JP6012551B2 - ストロンチウム化合物を含むフィブリン組成物 - Google Patents

Description

本願は、２００７年４月２３日に出願された米国仮特許出願第６０／９２５，７１６号の優先権の利益を主張する。米国仮特許出願第６０／９２５，７１６号は、その全体が本明細書中に参考として特に援用される。

本発明は、概して、骨治癒および骨再生に使用するための組成物、具体的には、フィブリノゲン、トロンビンならびにストロンチウム（Ｓｒ）含有化合物および／または場合によりカルシウムなどの別の金属を含有する化合物を含む無機成分を含む粘弾性ヒドロゲルゲルまたは液体製剤に関する。ストロンチウム含有化合物は、トロンビン溶液に溶解してもよいし、結晶粒子形態で組成物に加えてもよい。成分を混合すると、ゲル化が起こり、マトリックスを形成する。

骨治癒および再生における現在の実務は、移植骨（自家または同種移植片）、ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）などの骨セメントまたは注射用もしくは移植可能カルシウム塩空隙充填剤のいずれかで骨空隙を埋めることである。自家移植片は、本出願の「ゴールドスタンダード」選択であるが、ドナー組織制限、外傷、感染および罹患率に関する問題がある。同種移植片については、疾患伝播および免疫原性（ｉｍｕｎｏｇｅｎｉｃｉｔｙ）の危険をはじめ、いくつかの問題がある。自家および同種移植片の両方とも、二次的リモデリングによる生物学的および機械的特性の喪失を示す。このような制限により、移植骨の代替材料が注目されてきた（非特許文献１）。

ＰＭＭＡは、非吸収性ポリマー材料である。その重合の間に、未反応の単量体、触媒および低分子量オリゴマーが、ポリマー中に捕捉されるようになる。これらの化学薬品は、材料が外へ浸出し、局所細胞傷害性および免疫学的応答をもたらす可能性を有する。ＰＭＭＡ重合は、熱壊死を引き起こす可能性を有し得る高温の発熱を有する。この発熱はまた、ＰＭＭＡの、任意の薬理作用物質または化学療法薬を組み込む能力も制限する。欠損からのＰＭＭＡ漏出は、極めて重大な合併症、例えば、隣接構造の圧迫（さらなる手術を必要とする）および／または塞栓症をもたらし得る。

ナノレベル（１０^−９ｍ）の骨マトリックスは、膠原線維からなり、カルシウム塩の小さな結晶が埋め込まれている。骨の自然な構成を刺激するために、骨の修復にカルシウム塩が用いられることが多い。既知のカルシウム塩をベースとする「注射用空隙充填剤」がいくつかある。カルシウム塩セメントに伴う１つの主要な問題として、そのｉｎ ｖｉｖｏでの凝結の必要があり、これは、通常、化学反応によって達成される。したがって、細胞および薬理作用物質などの充填剤中に組み込まれる任意の生物製剤が損傷を受ける可能性を有し得る。さらに、増量剤が「流体」でありすぎる場合には、欠損から隣接空間に漏出し、構造の圧迫および塞栓の可能性につながり得る。欠損からの関節の近位への漏出は、関節機能を損なう可能性を有し得る。

リン酸カルシウム（ＣＰ）塩ヒドロキシアパタイト（ＨＡ構造Ｃａ_１０（ＰＯ_４）_６（ＯＨ_２））は、骨のミネラル相に最も近く、実験台で容易に合成できる。また、他のカチオン（例えば、マグネシウム、ナトリウムおよびストロンチウム）またはアニオン（塩化物、フッ化物およびカーボネート）が結晶に置換されているＨＡを調製することも可能である。本発明に関しては、ＣＰ結晶中の、カルシウム（Ｃａ^２＋）イオンのストロンチウム（Ｓｒ^２＋）イオンでの置換である。ストロンチウムおよびカルシウムは両方とも、アルカリ土類金属に属し、身体中の全カルシウムおよびストロンチウムの９９％を超えるものが骨中に局在しているという点で互いに似ている。ストロンチウムは、骨強度と正の関係を有すると同定される唯一の元素である、すなわち、骨の機械的強度は、ストロンチウム含量が増大するにつれ高まる。ストロンチウムの治療効果の可能性は、以前から知られている。しかし、治療の可能性が、正常な、安定なＳｒ^２＋（^８４Ｓｒ、^８６Ｓｒ、^８７Ｓｒおよび^８８Ｓｒ）とその放射性同位元素（^８５Ｓｒ、^８６ｍＳｒ、^８７Ｓｒおよび^８８Ｓｒ）との混同によって見過ごされてきた可能性があるということが文献で示唆されている（非特許文献２）。最近、ストロンチウムの治療効果が脚光を浴びており、研究によって、げっ歯類および骨粗しょう症の患者における骨組織形態計測によって評価されたように、ストロンチウム塩が、ｉｎ ｖｉｔｒｏ（低用量であっても）およびｉｎ ｖｉｖｏで、骨形成を刺激し、骨吸収を阻害することが実証されている。非特許文献３。

ストロンチウムの強力なタンパク同化および再吸収抑制効果は、新規抗骨粗しょう症薬の開発につながった。経口活性薬（有効成分ラネル酸ストロンチウム）は、脊椎骨折の危険を低減し、骨塩密度を高めることがわかっている。非特許文献４。この薬物は、２原子のストロンチウムと結合している１分子のラネル酸からなっている。ラネレート（ｒａｎｅｌａｔｅ）基は、胃腸管中で耐用性良好であるので担体として選択された。腸中で、ストロンチウムイオンは、ラネレート基から放出され、腸粘膜によるストロンチウムの吸収につながる。ストロンチウムは、吸収されると、骨組織に対して強力な親和性を示し、ヒドロキシアパタイトの最外水和層中に組み込まれるようになる。少量が骨結晶に溶け込み、ここで、カルシウム原子を上回るストロンチウムの割合は、１：１０を超えず、その結果、結晶の形成も物理化学的特性もストロンチウムの存在によって変更されない。ラネル酸ストロンチウムは、骨形成を骨吸収から切り離すための第１の医薬であると示唆されている。Ｉｎ ｖｉｔｒｏでは、ラネル酸ストロンチウムは、コラーゲンおよび非コラーゲンタンパク質合成を増大させ、前骨芽細胞分化を増強し、破骨細胞分化を阻害し、破骨細胞機能を低下させ、破骨細胞アポトーシスを増大させる。動物モデルでは、骨密度の増大は、生体力学的骨強度の増大と密接に相関している。ラットモデルでは、ラネル酸ストロンチウムは、骨量を増大させ、微小構造および骨の形状を改善し、骨の抵抗力の増大をもたらす。卵巣切除したラット（骨粗しょう症のモデル）では、ラネル酸ストロンチウムは、骨吸収を低下させるが、高い骨形成は維持する。骨強度の決定要因はすべて、ラネル酸ストロンチウム処理によって正に影響を受ける（骨量、寸法、微小構造および内因的な骨組織品質）。骨の機械的特性の増大は、最大負荷の増大のみならず、本質的に塑性エネルギーの増大による、不具合へのエネルギーの劇的な改善をも特徴とする。非特許文献５；非特許文献６；非特許文献７。ストロンチウムの作用様式は、十分には理解されていないが、骨形成の増大は、１，２５（ＯＨ）２ビタミンＤの循環レベルの変化または副甲状腺ホルモン効果の変化と関連していないと考えられている。ストロンチウムは、多数の閉経後の女性において、すべての部位で抗骨折効力を示した。非特許文献８。

ストロンチウム含有骨セメントの形のストロンチウムの局所的な適用も、その他の研究者によって調べられている。非特許文献９；非特許文献１０。非再吸収性Ｓｒ−ＨＡ骨セメントは、主に、ストロンチウム含有ヒドロキシアパタイト（Ｓｒ−ＨＡ）充填剤およびビスフェノールＡジグリシジルエーテルジメタクリレート（ＢＩＳ−ＧＭＡ）樹脂からなっていた。この材料は、注射によって送達でき、ＰＭＭＡよりも良好な物理的／機械的特性を有するので椎体形成術のために使用できると提案された。ストロンチウム含有ヒドロキシアパタイト（Ｓｒ−ＨＡ）骨セメントは、ｉｎ ｖｉｔｒｏおよびｉｎ ｖｉｖｏの両方で生物活性であると実証された。Ｉｎ−ｖｉｔｒｏでは、細胞接着（ＳａＯＳ−２）および骨ミネラル化にとって、非ドープヒドロキシアパタイト（ｈｙｄｒｏｘｙｐａｔｉｔｅ）（ＨＡ）骨セメントよりも有効であると思われた。Ｉｎ−ｖｉｖｏでは、Ｓｒ−ＨＡ骨セメントは、自然骨と結合した。

両方とも参照により組み込まれる、米国特許第５，７３６，１３２号および同５，５４９，９０４号では、トランスグルタミナーゼ補充接着性組織接着剤は、約７．０〜約８．５のｐＨで、約０．５ｍＭ〜約１００ｍＭの範囲の量のカルシウムおよびストロンチウムなどの二価の金属イオンを含むことが好ましいと言われている。トランスグルタミナーゼ補充接着剤は、関節骨折、軟骨欠損、表面の軟骨欠損、全層欠損、離断性骨軟骨炎、半月板断裂、靱帯裂傷、腱の断裂、筋障害、筋腱間接合部障害、軟骨組織移植、骨移植、靭帯移植、腱移植、軟骨移植、軟骨骨移植、植皮固定および血管、代用血管の補修および微小血管血管吻合における組織の治療において使用してよいと主張されている。これらの特許の第一の焦点は、接着剤へのトランスグルタミナーゼの組み込みである。

対照的に、本発明は、トランスグルタミナーゼを組み込まず、ストロンチウムの局所送達のための、また新規骨の形成を補助するための骨の欠損または空隙中への注射を企図する。文献データによって、元素ストロンチウムは、骨吸収を阻害しながら同時に骨形成を刺激できることが示されている。

Ｐａｒｉｋｈ ＳＮ．２００２年；Ｊ．Ｐｏｓｔｇｒａｄ．Ｍｅｄ．４８：１４２−１４８頁 Ｄａｈｌら、Ｂｏｎｅ；２８（４）４４６〜４５３頁 Ｆｅｒｒａｒｏら、１９８３；Ｃａｌｃｉｆ Ｔｉｓｓｕｅ Ｉｎｔ．３５：２５８−６０ Ｍｅｕｎｉｅｒ ＰＪら、２００４；Ｎ Ｅｎｇｌ Ｊ Ｍｅｄ．３５０（５）：４５９−６８ Ｋｅｎｄｌｅｒ、２００６；Ｃｕｒｒ．Ｏｓｔｅｏｐｏｒ．Ｒｅｐ．４（１）：３４−９ Ｍａｒｉｅ、２００６；Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｒｈｅｕｍ．１８Ｓｕｐｐｌｌ：Ｓ１１−５ Ａｍｍａｎｎ、２００６、Ｂｏｎｅ．３８（２付録１）：１５−８ Ｃｌｏｓｅら、２００６；Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎ Ｐｈａｒｍａｃｏｔｈｅｒ７（１２）：１６０３−１５ Ｗｏｎｇ，Ｃｈｉ−Ｔａｋ、２００４、「Ｏｓｔｅｏｃｏｎｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｏｓｓｅｏｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｓｔｒｏｎｔｉｕｍ−ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ ｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅ ｂｉｏａｃｔｉｖｅ ｂｏｎｅ ｃｅｍｅｎｔ：ｉｎ ｖｉｔｒｏ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｖｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓ． Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒ： Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇ」（Ｐｏｋｆｕｌａｍ Ｒｏａｄ、Ｈｏｎｇ Ｋｏｎｇ） Ｚｈａｏら、２００４；Ｊ Ｂｉｏｍｅｄ Ｍａｔｅｒ Ｒｅｓ Ｂ Ａｐｐｌ Ｂｉｏｍａｔｅｒ．６９（１）：７９−８６

本発明は、新規骨の形成を補助するために、骨の欠損もしくは空隙中、または骨梁組織の髄腔中（ここで、一時的に骨髄と置き換わる）に注射できる組成物を提供する。データによって、元素ストロンチウムは、同時に、骨吸収を阻害しながら、骨形成を刺激することができることが示されている。
一態様では、本発明は、骨治癒および骨成長において使用するための組成物を提供し、ここで、組成物は、フィブリン、トロンビンおよびストロンチウム含有化合物を含む。本組成物は、カルシウム含有化合物をさらに含んでなり得る。組成物は、注射用ゲル、注射用パテ、注射用ペーストまたは注射用液体形態の形態である注射用組成物であることが好ましい。

その他の実施形態では、組成物は、１種以上の可塑剤を含んでなり得る。特定の実施形態では、可塑剤は、ヨード含有化合物である。本明細書において可塑剤として使用するための例示的ヨード含有化合物として、ジアトリゾ酸、イオデコール、イオジキサノール、イオフラトール、イオグラミド、イオヘキソール、イオメプロール、イオパミドール、イオプロミド、イオトロール、イオベルソール、イオキサグル酸およびメトリザミドおよびそれらの混合物および多価アルコールからなる群から選択される化合物が挙げられるが、これらに限定されるわけではない。その他の実施形態では、可塑剤は、ポリエチレングリコール、多価アルコール、グリセロールまたは単糖、二糖、三糖、多糖からなる群から選択される糖およびそれらの組み合わせである。その他の実施形態では、可塑化効果は、とりわけ、塩化ナトリウムおよびカオトロピック剤などの低分子量化合物の組成物の調整によって達成される。

本組成物は、ゲルまたは液体形態であり得る。特定の態様では、本組成物は、ゲル化相に先立って、またはその間に、液体またはゲルとして送達されてもよく、または予め形成されたゲルとして組織欠損中に送達されてもよい。

本発明のその他の態様では、組成物は、フィブロネクチンなどのマトリックスタンパク質、細胞結合性タンパク質または血液凝固因子ＸＩＩＩおよびプロテアーゼなどの血漿由来タンパク質からなる群から選択される１種以上の細胞外タンパク質を含む。

さらにその他の実施形態では、組成物は、プロタミン、ヘビ毒、トランスグルタミナーゼ、ＦＸＩＩａまたは生理学的に許容されるアルカリバッファー系などの凝固誘導物質をさらに含んでなり得る。

特定の実施形態では、本組成物は、治癒過程の間に、再吸収され、組織と置換されるようなものである。

本発明の組成物に用いられるストロンチウム含有化合物は、塩化ストロンチウム、ラネル酸ストロンチウム、酢酸ストロンチウム、グルタミン酸ストロンチウム、アスパラギン酸ストロンチウム、マロン酸ストロンチウム、マレイン酸ストロンチウム、アスコルビン酸ストロンチウム、トレオン酸ストロンチウム、乳酸ストロンチウム、リン酸ストロンチウム、ストロンチウムアパタイト、ピルビン酸ストロンチウム、ストロンチウムα−ケトグルタル酸およびコハク酸ストロンチウムからなる群から選択されるものであり得る。これらは、単に例示的ストロンチウム含有化合物であり、ストロンチウムを含むその他の化合物を、本発明の組成物に容易に用いることができる。

組成物は、群カルシウム擬態薬、オステオカルシン、Ｌ−アルギニンなどのアミノ酸およびアルギノミメティクス（ａｒｇｉｎｏｍｉｍｅｔｉｃｓ）およびアルギニン類似体からなる群から選択されるストロンチウムコリガンドをさらに含むものであり得る。

本明細書に記載される組成物では、ストロンチウム含有化合物および／またはカルシウム含有化合物は、（微）粒子または固体形態であり得る。例示的実施形態では、ストロンチウム含有またはカルシウム含有（微）粒子形態は、１００ナノメートル〜５００μｍの範囲の粒径の大きさを有する。その他の実施形態では、ストロンチウム含有またはカルシウム含有成分は、例えば、０．５〜５０ミリメートルの範囲の寸法を有する多孔性または非多孔性固体の形態をとり得る。粒径は、０．５〜５ミリメートルの範囲にあることが好ましい。

特定の実施形態では、カルシウム含有化合物は、リン酸カルシウムである。リン酸カルシウムは、リン酸三カルシウム、α−リン酸三カルシウム、β−リン酸三カルシウム、リン酸カルシウムの多形、ヒドロキシアパタイト、炭酸カルシウム、硫酸カルシウムおよびそれらの組み合わせからなる群から選択され得る。

特定の実施形態では、カルシウムの一部がストロンチウムで置換され、カルシウムおよびストロンチウム塩の混合物を提供することが企図される。

特定の実施形態では、カルシウム塩に対するストロンチウム塩の割合すなわちパーセンテージは、．２５％〜１００％の範囲である。特定の実施形態では、本発明の組成物は、骨形態形成タンパク質、副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）、カルシトニン、ビスホスホネート、上皮成長因子、インスリン様増殖因子およびＴＧＦ成長因子からなる群から選択されるタンパク質またはタンパク質の組み合わせをさらに含んでなり得る。骨成長促進または骨増強効果を有する任意のタンパク質を使用してよい。さらにその他の実施形態では、ストロンチウム含有化合物は、ストロンチウムを生物活性ガラスに加え、ストロンチウム含有生物活性ガラス物質を製造することによって作製する。

特定のその他の実施形態では、本組成物は、組成物のゲル化が、種々の成分の混合時に起こるものである。

好ましい実施形態では、本発明の方法は、生存被験体において、前記被験体の海綿骨に、本発明のストロンチウム含有組成物を含む組成物を注入することによって、罹患骨、傷害を受けた骨または欠損した骨を治療することを含む。被験体の海綿骨への、このような組成物の注入は、ストロンチウムを含まない同様の組成物の適用で観察されたものより速い速度の治癒をもたらす点で有利である。

また、本明細書において、
（ａ）骨またはその一部を機械的に固定するステップ、および（ｂ）欠損を、前記欠損の修復と因果関係のある量の本発明の組成物で埋めるステップを含む、欠損を有する骨を修復する方法も考慮される。例示的実施形態では、欠損は、骨折であり、前記修復は、前記骨折の骨治癒である。本発明の特定の態様では、前記組成物の適用は、前記組成物の適用の不在下で観察されるものよりも速い治癒速度を引き起こす。前記組成物の適用は、ストロンチウムを含有しない同様の組成物の適用で観察されるものよりも速い治癒速度を引き起こすことが好ましい。

また、前記欠損部位を本発明の組成物と接触させるステップを含む、骨欠損の部位で新規骨成長を促進する方法も考慮される。前記組成物中のストロンチウムの存在下では、ストロンチウムを含有しない同様の組成物の存在下で見られる骨成長と比較して、前記骨成長速度がより速いことが好ましい。
本発明は、例えば以下の項目を提供する。
（項目１）
骨治癒または骨成長に使用するための、フィブリン、トロンビンおよびストロンチウム含有化合物を含む組成物。
（項目２）
ゲル、パテ、ペーストまたは液体形態である、項目１に記載の組成物。
（項目３）
可塑剤をさらに含む、項目１または２に記載の組成物。
（項目４）
前記可塑剤がヨード含有化合物である、項目３に記載の組成物。
（項目５）
ヨード含有化合物が、ジアトリゾ酸、イオデコール、イオジキサノール、イオフラトール、イオグラミド、イオヘキソール、イオメプロール、イオパミドール、イオプロミド、イオトロール、イオベルソール、イオキサグル酸およびメトリザミドならびにそれらの混合物および多価アルコールからなる群から選択される、項目４に記載の組成物。
（項目６）
ゲル化相に先立って、またはその間に、液体、ペーストもしくはゲルとして、または予め形成されたゲル、ペーストもしくはパテとして組織欠損に送達され得る、項目１、２、３、４または５に記載の組成物。
（項目７）
フィブロネクチンなどの細胞外マトリックスタンパク質、細胞結合性タンパク質、血液凝固因子ＸＩＩＩなどの血漿由来タンパク質、プロテアーゼおよびプロテアーゼ阻害剤からなる群から選択される、１種以上の細胞外タンパク質を含む、項目１、２、３、４または６に記載の組成物。
（項目８）
治癒過程の間に、再吸収され、組織と置換される、項目１、２、３、４、６または７に記載の組成物。
（項目９）
凝固誘導剤、例えば、プロタミン、ヘビ毒、トランスグルタミナーゼ、ＦＸＩＩａ、または生理学的に許容されるアルカリバッファー系をさらに含む、項目１、２、３、４、５、６、７または８に記載の組成物。
（項目１０）
前記ストロンチウム含有化合物が、可溶性微粒子、顆粒状の形態または固体形態である、項目１または２に記載の組成物。
（項目１１）
前記ストロンチウム含有化合物が、ストロンチウムをカルシウム含有化合物に加えて、カルシウムおよびストロンチウム含有塩を含む物質を製造するステップによって作製される、項目１０に記載の組成物。
（項目１２）
前記カルシウム含有化合物が、リン酸カルシウムである、項目１１に記載の組成物。
（項目１３）
前記リン酸カルシウムが、リン酸三カルシウム、α−リン酸三カルシウム、β−リン酸三カルシウム、リン酸カルシウムの多形、ヒドロキシアパタイト、炭酸カルシウム、硫酸カルシウムおよびそれらの組み合わせからなる群から選択される、項目１２に記載の組成物。
（項目１４）
ストロンチウム含有またはカルシウム含有化合物が、１００ナノメートル〜５０ミリメートルの範囲の粒子寸法を有する、項目１１に記載の組成物。
（項目１５）
ストロンチウム含有またはカルシウム含有化合物が、０．５〜５ミリメートルの粒子寸法を有する、項目１１に記載の組成物。
（項目１６）
前記組成物中のカルシウム塩に対するストロンチウム塩のパーセンテージが、０．２５％〜１００％ストロンチウム含有塩の範囲である、項目１１に記載の組成物。
（項目１７）
ストロンチウム含有化合物が、ストロンチウムを生物活性ガラス中に加え、ストロンチウム含有生物活性ガラス物質を製造するステップによって作製される、項目１０に記載の組成物。
（項目１８）
ストロンチウム含有化合物が、塩化ストロンチウム、ラネル酸ストロンチウム、酢酸ストロンチウム、グルタミン酸ストロンチウム、アスパラギン酸ストロンチウム、マロン酸ストロンチウム、マレイン酸ストロンチウム、アスコルビン酸ストロンチウム、トレオン酸ストロンチウム、乳酸ストロンチウム、リン酸ストロンチウム、ストロンチウムアパタイト、ピルビン酸ストロンチウム、α−ケトグルタル酸ストロンチウムおよびコハク酸ストロンチウムからなる群から選択される、項目１、２、３、６、８、１０、１１または１７に記載の組成物。
（項目１９）
カルシウム擬態薬、オステオカルシン、Ｌ−アルギニンなどのアミノ酸およびアルギノミメティクスおよびアルギニン類似体からなる群から選択されるストロンチウムコリガンドをさらに含む、項目１、２、３、６、８、１０、１１、１７または１８に記載の組成物。
（項目２０）
前記可塑剤が、ポリエチレングリコール、多価アルコール、グリセロールまたは単糖、二糖、三糖、多糖からなる群から選択される糖およびそれらの組み合わせである、項目３に記載の組成物。
（項目２１）
骨形態形成タンパク質、副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）、カルシトニン、ビスホスホネート、上皮成長因子、インスリン様増殖因子およびＴＧＦ増殖因子からなる群から選択されるタンパク質をさらに含む、項目１、２、３、４、５、６、９、１０、１１、１２、１３、１５、１６、１７、１８、１９または２０に記載の組成物。
（項目２２）
組成物のゲル化が、種々の成分の混合時に起こる、項目１に記載の組成物。
（項目２３）
注射可能な組成物である、前記の項目のいずれかに記載の組成物。
（項目２４）
生存被験体において、罹患骨または、損傷を受けた骨または欠損した骨を治療する方法であって、項目２３に記載の組成物を含む組成物を前記被験体の海綿骨中に注入するステップを含む方法。
（項目２５）
前記組成物を前記被験体の海綿骨に注入することが、ストロンチウムを含まない同様の組成物の適用で観察されるものよりもより速い治癒の速度を生じる、項目２４に記載の方法。
（項目２６）
欠損を有する骨を修復する方法であって、（ａ）骨またはその一部を機械的に固定するステップ、および（ｂ）欠損を、前記欠損の修復に効果をもたらす量の、項目１から２３のいずれかに記載の組成物で埋めるステップを含む方法。
（項目２７）
前記欠損が、骨折であり、前記修復が、前記骨折の骨治癒である、項目２６に記載の方法。
（項目２８）
前記組成物の適用が、前記組成物の適用の不在下で観察されるものよりもより速い治癒の速度を生じる、項目２７に記載の方法。
（項目２９）
前記組成物の適用が、ストロンチウムを含まない同様の組成物の適用で観察されるものよりもより速い治癒の速度を生じる、項目２７に記載の方法。
（項目３０）
前記骨が、大腿骨、脛骨、上腕骨および橈骨からなる群から選択される長骨である、項目２５に記載の方法。
（項目３１）
骨欠損の部位で新規骨成長を促進する方法であって、前記欠損の部位を、項目１から２３のいずれかに記載の組成物と接触させるステップを含む方法。
（項目３２）
前記骨成長の速度が、ストロンチウムを含まない同様の組成物の存在下で見られる骨成長と比較して、前記組成物中のストロンチウムの存在下でより速い、項目３１に記載の方法。

ストロンチウムを含有する血餅上で増殖させたヒト骨芽細胞様細胞（ＳａＯＳ−２）の細胞増殖を示す図である。用いられる記号は、Ｃａ／Ｓｒである。引用符で囲まれた値は、最終血餅中の濃度である。最終血餅中のこれらの濃度を達成するために、バッファー中の濃度は倍になっている。 ストロンチウムを含有する血餅上で増殖させた、ヒト骨芽細胞様細胞（ＳａＯＳ−２）のＤＮＡアッセイを示す図である。用いられる記号は、Ｃａ／Ｓｒである。引用符で囲まれた値は、バッファー中の濃度である。この値は最終血餅中では半分になる。 ストロンチウムを含有する血餅上で増殖させたヒト骨芽細胞様細胞（ＳａＯＳ−２）の３０分にわたるアルカリホスファターゼ生成を示す図である。引用符で囲まれた値は、最終血餅中の濃度である。これを達成するために、バッファー中の濃度は倍になっている。 トロンビンバッファーが、カルシウム、カルシウム／ストロンチウム混合物またはストロンチウム単独のいずれかからなる場合の血餅の比濁法分析を示す図である。用いられる記号は、Ｃａ／Ｓｒである。引用符で囲まれた値は、バッファー中の濃度である。この値は最終血餅中では半分になる。 １２．５ｍＭ ＳｒまたはＣａを含有する培地で増殖させた血餅の生存パーセンテージ（ＭＴＳ増殖アッセイによって測定されるような）を示す図である。 フィブリン血餅およびストロンチウム粒子を含有するフィブリン血餅上で培養されたＮＨＯｓｔ細胞の染色を示す図である。フィブリン血餅上（上部パネル）またはストロンチウム粒子を含有するフィブリン血餅上（下部パネル）で１４日間培養されたＮＨＯｓｔ細胞の生存（左パネル）死滅（右パネル）染色。 ＮＨＯｓｔ細胞とともに培養されたフィブリン血餅の横断図を示す図である。細胞染色緑色（生存）および赤色（死滅）。上部フィブリン血餅。下部粒子を含有するフィブリン血餅。 完全に閉じられたドリルホール（両側が閉じられている）のグラフ表示を示す図である。 物質中フィブリンの存在下での、ウサギ大腿骨顆部のμＣＴを示す図である。 骨形成のグラフ表示を示す図である（評価：１：低；２：中程度；３：高骨形成）。 ８０％Ｓｒ物質を含むウサギ大腿骨顆部のμＣＴを示す図である。 フィブリンで治療されたウサギ大腿骨顆部欠損の組織学的染色薄片を示す図である。 フィブリン血餅中Ｓｒ８０％で治療されたウサギ大腿骨顆部欠損の組織学的染色薄片を示す図である。 ＰＴＨの生物活性に対するＳｒＣｌ_２の影響を示す図である。

本発明は、骨治癒および骨再生において使用するための、トロンビン、フィブリン組成物および／または不溶性または可溶性型のストロンチウムおよび／またはストロンチウムおよび／またはフィブリン可塑剤を含む場合も、含まない場合もある無機粒子に関する。トロンビンまたは無機粒子含量のいずれかの量を変更することによって、適用または標的組織が決定するようにゲル化期間を制御することが可能となる。フィブリン可塑剤または修飾剤を用いて、製剤の機械的特性を増強すること、または凝固時間をさらに遅延することができる。可塑剤の例として、ヨウ素含有造影剤、例えば、ジアトリゾ酸、イオデコール（ｉｏｄｅｃｏｌ）、イオジキサノール、イオフラトール（ｉｏｆｒａｔｏｌ）、イオグラミド（ｉｏｇｕｌａｍｉｄｅ）、イオヘキソール、イオメプロール、イオパミドール、イオプロミド、イオトロール（ｉｏｔｒｏｌ）、イオベルソール、イオキサグル酸およびメトリザミドおよびそれらの混合物および多価アルコールが挙げられる。

本組成物は、最小に侵襲的な技術を用いて、ゲル化相に先立って、またはその間に、液体として送達されてもよく、または予め形成されたゲルとして組織欠損中に送達されてもよい。本製剤は、治癒過程の間に、再吸収され、組織と置換されることが企図される。

フィブリノゲン溶液は、５〜２００ｍｇ／ｍｌの範囲の、好ましくは、範囲５０〜１００ｍｇ／ｍｌにあるフィブリノゲンを含む水溶液である。フィブリノゲン溶液はまた、細胞外マトリックスタンパク質（例えば、フィブロネクチン、細胞結合性タンパク質、その他の血漿由来タンパク質［例えば、血液凝固因子ＸＩＩＩおよびプロテアーゼ］を含み得る。 フィブリノゲン溶液はまた、フィブリン単量体、誘導体およびフィブリンＩを含み得る。トロンビン成分は、当技術分野で公知のさらなる化合物ならびにストロンチウム化合物をさらに含んでなり得る。用いられるトロンビンの量に関して具体的な制限はない。本発明の一実施例では、前記トロンビン成分（ｂ）中のトロンビンの量は、最終の凝固組成物中で、少なくとも約１ＩＵ／ｍｌ、最大３０ＩＵ／ｍｌの量であるようなものである。

トロンビンの代わりに、またはトロンビンに加えて、本発明は、成分（ａ）のためのその他のゲル化誘導または凝固誘導剤、例えば、プロタミン、ヘビ毒、トランスグルタミナーゼ、ＦＸＩＩａ、生理学的に許容されるアルカリバッファー系。

トロンビンバッファーは、その他の物質の中でも、二価のカチオンを含有する水溶液である。バッファー中の二価のカチオンの濃度は、５〜５０ｍＭの範囲であり得る。二価のカチオンは、群カルシウムおよびストロンチウムから選択されることが好ましく、比は、０：１〜０．９７５：０．０２５であり得る。二価のストロンチウムイオンは、塩化ストロンチウムまたは任意のその他の水溶性ストロンチウム塩、例えば、ラネル酸ストロンチウム、グルタミン酸ストロンチウム、アスパラギン酸ストロンチウム、マロン酸ストロンチウム、マレイン酸ストロンチウム、アスコルビン酸ストロンチウム、トレオン酸ストロンチウム、乳酸ストロンチウム、ピルビン酸ストロンチウム、ストロンチウムα−ケトグルタル酸またはコハク酸ストロンチウムの形で加えることができる。トロンビンバッファーはまた、ストロンチウムの新規に同定された分子標的（Ｇ−タンパク質共役受容体またはカルシウム感知受容体、Ｐｉら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２００５）のためのコリガンドも含み得る。コリガンドは、群カルシウム擬態薬、オステオカルシンおよびアミノ酸から選択される。Ｌ−アルギニン、アルギノミメティクス（ａｒｇｉｎｏｍｉｍｅｔｉｃｓ）またはアルギニン類似体が好ましい。ストロンチウム含有トロンビンバッファーはまた、ストロンチウム含有無機粒子と併用してもよい
粒子成分は、ナノ〜３０００μｍ未満の範囲の粒径直径を有し、適用時には不溶性でなくてはならない。粒径は、１００ナノメートル〜５０ミリメートルの間が好ましく、０．５ｍｍ〜５０ｍｍの間がより好ましい。粒子は、適用時に不溶性である任意のストロンチウムのキレートまたは同様に適用時に不溶性であるストロンチウム置換カルシウム塩であり得る。置換のためのカルシウム塩は、リン酸カルシウム、リン酸三カルシウム、α−リン酸三カルシウム、β−リン酸三カルシウム、リン酸カルシウムの多形、ヒドロキシアパタイト、炭酸カルシウム、硫酸カルシウムおよびそれらの組み合わせからなる群から選択され得る。粒子のカルシウムのストロンチウム置換は、０．２５〜１００％の範囲であり得る。最終ゲルを得るために混合することは、温度１８〜３７℃の範囲にわたって、好ましくは、３７℃で達成できる。

フィブリノゲン溶液は、５〜２００ｍｇ／ｍｌの範囲の、好ましくは、５０〜１００ｍｇ／ｍｌの範囲のフィブリノゲンを含む水溶液である。フィブリノゲン溶液はまた、フィブリン単量体、誘導体およびフィブリンＩを含み得る。フィブリノゲン溶液はまた、細胞外マトリックスタンパク質、例えば、フィブロネクチン、細胞結合性タンパク質およびその他の血漿由来タンパク質、例えば、血液凝固因子ＸＩＩＩ（ＦＸＩＩＩ）およびプロテアーゼも含み得る。

トロンビン溶液は、最終凝固（ゲル化）組成物において０．１ＩＵ／ｍｌの最小最終濃度を有する水溶液である。この溶液はまた、緩衝され、アミノ酸、タンパク質または添加剤（例えば、Ｌ−アルギニン、マンニトールおよびアルブミン）を含み得る。

トロンビンバッファーは、その他の物質の中でも、二価のカチオンを含有する水溶液である。バッファー中の二価のカチオンの濃度は、５〜５０ｍＭの範囲であり得る。二価のカチオンは、群カルシウムおよびストロンチウムならびに分子比（１：０〜０．９７５：０．０２５のカルシウム対ストロンチウムであり得る）から選択されることが好ましい。

粒子は、投与時に不溶性である任意のストロンチウムのキレートまたは同様に適用時に不溶性であるストロンチウム置換カルシウム塩であり得る。置換のためのカルシウム塩は、リン酸カルシウム、リン酸三カルシウム、α−リン酸三カルシウム、β−リン酸三カルシウム、リン酸カルシウムの多形、ヒドロキシアパタイト、炭酸カルシウム、硫酸カルシウムおよびそれらの組み合わせであり得る。粒子のストロンチウム置換は、置換された粒子の割合として０．２５〜１００％の範囲であり得る。

組成物中の粒子含量は、凝固可能タンパク質の２〜１００％、好ましくは、３０〜５０％（重量／容積）の範囲である。粒子成分は、適用が求めるように、サブミクロン〜３０００μｍ未満の範囲の粒径直径を有する。最終ゲルを得るための均質化は、温度１８〜３７℃の範囲にわたって、好ましくは、３７℃で達成できる。

骨修復を補助するための本発明の組成物の効力は、生物活性分子を組み込むことによってさらに改良できる。これらは、マトリックスと化学的に結合させてもよいし、粒子成分上に吸着されてもよく、または遊離分子として、もしくは薬物粉末のいずれかとして、フィブリンマトリックス中に捕捉されてもよい。これらの分子を用いて、骨代謝を刺激できる（同化作用およびまたは異化作用）。同定されている適切な分子として、骨形態形成タンパク質（ＢＭＰ）、副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）、カルシトニン、ビスホスホネート、上皮成長因子、インスリン様増殖因子およびＴＧＦスーパーファミリー増殖因子が挙げられる。適した分子はまた、骨同化作用／異化作用周期と関連していないが、骨修復／リモデリングと並行して起こる生理学的過程と関連しているその他の因子を含んでもよく、例えば、血管新生刺激因子（血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）および血小板由来増殖因子［ＰＤＧＦ］も組み込んでもよい。これは、ストロンチウムの作用様式として特に注目され、タンパク同化剤１，２５（ＯＨ）_２ビタミンＤおよび副甲状腺と区別されると考えられる。

可塑剤はまた、フィブリンまたはトロンビンと混合して、製剤の機械的特性を増強することができ、または凝固時間をさらに遅延することができる。可塑剤の例は、水溶性ヨウ素含有造影剤、ポリエチレングリコール、グリセロールなどの多価アルコール、単糖、二糖、三糖および多糖ならびに任意のそれらの組み合わせからなる群から選択される。適したヨウ素含有造影剤は、参照により本明細書に組み込まれる米国特許出願番号ＵＳ２００５０１１９７４６（ＬｉｄｇｒｅｎおよびＮｉｌｓｏｎ、２００４）に詳述されており、その例として、ジアトリゾ酸（メグルミン）、イオデコール（ｉｏｄｅｃｏｌ）、イオジキサノール、イオフラトール（ｉｏｆｒａｔｏｌ）、イオグラミド（ｉｏｇｕｌａｍｉｄｅ）、イオヘキソール、イオメプロール、イオパミドール、イオプロミド、イオトロール（ｉｏｔｒｏｌ）、イオベルソール、イオキサグル酸およびメトリザミドがある。造影剤は、非イオン性で、低浸透圧を有し、フィブリン集合が生じるのを可能にし、例えば、イオジキサノールが好ましい。

本発明の組成物は、有用な骨治癒法において、このような方法で使用するためのキットにおいて使用してよい。組成物は、骨成長を促進するために、または特に、長骨における治癒のために使用してよいということが企図される。具体的には、本発明は、トロンビン、フィブリンおよびストロンチウムを含む骨修復組成物に関する。組成物中のストロンチウムの存在は、ストロンチウムを含まないような組成物と比較して、骨治癒およびまたは骨生成の増強につながる。

本発明の組成物を、長骨、例えば、大腿骨、脛骨、上腕骨、橈尺骨などの修復および再生に使用してよい。

本発明の組成物を用いることで、欠損を有する骨に、機械的、構築的および構造的能力を回復させるかまたは部分的に回復させ、一方で、骨治癒および再生を支配する生物学的過程の適当な基質として役立ち得る構造的表面積を提供することが可能となる。

実施例において示されるように、本発明の組成物は、骨修復に関与する、細胞性および生物学的過程を加速する。

本明細書において以下に用いられる場合、語句「長骨」とは、直径よりも少なくとも２倍長い長さを有する骨を指す。通常、語句「長骨」とは、四肢の骨、すなわち、脛骨、腓骨、大腿骨、上腕骨、橈尺骨、手根骨、中手骨、指節骨、足根骨および中足骨を指す。より具体的には、語句「長骨」とは、本明細書において用いる場合、四肢の４種の主要な骨、すなわち、脛骨、大腿骨、上腕骨および橈骨を指す。

本発明の組成物の使用によって治療され得る「骨欠損」は、骨中の任意の異常、例えば、空隙、空洞、立体構造的不連続、骨折または傷害、骨切断、手術、骨折、奇形の治癒、癒着不能骨折、骨格奇形、加齢もしくは疾患によって生じた任意の構造の変化であり得るが、これらに限定されるわけではない。本発明の組成物は、大きな治療可能性を提供する。海綿骨が、例えば、骨粗しょう症、無腐性壊死または癌のために病気になると、周囲の皮質骨は、より圧迫骨折または圧潰しやすくなる。これは、海綿骨がもはや、周囲の皮質骨に内部の支持体を提供しないためである。本発明の組成物は、骨粗しょう症、骨壊死または無腐性壊死ならびに罹患骨、不十分にしか治癒していない骨または重篤な外傷によって骨折した骨を含むその他の骨疾患などの状態における骨の強化において使用できる。

本発明の別の態様は、欠損を有する骨を修復するためのキットを提供する。本キットは、骨またはその一部を固定するための機械的に固定する装置および本発明の組成物を含む。固定装置の例として、これらに限定されるわけではないが、フランジ、ロッド、バー、ワイヤ、ステープル、スクリュー、縫合ならびに種々のギプス、スリーブなどが挙げられ、これらは通常、外部の固定装置である。したがって、本発明のキットは、外部の機械的に固定する装置を含むことが好ましい。

本発明の別の態様では、骨欠損、例えば、骨折、空洞空隙などを治療する方法が提供され、それらを本発明の組成物と接触させることを含む。いくつかの実施形態では、本方法は、欠損を本発明の組成物と接触させるステップの前または後に、骨またはその一部を機械的に固定することを含み得る。

本発明の組成物は、骨性（骨）欠損もしくは空隙中に、または骨梁組織の髄腔中（ここで、組成物が一時的に骨髄と置き換わる）に送達される注射用組成物として、および／または新規骨の形成における補助として使用され得ることが有利である。本組成物は、当業者に周知の技術を用いて、骨梁組織または任意のその他の骨組織中に注入してもよい。例示的なこのような技術およびこのような技術を実施するための装置はとりわけ、例えば、米国特許公開番号第２００８００６５０９１号、同２００８００５８８２８号、同２００７００７３３０７号、米国特許第４，９６９，８８８号および同５，１０８，４０４号において論じられている（これらの特許文書の各々は、参照により本明細書に組み込まれる）。通常、組成物を骨に注入するために、家庭用コーキングゴムと類似の注入装置が用いられる。通常の骨セメント注入装置は、ピストル型の本体を有し、これが、骨セメントを含有するカートリッジを支持する。引き金が、ばねで留められたラムを作動させ、これが、一回分の容積の粘性状態の骨セメントを、適切なノズルを通して、治療の標的とされる骨の内部中に押し込む。米国特許第４，９６９，８８８号および同５，１０８，４０４号の教示によれば、空洞はまず、骨の内側の海綿骨をぎっしり詰めることによって形成され得、この中に骨セメントが注入される。

本発明の注射用組成物にＳｒを組み込むことの追加利点は、放射性乳白剤としてのストロンチウムの既知特性による蛍光透視などの技術を用いて、送達および治癒過程がモニターされることを可能にすることである。そのようなものとして、本発明の組成物におけるＳｒの使用は、単に、画像化機能だけではなく、治療機能と診断機能の両方を提供する。

本発明の組成物は、注射用ゲル、注射用ペースト、ペースト、パテの形、または再水和可能な凍結乾燥形で使用してよい。本明細書において用いる場合、用語「ゲル」とは、ゼリー状の、粘度の高い、柔らかい、部分的に液体の物質を指す。本発明のゲルは、１３ゲージのシリンジニードルを通して押し出すことができる。本出願において使用する場合「ペースト」とは、液体と固体の間の稠度を有する、柔らかい、湿性の物質を指す。本発明のペーストは、パテほど固体ではなく、ゲルよりは固体であり、いくつかの実施形態では、注射可能であり得る。

用語「パテ」とは、本発明の練り粉様／粘土様組織修復組成物を指す。この物質は、適用時に、撹拌し、または練って、前記稠度の練り粉とし、埋め込み部位のものに密接に近似する形に成型してもよい。

「注射用」とは、本発明の、圧力（シリンジを用いる導入によるような）下で埋め込み部位に導入される能力を指す。本発明の注射用組成物は、例えば、ｉｎ ｖｉｖｏで要素の間に、または限定空間（すなわち、とりわけ骨片の間または人工補装具と骨の間の界面中）に導入してもよい。

「シリンジ」とは、本発明の流動性組織修復組成物、例えば、中でも特定のゲルおよびペーストを注入または引き抜くために使用してよい任意の装置を指す。

本組成物は、被験体の皮質骨または海綿骨中に注入される（被験体は、ヒト、サル、ヒツジ、ウシ、ウマ、ブタ被験体であることが好ましい）。本出願において使用する場合「皮質骨」とは、髄腔を囲む骨の骨幹部の緻密骨を指す。皮質骨は、膠原線維の三重らせんからなる高密度構造であり、ヒドロキシアパタイトで強化されている。皮質骨は、化合物構造であり、ヒト身体の長骨の主耐荷重成分である。ヒドロキシアパタイト成分は、骨の高圧縮強度に関与し、一方で、膠原線維成分は、ねじれ力および張力の一部に貢献している。本発明の組成物は、このような骨の一部に導入し、有益な骨治癒または骨増強効果を付与してもよい。

骨梁は、皮質骨と同様の組成物のものであり、「海綿骨」の主な構造成分であり、成体長骨の骨幹部の層板骨とは異なって組織された、ミネラル化された規則どおりに並んだ平行な膠原線維からなる成体骨を指す。海綿骨は、通常、皮質骨によって囲まれた長骨の末端に見られる。海綿骨は、格子を形成する骨片を有し、間隙は骨髄で埋まっている。骨梁または海綿骨（ｓｐｏｎｇｙ ｂｏｎｅ）と呼ばれることもある。好ましい実施形態では、本発明の組成物は、骨梁中に送達される。

本発明の骨を固定する方法はまた、骨固定または本発明の組成物との接触に先立って、欠損を再形成するステップを含み得る。このような再形成または骨再調整は、例えば、ドリルまたはグラインダーまたは欠損を再形成するのに利用可能な任意のその他の装置を用いて実施してもよい。

骨を固定化するために用いられる装置は、修復されるべき欠損の種類ならびに骨の種類および配置に応じて変わる。通常、固定装置は、外部固定装置である。例えば、ギプスなどの外部固定装置が好ましく、本発明の組成物の注入に伴って本発明の方法において利用される唯一の固定装置である。しかし、いくつかの状況では、より侵襲的外科処置を使用することが必要となる可能性があり、内部固定装置を用いることを同様に利用してよい。

修復はモニターすることができ、やがて、骨を固定するために用いられる装置は除去できる。欠損の部位での骨再生は、手術直後および手術後所与の時間間隔でとられた軟組織Ｘ線（７．５ｍＡ；０．５秒）によって評価できる。試験動物における骨再生はまた、全般的な形態を評価すること、コンピュータ断層撮影（ＣＴ）スキャン（６５〜８０ｋＶ；２０秒）および三次元（３−Ｄ）ＣＴスキャン（Ｍａｒｃｏｎｉ、Ｍ．ｔｉｍｅｓ．８，０００）によって、試験の終了時に調べることができる。組織学的研究を実施して、組織の骨染色を調べることができる。

本発明の方法では、組成物はまた、骨修復において使用できる細胞、例えば、骨細胞前駆細胞などと組み合わせることができる。当技術分野では周知である骨細胞前駆細胞として、骨形成細胞を特徴とする、骨髄間質細胞の造骨性亜集団が挙げられる。本発明の方法によって利用される骨細胞前駆細胞として、造骨性骨形成細胞自体および／または骨細胞前駆細胞を形成する胚性幹細胞を挙げることができる。骨細胞前駆細胞は、公知の手順を用いて単離できる。このような細胞は、自己記述的供給源のものであることが好ましく、例えば、ヒト胚性幹細胞、マウスまたはヒト骨細胞前駆細胞、マウスまたはヒト骨細胞前駆骨髄由来細胞、マウスまたはヒト骨細胞前駆胚由来細胞およびマウスまたはヒト胚細胞が挙げられる。これらの細胞はさらに、本明細書において上記で定義される、ＲｏｂｉｎｓｏｎおよびＮｅｖｏ（２００１）によって記載されるように、増殖因子を分泌する細胞として働き得る。

本発明の組成物はまた、種々の活性治療薬をさらに含んでもよく、その例として、骨成長促進剤、骨細胞前駆細胞またはそれらの組み合わせが挙げられる。組成物はまた、少なくとも１種の薬剤、例えば、ビタミン、抗生物質、抗炎症薬などを含み得る。

特定の好ましい実施形態では、ストロンチウム置換カルシウム化合物を調製するために、ストロンチウムが、当業者に公知の技術を用いてカルシウム含有塩に組み込まれる。さらに、ストロンチウムは、従来組織修復において使用される生物活性ガラス組み込んでもよい。「生物活性ガラス」とは、生物活性の特徴を示す任意のガラスであり、内因的に接着性ではなく、通常は、適切なｉｎ ｖｉｖｏまたは擬似体液やｔｒｉｓ−ヒドロキシメチルアミノメタンバッファーなどのｉｎ ｖｉｔｒｏ環境で曝露されると、硬組織および軟組織の両方と接着性結合を形成できる非晶質固体である。接着性結合は、バルクバイオガラス材料からのイオン種の放出によって生物活性ガラス上にヒドロキシ炭酸アパタイトの表層を作成することによって達成される。手術および整形外科的処置、ならびに口腔外科の分野では、生物活性ガラスの多数の応用があり、例えば、欧州特許第１４０５６４７号および欧州特許出願第１６５５０４２号に、ならびに国際出願ＷＯ９６／２１６２８、ＷＯ９１／１７７７７、ＷＯ９１／１２０３２および米国特許公開番号第２００８００６６４９５号（各々、参照により本明細書に組み込まれる）に記載されている。

本発明の一実施形態では、ストロンチウム含有化合物は、トロンビン希釈バッファー中の二価のイオンとして用いられる。トロンビン溶液は、希釈バッファーを用いて調製する。フィブリノゲン溶液およびストロンチウム含有トロンビン溶液を混合して、ゲルを形成する。

本発明のもう１つの実施形態では、製剤にストロンチウム含有化合物を塩粒子として加える。トロンビン溶液および粒子を混合して改変トロンビン溶液を調製する。フィブリノゲン溶液および改変トロンビン溶液を混合してゲルを形成する。
実施例Ｉ：バッファー溶液に溶解したストロンチウム含有化合物。

一連のバッファーは、再蒸留水で調製した。これらのバッファーについては、トロンビンバッファー中の二価のカチオンは、Ｃａまたはカチオン濃度が４０ｍＭで一定に維持されるようなＣａ＋Ｓｒ混合物（塩化ストロンチウムについての以下の表参照のこと）。トロンビンを、トロンビンバッファー中、４ＩＵの濃度に希釈した。

次いで、フィブリノゲンを、トロンビンと１：１の割合で混合した（従って、ゲル化血餅中のストロンチウム濃度は半分となる）。このために、２ｍｌのトロンビン溶液を、５ｍｌのシリンジに移してもよい。２ｍｌのフィブリノゲン（Ｔｉｓｓｅｅｌ、Ｂａｘｔｅｒ、凝固可能タンパク質、［フィブリノゲンおよびフィブロネクチン］７２〜１１０ｍｇ／ｍｌ）を、別個の５ｍｌのシリンジに移した。フィブリノゲンおよびトロンビンを含有するこのシリンジを、組み合わせることを目的として、任意の最新式ミキサーと接続してもよい。

ｉｎ−ｖｉｔｒｏ実験のためには、１５０μｌのフィブリノゲン溶液を、２４ウェルプレートのウェルにピペットで加えることによって血餅を調製した。このプレートをプレートシェーカー上に置き、ウェル底中へ確実に均一に分配させた。次いで、ウェルに１５０μｌのトロンビン溶液を加え、プレートをプレートシェーカー上に置き、確実に均質な血餅とした。ヒト骨芽細胞様細胞株（ＳａｏＳ−２）を、血餅上で最大７日間培養して、細胞増殖／細胞分化において何らかの相違が観察され得るかどうかを確かめた。図１は、トロンビン希釈バッファーに塩化ストロンチウム（ＳｒＣ１２）が加えられた場合の増殖の結果（アラマーブルー）を示す。同様の結果は、酢酸ストロンチウム（ＳｒＡｃ）についても利用可能である。

アラマーブルーアッセイは、代謝性アッセイであり、増殖を測定するために用いられることが多い。ストロンチウムの添加は、２０ｍＭ ＣａＣｌ_２を含む正常血餅と比較した場合に、これらの血餅上での増殖の大幅な増大をもたらした。同様の結果はまた、ＤＮＡ染色を用いて増殖を定量した場合にも観察された（図２）。７日後、カルシウムストロンチウム混合物またはカルシウムのみを含有する血餅上で増殖させた細胞間に明確な相違を観察することができた。したがって、本発明者らは、ストロンチウムは、骨芽細胞様ＳａＯＳ−２細胞の増殖に対して正の効果を有すると結論付けた。

これらの最初の実験は、細胞増殖における相違を調べるよう設計され、骨芽細胞分化を調査するための十分な時間を提供しなかった。酵素アルカリホスファターゼは、分化の初期指標であるが、レベルは、実際には約１０〜１４日までピークに達しない。予備結果は、ストロンチウムを含有する血餅におけるアルカリホスファターゼ発現の増加を示している（図３）。酢酸ストロンチウムの場合には、これらの値は、重要ではないと思われる。これらの実験は、１４日の調査期間で反復されている。

細胞研究観察に加え、比濁法（ｔｕｒｂｉｄｍｅｔｒｉｃ）分析を実施し、血餅構造がストロンチウムの結果として変更されたかどうかを調べた（図４）。血餅濁度は、線維の平均断面積に直接比例しており、従って、血餅が濁るほど、線維直径は増大した。

図４中の比濁法データは、カルシウム含有血餅との比較において、ストロンチウム含有血餅の動力学および吸光度が極めて小さな相違しか示さないことを示す。これは、カルシウムとストロンチウムは、同様の結合部位、特に、ＦＸＩＩＩ結合部位を占めることができるという観察結果によって説明することができる。

最初の実験については、細胞を、血餅の表面に播種した。この播種法を選択した理由の１つは、いくつかの細胞種は血餅内に播種されると、細胞死が大量に生じ、細胞は血餅の表面に移動を行うということである。この効果についての可能性のある説明は、骨芽細胞様細胞がＣａＣｌ_２を補給された培地中で培養される場合に説明され得る。図５は、１２．５ｍＭのＣａＣｌ_２の存在下、組織培養プラスチック上でのＳａＯＳ−２細胞培養の結果を示す。細胞死（ＭＴＳアッセイによって測定されるような）は、塩化カルシウムの存在下で培養された細胞について生じる。これは、細胞培養の最初の２４時間内に起こる。それに反して、ストロンチウム含有化合物の存在下で培養された細胞の増殖においてはわずかな減少しかない。いくつかの細胞、すなわち、線維芽細胞およびケラチノサイトが高カルシウムを必要とすること、従って、血餅のカルシウム濃度によって影響を受けないことを指摘することは重要である。
実施例２：フィブリン／ストロンチウムドープ−リン酸カルシウムナノ粒子
トロンビンを、トロンビンバッファーで４ＩＵの濃度に希釈した。フィブリノゲンを、トロンビンと１：１の割合で混合した。このために、２ｍｌのトロンビン溶液を、５ｍｌのシリンジに移してもよい。２ｍｌのフィブリノゲン（Ｔｉｓｓｅｅｌ、Ｂａｘｔｅｒ、凝固可能タンパク質、［フィブリノゲンおよびフィブロネクチン］７２−１１０ｍｇ／ｍｌ）を、別個の５ｍｌのシリンジに移した。粒子（１μｍ未満のナノ粒子）を、最終血餅容積のパーセンテージ重量（ｗ／ｖ）として組み込む。これらは、秤量し、別の５ｍｌのシリンジに入れる。

粒子およびトロンビンを含有するシリンジを、ルアーアダプターを介して接続し、シリンジからシリンジへ内容物を移すことによってトロンビンおよび粒子を均質化する。トロンビン／粒子およびフィブリノゲンを含有するシリンジを、ルアーアダプターを介して接続し、内容物を均質化する。材料は、約３０秒間液体のままであり、この時間の間に、欠損に注入できる。

ｉｎ−ｖｉｔｒｏ実験のためには、２４ウェルプレートのウェルに１５０μｌのフィブリノゲン溶液をピペットで加えることによって血餅を調製する。粒子（１μｍ未満のナノ粒子）を、最終血餅容積のパーセンテージ重量（ｗ／ｖ）として加える。プレートをプレートシェーカー上に置き、ウェル底中へ確実に均一に分配させた。次いで、ウェルに１５０μｌのトロンビン溶液を加え、プレートをプレートシェーカー上に置き、確実に均質な血餅とした。予備研究では、ヒト骨芽細胞様細胞（ＳａＯＳ−２またはＮＨＯｓｔ）を血餅上で最大１４日間培養して、細胞増殖、細胞分化において何らかの相違が観察され得るかどうかを確かめた。

粒子を含有する血餅上に播種された細胞の定性分析は、正常なフィブリン血餅と比較した場合に良好な生体適合性を示す（図６）。定量されていないが、粒子を含まないフィブリン血餅上の細胞は、形態がより丸みを帯びており、一方で、粒子を含有する血餅上のものはより広がっていると思われる。これのさらなる証拠は、血餅の横断図において見ることができる（図７）。これについては、細胞を、血餅中に播種した。数日後、フィブリン血餅中の細胞を、血餅の表面に移した。比較によって、血餅を含有する粒子中の細胞は血餅中のままであり、広がっており、好都合な形態を示した。
実施例３：ウサギ大腿骨顆部欠損モデルにおけるストロンチウムドープヒドロキシアパタイトの使用
上記の研究は、ストロンチウムは骨形成を刺激し、同時に、骨吸収を抑圧することを示唆する。先の研究は、骨芽細胞様細胞および一次骨芽細胞に対するＳｒＣ１２の効果を調査した。脊椎増強において使用できる製剤を同定する試みの過程で、ストロンチウムでドープされた修飾されたヒドロキシルアパタイトをウサギ大腿骨顆部欠損モデルにおいて試験し、ストロンチウムの骨形成を刺激する可能性を評価した。カルシウムヒドロキシルアパタイトは、硝酸カルシウムおよびリン酸アンモニウムを高ｐＨ値（水酸化アンモニウムで調整した）で一緒に撹拌することによって実験台で製造できる。得られた沈殿を遠心分離、洗浄、乾燥およびか焼すると、ヒドロキシルアパタイト様物質が得られる。硝酸カルシウムを、硝酸ストロンチウムと、それぞれの置換パーセンテージで組み合わせることによって、骨欠損にフィブリンとともに一緒に注入できる、ストロンチウム−カルシウムヒドロキシルアパタイト様粒子を製造することが可能である。

この例は、ストロンチウム置換カルシウムヒドロキシルアパタイト様粒子が、フィブリン単独または純粋なカルシウムヒドロキシルアパタイト様粒子よりも良好に新規骨形成を刺激することを示すデータを示す。これらの結果は、予備細胞培養の際に得られたデータのｉｎ ｖｉｖｏ確証を提供する。

材料および方法：
本実施例において記載される研究では、以下の化学試薬を用いた。硝酸カルシウム四水和物；９９％ Ａ．Ｃ．Ｓ．試薬［Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ；２３７１２４−５００Ｇ；ＦＷ：２３６，１５］；硝酸ストロンチウムｐ．Ａ．＞９９％［Ｆｌｕｋａ；８５８９９ ５００ｇ；Ｌｏｔ＆Ｆｉｌｌｉｎｇ Ｃｏｄｅ：１０８６３２１、５３７０６１８１；ＦＷ：２１１，６３］；リン酸アンモニウム二相性ｐ．Ａ．［Ｒｉｅｄｅｌ−ｄｅ Ｈａｅｎ；３０４０２ ５００ｇ；ＦＷ：１３２，０６］；水酸化アンモニウム［Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、３１８６１２−２Ｌ；バッチ番号：１１１０３ＰＤ；ＦＷ：３５，０５；Ｈ_２Ｏ中、５Ｎ］；ＥｔＯｈ９６％；Ｆｉｂｒｉｎｋｌｅｂｅｒ［Ｂａｘｔｅｒ
ＡＧ；Ｆｉｂｒｉｎｋｌｅｂｅｒ ＴＩＭ ３；０８Ｐ６００４Ｈ；５ｍｌ；１５００４３４］；トロンビン［Ｂａｘｔｅｒ ＡＧ； Ｂ２０５５５３ ｔｈｒｏｍｂ．ＳＤ ＴＩＭ ５；５００ＩＥ；ＵＳ ５ｍｌ］； 塩化カルシウム二水和物（ミニム９９％）［Ｓｉｇｍａ； Ｃ７９０２−１ＫＧ；バッチ番号：０４４Ｋ０１６０］；および塩化ナトリウム［Ｍｅｒｃｋ、１．０６４０４．１０００ １ｋｇ；Ｃｈａｒｇｅ／Ｌｏｔ：Ｋ３８０６２００４ ７４５；ＦＷ：５８，４４．
実験は、以下のとおり種々の溶液を使用した：４０ｍＭ ＣａＣｌ_２＋２００ｍＭ ＮａＣｌ：２５０ｍｌ再蒸留水中、１．４７ｇ ＣａＣｌ_２＋２．９２ｇ ＮａＣｌ；凍結乾燥トロンビン−５ｍｌ ４０ｍＭ ＣａＣｌ_２＋２００ｍＭ ＮａＣｌで再構成および凍結乾燥フィブリノゲン−５ｍｌの３０００ＫＩＥ／アプロチニン１ｍｌに再構成。

実験は、以下のとおりに各々６つのウサギの膝を含む４つの試験群で実施した：
群１．フィブリン＋トロンビン（８ＩＵ／ｍｌ 最終濃度）
群２．フィブリン＋トロンビン（８ＩＵ／ｍｌ 最終濃度）＋１００％Ｃａ（０％ Ｓｒ置換）
群３．フィブリン＋トロンビン（８ＩＵ／ｍｌ 最終濃度）＋７５％ Ｃａ（２５％ Ｓｒ置換）
群４．フィブリン＋トロンビン（８ＩＵ／ｍｌ 最終濃度）＋２０％ Ｃａ（８０％ Ｓｒ置換）。

試験物質の調製：
フィブリノゲンは、再構成し、１ｍｌシリンジ［Ｂｒａｕｎ；ｏｍｉｆｉｘ−１ｍｌ；Ｌｕｅｒ］にシリンジあたり０．５ｍｌフィブリノゲンで分注した。トロンビンは、再構成し、４０ｍＭ ＣａＣｌ_２＋２００ｍＭ ＮａＣｌで１６ＩＵ／ｍｌに希釈した。これも、１ｍｌシリンジに、シリンジあたり０．５ｍｌを分注した。

ヒドロキシルアパタイト粉末は、等容積の２Ｍ 硝酸カルシウム溶液（またはストロンチウム置換のパーセンテージに従って、硝酸ストロンチウム、得られた溶液は合わせて２Ｍを有さなくてはならない）および１．２Ｍリン酸アンモニウム溶液とともに撹拌することによって製造した。硝酸カルシウムにリン酸アンモニウム を添加すると、ペースト状物質が沈殿する。等容積の水酸化アンモニウムをその後添加すると、沈殿物のｐＨが１１に上昇し、ペースト状沈殿物を液体にした。完全に撹拌した後、混合物を遠心分離し、上清を廃棄し、沈殿物をアルコール（エタノール９６％）で２回、再蒸留水で１回洗浄した。洗浄ステップの間、沈殿物を常に浄化し、遠心分離し、上清は廃棄した。その後、沈殿物を真空下、６０℃で１日間乾燥させ、製粉し、１１００℃で１時間か焼した。

冷却した後、ヒドロキシルアパタイト様粒子を熱で滅菌し、１ｍｌシリンジに、シリンジあたり０．３ｇを分注した。

ウサギの処理
１２匹のウサギを用いて主な実験を実施した。それらを鎮静させ、大腿骨顆部にボアホール（直径４．５ｍｍ）をドリルで開けた。粒子を含むトロンビン成分を噴出させた後フィブリノゲンを、または対照としてフィブリノゲンを含むトロンビンのみを噴出させることによって、試験材料のうち１種を用いてこれらのドリルホールを各々埋めた。１ｍｌシリンジの円錐体が、ドリルホールに完璧に適合し、そのために直接適用が可能であった。

それぞれの材料を注入した後（２４の膝について無作為化した）、皮膚を縫い、その後８週間、ウサギをモニターし続けた。

術後分析
８週間後、ウサギを安楽死させることになり、膝をμＣＴによって分析し、薄片を組織学的に染色した。

結果
μＣＴ分析：ストロンチウムサンプルの高い乳白度のために、定量結果を得ることは困難であり、そのため分析は、μＣＴ像を肉眼で評価し、それらを定量化することによって半定量的に実施した。骨形成の評価は、３つのレベル（１：低；２：中程度；３：高）で実施した。閉じられたドリルホールの評価は、閉じられたドリルホールには「＋」を、閉じられていないドリルホールには「−」を与えることによって行った。データは、図８〜１４中にグラフで示されている。μＣＴ像はスナップショットであるのに対し、すべてのグラフは、評価可能な処理された動物の平均である。

図８は、完全に閉じられた（両側が閉じられている）ドリルホールのグラフを示す。評価された、フィブリンで埋められたウサギ顆状突起欠損のうち、両側が閉じられたものはなく、したがって、ゼロパーセントの完全に閉じられたドリルホール境界が図８において見られる。粒子中２５％Ｓｒの置換は、８０％の閉じられたドリルホール境界という最高の値をもたらした。

図９では、フィブリンの存在下におけるウサギ大腿骨顆部のμＣＴがある。欠損はまだ明確であるが、残存する物質（フィブリン）は見えず、ドリルホールの片側はまだ開いている。

ストロンチウムの添加は著しい効果を引き起こす。図１１は、８０％Ｓｒ材料におけるウサギ大腿骨顆部のμＣＴを示す。欠損はまだ明確であるが、欠損のほとんどは埋まっており、材料（Ｓｒ８０％）ははっきりと目に見える。新規骨形成は明らかに同定可能であり、ドリルホールの両側は閉じられている。

上記の結果はまた、組織学的研究を用いて確認された。図１２は、フィブリンで処理されたウサギ大腿骨顆部欠損の組織学的に染色された薄片を示す。試験物質は存在していない。したがって、炎症の兆候は見られない。いくつかの短い海綿骨骨梁がドリルホールの内側に見られる。掘削器具管（ｂｕｒ ｃａｎａｌ）の開放時に、新規に形成された骨物質は、海綿骨の形のものである。血管は、ドリル腔の内側にほとんど規則的に分布しており、あまり血管新生されていないわずかなスポットのみを示す。いくつかのより大きな血管は、ドリル腔の片側の骨物質に接近して存在する。

フィブリン血餅中８０％ストロンチウムで処理したサンプル（図１３）では、ドリル腔の４０〜７０％は試験物質で埋められている。試験物質は、ドリル腔の内側の細長い形のサンプル中すべてにある。１サンプルでは、より顆粒に近く、一方で他の２種はより粗い試験物質を示す。３種のサンプルのうち２種では、フィブリンは、試験物質に近い、より大きなパッチとして存在する。炎症は１サンプル中に数個であり、その他の試料では、３〜１０の大きな炎症で変動する。１サンプルでは、試験物質は、新規に構築された骨組織に直接接触しているのに対し、その他の２種では、より離れて存在する。２種のサンプルは、ドリル腔の内側に規則的に分布する血管を有しているのに対し、第３のものは、群生した血管新生を有する。

考察
μＣＴデータは、Ｓｒ２５％置換ヒドロキシルアパタイト様粒子を含有する製剤は、その他の試験された物質よりも良好にドリルホールの閉鎖を引き起こし、密度は低いものの８０％置換粒子に匹敵する骨形成を誘導することを示す。

フィブリン単独は、より少ない骨形成しか引き起こさず、ドリルホールは片側のみ閉じられる。純粋なカルシウムヒドロキシルアパタイトを含有する製剤は、あまり密度が高くないが、骨形成またはドリルホールの閉鎖を誘導しないと思われる。

高ストロンチウム濃度製剤は極めて密度が高く、新規骨形成を誘導するが、Ｓｒ２５％よりも大幅ではない。さらに、ドリルホール閉鎖は、低濃度のストロンチウムと比較して悪く、したがって、低濃度のストロンチウムであっても、骨形成を誘導するのに十分である。

組織学的結果は、カルシウムヒドロキシルアパタイト様粒子中のストロンチウムの置換は、新規骨の形成を誘導することを示唆する。血管新生、骨芽細胞の移動、従って、新規骨形成の必要条件は、すべてのサンプルにおいて検出された。
実施例４：ストロンチウムは、骨芽細胞に対するＰＴＨと相乗効果を有する。

本実施例は、骨形成因子の活性化に対する、副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）およびストロンチウム（ＳｒＣ１２として用いられる）の組み合わせが、骨芽細胞におけるｃＡＭＰ産生の増大を好むかどうかを調べるための、ラット骨肉腫細胞でのｉｎ ｖｉｔｒｏ研究を記載する。本明細書に記載される研究は、ＳｒＣ１２は、骨芽細胞におけるｃＡＭＰの生成において、ＰＴＨと正の相乗効果を有することを示す。このような効果は、ＣａＣｌ_２で処理された細胞については観察されなかった。ｃＡＭＰは、タンパク同化骨形成を誘導することが知られているので、本明細書に示されるデータは、ＳｒおよびＰＴＨの併用療法は、ｉｎ ｖｉｖｏでの骨形成の増大につながるという結論を支持する。

材料および方法
骨肉腫細胞株ＵＭＲ−１０６（ＮｅｗＬａｂ Ｂｉｏｑｕａｌｉｔｙ ＡＧ、Ｅｒｋｒａｔｈ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて、バイオアッセイを実施した。

以下に記載されるアッセイは以下の培地を用いた：
細胞培養培地：ＤＭＥＭ（Ｓｉｇｍａ、Ｄ６５４６；４５００ｍｇ／ｌ グルコース、ピルビン酸Ｎａ、Ｎａ２ＣＯ３を含み、０．５８４ｇ／ｌ Ｌ−グルタミンを補給した）；１０％ ＦＣＳ；２ｍＭ Ｌ−Ｇｌｕ。

飢餓培地：ＤＭＥＭ（Ｓｉｇｍａ、Ｄ６５４６；４５００ｍｇ／ｌ グルコース、ピルビン酸Ｎａ、Ｎａ２ＣＯ３を含み、０．５８４ｇ／ｌ Ｌ−グルタミンを補給した）；２ｍＭ Ｌ−Ｇｌｕ；
ＳＩ培地：１０ｍｌ 飢餓培地；２ｍＭ ＩＢＭＸ
飢餓培地中、２０ｍＭ ＳｒＣｌ２：１９，６ｍｌ培地 ０，４ｍｌ １Ｍ ＳｒＣｌ_２
飢餓培地中、２０ｍＭ ＣａＣｌ２ １９，６ｍｌ培地 ０，４ｍｌ １Ｍ ＣａＣｌ_２
細胞培養
ＵＭＲ−１０６細胞を、３００００個細胞／ｃｍ^２の密度で増殖培地に播種し、３７℃／８．０％ ＣＯ_２でインキュベートした。２４時間後、培地を、新鮮培地、２０ｍＭ ＳｒＣｌ_２含有する培地または２０ｍＭ ＣａＣｌ_２を含有する培地のいずれかで交換した。細胞を、３７℃／８．０％ ＣＯ_２で２４時間、さらにインキュベートした。細胞を、以下の手順に従って回収した。

細胞を、ＨＢＳＳで２回洗浄し、６ｍｌのトリプシン／ＥＤＴＡを用いて、室温で３分間表面から剥離させた。トリプシン消化は、１２ｍｌの増殖培地を用いて停止した。遠心分離（３分、１０００ｒｐｍ、ＲＴ）後、細胞を、１２ｍｌの飢餓培地に再懸濁し、ＣＡＳＹ細胞カウンターを用いてカウントした。死細胞の割合は、どの実験でも１０％を下回っていた。細胞を、飢餓培地で１．６×１０^６個細胞／ｍｌの最終濃度に再懸濁した。５０μｌの細胞懸濁液を、９６ウェルプレートの各ウェルに移し、３７℃、８．０％ＣＯ_２で３０分間インキュベートした。

フィブリノゲン溶液中、２６４μｇ／ｍｌ ＴＧｐｌＰＴＨサンプルでの細胞の処理
サンプルを、２ｍＭ ＩＢＭＸ（ＳＩ培地）を含有する新たに調製した飢餓培地で希釈した。ＳＩ培地の調製には、ＤＭＳＯ中、３０μｌの０．６７Ｍ ＩＢＭＸストックを、１０ｍｌの飢餓培地に加えた。

すべてのサンプル希釈物を、この培地で調製し、ＵＭＲ−１０６細胞におけるホスホジエステラーゼ活性を阻害した（Ｊａｎｉｋ、Ｐ．、１９８０；Ｃｈａｓｉｎ Ｍ．およびＨａｒｒｉｓ、Ｄ．Ｎ．、１９７６）。３７℃で３０分インキュベートした後、５０μｌの希釈サンプル（結果に示されるように）を細胞に加えた。ｃＡＭＰ産生細胞を、３７℃、８．０％ＣＯ_２で１時間インキュベートした。各サンプル濃縮物を、２連のｃＡＭＰ分析に従って、少なくとも２連で細胞に加えた。

ｃＡＭＰ Ｂｉｏｔｒａｋ酵素免疫アッセイ
ｃＡＭＰ ＥＩＡの試薬調製。アッセイバッファー、溶解試薬１Ａ／１Ｂ、溶解試薬 ２Ａ／２Ｂ、ｃＡＭＰ標準、抗血清、ｃＡＭＰペルオキシダーゼコンジュゲートおよび洗浄バッファーは、製造業者（ｃＡＭＰ Ｂｉｏｔｒａｋ ＥＩＡキット、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）のマニュアルに従って調製した。１Ｍ 硫酸停止溶液は、５３ｍｌのＨ_２ＳＯ_４（濃度＝１８．７６Ｍ）を９４７ｍｌの再蒸留水で希釈することによって調製した。

細胞溶解およびｃＡＭＰの希釈。ｃＡＭＰの抽出のために、１００μｌのＰＴＨを含有する細胞懸濁液を、２５μｌの（最終希釈１：５）、ｃＡＭＰ Ｂｉｏｔｒａｋ ＥＩＡキット（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）の一部である、溶解試薬溶媒１Ａとともにインキュベートした。完全な溶解のために、細胞を、５００ｒｐｍ、室温で１５分間振盪した。抽出されたｃＡＭＰは、溶解試薬１Ｂ（ｃＡＭＰ Ｂｉｏｔｒａｋ ＥＩＡ ｋｉｔ）を用い、最終的に１：２０に希釈した（アッセイプレートでの１：１希釈（１２５μｌ溶解試薬１Ｂを加えた）と、それに続く、ＥＬＩＳＡプレートでの１：１０希釈（９０μｌの溶解試薬１Ｂ＋１０μｌの希釈細胞懸濁液）。

ｃＡＭＰ作業標準の調製。非アセチル化アッセイ（ｃＡＭＰ Ｂｉｏｔｒａｋ ＥＩＡキット）の凍結乾燥ｃＡＭＰ標準を、アッセイバッファーに溶解して、３２ｐｍｏｌ／ｍｌの濃度を得た。２倍希釈シリーズは、３２ｐｍｏｌ／ｍｌ〜０．５ｐｍｏｌ／ｍｌの範囲で調製した。

内部対照。１００μｌの各標準およびサンプル希釈物を、適当なウェルに移し、２連で分析した。さらに、２種の異なる内部対照、非特異的結合（ＮＳＢ）対照およびゼロ対照（０）が、ｃＡＭＰ ＥＬＩＳＡの特異性を示すために必要であり、製造業者（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）によって推奨されるように実施した。

酵素イムノアッセイ手順。１００μｌの抗血清を、ＮＳＢ対照を除くすべてのウェルに加えた。抗体反応は、振盪しながら４℃で２時間実施した。５０μｌのｃＡＭＰペルオキシダーゼコンジュゲートとともに、振盪しながら４℃で１時間インキュベートした後、すべてのウェルを、３００μｌの洗浄バッファーを用いて４回洗浄した。最後に、各ウェルに、１５０μｌのＴＭＢ（３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン）を加え、基質反応を、室温で１０分間可能にした。反応は、１００μｌの１Ｍ Ｈ_２ＳＯ_４を加えることによって停止し、およびプレートリーダーを用いて４５０ｎｍで光学密度を直ちに調べた。

データ分析。光学密度は、ソフトウェアＫＣ４を用いて、４５０ｎｍでサンプルの吸光度を測定することによって、プレートリーダー（Ｓｙｎｅｒｇｙ ＨＴ）で調べた。バックグラウンド補正、平均値、標準偏差、変動の係数の算出および標準曲線の作製は、Ｍｉｃｒｏｓｏｆｔ Ｅｘｃｅｌ ２０００で実施した。Ｓｉｇｍａｐｌｏｔ９．０を、４パラメータフィットおよびＥＣ５０算出のために用いた。ＰＬＡ１．２（Ｓｔｅｇｍａｎｎ
Ｓｙｓｔｅｍｂｅｒａｔｕｎｇ）を並列直線分析および相対力の検出のために用いた。

結合しているｃＡＭＰペルオキシダーゼコンジュゲートのパーセンテージ。各標準およびサンプルの結合しているｃＡＭＰペルオキシダーゼコンジュゲートのパーセントを、以下の関係を用いて算出した：

標準曲線。ｃＡＭＰ標準曲線は、パーセントＢ／ＢＯ（ｙ軸）を、ｌｏｇｃ（ｃＡＭＰ）（ｘ軸）の関数としてプロットすることによって作成した。

サンプル中のｃＡＭＰ濃度。希釈係数（２０×）を考慮して、産生されたｃＡＭＰ量は、標準曲線のパラメーター（傾きおよび切片）を用いて算出した。

直線性：ｃＡＭＰ ＥＬＩＳＡの標準曲線の相関係数（Ｒ^２＞０．９５）を評価した。

バイオアッセイ分析のためのサンプルの調製。分析のために、サンプルを、２ｍＭのホスホジエステラーゼ阻害剤ＩＢＭＸを含有する飢餓培地（ＳＩ培地）で、２４００ｎＭＴＧｐｌＰＴＨ（１３，２μｇ／ｍｌ ＴＧｐｌＰＴＨ）の最終濃度に希釈した。すべてのサンプルについて、１５０μｌの以下の８シリーズ希釈物を調製し、５０μｌを細胞（細胞での総容積：１００μｌ）に直接加えた。すべてのサンプルおよびすべての希釈物について、ＯＤ４５０の平均値、標準偏差、ｃＡＭＰ濃度および変動係数を算出した。

段階希釈の表。用量反応曲線を作製するために、各サンプルについて７回の１：１段階希釈ステップを実施し、すべての希釈物は、３連で分析した。

結果
ＰＴＨ生物活性に対するＳｒＣｌ_２およびＣａＣｌ_２の影響を、５つの異なる実験にわたって独立してモニターした（図１４）。これらの研究によって、ＴＧｐｌＰＴＨ処理に先立つＵＭＲ−１０６細胞の、２０ｍＭ ＳｒＣ１２をともなう２４ｈプレインキュベーションは、生物活性の２倍の増大につながるのに対し、ＣａＣｌ_２は、ＰＴＨ生物活性の変化を示さない（図１４）ということが示された。これらの結果は、ストロンチウムおよびＰＴＨが、ｃＡＭＰ産生に対して相乗作用を有することを示し、ＰＴＨおよびストロンチウムの組み合わせは、ｉｎ ｖｉｖｏでのタンパク同化骨形成につながり得るという結論を支持する。

Claims (38)

1. 生存被験体において、罹患骨、損傷を受けた骨または欠損した骨の治療に使用するための、フィブリノゲン、トロンビンおよびある量のストロンチウムを含む組成物であって、該ストロンチウムが、２５％のストロンチウム置換粒子として存在し、該組成物は、ゲル、パテ、ペーストまたは液体形態であり、該ある量のストロンチウムが、ストロンチウム置換カルシウム塩として存在し、該ストロンチウム置換粒子が、適用時には不溶性である、組成物。
2. 前記粒子が、前記フィブリノゲンとトロンビンの組み合わせの３０〜５０％（重量／容積）で前記組成物中に存在する、請求項１に記載の組成物。
3. ある量の副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）をさらに含む、請求項１に記載の組成物。
4. 前記組成物がさらに造影剤を含み、該造影剤が、ジアトリゾ酸、イオデコール、イオジキサノール、イオフラトール、イオグラミド、イオヘキソール、イオメプロール、イオパミドール、イオプロミド、イオトロール、イオベルソール、イオキサグル酸およびメトリザミドならびにそれらの混合物からなる群から選択されるヨード含有化合物である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の組成物。
5. 前記造影剤が非イオン性である、請求項４に記載の組成物。
6. ゲル化相に先立って、またはその間に、液体、ペーストもしくはゲルとして、または予め形成されたゲル、ペーストもしくはパテとして組織欠損に送達され得る、請求項１〜５のいずれか１項に記載の組成物。
7. 細胞外マトリックスタンパク質からなる群から選択される、１種以上の細胞外タンパク質を含む、請求項１〜６のいずれか１項に記載の組成物。
8. 前記細胞外マトリクスタンパク質が、フィブロネクチン、細胞結合性タンパク質、および血漿由来タンパク質からなる群より選択される、請求項７に記載の組成物。
9. 前記血漿由来タンパク質は、血液凝固因子ＸＩＩＩ、プロテアーゼおよびプロテアーゼ阻害剤からなる群より選択される、請求項８に記載の組成物。
10. 治癒過程の間に、再吸収され、組織と置換される、請求項１〜４および６〜９のいずれか１項に記載の組成物。
11. 凝固誘導剤をさらに含む、請求項１〜１０に記載の組成物。
12. 前記凝固誘導剤は、プロタミン、ヘビ毒、トランスグルタミナーゼ、ＦＸＩＩａ、または生理学的に許容されるアルカリバッファー系から選択される、請求項１１に記載の組成物。
13. 前記ストロンチウム置換カルシウム塩が、ストロンチウム置換リン酸カルシウムである、請求項１に記載の組成物。
14. 前記ストロンチウム置換カルシウム塩が、ストロンチウム置換リン酸三カルシウム、ストロンチウム置換α−リン酸三カルシウム、ストロンチウム置換β−リン酸三カルシウム、ストロンチウム置換リン酸カルシウムの多形、ストロンチウム置換ヒドロキシアパタイト、ストロンチウム置換炭酸カルシウム、ストロンチウム置換硫酸カルシウムおよびそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項１に記載の組成物。
15. 前記ストロンチウム置換粒子が、１００ナノメートル〜５０ミリメートルの範囲の粒子寸法を有する、請求項１に記載の組成物。
16. 前記ストロンチウム置換粒子が、０．５〜５ミリメートルの粒子寸法を有する、請求項１に記載の組成物。
17. 前記ある量のストロンチウムがストロンチウム含有化合物としても存在し、該ストロンチウム含有化合物が、塩化ストロンチウム、ラネル酸ストロンチウム、酢酸ストロンチウム、グルタミン酸ストロンチウム、アスパラギン酸ストロンチウム、マロン酸ストロンチウム、マレイン酸ストロンチウム、アスコルビン酸ストロンチウム、トレオン酸ストロンチウム、乳酸ストロンチウム、リン酸ストロンチウム、ストロンチウムアパタイト、ピルビン酸ストロンチウム、α−ケトグルタル酸ストロンチウムおよびコハク酸ストロンチウムからなる群から選択される、請求項１に記載の組成物。
18. カルシウム擬態薬、オステオカルシン、およびアミノ酸からなる群から選択されるストロンチウムコリガンドをさらに含む、請求項１〜４、６、１０および１７のいずれか１項に記載の組成物。
19. 前記アミノ酸が、Ｌ−アルギニン、ならびにアルギノミメティクスおよびアルギニン類似体からなる群から選択される、請求項１８に記載の組成物。
20. 前記組成物が、ポリエチレングリコールまたはグリセロールをさらに含む、請求項１に記載の組成物。
21. 前記組成物は、多価アルコール、あるいは単糖、二糖、三糖、多糖およびそれらの組み合わせからなる群から選択される糖をさらに含む、請求項１に記載の組成物。
22. 骨形態形成タンパク質、カルシトニン、ビスホスホネート、上皮成長因子、インスリン様増殖因子およびＴＧＦ増殖因子からなる群から選択されるタンパク質をさらに含む、請求項１〜６、１１〜１４および１６〜２１のいずれか１項に記載の組成物。
23. 前記組成物のゲル化が、種々の成分の混合時に起こる、請求項１に記載の組成物。
24. 注射可能な組成物である、請求項１〜２３のいずれかに記載の組成物。
25. 生存被験体において、罹患骨または、損傷を受けた骨または欠損した骨を治療するための組成物であって、請求項２４に記載の組成物を含む組成物を含み、該組成物が海綿骨中に注入により投与されることで特徴付けられる、組成物。
26. 前記組成物が、ストロンチウムを含まない同様の組成物で観察されるものよりもより速い治癒の速度を生じる、請求項２５に記載の組成物。
27. 欠損を有する骨を修復するための組成物であって、該欠損の修復をもたらすために有効な量の、請求項１〜２６のいずれかに記載の組成物を含み、該組成物が、該欠損を埋めるために投与されることで特徴づけられ、ここで該骨またはその一部が機械的に固定されている、組成物。
28. 前記欠損が、骨折であり、前記修復が、該骨折の骨治癒である、請求項２７に記載の組成物。
29. 前記組成物が、該組成物の不在下で観察されるものよりもより速い治癒の速度を生じる、請求項２８に記載の組成物。
30. 前記組成物が、ストロンチウムを含まない同様の組成物で観察されるものよりもより速い治癒の速度を生じる、請求項２９に記載の組成物。
31. 前記骨が、大腿骨、脛骨、上腕骨および橈骨からなる群から選択される長骨である、請求項２７に記載の組成物。
32. 骨欠損の部位で新規骨成長を促進するための組成物であって、請求項１〜２４のいずれかに記載の組成物を含む組成物。
33. 前記骨成長の速度が、ストロンチウムを含まない同様の組成物の存在下で見られる骨成長と比較して、該組成物中のストロンチウムの存在下でより速い、請求項３２に記載の組成物。
34. ゲル形態である、請求項１に記載の組成物。
35. パテ形態である、請求項１に記載の組成物。
36. ペースト形態である、請求項１に記載の組成物。
37. 液体形態である、請求項１に記載の組成物。
38. 前記ストロンチウム置換リン酸カルシウムが、ストロンチウム置換ヒドロキシアパタイトである、請求項１３に記載の組成物。