JP6088283B2 - ポリ−ガンマ−グルタミン酸の生産方法 - Google Patents
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Description
そこで、不要な或いは有害な働きをすると考えられる遺伝子を欠失又は不活性化することによって、有用物質(例えば異種タンパク質)の生産性を向上させるといった試みが行われている。例えば、特許文献2には、転移因子を有するPGAの生産能を有する納豆菌において、recA遺伝子を欠損させることにより、PGAの生産性を安定に保持する方法が記載されている。ここで、特許文献2に記載の方法は、recA遺伝子の欠損により、納豆菌の染色体中に存在する転移因子(トランスポゾン(Tn)や挿入配列(IS))の転移を抑制し、PGA合成遺伝子群の機能破壊を抑制する技術である。
これに対して、特許文献3には、枯草菌においてrecA遺伝子を欠損させた場合、導入するプラスミドが宿主細胞内で不安定となる場合があることが記載されている。
また、本発明は、PGAを生産する微生物のPGAの生産性を安定化させる、PGAの生産性安定化方法を提供することを課題とする。
さらに、本発明は、PGAを効率良く且つ安定的に生産することができ、前記方法に好適に用いることができる、PGA生産用組換え微生物を提供することを課題とする。
また、本発明は、納豆菌を除く枯草菌のrecA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させてPGAの生産性を安定化させる、PGAの生産性安定化方法に関する。
さらに、本発明は、納豆菌を除く枯草菌のrecA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させた、PGA生産用組換え微生物に関する。
また、本発明のPGAの生産性安定化方法は、recA遺伝子及び当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失及び不活性化させない場合と比較してPGAの生産性を安定化させることができる。
さらに、本発明のPGA生産用組換え微生物は、PGAの生産効率が良く且つ安定的に生産することができ、前記方法に好適に用いることができる。
上記SSC及び温度条件の組み合わせは例示であり、当業者であれば、ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーを決定する上記の要素又は他の要素を適宜組み合わせることにより、適切なストリンジェンシーを実現することが可能である。
なお、本発明においてrecA遺伝子は配列番号11に示す塩基配列からなる遺伝子に限定されない。例えば、配列番号12に示すアミノ酸配列からなるタンパク質をコードする遺伝子、配列番号12に示すアミノ酸配列において1又は数個、好ましくは1〜100個、より好ましくは1〜70個、より好ましくは1〜30個、より好ましくは1〜15個、より好ましくは1〜10個、さらに好ましくは1〜5個のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。ここで、アミノ酸の付加には、両末端への1〜数個、好ましくは1〜100個、より好ましくは1〜70個、より好ましくは1〜30個、より好ましくは1〜15個、より好ましくは1〜10個、さらに好ましくは1〜5個のアミノ酸の付加が含まれる。さらに、recA遺伝子には、配列番号12に示すアミノ酸配列に対して70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、さらに好ましくは99%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。さらに、recA遺伝子には、配列番号11に示す塩基配列に対して70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、さらに好ましくは99%以上の同一性を有する塩基配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。さらに、recA遺伝子には、配列番号11に示す塩基配列の相補鎖に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、相同組換え活性を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。本明細書において、これらの遺伝子をrecA遺伝子に相当する遺伝子とする。
(a)配列番号12のアミノ酸配列からなるタンパク質
(b)配列番号12のアミノ酸配列において1又は数個(好ましくは1〜100個、より好ましくは1〜70個、より好ましくは1〜30個、より好ましくは1〜15個、より好ましくは1〜10個、さらに好ましくは1〜5個)のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質
(c)配列番号12のアミノ酸配列と70%以上(好ましくは80%以上、より好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、さらに好ましくは99)の同一性を有するアミノ酸配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質
recA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子の欠失又は不活性化の手順としては、recA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を計画的に欠失又は不活性化する方法のほか、ランダムな遺伝子の欠失又は不活性化変異を与えた後、適当な方法によりタンパク質生産性の評価及び遺伝子解析を行う方法が挙げられる。
特に、相同組換えにより標的遺伝子を欠失又は不活性化する方法については、既にいくつかの報告例があり(Itaya,M.,Tanaka,T.,Mol.Gen.Genet.,1990,vol.223,p.268-272)、このような方法を繰り返すことによって、目的の組換え微生物を得ることができる。また、ランダムな遺伝子の不活性化方法としては、変異誘発剤の使用や親微生物への紫外線、ガンマ線等の照射によっても実施可能である。この場合、標的とする構造遺伝子内への塩基置換、塩基挿入或いは一部欠失といった変異導入の他に、プロモーター領域等の制御領域への同様の変異導入、または標的遺伝子の発現制御に関連する遺伝子への同様の変異導入によっても同等の効果が期待できる。さらに、より効率的な手法として、標的とする遺伝子の上流、下流領域を含むが標的とする遺伝子を含まない直鎖状のDNA断片をSOE(splicing by overlap extension)-PCR法(Horton,RM.,et al.,Gene,1989,vol.77,p.61-68)によって構築し、これを親微生物細胞内に取り込ませて親微生物ゲノム上の標的とする遺伝子の外側の2箇所で二回交差の相同組換えを起こさせることにより、ゲノム上の標的とする遺伝子を欠失させるといった手法も実施可能である(図1参照)。
ここで、PGA合成に関与する遺伝子群の1種として、枯草菌におけるpgsB遺伝子(BG12531:ywsC遺伝子、又はcapB遺伝子とも別称される)、pgsC遺伝子(BG12532:ywtA遺伝子、又はcapC遺伝子とも別称される)及びpgsA遺伝子(BG12533:ywtB遺伝子、又はcapA遺伝子とも別称される)から構成されているものが挙げられる。遺伝子組換えの宿主微生物として広く利用されているBacillus subtilis Marburg No.168系統株は、これらpgsB遺伝子、pgsC遺伝子及びpgsA遺伝子を染色体上に有しているが、PGA生産能を有していない。同じく、納豆菌は、これらpgsB遺伝子、pgsC遺伝子及びpgsA遺伝子を染色体(ゲノム)上に有しているが、PGA生産能を有している。なお、pgsB遺伝子、pgsC遺伝子及びpgsA遺伝子は、それぞれPgsB、PgsC及びPgsAをコードする遺伝子である。
なお、本発明においてpgsB遺伝子は配列番号13に示す塩基配列からなる遺伝子に限定されない。例えば、配列番号14に示すアミノ酸配列からなるタンパク質をコードする遺伝子、配列番号14に示すアミノ酸配列において1又は数個(好ましくは1〜12個、より好ましくは1〜8個、さらに好ましくは1〜4個、さらに好ましくは1又は2個、特に好ましくは1個)のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、グルタミン酸を基質とするアミドリガーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。ここで、アミノ酸の付加には、両末端への1〜数個のアミノ酸の付加が含まれる。さらに、pgsB遺伝子には、配列番号14に示すアミノ酸配列に対して50%以上、好ましくは60%以上、より好ましくは70%以上、より好ましくは75%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、より好ましくは99%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、アミドリガーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。さらに、pgsB遺伝子には、配列番号13に示す塩基配列に対して60%以上、好ましくは70%以上、より好ましくは75%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、より好ましくは99%以上の同一性を有する塩基配列からなり、アミドリガーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。さらに、pgsB遺伝子には、配列番号13に示す塩基配列の相補鎖に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、アミドリガーゼ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。本明細書において、これらの遺伝子を枯草菌におけるpgsB遺伝子に相当する遺伝子とする。より具体的には、枯草菌168株のpgsB遺伝子とBacillus licheniformis ATCC14580株、Bacillus amyloliquefacience FZB42株及びOceanobacillus iheyensis HTE831株由来のpgsB遺伝子との塩基配列の同一性はそれぞれ79%、82%及び62%であり、またそのアミノ酸配列の同一性はそれぞれ90%、93%及び55%であり、これらは枯草菌におけるpgsB遺伝子に相当する遺伝子に含まれる。
(d)配列番号14のアミノ酸配列からなるタンパク質
(e)配列番号14のアミノ酸配列において1又は数個(好ましくは1〜12個、より好ましくは1〜8個、さらに好ましくは1〜4個、さらに好ましくは1又は2個、特に好ましくは1個)のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、アミドリガーゼ活性を有するタンパク質
(f)配列番号14のアミノ酸配列と50%以上(好ましくは60%以上、より好ましくは70%以上、より好ましくは75%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、より好ましくは99%以上)の同一性を有するアミノ酸配列からなり、アミドリガーゼ活性を有するタンパク質
なお、本発明においてpgsC遺伝子は配列番号15に示す塩基配列からなる遺伝子に限定されない。例えば、配列番号16に示すアミノ酸配列からなるタンパク質をコードする遺伝子、配列番号16に示すアミノ酸配列において1又は数個(好ましくは1〜12個、より好ましくは1〜8個、さらに好ましくは1〜4個、さらに好ましくは1又は2個、特に好ましくは1個)のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、前述のPgsBタンパク質の共存下でPGAを生成する機能を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。ここで、アミノ酸の付加には、両末端への1〜数個のアミノ酸の付加が含まれる。さらに、pgsC遺伝子には、配列番号16に示すアミノ酸配列に対して50%以上、好ましくは60%以上、より好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、より好ましくは99%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、PgsBタンパク質の共存下でPGAを生成する機能を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。さらに、pgsC遺伝子には、配列番号15に示す塩基配列に対して55%以上、好ましくは60%以上、より好ましくは70%以上、より好ましくは75%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、より好ましくは99%以上の同一性を有する塩基配列からなり、前述のPgsBタンパク質の共存下でPGAを生成する機能を有するタンパク質をコードする遺伝子も含まれる。さらに、pgsC遺伝子には、配列番号15に示す塩基配列の相補鎖に対してストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、前述のPgsBタンパク質の共存下でPGAを生成する機能を有するタンパク質をコードする遺伝子を含む意味である。本明細書において、これらの遺伝子を枯草菌におけるpgsC遺伝子に相当する遺伝子とする。より具体的には、枯草菌168株のpgsC遺伝子とBacillus licheniformisATCC14580株、Bacillus amyloliquefacienceFZB42株及びOceanobacillus iheyensisHTE831株由来のpgsC遺伝子との塩基配列の同一性はそれぞれ78%、84%及び59%であり、またそのアミノ酸配列の同一性はそれぞれ90%、94%及び51%であり、これらは枯草菌におけるpgsC遺伝子に相当する遺伝子に含まれる。
(g)配列番号16のアミノ酸配列からなるタンパク質
(h)配列番号16のアミノ酸配列において1又は数個(好ましくは1〜12個、より好ましくは1〜8個、さらに好ましくは1〜4個、さらに好ましくは1又は2個、特に好ましくは1個)のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、前記pgsB遺伝子がコードするPgsBタンパク質の存在下でPGAを生成する機能を有するタンパク質
(i)配列番号16のアミノ酸配列と50%以上(好ましくは60%以上、より好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、より好ましくは99%以上)の同一性を有するアミノ酸配列からなり、前記pgsB遺伝子がコードするPgsBタンパク質の共存下でPGAを生成する機能を有するタンパク質
また、枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子など、PGA合成に関与する遺伝子又はPGA合成に関与する遺伝子群を宿主微生物に導入する際は、通常のプラスミド(ベクター)を使用することができる。また、プラスミドは、遺伝子導入対象の宿主微生物の種類に応じて適宜選択することができる。例えば、pT181、pC194、pUB110、pE194、pSN2、pHY300PLK等を例示することができる。選択されるプラスミドは、宿主細胞内で自己複製可能なプラスミドであることが好ましく、そのプラスミドが多コピーであることがより好ましい。さらに、そのプラスミドのコピー数が宿主ゲノム(染色体)に対し、2以上100コピー以下であれば良く、好ましくは2以上50コピー以下、より好ましくは2以上30コピー以下であれば良い。また、発現ベクターを用いた形質転換には、通常の手法、例えばプロトプラスト法(Chamg,S.,Cohen,SH.,Mol.Gen.Genet.,1979,vol.168,p.111-115)やコンピテントセル法(Young,FE.,Spizizen,J.,J.Bacteriol.,1963,vol.86,p.392-400)を適用することができる。
枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子など、PGA合成に関与する遺伝子又はPGA合成に関与する遺伝子群の導入方法については、特開2009−89708号公報、特開2010−213627号公報、特開2010−213628号公報、特開2010−213664号公報、特開2010−213665号公報などを参照することができ、本発明ではこれらの文献に記載の方法を取り込むことができる。
また、培地からのPGAの回収方法についても特に制限はなく、生産された物質を単離、回収する際に通常用いられる方法で行うことができる。例えば、ゲルろ過クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、クロロホルム/メタノール抽出法、ヘキサン抽出法、エタノール抽出法等により目的のPGAを単離、回収することができる。
<2>納豆菌を除く枯草菌のrecA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させてPGAの生産性を安定化させる、PGAの生産性安定化方法。
(a)配列番号12のアミノ酸配列からなるタンパク質
(b)配列番号12のアミノ酸配列において1又は数個(好ましくは1〜100個、より好ましくは1〜70個、より好ましくは1〜30個、より好ましくは1〜15個、より好ましくは1〜10個、さらに好ましくは1〜5個)のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質
(c)配列番号12のアミノ酸配列と70%以上(好ましくは80%以上、より好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、さらに好ましくは99)の同一性を有するアミノ酸配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質
<4>前記枯草菌が、PGA生産能を有する枯草菌のrecA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させて得られた枯草菌である、前記<1>〜<3>のいずれか1項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<5>前記枯草菌に、PGA合成に関与する遺伝子又はPGA合成に関与する遺伝子群が発現可能に導入されており、前記枯草菌にPGAを生産させる、前記<1>〜<4>のいずれか1項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<6>前記PGA合成に関与する遺伝子又はPGA合成に関与する遺伝子群として、枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が前記枯草菌に発現可能に導入されている、前記<5>項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<7>前記pgsB遺伝子が下記(d)〜(f)のいずれか1つのタンパク質をコードする遺伝子である、前記<6>項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
(d)配列番号14のアミノ酸配列からなるタンパク質
(e)配列番号14のアミノ酸配列において1又は数個(好ましくは1〜12個、より好ましくは1〜8個、さらに好ましくは1〜4個、さらに好ましくは1又は2個、特に好ましくは1個)のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、アミドリガーゼ活性を有するタンパク質
(f)配列番号14のアミノ酸配列と50%以上(好ましくは60%以上、より好ましくは70%以上、より好ましくは75%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、より好ましくは99%以上)の同一性を有するアミノ酸配列からなり、アミドリガーゼ活性を有するタンパク質。
<8>前記pgsC遺伝子が下記(g)〜(i)のいずれか1つのタンパク質をコードする遺伝子である、前記<6>項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
(g)配列番号16のアミノ酸配列からなるタンパク質
(h)配列番号16のアミノ酸配列において1又は数個(好ましくは1〜12個、より好ましくは1〜8個、さらに好ましくは1〜4個、さらに好ましくは1又は2個、特に好ましくは1個)のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、前記pgsB遺伝子がコードするPgsBタンパク質の存在下でPGAを生成する機能を有するタンパク質
(i)配列番号16のアミノ酸配列と50%以上(好ましくは60%以上、より好ましくは70%以上、より好ましくは80%以上、より好ましくは85%以上、より好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、より好ましくは96%以上、より好ましくは97%以上、より好ましくは98%以上、より好ましくは99%以上)の同一性を有するアミノ酸配列からなり、前記pgsB遺伝子がコードするPgsBタンパク質の共存下でPGAを生成する機能を有するタンパク質
<9>前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が、宿主細胞内で自己複製可能なプラスミド(ベクター)に組み込まれている、前記<6>〜<8>のいずれか1項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<10>前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が、その上流に、前記微生物において機能を有する、転写開始制御領域、翻訳開始制御領域、又は転写開始制御領域及び翻訳開始制御領域を有する、前記<6>〜<9>のいずれか1項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<11>前記制御領域がバチルス属細菌由来のα-アミラーゼ遺伝子の制御領域、プロテアーゼ遺伝子の制御領域、aprE遺伝子の制御領域、spoVG遺伝子の制御領域、rapA遺伝子の制御領域、Bacillus sp.KSM-S237株のセルラーゼ遺伝子の制御領域、Staphylococcus aureus由来のカナマイシン耐性遺伝子の制御領域又はクロラムフェニコール耐性遺伝子の制御領域である、前記<10>の項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<12>前記枯草菌が転移因子(好ましくはトランスポゾン及び挿入配列)を有さない、前記<1>〜<11>のいずれか1項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<13>前記枯草菌がBacillus subtilis Marburg No.168系統株である、前記<1>〜<12>のいずれか1項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<14>前記枯草菌の継代培養、培地の置換、又は前記枯草菌の継代培養及び培地の置換を行いながら前記枯草菌を培養してPGAを生産する、前記<1>〜<13>のいずれか1項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<15>グルタミン酸又はその塩(好ましくはグルタミン酸ナトリウム)の含有量が0.005g/L以上(好ましくは0.05g/L以上、より好ましくは0.1g/L以上、さらに好ましくは0.5g/L以上)600g/L以下(好ましくは500g/L以下、より好ましくは400g/L以下、さらに好ましくは300g/L以下)の培地で前記枯草菌を培養してPGAを生産する、前記<1>〜<14>のいずれか1項記載のPGAの生産方法又はPGAの生産性安定化方法。
<18>PGA生産能を有する枯草菌のrecA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させて得られた、前記<16>又は<17>項記載のPGA生産用組換え微生物。
<19>前記枯草菌に、PGA合成に関与する遺伝子又はPGA合成に関与する遺伝子群が発現可能に導入されている、前記<16>〜<18>のいずれか1項記載のPGA生産用組換え微生物。
<20>前記PGA合成に関与する遺伝子又はPGA合成に関与する遺伝子群として、枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が前記枯草菌に発現可能に導入されている、前記<19>項記載のPGA生産用組換え微生物。
<21>前記pgsB遺伝子が前記(d)〜(f)のいずれか1つのタンパク質をコードする遺伝子である、前記<20>項記載のPGA生産用組換え微生物。
<22>前記pgsC遺伝子が前記(g)〜(i)のいずれか1つのタンパク質をコードする遺伝子である、前記<20>項記載のPGA生産用組換え微生物。
<23>前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が、宿主細胞内で自己複製可能なプラスミド(ベクター)に組み込まれている、前記<20>〜<22>のいずれか1項記載のPGA生産用組換え微生物。
<24>前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が、その上流に、前記微生物において機能を有する、転写開始制御領域、翻訳開始制御領域、又は転写開始制御領域及び翻訳開始制御領域を有する、前記<20>〜<23>のいずれか1項記載のPGA生産用組換え微生物。
<25>前記制御領域がバチルス属細菌由来のα-アミラーゼ遺伝子の制御領域、プロテアーゼ遺伝子の制御領域、aprE遺伝子の制御領域、spoVG遺伝子の制御領域、rapA遺伝子の制御領域、Bacillus sp.KSM-S237株のセルラーゼ遺伝子の制御領域、Staphylococcus aureus由来のカナマイシン耐性遺伝子の制御領域又はクロラムフェニコール耐性遺伝子の制御領域である、前記<24>項記載のPGA生産用組換え微生物。
<26>前記枯草菌が転移因子(好ましくはトランスポゾン及び挿入配列)を有さない、前記<16>〜<25>のいずれか1項記載のPGA生産用組換え微生物。
<27>前記枯草菌がBacillus subtilis Marburg No.168系統株である、前記<16>〜<26>のいずれか1項記載のPGA生産用組換え微生物。
<29>PGAの生産のための、recA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させた納豆菌を除く枯草菌の使用。
<30>recA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させた納豆菌を除く枯草菌を、PGA生産用組換え微生物として使用する方法。
<32>前記枯草菌が、PGA生産能を有する枯草菌のrecA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させて得られた枯草菌である、前記<28>〜<31>のいずれか1項記載の使用又は方法。
<33>前記枯草菌に、PGA合成に関与する遺伝子又はPGA合成に関与する遺伝子群が発現可能に導入されている、前記<28>〜<32>のいずれか1項記載の使用又は方法。
<34>前記PGA合成に関与する遺伝子又はPGA合成に関与する遺伝子群として、枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が前記枯草菌に発現可能に導入されている、前記<33>項記載の使用又は方法。
<35>前記pgsB遺伝子が前記(d)〜(f)のいずれか1つのタンパク質をコードする遺伝子である、前記<34>項記載の使用又は方法。
<36>前記pgsC遺伝子が前記(g)〜(i)のいずれか1つのタンパク質をコードする遺伝子である、前記<34>項記載の使用又は方法。
<37>前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が、宿主細胞内で自己複製可能なプラスミド(ベクター)に組み込まれている、前記<34>〜<36>のいずれか1項記載の使用又は方法。
<38>前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子からなる群より選ばれる少なくとも1種(好ましくは前記pgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び前記pgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子)が、その上流に、前記微生物において機能を有する、転写開始制御領域、翻訳開始制御領域、又は転写開始制御領域及び翻訳開始制御領域を有する、前記<34>〜<37>のいずれか1項記載の使用又は方法。
<39>前記制御領域がバチルス属細菌由来のα-アミラーゼ遺伝子の制御領域、プロテアーゼ遺伝子の制御領域、aprE遺伝子の制御領域、spoVG遺伝子の制御領域、rapA遺伝子の制御領域、Bacillus sp.KSM-S237株のセルラーゼ遺伝子の制御領域、Staphylococcus aureus由来のカナマイシン耐性遺伝子の制御領域又はクロラムフェニコール耐性遺伝子の制御領域である、前記<38>項記載の使用又は方法。
<40>前記枯草菌が転移因子(好ましくはトランスポゾン及び挿入配列)を有さない、前記<28>〜<39>のいずれか1項記載の使用又は方法。
<41>前記枯草菌がBacillus subtilis Marburg No.168系統株である、前記<28>〜<40>のいずれか1項記載の使用又は方法。
なお、表1には、本実施例で使用したプライマーの名称、その塩基配列及び配列番号をまとめて示した。ここで、表1に示す塩基配列において、下線部分は制限酵素認識配列を示している。また、本実施例におけるDNA断片増幅のためのポリメラーゼ連鎖反応(PCR)には、GeneAmp PCR System(アプライドバイオシステムズ社製)及びKOD-Plus-Neo DNA Polymerase(東洋紡績社製)、並びに付属の試薬類を用いた。
図1に示す手順に従い、recA遺伝子を欠失させた枯草菌改変体を作製した。
枯草菌168株から抽出したゲノムDNAを鋳型とし、表1に示したRECA-F1(配列番号1)及びRECA-R1(配列番号2)のプライマーセットを用いて、ゲノム上のrecA遺伝子の上流領域に隣接する約0.9kbの断片(A)をPCRにより増幅した。また、上記ゲノムDNAを鋳型とし、RECA-F2(配列番号3)及びRECA-R2(配列番号4)のプライマーセットを用いて、ゲノム中のrecA遺伝子の下流領域に隣接する約0.8kbの断片(B)をPCRにより増幅した。また、プラスミドpDG1727(Guerout-Fleury et al.,Gene.,1995,vol.167,p.335-336;Bacillus Genetic Stock Center[http://www.bgsc.org/]より入手可能)のDNAを鋳型とし、表1に示したSPC-F(配列番号5)及びSPC-R(配列番号6)のプライマーセットを用いて、スペクチノマイシン耐性遺伝子(Spc)を含む約1.0kbの断片(C)を調製した。
枯草菌168株をCI培地(0.20質量%硫酸アンモニウム、1.40質量%リン酸水素二カリウム、0.60質量%リン酸二水素カリウム、0.10質量%クエン酸三ナトリウム二水和物、0.50質量%グルコース、0.03質量%アミケース(SIGMA社製)、5mM塩化マグネシウム、50μg/mLトリプトファン)において37℃で、生育度(OD600)の値が1程度になるまで振盪培養した。振盪培養後、培養液の一部(0.5mL)を分取し、遠心分離にて菌体のみを回収後、1mLのCII培地(0.20質量%硫酸アンモニウム、1.40質量%リン酸水素二カリウム、0.60質量%リン酸二水素カリウム、0.10質量%クエン酸三ナトリウム二水和物、0.50質量%グルコース、0.015質量%アミケース(SIGMA社製)、5mM塩化マグネシウム、5μg/mLトリプトファン)に菌体を再懸濁することで、枯草菌株のコンピテントセル懸濁液を調製した。
前記(2)で調製したコンピテントセル懸濁液100μLに、前記(1)で得られたDNA断片(D)を最終濃度が15μg/mL以上となるよう添加し、37℃で90分間振盪培養後、100μLのLB液体培地(1質量%トリプトン、0.50質量%酵母エキス、0.50質量%NaCl)を加え、37℃で1時間振盪培養を行った。その後、スペクチノマイシン(100μg/mL)を含むLB寒天培地(1質量%トリプトン、0.50質量%酵母エキス、0.50質量%NaCl、1.5質量%寒天)に培養液10μL又は100μLを塗沫した。37℃における静置培養の後、生育したコロニーを形質転換体として分離した。得られた形質転換体のゲノムDNAを抽出し、これを鋳型とするPCR及びシークエンスによってrecA遺伝子がSpc耐性遺伝子に置換した目的とする枯草菌改変体であることを確認した。以上のようにして、recA遺伝子欠失株(kao119株)を構築した。
図2に示す手順に従い、PGA合成関連遺伝子導入用ベクターを作製した。
野生株である枯草菌168株、及び製造例1で作製した枯草菌変異株(kao119株)に対し、製造例2で作製したPGA組換え生産用ベクターpHY_PS237/pgsBCを用い、プロトプラスト形質転換法(Mol.Gen.Genet.,1979,vol.168,p.111)によって各菌株に導入した。テトラサイクリン-塩酸塩30ppmを添加したDM3プロトプラスト再生培地(DM3培地)上に生育したコロニーを、プラスミドを導入した目的とする枯草菌形質転換体として選抜した。
製造例3にて得られた形質転換体を5mLのLB培地(1質量%トリプトン、0.5質量%酵母エキス、1質量%NaCl、15ppmテトラサイクリン)で一夜30℃で振盪培養を行った(継代培養回数:1回)。さらに、この培養液を5mLのLB培地に接種し、一夜30℃で振盪培養を行った(継代培養回数:2回)。次に、継代培養回数:1、2回の培養液0.4mLをそれぞれ2×L−マルトース+MSG培地(2質量%トリプトン、1質量%酵母エキス、1質量%NaCl、7.5質量%マルトース、7.5ppm硫酸マンガン4−5水和物、8質量%グルタミン酸ナトリウム1水和物)20mLに接種し、30℃にて3日間振盪培養を行った(N=3)。培養終了後、後述の測定例に示す分析条件にてPGA生産量及び分子量を測定した。その結果を表2に示す。
これに対し、recA遺伝子を欠失させた枯草菌にPGA合成関連遺伝子を導入したkao119株では継代培養回数の増加に伴うPGA生産性の低下は約10%程度であった。これは、recA遺伝子を欠失させた枯草菌を宿主微生物として用いた場合、PGAの生産性が安定化したことを示す。
製造例3にて得られた形質転換体を5mLのLB培地で30℃において15時間振盪培養を行った。培養開始から1日から後の菌体を回収、洗浄し、新たな2×L−マルトース+MSG培地に置換し、2日間振盪培養を行った(N=3)。培養終了後、後述の測定例に示す分析条件にてPGA生産量及び分子量を測定した。その結果を表3に示す。
実施例1及び2に示した評価培養終了後の培養液試料を、室温にて14,800rpmで30分間遠心分離(商品名:himacCF15RX、日立工機社製)に供し、遠心分離にて得られた培養液上清中に含まれるPGAについて、HPLC法にて定量及び分子量測定を行った。使用したHPLC装置は、送液ポンプ(商品名:LC−9A、島津製作所社製)、オートサンプラー(商品名:AS−2000、日立計測機器社製)、カラムオーブン(商品名:CTO−6A、島津製作所社製)、UV検出計(商品名:SPD−10A、島津製作所社製)、脱ガス装置(商品名:DG660B、GLサイエンス社製)及びクロマトデータ解析装置(商品名:D−2500、日立計測機器社製)を接続して用いた。分析カラムは、排除限界の異なる2種類の東ソー社製の親水性ポリマー用ゲルろ過カラムTSKgel G6000PWXL(7.8mm I.D.×30cm、排除限界>5×107)及びTSKgel G4000PWXL(7.8mm I.D.×30cm、排除限界1×106)を用い、これら分析カラムの直前にガードカラムTSK guardcolumn PWXL(6.0mm I.D.×4.0cm)を接続した。なお、分析条件は、溶離液0.1M硫酸ナトリウム、流速1.0mL/分、カラム温度50℃、溶出ピークの検出波長210nmとした。試料注入量はサンプルループ(レオダイン)を用い、1分析あたり20μLとした。HPLC分析に供するサンプルは、不溶物を除くための前処理としてMULTI SCREEN MNHV45(商品名、MILLIPORE社製、0.45μmデュラポア膜)にてフィルターろ過処理し調製した。また、濃度検定には分子量80万のPGA(明治フードマテリアル社製)を用いて検量線を作成した。さらに、分子量検定には、プルラン(商品名:Shodex STANRD P-82、昭和電工社製)を用いて予め重量平均分子量を求めた各種分子量の異なるポリグルタミン酸(和光純薬工業社製:162−21411及び162−21401、SIGMA−ALDRICH社製:P−4886及びP−4761、明治フードマテリアル:分子量88万)を用いた。
Claims (4)
- 納豆菌(Bacillus subtilis var.natto)を除く枯草菌(Bacillus subtilis)のrecA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させて、継代培養におけるポリ−ガンマ−グルタミン酸の生産性を安定化させる、ポリ−ガンマ−グルタミン酸の生産性安定化方法であって、
前記recA遺伝子が下記(a)〜(c)のいずれか1つのタンパク質をコードする遺伝子である、ポリ−ガンマ−グルタミン酸の生産性安定化方法。
(a)配列番号12のアミノ酸配列からなるタンパク質
(b)配列番号12のアミノ酸配列において1〜10個のアミノ酸が欠失、置換、付加又は挿入されたアミノ酸配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質
(c)配列番号12のアミノ酸配列と90%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、相同組換え活性を有するタンパク質 - 前記枯草菌が、ポリ−ガンマ−グルタミン酸生産能を有する枯草菌のrecA遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子を欠失又は不活性化させて得られた枯草菌である、請求項1記載のポリ−ガンマ−グルタミン酸の生産性安定化方法。
- 前記枯草菌に、ポリ−ガンマ−グルタミン酸合成に関与する遺伝子又はポリ−ガンマ−グルタミン酸合成に関与する遺伝子群が発現可能に導入されており、前記枯草菌にポリ−ガンマ−グルタミン酸を生産させる、請求項1又は2記載のポリ−ガンマ−グルタミン酸の生産性安定化方法。
- 前記ポリ−ガンマ−グルタミン酸合成に関与する遺伝子又はポリ−ガンマ−グルタミン酸合成に関与する遺伝子群として、枯草菌におけるpgsB遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子、及び枯草菌におけるpgsC遺伝子又は当該遺伝子に相当する遺伝子が前記枯草菌に発現可能に導入されており、
前記pgsB遺伝子が、下記タンパク質(d)又は(f)をコードする遺伝子であり、
前記pgsC遺伝子が、下記タンパク質(g)又は(i)をコードする遺伝子である、請求項3記載のポリ−ガンマ−グルタミン酸の生産性安定化方法。
(d)配列番号14のアミノ酸配列からなるタンパク質
(f)配列番号14のアミノ酸配列と90%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、アミドリガーゼ活性を有するタンパク質
(g)配列番号16のアミノ酸配列からなるタンパク質
(i)配列番号16のアミノ酸配列と90%以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、前記pgsB遺伝子がコードするPgsBタンパク質の共存下でPGAを生成する機能を有するタンパク質
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