囲の既知濃度を含む一組の溶液の蛍光値を用いて、標的核酸の既知濃度に蛍光値をプロットして、達成されてもよい。いくつかの実施形態において、標的核酸の既知濃度を含む各溶液にとって、以上に記載されたような方法は、標的核酸に結合剤を固定化するために実行され、シグナリング部分が、その後、検出される。結果として生じたプロットに対して線形回帰などの方法を用いて、曲線を適合させることは、結合剤が標的核酸に固定化された後、試料の検出可能な信号値のを入力することにより、標的核酸の未知の濃度を有する試料における標的核酸の濃度を計算するための一般的な数式の導出を公式にあてはめることを可能にするかもしれない。

別の実施形態において、シグナリング部分の物理的性質は、標的核酸の濃度を究明するために用いられてもよい。例えば、特有の波長における蛍光性のシグナリング部分のモル吸光係数および量子収量は、当業者に知られている溶液を用いる技術において標的核酸の濃度を究明するために用いられてもよい。一般に、標的核酸に固定化された結合剤を有する標的核酸の分数は、究明され定量化の要因の一つに含められる。標的核酸の未知の濃度を有する試料における標的核酸の濃度は、当業者により理解されるようにモル吸光係数および量子収量に対応する波長で試料の蛍光を測定することにより、モル吸光係数および量子収量を用いて究明することができる。

一部の実施形態において、本明細書に記載された方法のための本発明により利用される技術およびシステムは、標的核酸の迅速な分析または定量化を可能にする。例えば、ステップ１２０、１３０、１４０、および１５０を含む方法は、１０秒以内に、３０秒以内に、１分以内に、２分以内に、５分以内に、１０分以内に、２０分以内に、３０分以内に、４５分以内に、または１時間以内に完結できる。あるケースでは、ステップ１２０、１３０、および１４０を含む方法は、１０秒と１時間との間に、１０秒と３０分との間に、１０秒と５分との間に、１０秒と２分との間に、または１０秒および１分との間に完結してもよい。

いくつかの実施形態において、標的核酸の解析は、標的核酸の小量の定量化を可能にしてもよい。例えば、本方法は、１００ナノグラム未満、５０ナノグラム未満、２０ナノグラム未満、１０ナノグラム未満、５ナノグラム未満、２ナノグラム未満、１ナノグラム未満、１００ピコグラム未満、１０ピコグラム未満、１ピコグラム未満、１００フェムトグラム未満、１０フェムトグラム未満、または１フェムトグラム未満の標的核酸を定量化することができてもよい。あるケースでは、本方法は、１ナノグラム〜１００ナノグラム、１０ピコグラム〜２０ナノグラム、または１フェムトグラム〜５ナノグラムの標的核酸の量を計ることができてもよい。いくつかの例において、本方法は、１ナノグラム／マイクロリットル〜５０ナノグラム／マイクロリットル、１ピコグラム／マイクロリットル〜１０ナノグラム／マイクロリットル、または１フェムトグラム／マイクロリットル〜５ナノグラム／マイクロリットルの標的核酸の量を計ることができてもよい。いくつかの実施形態において、本方法は、１０^５未満の分子、か、１０^５〜１０^１５の分子、１０^５〜１０^１２の分子、１０^５〜１０^１１の分子、１０^５〜１０^１０の分子、または１０^５〜１０^９の分子を定量化することができてもよい。いくつかの実施形態において、定量化は、標的核酸を増幅するための必要性なしに、低濃度（例えば一部の法医学的試料）で天然の標的核酸を含む試料のためにでも、達成されてもよい。もちろん、これらの範囲外の量および／または濃度における標的核酸検出の解析または定量化は、当業者または通常の技術者により達成されてもよい。

一部の実施形態において、標的核酸は、少容量の溶液で解析されてもよい。一部の実施形態において、マイクロ流体システムでの解析の実行は、解析の実行のための溶液の容量を低減することに有用かもしれない。いくつかのケースでは、検出は、１ミリリットル未満の溶液、１００マイクロリットル未満の溶液、１０マイクロリットル未満の溶液、１マイクロリットル未満の溶液、１００ナノリットル未満の溶液、１０ナノリットル未満の溶液、または１ナノリットル未満の溶液で実行されてもよい。いくつかの実施形態において、少容量の溶液を用いることによる解析は、大量の溶液を用いる場合よりも、より迅速に実行することができる。したがって、マイクロ流体システムでの解析の実行は、短期間で（すなわち、１時間以内で、または本明細書に別記されるようにさらに少ない時間で）の標的核酸の定量化に有用かもしれない。

以上に論じられたように、いくつかの実施形態において、マイクロ流体システムにおいて方法を実行することは有用かもしれない。すべての実施形態ではなく、いくつかの実施形態において、本明細書に記載されたシステムおよび方法のすべてのコンポーネントは、マイクロ流体である。好適なマイクロ流体システムの例は、「統合化された核酸分析（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ａｎａｌｙｓｉｓ）」と題され、２００８年４月４日にタン（Ｔａｎ）らによって出願された国際特許出願第ＷＯ／２００８／１２４１０４号パンフレット、および「核酸およびタンパク質の解析のための耐久性が高められた装置（Ｒｕｇｇｅｄｉｚｅｄ Ａｐｐａｒａｔｕｓ ｆｏｒ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ）」と題され、２００５年５月１９日にタン（Ｔａｎ）らによって出願された米国特許出願第２００６／０２６０９４１号公報において記載されており、それらの文献は参考文献として本明細書に援用される。「マイクロ流体」は、本明細書に用いられるように、少なくとも一つの寸法が１ミリメートル未満であるチャネルを指す。用語「マイクロ流体デバイス」または「バイオチップ」は、一般に、巨視的規模の分析化学装置が何百または何１０００倍小さくかつ効率的なデバイスに置き換えられて、小容量（例えば、マイクロリットル、ナノリットル、またはピコリットル）の液体を操作することができる構造を作り出すために、例えば、半導体生産技術を用いることにより製造されたデバイスを指す。例えば、バイオチップのチャネルは、１２７ミクロン×１２７ミクロンから４００ミクロン×４００ミクロンまでの範囲の断面の寸法を有していてもよいし、リザーバは、４００ミクロン×４００ミクロンから１．９ミリメートル×１．６ミリメートルまでの範囲の断面であってもよい。いくつかの実施形態において、チャネルおよび／またはリザーバは、長さ０．５ミリメートルのような短い距離から数十ミリメートルの（例えば、２０ミリメートルを超える、３０ミリメートルを超える、４０ミリメートルを超える、または５０ミリメートルを超える）距離まで延伸してもよい。

いくつかの実施形態において、マイクロ流体システムは、人間の介入の必要性を低減する自動システムであってもよい。自動システムは、標的核酸の定量化時間を低減するために有用かもしれない。例えば、自動マイクロ流体システムは、ユーザ介入の必要性を自動的に削減または低減する１つ以上のステップを実行してもよく、したがって、１つ以上のステップを実行するための時間を低減することができる。したがって、自動化は、いくつかの実施形態において、１時間以内に（または、本明細書に別記されるように、さらに短い時間で）標的核酸を定量化するための能力の一因となってもよい。

いくつかの実施形態において、本明細書に記載された定量化方法は、別のプロシージャを試料に対して実行する前に標的核酸に対して実行されてもよい。例えば、定量化は、標的核酸上の反応（例えば、増幅反応）の前に標的核酸に対して実行されてもよい。プロシージャの他の例は、核酸精製、核酸増幅（例えば両方のシングルプレックスおよびマルチプレックス終了点ＰＣＲ、リアルタイムＰＣＲおよびリバース転写ＰＣＲ）、後増幅核酸クリーンアップ、核酸配列決定、核酸結紮、核酸雑種形成、ＳＮＰ分析、および電気泳動の分離を含む。あるケースでは、１つ以上のプロシージャが、同じマイクロ流体システムを用いて、標的核酸に対して実行されてもよい。例えば、標的核酸のＰＣＲおよび定量化は、同じマイクロ流体システムを用いて実行されてもよい。いくつかの実施形態において、プロシージャは、マイクロ流体システムのアクティブな領域において実行されてもよい。あるケースでは、マイクロ流体システムは、１つ以上のアクティブな領域を含んでもよい。いくつかの実例において、各プロシージャは、別々のアクティブな領域において実行されてもよい。いくつかの実施形態において、アクティブな領域は、１つ以上のプロシージャに用いられてもよい。例えば、アクティブな領域は、試料および結合剤を混合するために用いられてもよく、試料の究明のための用いられてもよい（すなわち、アクティブな領域は混合領域および検出領域の両方であってもよい）。別の例において、マイクロ流体デバイスのアクティブな領域の少なくとも１つは、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を介して核酸を増幅するように構成された領域を含んでもよい。いくつかの実施形態において、増幅ステップが、核酸を増幅するように構成されたアクティブな領域内で発生してもよい。

いくつかの実施形態において、本明細書に記載された定量化方法は、試料のパラメータを調整するためのフィードバックを提供してもよい。例えば、標的核酸定量化の結果は、試料を薄めるべきか、濃縮するべきかを示してもよい。標的核酸定量化の結果は、また、試料をどの程度に希釈するか、濃縮するかを示してもよい。いくつかの実施形態において、正確な量の核酸が後続の処理のために利用されることを可能にするために、標的核酸定量化の結果は、自動システムにおいて用いられてもよい。あるケースでは、定量化は、例えば、他の処理ステップの前後に所定の試料で複数回実行されてもよい。あるケースでは、試料の個別の容量は、一つの定量化ステップに続く試料の並行処理を可能にするために（例えば、定量化に基づいて、個別の量の標的核酸は、ＰＣＲ、ＳＮＰ解析、またはＤＮＡ塩基配列決定などの後続の処理のために計量されることができる）、バイオチップの個別の領域への経路を選択することができる。

いくつかの実施形態において、バイオチップは、試料操作のための複数のマイクロ流体チャネルおよびアクティブな領域を含んでもよい。いくつかの実施形態において、試料流体の選択された量がバイオチップのアクティブな領域を対象にしてもよい場合、本方法は、定量化ステップの後に１ステップを含んでもよい。いくつかの実施形態において、選択された量は、定量化ステップの結果に基づいて、少なくとも部分的に究明されてもよい。

いくつかの実施形態において、ＰＣＲ増幅などのプロシージャを受けた標的核酸の量を制御することは、望ましいかもしれない。以上に記載されるように、いくつかの実施形態において、標的核酸の量の制御は、標的核酸を定量化し、その後、プロシージャを受けるべき標的核酸の所望量をすることにより、達成することができる。但し、いくつかの実施形態において、プロシージャは、定量化の前に、または標的核酸の定量化なしで、標的核酸に対して実行されてもよい。例えば、いくつかの実施形態において、標的核酸のＰＣＲ増幅は、まず標的核酸を定量化せずに実行されてもよい。いくつかの実施形態において、複製可能な量の精製された標的核酸を生成するために、標的核酸が試料から精製されてもよい。例えば、標的核酸の量は「カットオフ」アプローチを用いることにより制御することができる。このアプローチにおいて、標的核酸を閾値まで結合することができる、その上に実質的に付加的な標的核酸が結合されない（すなわち、結合膜には規定された核酸結合能力があってもよい）結合膜が用いられてもよい。一般に、結合膜への標的核酸の結合は、標的核酸をする結合ために、少なくとも試料の一部を結合膜に接触することを含む。いくつかの実施形態において、核酸結合能力は、精製された標的核酸の複製可能な量と本質的には同一である。

いくつかの実施形態において、実質的に、結合膜閾値よりも多い量のすべて標的核酸が、結合膜によって保持されないように、試料量は、試料内に含まれる標的核酸量の範囲が、結合膜閾値を超えるように選択することができる。したがって、結合膜閾値を超えた標的核酸の量を含むが、標的核酸の未知量を含む試料に対して、標的核酸の量を、定量化なしで制御することができる。このようなアプローチは、例えば、定量化ステップをなくすことにより、プロシージャを実行するための所要時間を低減するために有用かもしれない。

あるケースでは、結合膜は１つ以上の層を含んでもよい。いくつかの実施形態において、結合膜による結合された核酸の量（すなわち、結合能力）は、結合膜における層数とともに実質的に直線的に比例する。いくつかの実施形態において、結合能力は、結合膜の直径に比例する。結合膜の直径は、例えば、少なくとも０．１ミリメートル、少なくとも０．５ミリメートル、少なくとも１ミリメートル、少なくとも２ミリメートル、少なくとも５ミリメートル、または少なくとも１０ｍｍであってもよい。いくつかの実施形態において、結合膜は、核酸を結合できるシリカ膜であってもよい。非限定的な例として、図１２は、ＤＮＡ投入の範囲にわたる直径１ミリメートルの結合膜の結合性能を示す。

いくつかの実施形態において、結合膜の閾値（すなわち、飽和量）は、少なくとも５０ナノグラム、１００ナノグラム、少なくとも２００ナノグラム、少なくとも３００ナノグラム、少なくとも４００ナノグラム、少なくとも５００ナノグラム、少なくとも６００ナノグラム、少なくとも７００ナノグラム、少なくとも８００ナノグラム、または、さらに多い量であってもよい。いくつかの実施形態において、結合膜の結合効率は、過剰な標的核酸が結合膜を飽和させるために必要とされるように、１００％未満であってもよい。例えば、少なくとも１０％以上、少なくとも２０％以上、少なくとも５０％以上、少なくとも１００％以上、または、少なくとも２００％以上の標的核酸は、結合膜の閾値よりも、結合膜を飽和させるために必要とされる。

標的核酸は、任意の好適な方法を用いて、結合膜から溶出されてもよい。例えば、標的核酸は、特定の範囲内のｐＨまたは特定の範囲内の塩濃度を有する結合膜を通じて流体を流すことにより溶出されてもよい。他の好適な方法は、当業者にとって既知であろう。

いくつかの実施形態において、定量化分析は、必要な工程ステップのすべてに互換性をもつように設計されたマイクロ流体バイオチップにおいて処理することができる。精製されたＤＮＡ溶液の一部が定量化モジュールの対象にされてもよく、かつ残存するＤＮＡが例えばＳＴＲ増幅のために等分するために利用可能である場合、これは、例えばヒトの法鑑定ケースワークバイオチップにおいて有用になりえる。アプローチの主眼点は、増幅を受けさせるための容量を規定するために、定量化データが、利用されてもよいということである。用途に依存して、正確な容量または近似の容量は、マイクロ流体的に計量されるだろう。例えば、精製されたＤＮＡの溶出容量が１００マイクロリットルであり、定量化のために利用されたＤＮＡ溶液の容量が約１マイクロリットルであるならば、大多数のＤＮＡは、ＳＴＲ増幅に利用可能だろう。核酸の量が少ないと知られているが正確な量が未知であるいくつかの実施形態（例えば、法医学的接触試料（ｆｏｒｅｎｓｉｃ ｔｏｕｃｈ ｓａｍｐｌｅｓ））において、１０％（またはそれ以上）の溶出されたＤＮＡは、定量化のために利用することができる。

いくつかの実施形態において、定量化方法は、マイクロ流体システムを用いて実行されてもよい。マイクロ流体システムは、標的核酸、結合剤、および他の試薬を含む試料が、バイオチップを通じて流出されることを可能にしてもよい。例えば、単一のバイオチップは、ＰＣＲ増幅、断片の分離および検出、核酸配列決定、限外ろ過、および核酸定量化のための領域を有してもよい。いくつかの実施形態において、この多機能のバイオチップは、１つ以上の試料を並列に処理してもよい。いくつかの実施形態において、試料は、１つ以上のプロシージャが実行されてもよいバイオチップにおいて、１つ以上の領域に流出されてもよい。１つ以上のプロシージャが実行される場合、試料は、流出または静止してもよい。例えば、試料はマイクロ流体デバイス内に含まれているが、検出が実行される場合、一部の実施形態において、それは必ずしも流出していなくてもよい。

あるケースでは、２つ以上のプロシージャが同じ領域における試料に対して実行されてもよい。いくつかの実施形態において、以下に記載されるバイオチップは、以上に言及されるように、１つ以上の他のプロシージャにより標的核酸定量化の統合化を可能にしてもよい。したがって、ほとんど無限の数の組み合わせを、複雑な一組の操作がバイオチップ上で完結することを可能にする、バイオチップに設計することができる。当業者は、本発明のバイオチップが本質的には無限のプロセスの複雑性により多くの異なる型の解析を実行するように設計されることができることを、十分に理解するだろう。

チャネルの「断面寸法」は、流体の流れの方向に対して垂直に測定される。本発明のコンポーネントにおける大部分の流体チャネルは、２ミリメートル未満の（いくつかのケースでは１ミリメートル未満の）最大断面寸法をもつ。一組の実施形態において、本発明の実施形態を含むすべての流体チャネルは、マイクロ流体であるか、または多くとも２ミリメートルまたは１ミリメートルの最大の断面寸法を有する。別の実施形態において、流体チャネルは、部分的に単一のコンポーネント（例えば、エッチング基板または成型されたユニット）により形成されてもよい。もちろん、より大きなチャネル、チューブ、チャンバ、リザーバなどを、大量に流体を蓄積し、かつ本発明のコンポーネントに流体を送るために用いることができる。一組の実施形態において、本発明の実施形態を含むチャネルの最大断面寸法は、５００ミクロン未満、２００ミクロン未満、１００ミクロン未満、５０ミクロン未満、または２５ミクロン未満である。

「チャネル」は、本明細書に用いられるように、少なくとも部分的に流体の流れを対象にするアーティクル（基質）上の、またはそのアーティクル内の機構を意味する。チャネルは、任意の断面形状（円形、楕円形、三角形、不整形、正方形、または矩形など）を有することができ、覆われるようにすることもできるし、覆れないようにすることもできる。チャネルが完全に覆われる実施形態において、チャネルの少なくとも１つの部分は、完全に包囲される断面を有することができるし、または、全体のチャネルは、その全長に沿って、その入口および出口を除いて、完全に包囲されてもよい。チャネルは、また、少なくとも２：１（より典型的には、少なくとも３：１、５：１もしくは１０：１、またはそれ以上）の縦横比（平均断面寸法に対する長さ）を有してもよい。開放チャネルは、液体輸送に対する制御を容易にする特性、（例えば、構造特性（細長い刻み）および／または物理的または化学的特性（疎水性対親水性））または流体上の力（例えば、含有力）を及ぼすことができる他の特性を一般に含むだろう。チャネル内の流体は、部分的にまたは完全にチャネルを埋めてもよい。開放チャネルが用いられるいくつかのケースでは、流体は、例えば、表面張力（すなわち、凹または凸メニスカス）を用いてチャネル内に保持されてもよい。

チャネルは、例えば、約５ｍｍまたは２ｍｍ未満、約１ｍｍまたは約５００ミクロン未満、約２００ミクロン未満、約１００ミクロン未満、約６０ミクロン未満、約５０ミクロン未満、約４０ミクロン未満、約３０ミクロン未満、約２５ミクロン未満、約１０ミクロン未満、約３ミクロン未満、約１ミクロン未満、約３００ｎｍ未満、約１００ｎｍ未満、約３０ｎｍ未満、または約１０ｎｍ未満の流体の流れに対して垂直に最大寸法を有する任意のサイズであってもよい。あるケースでは、チャネルの寸法は、流体がアーティクルまたは基質を介して自由に流出することができるように選択されてもよい。チャネルの寸法は、また、例えば、チャネル内の流体の一定の容積レートまたは直線流レートを可能にするために選択されてもよい。もちろん、チャネルの数およびチャネルの形状は、当業者にとって既知の任意の方法により変更することができる。あるケースでは、１つ以上のチャネルが用いられてもよい。例えば、互いに内部に配置されて、互いに隣接して配置された、互いに交差するように配置されたなどの場合、２つ以上のチャネルが用いられてもよい。

本発明のマイクロ流体チップ（すなわち、バイオチップ）は、主としてプラスチックから構成することができる。有用な種類のプラスチックは、不飽和（部分的に不飽和）または飽和環状オレフィン共重合体「ＣＯＣ」、不飽和（部分的に不飽和）または飽和環状オレフィンポリマー「ＣＯＰ」、ポリ塩化ビニル（メチル）メタクリル酸塩「ＰＭＭＡ」、環状オレフィンポリカーボネート「ＰＣ」、ポリプロピレン「ＰＰ」、ポリエチレン「ＰＥ」、ポリエーテルエーテルケトン「ＰＥＥＫ」、ポリ塩化ビニル（ジメチルシロキサン「ＰＤＭＡ」およびポリイミド「ＰＩ」を含むが、限定はされない。用語「ポリ塩化ビニル（メタクリル酸メチル）」または「ＰＭＭＡ」は、本明細書で用いられるように、米国特許第５，５６１，２０８号、第５，４６２，９９５号および第５，３３４，４２４号（各々は参考文献として本明細書に援用される）に記載されていたポリマーと同様、Ｐｌｅｘｉｇｌａｓ（商標）、Ｌｉｍａｃｒｙｌ（商標）、Ｒ−Ｃａｓｔ（商標）、Ｐｅｒｓｐｅｘ（商標）、Ｐｌａｚｃｒｙｌ（商標）、Ａｃｒｙｌｅｘ（商標）、ＡＣｒｙｌｉｔｅ（商標）、ＡＣｒｙｌｐｌａｓｔ（商標）、Ａｌｔｕｇｌａｓ（商標）、Ｐｏｌｙｃａｓｔ（商標）およびＬｕｃｉｔｅ（商標）の商品名として販売されるものを含む（但し限定されない）メタクリル酸メチルの合成高分子を意味する。いくつかの実施形態において、増幅反応に利用されるための最大温度よりも高いガラス遷移温度を有するプラスチックが選択されてもよい。これらのプロセスおよび材料のいくつでも、本明細書に記載されたバイオチップを製造するために用いることができる。いくつかの実施形態において、射出成形、熱型押しおよび／または機械加工を含むことが用いられてもよい。例えば、バイオチップは、プラスチック基板（例えば、ＣＯＣまたはＣＯＰベースポリマー（現在、Ｔｏｐａｓ（商標）、Ｚｅｏｎｅｘ（商標）、Ｚｅｏｎｏｒ（商標）およびＡｐｅｌ（商標）の商品名で販売））の射出成形により用意することができる。この製造方法において、形成されるべき特徴の原板から構成される射出金型および金型インサートは、機械加工および後続の表面研磨により製造されてもよい。金型およびインサートは、ともに、基板層が製造されることを可能にし、形成された基板がチャネル、反応チャンバ機構およびビアホールを含むことを可能にしてもよい。いくつかの実施形態において、基板およびカバー層は、熱および圧力の印加によって接合された拡散になりえる。射出成形品は、肉眼的特徴（液だめなどの）および／または微細な特徴（毛状のバルブなどの）を含んでもよい。あるケースでは、これらの寸法が異なる特徴の射出成形に対するアプローチが変化する場合があるので、一組のパーツの微細な特徴および別の組のより大きな特徴を生成することは好ましいかもしれない。大きなリザーバ（一辺が数ミリメートル（約１〜５０ミリメートル）で、かつ深さ数ミリメートル（約１〜１０ミリメートル）で測定し、数百マイクロリットルまで（または、それ以上に）適合することができる）のために、従来の成形には、機械加工された射出成形ツールを用いることができる。いくつかの実施形態において、そのツールは、ツールの原板であるべき機械加工されたグラファイト電極を用いて鋼または他の金属の中に焼きつけることができる。材料に関するより多くの情報および製造方法は、「標的核酸の迅速な多重化増幅のための方法（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ Ｒａｐｉｄ Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｅｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｔａｒｇｅｔ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ）」と題され、セルデン（Ｓｅｌｄｅｎ）らによって２００８年４月４日に出願された米国特許出願第２００９／００２３６０３号公報（それは参考文献として本明細書に援用される）に含まれている。

いくつかの実施形態において、マイクロ流体システムは、計器およびマイクロ流体チップ（すなわちバイオチップ）を含んでもよく、マイクロ流体チップは、計器と関連づけられる。様々な実施形態において、バイオチップは、バイオチップに統合された複数の特徴を有してもよい。例えば、バイオチップは、試料挿入、異物の除去、干渉核酸の除去、重要な細胞の濃度、核酸の増幅、温度サイクリング、流体の混合、シグナリング部分の検出などを容易にするコンポーネントを含んでもよい。いくつかの実施形態において、バイオチップの前処理コンポーネントは、試料を受け入れ、細胞を含む微粒子および異種の核酸の初期除去を実行し、重要な細胞を少容量に濃縮する。いくつかの実施形態において、スワブを受け入れることができるサンプルチューブが用いられてもよい。溶解および抽出ステップを実行するために、試料チューブが、例えば、溶菌液により満たされてもよい。以上に論じられたように、スワブは、血痕、指紋、水、エアフィルター、または臨床部位（例えば、口腔スワブ、傷スワブ、鼻スワブ）を含む多くの細胞含有部位に接して配置することができる。

いくつかの実施形態において、バイオチップは、パティキュレートフィルタ、精製フィルター、ビーズまたは他の材料を含んでもよい。

以上でより詳細に記載されたように、様々な溶解および抽出方法を用いることができる。いくつかの実施形態において、溶解および抽出は、１０^６個以下の細胞を含む試料に対して実行することができる。用途に依存して、１０^５未満、１０^４未満、１０^３未満、１０^２未満、１０未満（および多複写配列が解析されることになっている場合では１未満）の少数の開始細胞は、本発明のバイオチップおよび方法において利用できない。

いくつかの実施形態において、核酸精製は、入出力チャネルの間に精製媒体を挿入することにより達成することができる。あるケースでは、精製媒体は、シリカファイバ系であり得るし、生体サンプルを溶解し、標的核酸を露出し、標的核酸を精製媒体に結合するためにカオトロピック塩試薬を用いることができる。次に、溶解物は、核酸を結合するために精製媒体を通じて、入力チャネルを介して移送されてもよい。いくつかの実施形態において、結合された核酸は、汚染物質を取り除くためにエタノール系バッファによって洗浄されてもよい。あるケースでは、これは、精製膜を通じて、入力チャネルを介して洗浄試薬を流出することにより達成することができる。いくつかの実例において、結合された核酸は、次に、適合するバッファ（例えば、薄塩バッファ）を流出することにより、膜から溶出されてもよい。他の固相は、当業者にとって既知であろう。本質的には、従来の設定における機能的な任意の核酸精製方法も、バイオチップに適応する場合がある。

いくつかの実施形態において、バイオチップは、また、機能モジュールの統合するための異なるコンポーネントを含んでもよい。これらのモジュールは、例えば、バイオチップ上のポイントツーポイントからの液体の移送、流量レートに依存するかもしれないプロセスのための流量レートの制御（例えば、洗浄ステップ、粒子分離、および溶出）、バイオチップ上の時間および空間における流体運動のゲーティング（例えば、ある形式のバルブの利用を通じて）、および流体の混合を含む。

様々な方法は、液体輸送および制御される流体の流れに用いることができる。典型的な方法の１つは、流体または干渉ガスまたは流体のいずれかに接するプランジャが流体を駆動する場合の、動作中にプランジャにより排出される容量に基づいた正確な距離の容積移送式ポンピングである。このような方法の一例は、シリンジポンプである。別の典型的な方法は、空気的に、磁気的に、またはそうでなければ始動される、統合化エラストマ膜の利用である。いくつかの実施形態において、これらの膜は、規定されたスペース内に流体を含むために、および／また流体の早すぎた混合または送出を防ぐために、バルブとして用いることができる。あるケースでは、直列に用いられた場合、これらの膜は、蠕動ポンプと類似したポンプを形成することができる。例えば、同期され連続する膜の操作によって、先行側の膜が動流体を受け入れるために（およびデバイスのチャネル内の排気も排出するために）開かれながら、流体は、その後続側から「押し出される」ことができる。流体を駆動し、流量レートを制御する別の方法は、先行、後続、またはその両方の流体のメニスカスにて圧力を変更することにより、流体自体に直接真空または圧力をかけることである。適切な圧力（例えば、０．０５〜３０ポンド平方インチの範囲）が印加されてもよい。流量レートは、また、流体チャネルのサイズを適切に合わせることにより制御することもできる。理論に束縛されるものではないが、流量レートは、流体および水力直径の間の圧力差の４乗に比例し、チャネルまたは液体のプラグの長さおよび粘性に反比例する。液体輸送のための他の方法は、当業者にとって既知であろう。

いくつかの実施形態において、流体ゲーティングは、様々な有効なバルブを用いて達成することができる。あるケースでは、有効なバルブは、チップに直接組み込むことができる圧電バルブまたは電磁バルブを、いくつかの実例において、含むことができる。いくつかの実施形態において、バルブは、チップの外側にあってもよいが、メインチップ本体上のポートにより流体連通する。いくつかの実施形態において、毛状のマイクロバルブなどの受動的なバルブが用いられてもよい。あるケースでは、マイクロバルブは、例えば、流体に印加された圧力がクリティカルなバルブより下流である場合に、流れを妨害するために、界面エネルギーおよび／またはシャープエッジなどの形体を用いることができる。

混合は、様々な手段において達成することができる。いくつかの実施形態において、拡散は、例えば、単一のチャネルまたはチャンバの中に２つの流体を共同注入することにより、流体を混合するために用いることができる。いくつかの実施形態において、混合は、改善させることができる。例えば、薄層化などの技術（流体流が１回以上分離され再結合される）が用いられてもよい。別の実施形態において、流体チャネル内のカオス的移流は、例えば、チャネル内のミクロ組織の利用を通じて、生成することができる。有効なポンプおよびバルブを用いるシステムにおいて、混合は、デバイス上の２点間の流体を複数回サイクリングすることにより達成することができる。

典型的な統合化バイオチップは、図２に示される。デバイスは、試薬の分配および計測、試料との試薬の混合、チップの温度サイクリング部への試料の送出し、および温度サイクリングの機能を統合する。この典型的なバイオチップは、ＰＣＲ増幅（１０１）、サンガー配列決定（１０２）、および限外ろ過（１０３）、および定量化（１０４）を実行するいくつかの機能的な領域を有する。個別の試料（精製されていない、部分的に精製された、または精製されたＤＮＡを含む）は、試料投入ポート（１０５）に移送されてもよい。ＰＣＲ反応溶液は、バイオチップに移送され、ＰＣＲ試薬リザーバおよびチャネル（１０６）上の空気式圧力を介して、４つの（１０１内の）増幅反応チャンバ内の試料とともに混合されてもよい。温度サイクリングに続いて、増幅された試料は、領域１０２の配列決定するチャンバに（空気式圧力によって再び）移送されてもよい。いくつかの実例において、配列決定する反応溶液（例えば、サンガー配列決定反応溶液）は、バイオチップに移送され、配列決定する試薬リザーバおよびチャネル（１０７）上の空気式圧力を介して、４つの増幅された試料とともに混合されてもよい。サイクル配列決定に続いて、試料は、限外ろ過のための領域１０３に移送されてもよい。配列決定された材料が蛍光性に標識されるとともに、定量化は、領域１０４内で実行することができる。この場合には、定量化は、適正量の材料が後続の分離および検出工程に装填されたことを保証するために利用することができる。

いくつかの実施形態において、任意のＤＮＡ精製に続いて、ＤＮＡ溶液は、結合剤とともに混合されるためのチャンバに移送され、状況に応じて事前の増幅なしで、定量化のためのチャネル、領域、またはチャンバに移送されてもよい。あるケースでは、定量化に続いて、精製されたＤＮＡは、後続の処理のために測定されるだろう。いくつかの実施形態において、試料（例えば、試験液）は、分析チャンバに送られてもよい。いくつかの実施形態において、試験液は、検出領域（例えば、領域１０４）内に配置されてもよい。あるケースでは、試験液は、流出または静止していてもよい。例えば、方法は、マイクロ流体チャネル内の検出領域に試験液を流出することを含む配置ステップを含んでもよい。別の例において、本方法は、検出の間にマイクロ流体チャネルの検出領域を通じて試験液を流出することを含む配置ステップを含んでもよい。分析チャンバまたは検出領域は、いくつかの実例において、チップの温度サイクリング部内にあってもよい。いくつかの実施形態において、配置ステップは、領域で静止する試験液を保持し、かつ領域を検出領域に変換するために領域と１列に並ぶように検出器を移動することを含んでもよい。

以上に論じられるように、本システムは、温度サイクリング機能を含んでもよい。温度サイクリング機能は、２つ以上の温度間のサイクリングができてもよい。例えば、温度サイクリング機能は、加熱／冷却ができてもよい。あるケースでは、温度サイクリング機能は、バイオチップの温度サイクリング部における試料の温度を迅速に変化することができる。例えば、温度サイクリング機能は、１℃／秒、５℃／秒、１０℃／秒、２０℃／秒、３０℃／秒、５０℃／秒、１００℃／秒、または２００℃／秒のレートで試料の温度を変化することができてもよい。温度サイクリング機能は、また、特定の温度で試料の温度を一時期保持することができてもよい。

いくつかの実施形態において、分析チャンバは、入力チャネルと出力チャネルとの間に製造されてもよい。あるケースでは、本システムは、試料が分析チャンバを通じて流出されることを可能にしてもよい。いくつかの実施形態において、分析チャンバは、分析チャンバ内のシグナリング部分の検出可能な信号を検出するための検出システムに近接してもよい。例えば、いくつかの実施形態において、試料からの蛍光が測定されることを可能にするために、分析チャンバは光学的励起および検出システムに近接してもよい。

いくつかの実施形態において、本システムは、試料と相互に作用するための励起および／または検出サブシステムを含む。いくつかの実施形態において、励起サブシステムは、１つ以上の励起源を含む。いくつかの実施形態において、励起サブシステムは、励起および検出窓における励起源に焦点を合わせるおよび／または調整するために、レンズ、ピンホール、ミラー、および対物レンズを含む光学エレメントを備えた励起ビームパスを含む（但し、限定されない）。いくつかの実施形態において、試料の光学的励起は、１つ以上のレーザ（例えば、デュアルレーザーシステム）によって達成することができる。あるケースでは、レーザー発振波長は、可視領域（例えば、４００〜６５０ナノメートルの間）であってもよい。例えば、固体レーザーは、約４６０ナノメートル、４８８ナノメートル、および５３２ナノメートルの発光波長を提供することができる。これらのレーザーは、例えば、コーヒアレント（Ｃｏｈｅｒｅｎｔ）社（カリフォルニア州サンタクララ）からのコンパス（Ｃｏｍｐａｓｓ）、サファイア（Ｓａｐｐｈｉｒｅ）、およびヴェルディ（Ｖｅｒｄｉ）の製品を含む。ガスレーザーは、約４８８ナノメートル、５１４ナノメートル、５４３ナノメートル、５９５ナノメートル、および６３２ナノメートルでの可視光線にエミッションとともにアルゴンイオンおよびヘリウムネオンを含むことができる。可視領域の発光波長を備えた他のレーザーは、クリスタレーザ（ＣｒｙｓｔａＬａｓｅｒ）社（ネバダ州リノ）から市販で入手可能である。１つの実施形態において、４８８ｎｍの固体レーザーサファイア（Ｓａｐｐｈｉｒｅ）４８８−２００（コーヒアレント社（カリフォルニア州サンタクララ））が利用できる。別の実施形態において、可視範囲を超える波長を備えた光源は、可視範囲（例えば、赤外または紫外発光色素）を超える吸収および／または発光スペクトルをもつ色素の励起のために用いることができる。その代わりに、光学的励起は、発光ダイオードを含む色素励起およびランプに適切な発光波長を備えた非レーザー光源の利用によっても達成することができる。

いくつかの実施形態において、検出サブシステムは、１つ以上の光検出器と、波長分散デバイス（それは波長分離を実行する）と、励起および検出窓にあるシグナル伝達物体から発光された蛍光を収集するためのレンズ、ピンホール、ミラー、および対物レンズを含む（但し限定されない）１つまたは一連の光学エレメントとを含む。発光された蛍光は、単一の色素、または色素の組み合わせからなりえる。信号を識別して発光色素からのその寄与を究明するために、蛍光の波長分離を利用することができる。これは、例えば、ダイクロイックミラーおよび帯域フィルターエレメント（クローマ（Ｃｈｒｏｍａ）社（バーモント州ロッキンガム））を含む多数のベンダーから市販で入手可能）の利用によって達成することができる。この構成において、波長の１つの部分がパスの下方へ移動し続けるようにミラーによって反射され、かつ別の部分が通過する場合、発光された蛍光は、一連のダイクロイックミラーを介して通過する。例えば、ダイクロイックミラーの端に各自配置された一連の離散的な光検出器は、波長の特定範囲上の検出光に対して用いることができる。いくつかの実施形態において、検出に先立って波長領域をさらに狭くするために、帯域フィルターは、ダイクロイックミラーと光検出器との間に配置されることができる。波長分離信号を検出するために利用することができる光検出器は、フォトダイオード、アバランシェフォトダイオード、光電子増倍管モジュール、および電荷結合素子（ＣＣＤ）カメラを含む。これらの光検出器は、ハママツ（Ｈａｍａｍａｔｓｕ）社（ニュージャージー州ブリッジウォーター）などのサプライヤから市販で入手可能である。

ある実施形態において、単一の光学機器列を定量化およびレーザー励起蛍光検出の両方に対して用いることは有用かもしれない。例えば、所定の光学コンポーネントを２つ以上の機能に用いることによって、計器の容量、重量、およびコストを低減することが可能である。単一の光学機器列は、定量化モジュールの光学的問い合わせチャンバに対して励起源を連結し、かつ分離および検出モジュールの励起および検出窓に対して連結する光学エレメントを含んでもよい。いくつかの実施形態において、光学機器列は、また、波長分離エレメントを通じて、および光検出器に対して、定量化モジュールの光学的問い合わせチャンバ（すなわち、分析チャンバ）および分離および検出モジュールの励起および検出窓からの光を結合してもよい。いくつかの実施形態において、光学エレメントは、レンズ、ミラー、ダイクロイックミラー、帯域フィルター、スキャナ、並進ステージ、光源、および／または検出器を含む。

一般に、光学機器列は、以下の対物レンズの１つ以上を達成してもよい。あるケースでは、光学機器列は、光学的問い合わせチャンバに対して効率的に励起源を連結することにより、励起効率を最大限にしてもよい。あるケースでは、光学機器列は、分離および検出モジュールの励起および検出窓に対して効率的に励起源を連結することにより、励起効率を最大限にしてもよい。あるケースでは、光学機器列は、光学的問い合わせチャンバと検出器との間の損失を最小限にすることにより、蛍光収集効率を最大限にしてもよい。あるケースでは、光学機器列は、励起および検出窓と検出器との間の損失を最小限にすることにより、蛍光収集効率を最大限にしてもよい。あるケースでは、光学機器列は、励起パスと検出パスとの間の共有エレメントの数を最大限にすることにより、光学エレメントの数を最小限にしてもよい。あるケースでは、光学機器列は、定量化モジュールと分離および検出モジュールとの間の共有エレメントの数を最大限にすることにより、光学コンポーネントの数を最小限にしてもよい。あるケースでは、光学機器列は、定量化モジュールと分離および検出モジュールとの励起に対して単一のレーザーを用いてもよい。あるケースでは、光学機器列は一般的な波長分離および検出モジュールをマイクロ流体工学の定量化およびマイクロ流体の分離および検出モジュールに対して用いてもよい。あるケースでは、光学機器列は、市販で入手可能なコンポーネントを用いて、における、移送の振動および温度の幅広い変動に耐えることができるコンポーネントを選択してもよい。

図３および図４は、マイクロ流体工学の定量化および分離および検出の両方のための光学機器列構成の１つの実施形態の概略図を示す。励起パスは、バイオチップの定量化または分離および検出部分に対してビームパスが方向づけられることを可能にする、レーザー源（２０１）、ショートパスダイクロイックミラー（２０２）、並進ミラー（２０９）、および固定ミラー（２０８）対を含む。実例において、並進ミラー（２０９）が定量化位置にある場合、励起ビームは、レンズ（２０３）、第１の走査ミラー（２０５）、およびレンズおよび対物レンズのアセンブリ（２０４）に対して方向づけられてもよい。走査ミラー（２０５）は、バイオチップ内の定量チャネル（２０６）の各々に励起ビームを方向づけてもよい。その代わりに、分離および検出位置での並進ミラー（２０９）により、励起ビームは、レンズ（２０３ｂ）、第２の走査ミラー（２０５ｂ）、およびレンズおよび対物レンズのアセンブリ（２０４ｂ）に対して方向づけられてもよい。第２の走査ミラー（２０５ｂ）は、バイオチップ内の分離および検出チャネル（２０７）の各々に励起ビームを方向づけてもよい。この構成において、レーザー源（２０１）は、定量化および検出および分離ビームパスに対して共通である。レーザーに対する別の光学的励起ソースは、ＬＥＤおよびランプを含む。

検出ビームパスは、波長分離および検出エレメント（２１１）、ピンホール（２１０）およびレンズ（２０３）を含んでもよい。検出ビームパスおよび励起ビームパスは、ダイクロイックミラー（２０２）から定量チャネル（２０６）、およびダイクロイックミラー（２０２）から分離および検出チャネル（２０７）まで、共通要素を共有してもよい。波長分離エレメントは、入射する蛍光の波長成分を分割するために一組のダイクロイックミラーおよび帯域フィルターを含んでもよい。これらは、個別素子でありうるし、個別素子は、単一の半組立部品において統合化できる。その代わりに、波長分離は、スペクトルグラフまたはプリズムにより達成することができる。検出エレメントは、複数のアノードを備えた離散的または統合化されたモジュールになりえるＰＭＴを含む。この光学機器列構成において、波長分離および検出モジュール（２１１）は、定量化および分離および検出モジュールに共通であってもよい。

この光学機器列において、並進ミラー（２０９）および固定ミラー（２０８）は、マイクロ流体の定量化、またはマイクロ流体の分離および検出のための励起および検出ビームパスを設定するために用いられてもよい。マイクロ流体の定量化のためのチャネル間の選択は、第１の走査ミラー（２０５）により達成されてもよいし、マイクロ流体の分離および検出のためのチャネル間の選択は、第２の走査ミラー（２０５ｂ）により達成されてもよい。図３の概略図は、定量化チャンバを励起し問い合わせるように構成された光学機器列を示す。図４の概略図は、分離および検出モジュールの分離および検出チャネルから励起し検出するように構成された光学機器列を示す。

図５および図６は、マイクロ流体の定量化および分離および検出の両方に用いることができる代替の光学機器列の概略図を示す。励起パスは、バイオチップの定量化または分離および検出部分に対してビームパスが方向づけられることを可能にするレーザー源（２０１）、ショートパスダイクロイックミラー（２０２）、並進ミラー（２０９）、および固定ミラー（２０８）対から構成される。実例において、並進ミラー（２０９）が定量化位置にある場合、励起ビームは、レンズ（２０３ｃ）および第１ミラー（２０５ｃ）および第２ミラー（２０５ｄ）に対して方向づけられてもよい。次に、ビームは、並進ミラーアセンブリ（２１２）に対して方向づけられてもよい。このアセンブリは、プログラミング可能な並進ステージ上に搭載されてもよいミラーを含む。並進ミラーアセンブリ（２１２）は、バイオチップ内の定量チャンバ（２０６）の各々に励起ビームを方向づけることができる。その代わりに、分離および検出位置での並進ミラー（２０９）により、励起ビームは、レンズ（２０３ｂ）、第２の走査ミラー（２０５ｂ）、およびレンズおよび対物レンズのアセンブリ（２０４ｂ）に対して方向づけられてもよい。第２の走査ミラー（２０５ｂ）は、バイオチップ内の分離および検出チャンバ（２０７）の各々に励起ビームを方向づけてもよい。この構成において、レーザー源（２０１）は、定量化および分離および検出ビームパスに共通であってもよい。別の光学的励起ソースは、ＬＥＤおよびランプを含む。

検出ビームパスは、波長分離および検出エレメント（２１１）、ピンホール（２１０）およびレンズ（２０３）を含む。検出ビームパスおよび励起ビームパスは、ダイクロイックミラー（２０２）から定量チャネル（２０６）まで、およびダイクロイックミラー（２０２）から分離および検出チャネル（２０７）まで、共通要素を共有してもよい。波長分離エレメントは、入射する蛍光の波長成分を分割するために一組のダイクロイックミラーおよび帯域フィルターを含む。これらは、個別素子でありうるし、個別素子は、単一の半組立部品において統合化できる。その代わりに、波長分離は、スペクトルグラフまたはプリズムにより達成することができる。検出エレメントは、複数のアノードを備えた離散的または統合化されたモジュールになりえるＰＭＴを含む。この光学機器列構成において、波長分離および検出モジュール（２１１）は、定量化および分離および検出モジュールに共通であってもよい。

この光学機器列において、並進ミラー（２０９）および固定ミラー（２０８）は、マイクロ流体の定量化またはマイクロ流体の分離および検出のための励起および検出ビームパスを設定するために用いられてもよい。マイクロ流体の定量化のためのチャネル間の選択は、並進ミラーアセンブリ（２１２）により達成されてもよいし、マイクロ流体の分離および検出のためのチャネル間の選択は、第２の走査ミラー（２０５ｂ）により達成されてもよい。図５の概略図は、定量化チャンバを励起し問い合わせるように構成された光学機器列を示す。図６の概略図は、分離および検出モジュールの分離および検出チャネルから励起し検出するように構成された光学機器列を示す。

第３のアプローチは、レーザー、ＬＥＤ、またはランプになりうる細密化された励起源、波長分離エレメント、および検出器（それらのすべては並進ステージ（２１３）（図７）上に搭載されてもよい）の利用である。並進ステージは、定量チャネル（２０６）の各々が問い合わせられることを可能にすることができる。このアプローチにおいて、定量化システムのための励起、波長分離および検出モジュールは、分離および検出システムから独立していてもよい。分離および検出のための光学機器列は、図３、図４、図５および図６に記載されるエレメントを含むことができる。

定量化チャネルの問い合わせのための第４のアプローチは、レーザー、ＬＥＤ、またはランプを用いて定量化チャンバをすべて同時に励起することである。すべての定量化チャンバからの蛍光は、レンズによって集められ、蛍光の波長成分を空間的に分離するために回折素子を介して通過されてもよい。これは、次に、ＣＣＤカメラまたは２次元の検出器アレイ上で画像化されてもよい。この構成において、検出器アレイの１つの軸は、定量化チャンバのチャネルに関連することができ、検出器アレイの別の軸は、蛍光波長に関連することができる。分離および検出のための光学機器列は、図３、図４、図５および図６に記載されるエレメントを含むことができる。この構成において、励起源は、定量化モジュールと分離および検出モジュールの両方に共通になりえる。

１つの実施形態において、波長成分は、ダイクロイックミラーおよび帯域フィルターの利用によって分離され、これらの波長成分は、光電子増倍管（ＰＭＴ）検出器（Ｈ７７３２−１０（ハママツ（Ｈａｍａｍａｔｓｕ）社））により検出される。ダイクロイックミラーおよび帯域コンポーネントは、ＰＭＴの各々の入射光線が蛍光染料の発光波長に対応する狭い波長域から構成されるように、選択されることができる。帯域は、１〜５０ｎｍの波長領域の帯域を備えた蛍光発光ピークの中心に集められるように選択されてもよい。システムは、１、２、３、４、５、６、７またはさらに８つの色検出ができ、発光された蛍光を８つの別個の色に分割するために、１、２、３、４、５、６、７またはさらに８つのＰＭＴおよび対応する一組のダイクロイックミラーおよび帯域フィルターにより設計されることができる。８以上の色素は、付加的なダイクロイックミラー、帯域フィルターおよびＰＭＴを適用することにより検出することができる。図８は、１つの実施形態による、離散的な帯域フィルターおよびダイクロイックフィルタの具体化のためのビームパスを示す。この波長識別および検出構成の統合化バージョンは、Ｈ９７９７Ｒ（ハママツ（Ｈａｍａｍａｔｓｕ）社（ニュージャージー州ブリッジウォーター））である。

蛍光信号を作り上げる色素を識別する別の方法は、プリズム、回折格子、透過型回折格子（ソーラボ（ＴｈｏｒＬａｂｓ）社（ニュージャージー州ニュートン）およびニューポート（Ｎｅｗｐｏｒｔ）社（カリフォルニア州アーヴィン）を含む多数のベンダーから市販で入手可能）、およびスペクトルグラフ（ホリバ・ジョバンイボン（Ｈｏｒｉｂａ Ｊｏｂｉｎ−Ｙｖｏｎ）社（ニュージャージー州エジソン）を含む多数のベンダーから市販で入手可能）などの波長分散方式エレメントおよびシステムの利用を含む。この実施形態において、蛍光の波長成分は、物理的空間にわたって分散してもよい。この物理的空間に沿って配置された検出エレメントは、光を検出し、波長との検出エレメントの物理的位置の相関を可能にしてもよい。この機能に適している典型的な検出器は、アレイ系を含み、マルチエレメントフォトダイオード、ＣＣＤカメラ、裏面薄化ＣＣＤカメラ、マルチアノードＰＭＴを含む。当業者は、システムにおいて用いられる色素からの波長を識別することができるシステムをもたらすために、波長分散エレメントと光検出エレメントとの組み合わせを適用することができるだろう。

別の実施形態において、励起した蛍光から波長成分を分離するために、スペクトルグラフが、二色性および帯域フィルターの代わりに用いられてもよい。典型的なスペクトルグラフ設計の詳細は、ジョン・ジェームズ（Ｊｏｈｎ Ｊａｍｅｓ）「スペクトルグラフ設計原理（Ｓｐｅｃｔｒｏｇｒａｐｈ Ｄｅｓｉｇｎ Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ）」ケンブリッジ、英国：ケンブリッジ大学出版局（２００７年）において入手可能である。いくつかの実施形態において、５０５〜６７０ｒｕｎのスペクトル域を備えた凹面ホログラフィック格子を備えたスペクトルグラフＰ／Ｎ ＭＦ−３４（Ｐ／Ｎ５３２．００．５７０）（ホリバ・ジョバンイボン（Ｈｏｒｉｂａ Ｊｏｂｉｎ−Ｙｖｏｎ）社（ニュージャージー州エジソン））は、本アプリケーションにおいて用いられてもよい。検出は、線形の３２エレメントＰＭＴ検出器アレイ（Ｈ７２６０−２０、ハママツ（Ｈａｍａｍａｔｓｕ）社（ニュージャージー州ブリッジウォーター））により達成することができる。いくつかの実施形態において、収集された蛍光は、ピンホール上で画像化され、反射され、分散され、スペクトルグラフの出力ポートに取り付けられた線形のＰＭＴ検出器上に凹面ホログラフィック格子によって画像化されてもよい。あるケースでは、ＰＭＴ系検出器の利用は、ＰＭＴ検出器の低いダークノイズ、高感度、高ダイナミックレンジおよび早い応答特性を巧みに利用する。いくつかの実施形態において、励起する蛍光の検出のためのスペクトルグラフおよびマルチエレメントＰＭＴの検出器の利用は、計器の検出システム（すなわち、ダイクロイックミラー、帯域通過および検出器）を物理的に再構成する必要性なしに、システムおよびレーン内に適用することができる色素の数および色素の発光波長における適応性を可能にする。いくつかの実施形態において、この構成から収集されるデータは、各レーンの各スキャンの可視波長範囲にわたる波長依存スペクトルであってもよい。あるケースでは、１スキャン当たりの最大限のスペクトルの生成は、試料内にありうる色素の発光波長および色素の数の両方に関して色素の適応性を提供する。さらに、分光計および線形のマルチエレメントＰＭＴ検出器の利用は、また、一連のＰＭＴエレメントのすべてが並列に読出されてもよいような、非常に高速の読み出しレートを可能できる。図９は、１つの実施形態による、マルチエレメントＰＭＴおよびスペクトルグラフの具体化のためのビームパスを示す。

いくつかの実施形態において、計器は、複数のレーンを同時におよび／または複数の波長を同時に検出するために、観測動作モードを用いてもよい。１つの構成において、励起ビームは、同時にすべてのレーンで一斉に衝突されてもよい。いくつかの実施形態において、蛍光は、ＣＣＤカメラまたはＣＣＤアレイなどの２次元の検出器によって集められてもよい。例えば、１次元の検出器は、物理的波長分離を表わしてもよいが、その一方で、別の次元は、空間またはレーン対レーンの分離を表わしていてもよい。

複数サンプルの同時励起および検出のために、走査ミラーシステムは、バイオチップのレーンの各々を画像化するために、励起ビームパスおよび検出ビームパスの両方を操縦するために利用されてもよい。この動作モードにおいて、走査ミラーは、最初のレーンから最後のレーンまで、レーンからレーンへと連続して走査し、そして再び最初のレーンから最後のレーンまで再びプロセスを繰り返して、ビームパスを操縦する。レーンを探し出すアルゴリズムは、レーンの位置を識別するために用いられてもよい。

同時のマルチレーンおよびマルチ色素の検出のための光検出システムの１つの実施形態は、図２４に示される。蛍光励起および検出システム４０は、記録（および究極的には解析）のために色素から１つ以上の光検出器に誘導された蛍光を集めて伝送する一方で、各々のマイクロチャネルの一部を通じてエネルギー源（例えば、レーザー光）を走査することにより、シグナリング部分（例えば、標的核酸に固定化されたシグナリング部分を含む結合剤のシグナリング部分）を励起する。１つの実施形態において、蛍光励起および検出アセンブリ４０は、開口部４２を通してレーザー６０から発光されたレーザー光をテストモジュール５５に伝送する（および光検出器６４へ戻す）ためのレーザー６０、スキャナ６２、１つ以上の光検出器６４、様々なミラー６８、スペクトルグラフ、およびレンズ７２を含む。スキャナ６２は、テストモジュール５５に関する様々なスキャニング位置に、入射するレーザー光を移動させる。具体的には、スキャナ６２は、それぞれの別々のコンポーネントを検出するために、テストモジュール５５内の各マイクロチャネルの適切な部分にレーザー光を移動させる。マルチエレメントＰＭＴ６４（すなわち、光検出器）は、テストモジュール５５からデータ（例えば、可変長のＤＮＡ断片からの蛍光信号）を収集し、ケーブルを通じてデータ収集およびストレージシステム（図示せず）にデータを電子的に提供する。１つの実施形態において、データ収集およびストレージシステムはオプションインダストリアルコンピュータ（Ｏｐｔｉｏｎ Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ Ｃｏｍｐｕｔｅｒｓ）社（カナダケベック州ａｕｄｒｅｕｉｌ−Ｄｏｒｉｏｎ１３）から市販で入手可能な高耐久化コンピュータを含むことができる。

いくつかの実施形態において、信号処理アルゴリズムは、データを訂正、フィルタリングおよび／または解析するために用いられてもよい。このプロセスは、呼出可能信号を捜し出し、信号のベースラインを訂正し、ノイズをフィルタリングし、色クロストークを除去および／または信号ピークの識別する、などのステップを含んでもよい。例えば、呼出可能信号を捜し出すステップは、閾値を用いることにより実行されてもよい。このプロシージャは、信号の先頭および末端から無関係のデータを取り除くために用いられてもよい。いくつかの実施形態において、例えば、信号がすべての検出色のための共通のベースラインを有するように、背景が信号から取り除かれてもよい。あるケースでは、信号から高周波騒音を取り除くためにローパスフィルタが適用されてもよい。

１つの実施形態において、上記の構成物の１つ以上を含むキットが提供されてもよい。「キット」は、本明細書に用いられるように、例えば、先に記載されたように、典型的には、本発明の構成物の１つ以上を含むパッケージまたはアセンブリおよび／または本発明に関連づけられた他の構成物を定義する。キットの合成物の各々は、液体の形式で（例えば、溶液で）、固形（例えば、乾燥したパウダ）などで、提供されてもよい。本発明のキットは、あるケースでは、指示が本発明の構成物に関連づけられるためのものであることを当業者が認識するように、本発明の構成物に関して提供される任意の形式の指示を含んでもよい。例えば、その指示は、構成物および／またはキットに関連づけられた他の構成物の利用、変形、混合、希釈、保存、管理、アセンブリ、ストレージ、パッケージングおよび／または準備のための指示を含んでもよい。その指示は、このような指示（例えば、任意の方式において提供される、文書または出版物、口頭、聴覚（例えば、電話）、デジタル、光学、視覚（例えば、ビデオテープ、ＤＶＤなど）または電子通信（インターネットまたはウェブベースの通信を含む））を含むためにふさわしい手段として当業者によって認識可能な任意の形式において提供されてもよい。

この記載において「標的核酸」「オリゴヌクレオチド」「結合剤」「核酸」「ストランド」および他の同種類のものなどの用語は、単数形で表す。当業者は、分子を記載するために用いられた多くの用語が、単数で用いられてもよく、かつ単数または多数のいずれかで表してもよいことを理解するだろう。例えば、標的核酸は、分析において結合剤によって検出されてもよいが、分析は、結合剤の多くの複製および標的核酸の多くの複製を必要としてもよい。このような実例において、用語は前後関係で理解されるべきである。このような用語は、単一の分子または複数の分子のいずれかの意味に限定されない。

以下の例は、本発明のある実施形態を例証するように意図されるが、本発明の範囲を例示するわけではない。

［実施例１］
この実施例は、以下において用いられるシステムを記載する。

本システムは、標識されたＤＮＡ断片の分離および検出のための計器を含み、「標的核酸の迅速な多重化増幅のための方法（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｆｏｒ Ｒａｐｉｄ Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｅｄ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｔａｒｇｅｔ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ）」と題され、セルデン（Ｓｅｌｄｅｎ）らによって２００８年４月４日に出願された米国特許出願第２００９／００２３６０３号公報（その文献は参考文献として本明細書に援用される）に、より詳細に記載される。計器の耐久性は、現場および研究室での利用のため高められる。その計器は、低消費電力を有しており、低電圧指令７３／２３／ＥＥＣの下で特徴づけられたＣＥである。ＤＮＡ分離は、高電圧サブシステムを通して、適切なローディング、引き戻しおよび分離電圧を適用することにより、１６試料のバイオチップおよびカスタムの篩マトリクス内で行われる。レーザー励起蛍光検出サブシステムは、バイオチップの励起および検出ゾーンを介して通過する標識されたＤＮＡ断片からの蛍光を励起し収集する。分離チャネルに沿って１５０Ｖ／ｃｍおよび３００Ｖ／ｃｍの電界を印加することにより実行された分離は、それぞれ、２８分および１５分において完結する。このシステムは単一の塩基対解像度よりも効果的に高速の分離を提供し、かつ単一の複製標的のＰＣＲ増幅の産物を検出する

［システム構成］
サブシステム（空気式サブシステム、温度サイクリングサブシステム、および分離および検出サブシステム）はラックマウント方式の耐久性を高められた工業用コンピュータによって制御される。このコンピュータは、標準サイズのデスクトップコンピュータの機能性を有しており、１７インチのＬＣＤ表示装置、フルサイズのキーボード、およびマウスを含む。

［流動性の操作計測］
バイオチップを通じての流体の流れは、流体チャネルの端部に配置されるポートに対する系統的な加圧によって達成される。毛状のバルブの破裂圧力未満の圧力が印加される場合、流体は、チャネルに沿って流出し、毛状のバルブで止まるだろう。バルブの破裂圧力よりも高い圧力が印加される場合、流体は、バルブを通じて流出するだろう。空気式系統は、また、膜を弁座に対して押しつけるための圧力の印加により、薄膜弁を閉じるために用いられる。薄膜弁の封止圧力は、適用される封止圧力に応じて増減する。選択されて出力に適用される５つの離散的な圧力レベルを供給するために、圧力は、小型の膜ポンプおよび圧力調整器によって生成される。本システムは、バイオチップ上のポートを通じて連結管に連結される８つの出力を提供する。空気式サブシステムは、所望の流れ制御を達成するためにコンピュータで制御される。このサブシステムは、バイオチップに対する特定の圧力レベルの系統的なアプリケーションを通じて、バイオチップ内の溶解およびＰＣＲを実行するために流体の流れをもたらす。図１０は、バイオチップの典型的な写真を示す。

［温度サイクラーサブシステム］
温度サイクラーは、高性能のヒートシンクおよびファンアセンブリ（ヒートポンプ）上に取り付けられた高出力熱電モジュール（ＴＥＭ）を含む。ＴＥＭと反応チャンバとの間の圧縮および効率的な熱の転送を供給するために、カバーによりバイオチップを締める。カバーに対する熱損失は、バイオチップとカバーアセンブリと間の絶縁材の層によって最小限にされる。ＴＥＭの表面および反応チャンバ内の温度センサは、設定値温度までの所望の迅速なランピングおよび前記設定値温度での安定度を可能にするためのフィードバックを行なう。ＴＥＭ表面で測定された加熱／冷却レートは、２１．６℃／秒および２１．７℃／秒である。また、反応溶液の測定された加熱／冷却レートは、１４．８℃／秒および１５．４℃／秒である。反応溶液は、この温度サイクラー内で、急速の商用サイクラーと比較して７倍急速で加熱され冷却される。状態間の最小限の遷移時間は、バイオチップ内の反応溶液の迅速かつ制御された加熱／冷却を可能にする。図１１および図１２は、温度サイクラーの典型的な写真を示す。

以上に記載された既存のＴＥＭ、ヒートシンク、およびファンアセンブリは、チップ室に直接取り付けられるように設計され、ＰＣＲチャンバをＴＥＭ上の中央におくように配置された。ＴＥＭの表面は、バイオチップとの接点を最大限にし、バイオチップ上のストレスを最小限にするように配置される。ＴＥＭの表面上に取り付けられた熱電対センサは、センサのためのポケットを取り付けることを可能にするようにバイオチップを設計することにより調節される。加熱における不統一を最小限にし、かつまた熱応答を最大限にするために、ＴＥＭと残りのチップ室との間の熱隔離は、断熱層により達成される。圧縮カバーは、精製モジュールおよびバイオチップの形式を収容するために変更され、ＴＥＭと反応チャンバとの間の効率的な熱転送のための所望の圧力を生成するために利用される。反応チャンバとカバーとの間の熱隔離は、反応チャンバの上に空気ポケットを組み立てることにより達成される。温度サイクラーの傾斜および性能は、バイオチップの１６個のＰＣＲ反応チャンバ内の熱電対の配置により特徴づけられる。

［分離端部検出サブシステム］
高電圧接続は、計器のカバーに取り付けられ、カバーが閉まっている場合、バイオチップに接触される。レーザー励起蛍光サブシステムは、光学ビームパスまたはサブシステムコンポーネントに対して変更なしで計器に統合化される。ヒーターサブシステムは。チップ室内に取り付けられる。

［システムステータス］
温度サイクリングサブシステムは、サイクル番号、残りの工程所要時間、およびカレントブロックおよび溶液温度を含む装置ステータスをユーザに提供する。ユーザフィードバックは、キーボードを介して供給される。実行されたデータはすべて、制御コンピュータに格納され、イーサネットによってプロセスデータベースに転送される。計器上の分離および検出の間、制御コンピュータは、実行中であるステップを示す。さらに、分離チャネル電流および基板温度を含む１６個のレーンおよびプロセスパラメータの各々のためのリアルタイムエレクトロフォレトグラムが表示される。機載コンピュータは、年次メンテナンスまでの残り時間、システム電源投入時自己診断テスト（ＰＯＳＴ）の結果、および故障または即時のメンテナンスを必要とする任意のサブシステムの名前について、ユーザに警告する。

［実施例２］
この実施例は、ＴＨ０１型ローカスプローブを用いて、マイクロ流体ピコグリーン分析によるＤＮＡ定量化を実証する。

光学的に透明な反応チャンバを備えた射出成形の１６個のレーンバイオチップは、以上に記載された光学システムを備えた反応生成物の問い合わせを可能にするために組み立てられた。バイオチップにおける各レーンは、約７マイクロリットルの反応混合を保持し、１６個の個体試料の増幅を一斉に可能にする。先に記載されたように（ギース（Ｇｉｅｓｅ）ら「従来のマイクロ流体ＳＴＲ解析のための高速の多重化ＰＣＲ（Ｆａｓｔ Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｅｄ ＰＣＲ ｆｏｒ Ｃｏｎｖｅｎｔｉｏｎａｌ ａｎｄ Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ ＳＴＲ Ａｎａｌｙｓｉｓ）」（２００９年）日本法科学技術学会誌、５４巻、６版、１２８７〜１２９６ページ）、ＰＣＲ状態が実行された。
単一複製のヒトのチロシン水酸化酵素遺伝子、ＴＨＯ１（スワンゴ（Ｓｗａｎｇｏ）ら「法医学的試料における核ＤＮＡの量および品質を評価するための多重ｑＰＣＲ分析の発展的な検証（Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ ｖａｌｉｄａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ ｑＰＣＲ ａｓｓａｙ ｆｏｒ ａｓｓｅｓｓｉｎｇ ｔｈｅ ｑｕａｎｔｉｔｙ ａｎｄ ｑｕａｌｉｔｙ ｏｆ ｎｕｃｌｅａｒ ＤＮＡ ｉｎ ｆｏｒｅｎｓｉｃ ｓａｍｐｌｅ）」（２００７年）、国際法医遺伝学会、１７０巻、１版、３５〜４５ページ）を標的とするために使用されたプライマー対は次のとおりだった。
ＴＨ０１型フォワードプライマー：５’−ＡＧＧ ＧＴＡ ＴＣＴ ＧＧＧ ＣＴＣ ＴＧＧ−３’（配列ＩＤ番号：１）
ＴＨ０１型リバースプライマー：５’−ＧＣＣ ＴＧＡ ＡＡＡ ＧＣＴ ＣＣＣ ＧＡＴ ＴＡＴ−３’（配列ＩＤ番号：２）
９９４７ＡゲノムＤＮＡ（ＭＣＬａｂ、サウスサンフランシスコ（カリフォルニア））のストック１０ｎｇ／マイクロリットルは、反応混合に対して４マイクロリットル量におけるＤＮＡの適正量を追加することにより、標準曲線を生成するために用いられた。この標準曲線は、未知の（ヒト／ヒト以外の）ゲノムＤＮＡ試料にフィットするデータに用いるためのゲノムＤＮＡ − ０ｎｇ、０．４ｎｇ、１ｎｇ、４ｎｇ、１０ｎｇ、２０ｎｇおよび４０ｎｇ − の７つの異なる濃縮物を含んだ。標準曲線試料は、４回繰り返して解析された。増幅は、［９３℃で４秒、５８℃で１５秒、７０℃で７秒］の２８サイクルおよび７０℃で９０秒の最後の伸長反応によって追従された、９３℃における２０秒の活性化により始動された。完了時間は、約１７分だった。

増幅に続いて、ピコグリーン試薬（登録商標）（インビトロジェン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）社）は、ＴＥ−４（１０ミリモルのトリス（ｐＨ８）、０．０１ｍｍＥＤＴＡ）バッファに１：２００で希釈され、９マイクロリットルの試薬が１マイクロリットルのＰＣＲ産物に追加された。結果として生じた溶液は、光から保護され、室温で５分間培養された。１０のマイクロリットルの試料から、約６マイクロリットルが、計器レーザー検出のための分離および検出バイオチップのレーンの中に装填された。計器レーザーは、色素の光退色を回避するために、適切なレーザーパワー、ゲインおよび統合時間に設定された。レーザーは、２０ｍＷを出力するために設定され、ＯＤ２ニュートラルフィルター（ソーラボ（Ｔｈｏｒｌａｂｓ）社（ニュージャージー州ニュートン））は、出力電力を０．２ｍＷに減ずるために用いられた。青色のＰＭＴのゲインは、原寸大の３０％に設定され、赤色、黄色および緑色のゲインは、０に設定され、リフレッシュレートは５Ｈｚに設定された。

試料は、４回繰り返して分析された。レーザシャッタが開かれると、信号は、最大値まで増加し、その後、低下し始めるだろう。最大信号からの蛍光信号強度１秒（５読み取り値）が記録された。投入ＤＮＡの増大につれて蛍光信号信号が増加したことが観察された。計器からの投入ＤＮＡ対相対蛍光単位（ＲＦＵ）のプロットは、Ｒ^２＝０．９９９を有しており、未知のＤＮＡ試料（図１３）を推定するための標準曲線として用いられた。図１４は、レーン変位の機能としてレーザー検出から出力されたＲＦＵデータである。

犬の口腔スワブ、バクテリア（セレウス菌）、イースト（サッカロミセス属セレビシアエ）、ヒトの口腔スワブ、およびヒトの全血が精製されたゲノムＤＮＡは、分析を評価するために用いられた。バクテリアのＤＮＡは、細菌細胞またはペレットから抽出された。犬（カニスファミリアス）のＤＮＡは、口腔スワブから抽出された。ゲノムのイーストＤＮＡは、ＡＴＣＣ（ヴァージニア州マナッサス）から入手された。抗凝血剤としてのＥＤＴＡを含む新鮮なヒトの全血試料は、Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｂｌｏｏｄ Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ，Ｌ．Ｌ．Ｃ．（マサチューセッツ州ブライトン）から氷で入手された。ヒトの口腔スワブ試料は、ヒトの被検者の内部の頬面上で綿棒（Ｂｏｄｅ ＳｅｃｕｒＳｗａｂ（商標））を上下に数回移動させることにより入手された。犬の口腔スワブ試料も同様に入手された。ＤＮＡ精製はすべて、シリカＤＮＡ結合スピンカラムを介してグアニジン系溶解試薬および精製を用いて実行された。

これらのＤＮＡ試料の濃度は、実験のときに生成された標準曲線からＲＦＵ値を推定することにより評価された。ＤＮＡ濃度も、ナノドロップ（Ｎａｎｏｄｒｏｐ）分光測光器（サーモフィッシャーサイエンティフィック（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）社（デラウェア州ウィルミントン））を用いて、ＵＶ吸光度によって測定された。表１に公表された値は、平均値±１標準偏差である。

ヒト以外のＤＮＡ試料は、ピコグリーン分析における背景蛍光信号のみを生成したが、ＵＶ吸光度によって検出することができる。対照的に、ヒト以外ＤＮＡにより混入されたヒトゲノムＤＮＡの既知数は、ヒトのＤＮＡ寄与に対応する信号を生成した。ヒトのＤＮＡ源に対して２６０ナノメートルの吸光度から得られた値は、ピコグリーンカーブデータをあてはめたものからの値に接近していた。より高いヒトゲノムＤＮＡテンプレートの存在下で出力蛍光信号が増加しただけでなく、データは、ＴＨ０１型プライマーのヒトの特異性を実証した。

従来の分析（例えば、ＢｏｄｅＱｕａｎｔ；ボードテクノロジーグループ（Ｔｈｅ Ｂｏｄｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｇｒｏｕｐ）社（バージニア州ロートン））に対するアプローチの有利性は、試料の量および増幅時間の両方において実質的な減少を含む。例えば、ＢｏｄｅＱｕａｎｔプロトコルに続く増幅は、２５マイクロリットルの反応混合物および６０分を超える１０サイクルのプロファイルを必要とする。蛍光検出のために、ＢｏｄｅＱｕａｎｔは、プレートリーダー上での１ウェル当たり２００のマイクロリットルの反応体積をもつ９６ウェル分析を用いる。その上、プレートリーダー系分析は、マイクロ流体バイオチップ形式において統合するのが相当困難になりえる。対照的に、ここで記載されたマイクロ流体分析は、７マイクロリットルを用いており、２８サイクル増幅は、１７分で完結した。ＯＤ２減光フィルターの組み込みは、増幅サイクルの数および全体の工程所要時間のを著しく低減することができることを示す、レーザーパワーを１００倍低減する。

レーザー検出およびＯＤ２光学フィルターにより、１０マイクロリットルのピコグリーン反応溶液の約０．３５３ナノリットルが、３０のマイクロメートルのレーザー励起ビーム径および０．５ミリメートルのチャンバ深さに基づいて、実際に励起され検出された。したがって、この構成において、システムの検出限界（ＬＯＤ）は、ＤＮＡの０．００５ピコグラムである。マイクロ流体量およびレーザー検出の組み合わせは、強力な分析に結びついた。ＯＤ２フィルターが利用されないならば、ＬＯＤは０．０５フェムトグラムである。チャンバ寸法は、所望すれば、均一のより小さなＬＯＤを可能にするために選択することができる。

［実施例３］
この実施例は、Ａｌｕローカスプローブを用いて、マイクロ流体ピコグリーン分析によってＤＮＡ定量化を実証する。

定量化のための反復性ローカスの利用は、反応時間のさらなる低減およびＬＯＤの改善を可能できる。ヒトのＡｌｕ配列は、ゲノムにおける何十万もの複製において存在する反復要素であり、Ａｌｕ配列を標的とするプライマー対は、マイクロ流体の定量化に用いられた。
Ａｌｕフォワードプライマー：５’−ＧＴＣ ＡＧＧ ＡＧＡ ＴＣＧ ＡＧＡ ＣＣＡ ＴＣＣ Ｃ−３’（配列ＩＤ番号：３）
Ａｌｕリバースプライマー：５’−ＴＣＣ ＴＧＣ ＣＴＣ ＡＧＣ ＣＴＣ ＣＣＡ ＡＧ−３’（配列ＩＤ番号：４）
高速のＰＣＲサイクリングプロファイル反応および定量化は、９３℃での２０秒の活性化の改善された増幅プロトコルを備えた実施例２において記載されたように、［９３℃で４秒、５８℃で１５秒、７０℃で７秒］の１５サイクルおよび７０℃で９０秒の最後の伸長反応によって追従された。完了時間は、約１０分だった。計器からの投入ＤＮＡ対相対蛍光単位（ＲＦＵ）のプロットは、Ｒ^２＝０．９９９を有する（図１５）。図１６は、レーン変位の機能としてレーザー検出から出力されたＲＦＵデータである。励起の間に、ＴＨ０１型反応により用いられるものと比較して、振幅によってレーザーパワーの強度を弱めたフィルターは、色素の光退色を回避するために必然的に見出された。ＯＤ４減光フィルターは２００ｍＷに設定されたレーザーパワー、原寸大の３０％に設定された青色のＰＭＴのゲイン、０に設定された赤色、黄色および緑色のゲイン、および５Ｈｚに設定されたリフレッシュレートとともに用いられた。レーザーパワーの設定およびフィルターの組み合わせにて、効果的なレーザーパワーは、実施例２の１０％である。このデータは、増幅の間のサイクル数がさらに低減されたことを示唆する。

この可能性をテストするために、１５の試料が、１０の増幅サイクル、２．５分ずつ縮める増幅時間を用いて、１、５、１０および３０ナノグラムの投入ＤＮＡにより各々定量化された。信号強度は、増加する投入ＤＮＡとともに増大する（図１７）。１ｎｇの投入に対して、ベースラインが差し引かれた信号強度は、１０ＲＦＵの標準偏差および５０％のＣＶを有する１９．９ＲＦＵである。５ｎｇの投入に対して、ベースラインが差し引かれた信号強度は、１１ＲＦＵの標準偏差および１７％のＣＶを有する６８ＲＦＵである。

ヒトゲノムＤＮＡ、ヒト以外のＤＮＡ、および混入されたヒトゲノムは、実施例２に示すように分析を評価するために用いられた。牛（ボースタウルス）および鶏（ガッルスドメスティクス）は、血液サンプルから抽出された。ＤＮＡはすべて、実施例２に示すように用意された。

模擬の法医学的ケースワーク試料もまた鑑定に用いられた。スワブ上の湿式血液サンプルは、陶製タイル上に血液検査液の１００マイクロリットルをピペットで取り、その後、綿棒により血液を収集することにより用意された。乾燥した血液サンプルが、同様に用意された（しかし夜通し乾くように放置された）。細胞試料は、ヒトの被検者の手のひらの上でスワブの頭（滅菌水により予め濡れている）の摩擦により収集された。接触試料は、１人のドナーによって数回処理された陶製タイル上で予め湿ったスワブを用いることにより用意された。ＤＮＡ抽出はすべて、スワブからのゲノムＤＮＡの分離のための製造業者のプロトコルに従うＱＩＡｍｐキット（キアゲン（Qiagen）社（カリフォルニア州バレンシア））を用いて実行された。

これらのデータに基づいて、マイクロ流体Ａｌｕピコグリーン分析が、ヒトのゲノムＤＮＡの定量化に対して、非常に高感度で特有であることは明らかである。Ａｌｕ増幅には、ＴＨ０１型増幅よりも約１００万倍の高い標的の有益性がある。したがって、増幅が１００％効率的であるならば、２８サイクルとは対照的に約８つの増幅サイクルの要件を表わす。Ａｌｕのケースでの１０倍に低減されたレーザーパワーは、約３サイクルの付加的な必要とされるサイクルを表わす。理論上、これらの状態下では、Ａｌｕ反応は、２８サイクルのＴＨ０１型反応に匹敵する信号を生成するために、１１サイクルを必要とする。２つのローカスの増幅は、恐らく同一ではないが、１０サイクルにおいて観察された結果は、これらの理論考察とぴったり一致する。

Ａｌｕプローブを用いて、マイクロ流体の容量とレーザー検出との組み合わせは、ＤＮＡの０．００５ピコグラムのＬＯＤに対して結びつく。ＯＤ３と同等のレーザーフィルターの配置なしで、結果として生じるＬＯＤは、０．００５フェムトグラムである。このＬＯＤは、ＴＨ０１型プローブの利用、および実施例２の増幅および検出条件の１０倍である。Ａｌｕプローブおよび状態は、また、サイクル数の大幅な減少を可能にする。いくつかの実施形態において、０．００５未満のフェムトグラムのＬＯＤが必要とされるならば、増幅サイクル数、プローブの配列および効率、およびレーザーパワーの１つ以上を高めることができる。

［実施例４］
この実施例は、サイバーグリーンＩ（ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉ）分析によってＤＮＡ定量化を実証する。

実施例３において記載されたＡｌｕプライマーを含む増幅反応コンポーネントは、トリスＥＤＴＡバッファ（ｐＨ８）におけるサイバーグリーンＩ（ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉ）（インビトロジェン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）社）の１：６０，０００の稀釈液が、ＰＣＲ混合に組み込まれたことを除いて用いられた。サイバーグリーンＩ（ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎ Ｉ）は、熱的に安定した蛍光染料であり、したがって、リアルタイムＰＣＲ分析におけるようにＰＣＲ混合に追加することができる。

このより高速の分析の実行可能性をテストするために、標準較正曲線が生成され再生された。ゲノムの９９４７Ａ ＤＮＡ規格は、０ナノグラム、０．４ナノグラム、１ナノグラム、４ナノグラム、１０ナノグラム、２０ナノグラム、および３０ナノグラムであった。増幅は、［９３℃で４秒、５８℃で１５秒、７０℃で７秒］の７サイクルおよび７０℃で９０秒の最後の伸長反応によって追従された、９３℃における２０秒の活性化により始動された。完了時間は６分だった。増幅に続いて、同じバイオチップは、実施例３に示したような光学的設定により、レーザー励起された。バイオチップにおけるＰＣＲおよびレーン検出は、標準曲線の再現性を確認するために４回繰り返して実行され、その蛍光は、投入テンプレートＤＮＡの増加とともに増大する。計器（図１８）からの投入ＤＮＡ対ＲＦＵのプロットは、Ｒ^２＝０．９９５により多項式のあてはめを示した。ピコグリーン色素の利用に対するこのアプローチの有利性は、全過程およびバイオチップ形式を簡易化する（例えば、ピコグリーン試薬を測定し、かつそれを後増幅反応とともに混合する必要性を省く）バイオチップの同一のチャンバにおいて増幅および検出を実行することができるということである。

［実施例５］
この実施例は、分子ビーコンを用いて、混成分析によって事前の増幅をしないで、ＤＮＡ定量化を実証する。

増幅をしない直接混成は、ヒトのゲノムＤＮＡを定量化するために利用された。２つのビーコンプローブは、それらが繰り返しヒトのＡｌｕエレメントを標的とするように、設計された。プローブ１は、ＰＶ９２遺伝子に由来し、配列５’−ＧＣＣ ＣＧＡ ＴＴＴ ＴＧＣ ＧＡＣ ＴＴＴ ＧＧＡ ＧＧＧ Ｃ−３’（配列ＩＤ番号：５）を有する（配列ＩＤ番号：５）（ヒトＡｌｕ反復ＧｅｎＢａｎｋ登録番号（Ｈｕｍａｎ Ａｌｕ Ｒｅｐｅａｔ ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｕｍｂｅｒｓ）：Ｍ５７４２７．１／Ｍ３３７７６、ＡＦ３０２６８９）．プローブ２は、既知のＡｌｕ亜科の配列によって設計され、高度に保存された標的部位を選択していた。配列５’−ＣＧＣ ＣＴＣ ＡＡＡ ＧＴＧ ＣＴＧ ＧＧＡ ＴＴＡ ＣＡＧ ＧＣＧ−３’（配列ＩＤ番号：６）は、より多くの高感度プローブであると予測された。両方のプローブは、５’末端にて取り付けられたフルオレセイン（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）（６−ＦＡＭ（商標））および３’末端にて取り付けられた、アイオワブラック消光剤（Ｉｏｗａ Ｂｌａｃｋ Ｑｕｅｎｃｈｅｒ）（ＩＢＲＦＱ）を有する（ＩＤＴ（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）社（アイオワ州コーラルヴィル）。

プローブ１に適した蛍光バッファは、４０ミリモルのＮａＣｌ、５ミリモルのＭｇＣｌ_２、および１０ミリモルのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）を含んだ。プローブ２に適した蛍光バッファは、１ミリモルのＭｇＣｌ_２、および２０ミリモルのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）を含んだ。蛍光バッファは、高い信号対ノイズ比を示した人工のｓｓＤＮＡ標的との混成に基づいて選択された。ハイブリッドおよびステム構体の溶融温度（Ｔ_ｍ）は、ＩＤＴ，ＳｃｉＴｏｏｌｓオリゴアナライザ（ＯｌｉｇｏＡｎａｌｙｚｅｒ）３．１、およびｍｆｏｌｄバージョン３．４プログラム（ｍｆｏｌｄ ｖｅｒｓｉｏｎ ３．４ ｐｒｏｇｒａｍｓ）を用いて究明された。混成温度は、５３℃（混成の温度Ｔ_ｍより下で、ステムの温度Ｔ_ｍよりも高い温度）に設定された。

所望の蛍光バッファにおける２２マイクロリットルの試料反応が、１０マイクロリットルの分子ビーコンの２マイクロリットルにより用意され、ヒトゲノムＤＮＡの濃度（０、４．５、９、１８、３２、５０、１００ナノグラム／マイクロリットル）を変化させた（ロシュ・アプライド・サイエンス（Ｒｏｃｈｅ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ）社（インディアナ州インディアナポリス））。次に、約７マイクロリットルが、熱変性および混成のための実施例２〜実施例４のバイオチップに転送された。バイオチップのための温度プロフィールは、５３℃で６０秒間の混成および２５℃で６０秒間の冷却により追随される９５℃で１０秒間の変性の単一のサイクルにより始動された。次に、バイオチップは、続いて、計器から解析された。プローブ１が利用された場合、レーザーパワーは、２０ｍＷに設定された、青色のＰＭＴのゲインは原寸大の３０％に、残りのすべての色は０および１０Ｈｚのリフレッシュレートに設定された。但し、プローブ２に対して、ＯＤ２減光フィルターの利用は、必然的であり、残りの設定は、プローブ１のように実施された。これは、プローブ１に対してプローブ２の高められた感度を確認した。試料は、４回繰り返して評価され、一組の対照試料は、同様にしかしヒトゲノムＤＮＡなしで、用意された。

図１９は、分子ビーコンプローブ１を用いて検出された、ＲＦＵ対投入ＤＮＡの混成プロットである。陰性対照の平均ＲＦＵ信号は、２１６ＲＦＵのＳＤを有する３４２７ＲＦＵであり、４．５ナノグラム／マイクロリットルの総投入に対して５８３ＲＦＵのＳＤを有する４６４１ＲＦＵであった。図２０は、分子ビーコンプローブ２を用いる、混成プロットである。陰性対照の平均ＲＦＵ信号は、３３ＲＦＵのＳＤを有する３６６８ＲＦＵであり、４．５ナノグラム／マイクロリットルの総投入に対して８３ＲＦＵのＳＤを有する４０７５ＲＦＵであった。ベースラインが差し引かれたＲＦＵは、レーザーによって検出された実際の投入ＤＮＡに対してプロットされた。これは、０、４．５、９、１８、３２、５０、１００ナノグラム／マイクロリットルの全体のヒトゲノムＤＮＡを、０、１．６、３．２、６．４、１１．３、１７．６、３５．３ピコグラムのＤＮＡにそれぞれ変換した。混成形成による信号の増加は、試料にある標的ＤＮＡの増大につれて高められた。データは、２つのプローブが、０ピコグラム〜１．６ピコグラムのＤＮＡを連続して識別することを実証した。プローブ１を使用するＬＯＤは、１．６のピコグラムであった。プローブ２に対して、ＯＤ２レーザーフィルターなしで、分析は、約１６フェムトグラムのＤＮＡを検出することができる。このＬＯＤが、単一のヒト細胞（約６ピコグラム）内にあるＤＮＡより１０００倍少なく、微量法医学的証拠の効果的な定量化を可能にすることに留意されたい。

当業者が認識するとともに、Ａｌｕビーコンに対する変更（例えば、より優れた消光効率を有する、より高度に保存された標的配列および連結される蛍光団を用いて）は、直接混成アプローチの感度およびＬＯＤをさらに向上させることができる。しかしながら、この実施例において用いられるＡｌｕプローブに関して、直接混成は、１０サイクルのＰＣＲ−ピコグリーン分析とほぼ同じ感度を有している。但し、工程所要時間に関して、増幅分析をしない混成は、全体的な定量化を約５分短縮し、約２分のみを必要とした。さらに、直接混成は、大幅な全体経費の削減をもたらし、マイクロ流体バイオチップ上の実装場所（ｒｅａｌ ｅｓｔａｔｅ）を必要とする酵素、ｄＮＴＰｓ、およびＰＣＲバッファが、反応に関係しないので、統合化マイクロ流体システムを簡易化する。最後に、臨床試料、環境上の試料、および法医学的試料において一般的であるＰＣＲ抑制剤は、混成反応を禁止するべきでない。

［実施例６］
この実施例は、直接混成分子ビーコン分析の還元反応時間を実証する。

分子ビーコンプローブ２のための反応状態は、実施例５のものと同様であるが、５３℃で３０秒間の混成および２５℃で１０秒間の冷却により追随される９５℃で１０秒間の変性が、単一サイクルにより実行された。同じ光学的設定も実施された。図２１は、定量化された検出された実際のピコグラムＤＮＡに変換されたＲＦＵ対投入ＤＮＡの混成プロットである。陰性対照の平均ＲＦＵ信号は、１０５ＲＦＵのＳＤを有する３３２１ＲＦＵであり、１．６ピコグラムに対して６１ＲＦＵのＳＤを有する３８０６ＲＦＵである。データは、分析に影響がなかった全体の定量化時間を１３０秒から５０秒に低減することを示唆する。実際、さらなる最適化（改善されたプローブを有する（および有しない）は、分析時間を１５秒未満（例えば、３秒間の変性、１０秒間の混成、および１秒間の冷却）に低減することを可能にするだろう。

［実施例７］
この実施例は、ヒト口腔スワブＤＮＡを定量化するために、直接混成分子ビーコン分析を実証する。

実施例６の標準曲線から、男女のヒトの被検者からの口腔スワブＤＮＡの蛍光信号が推定され、ＵＶ吸光度から得られた値と比較された。

［実施例８］
この実施例は、直接混成分子ビーコン分析の特異性を実証する。記載されるように、ヒト以外のＤＮＡが精製された。実施例６の標準曲線から、バクテリア、犬、および、鶏ＤＮＡからの蛍光信号が、再び推定され、ＵＶ吸光度から得られた値と比較された。さらに、既知のヒト口腔スワブのＤＮＡ試料は、これらの異なるバックグラウンドＤＮＡにより混入された。

ビーコン分析からのヒト以外のＤＮＡは、わずかにバックグラウンドの上の蛍光信号を示したが、このアーティファクトは、恐らく緩衝効果によるものである。分析において用いられるバックグラウンドＤＮＡ試料は、蛍光バッファにおいてではなく、ＴＥ緩衝剤において再懸濁された。ビーコンバッファコンポーネントが検出された蛍光に寄与することができることは、先に示された。高速の直接混成は、不均一試料におけるヒト特有のＤＮＡ定量化を可能にする。

［実施例９］
この実施例は、法医学的データベース試料による定量化の必要性をなくすことを実証する。

大多数の試料は、５００ナノグラム〜４マイクログラムのＤＮＡを含むが、口腔のスワビングによって収集されたＤＮＡの量は、高度に調整可能であり、約１００ナノグラムから１０マイクログラムを超えるまでの範囲に及ぶ。研究室において、精製されたＤＮＡが定量化されるように、この可変性は、ＳＴＲタイピングプロセスの全体に最小限の影響を及ぼし、ＤＮＡの所望量は、後続のＰＣＲ反応において利用される。

口腔スワブＤＮＡは、「核酸精製」と題され、２０１０年２月３日にセルデンらによって出願された米国特許出願番号第１２／６９９，５６４号（それは参考文献によって本明細書に援用される）に記載されたものから改善されたグアニジン系シリカ結合アプローチを用いて精製された。実施例３に記載されたように、１５人のヒトの被検者から口腔の細胞試料が入手された。スワブの軸体は、２ミリリットルの微小遠心管の中に適合させるスコアラインで切断された。グアニジン塩酸塩および清浄液を含む溶解バッファのマスタ混合およびプロテイナーゼＫ（キアゲン社（カリフォルニア州バレンシア）が用意された。０．５ｍｇのプロテイナーゼＫを含むこの５００μＬの溶菌液が、チューブの各々に転送された。その溶液は、５秒間の攪拌により徹底的に混合された。５５０μＬの無水エタノールは、混合物に追加され、再び５秒間攪拌された。１００μＬの均質化された流入物は、手動でバイオチップの入力ポートの中に充填された。このバイオチップには、精製のための１．５ミリメートルのＤＮＡ結合性のシリカ膜がある。結合膜は、２ミリリットルのエタノール−イソプロピルアルコール−ＮａＣｌ洗浄液により洗浄された。溶出に先立って、結合膜を３０秒間乾かした。ＤＮＡは、６００μＬのＴＥ−４（１０ミリモルのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８）および０．１ミリモルのＥＤＴＡ）により溶出された。

参照試料ＤＮＡの生成に続いて、７マイクロリットルのＰＣＲ反応混合物が含まれた３．４マイクロリットルのバイオチップに精製されたＤＮＡおよび１Ｘ Ｐｏｗｅｒｐｌｅｘ１６プライマー（Ｐｒｏｍｅｇａ社（ウイスコンシン州マディソン））が用意された。定量化ステップが増幅に先立って実行されなかった（精製されたＤＮＡの一定の容量が、増幅反応に対して常に用いられた）ことに留意されたい。制御として、ＴＥ−４におけるストックから希釈された標準規格の１ナノグラムの９９４７ＡゲノムＤＮＡも増幅された。増幅は、９３℃における２０秒の活性化により始動され、［９３℃で４秒、５６℃で２０秒、７０℃で２０秒］の３０サイクルおよび７０℃で９０秒の最後の伸長反応によって追従された。完了時間は、約２５分だった。

計器からのＤＮＡ分析試料は、分離バイオチップの試料リザーバ内に、手動で試料をピペットで取ることにより用意された。特に、２．７マイクロリットルの増幅された産物、０．３マイクロリットルのＨＤ４００サイジング標準規格、および１０マイクロリットルのＨｉＤｉは、ともに混合され、試料ウェルの中に充填された。試料およびバッファを充填した後に、バイオチップは、増幅されたＤＮＡを分離し検出するために適用される電界により計器の中に配置された。計器および検出は、増幅された各口腔スワブＤＮＡ試料に対して複製して実行された。対応するローカスで、ヘテロ接合の対立遺伝子のピーク高さとの比較を可能にするために、所定のローカスにおけるホモ接合体の対立遺伝子のピーク高さは、２で除算された。１ナノグラムの投入する９９４７Ａ制御ＤＮＡからのすべてのローカスの平均のピーク高さは、ＰＣＲ反応の中への投入ＤＮＡの量を推測するために用いられた。この信号強度解析に基づいて、１５の口腔スワブ抽出物からのＤＮＡの量は、すべて１．２６〜２．５０ナノグラムの範囲内にあり、大部分の試料は１．５〜２．２５ナノグラム／３．４マイクロリットルの範囲でＰＣＲの中へ含まれた。

スワブ精製における調整可能な修復および修復されたＤＮＡの莫大な過剰量は、結合膜の結合能力を制御することにより対処された。図２２は、この「カットオフ」アプローチを示す。ＤＮＡ結合能力は、ＤＮＡ結合に対して用いられた７ミリメートルのシリカ膜の層数に比例する。同様に、結合膜の結合能力は、また、結合膜の有効な直径に比例する。図２３は、ＤＮＡ投入の範囲にわたる、直径１ミリメートルの結合膜の結合性能を示す。ＤＮＡ収率は、６００ナノグラム未満の投入レベルに対してＤＮＡ投入レベルとともに直線的に増大し、その収率は、６００ナノグラム（またはそれ以上）の投入に対して約３００ナノグラムのＤＮＡで飽和している。マイクロ流体ＤＮＡ精製が増幅統合される設定（または、所望のとおり他の処理ステップ）において、修復されたＤＮＡの範囲の情報は、バイオチップ設計における大幅な適応性を可能にする。法医学的参照試料の処理において、溶解物の破片は、精製されてもよい（溶解物材料の１０分の１のみが精製されたように、ＰＣＲに用いられたＤＮＡの１．２６〜２．５０ナノグラムが６００マイクロリットルの溶出量における２２０〜４４０ナノグラムのＤＮＡに変換することに留意）。精製されるべきＤＮＡの量を低減することによって、精製媒体の結合能力は、付随的に低減されることができる。定量化をしない所定の定義された範囲内の精製された核酸を生成するための能力は、バイオチップ設計を簡易化することができ、さらに、コストを低減し、そしてさらに、プロセスタイミングを加速することができる。

［実施例１０］
この実施例は、特有の光学機器列に基づいた定量化のための励起および検出パラメータの開発を示す。

ＤＮＡおよびピコグリーン挿入染料のマスタ混合物は、用意され、定量化バイオチップの中に挿入され、定量化計器により、励起および検出に用いられた。レーザー励起の下では、検知器信号の強度は、増加するＰＭＴゲインとともに増大した。ＰＭＴゲインがそれらの作動範囲にわたって掃引された間、信号強度は、１０ＲＦＵおよび１０，６００から１０００倍に高められた（図２４）。信号対ノイズ比は、ＰＭＴゲインの増加（３０％までに設定されている）につれて増加し、３０％以上のＰＭＴゲインに対して約２２で飽和させる。このデータセットは、ＰＭＴゲインが３０％に設定されるとき、検出電子機器に関連づけられたノイズ寄与が無視できたことを示す。３０％のゲイン設定値は、信号対雑音、信号強度、およびダイナミックレンジを最大限にするために利用のに最適であった（図２５）。

信号強度のレーザー励起の影響は、図２６に示される。２つのデータセットは、光学的濃度４および２により、減光フィルターを用いて、試料での励起パワーをレーザー出力の１００００倍および１００倍低減するように生成された。該データは、両方のデータセットのための励起パワーとともに増加する信号強度を示す。試料上に入射される適度な励起パワー（０．０２ミリワット）は、経時的に、比較的一定の信号強度を生成した。この信号強度は、試料における蛍光団の濃度に一致していた。試料上に入射されるハイレベルの励起（２ミリワット）は、試料における蛍光団数の独立したレベルに対する指数関数形崩壊を示す。試料上に入射されるハイレベルの励起は、光退色としても知られている蛍光団の光化学的破壊、および試料における蛍光活性の不可逆的損失に帰着した（図２７）。これらの結果は、０．２ミリワットの試料励起パワーが定量化に最適であったことを示す。総合すれば、該結果は、３０％のＰＭＴゲインおよび０．２ミリワットの励起パワーが、最適な信号対雑音、感度、励起、および検出計器でのダイナミックレンジを達成するための設定値であることを示す。

本発明のいくつかの実施形態が本明細書に記載され図示されたが、当業者は、本明細書に記載された機能を実行するためのおよび／または結果および／または１つ以上の有利性を取得するための様々な他の手段および／または構造を容易に予見するだろう。また、このような変更および／または変形の各々は、本発明の範囲内であるものと見なされる。より一般には、当業者は、本明細書に記載されたパラメータ、寸法、材料、および構成がすべて典型的な事例であることが目的であり、そして、実際のパラメータ、寸法、材料および／または構成は、本発明の教示が用いられる特有のアプリケーション（複数可）に依存することを、十分にかつ容易に理解するだろう。当業者は、単なるルーチン実験を用いて、本明細書に記載された本発明の特有の実施形態に対する多くの等価物を、認識または確認することができるだろう。したがって、前述の実施形態は、単なる例として示されており、本発明は、添付された請求項およびその等価物の範囲内で、特に記載され請求されたとおり以外に実施されてもよいことは理解されるべきである。本発明は、本明細書に記載された個別の特徴、システム、アーティクル、材料、キットおよび／または方法の各々を対象にする。さらに、このような特徴、システム、アーティクル、材料、キットおよび／または方法の２つ以上の任意の組み合わせは、このような特徴、システム、アーティクル、材料、キットおよび／または方法が相互に矛盾していないのであれば、本発明の範囲内に含まれている。

すべての定義は、本明細書に定義され用いられたように、辞書の定義、参考文献によって組み込まれた文献における定義および／または定義された用語の通常の意味を統制することを理解すべきである。

不定冠詞「１つの（ａ）」「１つの（ａｎ）」は、本明細書および特許請求の範囲において用いられたように、別途明示されない限り、「少なくとも１つの（ａｔ ｌｅａｓｔ ｏｎｅ）」を意味することを理解するべきである。

語句「および／または（ａｎｄ／ｏｒ）」は、本明細書および特許請求の範囲において用いられたように、そのように結合されたエレメント（すなわち、結合的にいくつかのケースに含まれるエレメントおよび分離的に他のケースに含まれるエレメント）の「いずれか一方または両方（ｅｉｔｈｅｒ ｏｒ ｂｏｔｈ）」を意味することを理解するべきである。「および／または（ａｎｄ／ｏｒ）」によりリストされた複数のエレメントは、同一の種類（すなわち、そのように結合された「１つ以上の（ｏｎｅ ｏｒ ｍｏｒｅ）」エレメント）であるものと解釈されるべきである。他のエレメントは、「および／または」句によって特に識別されたエレメント以外に（特に識別されたエレメントに関連してもしなくても）任意に存在してもよい。したがって、非限定的な例として、「Ａおよび／またはＢ（Ａ ａｎｄ／ｏｒ Ｂ）」への言及は、「〜を備える（〜を含む）（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」などの開放式の用語（ｏｐｅｎ−ｅｎｄｅｄ ｌａｎｇｕａｇｅ）に関連して用いられた場合、１つの実施形態において、Ａのみ（状況に応じてＢ以外のエレメントを含む）を表わすことができるし、別の実施形態において、Ｂのみ（状況に応じてＡ以外のエレメントを含む）を表わすことができるし、さらに別の実施形態において、ＡおよびＢの両方（状況に応じて他のエレメントを含む）を表わすことなどができる。

明細書および特許請求の範囲において用いられたように、「または（ｏｒ）」は、上記で定義されたように「および／または（ａｎｄ／ｏｒ）」と同じ意味を有することを理解されるべきである。例えば、リストアップされたアイテムを区別する場合、「または（ｏｒ）」または「および／または（ａｎｄ／ｏｒ）」は、包括的である（すなわち、少なくとも１つの（但し、１つ以上も含む）複数の（またはリストの）エレメント（および状況に応じて付加的なリストアップされていないアイテム）の包括）と解釈されるべきである。「１つのみの（ｏｎｌｙ ｏｎｅ ｏｆ）」または「厳密に１つのみの（ｅｘａｃｔｌｙ ｏｎｅ ｏｆ）」または、特許請求の範囲において用いられた場合の「〜により構成される（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」などの別途明示された用語だけは、複数の（またはリストアップされた）エレメントの厳密な１つのエレメントの包括を表わすだろう。一般に、本明細書に用いられたように、用語「または（ｏｒ）」は、「いずれか（ｅｉｔｈｅｒ）」「１つの（ｏｎｅ ｏｆ）」「１のみの（ｏｎｌｙ ｏｎｅ ｏｆ）」または「厳密に１つの（ｅｘａｃｔｌｙ ｏｎｅ ｏｆ）」などの排他性の用語により先行された場合のみ、排他的な選択肢（すなわち「１つまたは別のもの（但し両方ではない）（ｏｎｅ ｏｒ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｂｕｔ ｎｏｔ ｂｏｔｈ）」を示すものと解釈されるべきである。特許請求の範囲において用いられた場合、「〜により本質的に構成される（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙ ｏｆ）」は、特許法の分野において用いられるような通常の意味を有するものとする。

明細書および特許請求の範囲において本明細書に用いられるように、語句「少なくとも１つの（ａｔ ｌｅａｓｔ ｏｎｅ）」は、１つ以上のエレメントのリストを参照して、リストアップされたエレメントのいずれか１つ以上のエレメントから選択された少なくとも１つのエレメントを意味することは理解されるべきである。但し、エレメントのリストに特にリストアップされたうちのすべてのエレメントの少なくとも１つを必ずしも含まず、かつリストアップされたエレメントの任意の組み合わせを必ずしも除外しない。この定義は、また、語句「少なくとも１（ａｔ ｌｅａｓｔ ｏｎｅ）」が指すエレメントのリストのうちで特に識別されたエレメント以外に（特に識別されたエレメントに関連してもしなくても）エレメントが任意に存在してもよいことを認める。したがって、非限定的な例として、「ＡおよびＢの少なくとも１つ」（または、同等に、「ＡまたはＢの少なくとも１つ」、または、同等に、「Ａおよび／またはＢの少なくとも１つ」）は、１つの実施形態において、少なくとも１つ（状況に応じて１つ以上を含む）のＡ（Ｂはない）（および状況に応じてＢ以外のエレメントを含む）を表わすことができ、別の実施形態において、少なくとも１つ（状況に応じて１つ以上を含む）のＢ（Ａはない）（および状況に応じてＡ以外のエレメントを含む）を表わすことができ、さらに別の実施形態において、少なくとも１つ（状況に応じて１つ以上を含む）のＡおよび少なくとも１つ（状況に応じて１つ以上を含む）のＢ（および状況に応じて他のエレメントを含む）などを表わすことができる。

また、別途明示されない限り、１つ以上のステップまたは機能を含む本明細書において請求された任意の方法において、該方法のステップまたは機能の順序は、該方法のステップまたは機能が詳述される順序に必ずしも限定されていないことは理解されるべきである。

特許請求の範囲において、上記明細書と同様に、「〜を備える（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」「〜を含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」「〜をもつ（ｃａｒｒｙｉｎｇ）」「〜を有する（ｈａｖｉｎｇ）」「〜を含む（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」「〜を含む（ｉｎｖｏｌｖｉｎｇ）」「〜を保持する（ｈｏｌｄｉｎｇ）」「〜により構成される（ｃｏｍｐｏｓｅｄ ｏｆ）」などのようなすべての移行句は、開放式であるように（すなわち、含むこと意味する（但し、限定されない）ように）理解されるべきである。「〜により構成される（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｏｆ）」および「〜により本質的には構成される（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇ ｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙ ｏｆ）」の移行句だけは、米国特許審査基準セクション２１１１．０３に記載されるように、それぞれ閉鎖式の移行句または半閉鎖式の移行句であるものとする。

Claims (56)

1. 標的核酸を含むまたは含むと推測される試料流体においてヒトゲノム二本鎖ＤＮＡ標的を定量化する方法であって、
   マイクロ流体チャネルにおいて（i）前記試料流体と（ii）少なくとも１つの反復ヒトＡｌｕ配列に結合することができる少なくとも１つの分子ビーコンプローブを含むプローブ流体とを組み合わせて試験液を形成するステップであって、ここに前記プローブはさらにシグナリング部分を含み、前記試料流体中の標的は増幅されていないステップと、
   前記試験液を加熱して二本鎖ＤＮＡを変性させ、ついで前記試験液を冷却して分子ビーコンプローブが標的に結合するように標的核酸に対する分子ビーコンプローブの結合を容易にするステップと、
   前記マイクロ流体チャネルにおける検出領域に前記試験液を配置するステップと、
   前記検出領域の試験液中の前記シグナリング部分を検出するステップと、
   前記試料流体と前記プローブ流体とを組み合わせてから１分以内に前記試験液における変性した増幅されていない標的核酸を定量化するステップと
   を備えることを特徴とする方法。
2. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的核酸の濃度を究明するステップを備えることを特徴とする請求項１に記載の方法。
3. 前記分子ビーコンプローブは前記ヒトＡｌｕ標的に独特の特異性を有することを特徴とする請求項１に記載の方法。
4. 前記配置ステップは、前記マイクロ流体チャネルにおける前記検出領域に前記試験液を流出するステップを備えることを特徴とする請求項１に記載の方法。
5. 前記配置ステップは、検出の間に前記マイクロ流体チャネルの前記検出領域を通して前記試験液を流出するステップを備えることを特徴とする請求項４に記載の方法。
6. 前記配置ステップは、前記マイクロ流体チャネルにおける領域において静止した状態で試験液を保持するステップと、前記領域を前記検出領域に転換するために前記領域に１列に並ぶように検出器を移動させるステップとを備えることを特徴とする請求項１に記載の方法。
7. 試料操作のための複数のマイクロ流体チャネルおよび領域を備えるバイオチップに前記マイクロ流体チャネルは配置され、前記方法は、前記定量化ステップの後に、前記バイオチップの領域に、前記試料流体の選択された量を方向づけるステップを備えるステップをさらに備え、前記選択された量は、前記定量化ステップの結果に基づいて、少なくとも部分的に究明されることを特徴とする請求項１に記載の方法。
8. 前記シグナリング部分を検出するステップは、レーザーにより前記シグナリング部分を照射するステップを備えることを特徴とする請求項１に記載の方法。
9. 前記マイクロ流体チャネルは、バイオチップ内に含まれ、前記レーザーは、前記マイクロ流体チャネルを備える前記バイオチップに連結されたシステムのコンポーネントであることを特徴とする請求項８に記載の方法。
10. 前記シグナリング部分を検出するステップは、蛍光を検出するステップを備えることを特徴とする請求項１に記載の方法。
11. 前記標的核酸は、もし存在すれば、１ナノグラム／マイクロリットル未満の濃度を有してしている、または前記試料流体中に合計量で１ナノグラム未満含まれることを特徴とする請求項１に記載の方法。
12. 前記試料流体は、法医学的試料を備えることを特徴とする請求項１に記載の方法。
13. 前記試料流体は、ヒト以外の非標的核酸をさらに備えることを特徴とする請求項１に記載の方法。
14. 標的核酸を含むまたは含むと推測される試料流体においてヒトゲノム二本鎖ＤＮＡ標的を定量化する方法であって、
    マイクロ流体チャネルにおいて（i）前記試料流体と（ii）少なくとも１つの反復ヒトＡｌｕ配列に結合することができる少なくとも１つの分子ビーコンプローブを含むプローブ流体とを組み合わせて試験液を形成するステップであって、ここに前記プローブはさらにシグナリング部分を含み、前記試料流体中の標的は増幅されていないステップと、
    前記試験液を加熱して二本鎖ＤＮＡを変性させ、ついで前記試験液を冷却して、分子ビーコンプローブが標的に結合するように標的に対する分子ビーコンプローブの結合を容易にするステップと、
    前記マイクロ流体チャネルにおける検出領域に前記試験液を配置するステップと、
    前記検出領域の試験液中の前記シグナリング部分を検出するステップと、
    前記試験液における変性した増幅されていない標的核酸を試料流体と前記プローブ流体とを組合せて１分以内に定量化するステップであって、前記標的は、１ナノグラム／マイクロリットル未満の濃度を有している、または前記試料流体中に合計量で１ナノグラム未満含まれるステップと
    を備えることを特徴とする方法。
15. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的の濃度を究明するステップを備えることを特徴とする請求項１４に記載の方法。
16. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的の合計量を究明するステップを備えることを特徴とする請求項１４に記載の方法。
17. 前記分子ビーコンプローブはヒトＡｌｕ標的のための独特の特異性を有することを特徴とする請求項１４に記載の方法。
18. 前記配置ステップは、前記マイクロ流体チャネルにおける前記検出領域に前記試験液を流出するステップを備えることを特徴とする請求項１４に記載の方法。
19. 前記配置ステップは、検出の間に前記マイクロ流体チャネルの前記検出領域を通して前記試験液を流出するステップを備えることを特徴とする請求項１８に記載の方法。
20. 前記配置ステップは、前記マイクロ流体チャネルにおける領域で静止した状態で試験液を保持するステップと、前記領域を前記検出領域に転換するために前記領域に１列に並ぶように検出器を移動させるステップとを備えることを特徴とする請求項１４に記載の方法。
21. 試料操作のための複数のマイクロ流体チャネルおよび領域を備えるバイオチップに前記マイクロ流体チャネルは配置され、前記方法は、前記定量化ステップの後に、前記バイオチップの領域に、前記試料流体の選択された量を方向づけるステップを備えるステップをさらに備え、前記選択された量は、前記定量化ステップの結果に基づいて、少なくとも部分的に究明されることを特徴とする請求項１４に記載の方法。
22. 前記シグナリング部分を検出するステップは、レーザーにより前記シグナリング部分を照射するステップを備えることを特徴とする請求項１４に記載の方法。
23. 前記マイクロ流体チャネルは、バイオチップ内に含まれ、前記レーザーは、前記マイクロ流体チャネルを備える前記バイオチップに連結されたシステムのコンポーネントであることを特徴とする請求項２２に記載の方法。
24. 前記シグナリング部分を検出するステップは、蛍光を検出するステップを備えることを特徴とする請求項１４に記載の方法。
25. 前記試料流体は、法医学的試料を備えることを特徴とする請求項１４に記載の方法。
26. 前記試料流体は、ヒト以外の非標的核酸をさらに備えることを特徴とする請求項２５に記載の方法。
27. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的核酸の濃度を究明するステップを備えることを特徴とする請求項１または１４に記載の方法。
28. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的核酸の合計量を究明するステップを備えることを特徴とする請求項１または１４に記載の方法。
29. 標的を含むまたは含むと推測される試料流体においてヒトゲノム二本鎖ＤＮＡ標的を定量化する方法であって、
    レーザーを備える検出器を備える電子装置に連結されたマイクロ流体デバイスを準備するステップであって、前記レーザーはマイクロ流体デバイスに集積されているステップと、
    前記マイクロ流体デバイスのマイクロ流体チャネルにおいて（i）前記試料流体と（ii）少なくとも１つの反復ヒトＡｌｕ配列に結合することができる少なくとも１つの分子ビーコンプローブを含むプローブ流体とを組み合わせるステップであって、前記分子ビーコンプローブがさらにシグナリング部分を含んで試験液を形成し、前記試料流体中の標的が増幅されていないステップと、
    前記試験液を加熱して二本鎖ＤＮＡを変性させ、ついで前記試験液を冷却して、分子ビーコンプローブが標的に結合するように標的に対する分子ビーコンプローブの結合を容易にするステップと、
    前記電子装置の前記検出器に作用する近接に配置された前記マイクロ流体チャネルの検出領域に前記試験液を配置するステップと、
    前記集積レーザーを用いて、前記シグナリング部分を照射するステップと、
    前記試験液における変性した増幅されていない標的核酸を試料流体と前記プローブ流体とを組合せて１分以内に定量化するステップと
    を備えることを特徴とする方法。
30. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的の濃度を究明するステップを備えることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
31. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的の合計量を究明するステップを備えることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
32. 前記分子ビーコンプローブは前記ヒトＡｌｕ標的のための独特の特異性を有することを特徴とする請求項２９に記載の方法。
33. 前記配置ステップは、前記マイクロ流体チャネルにおける前記検出領域に前記試験液を流出するステップを備えることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
34. 前記配置ステップは、検出の間に前記マイクロ流体チャネルの前記検出領域を通して前記試験液を流出するステップを備えることを特徴とする請求項３３に記載の方法。
35. 前記配置ステップは、前記マイクロ流体チャネルにおける領域で静止した状態で前記試験液を保持するステップと、前記領域を前記検出領域に転換するために前記領域に１列に並ぶように検出器を移動させるステップとを備えることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
36. 試料操作のための複数のマイクロ流体チャネルおよび領域を備えるバイオチップに前記マイクロ流体チャネルは配置され、前記方法は、前記定量化ステップの後に、前記バイオチップの領域に、前記試料流体の選択された量を方向づけるステップを備えるステップをさらに備え、前記選択された量は、前記定量化ステップの結果に基づいて、少なくとも部分的に究明されることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
37. 前記標的は、もし存在すれば、１ナノグラム／マイクロリットル未満の濃度を有している、または前記試料流体中に合計量で１ナノグラム未満含まれることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
38. 前記シグナリング部分を検出するステップは、レーザーにより前記シグナリング部分を照射するステップを備えることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
39. 前記マイクロ流体チャネルは、バイオチップ内に含まれ、前記レーザーは、前記マイクロ流体チャネルを備える前記バイオチップに連結されたシステムのコンポーネントであることを特徴とする請求項３８に記載の方法。
40. 前記シグナリング部分を検出するステップは、蛍光を検出するステップを備えることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
41. 前記試料流体は、ヒト以外の非標的核酸をさらに備えることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
42. 前記試料は、法医学的試料であることを特徴とする請求項２９に記載の方法。
43. 標的を含む試料流体においてヒトゲノム二本鎖ＤＮＡ標的を操作する方法であって、
    検出器を備える電子装置に連結された、試料操作のための複数のマイクロ流体チャネルおよび領域を備えるマイクロ流体デバイスを準備をするステップと、
    前記マイクロ流体デバイスのマイクロ流体チャネルにおいて（i）試料流体と（ii）少なくとも１つの反復ヒトＡｌｕ配列に結合することができる少なくとも１つの分子ビーコンプローブを含むプローブ流体とを組み合わせるステップであって、ここに前記分子ビーコンプローブはシグナリング部分をさらに含んで試験液を形成し、ここに試料流体中の標的は増幅されていないステップと、
    前記試験液を加熱して二本鎖ＤＮＡを変性させ、ついで前記試験液を冷却して、分子ビーコンプローブが標的に結合するように標的に対する分子ビーコンプローブの結合を容易にするステップと、
    前記電子装置の前記検出器に作用する近接に配置された前記マイクロ流体チャネルの検出領域に前記試験液を配置するステップと、
    前記試験液における変性した増幅されていない標的核酸を試料流体と前記プローブ流体とを組合せて１分以内に定量化するステップと
    バイオチップの領域に、前記試料流体の選択された量を方向づけるステップであって、ここに前記選択された量は、前記定量化ステップの結果に基づいて、少なくとも部分的に究明されるステップと
    を備えることを特徴とする方法。
44. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的核酸の濃度を究明するステップを備えることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
45. 前記定量化ステップは、前記試験液における前記標的核酸の合計量を究明するステップを備えることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
46. 前記分子ビーコンプローブは前記ヒトＡｌｕ標的のための独特の特異性を有することを特徴とする請求項４３に記載の方法。
47. 前記配置ステップは、前記マイクロ流体チャネルにおける前記検出領域に前記組み合わされた流体を流出するステップを備えることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
48. 前記配置ステップは、検出の間に前記マイクロ流体チャネルの前記検出領域を通して前記組み合わされた流体を流出するステップを備えることを特徴とする請求項４７に記載の方法。
49. 前記配置ステップは、前記マイクロ流体チャネルにおける領域で静止した状態で前記組み合わされた流体を保持するステップと、前記領域を前記検出領域に転換するために前記領域に１列に並ぶように検出器を移動させるステップとを備えることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
50. 前記標的は、もし存在すれば、１ナノグラム／マイクロリットル未満の濃度を有してしている、または前記試料流体中に合計量で１ナノグラム未満含まれることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
51. 前記シグナリング部分を検出するステップは、レーザーにより前記シグナリング部分を照射するステップを備えることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
52. 前記マイクロ流体チャネルは、バイオチップ内に含まれ、前記レーザーは、前記マイクロ流体チャネルを備える前記バイオチップに連結されたシステムのコンポーネントであることを特徴とする請求項５１に記載の方法。
53. 前記シグナリング部分を検出するステップは、蛍光を検出するステップを備えることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
54. 前記試料流体は、ヒト以外の非標的核酸をさらに備えることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
55. 前記試料は、法医学的試料であることを特徴とする請求項４３に記載の方法。
56. 前記分子ビーコンプローブは、配列番号：５または配列番号：６に記載の配列を有することを特徴とする請求項１、１４、２９または４３のいずれかに記載の方法。

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