JP6141517B2 - 脂肪細胞標的非ウイルス性遺伝子伝達体 - Google Patents

Description

本発明は、脂肪細胞を標的とする非ウイルス性遺伝子伝達体及びこれを用いた肥満及び肥満由来代謝症候群治療システムに関する発明である。より具体的に、本発明は、脂肪標的配列（ＡＴＳ）―Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドを含む、分化した肥満（成熟）脂肪細胞を直接ターゲッティングする非ウイルス性遺伝子伝達体に関する発明である。

通常的なタンパク質治療の代用として多様な遺伝子治療技法が発達してきたが、これには依然として解決すべき重要な課題が存在する。遺伝子治療の主要な課題の一つは、最小細胞毒性を有して原形質膜（動物細胞）及び核膜を介した効率的な遺伝子流入（ｉｎｆｌｕｘ）を達成することにある。

遺伝子治療システムは、大きく、ウイルス性ベクター―媒介システム及び非ウイルス性ベクター―媒介システムに分類することができる。レトロウイルス（ｒｅｔｒｏｖｉｒｕｓ）又はアデノウイルス（ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ）などを用いて製造したウイルス性ベクターは、細胞内への高い形質注入（トランスフェクション、ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）効率を有するという長所を有するが、ｉｎ ｖｉｖｏでの免疫原性の問題及び遺伝子組換えなどの内在的問題を有する。このようなウイルス性ベクターの安定性問題を克服するために、多様な重合体性遺伝子伝達システムが伝統的なウイルス性ベクター―ベースの遺伝子伝達方法に対する代案として発達してきた。しかし、重合体性ベクターは、エンドソーム脱出（ｅｎｄｏｓｏｍａｌ ｅｓｃａｐｅ）及び核偏在化（ｎｕｃｌｅａｒ ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ）などの細胞内トラフィッキング（ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ）障壁を有するという問題を有する。

一方、合成ペプチドに基づいた遺伝子伝達システムは、低いｐＨでエンドソーム膜内での漏出をもたらすことによってＤＮＡを凝縮させ、また、エンドソーム脱出を促進するので、重合体性遺伝子伝達システムと関連する前記問題を克服することができる。このような理由により、多様な合成ペプチドがｉｎ ｖｉｔｒｏで様々な細胞株における遺伝子伝達を促進するものとして開発されてきた。しかし、これにも、ｉｎ ｖｉｖｏ適用において毒性及び血清不安定性などの問題が存在する。

上述したように、ウイルス性ベクターの場合は、免疫反応、自己複製、体内安定性などの問題があり、一般的な重合体性高分子ベクターの場合は、生体適合性が低下し、その結果、細胞及び生体毒性が大きく、核酸伝達効率が低いという問題がある。

これと関連して、短い陽イオン性ペプチドを用いたベクターに対する研究が進められているが、この場合、細胞外空間でのＤＮＡが不安定であるという問題があり、また、ＤＮＡとの複合体の安定性及び遺伝子発現の水準などが不十分であるという問題が存在する。

さらに、特定細胞へのターゲッティング能力を保有し、ＤＮＡの標的細胞内への流入及び複合体からのＤＮＡの遊離を円滑にし、目的遺伝子発現の水準を高めることができる特定細胞特異的な遺伝子伝達ベクターの開発が必要である。

これと関連して、脂肪細胞、特に成熟（ｍａｔｕｒｅ）した肥満脂肪細胞は、最終的に分化した細胞であるので、形質注入（トランスフェクション）が非常に難しい。以前の研究においては電気穿孔が使用されてきたが、トランスフェクション効率はわずか約１０％程度であると報告されている。さらに、ｉｎ ｖｉｖｏ遺伝子伝達システムにおける前記方法では、脂肪組織選択的標的伝達が試みられたことがない。

そこで、本発明者等は、非ウイルス性遺伝子伝達システムを研究した結果、特定ペプチド及び脂肪細胞標的配列（ａｄｉｐｏｃｙｔｅ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅ、ＡＴＳ）ペプチド複合体が成熟脂肪細胞内に発現されているプロヒビチンと結合し、肥満脂肪細胞を直接ターゲッティングし、伝達した各遺伝子の発現を促進させることによって、肥満及び肥満由来代謝症候群などを治療できる機構を最初に確認し、本発明を完成した。

本発明の主要な目的は、脂肪細胞を標的とする（ターゲッティングする）遺伝子伝達体及びこれに目的とする遺伝子が結合された複合体を提供することにある。

本発明の他の目的は、前記遺伝子伝達体を用いて肥満及び肥満由来代謝症候群治療用遺伝子を伝達することにある。

本発明の更に他の目的は、肥満及び肥満由来代謝症侯群の予防又は治療用薬学的組成物を提供することにある。

前記課題を解決するために、本発明は、脂肪細胞標的配列（ＡＴＳ）及びＲ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドを含有する、脂肪細胞標的遺伝子伝達体を提供する。

このとき、前記脂肪細胞標的配列及びＲ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドは、プロヒビチン（ｐｒｏｈｉｂｉｔｉｎ）と結合されて脂肪細胞内に内在化されるという特徴を有する。

特に、前記Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドは、Ｃｙｓ―（Ｄ―Ｒ）９―Ｃｙｓ構造を有することが好ましく、前記脂肪細胞標的配列は、配列番号１で表示されるアミノ酸配列からなり得る。

前記脂肪細胞は、分化した成熟肥満脂肪細胞であることを特徴とするが、特に、分化してから９日〜１１日経過した成熟した肥満脂肪細胞であることが好ましい。

また、本発明は、脂肪細胞標的配列、Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチド、及び脂肪細胞標的遺伝子として肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子を含有する複合体を提供する。

すなわち、前記遺伝子伝達体に、肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子として、例えば、ＤＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡなどが結合された形態に関し、各構成に対する説明は、遺伝子伝達体の場合と同一であるが、このとき、前記肥満治療遺伝子としては、ｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡなどのｉＲＮＡを使用することが最も好ましい。

前記肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子複合体は、２００ｎｍ以下の直径を有するナノサイズのものであって、特に、３：１〜８：１の電荷比率（＋／−）を有する場合、優れたトランスフェクション効率を有し、５：１〜８：１の電荷比率（＋／−）を有することがさらに好ましい。細胞膜が陰電荷を帯びているので、遺伝子伝達複合体が全体的に陽電荷を帯びているときに伝達効率に優れる。これは、複合体が陰電荷を帯びる場合は細胞膜を容易に通過し得ない一方、複合体が陽電荷を帯びる場合は電荷対電荷反応によって細胞膜を容易に通過し得るためである。また、電荷量は、細胞膜透過能に影響を及ぼすが、電荷量が高いほど細胞膜を通過し得る能力も大きくなる。

また、本発明は、脂肪細胞標的配列；Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチド；及び脂肪細胞標的遺伝子として肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子を含有する複合体を有効成分として含有する肥満及び肥満由来代謝症候群治療用組成物を提供する。このときも、肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子としては、ＤＮＡ又はｉＲＮＡ、例えば、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡなどを使用することができる。

本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、脂肪組織流入血管でプロヒビチンと結合し、続いて脂肪細胞内に内在化させるが、これを簡略に説明すると、まず、プロヒビチンを通じて成熟脂肪組織流入血管のターゲッティング及び結合がなされた後、血管を通過して脂肪細胞内への内在化がなされる。そのため、脂肪細胞、特にプロヒビチンを多く発現している分化した成熟肥満脂肪細胞を特定標的としてターゲッティングし、目的遺伝子を伝達することができる。

また、本発明は、高いトランスフェクション効率、低い細胞毒性、高い目的遺伝子発現効率を有するので、効果的な非ウイルス性脂肪細胞標的遺伝子伝達システムとして使用することができる。

本発明に係るＡＴＳ―Ｒ９ペプチド構造体は、分化後、脂肪細胞におけるプロヒビチンの過剰発現機構を通じて成熟した肥満脂肪細胞を直接ターゲッティングし、遺伝子を伝達できる特異的機能及び効果を有し、肥満に対する遺伝子治療に非常に有用に使用することができる。

本発明のＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックスによる脂肪細胞への遺伝子伝達メカニズムを示した模式図である。 ３Ｔ３―Ｌ１脂肪細胞分化程度に対するＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏ染色結果及び定量分析結果を示すグラフである。 脂肪細胞に対するＡＴＳ―Ｒ９の特異的な結合親和度を確認するために時間の経過に伴うＡＴＳ―Ｒ９の細胞内分布（内在化）を確認した結果である。 脂肪細胞に対するＡＴＳ―Ｒ９の特異的な結合親和度を確認するために時間の経過に伴うＡＴＳ―Ｒ９の細胞内分布（内在化）を確認した結果である。 ３Ｔ３―Ｌ１脂肪細胞分化程度によるプロヒビチン分布結果である。 肥満マウスと比較して、非―肥満マウスと筋肉細胞に対するプロヒビチン発現結果を比較したウエスタンブロット結果である。 ＡＴＳ―Ｒ９のＤＮＡ凝縮及び保護能力に対するゲル遅延分析及びマウス血清における分解（ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ）テスト結果である。 ＡＴＳ―Ｒ９／ＤＮＡオリゴ―ペプトプレックスのゼータポテンシャル及び平均直径を測定した結果である。 ＡＴＳ―Ｒ９／ＤＮＡオリゴ―ペプトプレックスの毒性評価のための細胞生存能の分析結果である。 オリゴ―ペプトプレックスのトランスフェクション効率の比較結果である。 食餌誘導肥満（ｄｉｅｔ―ｉｎｄｕｃｅｄ ｏｂｅｓｉｔｙ、ＤＩＯ）マウスを用いて脂肪組織に対するＡＴＳ―Ｒ９のターゲッティング効果を確認した結果である。 ＡＴＳ―Ｒ９の標的効率（ｈｏｍｉｎｇ ａｂｉｌｉｔｙ）をＲ９の場合と比較して、ｉｎ ｖｉｖｏでＡＴＳ―Ｒ９の標的効率を確認した結果である。 ＡＴＳ―Ｒ９の標的効率（ｈｏｍｉｎｇ ａｂｉｌｉｔｙ）をＲ９の場合と比較して、ｉｎ ｖｉｖｏでＡＴＳ―Ｒ９の標的効率を確認した結果である。 ＡＴＳ―Ｒ９のｉｎ ｖｉｖｏ内の遺伝子発現効果を確認した結果である。 ＡＴＳ―Ｒ９のｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏでのｓｈ―ＲＮＡ伝達と脂肪細胞へのサイレント遺伝子伝達能を確認した結果である。 ｓｈ―ＦＡＢＰ４―ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックス処理後の体重減少効果を確認した結果である。 ｓｈ―ＦＡＢＰ４―ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックス処理後のインスリン及びグルコース耐性（ｔｏｌｅｒａｎｃｅ）変化を確認した結果である。 ｓｈ―ＦＡＢＰ４―ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックス処理後のインスリン及びグルコース耐性（ｔｏｌｅｒａｎｃｅ）変化を確認した結果である。 ＰＥＩとリポフェクタミン（ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎ）を比較群として本発明のＡＴＳ―Ｒ９の遺伝子伝達能を比較したグラフである。 脂肪細胞の分化前と分化後の遺伝子伝達効能を比較したグラフである。

本発明で使用される用語に対する定義は、以下の通りである。

「遺伝子」は、タンパク質コーディング又は転写時に又は他の遺伝子発現の調節時に機能的役割を有する任意の核酸配列又はその一部を意味する。遺伝子は、機能的タンパク質をコーディングする全ての核酸又はタンパク質をコーディング又は発現する核酸の一部のみからなり得る。核酸配列は、エクソン、イントロン、開始又は終了領域、プローモーター配列、他の調節配列又は遺伝子に隣接した特有の配列内に遺伝子異常を含むことができる。

「ポリヌクレオチド（ｐｏｌｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）」又は「核酸（ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ）」という用語は、リボヌクレオチドのみならず、ジオキシリボヌクレオチドなどの様々な長さのヌクレオチド重合体を意味する。この用語は、分子の１次的構造のみを意味し、したがって、二重又は単一鎖のＤＮＡ又はＲＮＡを意味する。また、これは、変形の公知の類型、例えば、当該分野で知られている標識（ｌａｂｅｌ）、メチル化、「ｃａｐｓ」、類似体の一つ或いはそれ以上の自然発生のヌクレオチド置換、脱結合（例：ｍｅｔｈｙｌ ｐｈｏｓｐｈｏｎａｔｅ、ｐｈｏｓｐｈｏｔｒｉｅｓｔｅｒ、ｐｈｏｓｐｈｏａｍｉｄａｔｅ、ｃａｒｂａｒｎａｔｅなど）と結合（例：ｐｈｏｓｐｈｏｒｏｔｈｉｏａｔｅ、ｐｈｏｓｐｈｏｒｏｄｉｔｈｉｏａｔｅなど）、タンパク質（例：ヌクレアーゼ、毒素、抗体、信号ペプチド（ｓｉｇｎａｌ ｐｅｐｔｉｄｅ）、ｐｏｌｙ―Ｌｌｙｓｉｎｅなど）などの付属物を含むこと、挿入物（例：アクリジン、Ｐｓｏｌａｌｅｎなど）を有すること、キレート（例：金属原素、放射性金属原素、ホウ素、酸化金属原素など）を有すること、アルキル化合物を有すること、変形した結合（例：ａｌｐｈａ ａｎｏｍｅｒｉｃ核酸など）を有すること、また、ポリヌクレオチドの非変形を含むヌクレオチド間の変形を意味する。一般に、本発明によって提供される核酸部分は、ゲノム（ｇｅｎｏｍｅ）の破片と短いオリゴヌクレオチド結合子又は一連のオリゴヌクレオチド、微生物又はウイルスオペロン（ｏｐｅｒｏｎ）や真核細胞遺伝子から誘導された調節因子（ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ ｅｌｅｍｅｎｔ）を含む組換え転写単位で発現できる合成核酸を提供する特有の各ヌクレオチドで固められる。

「ベクター（ｖｅｃｔｏｒ）」という用語は、他の核酸をそれと連関した場所に運搬できる核酸分子を意味する。「発現ベクター（ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｖｅｃｔｏｒ）」という用語は、ベクターによって運搬されたそれぞれの組換え遺伝子によって暗号化されたニューリチン（Ｎｅｕｒｉｔｉｎ、ＣＰＧ１５）タンパク質を合成できるプラスミド、コスミド（ｃｏｓｍｉｄ）又はファージ（ｐｈａｇｅ）を含む。好ましいベクターは、連関した核酸の自己複製と発現が可能なものである。

「トランスフェクション（ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）」は、培養動物細胞に核酸（ＤＮＡ、ＰＮＡなど）を直接導入し、細胞内で遺伝形質を発現させる方法を意味する。対象が植物細胞であるときは、細胞壁を除去し、原形質体に導入する場合も多い。この方法で発癌機構、感染、免疫、発生、情報伝達などの医学、生物学の様々な問題に細胞水準で接近できるようになった。導入した核酸は、目的とする遺伝子をプラスミドなどの媒介体に入れて導入することが一般的な方法である。導入した遺伝子が細胞で安定化された場合は、染色体に挿入された場合が多かった。核酸を導入した細胞を形質導入体という。形質注入効率が非常に低いので、効率を高めるために様々な方法が開発された。そのうち、リン酸カルシウム共沈法、ＤＥＡＥ―デキストラン処理法、電気穿孔法、再分布法（リポソームという人空膜とＤＮＡ複合体を製造するための細胞とを融合させる方法）などがある。

「ゼータポテンシャル（ｚｅｔａ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ）」とは、帯電した粒子の表面に付いている不可動水分と粒子から容易に離れ得る可動水分の拡散二重層における陽電荷密度差から由来する電気力学的な電位差を意味する。細胞表面と周辺培養液との間の電気的電位差又はゼータ電位で示すこともある。

「電荷比率」は、遺伝子伝達体として機能している複合体において、陰電荷を有するＤＮＡが静電引力を通じて陽電荷の担体又はキャリア（ｃａｒｒｉｅｒ）と結合するときに使用された各電荷量の比率を意味する。複合体が製造された後、全体的な電荷が陽電荷であるときに伝達効率がよいが、これは、細胞膜が陰電荷を帯びているためである。

「アミノ酸」及び「アミノ酸残基」は、天然アミノ酸、非天然アミノ酸、及び変形したアミノ酸を意味する。別途に言及されない限り、アミノ酸に対する全ての言及は、一般に又は名称によって、特異的にＤ及びＬ立体異性体（構造がこのような立体異性体の形態を許容する場合）の両方に対する言及を含む。天然アミノ酸には、アラニン（Ａｌａ）、アルギニン（Ａｒｇ）、アスパラギン（Ａｓｎ）、アスパラギン酸（Ａｓｐ）、システイン（Ｃｙｓ）、グルタミン（Ｇｌｎ）、グルタミン酸（Ｇｌｕ）、グリシン（Ｇｌｙ）、ヒスチジン（Ｈｉｓ）、イソロイシン（Ｉｌｅ）、ロイシン（Ｌｅｕ）、リシン（Ｌｙｓ）、メチオニン（Ｍｅｔ）、フェニルアラニン（Ｐｈｅ）、プロリン（Ｐｒｏ）、セリン（Ｓｅｒ）、トレオニン（Ｔｈｒ）、トリプトファン（Ｔｒｐ）、タイロシン（Ｔｙｒ）及びバリン（Ｖａｌ）が含まれる。非天然アミノ酸には、Ｎ―末端アミノ基又は側鎖基上で化学的に変形した、又は、可逆的又は非可逆的に遮断された変形アミノ酸残基、例えば、Ｎ―メチル化Ｄ及びＬアミノ酸又は側鎖官能基が他の官能基に化学的に変形した残基が含まれる。

「前駆細胞（ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ）」は、自己複製能及び分化能（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｐｏｔｅｎｃｙ）を有する未分化細胞であるが、最終的に分化する細胞の種類が既に決定されている究極的に分化した細胞である。前駆細胞は、分化経路が予定されているが、一般に成熟した完全に分化した細胞のマーカーを発現しないか、成熟した完全に分化した細胞としては機能しない。したがって、前駆細胞は、関連細胞タイプに分化するが、正常状態では非常に多様な細胞タイプを形成することはできない。本発明においては、脂肪細胞に分化する脂肪前駆細胞を使用する。

「分化（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ）」は、細胞が分裂・増殖して成長する間、互いに構造や機能が特殊化する現象、すなわち、生物の細胞、組織などがそれぞれに与えられた役割をするために形態や機能が変化していくことをいう。本発明においては、分化がなされた成熟した（ｍａｔｕｒｅｄ）脂肪細胞を対象とする。

「ルシフェラーゼ（ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ）」は、ルシフェリンの酸化を促進し、化学エネルギーを光エネルギーに転換させ、光を発散させる酵素であって、生体内で連続的及び実時間的に発現を測定し、目的の各物質に対する効果を検証できるようにするリポーター遺伝子（ｒｅｐｏｒｔｅｒ ｇｅｎｅ）としての機能をする。ホタル（ｆｉｒｅｆｌｙ）又はツチボタル（ｇｌｏｗ―ｗｏｒｍ）などの昆虫体から直接収得したり、このような酵素を暗号化する組換えＤＮＡ切片を含む微生物からの発現によって収得することができる。

「担体又はキャリア（ｃａｒｒｉｅｒ）」は、生物体内にある活性物質が他の物質と結合して存在する場合、又は、細胞膜を介した物質の移動である運搬体輸送を担当する高分子物質を総称する。担体の例としては、非制限的に、リン酸塩、クエン酸塩及び他の有機酸などの緩衝剤、アスコルビン酸などの抗酸化剤、低分子量ポリペプチド（約１０残基未満）、血清アルブミン、ゼラチン又は免疫グロブリンなどのタンパク質、ポリビニルピロリドンなどの親水性ポリマー、グリシン、グルタミン、アスパラギン、アルギニン又はリシンなどのアミノ酸、単糖類、二糖類及びグルコース、マンノース又はデキストリンを含む他の炭水化物、ＥＤＴＡなどのキレート化剤、マンニトール又はソルビトールなどの糖アルコール、ナトリウムなどの塩―形成反対イオン（ｓａｌｔ―ｆｏｒｍｉｎｇ ｃｏｕｎｔｅｒｉｏｎ）、及び／又はＴＷＥＥＮ、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）及びＰＬＵＲＯＮＩＣＳなどの無イオン界面活性剤を含む。

「治療」は、臨床結果を含んで有利な又は所望の結果を得るための接近法である。疾患、障害又は病態の「治療」又は「緩和」は、障害を治療しない場合と比較して、病態、障害又は疾患状態の程度及び／又は好ましくない臨床症候が少なくなり／少なくなるか、経時的な進行推移が遅くなるか長くなることを意味する。例えば、肥満治療において、体重減少、例えば、少なくとも５％の体重減少は、好ましい治療結果の例である。本発明の目的のために、有利であるか好ましい臨床結果は、検出可能又は検出不能とは関係なく、１つ以上の症状の軽減又は改善、疾患程度の縮小、疾患の安定化した（すなわち、悪化していない）状態、疾患進行の遅延又は減速、疾患状態の改善又は緩和、及び鎮静（部分的又は全体的）を含むが、これに限定されることはない。「治療」は、治療を受けない場合に予想される生存と比較して、生存を延長させることも意味し得る。また、治療は、１回用量の投与によって発生する必要がなく、一連の用量の投与時に度々発生する。したがって、治療上の有効量、緩和に十分な量、又は疾患、障害又は病態の治療に十分な量を１回以上の投与で投与することができる。

「疾患（ｄｉｓｏｒｄｅｒ）」という用語は、本発明の遺伝子導入動物モデルを使用して同定される分子を用いて治療することから利益を得られるいずれかの状態である。これは、哺乳類を疑問の疾患にかかりやすくする各病理学的条件を含む慢性と急性疾患又は各疾病を含む。本明細書で取り扱う各疾病の例は、これに制限されることはないが、肥満、代謝症侯群症状などである。

「治療上の有効量」は、治療される障害の症状の軽減が含まれる、研究員、獣医、医師又はその他臨床医学者によって追求される組織、システム、対象又は人間における生物学的又は医学的応答を導出する組成物内の活性化合物の量を意味する。

「予防的有効量」は、肥満又は肥満関連障害、病態又は疾患危険のある対象における肥満又は肥満関連障害、病態又は疾患の発病を防止するために、研究員、獣医、医師又はその他臨床医学者によって追求される組織、システム、対象又は人間における生物学的又は医学的応答を導出する組成物内の活性化合物の量を意味する。

「遺伝子治療（ｇｅｎｅ ｔｈｅｒａｐｙ）」は、突然変異を起こした遺伝子を訂正することによって遺伝病を治療したり、遺伝子或いはＲＮＡｉを用いてタンパク質発現を調節することによって疾病を治療することをいう。すなわち、患者の細胞に外部から正常遺伝子を移植し、その細胞の表現型を変化させることによって病気を治療する方法である。現在、人の精子、卵子、受精卵に対する遺伝子治療においては全世界的に倫理問題が提起されているが、１９９３年代に遺伝子治療臨床研究に関する指針を指定した後、遺伝子治療時代に突入した。遺伝子の治療には、体内に遺伝子を移入する遺伝子ベクター、システムの研究が必須である。

「薬」とは、参照量、水準、値、数、頻度、パーセント、寸法、サイズ、量、重量又は長さに対して３０％、２５％、２０％、２５％、１０％、９％、８％、７％、６％、５％、４％、３％、２％又は１％程度に変化する量、水準、値、数、頻度、パーセント、寸法、サイズ、量、重量又は長さを意味する。

本明細書を通じて、文脈で別途に必要でない限り、「含む」という用語は、提示された段階又は元素、或いは段階又は元素の群を含むが、任意の他の段階又は元素、又は各段階又は各元素の群が排除されないことを内包するものと理解しなければならない。

以下、本発明をより詳細に説明する。

本発明は、核酸（ｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ）の細胞内伝達（ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）に関する。特に、脂肪細胞を直接標的とする（ターゲッティングする）伝達体を用いて、脂肪細胞標的遺伝子としてＤＮＡ、ｓｉＲＮＡ及びｓｈＲＮＡなどの肥満及び肥満由来代謝症侯群治療用遺伝子伝達に関する。

本発明は、一観点において、脂肪細胞標的配列（ａｄｉｐｏｃｙｔｅ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅ、ＡＴＳ）及びポリ（オリゴ―アルギニン）、特にＲ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドを含む脂肪細胞標的遺伝子伝達体に関する。すなわち、本発明は、脂肪細胞標的配列（ＡＴＳ）及び還元性ポリ（オリゴ―アルギニン）を含む非ウイルス性遺伝子伝達ベクターに関する発明である。

非ウイルス性遺伝子伝達ベクターは、ウイルスを利用せずに遺伝子を細胞内に運搬するキャリアを総称する意味を有し、遺伝子を構成する核酸が陰電荷を帯びる性質を用いて陽イオン上の陽イオン部位と核酸上の陰イオン部位との電気的相互作用を用いて核酸をコーティングする形態のベクターが代表的な例である。

本発明のポリ（オリゴ―アルギニン）は、ポリ（オリゴ―Ｌ―アルギニン）及びポリ（オリゴ―Ｄ―アルギニン）を含み、そのうち、ポリ（オリゴ―Ｄ―アルギニン）であることが好ましい。高分子量ポリ（オリゴ―Ｄ―アルギニン）は、ＤＮＡの凝縮を効果的に促進し、安定した複合体及びＤＮＡの細胞内への内在化を形成し、内在化後には、複合体が二硫化結合の還元によってエンドソームから細胞質空間に脱出するようになる。

本発明の還元性ポリ（オリゴ―Ｄ―アルギニン）は、二硫化物で架橋された末端システインを含む陽イオン性オリゴマーで構成されたことが好ましいが、これに制限されることはない。システインは、隣接する他のシステイン分子と二硫化架橋（ｃｒｏｓｓ―ｌｉｎｋｉｎｇ）を形成するスルフヒドリル基を含有する唯一のアミノ酸であって、二硫化物で架橋された末端システイン以外のタンパク質伝達ドメイン（ＰＴＤ）部分は任意の陽イオン性ペプチドになり得る。さらに、好ましくは、本発明の還元性ポリ（オリゴ―Ｄ―アルギニン）は、Ｃｙｓ―（Ｄ―Ｒ）９―Ｃｙｓ反復単位で構成することができる。このような還元性ポリ（オリゴ―Ｄ―アルギニン）は、Ｃｙｓ―（Ｄ―Ｒ）９―Ｃｙｓ反復単位の末端システイン―チオール基のＤＭＳＯ酸化過程によって製造することができ、還元試薬によってＣｙｓ―（Ｄ―Ｒ）９―Ｃｙｓに断片化することができる。

すなわち、本発明の還元性ポリ（オリゴ―アルギニン）は、９個のアルギニン（Ｒ９）で構成された、さらに好ましくは、Ｃｙｓ―（Ｄ―Ｒ）９―Ｃｙｓ構造を有することを特徴とする。このようにＣｙｓが両側末端に位置することによって、オリゴペプトプレックス（ペプチド複合体、ｐｅｐｔｏｐｌｅｘ）の効果的な凝縮及びこれによる複合体の中性電荷特性を保有できるようになる。

本発明の遺伝子伝達体は、前記Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）及び脂肪細胞標的配列（ａｄｉｐｏｃｙｔｅ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅ、ＡＴＳ）を含む。すなわち、Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）が脂肪細胞標的配列（ＡＴＳ）と結合している構造を含む（ＡＴＳ―Ｒ９）。

脂肪細胞標的配列（ａｄｉｐｏｃｙｔｅ ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅ、ＡＴＳ）は、公知のＡＴＳ配列を利用［Ｎａｔｕｒｅ ｍｅｄｉｃｉｎｅ、２００４ Ｊｕｎｅ］しても構わないが、配列番号１で表示されるアミノ酸配列からなることが好ましく、これに制限されることはない。

配列番号１：ＣＫＧＧＲＡＫＤＣ

本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、脂肪細胞内プロヒビチン（ｐｒｏｈｉｂｉｔｉｎ）と結合することを特徴とする。

プロヒビチン（Ｐｒｏｈｉｂｉｔｉｎ）は、脂肪細胞を支持する血管の内皮細胞で過剰発現される受容体であって、成熟脂肪細胞及び前駆脂肪細胞の全てに存在するＡＴＳ受容体である。そのため、プロヒビチン発現位置及び発現水準を確認するために、その抗体の代わりにＡＴＳとの結合能を測定することができる。

プロヒビチンは、特に肥満で重要な役割をするが、脂肪組織血管で高く発現され、分化した脂肪細胞で分化前と比較して核及びミトコンドリアから原形質膜に移動して分布する特性は、プロヒビチンが肥満に対する潜在的なバイオマーカーになり得ることを示唆する。前記プロヒビチンは、前駆脂肪細胞で原形質膜に少なく分布し、相対的に核及びミトコンドリアに高く位置するが、分化した脂肪細胞では核及びミトコンドリアに位置していたプロヒビチンが原形質膜に移動して高く発現される。すなわち、プロヒビチンは、分化の進行と共に過剰発現される。

本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、プロヒビチン―媒介メカニズムを通じて脂肪細胞内に位置するようになる。すなわち、脂肪細胞ターゲッティングではＡＴＳが重要な役割をし、目的遺伝子発現程度は、脂肪細胞内でのプロヒビチン発現水準に依存的である。

特に、前記プロヒビチンは、分化前の脂肪細胞よりも分化後の成熟脂肪細胞で過剰発現されるので、本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、分化した成熟肥満脂肪細胞を直接ターゲッティングする機能を有する。実験例１でこれを確認することができる。特に、分化してから９日〜１１日経過した成熟した肥満脂肪細胞に対するターゲッティング能に最も優れる。本発明において、「成熟脂肪細胞」と「肥満脂肪細胞」は同一の意味を有する用語であって、これらは混用されている。

したがって、本発明は、肥満脂肪細胞を標的とする（ターゲッティングする）遺伝子伝達体を用いて脂肪細胞内の特定遺伝子を効率的に伝達する方法及び関連システムに関する。このような肥満脂肪細胞を標的とする特定遺伝子として、公知の肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子を使用することができる。

また、本発明は、他の観点において、脂肪細胞標的配列（ＡＴＳ）；Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチド；及び脂肪細胞標的遺伝子として肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子を含有する複合体に関し、前記遺伝子伝達体に目的遺伝子が結合された構成に関する。

本発明の標的細胞としては、脂肪細胞に分化できる前駆脂肪細胞に該当する細胞を使用することもできるが、成熟脂肪細胞（肥満脂肪細胞、白色脂肪細胞、茶色脂肪細胞など）をターゲッティングすることが最も好ましい。

前駆脂肪細胞には、脂肪細胞に直接分化できる細胞の他、脂肪細胞を含む多種の細胞への分化能を維持している間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）や間質細胞（ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌ）が含まれる。前記各細胞は、人間又は非人間哺乳動物の脂肪組織などから採取した初期培養細胞であってもよく、株化された培養細胞株であってもよい。

脂肪組織の採取源としては、皮下脂肪や内臓脂肪が例示されるが、これらに限定されることはない。脂肪組織の採取によって個体に与える機能障害のおそれが小さいものが、標的細胞の採取源として非常に適している。また、間葉系幹細胞や間質細胞は、骨髓やその他の組織から採取することができる。

一方、本発明の複合体が伝達する肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子は、目的の脂肪細胞内で発現させることが好ましい任意の遺伝子を挿入することができ、ＤＮＡとＲＮＡ及びこれらの合成類似体を包括する。例えば、ポリペプチド（酵素、ホルモン、成長因子、サイトカイン、レセプター、構造タンパク質など）、アンチセンスＲＮＡ、リボザイム、デコイ、ＲＮＡ干渉を起こすＲＮＡなどをコーディングする遺伝子が例示される。その例としては、ｇＤＮＡ、ｃＤＮＡ、ｐＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｒＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、アンタゴミアなどを挙げることができる。これらは、自然に存在したり合成することができ、サイズにおいてオリゴヌクレオチドから染色体まで多様なサイズで存在し得る。これら遺伝子は、人間、動物、植物、バクテリア、ウイルスなどから起源する。これらは、当分野で公知の方法を用いて獲得することができる。

前記遺伝子によってコーディングされるポリペプチドは、各種ホルモン、組織接合性抗原、細胞付着タンパク質、サイトカイン、各種抗体、細胞受容体、細胞内又は細胞外酵素及びこれらの切片などを含むことができる。また、肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子発現調節因子、例えば、転写プロモーター、エンハンサー、サイレンサー、オペレーター、ターミネーター、アテニュエーター及びその他の発現調節因子などを含むことができる。

本発明において、前記肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子としては、好ましくは、肥満及び肥満由来代謝症侯群の治療又は診断と関連するポリペプチドをコーディングする遺伝子を含む。特に、肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子は、肥満疾患に対する遺伝子治療効果を有するＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）であることが好ましい。

ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）は、二本鎖の短い干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）によって対象遺伝子の発現を特異的に下方調節させることを含む自然的な機構である。ＲＮＡｉを媒介するＲＮＡｉ試薬のタイプに対する例としては、例えば、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ（マイクロＲＮＡ）又は小型ヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）がある。

そのため、本発明は、更に他の観点において、脂肪細胞標的配列（ＡＴＳ）、Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチド、及び肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子を含有する複合体を含有する肥満又は肥満由来代謝症候群組成物に関する。

上述したように、前記肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子は、肥満疾患に対する遺伝子治療効果を有する遺伝子、例えば、ＲＮＡｉであることが好ましい。

前記ＲＮＡｉの投与に効果的な投与量及び計画は、経験的に決定することができ、当業者が容易に決定することができる。単一又は多重投与量を使用することができる。

一方、本発明において、「肥満又は肥満由来代謝症候群」は、一般に身体質量指数（ＢＭＩ）が３０を超えるものと定義されるが、本出願の目的のためには、ＢＭＩが３０未満である各対象を含めて、体重増加の防止が必要であるか、これを望む全ての対象が「肥満」の範疇に含まれる。

前記遺伝子は、陰イオンに帯電した巨大な高分子鎖の形態で存在するので、遺伝子単独で存在するときは、比較的体積が大きいランダムコイルの形態を帯びており、遺伝子の細胞内への伝達が難しく、サイズが小さいナノ粒子の形態に製造しなければならない。このために、本発明においては、ＡＴＳ―Ｒ９を用いて前記遺伝子との静電相互作用を通じてナノサイズの複合体を形成している。このときに使用される生分解性結合は、溶解化加水分解（ｓｏｌｕｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ）、又は酵素又は生物体などの作用によってそれほど複雑でない中間物質又は最終産物への転換が可能な結合をいう。特に、二硫化結合をしている本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、脂肪細胞内に流入すると、低分子に切れて目的遺伝子を遊離できるようになる。

脂肪細胞内の前記物質を伝達するための本発明の伝達体及び複合体は、次のような長所を有する。

（１）脂肪細胞ターゲッティングにおいて、本発明の「ＡＴＳ―Ｒ９」のうちＡＴＳが重要な役割をする。

本発明のＡＴＳ―Ｒ９伝達体は、脂肪細胞で発現する「プロヒビチン（ｐｒｏｈｉｂｉｔｉｎ）」との結合を通じて脂肪組織内皮細胞をターゲッティングする。すなわち、ＡＴＳが脂肪細胞をターゲッティングし、プロヒビチン―媒介メカニズムを通じて前記脂肪細胞内に内在化する。特に、プロヒビチンが過剰発現する分化後の成熟肥満細胞が対象として最も好ましい。

本発明の一実施例においては、ｆｒｅｅ―ＡＴＳを前処理した場合、ルシフェラーゼ遺伝子発現が減少することを確認した。これは、ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックスがプロヒビチンとの結合を通じて細胞内に入っていくことを意味する。本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、ＰＥＩ及びＲ９より優れたトランスフェクション及び遺伝子発現効率を示した。

効率的な遺伝子伝達システムのために、担体は、核膜（ｎｕｃｌｅａｒ ｍｅｍｂｒａｎｅ）を通過しなければならなく、核に遺伝子のカーゴ（ｃａｒｇｏ）を伝達しなければならない。ＡＴＳ―Ｒ９は、成熟脂肪細胞の核におけるプロヒビチンの高い発現のため核を迅速に通過する。これは、プロヒビチンターゲッティングモイエティ（ｍｏｉｅｔｙ）であるＡＴＳが脂肪細胞での効率的なターゲッティング及び選択的遺伝子発現に非常に重要であることを強く示唆する。すなわち、プロヒビチンは、成熟脂肪細胞の選択的な形質転換のための潜在的なターゲットになる。

（２）本発明の「ＡＴＳ―Ｒ９」は、伝達された肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子の発現効率（ｔｒａｎｓｇｅｎｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ）を向上させる。

本発明のＡＴＳ―Ｒ９のトランスフェクション効率は、３：１の電荷比率以上でＡＴＳ―Ｒ９と遺伝子の凝縮がよく起こるので、３：１〜８：１の電荷比率（＋／−）、さらに好ましくは、５：１〜８：１の電荷比率（＋／−）を有する方がよい。特に、一具体例において、本発明の伝達体は、電荷比率５：１で最も高い遺伝子トランスフェクション効率を示した。

本発明において、前記電荷比率とは、遺伝子の構成成分中のリン酸（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）が陰電荷を帯びており、伝達体の構成成分中のアルギニンが陽電荷を帯びているが、遺伝子が有している陰電荷の基準を１とした後、反応させる伝達体の量を３倍〜８倍高めて遺伝子と反応させる比率を意味する。すなわち、３：１〜８：１の電荷比率を有することは、目的遺伝子より伝達体の量を３倍〜８倍に大きく構成することをいう。

これは、細胞膜が陰電荷を帯びているので、遺伝子伝達複合体が全体的に陽電荷を帯びているときに伝達効率に優れるためである。複合体が陰電荷を帯びる場合は細胞膜を容易に通過し得ない一方、複合体が陽電荷を帯びる場合は電荷対電荷反応で容易に細胞膜を通過し得る。また、電荷量は、細胞膜透過能に影響を及ぼすが、電荷量が高いほど細胞膜を通過し得る能力も大きくなる。

一方、脂肪細胞の分化程度がトランスフェクション効率に影響を及ぼし得るが、本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、分化してから１０日まで漸進的にトランスフェクション効率を増加させる。分化程度及び分化した脂肪細胞の数が増加するほどプロヒビチンが上方調節されるので、ＡＴＳ―Ｒ９のトランスフェクション効率を強化させる。一実施例を通じて、分化してから９日〜１１日経過した成熟した肥満脂肪細胞に対するトランスフェクション効率が最も高いことを確認した。

このように、本発明の複合体は、脂肪細胞内でのプロヒビチン発現水準に依存して目的遺伝子を発現する。

特に、通常的に使用されている陽イオン担体ＰＥＩと比較して、本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、遥かに高い遺伝子発現効率を有する。すなわち、ＡＴＳ―Ｒ９によってさらに効果的なＤＮＡ凝縮能力を示し、適正な電荷比率で血清でＤＮＡが分解（ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ）されないように保護する。

（３）本発明の「ＡＴＳ―Ｒ９」は、ＤＮＡと結合してナノサイズの複合体を形成し、正（ｐｏｓｉｔｉｖｅ）のゼータポテンシャル値を有する。

ＡＴＳ―Ｒ９は、例えば、ＤＮＡと結合する場合、相対的に低いＮ／Ｐ比率（ｐｏｌｙｍｅｒｎｉｔｒｏｇｅｎ（＋）／ｐＤＮＡ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ（−））で静電気的相互作用によってより効果的にＤＮＡを濃縮するという長所を有する。すなわち、中性条件で陽性電荷を示し、効果的にＤＮＡをナノサイズに濃縮することができ（約２００ｎｍ以下）、電荷比率１以上の正（ｐｏｓｉｔｉｖｅ）のゼータポテンシャルを有することができる。これは、本発明のオリゴペプチドが両末端にＣｙｓ構造を含んでいるためである。

上述したように、複合体が陰電荷を帯びる場合は同一の陰電荷を有する細胞膜を容易に通過し得ない一方、複合体が陽電荷を帯びる場合は電荷対電荷反応で容易に細胞膜を通過し得るので、本発明の正（ｐｏｓｉｔｉｖｅ）のゼータポテンシャル値を有する特性は遺伝子伝達効率に優れることを意味する。

（４）本発明の「ＡＴＳ―Ｒ９」は、細胞毒性が低い。

通常の高分子陽イオン担体ＰＥＩなどと比較して、本発明のＡＴＳ―Ｒ９は著しく低い細胞毒性を示す。本発明の一実施例において、ＡＴＳ―Ｒ９は、毒性のＰＥＩと比較して電荷比率９まで非毒性を示し、実施していた全ての電荷比率で細胞生存能が９０％以上を示した。

要するに、本発明のＡＴＳ―Ｒ９は、脂肪組織血管でプロヒビチンと結合し、続いて、脂肪細胞、特に分化した成熟肥満脂肪細胞内に効果的に内在化させる。すなわち、ＡＴＳ―Ｒ９のｉｎ ｖｉｖｏ位置化は、プロヒビチンを通じた脂肪組織血管のターゲッティング及び結合；血管通過；及び脂肪細胞内への内在化の３段階として簡単に説明することができる。

また、本発明は、高いトランスフェクション効率、低い細胞毒性、高い目的遺伝子発現効率を有するので、効果的な非ウイルス性肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子伝達システムとして使用することができる。

以下、実施例を通じて本発明をさらに詳細に説明する。これら実施例は、本発明を例示するためのものに過ぎなく、本発明の範囲がこれら実施例によって制限されるものと解釈されないことは、当業界で通常の知識を有するた者にとって自明であろう。

［細胞培養］
ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ Ｍｅｄｉｕｍ）、グルコース、ＦＢＳをＷｅｌＧＥＮＥ（韓国）から購入し、インスリン及び及び３―ｉｓｏｂｕｔｙｌ―１―ｍｅｔｈｙｌｘａｎｔｈｉｎｅ（ＩＢＭＸ）をＷａｋｏ（日本）から、デキサメタゾン及びＯｉｌ Ｒｅｄ ＯをＳｉｇｍａ―Ａｌｄｒｉｃｈ（米国）から購入した。３Ｔ３―Ｌ１前駆脂肪細胞（ｐｒｅａｄｉｐｏｃｙｔｅ）を韓国細胞株銀行から購入し、その分化を誘導した。

前駆脂肪細胞をグルコース、１０％のＦＢＳ、１％のペニシリン及びストレプトマイシンが補充された完全培地で３７℃、５％のＣＯ_２大気下で培養した。各細胞を週３回継代培養した。

脂肪細胞の分化のために、シーディングしてから４日目に各細胞を完全培地、１０μｇ／ｍＬのインスリン、１μＭのデキサメタゾン（Ｄｅｘａｍｅｔｈａｓｏｎｅ）及び０．５ｍＭのＩＢＭＸを含有する分化誘導培地で７２時間処理した。分化培地を完全培地及び１０μｇ／ｍＬのインスリンを含有する脂肪細胞維持培地に取り替えた。培地は２日ごとに取り替えた。

［ペプチド準備］
ローダミンＢ結合されたＡＴＳ（ＣＫＧＧＲＡＫＤＣ）ペプチド、ＦＩＴＣ結合されたＡＴＳ―Ｒ９（ＣＫＧＧＲＡＫＤＲＲＲＲＲＲＲＲＲＣ）及びＲ９（ＣＲＲＲＲＲＲＲＲＲＣ）ペプチドをＰｅｐｔｒｏｎ（Ｄａｅｊｏｅｎ、Ｋｏｒｅａ）社から入手した。凍結・乾燥したペプチドを脱イオン水に溶かした後、使用前まで−２０℃で保管した。

ペプチド分子量は、以下の通りであった：ＡＴＳ：９３７、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ Ｂ ＡＴＳ：１３６１、ＡＴＳ―Ｒ９：２３４１、ＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９：２８４４、Ｒ９：１６２８

［Ｏｉｌ Ｒｅｄ Ｏ染色」
脂肪細胞分化をＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏ染色で確認した。

Ｏｉｌ Ｒｅｄ Ｏ溶液を準備するために、０．７ｇのＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏパウダーを２００ｍＬのイソプロパノールに溶かして一晩中撹拌した後、０．２２μｍのシリンジフィルターを介してろ過した。Ｏｉｌ Ｒｅｄ Ｏ溶液を脱イオン水と６：４の比率で混合してＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏワーキング溶液を製造し、これを０．２２μｍのシリンジフィルターを介してろ過した。

細胞染色のために、各細胞をＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ Ｂｕｆｆｅｒｅｄ Ｓａｌｉｎｅ）で濯ぎ、３．７％のホルムアルデヒドを含有するＰＢＳで常温で１時間固定させた。固定後、各細胞を６０％イソプロパノールで洗浄し、クリーンベンチで乾燥させた。これを完全に乾燥させた後、各細胞をＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏワーキング溶液で染色して１５分間培養した。

各細胞を脱イオン水で４回洗浄し、イメージを顕微鏡でキャプチャーした。

脂肪細胞分化の定量分析のために、１００％のイソプロパノールで蓄積されたＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏを細胞から除去し、５２０ｎｍで吸光度を測定した。

［共焦点顕微鏡用サンプル製作］
Ｃｅｌｌｍａｓｋ Ｄｅｅｐ ＲｅｄをＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎから購入し、ＤＡＰＩ―Ｆｌｕｏｒｏｍｏｕｎｔ―ＧをＳｏｕｔｈｅｒｎ Ｂｉｏｔｅｃｈから購入した。３Ｔ３―Ｌ１前駆脂肪細胞、Ｈ９ｃ２及びＨＥＫ２９３細胞を６ウェルプレートに置いたカバースリップ上で成長及び分化させた。

シーディングしてから２４時間後、各細胞に対してＦＩＴＣ結合ＡＴＳ―Ｒ９（２５μｇ／ｍＬ）を処理し、これらを１５分〜７２時間範囲で時間依存的方式で培養した。

培養後、培養培地を取り替え、各細胞をＰＢＳで３回洗浄した後、３．７％のホルムアルデヒドで固定させた。プラズマメンブレインをＣｅｌｌｍａｓｋ Ｄｅｅｐ Ｒｅｄで染色し、各細胞を再びＰＢＳで洗浄した後、核染色のためにＤＡＰＩの存在下でマウンティングさせた。各イメージをＣａｒｌ Ｚｅｉｓｓ共焦点顕微鏡でキャプチャーした。

［競争分析（ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）］
競争分析（ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）のために、３Ｔ３―Ｌ１前駆脂肪細胞と成熟脂肪細胞（１０日目）に対して自由ＡＴＳ（ｆｒｅｅ―ＡＴＳ）（１００μｇ／ｍＬ）を処理した。培養してから６時間後、各細胞をＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックスで処理して２４時間培養した。Ｈ９ｃ２及びＨＥＫ２９３細胞株を対照群として使用した。Ｈ９ｃ２及びＨＥＫ２９３細胞に対してＦＩＴＣ結合されたＡＴＳ―Ｒ９（２５μｇ／ｍＬ）オリゴ―ペプトプレックスを処理し、これを２４時間培養した。

［ゲル遅延分析（Ｇｅｌ ｒｅｔａｒｄａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）］
１μｇのルシフェラーゼプラスミドＤＮＡ（ｐ―β―Ｌｕｃｉ、Ｐｒｏｍｅｇａ（ＵＳＡ）から入手）、脱イオン水及びＡＴＳ―Ｒ９（電荷比率：０．２５、０．５、１、３、５、７、及び９）を３０分間常温で培養してオリゴペプトプレックス（ｏｌｉｇｏ―ｐｅｐｔｏｐｌｅｘｅｓ）を製作し、０．８％のアガロースゲルで０．５％のＴＢＥ緩衝溶液下で２５分間電気泳動を行った（１００Ｖ）。

Ｎａｋｅｄ ＤＮＡを対照群として使用し、ＤＮＡ凝縮効率を分枝型ＰＥＩ（２５ＫＤａ、Ｓｉｇｍａ、ＵＳＡ）と比較した。

［ゼータポテンシャル及びサイズ測定］
５μｇのルシフェラーゼプラスミドＤＮＡ（ｐ―β―Ｌｕｃｉ）、脱イオン水及びＡＴＳ―Ｒ９（電荷比率：０．５、１、３、５、７、及び９）を３０分間常温で培養し、オリゴペプトプレックス（ｏｌｉｇｏ―ｐｅｐｔｏｐｌｅｘｅｓ）を製作した。前記オリゴペプトプレックスの平均直径及び表面ゼータポテンシャルは、Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ―Ｎａｎｏ ＺＳ（Ｍａｌｖｅｒｎ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ、ＵＫ）を備えたＤＬＳを使用して測定した。

［ｉｎ ｖｉｔｒｏトランスフェクション効率］
ルシフェラーゼ分析キットをＰｒｏｍｅｇａ（ＵＳＡ）から購入し、ＤＣタンパク質分析キット及び小血清アルブミンスタンダードをＢｉｏ―Ｒａｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ＵＳＡ）から購入した。前駆脂肪細胞３Ｔ３―Ｌ１及び分化した脂肪細胞を２４ウェルプレートにシーディングした。

電荷比率５でＡＴＳ―Ｒ９及び２μｇのルシフェラーゼプラスミドＤＮＡを混合することによって、オリゴ―ペプトプレックスを製作した。Ｒ９及びＰＥＩポリプレックスを電荷比率５で対照群として使用した。各細胞は、シーディングしてから２４時間後にトランスフェクションした。

培養してから７２時間後、各細胞をＰＢＳで洗浄し、１５０μｌの１ｘ ｃｅｌｌ溶解バッファー試薬を２０分間処理した。細胞溶解物を擦り落として収得し、これを１．５ｍＬのマイクロチューブに移した後、１３，０００ｒｐｍで３分間遠心分離した。

細胞溶解物の蛍光度（ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ）を２０秒ｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎで９６―ウェルプレート光度計（Ｂｅｒｔｈｏｌｄ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｇｅｒｍａｎｙ）で測定し、細胞タンパク質のｍｇ当たりのＲＬＵ（ｒｅｌａｔｉｖｅ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ ｕｎｉｔｓ）値で表現した。小血清アルブミンスタンダードを使用するＤＣタンパク質分析キットでタンパク質を決定した。

［ｉｎ ｖｉｔｒｏ細胞毒性分析］
細胞生存能をＭＴＴ［３―（４，５―ｄｉｍｅｔｈｙｌｔｈｉａｚｏｌ―２―ｙｌ）―２，５―ｄｉｐｈｅｎｙｌｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ］分析法で測定した。

３Ｔ３―Ｌ１分化した各脂肪細胞を２４ウェルプレートで培養させ、各脂肪細胞（１０日目）を、規定された電荷比率でルシフェラーゼプラスミドＤＮＡ、プレーンＤＭＥＭ、ＡＴＳ―Ｒ９で製作したオリゴ―ペプトプレックスで処理した。ＰＥＩポリプレックスを対照群として使用した。

トランスフェクションしてから４８時間後、５０μｌのＭＴＴ試薬及び５００μｌの培地を各ウェルに添加し、これを３時間３７℃で培養した。前記各培養培地を除去し、５００μｌのジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を各ウェルに添加し、これを常温で２０分間培養した。吸光度を５７０ｎｍで測定した。

［マウスモデルでの肥満誘導］
３週齢のＣ５７ＢＬ／６ＪマウスをＣｅｎｔｒａｌ Ｌａｂ Ａｎｉｍａｌ Ｉｎｃ．（Ｋｏｒｅａ）から購入した。最初の２週間は、５０％の正常食餌及び脂肪から６０ｋｃａｌ％のローデント食餌（ｒｏｄｅｎｔ ｄｉｅｔ）で飼育した。マウスに対する高脂肪食餌比率を漸次増加させ、７週に開始した；前記各マウスを脂肪から６０ｋｃａｌ％で高脂肪食餌でのみ飼育した。１４週後、各マウスは肥満になった（体重＞４５ｇ）。

［ｉｎ ｖｉｖｏ脂肪標的（ｆａｔ ｈｏｍｉｎｇ）］
ＦＩＴＣ結合されたＡＴＳ―Ｒ９（１０ｍｇ／ｍＬ）及びＦＩＴＣ―Ｒ９（１０ｍｇ／ｍＬ）をＰＢＳに希釈し、最終濃度を１．５ｍｇ／ｍＬとし、肥満マウスに尾静脈注射で１００μｌのペプチドを注入した。

Ｃｅｌｌｖｉｚｉｏ（Ｍａｕｎａ Ｋｅａ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｆｒａｎｃｅ）により、注入した直後、他の器官の血管でペプチド位置化（ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ）が観察された。

［実施例１］：３Ｔ３―Ｌ１前駆脂肪細胞の分化
３Ｔ３―Ｌ１脂肪細胞分化過程を図２に示した。

３Ｔ３―Ｌ１前駆脂肪細胞を脂肪細胞分化用培地で培養したとき、細胞形態は、徐々に細胞質で示す丸い形状及び大きな脂質ドロップレット（ｄｒｏｐｌｅｔ）の脂肪細胞の形態に変化した。前記細胞領域の約９０％が脂質ドロップレットで充填された（図２ｂ）。

そして、中性脂質を選択的に染色できるので、脂肪細胞分化を確認するために広く使用されるＯｉｌ ｒｅｄ Ｏ染色の結果、細胞培養群集の９５％が成熟脂肪細胞に分化することを観察した（図２ｃ）。高いＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏ蓄積は、より高い脂肪細胞分化を示す。

さらに、定量分析のために、分化した各脂肪細胞を５日〜１４日間Ｏｉｌ Ｒｅｄ Ｏで染色した。蓄積されたＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏを溶出させ、これを分光光度計で５２０ｎｍで定量した。その結果を図２ｄに示した。Ｏｉｌ Ｒｅｄ Ｏ蓄積は、細胞分化時間の経過に伴って増加した。時間依存的方法で増加するＯｉｌ Ｒｅｄ Ｏの量は、前駆脂肪細胞が時間の経過と共に継続して成熟脂肪細胞に分化していることを意味する。

［実施例２］：ＡＴＳ―Ｒ９の脂肪細胞内への内在化能
ＡＴＳ―Ｒ９の細胞内への内在化程度をモニターするために、ＦＩＴＣ―標識されたＡＴＳ―Ｒ９（ＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９）で成熟脂肪細胞及び前駆脂肪細胞を処理し、担体の細胞内伝達を確認した。

１０日目に脂肪細胞に分化した３Ｔ３―Ｌ１に対してＦＩＴＣ―コンジュゲートされたＡＴＳ―Ｒ９（２５μｇ／ｍＬ）を処理し、規定された時間になるまでインキュベートした。プラズマメンブレインをＣｅｌｌｍａｓｋ Ｄｅｅｐ Ｒｅｄで染色し、核をＤＡＰＩでカウンター染色した。ブルーチャンネル（ｆｏｒ ＤＡＰＩ）を白色で描写し、ＡＴＳ―Ｒ９の核位置化を示した。イメージを共焦点レーザースキャニング顕微鏡でキャプチャーした。スケールバー（Ｓｃａｌｅ Ｂａｒ）：１０μｍ。

その結果、ＡＴＳ―Ｒ９は、３Ｔ３―Ｌ１脂肪細胞内に非常に速く内在化した。１５分及び１時間以内に、それぞれ細胞質及び核内に到逹し、４８時間まで強い蛍光信号を維持した。

これは、上述したプロヒビチンを通じて脂肪細胞をターゲッティングする能力に起因する。３Ｔ３―Ｌ１成熟脂肪細胞への内在化（ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ）上で、前記融合ペプチドは核膜を迅速に通過する。すなわち、ＡＴＳ―Ｒ９は、非常に速く各細胞に伝達された。時間の経過に伴うＡＴＳ―Ｒ９の細胞内分布を図３に示した。

成熟脂肪細胞では、ＡＴＳ―Ｒ９は１５分以内に細胞質に、１時間以内に核に到逹し、４８時間停留状態を維持した。その一方、前駆脂肪細胞では、ＡＴＳ―Ｒ９は２４時間後に停留状態を維持し、核への移動は４８時間後に観察された。

このような成熟脂肪細胞及び前駆脂肪細胞におけるＡＴＳ―Ｒ９吸収パターン及び分配の差は、プロヒビチン水準及び位置の差と関連していることが分かる。

［実施例３］：競争分析（Ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）
ＡＴＳ―Ｒ９の脂肪細胞ターゲッティングに対するＡＴＳの影響を確認するために競争分析を行った。

３Ｔ３―Ｌ１前駆脂肪細胞及び成熟脂肪細胞を１０日目にｆｒｅｅ―ＡＴＳで処理し、６時間受容体を遮断させた。

各細胞をｆｒｅｅ―ＡＴＳ存在又は不存在下で培養した。全ての各細胞をＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９／ｐＬｕｃ複合体で処理した［ＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９／ｐＬｕｃ複合体をオリゴ―ペプトプレックスと称する（オリゴ―ペプチド／ＤＮＡ複合体）］。

このとき、脂肪細胞に対するＡＴＳ―Ｒ９の特異的な結合親和度を確認するために、プラズマメンブレイン上でプロヒビチンを発現しないＨＥＫ２９３及びＨ９ｃ２細胞を対照群として使用した。各細胞をＦＩＴＣ結合されたＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックスで処理し、これを２４時間培養した。

その結果を図４に示した。ｆｒｅｅ―ＡＴＳ（ＡＴＳ不存在）の前処理で、ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックス内在化が抑制された；これは、ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックスがプロヒビチンを通じて細胞内に内在化することを示唆する。

３Ｔ３―Ｌ１前駆又は成熟脂肪細胞において、ｆｒｅｅ―ＡＴＳ存在下で培養したグループは、ｆｒｅｅ―ＡＴＳ不存在下で培養したグループと比較して著しく低い水準のＦＩＴＣ強度を示した（図４ａ及び図４ｃ）。これは、少量のＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９が細胞膜を透過して細胞内に内在化されるためである。二つのグループ間のＦＩＴＣ強度における差は、ｆｒｅｅ―ＡＴＳ存在下の前―培養によるプロヒビチンの遮断から起因する。ｆｒｅｅ―ＡＴＳと結合するプロヒビチンは、自由にＡＴＳ―Ｒ９／ｐＬｕｃオリゴ―ペプトプレックスと相互作用しないので、結果的にオリゴ―ペプトプレックスの内在化が減少する。類似する結果が前駆脂肪細胞で観察された。しかし、蛍光度強度の差は、成熟脂肪細胞で観察される差より少なかった。このような結果は、成熟脂肪細胞で発見されるプロヒビチン水準と前駆脂肪細胞で発見されるプロヒビチン水準とが異なることから起因する。

また、プロヒビチンを発現しないＨＥＫ２９３及びＨ９ｃ２細胞では、同一量のペプチド及び同一の培養時間で処理した脂肪細胞と比較して、少量のペプチドがＨＥＫ２９３及びＨ９ｃ２細胞内に位置した（図４ｂ）。弱いＦＩＴＣ強度が前記各細胞株で観察されたので、非常に少ない量のＡＴＳ―Ｒ９／ＤＮＡオリゴ―ペプトプレックスがこれら細胞に内在化されると見なされる。

さらに、これら各結果は、ＡＴＳ―Ｒ９が、分化状態とは関係なく各脂肪細胞をターゲッティングし、各脂肪細胞を認知し、プロヒビチン―媒介メカニズムを通じて細胞内に内在化することを示した。すなわち、これら各結果を通じて、ＡＴＳ―Ｒ９の結合親密度は脂肪細胞特異的であるという特性を確認することができた。

［実験例１］：分化程度による脂肪細胞ターゲッティング能の確認
脂肪細胞の分化程度によるプロヒビチン発現の位置及び量を確認するために、二つのタイプの脂肪細胞をローダミンＢ―標識されたＡＴＳ（ＲｈｏＢ―ＡＴＳ）で処理した。ＡＴＳの高いプロヒビチン結合能力のため、プロヒビチンを確認するための抗体の代わりにＡＴＳを使用することができる。

該当の実験を通じて、成熟脂肪細胞及び前駆脂肪細胞に存在するＡＴＳ受容体であるプロヒビチンが分化程度によって異なる様相で分布することが発見された。

具体的な結果を図５に示した。すなわち、分化前の脂肪細胞（前駆脂肪細胞）と分化後の脂肪細胞（肥満脂肪細胞）におけるＡＴＳのターゲッティング能を確認することができた。

プロヒビチン結合されたＡＴＳを免疫沈降分析法によって確認し（図５ａ）、３Ｔ３―Ｌ１前駆脂肪細胞及び成熟脂肪細胞におけるプロヒビチン分布化を染色結果を通じて確認した（それぞれ図５ｂ及び図５ｃ）。図５ｂを通じて、分化した肥満脂肪細胞にＡＴＳが効果的に伝達されることを確認することができ、図５ｃを通じて、ＡＴＳのリガンドであるプロヒビチンの発現差を確認することができる。

このように、プロヒビチンは、成熟脂肪細胞では、原形質膜、細胞質、核で高く発現され、前駆脂肪細胞では、一次的に細胞質で低い発現水準を示した。このようなプロヒビチン分布の差は、成熟脂肪細胞及び前駆脂肪細胞で細胞内ＡＴＳ―Ｒ９伝達及び分布メカニズムが異なることを意味する。

したがって、分化前の脂肪細胞では、ＡＴＳによる脂肪細胞ターゲッティング効率がそれほど高くないが、分化後の肥満細胞では、ＡＴＳによる脂肪細胞ターゲッティング効率が非常に高く示される。

［比較例１］：非―肥満（成熟）脂肪細胞及び筋肉細胞におけるプロヒビチン発現確認
本発明の融合オリゴ―ペプトプレックスが肥満脂肪細胞特異的な特性を有していることをより明確に確認するために、非―肥満マウスにおけるプロヒビチン発現様相と、筋肉細胞におけるプロヒビチン発現様相とを比較して分析した。このとき、ウエスタンブロット方法を用いた。そして、その結果を図６に示した。

特に、図６ａから分かるように、非―肥満マウスと肥満マウスにおけるプロヒビチン発現様相でも大きな差を示し、図６ｂから分かるように、筋肉細胞におけるプロヒビチン発現様相でも明確に大きな差を示した。すなわち、非―肥満脂肪細胞よりも肥満脂肪細胞でプロヒビチンの発現が増加し、筋肉組織とは異なり、肥満脂肪細胞ではプロヒビチンが細胞膜特異的に発現されることも確認した。そのため、細胞膜におけるプロヒビチン発現が特異的に増加する場合、本発明の脂肪細胞へのターゲッティング効率も共に増加することが分かった。

［実施例５］：オリゴ―ペプトプレックスの物理的及び生物的特性
陽イオン性ポリマー／ＤＮＡ複合体の生化学的特性は、細胞吸収能、カーゴ（ｃａｒｇｏ）安定性、細胞毒性及びトランス遺伝子発現に影響を及ぼす主要な要素の一つである。ＡＴＳ―Ｒ９のＤＮＡ凝縮及び保護能力をゲル遅延分析及びマウス血清における分解（ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ）テストによって試験した。

５―１．ゲル遅延分析及び血清保護分析（Ｓｅｒｕｍ ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）
ＡＴＳ―Ｒ９の凝縮効能を分枝型ＰＥＩ（２５ｋＤａ）の場合と比較した。

オリゴ―ペプトプレックスをルシフェラーゼプラスミドＤＮＡ（ｐ―β―Ｌｕｃｉ）、脱イオン水及びＡＴＳ―Ｒ９又はＰＥＩで規定された電荷比率で製作し、これを３０分間室温で培養した。

また、オリゴ―ペプトプレックスを規定された電荷比率で製造し、最終濃度５０％（ｖｏｌ／ｖｏｌ）でマウス血清を前記ポリプレックスに添加し、サンプルを３７℃で２時間培養した。

血清培養後、ポリプレックスからのＤＮＡの脱錯体化（ｄｅｃｏｍｐｌｅｘａｔｉｏｎ）のために、リン酸―緩衝された食塩水（ｐＨ７．４、０．５ｍｏｌ／ＬのＮａＣｌ）中のヘパリンを０．０１ｍｏｌ／ＬのＥＤＴＡ存在下でサンプルに添加し、これを１時間培養した。各サンプルを０．８％のアガロースゲルにローディングした。

その結果、ＡＴＳ―Ｒ９及びＰＥＩのいずれにおいても、電荷比率３以上でＤＮＡ移動が観察されなかった。これは、ＤＮＡの完全な凝縮が起こることを意味する（図７ａ）。そして、ＡＴＳ―Ｒ９は、適切な電荷比率で血清で分解からＤＮＡを保護する一方、ｎａｋｅｄ ＤＮＡはテスト条件で完全に分解された（図７ｂ）。

言い換えると、ＡＴＳ―Ｒ９は、プラスミドＤＮＡを効率的に凝縮することができ、血清分解から保護される。そして、ＤＮＡと複合体の形成後には、陽性に帯電したより小さい複合体を形成し、細胞によって効率的に内在化することができる。

５―２．ゼータポテンシャル及びサイズ測定
次に、ＡＴＳ―Ｒ９／ＤＮＡオリゴ―ペプトプレックスのゼータポテンシャル及び平均直径をＤＬＳ（ｄｙｎａｍｉｃ ｌｉｇｈｔ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ）を用いて測定した。

その結果、図８に示したように、ゼータポテンシャルは、電荷比率３以上で正（ｐｏｓｉｔｉｖｅ）の値を示し、平均直径は、電荷比率１以上で２００ｎｍ未満であった。

５―３．細胞生存能分析
また、ＡＴＳ―Ｒ９／ＤＮＡオリゴ―ペプトプレックスの毒性を試験した。１０日目に脂肪細胞に分化した３Ｔ３―Ｌ１にオリゴ―ペプトプレックスを形質転換した。４８時間後、細胞生存能をＭＴＴ分析で測定した（ｎ＝６）。

その結果、図９に示したように、分化した各脂肪細胞は、電荷比率９まで９０％以上の細胞生存能を示し、これは、毒性ＰＥＩと比較して、オリゴ―ペプトプレックスが分化した脂肪細胞に対して非毒性であることを意味する。

［実施例６］：トランスフェクション効率
６―１．最適な電荷比率
トランスフェクション効率の最適な電荷比率を検討した。

成熟脂肪細胞を分化してから１０日目にｐ―β―Ｌｕｃｉで電荷比５でＡＴＳ―Ｒ９、Ｒ９及びＰＥＩによってトランスフェクションし、７２時間後、ルシフェラーゼ分析キットでルシフェラーゼ遺伝子発現を測定した。

その結果、ＡＴＳ―Ｒ９のオリゴ―ペプトプレックスのトランスフェクション効率は、電荷比率５でＲ９及びＰＥＩと比較して高く表れた（図１０ａ）。すなわち、ＡＴＳ―Ｒ９は、同一の電荷比率でＲ９及びＰＥＩと比較して高い形質転換効率を有する。形質転換及び遺伝子発現効率は、脂肪細胞分化時間の経過に伴って増加した。

６―２．最適な時期
そして、トランスフェクションの最適時期を調査するために、３Ｔ３―Ｌ１分化した各脂肪細胞を異なる分化日付にルシフェラーゼプラスミドＤＮＡ（ｐ―β―Ｌｕｃｉ）で電荷比率５でＡＴＳ―Ｒ９及びＰＥＩによってトランスフェクションした。ルシフェラーゼ遺伝子発現は、ルシフェラーゼ分析キットによって７２時間後に測定した。

その結果、分化してから９日及び１０日目により高い遺伝子発現を示し、これは、成熟脂肪細胞のトランスフェクションに適していることを示唆する（図１０ｂ）

［実施例７］：インビボ（ｉｎ ｖｉｖｏ）脂肪ターゲッティング（ｆａｔ ｈｏｍｉｎｇ）実験
食餌誘導肥満（ｄｉｅｔ―ｉｎｄｕｃｅｄ ｏｂｅｓｉｔｙ、ＤＩＯ）マウスを用いてｉｎ ｖｉｖｏ実験を行った。脂肪組織に対するＡＴＳ―Ｒ９のターゲッティングを観察するために、ＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９を肥満マウスに尾静脈を通じて投与した。プローブ基盤の共焦点レーザーエンドマイクロスコピー（ｐＣＬＥ、Ｃｅｌｌｖｉｚｉｏ）を用いて追跡を可視化した。

肝、腎臓及び他の脂肪パッド脈管（ｆａｔ ｐａｄ ｖａｓｃｕｌａｔｕｒｅ）に対して観察した結果、ＡＴＳ―Ｒ９が脂肪パッド脈管（ｆａｔ ｐａｄ ｖａｓｃｕｌａｔｕｒｅ）で凝集された。他の器官では、ＡＴＳ―Ｒ９は血管に沿ってのみ浮遊し、凝集は観察されなかった（図１１）。

そして、脂肪パッド脈管でＦＩＴＣ―コンジュゲートされたＡＴＳ―Ｒ９及びＲ９の脂肪ターゲッティング（Ｆａｔ ｈｏｍｉｎｇ）を比較した結果、ＡＴＳ―Ｒ９（Ｒ９ではない）のみが脂肪パッド脈管で凝集された。すなわち、Ｒ９を投与すると、脂肪血管で凝集は観察されなかったが、内皮（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉｕｍ）上の凝集は観察された（図１２）。

また、水平に切断した血管の分析のために、脂肪パッドの微細血管イメージをプローブから血管まで固定された距離で収得した。ＡＴＳ―Ｒ９処理は、高く蓄積された蛍光強度を内皮の縁部で生成した一方、Ｒ９処理は全体の血管領域にわたって蛍光強度を生成させた（図１３）。すなわち、脂肪パッド微細血管（ｆａｔ ｐａｄ ｍｉｃｒｏｖｅｓｓｅｌ）でＦＩＴＣ―コンジュゲートされたＡＴＳ―Ｒ９及びＲ９の脂肪ターゲッティングを比較した結果、ＡＴＳ―Ｒ９は脂肪パッド微細血管（ｆａｔ ｐａｄ ｍｉｃｒｏｖｅｓｓｅｌ）で結合するが、Ｒ９の場合は結合が観察されなかった。

これは、ＡＴＳ―Ｒ９が脂肪血管と結合し、血管の内皮（ｅｎｄｏｔｈｅｌｉｕｍ）で凝集を形成したためである。その一方、ＡＴＳ―Ｒ９は、肝及び腎臓でＡＴＳ―Ｒ９―内皮相互作用の代表的な結合又は凝集なしで血管に沿って継続して動く。

このような結果から分かるように、ＡＴＳ―Ｒ９は、脂肪組織脈管と選択的に結合できるが、血管及び脂肪組織の微細血管のみで凝集され、肝や腎臓などの他の器官では凝集されない。また、脂肪組織におけるＡＴＳ―Ｒ９結合パターンは、通常の単純アルギニン結合構造体と完全に異なっている。

［実施例８］：インビボ（ｉｎ ｖｉｖｏ）での遺伝子発現
まず、ｉｎ ｖｉｖｏ上の脂肪組織内にＡＴＳ―Ｒ９が内在化することを確認した。
Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ肥満マウスに尾静脈を通じてＦＩＴＣ―コンジュゲートされたＡＴＳ―Ｒ９を注入し、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ―コンジュゲートされたレクチンを注入することによって血管染色を行った。

固定された脂肪組織部分を多光子共焦点レーザースキャニング顕微鏡を用いてイメージ化して観察した結果、ＡＴＳ―Ｒ９は、血管を通じて透過し、脂肪細胞内に漸次内在化することを観察した（図１４ａ）。白色の矢印は、脂肪細胞内に内在化するＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９を示す（Ｓｃａｌｅ Ｂａｒ：５０μｍ）。

次に、免疫蛍光分析を通じて、脂肪組織内へのＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９誘導能（ターゲット能、ｈｏｍｉｎｇ）を確認した。

ＦＩＴＣ―コンジュゲートされたＡＴＳ―Ｒ９を肥満マウスＣ５７ＢＬ／６Ｊに注入し、固定された脂肪組織部分をビオチン―コンジュゲートされた抗―ＦＩＴＣ抗体と共に培養した。Ｃｙ３―コンジュゲートされたＥｘｔｒＡｖｉｄｉｎをその信号増幅に使用した。多光子共焦点レーザースキャニング顕微鏡を用いてイメージ化して観察した結果、図１４ｂに示したように、脂肪組織内にＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９が誘導（ｈｏｍｉｎｇ）されることを確認した。

最後に、ｉｎ ｖｉｖｏ遺伝子発現を確認するために、Ｒｅｄ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ（ＲＦＰ）発現プラスミドをＦＩＴＣ―ＡＴＳ―Ｒ９で濃縮し、オリゴ―ペプトプレックスを肥満マウスＣ５７ＢＬ／６Ｊに注入した。何ら処置もしていないマウスを対照群として使用した。多光子共焦点レーザースキャニング顕微鏡を用いてイメージ化して観察した結果、ＲＦＰ遺伝子発現が明確に確認された（図１４ｃ）。

［実施例９］：ｓｈ―ＲＮＡ及びサイレント遺伝子伝達能
本発明のＡＴＳ―Ｒ９がｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏでｓｈ―ＲＮＡ伝達と脂肪細胞へのサイレント遺伝子伝達において優れた効果を有するか否かを確認しようとした。

まず、２μｇのｆａｂｐ４ ｓｈ―ＲＮＡを、ＡＴＳ―Ｒ９、ＰＥＩ及びリポフェクタミンによって３Ｔ３―Ｌ１成熟脂肪細胞にトランスフェクションさせ、遺伝子サイレンシング効率をＲＴ―ＰＣＲで測定した。ＧＡＰＤＨを内生性対照群として使用した。その結果、Ｆａｂｐ４遺伝子サイレンシング効率は７０％以上であった（図１５）。

９―１．体重減少効果
また、ｓｈ―ＦＡＢＰ４処理後、体重減少も確認された（図１６）。

Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスに対しては、８週間、毎週２回ずつ３０μｇのｓｈ―ＦＡＢＰ４をＡＴＳ―Ｒ９と共に処理し、オリゴ―ペプトプレックスを皮下に注射した。ｓｈ―Ｌｕｃｉを対照群として使用した。

その結果、ｓｈ―ＦＡＢＰ４―ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックス処理されたグループは、８週後、体重の約２０％が減少した。

９―２．インスリン及びグルコース耐性（ｔｏｌｅｒａｎｃｅ）テスト
また、インスリン及びグルコース耐性を観察した。

８週間、毎週２回でＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスに対してｓｈ―ＦＡＢＰ４―ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックスを処理した。オリゴ―ペプトプレックスを皮下投与によって投与した。ｓｈ―Ｌｕｃｉを対照群として使用した。

ｓｈ―ＦＡＢＰ４―ＡＴＳ―Ｒ９オリゴ―ペプトプレックス処理されたグループが８週後にインスリン及びグルコースに対してさらに敏感になることも確認された（図１７及び図１８）

すなわち、本発明のＡＴＳ―Ｒ９がｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏでｓｈ―ＲＮＡ伝達と脂肪細胞へのサイレント遺伝子伝達において効果的なだけでなく、肥満及び肥満由来代謝症候群治療用遺伝子を伝達するときに体重を減少させ、さらに、インスリン及びグルコース敏感度を改善させた。

［比較例２］：遺伝子伝達能の比較
（１）他の伝達体の脂肪細胞への遺伝子伝達能
ＰＥＩとｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎを比較群とし、肥満脂肪細胞への遺伝子ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ伝達能力を評価し、これを図１９に示した。

その結果、他の伝達体であるＰＥＩとｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎに比べて、ＡＴＳ―Ｒ９の場合に肥満脂肪細胞への伝達効能に優れることを確認した。

（２）脂肪細胞の分化前の分化後による遺伝子伝達能
脂肪細胞の分化前と分化後の遺伝子伝達効能を比較した結果を図２０に示した。

これを通じて、脂肪細胞の分化が進められて肥満脂肪細胞になっていくことによって、本発明のＡＴＳ―Ｒ９の遺伝子伝達効能が増加することを確認することができた。

（３）配列特異性による遺伝子伝達能
伝達遺伝子としてｌｕｃｉｆｅｒａｓｅを使用し、脂肪ターゲッティング配列としてＳｃｒａｍｂｌｅｄ ＡＴＳを使用して肥満脂肪細胞への遺伝子伝達効能を比較した。
その結果、図２１で確認できるように、ＡＴＳの配列をスクランブルして伝達した場合、遺伝子伝達能力が確実に低下することを確認することができた。

これら各結果を通じて、本発明のＡＴＳ―Ｒ９ペプチド構造体が、分化後の脂肪細胞におけるプロヒビチンの過剰発現機構を通じて、成熟した「肥満脂肪細胞」を直接ターゲッティングし、遺伝子を伝達できる特異的機能及び効果を確認できるので、肥満に対する遺伝子治療方法に非常に有用に使用することができる。

Claims (15)

1. 配列番号１で表示されるアミノ酸配列からなる脂肪細胞標的配列（ＡＴＳ）及びＲ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドを含有する脂肪細胞標的遺伝子伝達体。
2. 前記脂肪細胞標的配列及びＲ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドは、プロヒビチン（ｐｒｏｈｉｂｉｔｉｎ）と結合されることを特徴とする、請求項１に記載の脂肪細胞標的遺伝子伝達体。
3. 前記Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドは、Ｃｙｓ―（Ｄ―Ｒ）９―Ｃｙｓ構造を有することを特徴とする、請求項１又は２に記載の脂肪細胞標的遺伝子伝達体。
4. 前記脂肪細胞は、分化した成熟肥満脂肪細胞であることを特徴とする、請求項１〜３のいずれか１項に記載の脂肪細胞標的遺伝子伝達体。
5. 前記脂肪細胞は、分化してから９日〜１１日経過した成熟した肥満脂肪細胞であることを特徴とする、請求項４に記載の脂肪細胞標的遺伝子伝達体。
6. 配列番号１で表示されるアミノ酸配列からなる脂肪細胞標的配列（ＡＴＳ）、Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチド、及び脂肪細胞標的遺伝子として肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子を含有する複合体。
7. 前記脂肪細胞標的配列及びＲ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドは、プロヒビチン（ｐｒｏｈｉｂｉｔｉｎ）と結合されることを特徴とする、請求項６に記載の複合体。
8. 前記Ｒ９（ａｒｇｉｎｉｎｅ）ペプチドは、Ｃｙｓ―（Ｄ―Ｒ）９―Ｃｙｓ構造を有することを特徴とする、請求項６又は７に記載の複合体。
9. 前記肥満及び肥満由来代謝症候群治療遺伝子は、ＤＮＡ又はＲＮＡｉであることを特徴とする、請求項６〜８のいずれか１項に記載の複合体。
10. 前記ＲＮＡｉは、ｓｉＲＮＡ又はｓｈＲＮＡであることを特徴とする、請求項９に記載の複合体。
11. 前記複合体は、２００ｎｍ以下の直径を有することを特徴とする、請求項６〜１０のいずれか１項に記載の複合体。
12. 前記複合体は、３：１〜８：１の電荷比率（＋／−）を有することを特徴とする、請求項６〜１１のいずれか１項に記載の複合体。
13. 前記脂肪細胞は、分化した成熟肥満脂肪細胞であることを特徴とする、請求項６〜１２のいずれか１項に記載の複合体。
14. 前記脂肪細胞は、分化してから９日〜１１日経過した成熟した肥満脂肪細胞であることを特徴とする、請求項１３に記載の複合体。
15. 請求項６〜１４のいずれか１項に記載の複合体を有効成分として含有する肥満又は肥満由来代謝症候群治療用組成物。