JP6093358B2 - アデノ随伴ウイルスベクターの産生細胞 - Google Patents
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Description
従来のAAVベクターの製造方法としては、1)野生型AAVゲノムの両端のITRを残して、rep、cap遺伝子を除いたAAVベクタープラスミドの導入、2)Rep、Capタンパク質をトランスに供給するためのrep、cap遺伝子発現プラスミドの導入、加えてAAVはその感染性ウイルス粒子形成にヘルパーウイルスと呼ばれる、アデノウイルス、ヘルペスウイルス、又はワクシニアウイルスなどのいずれかからの補助要素の供給を要するため、3)アデノウイルス感染、を用いる方法が確立している(特許文献2)。
しかし上記方法によって得られるAAVベクターは、理論上アデノウイルスが混入する。このことは、混入アデノウイルスの除去・不活性化の作業を要するため、AAVベクター力価の低減の要因となる。更に、ヒトに投与した場合にアデノウイルス感染症、炎症などの副作用の発生の懸念が残る。そこで、上記3)に代わって3’)アデノウイルス由来要素のうち、AAVウイルス粒子形成に必須な要素のみを発現するヘルパープラスミドの導入、を用いる製造方法(ヘルパーフリー系)が開発された(特許文献3)。この方法によれば、製造されたAAVベクターへのアデノウイルスの混入がないため、安全性に優れる。
[1]AAVベクターを産生する能力を有する細胞であって、人為的に導入されたmiRNAを発現している細胞、
[2]人為的に導入されたmiRNAが、hsa−miR−196a1、hsa−miR−324、hsa−miR−342からなる群より選択された少なくとも1種である、[1]に記載の細胞、
[3][1]又は[2]に記載の細胞にウイルスに封入される核酸を導入したAAVベクター産生細胞、
[4]AAVベクターの製造方法であって、[3]に記載の細胞を培養する工程を含む方法、
[5]miRNAを供給する核酸と、AAVベクターのウイルス粒子形成に必須な要素を供給する核酸を含むAAVベクター製造用のキット、
[6][4]に記載の方法を用いて得られるAAVベクター、
[7]AAVベクター産生細胞内で発現することによってAAVベクター産生細胞のAAVベクター産生能力を向上させることが可能なmiRNAの選択方法であって、miRNAを発現するAAVベクターの混合物を作製し、細胞において高産生されるAAVベクターを選抜する工程を包含する選択方法、
[8]下記工程(a)〜(e)を包含する[7]に記載の選択方法であって、
(a)miRNAを発現するAAVベクター混合物を得る工程、
(b)miRNAを発現するAAVベクター混合物を細胞へ感染させる工程、
(c)工程(b)により得られた細胞を培養し、当該細胞より産生されたAAVベクター混合物を取得する工程、
(d)工程(c)で得られたAAVベクター混合物を使用した上記(b)、(c)の工程を1回以上繰り返す工程、及び
(e)工程(d)により得られたAAVベクター混合物中のmiRNAをコードする核酸を得る工程、
に関する。
また核酸を細胞に恒常的に導入する方法は特に限定はなく、公知の恒常的導入方法、例えばレトロウイルスベクターを用いる方法、プラスミドの一過性導入方法と同様の方法で導入し、染色体に組み込まれた細胞を選択する方法などが使用可能である。レトロウイルスベクターを用いる方法においては、市販の試薬、例えばRetorovirus Constructive System(タカラバイオ社製)を用いてもよい。
前記AAVベクターライブラリーの作製方法としては、miRNAライブラリーをコードする核酸をウイルス粒子に封入される核酸に連結した核酸構築物を作製し、この核酸構築物に公知の方法を適用してmiRNAライブラリー搭載AAVベクターを取得する方法が例示される。前記の核酸構築物の作製は、例えば市販のAAVベクタープラスミドであるpAAV−MCS Expression Vector(Cell Biolabs社製)等を利用することができる。次に上記miRNAライブラリー搭載AAVベクターをAAVベクター産生細胞の作製に適した細胞(例えばAAV293細胞)に感染させる。ついでこの細胞にAAVベクター産生に必要な要素をコードする核酸構築物を一過性に導入して培養し、当該細胞が産生するAAVベクター混合物を取得する。ここで得られたAAVベクターを用いて上述の工程(感染、培養、ベクター取得)を1サイクル以上行う。このサイクルを繰り返すことで、AAVベクター混合物中にAAVベクター産生を向上させるmiRNAを発現する核酸を搭載するAAVベクターが濃縮されていく。こうして得られたAAVベクター混合物中のAAVベクターについて、搭載されたmiRNAの塩基配列の解読を行う。上記サイクルを繰り返すことにより得られる頻度が高くなるmiRNAを同定し、それらをAAVベクター産生を向上させるmiRNAとみなす。このようにして選択されるmiRNAは、本発明の細胞におけるmiRNAとして好適に利用でき、例えばhsa−miR−196a1、hsa−miR−324、及びhsa−miR−342が例示される。
好適にはmiRNAを発現する核酸は、単独で、もしくはRepタンパク質及び/又はCapタンパク質をコードする核酸と同一の発現プラスミドに搭載して一過性に導入することにより、本発明はより高い効果を発揮する。
感染力価の測定方法としては、例えばAAVベクター含有試料の系列希釈液を適当な標的細胞に感染させ、導入遺伝子の発現、細胞の形状変化(細胞変性)の検出、細胞に導入されたプロウイルスのコピー数の測定、といった方法が例示される。
したがって、本発明は、本発明のAAVベクター産生細胞を用いて取得したAAVベクターを有効成分として含有する医薬組成物を投与することを特徴とする治療方法も提供する。さらに、本発明は、医薬の製造における、本発明のAAVベクター産生細胞を用いて取得したAAVベクターの使用を提供する。また、本発明は、治療において使用するための、本発明のAAVベクター産生細胞を用いて取得したAAVベクターを提供する。
pAsRed2−C1 Vector(クロンテック社製)の、CMVプロモーターからpolyAシグナルにわたる約1.6kbの断片をPCR法によって得た。この際、NotIの認識部位を有する増幅用プライマーを使用し、PCR産物の両端にNotIの認識部位を付加した。この断片をNotI(タカラバイオ社製)で処理して、インサート断片とした。一方pAAV−MCS Vector(Cell Biolabs社製)をNotIで処理して約2.9kbの断片を得、これをベクター断片とした。このベクター断片とインサート断片をDNA Ligation Kit<Mighty Mix>(タカラバイオ社製)を用いて連結し、得られた組換えプラスミドでE.coli HST08 Premium Compitent Cells(タカラバイオ社製、以下大腸菌と記載する)を形質転換した。得られた形質転換体から抽出したプラスミドDNAのうち、上流からCMVプロモーター、AsRed2コード領域、マルチクローニングサイト(MCS)、polyAシグナルの順に挿入されたものを選んでpAAV−AsRed2 Vectorとした。
pAAV−AsRed2 VectorをBglII(タカラバイオ社製)とHindIII(タカラバイオ社製)で処理した。一方、pBApo−CMV DNAにクローニングされたヒトmiRNAライブラリー(タカラバイオ社製)をBamHI(タカラバイオ社製)とHindIIIで処理し、得られたmiRNAコード領域の断片をDNA ligation kit (タカラバイオ社製)を用いて前記のpAAV−AsRed2 Vectorに連結した。ただし、内部にBamHI又はHindIII認識部位を持つmiRNAに関しては、In−Fusion(登録商標) Advantage PCRクローニングキット(クロンテック社製)を用いたディレクショナルクローニングによりpAAV−AsRed2 Vectorに連結した。こうして得られた組換えプラスミドをpAAV−AsRed2−miRNAライブラリープラスミドとして以下の実験に使用した。
(1)AAV293細胞の播種
AAV293細胞(Stratagene社製)を10%FBS(サーモサイエンティフィック社製)、2mM L−グルタミン酸ナトリウムを含むDMEM(シグマ・アルドリッチ社製)に2.5x105細胞/mLとなるように懸濁した。この懸濁液4mLを細胞培養用60mmディッシュ(IWAKI社製)に添加し、5%CO2存在下、37℃のインキュベーター(以下37℃のCO2インキュベーター)で一夜培養した。
(2)AAV293細胞へのプラスミド導入
実施例1で得たpAAV2−AsRed2−miRNAライブラリープラスミド及びpHelper plasmidとpAAV−RC1 plasmid(いずれもCell Biolabs社製)をそれぞれ4μgずつ使用し、リン酸カルシウム法を用いて実施例2−(1)のAAV293細胞にトランスフェクションした。6時間後、培地を完全に除去し、2%FBS及び2mM L−グルタミン酸ナトリウムを含むDMEM 4mLを添加し、37℃のCO2インキュベーターで更に48時間培養した。
実施例2−(2)で培養したAAV293細胞より培地を除去し、PBS(ナカライテスク社製)を1mL添加した。ピペッティングでAAV293細胞を1.5mLチューブに回収し、4℃、700×g、5分間遠心後、上清を除去した。PBS 0.1mLにAAV293細胞を再懸濁後、エタノール/ドライアイスで2分間、37℃のウォーターバスで2分間、ボルテックス・ミキサーでの撹拌1分間の処理を3回繰り返し、AAV−miRNAライブラリーベクターを含む細胞破砕液を回収した。この細胞破砕液を4℃、10,000×g、10分間遠心後、上清を回収しAAV−miRNAライブラリーベクター液とした。
(1)DNase処理
AAV−miRNAライブラリーベクター液2μLに、10xDNaseIバッファー2μL、注射用水(大塚製薬社製)15.2μL、DNaseI(タカラバイオ社製)0.8μLを添加した反応液を調製した。TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice(登録商標) Standard(タカラバイオ社製)を用いて37℃で一時間インキュベートし、遊離のゲノムやプラスミドを分解した。その後、DNaseIを不活化するために99℃、10分間の熱処理した後、実施例3−(2)の処理まで4℃あるいは−20℃にて保存した。
実施例3−(1)で得られた反応液20μLに、注射用水15μL、10×Proteinase Kバッファー(0.1M Tris−HCl (pH7.8)、0.1M EDTA、5% SDS)4μL、Proteinase K(タカラバイオ社製)1μLを加え、TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice(登録商標) Standardを用いて55℃で一時間インキュベートし、AAVベクターのゲノムを遊離させた。その後、Proteinase Kを不活化するためにこの溶液を95℃で10分間処理した。こうして調製した溶液をAAV−miRNAライブラリーベクターゲノム液として、リアルタイムPCRに供するまで4℃又は−20℃にて保存した。
実施例3−(2)で調製したAAVベクターゲノム液を注射用水で50倍希釈したもの2μLを鋳型とし、配列表の配列番号1(Forward primer 1)及び配列番号2(Reverse primer 1)に記載のプライマー、SYBR(登録商標) Premix ExTaqII (Perfect Real Time)(タカラバイオ社製)を用いてリアルタイムPCRを行った。反応液調製はキットに添付の説明書に従った。標準品として、AAVベクターゲノム液に替えて、pAAV−AsRed2をEcoRIで処理して線状化したDNA液を用いた。リアルタイムPCR反応はThermal Cycler Dice(登録商標) Real Time System Single(タカラバイオ社製)を用い、装置推奨の条件で行った。その後、装置添付の説明書に従ってAAVベクターゲノムの定量を行い、ゲノム力価をAAVベクター産生細胞1個当たりのAAVベクターゲノム数(viral genome/cell、以下VG/cell)で表した。
(1)AAV293細胞の播種
AAV293細胞を10%FBS、2mM L−グルタミン酸ナトリウムを含むDMEMに2.5x105細胞/mLとなるように懸濁した。この懸濁液4mLを細胞培養用60mmディッシュに添加し、37℃のCO2インキュベーターで一夜培養した。
実施例4−(1)で培養したAAV293細胞より培地を完全に除去した後、実施例2で調製したAAV−miRNAライブラリーベクター溶液をゲノム力価換算値でmoi(multiplicity of infection)約850になるように2%FBSを含むDMEMに希釈して2mL添加し、37℃のCO2インキュベーターで2時間培養した。その後、2%FBSを含むDMEMを2mL添加し、37℃のCO2インキュベーターで一夜培養した。
実施例4−(2)で培養したAAV293細胞に、リン酸カルシウム法を用いて、pAAV−RC1 plasmid及びpHelper plasmidを4μgずつトランスフェクションした。6時間後、培地を完全に除去した後に2%FBS及び2mM L−グルタミン酸ナトリウムを含むDMEM 4mLを添加した細胞を、37℃のCO2インキュベーターで更に48時間培養した。
実施例4−(3)で培養したAAV293細胞より培地を除去し、PBSを1mL添加した。ピペッティングでAAV293細胞を1.5mLチューブに回収し、4℃、700×g、5分間遠心後、上清を除去した。PBS 0.1mLに細胞を再懸濁後、エタノール/ドライアイスで2分間、37℃のウォーターバスで2分間、ボルテックス・ミキサーでの撹拌1分間の処理を3回繰り返し、AAV−miRNAライブラリーベクターを含む細胞破砕液を回収した。この細胞破砕液を4℃、10,000×g、10分間遠心後、上清を回収しAAV−miRNAライブラリーベクター液とした。
上記実施例4−(1)〜(4)を計8回繰り返し、AAV−miRNAライブラリーベクターを濃縮した。各ラウンドにおける感染時ウイルス量(moi)及び回収ウイルス量をゲノム力価換算値を用いて表1に示す。
(1)AAV−miRNAベクターゲノムの調製
実施例4の各ラウンドで回収したAAV−miRNAライブラリーベクター液2μLを用いて実施例3−(1)、(2)と同様の方法でAAV−miRNAライブラリーベクターゲノム液を得た。
実施例5−(1)で得たAAV−miRNAライブラリーベクターゲノム液を鋳型とし、配列表の配列番号3(Forward primer 2)及び配列番号4(Reverse primer 2)に記載のプライマー、PrimeSTAR(登録商標) GXL DNA polymerase(タカラバイオ社製)を用いてmiRNAコード領域周辺をPCR法により増幅させた。反応は、98℃10秒、55℃15秒、68℃30秒を30サイクル繰り返した後、更に同じ条件を1回繰り返した。得られた断片を、In−Fusion(登録商標) Advantage PCRクローニングキットを用いてHincII(タカラバイオ社製)及びBAP(タカラバイオ社製)処理済のpUC118(タカラバイオ社製)に連結した。
実施例5−(2)で得られた組換えプラスミドで大腸菌を形質転換後、アンピシリンを含むLBプレートに播種して37℃で一夜培養し、コロニーを多数得た。コロニーをいくつか選び、それぞれをアンピシリンを含むLB液体培地で一夜培養し、Miniprep DNA Purification Kit(タカラバイオ社製)を用いてプラスミドを抽出した。得られたプラスミドについて塩基配列の解読を行い、プラスミド上にコードされているmiRNA名を同定した。その結果を表2に示す。
(1)miRNA発現プラスミドの調製
pBApo−CMV DNAにクローニングされたヒトmiRNAライブラリーからhsa−miR−196a1、hsa−miR−324、hsa−miR−342が挿入されたプラスミドを選択し、それぞれを用いて大腸菌を形質転後、プラスミドを大量調製した。プラスミド調製にはNucleobond Xtra Midi EF(マッハライナーゲル社製)を用いた。得られたプラスミドをそれぞれpBapo−miR196a1、pBapo−miR324、pBapo−miR342と名付けた。
実施例6−(1)で得られたプラスミドを、pAAV−AsRed2−C1 vector、pAAV−RC1 plasmid、pHelper plasmidと同時にAAV293細胞にトランスフェクションした。コントロールとして、実施例6−(1)で得られたプラスミドに替えてpBApo−CMVをトランスフェクションした群も設定した。トランスフェクション及びAAVベクター回収までの操作は、実施例2−(1)〜(3)と同様の方法で行った。
得られたAAVベクターのゲノム力価を実施例3と同様の方法で測定した。その結果を表3に示す。
(1)pRC−miR342プラスミドの調製
pBApo−miR342を鋳型として、配列表の配列番号5(Forward primer 3)及び配列番号6(Reverse primer 3)に記載のプライマーを用いたPCR法によりCMVプロモーターからmiR342コード領域までを含む領域を増幅した。得られた断片を、SnaBI(タカラバイオ社製)処理したpAAV−RC1 plasmidにIn−Fusion(登録商標) Advantage PCRクローニングキットを用いて連結した。得られた組換えプラスミドの塩基配列を解読しCMV−miR342断片が挿入されていることを確認後、プラスミドを調製した。得られたプラスミドをpRC−miR342とした。
実施例7−(1)で得られたpRC−miR342を、pAAV−AsRed2 vector、pHelper plasmidと同時にAAV293にトランスフェクションした。コントロールとして、pRC−miR342に替えてpAAV−RC1 plasmidをトランスフェクションクションした群も設定した。こうして得られたAAVベクター産生細胞を293−RC−miR342細胞、293−RC細胞と名付けた。トランスフェクションの方法及びAAVベクター回収までの操作は、実施例2−(1)〜(3)と同様の方法で行った。
実施例7−(2)で得られた各AAVベクター産生細胞から得られたAAVベクターのゲノム力価を実施例3と同様の方法で測定した。その結果を表4に示す。
(1)標的細胞の播種
AAV293細胞を10%FBS、2mM L−グルタミン酸ナトリウムを含むDMEMに4x104細胞/mLとなるように懸濁した。この懸濁液1mLを細胞培養用24ウェルプレート(コーニング社製)に添加し、37℃のCO2インキュベーターで一夜培養した。
実施例8−(1)のAAV293細胞より培地を除去した後、10%FBS及び2mM L−グルタミン酸ナトリウムを含むDMEMを500μL添加し、実施例7−(2)で得られたAAVベクター溶液を1μL添加した。37℃のCO2インキュベーターで6時間培養後、培地を除去し、10%FBS及び2mM L−グルタミン酸ナトリウムを含むDMEMを500μL添加し、一夜培養した。
実施例8−(2)で培養したAAV293細胞より培地を除去し、PBSを500μL添加した。トリプシン処理後、培地を500μL添加しピペッティングでAAV293細胞を1.5mLチューブに回収した。得られた細胞懸濁液をフローサイトメーターCytomics FC500(ベックマン・コールター社製)でAsRed2陽性率を測定した。得られた値をもとに感染力価を算出し、AAVベクター液1mL当たりの感染性AAVベクター数(Infectious viral particle/mL、以下ivp/mL)で示した。その結果を表5に示す。
(1)pRC-miRNAプラスミドの作製
pAAV―RC1をSmiIとSnaBIで処理し、9型AAVのCap遺伝子の同部位を人工合成の上、連結して、pRC9を構築した。実施例7−(1)で増幅したCMVプロモーターからmiR342コード領域まで含む断片を、SnaBI処理したpRC9に実施例7−(1)と同様の方法により連結し、pRC9−miR342を得た。即ち、pRC9−miR342は9型AAVのCap遺伝子及びCMV−miR342断片を含むヘルパープラスミドである。また、pBapo−miR342を鋳型として、配列表の配列番号7(Forward primer 4)及び配列番号8(Reverse primer 4)に記載のプライマーを用いたPCR法によりCMVプロモーターからmiR342コード領域までを含む領域を別途増幅した。この断片を、SmaI(タカラバイオ社製)処理したpRep−Cap AAV6プラスミド(Applied Viromics社製)にIn−Fusion(登録商標) Advantage PCRクローニングキットを用いて連結し、pRC6−miR342を得た。即ち、pRC6−miR342は6型AAVのCap遺伝子及びCMV−miR342断片を含むヘルパープラスミドである。
実施例9−(1)で得られたプラスミドまたはコントロールプラスミドを、pAAV−AsRed2、pHelper plasmidと同時にAAV293へトランスフェクションした。トランスフェクションの方法及びAAVベクター回収までの操作は、実施例2−(1)〜(3)と同様の方法で行った。
実施例3と同様の方法で、製造したAAVベクターのゲノム力価を定量した。その結果を表6に示す。
SEQ ID NO:2: Reverse primer 1
SEQ ID NO:3: Forward primer 2
SEQ ID NO:4: Reverse primer 2
SEQ ID NO:5: Forward primer 3
SEQ ID NO:6: Reverse primer 3
SEQ ID NO:7: Forward primer 4
SEQ ID NO:8: Reverse primer 4
Claims (4)
- AAVベクター産生細胞であって、hsa−miR−324、hsa−miR−196a1、およびhsa−miR−342からなる群より選択された少なくとも1種の外来性miRNAを含み、かつ、発現しており、AAVベクターのウイルス粒子形成に必須な要素を発現する核酸をさらに含む、AAVベクターを産生する細胞、ただし前記miRNAを発現する核酸がウイルス粒子に封入される核酸に含まれている細胞を除く。
- 請求項1に記載の細胞にウイルスに封入される核酸を導入したAAVベクター産生細胞。
- AAVベクターの製造方法であって、請求項2に記載の細胞を培養する工程を含む方法。
- hsa−miR−324、hsa−miR−196a1、およびhsa−miR−342からなる群より選択された少なくとも1種のmiRNAを発現する核酸と、AAVベクターのウイルス粒子形成に必須な要素を発現する核酸とを組み合わせて含むキット。
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