JP5934203B2 - 抗ａｄｄｌモノクローナル抗体およびこの使用 - Google Patents

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関連出願の相互参照

本出願は、米国特許法第３５章１１９条に基づき、２０１１年７月１４日出願の米国特許仮出願第６１／３６４，２１０号の優先権を主張する。

本発明は、アルツハイマー病の治療に使用するためのモノクローナル抗体に関する。本発明は、モノクローナル抗体を含む組成物ならびに該組成物を、バイオマーカーとして使用する方法、またはアミロイドベータ（Ａβ）およびＡβ由来拡散性リガンド（ＡＤＤＬ）に関連する疾患の診断および治療のために使用する方法をさらに提供する。

アルツハイマー病（ＡＤ）は、認知機能の進行性喪失ならびに学習および記憶と関連する領域におけるアミロイドベータ（Ａβ）プラークの蓄積を特徴とする。Ａβプラークは、かつてはＡＤの発病において中心的役割を果たすと考えられていたが、Ａβ−由来拡散性リガンド（ＡＤＤＬ）が疾患関連神経機能障害および認知低下に関与すると思われることを示唆する証拠が増えている（Ｗａｌｓｈ ａｎｄ Ｓｅｌｋｏｅ，２００４，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｅｐｔ．Ｌｅｔｔ．，１１：２１３−２２８）。ＡＤＤＬは、ＡＤにおいて豊富であるが正常な脳においては豊富ではない、低分子の可溶性オリゴマーである（ＭｃＬｅａｎら、１９９９，Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．，４６：８６０−８６６；Ｇｏｎｇら、２００３，Ｐｒｏｃ，Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１００：１０４１７−１０４２２）。インビトロ研究では、ＡＤ脳から単離されたＡＤＤＬまたは合成の調製物のＡＤＤＬが、皮質ニューロンおよび海馬ニューロンの亜集団と結合することが示されており（Ｇｏｎｇら、２００３；Ｋｌｅｉｎら、２００４，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ，２５：５６９−５８０；Ｌａｃｏｒら、２００４，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，２４：１０１９１−１０２００；Ｓｈｕｇｈｒｕｅら、２０１０，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ，３１：１８９−２０２）、一方、線維性Ａβ調製物またはモノマーＡβ調製物との結合はほとんどまたは全く検出されなかった（Ｌａｃｏｒら、２００４；Ｈｅｐｌｅｒら、２００６，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，４５：１５１５７−１５１６７）。さらに、ニューロンと結合するＡＤＤＬは、ＡＤＤＬに対して産生されたポリクローナル抗体（Ｇｏｎｇら、２００３）およびモノクローナル抗体（Ｌｅｅら、２００６，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２８１：４２９２−４２９９；Ｄｅ Ｆｅｌｉｃｅら、２００７，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ２９：１３３４−１３４７；Ｓｈｕｇｈｒｕｅら、２０１０）の両方により減衰され得る。

げっ歯類モデルにおいて、ＡＤＤＬの中枢投与は、げっ歯類における長期増強（ＬＴＰ）および記憶形成の損失を誘導する（Ｗａｌｓｈら、２００２，Ｎａｔｕｒｅ，４１６：５３５−５３９；Ｃｌｅａｒｙら、２００４，Ｎａｔ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，８：７９−８４；Ｋｌｙｕｂｉｎら、２００５，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．，１１：５５６−５６１）。ＡＤＤＬが、抗Ａβ抗体を同時投与された場合、またはＡβペプチドを接種された動物に投与された場合、ＬＴＰに対するオリゴマーの効果は減衰される（Ｒｏｗａｎら、２００４，Ｅｘｐ，Ｇｅｒｏｎｔｏｌ．，３９：１６６１−１６６７）。ヒトアミロイド前駆体タンパク質（ｈＡＰＰ）を産生するトランスジェニックマウスなどのＡＤのトランスジェニックモデルにおいて、年齢関連の認知障害が、ＡＤＤＬレベルの上昇に伴い観察されている（Ｗｅｓｔｅｒｍａｎら、２００２，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，２２：１８５８−１８６７；Ａｓｈｅ，２００５，Ｂｉｏｃｈｅｍ，Ｓｏｃ．Ｔｒａｎｓ．，３３：５９１−５９４；Ｌｅｅら、２００６；Ｌｅｓｎｅら、２００６，Ｎａｔｕｒｅ，４４０：３５２−３５７）。ｈＡＰＰマウスを抗ＡＤＤＬ抗体で処置した場合、認知能力における有意な改善が、Ａβプラーク負荷の同時減少を伴わずに観察された（Ｌｅｅら、２００６）。これらの所見を併せると、ＡＤＤＬが認知機能障害に主に関与するがＡβプラークはそうではなく、抗ＡＤＤＬ抗体の使用が、ＡＤの治療において有効であることが証明され得ることを示唆している。米国特許出願公開第２００６／０２２８３４９号明細書；米国特許第７，７３１，９６２号明細書、国際公開第２００７／０５０３５９号パンフレット；米国特許出願公開第２００７／０２１８４９９号明細書、国際公開第２００６／０１４４７８号パンフレット；米国特許第７，７００，０９９号明細書；米国特許出願公開第２００８／０１７５８８３５号明細書、国際公開第２００６／０５５１７８号パンフレットを参照されたい。

したがって、ＡＤの予防および治療のためのＡＤＤＬ選択性治療用抗体の必要がある。本発明は、この要求を満たす。

米国特許出願公開第２００６／０２２８３４９号明細書 米国特許第７，７３１，９６２号明細書 国際公開第２００７／０５０３５９号パンフレット 米国特許出願公開第２００７／０２１８４９９号明細書 国際公開第２００６／０１４４７８号パンフレット 米国特許第７，７００，０９９号明細書 米国特許出願公開第２００８／０１７５８８３５号明細書 国際公開第２００６／０５５１７８号パンフレット

Ｗａｌｓｈ ａｎｄ Ｓｅｌｋｏｅ，２００４，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｅｐｔ．Ｌｅｔｔ．，１１：２１３−２２８ ＭｃＬｅａｎら、１９９９，Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．，４６：８６０−８６６ Ｇｏｎｇら、２００３，Ｐｒｏｃ，Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１００：１０４１７−１０４２２ Ｋｌｅｉｎら、２００４，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ，２５：５６９−５８０ Ｌａｃｏｒら、２００４，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，２４：１０１９１−１０２００ Ｓｈｕｇｈｒｕｅら、２０１０，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ，３１：１８９−２０２ Ｈｅｐｌｅｒら、２００６，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，４５：１５１５７−１５１６７ Ｌｅｅら、２００６，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２８１：４２９２−４２９９ Ｄｅ Ｆｅｌｉｃｅら、２００７，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ２９：１３３４−１３４７；Ｓｈｕｇｈｒｕｅら、２０１０ Ｗａｌｓｈら、２００２，Ｎａｔｕｒｅ，４１６：５３５−５３９ Ｃｌｅａｒｙら、２００４，Ｎａｔ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，８：７９−８４ Ｋｌｙｕｂｉｎら、２００５，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．，１１：５５６−５６１ Ｒｏｗａｎら、２００４，Ｅｘｐ，Ｇｅｒｏｎｔｏｌ，３９：１６６１−１６６７ Ｗｅｓｔｅｒｍａｎら、２００２，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，２２：１８５８−１８６７ Ａｓｈｅ，２００５，Ｂｉｏｃｈｅｍ，Ｓｏｃ．Ｔｒａｎｓ．，３３：５９１−５９４ Ｌｅｅら、２００６；Ｌｅｓｎｅら、２００６，Ｎａｔｕｒｅ，４４０：３５２−３５７

本発明は、アルツハイマー病（ＡＤ）などのＡＤＤＬに関連する疾患の治療のための、１つまたは複数のアミロイドβ由来拡散性リガンド（ＡＤＤＬ）の多次元構造を差次的に認識できる単離抗体またはこれらの断片を対象とする。本発明はまた、本発明の単離抗体を、単独または１種または複数種の治療活性薬剤、担体または希釈剤と組み合わせて含む医薬組成物を提供する。

本発明は、試料中のＡＤＤＬを検出する方法、ＡＤＤＬのアセンブリを阻害する方法、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を防止する治療薬を同定する方法およびＡＤＤＬに関連する疾患の症状を減衰する方法などの単離抗体の使用方法ならびにＡＤＤＬに関連する疾患の診断または試料中のＡＤＤＬの検出に使用する、バイオマーカーとしての単離抗体の使用方法もまた対象とする。

図１は、モノマーＡβ、ＡＤＤＬおよび線維性Ａβに対するヒト化（ｈ３Ｂ３）抗体および親和性成熟抗ＡＤＤＬ（１４．２、７．２、１１．４、９．２、１３．１、１７．１および１９．３）抗体ならびに３種の比較抗体（Ｃｏｍｐ１、２および３）のパネルのＥＬＩＳＡ結合のグラフ表現である。このアッセイのバックグラウンドは、ＥＬＩＳＡ（ｍＡｂなし）から捕捉抗体を取り除くことで決定した。エラーバーは、平均の標準誤差を表す。 図２は、１１点の滴定曲線により評価した、ＡＤＤＬまたはモノマーＡβ（Ａβ１−４０）に対する抗ＡＤＤＬ抗体１９．３および抗体３Ｂ３のＥＬＩＳＡ結合のグラフ表現である。 図３は、漸増濃度の抗体と一緒に予備インキュベート後の、初代海馬ニューロン細胞とのＡＤＤＬ結合を遮断する、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３および３Ｂ３の能力のグラフ表現である。ニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断する抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力は、抗体の熱変性後に減衰された。エラーバーは、平均の標準誤差を表す。 図４Ａ−４Ｃは、抗体安定性を評価するために変動温度において１ヵ月までインキュベーション後、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３（図４ＡにおいてＷＴと指定）および２種の１９．３由来抗ＡＤＤＬ抗体の、ＡＤＤＬに対するＥＬＩＳＡ結合のグラフ表現である（図４Ｂおよび４Ｃ）。１９．３由来抗ＡＤＤＬ抗体は、軽鎖ＣＤＲ１内のＡｓｎ３３のＳｅｒ３３（１９．３Ｓ３３）またはＴｈｒ３３（１９．３Ｔ３３）（それぞれ配列番号５５および５６）のいずれかへの単一アミノ酸置換を含んだ。Ａｓｎ３３のＳ３３（図４Ｂ）またはＴ３３（図４Ｃ）のいずれかへの置換は、親１９．３抗体と対比した抗体の安定性の改良をもたらした。 図４Ａ−４Ｃは、抗体安定性を評価するために変動温度において１ヵ月までインキュベーション後、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３（図４ＡにおいてＷＴと指定）および２種の１９．３由来抗ＡＤＤＬ抗体の、ＡＤＤＬに対するＥＬＩＳＡ結合のグラフ表現である（図４Ｂおよび４Ｃ）。１９．３由来抗ＡＤＤＬ抗体は、軽鎖ＣＤＲ１内のＡｓｎ３３のＳｅｒ３３（１９．３Ｓ３３）またはＴｈｒ３３（１９．３Ｔ３３）（それぞれ配列番号５５および５６）のいずれかへの単一アミノ酸置換を含んだ。Ａｓｎ３３のＳ３３（図４Ｂ）またはＴ３３（図４Ｃ）のいずれかへの置換は、親１９．３抗体と対比した抗体の安定性の改良をもたらした。 図４Ａ−４Ｃは、抗体安定性を評価するために変動温度において１ヵ月までインキュベーション後、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３（図４ＡにおいてＷＴと指定）および２種の１９．３由来抗ＡＤＤＬ抗体の、ＡＤＤＬに対するＥＬＩＳＡ結合のグラフ表現である（図４Ｂおよび４Ｃ）。１９．３由来抗ＡＤＤＬ抗体は、軽鎖ＣＤＲ１内のＡｓｎ３３のＳｅｒ３３（１９．３Ｓ３３）またはＴｈｒ３３（１９．３Ｔ３３）（それぞれ配列番号５５および５６）のいずれかへの単一アミノ酸置換を含んだ。Ａｓｎ３３のＳ３３（図４Ｂ）またはＴ３３（図４Ｃ）のいずれかへの置換は、親１９．３抗体と対比した抗体の安定性の改良をもたらした。 図５は、Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）を用いて査定した場合の、固定化ヒトＦｃＲｎに対する抗ＡＤＤＬ抗体の結合および解離のグラフ表現である。調整されたセンサーグラムは、ｐＨ６．０において初期結合を示し、その後、１８０秒からｐＨ７．３において抗体の解離を示す。ｐＨ６．０の結合の終了後５秒に報告点（安定性）を挿入し、「結合％」を、ＲＵ_{Ｓｔａｂｉｌｉｔｙ}／ＲＵ_{Ｂｉｎｄｉｎｇ}（％）として計算した。 図６Ａは、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３に関する重鎖および軽鎖の可変領域と、太字活字で示された相補性決定領域（ＣＤＲ）を含むヒト生殖細胞系とのアライメントを示す図である。図６Ｂは、ＣＤＲの位置を示す、抗体１９．３の重鎖および軽鎖の可変領域の三次元モデルである。 図７は、単回１０ｍｇ／ｋｇの静脈内（ＩＶ）投与後のヘテロ接合型の２７６ヒトＦｃＲｎマウス（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（Ｂａｒ Ｈａｒｂｏｒ、ＭＥ）において評価した、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３および３Ｂ３の薬物動態（ＰＫ）プロファイルのグラフ表現である。抗体の濃度を、さまざまな時間間隔で測定し、遊離抗体の半減期（ｔ_１／２）を決定した（それぞれ、１９．３：７７±６時間；３Ｂ３：２９±９時間）。 図８は、５ｍｇ／ｋｇの投薬量の静脈内（ＩＶ）ボーラス投与または皮下（ＳＣ）投与後に六頭のアカゲザルにおいて査定した、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３（血清中）ＰＫのグラフ表現である。ＩＶ投与後に、半減期（ｔ_１／２）が２５４±２８（２７４±９）時間であることを決定し、ＳＣ投与後は２０４±４９（２１９±５２）時間であった。 図９は、霊長類（３頭のオスアカゲザル）の脳脊髄液（ＣＳＦ）において、大槽内移植（ｃｉｓｔｅｒｎａ ｍａｇｎａ ｐｏｒｔｅｄ）アカゲザルモデルを使用して、５ｍｇ／ｋｇのボーラスＩＶ投薬量の投与後に評価した、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３のＰＫのグラフ表現である。投薬後約４８時間において、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３は０．１％の血清中濃度でＣＳＦ中に存在した。 図１０Ａ−１０Ｄは、ヒトアミロイド前駆体タンパク質（ｈＡＰＰ）を過剰発現するトランスジェニックマウスモデルにおいて血液脳関門を超える抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力を、２つの比較抗体（Ｃｏｍｐ１およびＣｏｍｐ２）と対比した表現である。マウスに、^１２５Ｉ標識抗ＡＤＤＬ抗体１９．３または比較抗体を静脈内（ＩＶ）注射し、血液、ＣＳＦおよび脳の試料を投薬後２時間で採取した。放射能分布の査定において、０．０２％の抗ＡＤＤＬ抗体１９．３がＣＳＦ（図１０Ａ）中に存在したが、一方、脳内には０．１９％が見られた（図１０Ｂ）。２つの比較抗体が同様のレベルで見られた。免疫細胞化学的分析により、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の局在化が実証され（図１０Ｃ、矢印）、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の濃縮がプラークにより可視化された（図１０Ｄ）。抗ＡＤＤＬ抗体ｌ９．３は、脳に貫通でき、ＡＤＤＬと結合できた。 図１０Ａ−１０Ｄは、ヒトアミロイド前駆体タンパク質（ｈＡＰＰ）を過剰発現するトランスジェニックマウスモデルにおいて血液脳関門を超える抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力を、２つの比較抗体（Ｃｏｍｐ１およびＣｏｍｐ２）と対比した表現である。マウスに、^１２５Ｉ標識抗ＡＤＤＬ抗体１９．３または比較抗体を静脈内（ＩＶ）注射し、血液、ＣＳＦおよび脳の試料を投薬後２時間で採取した。放射能分布の査定において、０．０２％の抗ＡＤＤＬ抗体１９．３がＣＳＦ（図１０Ａ）中に存在したが、一方、脳内には０．１９％が見られた（図１０Ｂ）。２つの比較抗体が同様のレベルで見られた。免疫細胞化学的分析により、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の局在化が実証され（図１０Ｃ、矢印）、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の濃縮がプラークにより可視化された（図１０Ｄ）。抗ＡＤＤＬ抗体ｌ９．３は、脳に貫通でき、ＡＤＤＬと結合できた。 図１０Ａ−１０Ｄは、ヒトアミロイド前駆体タンパク質（ｈＡＰＰ）を過剰発現するトランスジェニックマウスモデルにおいて血液脳関門を超える抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力を、２つの比較抗体（Ｃｏｍｐ１およびＣｏｍｐ２）と対比した表現である。マウスに、^１２５Ｉ標識抗ＡＤＤＬ抗体１９．３または比較抗体を静脈内（ＩＶ）注射し、血液、ＣＳＦおよび脳の試料を投薬後２時間で採取した。放射能分布の査定において、０．０２％の抗ＡＤＤＬ抗体１９．３がＣＳＦ（図１０Ａ）中に存在したが、一方、脳内には０．１９％が見られた（図１０Ｂ）。２つの比較抗体が同様のレベルで見られた。免疫細胞化学的分析により、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の局在化が実証され（図１０Ｃ、矢印）、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の濃縮がプラークにより可視化された（図１０Ｄ）。抗ＡＤＤＬ抗体ｌ９．３は、脳に貫通でき、ＡＤＤＬと結合できた。 図１０Ａ−１０Ｄは、ヒトアミロイド前駆体タンパク質（ｈＡＰＰ）を過剰発現するトランスジェニックマウスモデルにおいて血液脳関門を超える抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力を、２つの比較抗体（Ｃｏｍｐ１およびＣｏｍｐ２）と対比した表現である。マウスに、^１２５Ｉ標識抗ＡＤＤＬ抗体１９．３または比較抗体を静脈内（ＩＶ）注射し、血液、ＣＳＦおよび脳の試料を投薬後２時間で採取した。放射能分布の査定において、０．０２％の抗ＡＤＤＬ抗体１９．３がＣＳＦ（図１０Ａ）中に存在したが、一方、脳内には０．１９％が見られた（図１０Ｂ）。２つの比較抗体が同様のレベルで見られた。免疫細胞化学的分析により、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の局在化が実証され（図１０Ｃ、矢印）、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の濃縮がプラークにより可視化された（図１０Ｄ）。抗ＡＤＤＬ抗体ｌ９．３は、脳に貫通でき、ＡＤＤＬと結合できた。 図１１Ａ−１１Ｃは、ｈＡＰＰを過剰発現するトランスジェニックマウスモデルにおいて、成長するプラーク内へのＡＤＤＬの沈着を遮断する抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力の表現である。１２ヵ月齢のマウスの海馬に４週間（１注射／週）注入されたビオチン化ＡＤＤＬ（ｂＡＤＤＬ）（図１１Ａ）により既存のプラークを標識した（ビヒクル単独；図１１Ｂ；抗体１９．３：図１１Ｃ、円）。免疫細胞化学的分析を使用し、新しい材料（ＡＤＤＬ）の沈着を査定した（１１Ｂおよび１１Ｃ）。 図１１Ａ−１１Ｃは、ｈＡＰＰを過剰発現するトランスジェニックマウスモデルにおいて、成長するプラーク内へのＡＤＤＬの沈着を遮断する抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力の表現である。１２ヵ月齢のマウスの海馬に４週間（１注射／週）注入されたビオチン化ＡＤＤＬ（ｂＡＤＤＬ）（図１１Ａ）により既存のプラークを標識した（ビヒクル単独；図１１Ｂ；抗体１９．３：図１１Ｃ、円）。免疫細胞化学的分析を使用し、新しい材料（ＡＤＤＬ）の沈着を査定した（１１Ｂおよび１１Ｃ）。 図１１Ａ−１１Ｃは、ｈＡＰＰを過剰発現するトランスジェニックマウスモデルにおいて、成長するプラーク内へのＡＤＤＬの沈着を遮断する抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力の表現である。１２ヵ月齢のマウスの海馬に４週間（１注射／週）注入されたビオチン化ＡＤＤＬ（ｂＡＤＤＬ）（図１１Ａ）により既存のプラークを標識した（ビヒクル単独；図１１Ｂ；抗体１９．３：図１１Ｃ、円）。免疫細胞化学的分析を使用し、新しい材料（ＡＤＤＬ）の沈着を査定した（１１Ｂおよび１１Ｃ）。

本発明は、アミロイドβ（Ａβ）由来拡散性リガンド（ＡＤＤＬ）、すなわち抗ＡＤＤＬと結合し、ニューロンに対するＡＤＤＬの結合を減衰する、抗体または抗原結合断片を対象とする。定量的な細胞に基づくアッセイの結果により、抗ＡＤＤＬ抗体がＡＤＤＬに優先的に結合し、海馬ニューロンへのＡＤＤＬの結合を和らげ、血液脳関門を越えて、薬物動態学（ＰＫ）プロファイルを改善したことが明らかになった。

一実施形態において、本発明は、
（ａ）
（ｉ）配列Ａｒｇ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｎ−Ｓｅｒ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｈｉｓ−Ｓｅｒ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ａｓｎ−Ｔｈｒ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ（配列番号１）を有するＣＤＲ１、
（ｉｉ）配列Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｓｅｒ−Ａｓｎ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ｓｅｒ（配列番号２）を有するＣＤＲ２、および
（ｉｉｉ）配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ｘａａ１−Ｘａａ２−Ｘａａ３−Ｘａａ４−Ｘａａ５（配列番号３）を有し、Ｘａａ１がＡｒｇ、ＬｙｓまたはＴｙｒであり、Ｘａａ２がＶａｌ、ＡｌａまたはＬｅｕであり、Ｘａａ３がＰｒｏ、ＨｉｓまたはＧｌｙであり、Ｘａａ４がＡｌａ、ＰｒｏまたはＶａｌであり、Ｘａａ５がＳｅｒ、ＧｌｙまたはＰｈｅであるＣＤＲ３
を含む軽鎖可変領域；ならびに
（ｂ）
（ｉ）配列Ｇｌｙ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｍｅｔ−Ｈｉｓ（配列番号４）を有するＣＤＲ１、
（ｉｉ）配列Ｔｙｒ−Ｉｌｅ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｔｈｒ−Ｉｌｅ−Ｔｙｒ−Ｔｙｒ−Ａｌａ−Ａｓｐ−Ｔｈｒ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ（配列番号５）を有するＣＤＲ２、および
（ｉｉｉ）配列Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−Ｔｈｒ−Ｔｈｒ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ（配列番号６）を有するＣＤＲ３
を含む重鎖可変領域
を含む、アミロイドβ由来拡散性リガンド（ＡＤＤＬ）と結合する単離抗体またはこれらの抗原結合断片を対象とする。

別の実施形態において、本発明は、
（ａ）
（ｉ）配列Ａｒｇ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｎ−Ｓｅｒ−Ｉｌｅ−Ｖａｌ−Ｈｉｓ−Ｓｅｒ−Ｘａａ１−Ｇｌｙ−Ｘａａ２−Ｔｈｒ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ（配列番号５３）を有し、Ｘａａ１がＡｓｎ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、Ａｌａ、ＡｓｐまたはＧｌｕであり、Ｘａａ２がＡｓｎ、Ｈｉｓ、Ｇｌｎ、Ｓｅｒ、Ｔｈｒ、ＡｌａまたはＡｓｐであるＣＤＲ１、
（ｉｉ）配列Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｓｅｒ−Ｘａａｌ−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−Ｓｅｒ（配列番号５４）を有し、Ｘａａ１がＡｓｎ、Ｇｌｎ、Ｓｅｒ、ＴｈｒまたはＡｌａであるＣＤＲ２、および
（ｉｉｉ）配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ（配列番号１０）を有するＣＤＲ３
を含む軽鎖可変領域、ならびに
（ｂ）
（ｉ）配列Ｇｌｙ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｍｅｔ−Ｈｉｓ（配列番号４）を有するＣＤＲ１、
（ｉｉ）配列Ｔｙｒ−Ｉｌｅ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｔｈｒ−Ｉｌｅ−Ｔｙｒ−Ｔｙｒ−Ａｌａ−Ａｓｐ−Ｔｈｒ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｇｌｙ（配列番号５）を有するＣＤＲ２、および
（ｉｉｉ）配列Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−Ｔｈｒ−Ｔｈｒ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ａｓｐ−Ｔｙｒ（配列番号６）を有するＣＤＲ３
を含む重鎖可変領域
を含む、アミロイドβ由来拡散性リガンド（ＡＤＤＬ）と結合する単離抗体またはこれらの抗原結合断片を対象とする。

別の実施形態において、本発明は、配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｐｒｏ−Ａｌａ−Ｓｅｒ（配列番号７）を有する１７．１、配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ（配列番号８）を有する１４．２、配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｈｉｓ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ（配列番号９）を有する１３．１、配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ｌｅｕ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ（配列番号１０）を有する１９．３、配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ｔｙｒ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｇｌｙ（配列番号１１）を有する７．２、配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｈｅ（配列番号１２）を有する９．２および配列Ｐｈｅ−Ｇｌｎ−Ｇｌｙ−Ｓｅｒ−Ａｒｇ−Ｖａｌ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−Ａｒｇ（配列番号１３）を有する１１．４からなる群から選択される軽鎖可変領域ＣＤＲ３を有する、ＡＤＤＬと結合する単離抗体、すなわち抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片である。下位実施形態において、軽鎖可変領域ＣＤＲ３は配列番号１０である。

本発明のさらに別の実施形態において、単離抗ＡＤＤＬ抗体は、配列番号１５の軽鎖可変領域および配列番号１７の重鎖可変領域をさらに含む。

本発明のその上別の実施形態において、単離抗ＡＤＤＬ抗体は、配列番号２１の重鎖定常領域をさらに含む。

本発明の別の実施形態において、単離抗ＡＤＤＬ抗体はモノクローナル抗体である。

本発明の別の実施形態は、単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片を、医薬として許容可能な担体と混合して含む医薬組成物である。

本発明の別の実施形態は、ニューロンと、単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片とを、Ａβ由来拡散性リガンドとニューロンとの結合が減衰されるように接触させるステップを含む、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を減衰させる方法である。

本発明の別の実施形態は、アミロイドβ１−４２ペプチドを含有する試料と単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片とを接触させ、その結果ＡＤＤＬのアセンブリを阻害するステップを含む、ＡＤＤＬのアセンブリを阻害する方法である。

本発明の別の実施形態は、タウタンパク質を含有する試料と単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片とを接触させ、その結果Ｓｅｒ２０２／Ｔｈｒ２０５におけるタウタンパク質のリン酸化を阻害するステップを含む、Ｓｅｒ２０２／Ｔｈｒ２０５におけるタウタンパク質のリン酸化を阻害する方法である。

本発明の別の実施形態は、単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片を含む医薬組成物を、これらを必要とする患者に有効量投与するステップを含む、ＡＤＤＬに関連する疾患の症状を減衰させる方法である。

本発明の別の実施形態は、
（ａ）ニューロンを含む組成物とＡＤＤＬとを、薬剤の存在下で接触させるステップ、
（ｂ）該組成物と単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片とを接触させるステップ、および
（ｃ）薬剤の存在下で結合した、抗体または抗原結合断片の量を検出するステップ
を含み、薬剤の不在下で結合した抗体の量と比較して、薬剤の存在下で結合した抗体または抗原結合断片の量の減少が、薬剤が、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を減衰させるための推定治療薬であることを示す、ニューロンへのアミロイドβ由来拡散性リガンド（ＡＤＤＬ）の結合を減衰させる推定治療薬を同定する方法である。

本発明の別の実施形態は、試料と単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片とを接触させるステップ、およびＡＤＤＬおよび前記抗体または抗原結合断片を含む複合体の存在を決定するステップを含む、試料中のＡＤＤＬを検出する方法である。

本発明の別の実施形態は、試料と単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片とを接触させるステップおよびＡＤＤＬおよび前記単離抗体または抗原結合断片を含む複合体の存在を決定するステップを含み、前記複合体の存在が、ＡＤＤＬに関連する疾患の診断である、ＡＤＤＬに関連する疾患を診断する方法である。

本発明のさらに別の実施形態は、ＡＤＤＬと結合する単離抗ＡＤＤＬ抗体またはこれらの抗原結合断片を含む、ＡＤＤＬを検出するためのキットである。

Ａβ由来拡散性リガンド（ＡＤＤＬ）の多次元構造を差次的に認識するモノクローナル抗体は当分野において公知であり（米国特許第７，７８０，９６３号明細書、米国特許第７，７３１，９６２号明細書および米国特許第７，８１１，５６３号明細書を参照されたい、これらすべてはその全体を参照により本明細書に組み込まれる）、細胞に基づくアッセイにおいて、ニューロンへのＡＤＤＬの結合の減少が示されている。抗ＡＤＤＬ抗体は、アルツハイマー病（ＡＤ）と対照のヒト脳抽出物とを識別でき、ＡＤ脳の薄片および海馬細胞において内因性オリゴマーを同定でき、溶液中で内因性ＡＤＤＬおよび合成ＡＤＤＬを中和できる。抗ＡＤＤＬ抗体は、ＡＤＤＬの１つまたは複数の多次元構造と特異的に結合し、Ａβ４２のオリゴマー化に由来する特定のＡＤＤＬと結合するが、Ａβ１−４０を含む他のＡβペプチドに関する親和性は低下している。

本発明は、ＡＤＤＬと優先的に結合し、ＡＤＤＬに関するそれらの特異性および選択性を特徴としている、抗ＡＤＤＬ抗体、特に抗体１７．１、１４．２、１３．１、１９．３、１９．３Ｔ３３、１９．３Ｓ３３、７．２、９．２および１１．４を対象とする。重要なことには、本発明のこれらの抗ＡＤＤＬ抗体の特異性および選択性は、それらが結合するＡβの線形エピトープからは予測できず、この活性は、ウェスタンブロットによるＡＤＤＬを検出するそれらの能力またはニューロンに結合した、免疫染色されたＡＤＤＬを検出するそれらの能力からも予測できなかった。さらに、ＡＤＤＬを中和し、初代海馬ニューロンとの結合を遮断する本発明の抗ＡＤＤＬ抗体の差次的能力は、抗ＡＤＤＬ抗体が、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を防止する、より関連のある立体構造エピトープとの結合を介して作用するという信念を支持する。本発明の一実施形態である抗ＡＤＤＬ抗体１９．３は、ＡＤＤＬと初代ニューロンとの結合を遮断するだけでなく、ＡＤＤＬ−神経の結合のインピーダンスが有意な生理学的分岐、例えばニューロンの生存、ニューロンの接続およびシグナル伝達を有することの現れである、海馬のスパインの形態に対するＡＤＤＬ誘導性変化を和らげる。抗ＡＤＤＬ抗体１９．３は、インビトロおよびインビボモデルの両方において査定した場合、すでに公知である抗ＡＤＤＬ抗体、３Ｂ３と比較して薬物動態（ＰＫ）プロファイルの改善をさらに有した。さらに、アミロイド前駆体タンパク質（ｈＡＰＰ）のヒト型を過剰発現するトランスジェニックマウスに投与した場合、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３は、血液脳関門を貫通し、脳において濃縮されることが示された。ＡＤＤＬは脳に局在し、ニューロン機能に悪影響を与えるように作用するので、当業者は、脳における抗体の貫通および濃縮が免疫療法に対して有益であるであろうことを理解および認識すると思われる。総合すると、これらのデータは、抗体１９．３などの選択的抗ＡＤＤＬ抗体が、学習および記憶に深く関与する海馬ニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断できることを実証している。

ＡＤの治療のための抗ＡＤＤＬ抗体の有用性は、ＡＤＤＬがこの疾患に関連する認知低下において基本的な役割を果たしていることを示唆するが、アミロイドプラークそれ自体は示唆しないという証拠が増えていることに基づく（Ｗａｌｓｈ ａｎｄ Ｓｅｌｋｏｅ，２００４，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｅｐｔ．Ｌｅｔｔ．，１１：２１３−２２８）。げっ歯類に中枢投与した場合、ＡＤＤＬはＡＤ脳において上昇し、行動および電気生理学的なエンドポイントにおける損失を誘導する（Ｗａｌｓｈら、２００２，Ｎａｔｕｒｅ，４１６：５３５−５３９；Ｃｌｅａｒｙら、２００４，Ｎａｔ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，８：７９−８４；Ｋｌｙｕｂｉｎら、２００５，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．１１：５５６−５６１；Ｂａｌｄｕｃｃｉら、２０１０，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１０７：２２９５−２３００）。学習および記憶における損失もまた、ＡＤＤＬレベルの上昇に関連する機能障害が発症したｈＡＰＰ発現マウスモデルにおいて観察されている（Ｗｅｓｔｅｒｍａｎら、２００２，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，２２：１８５８−１８６７；Ａｓｈｅ，２００５，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．Ｔｒａｎｓ．，３３：５９１−５９４；Ｌｅｅら、２００５，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２８１：４２９２−４２９９；Ｌｅｓｎｅら、２００６，Ｎａｔｕｒｅ，４４０：３５２−３５７）。認知についてのこれらの効果を仲介する細胞性事象および細胞下事象は完全には理解されていないが、ＡＤＤＬが海馬ニューロンの樹状突起に局在するシナプス末端に結合し（Ｌａｃｏｒｅら、２００４，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，２４：１０１９１−１０２２）、樹状スパインの形態および数を改変する（Ｌａｃｏｒら、２００７，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，２７：７９６−８０７；Ｓｈａｎｋａｒら、２００７，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，２７：２８６６−２８７５；Ｓｈｕｇｈｒｕｅら、２０１０，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ．３１：１８９−２０２）することは明らかである。ＡＤＤＬが、海馬においてＧＡＢＡ性ニューロンおよびグルタミン酸作動性ニューロンの両方に結合する（Ｓｈｕｇｈｒｕｅら、２０１０）、ＡＭＰＡ受容体の内在化をもたらすニューロンが学習および記憶に深く関与する（Ｚｈａｏら、２０１０，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２８５：７６１９−７６３２）という発見が、ＡＤＤＬが、これらの神経伝達物質系を直接または間接的に調節するという信念をさらに支持する（例えば、Ｖｅｎｋｉｔａｒａｍａｎｉら、２００７，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，２７：１１８３２−１１８３７を参照されたい）。

本発明において、抗ＡＤＤＬ抗体、３Ｂ３（米国特許第７，７８０，９６３号明細書および米国特許第７，８１１，５６３号明細書、これらはその全体が参照により本明細書に組み込まれる）に由来する抗ＡＤＤＬ抗体のパネルを、初代海馬ニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断するそれらの能力に関して査定した。その後、選択されたモノクローナル抗体をヒト化し、さらなる特徴付けのために親和性成熟させた。ＡＤＤＬに結合するそれらの能力に関して選択されたリード抗体を、単一濃度において、モノマーＡβ、ＡＤＤＬおよび線維性Ａβと結合する抗体を決定する、三方向ＥＬＩＳＡを使用してさらに査定した。図１に示すように、７種の親和性成熟抗ＡＤＤＬ抗体のうちの６種、特異的抗体１４．２、７．２、１１．４、１３．１、１７．１および１９．３が、モノマーＡβおよび線維性Ａβと比較した場合、ＡＤＤＬ選択性であった。続いて、１１点の滴定曲線およびＥＬＩＳＡを使用して、広範囲の濃度にわたる、抗ＡＤＤＬ抗体と、ＡＤＤＬおよびモノマーＡβ（Ａβ１−４０）との、結合親和性を確認した。図２に示すように、抗ＡＤＤＬ抗体３Ｂ３および１９．３が、高度にＡＤＤＬ選択性であった。さらに、抗体を、細胞に基づく結合アッセイにおいて比較し、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断する抗体の能力を決定した。図３に示すように、漸増濃度の抗ＡＤＤＬ抗体３Ｂ３および１９．３と一緒に予備インキュベートしたＡＤＤＬを、初代海馬ニューロンに加え、滴定曲線を使用して、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断する抗体の能力を定量的に示した。総合すると、これらの結果は、抗ＡＤＤＬ抗体が、細胞に基づくフォーマットにおいてニューロンの結合を大きく減衰させることを示している。

アミノ酸配列の査定を実施し、脱アミドの候補部位を同定した。治療用抗体のＣＤＲ中に存在するアスパラギンおよびアスパラギン酸の残基は、脱アミドを受け、イソアスパラギン酸を形成することが公知であり（Ｖａｌｓａｋ ａｎｄ Ｉｏｎｅｓｃｕ，２００８，Ｃｕｒｒ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．，９：４６８−４８１；Ａｓｗａｄら、２０００，Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ａｎａｌ．２１：１１２９−１１３６）、その形成は、抗体の結合能力を改変でき、順に、治療薬として使用のための抗体有効性を減少させ得る。したがって、当業者は、１９．３抗体のＣＤＲ内のアスパラギンまたはアスパラギン酸の存在が望ましくないことを認識および理解するであろう。したがって、出願者らは、軽鎖ＣＤＲ１の３３位のアスパラギン残基を改変し、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の安定性を最適化した（表４Ｂ）。１９．３抗体の誘導体は、セリン（配列番号５５）、トレオニン（配列番号５６）またはグルタミン酸（配列番号６７）をＣＤＲ１中の３３位のアスパラギン（配列番号１）と置換することにより作製された。アスパラギン酸（配列番号６８）と３３位のアスパラギンとの置換もまた、対照として作製した。これらの変更は、ＣＤＲ１中の３３位のアスパラギンの脱アミドの可能性を取り除くものである。１９．３の誘導体は、実施例３に記載のように作製し、実施例４に記載のようにセリン（配列番号５５）、トレオニン（配列番号５６）、グルタミン酸（配列番号６７）およびアスパラギン酸（配列番号６８）の置換を含む誘導体に対して特徴付け、新しい構築物の安定性を評価した。それぞれ図４Ｂおよび４Ｃに示すように、２種の代表的な誘導体、１９．３Ｓ３３（配列番号５５）および１９．３Ｔ３３（配列番号５６）が、さまざまな温度における１ヵ月のインキュベーション後の結合安定性が強化していた。軽鎖ＣＤＲ１における３３および３５位のアスパラギン（配列番号５３）および軽鎖ＣＤＲ２における５８位のアスパラギン（配列番号５４）に関する他のアミノ酸置換を、さらなる評価のために表４Ｂおよび４Ｃに提示した。

本発明の親和性成熟抗ＡＤＤＬ抗体の薬物動態を決定するために、一連のインビトロおよびインビボ研究を実施した。ｐＨ６．０における抗体とＦｃＲｎ受容体との結合（Ｚａｌｅｖｓｋｙら、２０１０，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．，２８（２）：１５７−１５９）およびｐＨ７．３（ＵＳＳＮ６１／３０７，１８２）により、ヒトにおける抗体半減期が予測されることが示されている。本発明の抗ＡＤＤＬ抗体と固定化ヒトＦｃＲｎとの結合および解離を、Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）Ｔ−１００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ）により提供されるものなどの、無標識の相互作用分析により査定した。調整されたセンサーグラムを使用して、ｐＨ６．０における抗体の初期結合およびその後の１８０秒からのｐＨ７．３における抗体の解離を示す。報告点（安定性）を、ｐＨ６．０における結合の終了後５秒に挿入し、「結合％」を、ＲＵ_{ｓｔａｂｉｌｉｔｙ}／ＲＵ_{Ｂｉｎｄｉｎｇ}（％）として計算した。図５に示すように、ヒト化３Ｂ３に関する解離速度（ｏｆｆ−ｒａｔｅ）は、抗体１９．３を含む本発明の７種の抗ＡＤＤＬ抗体および３種の比較抗体より著しく遅かった。解離速度（ｏｆｆ−ｒａｔｅ）が遅いことは、インビボのＰＫが低いことの指標であると考えられることから、さらなるインビボ研究を、トランスジェニックＦｃＲｎマウス（ヘテロ接合２７６ヒトＦｃＲｎマウス、Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｂａｒ Ｈａｒｂｏｒ、ＭＥ）において実施した。トランスジェニックＦｃＲｎマウスに、抗ＡＤＤＬ抗体３Ｂ３または１９．３のいずれかの１０ｍｇ／ｋｇを静脈内（ＩＶ）に投与した場合、薬物動態における有意差が決定された。図７に示すように、抗ＡＤＤＬ抗体３Ｂ３の半減期（ｔ_１／２）は比較的短く（２９±９時間）、これはインビトロのＢｉａｃｏｒｅ（商標）データからの予測と一致するが、一方、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３に関する半減期は有意に長かった（７７±６時間）。概して、抗体３Ｂ３に見られるように低いＰＫは、その小さい生体利用効率により、治療薬として使用するための抗体のさらなる開発が不可能であると思われる。

霊長類において抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の予測半減期を確認するために、抗体に対する霊長類の薬物動態研究を、大槽内移植アカゲザルのコホートにおいて実施した。動物に、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３（５ｍｇ／ｋｇ）の単回静脈内（ＩＶ）ボーラス注射または皮内（ＳＣ）注射を投薬し、抗体投与後血液を採取した。同時に、ＣＳＦ試料を、大槽内移植から、定期的に区切られた間隔に採取し、血清およびＣＳＦ中の抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の濃度を、抗ヒトＩｇＧ ＥＬＩＳＡアッセイを用いて決定した。動物に、単回ＩＶボーラス注射により抗ＡＤＤＬ抗体１９．３を投与した場合、２５４±２８時間のｔ_１／２（図８）が観察されたが、一方、２０４±４９時間のｔ_１／２が、皮下投与に関して観察された。さらに、出願者らは、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３が霊長類のＣＳＦを超えることができ、最初の４８時間の間に濃度が上昇し、投薬された抗体の約０．１％でピークに達したことを見出した（図９）。

血液脳関門を貫通し、ＣＳＦおよび脳に進入する抗体の量を解明する試みにおいて、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３および２種の比較抗体（Ｃｏｍｐ１およびＣｏｍｐ２）を、^１２５Ｉ標識し、ＡＤのげっ歯類モデルである、ｈＡＰＰを過剰発現する高齢（１２ヵ月齢）のマウスに投与した。ＩＶ投薬の２時間後、約０．０２％の抗体１９．３がＣＳＦにおいて見られ（図１０Ａ）、一方、約０．１９％の抗体１９．３が脳において見られた（図１０Ｂ）。同様のレベルが２種の比較抗体に関しても見られた（図１０Ａおよび１０Ｂ）。免疫細胞化学的分析を、投薬したマウスの脳切片において実施し、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の局在を決定し（図１０Ｃの矢印）、プラーク内のＡβの沈着に関連する抗体濃縮が観察された（図１０Ｄ）。これは、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３がＣＳＦを貫通し、脳において濃縮されたことを実証していた。近年、ｈＡＰＰを過剰発現するマウスに投与した場合、外因性ＡＤＤＬがプラーク内に沈着したことが示されている（Ｇａｓｐａｒら、２０１０，Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．，２２３：３９４−４００）。したがって、本明細書における発見により、局在化された抗ＡＤＤＬ抗体ｌ９．３が、プラークに関連する循環ＡＤＤＬと結合したことが確認された。

抗ＡＤＤＬ抗体のインビボの有効性をさらに評価するために、成長するプラーク内へのＡＤＤＬの沈着を遮断する抗体１９．３の能力を、１２ヵ月齢のマウスの海馬にビオチン化ＡＤＤＬ（ｂＡＤＤＬ）を４週間毎週注入し、既存のプラークを標識後、ｈＡＰＰトランスジェニックマウスにおいて査定した（図１１Ａ）。その後、動物に抗体１９．３の静脈内注入を４週間毎週与えた（図１１Ａ）。新しい材料（ＡＤＤＬ）の成長するプラーク内への沈着を、免疫細胞化学的分析により査定した。図１１Ｂおよび１１Ｃに見られるように、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３は、ビヒクル単独で処理したマウス（図１１Ｂ）と比較して、既存のプラークの周辺へのＡＤＤＬの沈着を有意に減少させた（図１１Ｃ）。総合すると、これらの結果は、抗ＡＤＤＬ抗体、特に１９．３抗体が血液脳関門を越え、ＡＤＤＬに結合し、新しい材料が成長するプラーク内に沈着することを遮断できたことを実証した。

ＡＤＤＬの結合は、さらにニューロンに対して長期の効果を有し得る。最近の研究は、海馬ニューロンへのＡＤＤＬの結合が、タウのリン酸化をもたらすシグナル伝達カスケードを開始できることを示している（Ｄｅ Ｆｅｌｉｃｅら、２００６，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ，２９：３９４−４００）。このシグナル伝達カスケードの一成分であるＧＳＫ−３βは、インビボおよびインビトロでＡＤＤＬにより調節されることも示されている（Ｍａら、２００６，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｒｅｓ．，８３：３７４−３８４）。Ｍａら、２００６は、ＡＤＤＬを減少させる抗体を用いたｈＡＰＰマウスの受動免疫化もまた、皮質におけるＧＳＫ−３βレベルおよびタウのリン酸化を減少させることを見出した。この発見は、Ａβおよびリン酸化タウの間の関連性を裏付け、ＡＤＤＬの結合がタウの細胞内凝集につながる事象を誘発し得ることを示唆している。さらに、このデータは、本発明の抗体などの、ニューロンへのＡＤＤＬの結合およびシナプスのスパインの関連する消失を防ぐ抗体が、アルツハイマー病および関連する疾患に関連する認知および／または病理学的転帰を改善できることを示唆している。

Ａβ由来拡散性リガンド、すなわちＡＤＤＬの多次元構造を差次的に認識するモノクローナル抗体が、現在作製されている。一部の実施形態において、これらの抗体をヒト化し、親和性成熟させた。抗体は、アルツハイマー病と対照のヒトの脳抽出物を有利に識別し、アルツハイマー病の脳切片および培養された海馬細胞中の内因性オリゴマーを同定する。さらに、本発明の抗体は、内因性および合成のＡＤＤＬを溶液中で中和する。いわゆる「合成」ＡＤＤＬは、精製されたＡβ１−４２を、ＡＤＤＬを作製する条件下で混合することによってインビトロで作製する。米国特許第６，２１８，５０６号明細書を参照されたい。本明細書に開示の抗体は、ＡＤＤＬに対して高度の選択性を示し、モノマーＡβ種の検出は最小である。さらに、これらの抗体は、ＡＤＤＬ含有調製物が、ラット海馬ニューロンの初代培養物および不死化神経線維芽腫細胞系と結合する能力を差次的に遮断し、ＡＤＤＬのアセンブリもまた遮断する。この発見は、類似の線形配列認識および親和性にもかかわらず、これらの抗体が、ＡＤＤＬの多次元構造を認識する差次的能力を保有することを実証している。ＡＤＤＬは、ニューロンのサブセットと会合し、正常なニューロンの機能を崩壊させることが知られているので、本発明の抗体は、ＡＤＤＬのニューロンへの結合およびＡＤＤＬのアセンブリの防止における使用が見出され、アルツハイマー病を含むＡＤＤＬ関連疾患の治療に使用できる。

したがって、本発明の一実施形態はＡＤＤＬの１つまたは複数の多次元構造を差次的に認識する単離抗体である。本発明の「単離」抗体は、他の抗体を実質的に含まない抗体を指す。しかし、この分子は、抗体の基本的特徴に悪影響を与えない、いくつかの追加の作用因子または部分を含んでもよい（例えば、結合特異性、中和活性など）。

ＡＤＤＬの１つまたは複数の多次元構造を特異的に結合できる抗体は、Ａβ１−４２のオリゴマー化に由来する特定のＡＤＤＬと結合するが、他のＡβペプチド、すなわち本明細書に開示のウェスタンブロットアナリシスにより決定されたＡβ１−１２、Ａβ１−２８、Ａβ１−４０およびＡβ１２−２８とは結合せず、溶液中で優先的にＡＤＤＬと結合する。２つの実体の間の特異的結合は、概して少なくとも１０^６、１０^７、１０^８、１０^９または１０^１０Ｍ^−１の親和性を指す。１０^８Ｍ^−１を超える親和性は、特異的結合の達成が望まれる。

特定の実施形態において、１つまたは複数のＡＤＤＬの多次元構造を特異的に結合できる抗体は、ＡＤＤＬの多次元構造に対しても産生される、すなわち、動物はＡＤＤＬの多次元構造により免疫化される。他の実施形態において、１つまたは複数のＡＤＤＬの多次元構造を特異的に結合できる抗体は、Ａβ１−４２［Ｎｌｅ３５−Ｄｐｒｏ３７］などの低ｎ−ｍｅｒ形成ペプチドに対して産生される。

「エピトープ」という用語は、Ｂ細胞および／またはＴ細胞が応答する抗原上の部位またはそれに対して抗体が産生される分子および／または抗体が結合すると思われる分子上の部位を指す。例えば、エピトープは、エピトープを定義する抗体により認識され得る。

線形エピトープは、アミノ酸一次配列が、認識されるエピトープを含むエピトープである。線形エピトープは、特有の配列中の少なくとも３、より普通には少なくとも５、例えば約６から約１０のアミノ酸を通常含む。

線形エピトープとは対照的に、立体構造エピトープは、エピトープを含むアミノ酸の一次配列が、認識されるエピトープの唯一の定義要素ではないエピトープである（例えば、アミノ酸の一次配列がエピトープを定義する抗体により必ずしも認識されないエピトープ）。通常、立体構造エピトープは、線形エピトープと比較して増加したアミノ酸数を包含する。立体構造エピトープの認識に関して、抗体は、ペプチドまたはタンパク質の三次元構造を認識する。例えば、タンパク質分子が三次元構造を形成するようにフォールドしていた場合、立体構造エピトープを形成する特定のアミノ酸および／またはポリペプチド骨格は、抗体がエピトープを認識できるように並置される。エピトープの立体構造を決定する方法は、限定するものではないが、例えば、Ｘ線結晶学、二次元核磁気共鳴分光学および部位特異的スピン標識ならびに電子常磁性共鳴分光学を含む。例えば、Ｅｐｉｔｏｐｅ Ｍａｐｐｉｎｇ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ（１９９６）Ｖｏｌ．６６，Ｍｏｒｒｉｓ（編）を参照されたい。

アミロイドβ由来拡散性リガンドまたはＡＤＤＬは、８または９未満のＡβ１−４２ペプチドの凝集体から構成されることが望ましいＡβ１−４２の可溶性オリゴマーを指し、アルツハイマー病に関連して見出される。これは、高分子量凝集中間体とは対照的であり、高分子量凝集中間体は、線維の形成につながるミセルの糸を形成する。

本明細書に例示するように、本発明の抗体は、ＡＤＤＬの少なくとも１つの多次元構造を結合または認識する。特定の実施形態において、抗体は、ＡＤＤＬの少なくとも２つ、少なくとも３つまたは少なくとも４つの多次元構造を結合する。ＡＤＤＬの多次元構造は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを介した分析により定義された、ダイマー、トリマー、テトラマー、ペンタマー、ヘキサマー、ヘプタマー、オクタマー、ノナマー、デカマーなどを包含することが意図される。トリマー、テトラマーなどの称号は、用いるアッセイ方法により変動し得るので（例えば、Ｂｉｔａｎら、２００５，Ａｍｙｌｏｉｄ，１２：８８−９５を参照されたい）、本明細書において使用する場合、トリマー、テトラマーなどの定義は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析に従っている。本明細書において抗体の差次的結合能力を例示するために、ある抗体は１つの多次元構造、例えばＡＤＤＬのテトラマーを認識し（米国特許第７，７８０，９６３号明細書、ネズミ抗体２Ｄ６および４Ｅ２）、一方他の抗体はいくつかの多次元構造、例えば、ＡＤＤＬのトリマーおよびテトラマーを認識する（米国特許第７，７８０，９６３号明細書、ネズミ抗体２Ａ１０、２Ｂ４、５Ｆ１０および２０Ｃ２ならびにヒト化抗体２０Ｃ２）ことが見出されている。したがって、本発明の抗体は、オリゴマー特異的特徴を有する。特定の実施形態において、ＡＤＤＬの多次元構造は、本発明の抗体により認識される立体構造エピトープをもたらす、特定のポリペプチド構造に関連する。他の実施形態において、本発明の抗体は、およそトリマーまたはテトラマーのサイズ範囲を有し、５０ｋＤａを超える分子量を有する多次元構造ＡＤＤＬを特異的に結合する。

本発明の抗体は類似の線形エピトープを有し得るが、このようなエピトープは、これらの抗体の結合特徴、すなわち、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断し、タウリン酸化を防止し、ＡＤＤＬのアセンブリを阻害する能力の完全な指標ではなく、このことは当業者には周知であるので、線形エピトープは、抗原のエピトープの一部に相当するだけだと思われる（例えば、Ｂｒｅｉｔｌｉｎｇ ａｎｄ Ｄｕｂｅｌ，１９９９，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．，ＮＹ，ｐｇ．１１５を参照されたい）。本発明の抗体は、多次元ＡＤＤＬを差次的に認識でき、したがって、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を差次的に遮断でき、タウリン酸化を差次的に防止でき、ＡＤＤＬのアセンブリを差次的に阻害できるので、既存のものと識別できる。

本発明に従って使用される抗体は、限定するものではないが、ポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体およびキメラ抗体、ヒト抗体（例えばＢ細胞から単離された抗体）、ヒト化抗体、中和抗体、二重特異性抗体またはこれらの一本鎖抗体を含む。一実施形態において、本発明の抗体はモノクローナルである。抗体の作製のために、ヤギ、ウサギ、トリ、ラット、マウス、ヒトなどを含むさまざまな宿主を、合成または天然のＡＤＤＬを注射することによって免疫化できる。抗体を作製する方法は、当分野において周知である。例えば、Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，１９７５，Ｎａｔｕｒｅ，２５６：４９５−４９７：Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８８を参照されたい。

宿主の種に依存して、さまざまなアジュバントを使用し、免疫応答を増加させることができる。本発明に従って使用されるアジュバントは、応答の質的形態に影響を与える、免疫源の立体構造の変化を引き起こさずに、ＡＤＤＬに対する固有の応答を望ましく増大させる。特に好ましいアジュバントは、３デ−Ｏ−アシル化モノホスホリルリピドＡ（ＭＰＬ（商標）；ＲＩＢＩ ＩｍｍｕｎｏＣｈｅｍ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｃ．，Ｈａｍｉｌｔｏｎ，ＭＴ；ＧＢ２２２０２１１を参照されたい）およびスクワレンまたはピーナッツオイルなどの油中水エマルジョン、モノホスホリルリピドＡなどの免疫刺激剤と組み合わされてもよい（Ｓｔｏｕｔｅら、１９９７，Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．，３３６：８６−９１を参照されたい）、ムラミルペプチド（例えば、Ｎ−アセチルムラリル−Ｌ−トレオニル−Ｄ−イソグルタミン（ｔｈｒ−ＭＤＰ）、Ｎ−アセチル−ノルムラミル−Ｌ−アラニル−Ｄ−イソグルタミン（ノル−ＭＤＰ）、Ｎ−アセチルムラミル−Ｌ−アラニル−Ｄ−イソグルタミニル−Ｌ−アラニン−２−（１’−２’ジパルミトイル−ｓｎ−グリセロ−３−ヒドロキシホスホリルオキシ）−エチルアミン（Ｅ−ＰＥ）、Ｎ−アセチルグルコサミニル−Ｎ−アセチルムラミル−Ｌ−Ａｌ−Ｄ−イソグル−Ｌ−Ａｌａ−ジパルミトイルプロピルアミド（ＤＴＰ−ＤＰＰ））または他の細菌細胞壁成分を含む。油中水エマルジョンの具体例は、５％のスクワレン、０．５％のＴＷＥＥＮ（商標）８０および０．５％のＳＰＡＮ８５（さまざまな量のＭＴＰ−ＰＥが含有されてもよい）を含有する、Ｍｏｄｅｌ １１０Ｙマイクロフルダイザー（Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ、Ｎｅｗｔｏｎ、ＭＡ）などのマイクロフルダイザーを使用してサブミクロン粒子に製剤化されたＭＦ５９（国際公開９０／１４８３７号パンフレット）；サブミクロンエマルジョンにマイクロフルダイズされた、またはボルテックスにかけ、より大きな粒径のエマルジョンを作製するかのいずれかの、１０％スクワレン、０．４％ＴＷＥＥＮ（商標）８０、５％のＰＬＵＲＯＮＩＣ（登録商標）−ブロック化ポリマーＬ１２１およびｔｈｒ−ＭＤＰを含有するＳＡＦ；ならびに２％のスクワレン、０．２％のＴＷＥＥＮ（商標）８０を含有するＲＩＢＩ（商標）アジュバント系（ＲＡＳ）（Ｒｉｂｉ ＩｍｍｕｎｏＣｈｅｍ，Ｈａｍｉｌｔｏｎ、ＭＴ）ならびにモノホスホリルリピドＡ、トレハロースジミコレート（ＴＤＭ）および細胞壁骨格（ＣＷＳ）などの１つまたは複数の細菌細胞壁成分を含む。

別のクラスのアジュバントは、ＳＴＩＭＵＬＯＮ（商標）（ＱＳ−２１、Ａｑｕｉｌａ、Ｆｒａｍｉｎｇｈａｍ、ＭＡ）などのサオポニンアジュバントまたはＩＳＣＯＭ（免疫刺激複合体）およびＩＳＣＯＭＡＴＲＩＸ（登録商標）（ＣＳＬ Ｌｔｄ．、Ｐａｒｋｖｉｌｌｅ、Ａｕｓｔｒａｌｉａ）などのサオポニンアジュバントから作製される粒子である。

他の適切なアジュバントは、完全フロイントアジュバント（ＣＦＡ）、不完全フロイントアジュバント（ＩＦＡ）、水酸化アルミニウムなどのミネラルゲルおよびリゾレシチンなどの界面活性物質、ＰＬＵＲＯＮＩＣ（登録商標）ポリオール、多価陰イオン、ペプチド、ＣｐＧ（国際公開９８／４０１００号パンフレット）、キーホールリンペットヘモシニアン、ジニトロフェノールおよびインターロイキン（ＩＬ−１、ＩＬ−２およびＩＬ−１２）などのサイトカイン、マクロファージコロニー刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）および腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）を含む。ヒトに使用されるアジュバントの中で、ＢＣＧ（カルメット・ゲラン桿菌）およびコオリネバクテリウム・パルヴム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐａｒｖｕｍ）が特に適切である。

多次元構造ＡＤＤＬに対する抗体は、ＡＤＤＬを用いて動物を免疫化することによって作製される。概して、ＡＤＤＬは、合成的または組み換え断片の発現および精製により作製される。合成ＡＤＤＬは、本明細書に開示のように、または米国特許第６，２１８，５０６号明細書および第７，８１１，５６３号明細書または同時係属出願、米国特許出願公開第２００７／０２１８４９９号明細書、米国特許出願公開第２０１０／０１４３３９６号明細書および米国特許出願公開第２０１０／０２４０８６８号明細書に開示の方法に従って調製でき、これらはすべてその全体を参照により本明細書に組み込まれる。さらに、ＡＤＤＬを、キーホールリンペットヘモシニアンなどの別のタンパク質と融合させ、キメラ分子に対する抗体を作製できる。ＡＤＤＬを立体構造的に制限し、本明細書に記載の有用なエピトープを形成でき、さらに、例えば、本発明の抗体により認識される立体構造が作製できるような手段で、表面に物理的に付着または化学的に結合させ、ＡＤＤＬを表面に会合させることができる。

ＡＤＤＬの多次元構造に対するモノクローナル抗体は、培養液中の連続細胞系による抗体分子の産生を提供する任意の技術を使用して調製できる。これらは、限定するものではないが、ハイブリドーマ技術、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ技術およびＥＢＶハイブリドーマ技術を含む（Ｋｏｈｌｅｒら、１９７５，Ｎａｔｕｒｅ ２５６：４９５−４９７；Ｋｏｚｂｏｒら、１９８５，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ８１：３１−４２；Ｃｏｔｅら、１９８３，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８０：２０２６−２０３０；Ｃｏｌｅら、１９８４，Ｍｏｌ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．６２：１０９−１２０）。

特定の実施形態において、本発明の抗体はヒト化抗体である。ヒト化抗体およびキメラ抗体は、適切な抗原特異性および生物学的活性を有する分子を得るための、マウス抗体遺伝子とヒト抗体遺伝子とのスプライシングにより作製できる（Ｍｏｒｒｉｓｏｎら、１９８４，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８１，６８５１−６８５５；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒら、１９８４，Ｎａｔｕｒｅ ３１２：６０４−６０８；Ｔａｋｅｄａら、１９８５，Ｎａｔｕｒｅ ３１４：４５２−４５４；Ｑｕｅｅｎら、１９８９，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：１００２９−１００３３；国際公開第９０／０７８６１号パンフレットを参照されたい）。例えば、マウス抗体はファージ選択ベクター中でＦｖまたはＦａｂ断片として発現される。軽鎖に関する遺伝子（および並行実験において重鎖に関する遺伝子）を、ヒト抗体遺伝子のライブラリと交換する。その後、さらに抗原に結合するファージ抗体を同定する。一般に鎖シャッフリングとして知られるこの方法は、これが由来するマウス抗体と同じエピトープに結合すべきヒト化抗体を提供する（Ｊｅｓｐｅｒｓら、１９９４，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ＮＹ１２：８９９−９０３）。代替として、鎖シャッフリングはタンパク質レベルにおいて実施できる（Ｆｉｇｉｎｉら、１９９４，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２３９：６８−７８を参照されたい）。

ヒト化抗体はまた、ファージディスプレイ法を使用しても得ることができる。例えば、国際公開第９１／１７２７１号パンフレットおよび国際公開第９２／０１０４７号パンフレットを参照されたい。これらの方法において、メンバーがそれらの外表面にさまざまな抗体を表示するファージのライブラリが作製される。抗体は、通常ＦｖまたはＦａｂ断片として表示される。所望の特異性を有する抗体を表示するファージは、ＡＤＤＬに対する親和性濃縮により選択される。ＡＤＤＬに対するヒト抗体もまた、ヒト免疫グロブリン遺伝子座および不活性化された内因性免疫グロブリン遺伝子座のセグメントを少なくともコードするトランス遺伝子を有する非ヒトトランスジェニック哺乳動物から作製できる。例えば、国際公開第９３／１２２２７号パンフレットおよび国際公開第９１／１０７４１号パンフレットを参照されたい。ヒト抗体は、競合的結合実験または他の方法により、特定のマウス抗体と同じエピトープ特異性を有するように選択できる。このような抗体は、概して、マウス抗体の有用な機能的特性を保有する。ヒトポリクローナル抗体もまた、免疫原性剤を用いて免疫化されたヒトからの血清の形態で提供され得る。このようなポリクローナル抗体を、ＡＤＤＬを親和性試薬として使用して親和性精製により濃縮できる。

本明細書において例示するように、ヒト化抗体は、ネズミ抗体のベニヤリングまたはリサーフェシングにより作製できる。ベニヤリングは、マウスの重鎖および軽鎖可変領域中の表面固定領域アミノ酸だけを相同ヒト抗体配列のものと置き換えるステップを伴う。マウス表面アミノ酸と相同ヒト配列からの同じ位置のヒト残基とを置き換えることは、マウス抗体の免疫原性を低減する一方、そのリガンドの結合を保存ことが示されている。外部残基の置き換えは、一般的に内部ドメインまたはドメイン間の接触に対してほとんどまたは全く影響を及ぼさない。例えば、米国特許第６，７９７，４９２号明細書を参照されたい。

ヒト抗体またはヒト化抗体は、ＩｇＧ、ＩｇＤ、ＩｇＡ、ＩｇＭまたはＩｇＥの定常領域およびＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３およびＩｇＧ４を含む任意のアイソタイプを有するように設計することができる。特定の実施形態において、本発明の抗体は、ＩｇＧもしくはＩｇＭまたはこれらの組み合わせである。一具体的実施形態において、本発明の抗体はＩｇＧ２である。当業者は、他のアイソフォームが本明細書において利用できることを理解しているであろう。これらのアイソフォームに関する例示的配列を配列番号４３−４５で示す。本発明の他の実施形態は、ヒトＩｇＧ４配列を標準ヒトＩｇＧ２定常領域へ選択的組み込むことにより形成される定常領域を包含する。例示的突然変異体ＩｇＧ２ Ｆｃは、配列番号４６として示されるＩｇＧ２ｍ４である。抗体は、別々の重鎖および軽鎖として、または重鎖および軽鎖の可変ドメインがスペーサーを介して連結される一本鎖抗体として、２つの軽鎖および２つの重鎖を含有するテトラマーとして発現され得る。一本鎖抗体の作製技術は、当分野において周知である。

ＣＤＲのグラフティングおよびベニヤリングにより作製される例示的ヒト化抗体は、米国特許第７，７８０，９６３号明細書、第７，７３１，９６２号明細書および第７，８１１，５６３号明細書に開示されている。

二重特異性抗体もまた企図される。二重特異性抗体は、結合する抗体の結合ドメイン（重鎖および軽鎖の両方）を単離し、同じポリペプチド鎖上に重鎖および軽鎖を接続または動作可能に連結する連結部位を供給し、その結果結合機能を保存することにより調製された、操作された抗体構築体を指す（Ｈｏｌｌｉｇｅｒら、１９９３，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：６４４４：Ｐｏｌｊａｋ，１９９４．Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ２：１１２１−１１２３を参照されたい）。これは、本質的に、抗原を結合するために必要な可変ドメインだけを有する、根本的に短縮された抗体を形成する。同じ鎖上に２つのドメイン間の対形成を可能にするには短すぎるリンカーを使用することにより、ドメインを、別の鎖の相補的なドメインと強制的に対形成させ、２つの抗原結合部位を作る。これらのダイマー抗体断片または二重特異的抗体は、二価であり二重特異性である。当業者は、二重特異性抗体を作製する任意の方法が使用できることを理解していると思われる。適切な方法は、Ｈｏｌｌｉｇｅｒら、１９９３、上記；Ｐｏｌｊａｋ，１９９４，上記；Ｚｈｕら、１９９６，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １４：１９２−１９６，および米国特許第６，４９２，１２３号明細書により記載され、これらはその全体を参照により本明細書に組み込まれる。

本発明の単離抗体の断片もまた、本発明に明確に包含される。断片は、Ｆａｂ断片、Ｆ（ａｂ’）_２断片、Ｆ（ａｂ’）断片、二重特異性ｓｃＦｖ断片、Ｆｖ断片およびＦａｂ発現ライブラリにより作製される断片ならびにペプチドアプタマーを含むことが意図される。例えば、Ｆ（ａｂ’）_２断片は、本発明の抗体分子のペプシン消化により作製され、一方、Ｆａｂ断片は、Ｆ（ａｂ’）_２断片のジスルフィド結合の還元により作製される。または、Ｆａｂ発現ライブラリが、所望の特異性を有するモノクローナルＦａｂ断片の迅速かつ容易な同定を可能にするように構築できる（Ｈｕｓｅら、１９８９，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５４：１２７５−１２８１を参照されたい）。特定の実施形態において、本発明の抗体断片は、これらの可変領域結合部位を保有する中和抗体の断片、すなわち抗原結合断片である。例示的には、Ｆ（ａｂ’）_２断片、Ｆ（ａｂ’）断片およびＦａｂ断片である。一般的には、Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ：Ｂａｓｉｃ Ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ，１９８５，第２版、Ｊ．Ｂｅｌｌａｎｔｉ（編）９５−９７頁を参照されたい。

ＡＤＤＬの多次元構造を差次的に認識するペプチドアプタマーは、アプタマーのライブラリ（例えば、Ａｐｔａｎｏｍｉｃｓ ＳＡ、Ｌｙｏｎ、Ｆｒａｎｃｅにより提供される）のために合理的に設計またはスクリーニングできる。概して、ペプチドアプタマーは、その設計が抗体の構造に基づく合成の認識分子である。ペプチドアプタマーは、タンパク質足場の両端に結合した可変ペプチドループからなる。この二重の構造的束縛により、ペプチドアプタマーの結合親和性が、抗体の結合親和性（ナノモル範囲）に匹敵するレベルまで大きく増加する。

本発明の抗体および抗体断片の作製に使用する、重鎖および軽鎖の可変領域をコードする例示的核酸配列を、配列番号１４および１６で本明細書に開示する。当業者に理解されるように、配列番号１６で示されるような本明細書に開示の重鎖可変領域を、本明細書に開示の軽鎖可変領域の任意の１つと組み合わせて使用し、親和性、解離、エピトープなどが改良された抗体を作製することができる。

本発明の抗体または抗体断片は、それらに結合する追加の部分を有することができる。例えば、ミクロスフェアまたはミクロ粒子を、米国特許第４，４９３，８２５号明細書に記載されるように抗体または抗体断片に結合でき、この開示はその全体を参照により本明細書に組み込まれる。

さらに、特定の実施形態は、抗原親和性の増加、中和活性（すなわち、ニューロン細胞へのＡＤＤＬの結合を遮断する能力またはＡＤＤＬのアセンブリを遮断する能力）または解離定数の改良に関して突然変異を起こして選択された、抗原または抗原断片を包含する。大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）の突然変異誘発株（Ｌｏｗら、１９９６，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ，２６０：３５９−３６８）、鎖シャッフリング（Ｆｉｇｉｎｉら、１９９４，上記）およびＰＣＲ突然変異誘発は、抗体をコードする核酸分子を突然変異させる確立された方法である。実例を用いて、親和性の増加を、多数のファージ抗体と少量のビオチン化抗原とを、抗体が結合を競争するように接触させることによって選択できる。この場合、抗原分子の数は、ファージ抗体の数を超えていなければならないが、抗原の濃度は、解離定数より多少低くあるべきである。したがって、親和性が増加した、優勢に突然変異を起こしたファージ抗体は、ビオチン化抗原に結合し、一方、より親和性の弱いファージ抗体の大部分は未結合のままである。その後、ストレプトアビジンは、混合物からより親和性の高い、突然変異を起こしたファージ抗体の、濃縮に支援できる。（Ｓｃｈｉｅｒら、１９９６，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２５５：２８−４３）。例示的親和性成熟軽鎖ＣＤＲ３アミノ酸配列を本明細書に開示し（表４を参照されたい）、特定の実施形態は配列番号３の軽鎖ＣＤＲ３アミノ酸配列および配列番号７−１３の具体的実施形態を包含する。本発明は、軽鎖ＣＤＲ１（配列番号５３）およびＣＤＲ２（配列番号５４）に関する代替の変形もさらに包含する。

いくつかの治療適用に関して、抗原からの抗体の解離を減少させることが望ましいと思われる。このことを達成するために、ファージ抗体をビオチン化抗原に結合させ、過剰の非ビオチン化抗原を加える。一定時間後、主に解離定数がより低いファージ抗体をストレプトアビジンを用いて回収できる（Ｈａｗｋｉｎｓら、１９９２，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ ２２６：８８９−９６）。

本明細書に開示のものを含むさまざまな免疫アッセイを、ＡＤＤＬの多次元構造に対して望ましい特異性を有する抗体またはこれらの断片を同定するためのスクリーニングに使用できる。競合的結合（例えばＥＬＩＳＡ）、ラテックス凝集アッセイ、免疫放射定量測定法、ポリクローナルもしくはモノクローナル抗体のいずれかまたはこれらの断片を使用する動態学（例えばＢｉａｃｏｒｅ（商標）分析）に関する多数のプロトコルが当分野において周知である。このような免疫アッセイは、通常、特異的抗体およびその同種抗原との間の複合体形成の測定を伴う。２つの非干渉性エピトープに反応性のモノクローナル抗体を利用する、２つの部位のモノクローナルに基づく免疫アッセイが適切であるが、競合的結合アッセイもまた用いることができる。このようなアッセイもまた、試料中のＡＤＤＬの多次元構造の検出に使用することができる。

中和活性または薬理学的活性および予防薬または治療薬としての有効性の可能性を評価するために、抗体または抗体断片を、他の生物学的活性アッセイ、例えばニューロンもしくは培養された海馬細胞に対するＡＤＤＬの結合の置き換えまたはＡＤＤＬアセンブリの遮断に供することもできる。このようなアッセイは本明細書に記載されており、当分野において周知である。

抗体および抗体の断片は、ハイブリドーマとして作製および維持でき、または代替的、組み換え的によく確立されている発現システムで作製され、限定するものではないが、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）、酵母（例えばサッカロミセス属（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｓｐｐ．）およびピキア属（Ｐｉｃｈｉａ ｓｐｐ．））、バキュロウイルス、哺乳動物細胞（例えば、骨髄腫、ＣＨＯ、ＣＯＳ）、植物またはトランスジェニック動物（Ｂｒｅｉｔｌｉｎｇ ａｎｄ Ｄｕｂｅｌ，１９９９，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．，ＮＹ，ｐｐ．１１９−１３２）を含む。任意の十分確立された発現系において組み換え的に作製できる。抗体および抗体の断片は、限定するものではないが、アフィニティクロマトグラフィー、免疫グロブリン結合分子（例えば、プロテインＡ、Ｌ、ＧまたはＨ）、抗体または抗体断片に動作可能に連結されたタグ（例えば、Ｈｉｓ−タグ、ＦＬＡＧ（登録商標）−タグ、Ｓｔｒｅｐタグ、ｃ−ｍｙｃタグ）などを含む任意の適切な方法を使用して単離することができる。Ｂｒｅｉｔｌｉｎｇ ａｎｄ Ｄｕｂｅｌ，１９９９上記を参照されたい。

本発明の抗体および抗体断片は、ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患の診断、ニューロン細胞へのＡＤＤＬの結合の遮断または阻害、ＡＤＤＬのアセンブリの遮断、ＡＤＤＬに関連する疾患の予防的治療または治療的治療、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を防止する治療薬およびＳｅｒ２０２／Ｔｈｒ２０５のタウタンパク質のリン酸化を防止する治療薬の同定を含む、さまざまな使用を有する。

本発明の抗体および抗体断片は、ニューロン細胞へのＡＤＤＬの結合の遮断または阻害のための方法において有用である。本発明のこの方法を、インビトロまたはインビボで、ニューロンと本発明の抗体または抗体断片とを、ニューロンへのＡＤＤＬの結合が遮断されるように接触させることによって実施する。特定の実施形態において、本発明の抗体または抗体断片は、抗体または抗体断片の不在下におけるＡＤＤＬの結合と比較して、ＡＤＤＬの結合において少なくとも１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％または９７％の減少を達成する。抗体がニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断できる程度は、本明細書に開示の方法、すなわち、免疫細胞化学または細胞の基づくアルカリホスファターゼアッセイまたは任意の他の適切なアッセイに従って決定することができる。ニューロン細胞へのＡＤＤＬの結合を減少させるために特に有用な抗体は、米国特許第７，７３１，９６２号明細書、第７，７８０，９６３号明細書および第７，８１１，５６３号明細書に示される例示的抗ＡＤＤＬ抗体ならびにこれらの誘導体および断片を含む。

本発明の抗体および抗体断片は、ＡＤＤＬのアセンブリを遮断または阻害するための方法においてさらに有用である。この方法は、アミロイドβ１−４２ペプチドを含有する試料と、本発明の抗体または抗体断片とを、ＡＤＤＬのアセンブリが阻害されるように接触させるステップを伴う。抗体が、ＡＤＤＬのアセンブリを遮断できる程度は、本明細書に開示の方法、すなわち、ＦＲＥＴもしくは蛍光偏光または任意の他の適切なアッセイに従って決定することができる。ＡＤＤＬのアセンブリを遮断するために特に有用な抗体は、配列番号１０で示されるＣＤＲ３アミノ酸配列を有する抗ＡＤＤＬ抗体ならびにこれらの誘導体および断片を含む。

本明細書に開示の抗体は、Ｓｅｒ２０２／Ｔｈｒ２０５のタウタンパク質のリン酸化を防止する方法においてもまた有用である。この方法は、タウタンパク質を含有する試料と、本発明の抗体または抗体断片とを、ニューロンへのＡＤＤＬの結合が遮断され、その結果タウタンパク質のリン酸化が防止されるように接触させるステップを伴う。抗体が、Ｓｅｒ２０２／Ｔｈｒ２０５タウタンパク質のリン酸化を防止できる程度は、本明細書に開示の方法または任意の他の適切なアッセイに従って決定することができる。

ニューロンへのＡＤＤＬの結合の遮断または減少、ＡＤＤＬのアセンブリの阻害およびＳｅｒ２０２／Ｔｈｒ２０５タウタンパク質のリン酸化の防止はすべて、ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患の予防的治療または治療的治療の方法における適用が見出される。したがって本発明は、本明細書の抗体または抗体断片の、ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患（例えば、アルツハイマー病または類似の記憶関連障害）の予防または治療への使用もまた包含する。当分野における証拠は、Ａβのレベルの上昇が、アルツハイマー病関連認知症およびその後のタウの異常を引き起こすが、凝集されたプラークは必ずしもそうではないことを示している。Ａβ由来拡散性リガンドはアルツハイマー病に関連する神経毒性に直接関与する。当分野は、ＡＤＤＬが、トランスジェニックマウスおよびアルツハイマー病患者において上昇し、動物モデルにおける記憶を助ける過程に関連する機能活性を調節することを示している。したがって、Ａβのこの型を取り除くことにより、アルツハイマー病に関連する神経毒性からの解放を提供できる。したがって、中枢神経系のＡＤＤＬ負荷を減少させる本発明の抗体を用いた治療は、アルツハイマー病の治療に有効であることを証明できる。治療を受け入れられる患者は、疾患の危険性があるが症状を示さない個体ならびに現在症状を示している患者を含む。アルツハイマー病の場合、彼または彼女が十分長く生きていれば、事実上誰もがアルツハイマー病を患う危険性がある。したがって、本発明の抗体または抗体断片は、対象患者の危険性の評価をなんら必要とせずに一般集団に予防的に投与することができる。本方法は、アルツハイマー病の公知の遺伝的危険性を有する個体に特に有用である。このような個体は、この疾患であることが診断された親類を有する人々およびその危険性が、遺伝子マーカーまたはバイオマーカーの分析により決定された人々を含む。アルツハイマー病の危険性の遺伝子マーカーは、ＡＰＰ遺伝子中の突然変異、特に、それぞれＨａｒｄｙ突然変異およびＳｗｅｄｉｓｈ突然変異と称される、７１７位ならびに６７０および６７１位における突然変異を含む。危険性の他のマーカーは、プレセニリン遺伝子ＰＳ１およびＰＳ２ならびにＡｐｏＥ４における突然変異、アルツハイマー病の家族歴、高コレステロール血症またはアテローム性動脈硬化である。現在アルツハイマー病を患っている個体を、特徴的な認知症ならびに上記の危険因子の存在から認識することができる。さらに、多くの診断試験が、アルツハイマー病を有する個体を同定するために利用可能である。これらは、ＣＳＦタウおよびＡβ１−４２のレベルの測定を含む。アルツハイマー病を患っている個体もまた、ＡＤＲＤＡ基準または本明細書に開示の方法によって診断することができる。

無症候性の患者において、治療は任意の年齢で開始することができる（例えば、１０、２０、３０歳）。しかし、普通は患者が４０、５０、６０または７０歳に達するまで治療を開始する必要はない。治療は通常、一定期間にわたる複数回投薬を伴う。治療は、継時的にＡＤＤＬの存在に関するアッセイによってモニターすることができる。

治療適用において、本発明の抗体または抗体断片を含有する医薬組成物または医薬品を、ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患が疑われる患者またはすでに患っている患者に、その合併症および疾患の発症における中間の病理学的表現型を含む、疾患の症状（生化学的、組織学的および／または行動性）を治癒する、または少なくとも部分的に停止させるために十分な量で投与する。予防適用において、本発明の抗体または抗体断片を含有する医薬組成物または医薬品を、ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患が感染しやすい患者またはその危険性がある患者に、患者において受動免疫が得られるために十分な量で投与し、その結果危険性を排除または減少させ、重症度を低下させ、または疾患の生化学的、組織学的および／または行動性の症状、その合併症および疾患の発症の間に提示される中間の病理学的表現型を含む、疾患の発症を遅延させる。いくつかの方法において、薬剤の投与は、特徴的なアルツハイマー病の病理を未だ発症していない患者における筋認識障害（ｍｙｏｃｏｇｎｉｔｉｖｅ ｉｍｐａｉｒｍｅｎｔ）を減少させる、または排除する。特定の実施形態において、本発明の抗体または抗体断片の有効量は、治療の不在下におけるＡＤＤＬの結合と比較して、患者におけるニューロンへのＡＤＤＬの結合が、少なくとも１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％または９７％の減少を達成する量である。したがって、長期増強／記憶形成の機能障害が減少される。

上記の病態の治療に関する本発明の組成物の有効な用量は、投与の手段、患者の生理学的状態、患者がヒトまたは動物であるかどうか、投与される他の薬剤および治療が予防的であるかまたは治療的であるかどうかなどを含む、多くのさまざまな因子に依存して変動する。普通、患者はヒトであるが、イヌまたはトランスジェニック哺乳動物などの非ヒト哺乳動物もまた治療することができる。

治療投薬量は、一般的に、安全性および有効性を最適化するように用量設定される。抗体または抗体断片を用いた受動免疫化に関して、宿主体重に対して約０．０００１から１００ｍｇ／ｋｇ、より普通には０．０１から５ｍｇ／ｋｇの投薬量範囲が適切である。例えば、投薬量は、１ｍｇ／ｋｇ体重もしくは１０ｍｇ／ｋｇ体重または１−１０ｍｇ／ｋｇの範囲内であってよい。いくつかの方法において、異なる結合特異性を有する２種以上の本発明の抗体を同時に投与し、この場合において、投与される各抗体の投薬量は、表示の範囲内にある。抗体は普通複数の機会に投与され、１回の投薬の間隔は、週に１回、月に１回または１年に１回であってよい。例示的治療レジメンは、皮下投薬、２週間に１回または月に１回を必要とする。間隔は、患者におけるＡＤＤＬに対する抗体の血中レベルの測定により示されるように、不定期であってもよい。いくつかの方法において、投薬量は、１−１０００μｇ／ｍＬの血漿抗体濃度を達成するように調整され、いくつかの方法においては、２５−３００μｇ／ｍＬの血漿抗体濃度を達成するように調整される。または、抗体または抗体断片は、持続放出製剤として投与でき、この場合、必要な投与の頻度は少なくなる。投薬量および頻度は、患者における抗体の半減期に依存して変動する。概して、ヒト抗体およびヒト化抗体は、キメラ抗体および非ヒト抗体より長い半減期を有する。上記のように、投与の投薬量および頻度は、治療が予防的であるか治療的であるかどうかに依存して変動し得る。予防適用において、比較的低い投薬量を、比較的低頻度の間隔で長期にわたって投与する。一部の患者は、彼らの生涯にわたって治療を受け続ける。治療適用において、比較的高い投薬量を比較的短い間隔で、時として疾患の進行が減少または終了するまで、および好ましくは患者が、疾患の症状の部分的または完全な改善を示すまで要求される。その後、患者は予防的管理体制を投与され得る。

本発明の抗体および抗体断片は、医薬組成物または医薬品の成分として投与され得る。医薬組成物または医薬品は、一般的に活性治療薬およびさまざまな他の医薬として許容可能な成分を含有する。Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ，Ａｌｆｏｎｓｏ Ｒ．Ｇｅｎｎａｒｏ編、第２０版、Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ Ｗｉｌｌｉａｍｓ ＆ Ｗｉｌｋｉｎｓ：Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ，ＰＡ，２０００を参照されたい。好ましい形態は、投与の意図された様式および治療適用に依存する。医薬組成物は、所望の製剤に依存して、医薬として許容可能な非毒性担体または希釈剤を含有してよく、これらは動物またはヒトへの投与のための医薬組成物を製剤化するために一般的に使用されるビヒクルとして定義される。希釈剤は、組み合わせる生物学的活性に影響を与えないように選択される。このような希釈剤の例は、蒸留水、リン酸緩衝生理食塩水、リンゲル液、デキストロース溶液およびハンクス液である。

医薬組成物はまた、大型の、緩慢に代謝される巨大分子、例えばタンパク質、キトサンなどの多糖類、ポリ乳酸、ポリグリコール酸およびコポリマー（例えば、ラテックス官能化ＳＥＰＨＡＲＯＳＥ（商標）、アガロース、セルロースなど）、重合体アミノ酸、アミノ酸コポリマーおよび脂質凝集体（例えば、油的またはリポソーム）も含むことができる。

本発明の医薬組成物または医薬品の投与は、限定するものではないが、経口、局所、経肺、直腸、皮下、皮内、鼻腔内、頭蓋内、筋肉内、眼球内もしくは髄腔内または関節内注射などを含む、さまざまな経路で実施できる。投与のもっとも典型的な経路は静脈内、次いで皮下であるが、他の経路も同等に有効であり得る。

筋肉内注射もまた、腕または足の筋肉に実施できる。いくつかの方法において、薬剤は、沈着物が蓄積する特定の組織に直接注射され、例えば、頭蓋内または髄腔内注射である。いくつかの実施形態において、抗体または抗体断片は、頭蓋またはＣＳＦに直接注射される。他の実施形態において、抗体または抗体断片は、持続放出の組成物または装置、例えばＭＥＤＩＰＡＤ（商標）装置として投与される。

非経口投与に関して、本発明の抗体または抗体断片は、水、油、食塩水、グリセロールまたはエタノールなどの無菌の液体であってよい医薬担体を含む、生理学的に許容可能な希釈剤中の該物質の溶液または懸濁液の注射可能な剤形として投与できる。さらに、湿潤剤または乳化剤、界面活性剤、ｐＨ緩衝物質などの補助物質が、組成物中に存在してもよい。医薬組成物の他の成分は、石油、動物、植物または合成起源のもの、例えば、ピーナッツ油、ダイズ油および鉱物油である。一般的には、プロピレングリコールまたはポリエチレングリコールなどのグリコールが、特に注射可能な溶液に適切な担体である。抗体は、活性成分の持続放出を可能にするような様式で製剤化できる、デポー注射または移植調製物の形態で投与することができる。

例示的組成物は、等張の緩衝食塩水（１０ｍＭのヒスチジン、１５０ｍＭの塩化ナトリウム、０．０１％（ｗ／ｖ）のＰＯＬＹＳＯＲＢＡＴＥ８０、ｐＨ６．０）中少なくとも１０ｍｇ／ｍｌの濃度で滅菌の透明な溶液として製剤化された、本発明の単離された抗体またはこれらの抗体断片を含有する。例示的抗体製剤は単回投与として充填され、０．６ｍｌのガラスバイアルに３．３ｍｌの溶液／バイアルを充填した。個々のバイアルは、ＴＥＦＬＯＮによりコーティングされたストッパーにより塞がれ、アルミニウムキャップで密閉される。

通常、組成物は、溶液または懸濁液のいずれかとして注射可能に調製され、注射前に液体ビヒクル中の溶液または懸濁液に適した固形もまた調製できる。調製物はまた、送達を強化するために、乳化されても、またはポリラクチド、ポリグリコリドもしくはコポリマーなどのリポソームもしくはミクロ粒子中にカプセル化されてもよい。

坐薬に関しては、結合剤および担体は、例えば、ポリアルキレングリコールまたはトリグリセリドを含み、このような坐薬は、０．５％から１０％、より望ましくは１％−２％の範囲で活性成分を含有する混合物から形成することができる。

経口製剤は、医薬グレードのマンニトール、ラクトース、デンプン、ステアリン酸マグネシウム、サッカリンナトリウム、セルロースおよび炭酸マグネシウムなどの賦形剤を含む。これらの組成物は、溶液、懸濁液、錠剤、丸薬、カプセル、持続放出製剤または粉末の形態をとり、１０％−９５％の活性成分またはより適切には２５％−７０％の活性成分を含有する。

局所適用は、経皮送達または皮内送達をもたらすことができる。局所投与は、薬剤とコレラ毒素またはこれらの解毒された誘導体もしくはサブユニットまたは他の類似の細菌毒素とを同時投与することにより容易にすることができる（Ｇｌｅｎｎら、（１９９８）Ｎａｔｕｒｅ ３９１：８５１を参照されたい）。同時投与は、成分を混合物として、または化学的架橋または融合タンパク質としての発現により得られる連結分子として使用することによって達成することができる。

または、経皮送達は、皮膚経路を使用して、またはトランスフェルソームを使用して達成することができる（Ｐａｕｌら、１９９５，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２５：３５２１−３５２４；Ｃｅｖｃら、１９９８，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ １３６８：２０１−２１５）。

本発明の抗体または抗体断片は、アミロイド形成性疾患の治療に少なくとも部分的に有効である他の薬剤と組み合わせて投与されてもよい。例えば、本抗体は、アルツハイマー病の既存の待機治療、例えば、ＡＲＩＣＥＰＴ（商標）、ＥＸＥＬＯＮ（商標）およびＲＥＭＩＮＹＬ（商標）などのアセチルコリンエステラーゼ阻害剤ならびにＮＭＤＡアンタゴニスト、ＮＡＭＥＮＤＡ（商標）などと一緒に投与されてもよい。これらの認可された治療に加えて、本抗体を使用して、アルツハイマー病の治療のために現在開発中の、任意のいくつかの取り組みに相乗的／相加的利益を提供でき、これらは限定するものではないが、Ａβの産生および凝集の阻害剤を含む。

本発明の抗体および抗体断片はまた、ニューロン（例えば海馬細胞）へのＡＤＤＬの結合を防止し、その結果ＡＤＤＬに起因する下流事象を防止する治療薬の同定において適用が見出されている。このようなアッセイは、ニューロンとＡＤＤＬとを薬剤の存在下で接触させ、本発明の抗体断片の抗体を使用して、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を薬剤の存在下で決定することによって実施される。当業者に理解されるように、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断する薬剤は、薬剤と接触したことがないニューロンと比較して、ニューロンに結合したＡＤＤＬの量を減少させるものであり、この量は、本発明の抗体および抗体断片を用いる免疫アッセイにおいて検出可能である。ニューロン結合ＡＤＤＬを検出するための適切な免疫アッセイを、本明細書に開示する。

本明細書に提供した方法を使用してスクリーニングされ得る薬剤は、多数の化学的クラスを包含するが、通常、それらは有機分子、好ましくは１００ダルトンより大きく、約２，５００ダルトン未満の分子量を有する低分子有機化合物である。薬剤は、タンパク質、特に水素結合との構造的相互作用に必要な官能基を包含し、通常、少なくともアミン、カルボニル、ヒドロキシルまたはカルボキシル基、好ましくは官能化学基の少なくとも２つを含む。薬剤は多くの場合、環状炭素または複素環構造および／または上記官能基の１つまたは複数が置換された芳香族もしくは多環芳香族構造を含有する。薬剤はまた、ペプチド、抗体、単糖類、脂肪酸、ステロイド、プリン、ピリミジン、誘導体、構造的アナログまたはこれらの組み合わせを含む生体分子の中に見出され得る。薬剤は、天然または合成の化合物のライブラリを含む広範囲の供給源から得られる。

塩および中和タンパク質などのさまざまな他の試薬を、スクリーニングアッセイに含むことができる。さらに、プロテアーゼ阻害剤、ヌクレアーゼ阻害剤、抗菌剤などの、アッセイの効率を改良する別の試薬を使用することができる。成分の混合物は、必要な結合を提供する任意の順番で加えることができる。

本発明のスクリーニングアッセイにより同定される薬剤は、アミロイド形成性疾患および／またはタウオパシーの治療に有利であると思われる。さらに、これらのコンセプトを例示するために使用される実験系は、タウリン酸化のアミロイドベータ誘導に関連する新規な薬剤標的の評価、同定およびスクリーニングのための調査ツールを提示することが企図される。

本発明はまた、本明細書の抗体または抗体断片を使用する、ＡＤＤＬを検出する方法およびＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患を診断する方法を提供する。ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患は、ＡＤＤＬの蓄積が長期増強／記憶形成の生理学的機能障害をもたらす任意の疾患を含むことが意図される。この型の疾患は、限定するものではないが、アルツハイマー病および類似の記憶関連疾患を含む。

これらの方法に従って、患者由来の試料を本発明の抗体または抗体断片と接触させ、抗体または抗体断片と試料との結合が、試料中のＡＤＤＬの存在の指標である。本発明の関連で使用する場合、試料は、免疫アッセイを使用する分析を受け入れられる任意の体液または組織を意味することが意図される。本発明の方法に従って分析できる適切な試料は、限定するものではないが、患者（例えば、ヒトなどの哺乳動物）由来の脳の生検試料および液体試料を含む。インビトロ目的に関しては（例えば、オリゴマー形成をモニタリングするアッセイにおいて）、試料はニューロン細胞系または組織試料であってよい。診断目的に関しては、試料は、ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患を有することが疑われる個体またはＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患を有する危険性がある個体、例えば、個体がＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患にかかりやすい家族歴を有する個体由来であってよいことが企図される。

試料における抗体または抗体断片とＡＤＤＬとの結合の検出は、任意の標準免疫アッセイ（例えば本明細書に開示のアッセイ）を使用して実施することができ、または抗体断片が例えばペプチドアプタマーである場合、結合は、例えば、アプタマーに融合された検出可能なマーカータンパク質（例えば、β−ガラクトシダーゼ、ＧＦＰまたはルシフェラーゼ）により直接検出できる。その後、ＡＤＤＬ−抗体複合体の存在または不在が、試料中のＡＤＤＬのそれぞれ存在または不在、したがって、ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患のそれぞれ存在または不在と相関する。本発明の１種または複数種の抗体または抗体断片を、現在の非侵襲性の免疫に基づく画像化技術と併せて使用し、ＡＤＤＬの蓄積に関連する疾患の検出および早期診断を大幅に強化できることが企図される。

診断を容易にするために、本発明はまた、本明細書の抗体または抗体断片を含有するキットに関する。このキットは、ＡＤＤＬの多次元構造を認識する、１種または複数種の抗体または抗体断片を保持する容器および抗体をＡＤＤＬへの結合目的で使用し、抗体−抗原複合体を形成させ、抗体−抗原複合体の存在または不在が、試料中のＡＤＤＬの存在または不在と相関するような抗体−抗原複合体の形成を検出するための取り扱い説明書を含む。容器の例は、多数試料におけるＡＤＤＬの同時検出を可能にするマルチウェルプレートを含む。

本明細書に引用したすべての参考文献は、その全体を参照により本明細書に組み込まれる。本発明を、以下の限定されない実施例により、より詳細に記載する。

以下の略称を本明細書において使用する：Ａｂ：抗体；Ａβ：アミロイドベータタンパク質；ＡＤ：アルツハイマー病；ＡＤＤＬ：アミロイドβ（Ａβ）由来拡散性リガンド；Ａｇ：抗原；ＡＰＰ：アミロイド前駆体タンパク質；ｂＡＤＤＬ：ビオチン化ＡＤＤＬ；ＣＳＦ：脳脊髄液；ＤＭＳＯ：ジメチルスルホキシド；ｈＡＰＰ：ヒトアミロイド前駆体タンパク質；ＨＡＴ培地：ヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジン培地；ＨＦＩＰ：ヘキサフルオロ−２−プロパノール；ＩＶ：静脈内；ＬＢ寒天：溶原ブロス寒天；ＳＣ：皮下；ＰＢＳ：リン酸緩衝生理食塩水；ＴＥＡ：トリエチルアミン。

一般的材料および方法
Ａ．ＡＤＤＬモノクローナル抗体の作製
本明細書において「合成」ＡＤＤＬと称される種である可溶性Ａβオリゴマーを、完全フロイントアジュバント（初回および２回目のワクチン接種）または不完全フロイントアジュバント（その後のすべてのワクチン接種）と１：１で混合し、皮下注射（最初の２回のワクチン接種）または腹腔内注射により３匹のマウスに、全容積１ｍＬ／マウスを与えた。個々の注射は、１９４±２５μｇの総タンパク量に相当する精製ＡＤＤＬからなった。マウスに、およそ３週間ごとに注射した。６回の注射後、１匹のマウスが死亡し、その脾臓を凍結した。もっとも高い力価の血清を有するマウス由来の脾臓を、その後ポリエチレングリコールの存在下でＳＰ２／０骨髄腫細胞と融合させ、６枚の９６ウェルプレートに播種した。細胞を、３７℃、５％ＣＯ_２で１０日間、２００μＬのヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジン（ＨＡＴ）選択培地において培養し、ＨＡＴ選択培地は、イスコフ改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ）、（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）などの栄養強化合成培地に１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、１μｇ／ｍＬのＨＹＢＲＩ−ＭＡＸ（登録商標）（アザセリン−ヒポキサンチン；Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、ＭＯ）およびＳＰ２／０細胞培養液から回収した３０％の馴化培地を補足して構成されている。培養液に、１０％のＦＢＳを補足したＩＭＤＭ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を、１０日目に一度供給し、培養上清を１４日目に取り除き、ＥＬＩＳＡにおいて陽性のウェルをスクリーニングした。陽性培養液を、限界希釈法により０．３細胞／ウェルの確率でさらにクローニングした。陽性クローンをＥＬＩＳＡにおいて確認し、さらに拡大（ｅｘｐａｎｄｅｄ）した。その後、モノクローナル抗体を作製し、使用のために精製した（ＱＥＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）。

Ｂ．ＡＤＤＬおよびｂＡＤＤＬの調製
ＡＤＤＬを、すでに記載の方法を使用して調製した（Ｈｅｐｌｅｒら、２００６，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，４５：１５１５７−１５１６７；Ｓｈｕｇｈｒｕｅら、２０１０，Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ，３１：１８９−２０２）。

簡潔に言うと、合成Ａβ１−４２ペプチド（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｐｅｐｔｉｄｅ、Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ、ＣＡ）を、ヘキサフルオロ−２−プロパノール（ＨＦＩＰ）に１０ｍｇ／ｍｌの濃度で溶解し、室温（ＲＴ）で１時間インキュベートした。ペプチド溶液を、ポリプロピレンの１．５ｍｌの微小遠心管中に５０μｌのアリコートに分配した。ＨＦＩＰを、ＳｐｅｅｄＶａｃ（登録商標）（Ｔｈｅｒｍｏ−Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）を使用して取り除き、得られたペプチドフィルムを、必要となるまで−７０℃において保存乾燥させた。０．５ｍｇの乾燥ＨＦＩＰフィルムを、２２μｌの無水ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）に、ボルテックスミキサーにおいて１０分間撹拌しながら溶解した。次いで、１ｍｌのフェノールレッドを含まない低温ハムＦ１２培地（Ｕｎｉｔｅｄ Ｂｉｏｓｏｕｒｃｅ、Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ、ＣＡ）を急速にＤＭＳＯ／ペプチド混合物に加えた。管に蓋をし、反転させ、完全な混合を確実にし、４℃において一晩インキュベートした。翌朝試料を、１０分間、１２，０００×ｇでＢｅｃｋｍａｎ ｍｉｃｒｏｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ（Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ、Ｂｒｅａ、ＣＡ）において２−８℃で作動させ、遠心分離した。上清を回収し、ｙｍ５０（分子カットオフ５０，０００ｋＤａ）Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎ（登録商標）遠心ろ過機（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、ＭＡ）を介してろ過し、オリゴマー種を濃縮した。ビオチン化ＡＤＤＬ（ｂＡＤＤＬ）を同じ方法を使用して調製したが、Ｎ末端ビオチン化Ａβ１−４２ペプチド（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｐｅｐｔｉｄｅ、Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ、ＣＡ）で開始した。

Ｃ．モノマーおよび線維の調製
モノマー調製物を作製するために、ＲＴ Ａβ１−４０またはＡβ１−４２ペプチドフィルムを、２ｍＬの２５ｍＭホウ酸緩衝液（ｐＨ８．５）／ペプチド１ｍｇに溶解し、アリコートに分割し、使用まで−７０℃において凍結した。線維調製物を、２ｍＬの１０ｍＭ塩酸／Ａβ１−４２ペプチドフィルム１ｍｇを加えることによって作製した。溶液をボルテックスミキサーにおいて、可能な限り低い速度で５分から１０分間混合し、得られた調製物を使用まで３７℃において１８から２４時間保存した。

Ｄ．初代ニューロン
初代ニューロン培養液を、ＢｒａｉｎＢｉｔｓ（Ｓｐｒｉｎｇｆｉｅｌｄ、ＩＬ）から購入したラットの海馬および／または皮質組織から調製した。解離後、細胞を３５，０００細胞／ウェルでラミニンおよびポリ−Ｄ−リジンで予備コーティングされた９６ウェルプレートにプレーティングした（Ｃｏｒｎｉｎｇ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｗｅｌｌ、ＭＡ）。細胞を、３７℃、５％ＣＯ_２で培地（２％のＢ２７、１％のＬ−グルタミンおよび１％のｐｅｎ／ｓｔｒｅｐを補足したＮｅｕｒｏｂａｓａｌ；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）において２−３週間維持し、その後結合研究に使用した。

Ｅ．細胞に基づくＡＤＤＬ結合アッセイ
抗ＡＤＤＬ抗体がＡＤＤＬの結合を遮断する効果を測定するために、抗ＡＤＤＬ抗体を５００ｎＭのｂＡＤＤＬと混合し、最終抗体濃度は１．８ｎＭから４５０ｎＭに及んだ。対照として、同じ濃度の熱変性（９８℃、３０分間）させた抗体を、ｂＡＤＤＬと混合させた。抗体−ｂＡＤＤＬ混合物を、シリコン処理をした微小遠心管（Ｆｉｓｃｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｐｉｔｔｓｂｕｒｇｈ、ＰＡ）において、低速で初めから終わりまで一定速度で回転しながら、３７℃で１時間インキュベートした。その後、混合物を、初代海馬および／または皮質培養液に適用し、３７℃において１時間インキュベートした。インキュベーションを、培養培地を取り除くことによって終了させた。細胞を、上記のように固定化および固定後処理に供した。その後、細胞をストレプトアビジン標識アルカリホスフェート（ＡＰ）と一緒に一晩４℃においてインキュベートし、ＰＢＳで５回洗浄し、Ｔｒｏｐｉｘ（登録商標）ＣＤＰ（登録商標）−Ｓｔａｒ化学発光基質（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（商標）、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）と一緒に室温において３０分間反応させた。ｂＡＤＤＬの結合強度を、ＥｎＶｉｓｉｏｎ（登録商標）マイクロプレートリーダー（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）を用いて測定し、記録した。

Ｆ．ＥＬＩＳＡ
ビオチン化ＡＤＤＬ（ｂＡＤＤＬ）またはモノマーＡβ１−４０またはＡβ１−４２を、ＰＢＳ中１００μｌ／ウェルのコーティング試薬を１μＭで用いた高容量ストレプトアビジンコーティングプレート（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）に加え、２時間、室温においてインキュベートした。プレートを、０．０５％Ｔｗｅｅｎを含むＰＢＳ中で洗浄し（６回）、その後ＰＢＳ単独（３回）で洗浄し、その後ＰＢＳ中５％脱脂粉乳を用いて、１時間、室温においてウェルを遮断した。その後ウェルを洗浄し、抗体試料の段階希釈液をプレートに加え、２時間、室温において結合させた。インキュベーションおよび洗浄後、抗体の結合を、ホースラッディシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）で標識されたヤギ抗ヒトＩｇＧ−Ｆｃ二次抗体を用いて検出した（１：１，０００；１時間、室温において）。ＨＲＰ標識を、テトラメチルベンジジン（Ｖｉｒｏｌａｂｓ、Ｃｈａｎｔｉｌｌｙ、ＶＡ）を基質として用いて可視化し、マイクロプレートリーダーにおいて４５０ｎｍで読み取った。

抗ＡＤＤＬ抗体の選択
Ａ．ヒト化抗体ライブラリのパニング
軽鎖ＣＤＲ３アミノ酸配列の一部がランダム突然変異誘発に供された、ヒト化抗ＡＤＤＬ抗体の親和性成熟ライブラリ、ｈ３Ｂ３（米国特許出願公開第２００６／０２２８３４９号明細書および第２００８／０１７５８３５号明細書を参照されたい）を構築した。全ＣＤＲ３領域を占めるために、２つのサブライブラリを作り上げた。１つのライブラリは、親の重鎖可変領域重鎖および軽鎖ＣＤＲ３の左半分の変異アミノ酸で構成され、他方は軽鎖ＣＤＲ３の右半分の変異アミノ酸で構成される。同様の戦略を、３つのサブライブラリを用いた重鎖ＣＤＲのランダム突然変異誘発に使用した。

ヒト化３Ｂ３（ｈ３Ｂ３）を、当分野において公知の方法を使用して親和性成熟に供した。ｈ３Ｂ３可変領域を、Ｆａｂディスプレイベクター（ｐＦａｂ３Ｄ）にクローニングした。このベクターにおいて、重鎖および軽鎖に関する可変領域をインフレームで挿入し、それぞれ、定常領域のＣＨ１ドメインおよびカッパ定常領域に一致させた。Ｆａｂ３Ｄにおいて、ｍｙｃエピトープおよび６個の連続するヒスチジンアミノ酸がＣＨ１配列の後に続き、これを、次にファージｐＩＩＩタンパク質にディスプレイのために連結する。重鎖および軽鎖のＣＤＲ３のすべての位置を、ＰＣＲプライマーを組み入れた縮重オリゴヌクレオチド配列を使用してランダムに突然変異誘発した。物理的サイズを適合させるために、サブライブラリを、それぞれ５−６アミノ酸に焦点を合わせて構築した。ヒト３Ｂ３（Ｈ３Ｂ３）のベクターＤＮＡを鋳型ＤＮＡとして使用して、重鎖および軽鎖両方を、変異ＰＣＲプライマーを用いて増幅させた（表１）。ＰＣＲ増幅後、合成されたＤＮＡ断片を、１．３％アガロースゲルに泳動させ、プライマーを取り除き、制限酵素を用いて可変断片を消化した：軽鎖可変クローニングに関してはＢｓｉＷＩおよびＸｂａＩクローニング部位、重鎖可変クローニングに関してはＸｈｏｌおよびＡｐａＩクローニング部位。

ｐＦａｂ３Ｄファージディスプレイベクター中に親和性成熟ライブラリを構築するために、ｐＦａｂ３Ｄ−３Ｂ３のＤＮＡを、制限酵素の同じ対を用いて消化し、精製し、重鎖または軽鎖可変領域に関するＰＣＲ断片を、Ｔ４リガーゼ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて一晩、１６℃においてライゲ―ションした。ライゲ―ション産物を、その後、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）ＴＧＩエレクトロポレーションコンピテント細胞（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｓａｎｔａ Ｃｌａｒａ、ＣＡ）にトランスフェクトし、細菌培養液のアリコートをＬＢ寒天−カルベニシリン（５０μｇ／ｍＬ）プレートにプレーティングし、ライブラリサイズを滴定した。残りの培養液を、カルベニシリンを含む大型のプレートにプレーティングし、大腸菌ライブラリストックのために３０℃において一晩イキュベートするか、または、室温および３７℃において１０分間インキュベートすることによって、ヘルパーファージＭ１３Ｋ０７（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ、１０^１１ｐｆｕ／ｍＬ）に感染させるかのいずれかであった。その後、カルベニシリンを含む２ＹＴ培地（５０μｇ／ｍＬ）を加え、振とうしながら３７℃において１時間インキュベートした。次いでカナマイシン（７０μｇ／ｍｌ）を加え、培養液を振とうしながら３０℃において一晩成長させた。ファージ培養液上清を滴定し、２０％（ｖ／ｖ）のＰＥＧ（ポリエチレングリコール）／ＮａＣｌを用いて沈殿させることによって濃縮し、ＰＢＳに再懸濁し、０．２２μｍのフィルターを用いて滅菌し、ファージライブラリのパニングのためにアリコートを作った。

その後、ファージライブラリのパニングを、表２に要約したように実施した。

Ｆａｂディスプレイファージライブラリからのインプットファージ（１００μｌ、約１０^{１１−１２}／ｐｆｕ）を、９００μＬのブロッキング溶液（ＰＢＳ中３％脱脂粉乳）で遮断し、ファージ表面への非特異的結合を減少させた。ストレプトアビジンによりコーティングされたビーズを、磁気分離器において２００μＬのビーズ懸濁液を回収し、上清を取り除くことによって調製した。このビーズを、その後１ｍＬのブロッキング溶液に懸濁し、ロータリーミキサーに３０分間かけた。非特異的ストレプトアビジン結合ファージを取り除くために、ブロックされたファージライブラリを、ブロックされたストレプトアビジンによりコーティングされたビーズと混合し、ロータリーミキサーに３０分間かけた。除外過程からのファージ懸濁液を新しい管に写し、２００μＬの抗原、１０％のｂＡＤＤＬを加え、抗体と抗原との結合のために２時間インキュベートした。インキュベーション後、混合物を、ブロックされたストレプトアビジンによりコーティングされたビーズに加え、ロータリーミキサーにおいて１時間インキュベートし、Ａｂ／Ａｇ複合体をストレプトアビジンビーズに捕捉した。捕捉された１０％のｂＡＤＤＬ／ファージ複合体を含むビーズをＰＢＳ／０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０で５回洗浄し、その後、ＰＢＳ単独で２回洗浄した。結合されたファージを、２００μＬの１００ｍＭ ＴＥＡ（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を用いてｂＡＤＤＬから溶出し、２０分間インキュベートした。その後、溶出されたファージを５０ｍＬの管に移し、１００μＬの１Ｍ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．５を用いて中和し、ＯＤ６００ｎｍが０．６−０．８の間の１０ｍＬの大腸菌ＴＧ１細胞に加えた。振とうしながら３７℃において１時間インキュベーション後、培養液のアリコートを、ＬＢ寒天−カルベニシリン（５０μｇ／ｍＬ）プレートにプレーティングし、アウトプットファージの数を滴定し、残存する細菌を遠心分離にかけ、５００μｌの２×ＹＴ培地（Ｔｅｋｎｏｖａ、Ｈｏｌｌｉｓｔｅｒ、ＣＡ、に懸濁し、１００μｇ／ｍｌのアンピシリンおよび１％のグルコースを含有する、バイオアッセイＹＴ寒天プレート（Ｔｅｋｎｏｖａ、Ｈｏｌｌｉｓｔｅｒ、ＣＡ）にプレーティングした。バイオアッセイプレートを、３０℃において一晩成長させた。

パニングの各ラウンドの後で、単一コロニーをランダムに採集し、９６ウェルプレートにおいてファージを作製した。９６ウェルプレートにおけるファージ調製の手順は、ファージ沈殿ステップを使用しなかったこと以外は上記の手順と同様であった。１００μｇ／ｍｌのアンピシリンおよび０．１％のグルコースを含む１２０μＬの２×ＴＹ培地において成長するコロニーを含有する培養プレートを、ＨｉＧｒｏ（登録商標）シェーカー（Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ、Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ、ＭＩ）において３０℃で、４５０ｒｐｍにおいて振とうしながら一晩インキュベートした。ファージ上清（約１００μＬ）を、上記のＡＤＤＬ結合ＥＬＩＳＡにおける分析に直接使用した。１つの違いは、ＡＤＤＬへのファージの結合を、ＨＲＰ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、Ｗａｕｋｅｓｈａ、ＷＩ）で標識された抗Ｍ１３−抗体を用いて検出したことである。

抗ＡＤＤＬ抗体の同定
軽鎖親和性成熟の取り組みから、ファージ／Ｆａｂ ＥＬＩＳＡにおいてｈ３Ｂ３と比較した場合、７種のクローンのパネルがＡＤＤＬへの強い結合活性を示した（データ未掲載）。７種のクローンを、ＩｇＧ変換のために選択し、さらなる特徴付けのためにモノクローナル抗体を作製し、精製した。

Ａ．抗ＡＤＤＬ抗体の選択
実施例２に記載のライブラリのパニングおよびスクリーニングの後、７種のリーディングＦａｂクローン（表３−５）を、ＩｇＧ変換のために選択した。表３は、親抗体のｈ３Ｂ３に対して、軽鎖親和性成熟ライブラリから選択されたクローンとのアミノ酸類似性を示す。表４Ａは、選択されたクローンの軽鎖のＣＤＲ３における、親抗体のｈ３Ｂ３に関する軽鎖のＣＤＲ３とのアミノ酸の数の違いを要約する。表４Ｂは、選択されたクローンの軽鎖のＣＤＲ１における、親抗体の１９．３に関する軽鎖のＣＤＲ３とのアミノ酸の数の違いを要約する。表４Ｃは、選択されたクローンの軽鎖のＣＤＲ２における、親抗体の１９．３に関する軽鎖のＣＤＲ３とのアミノ酸の数の違いを要約する。表５は、選択されたクローンと親抗体ｈ３Ｂ３に関する軽鎖可変領域の一部（２１−１１７位）のアライメントである。各クローンのＣＤＲ３は太字で示してある。

Ｂ．ＩｇＧ変換
変換されたＩｇＧを、プラスミドに基づくベクターを使用して発現させることができる。発現ベクターを、可変領域を除くすべての必要な成分をそれらが含有するように作り上げた。基本ベクターにおいて、軽鎖および重鎖の両方の発現を、ヒトＣＭＶプロモーターおよびウシ成長ホルモンのポリアデニル化シグナルにより駆動させた。ＩｇＧ変換のために選択された７種のクローンに関して、重鎖可変領域を、ヒトＩｇＧ２重鎖定常領域（配列番号２０および２１）とインフレーム融合させ、一方、軽鎖可変領域は、カッパ軽鎖定常領域（配列番号１８および１９）とインフレーム融合させた。抗体の培養培地への分泌を仲介する、重鎖（配列番号２９および３０）および軽鎖（配列番号３１および３２）のリーダー配列もまた、それに応じて可変領域とインフレーム融合させた。重鎖発現ベクターに関して、定常領域は、異なるサブクラスのアイソタイプ、例えばＩｇＧ１またはＩｇＧ２から選択することができる。リーダー配列と定常領域との間の、遺伝子間配列は、Ｉｎ−Ｆｕｓｉｏｎ ｃｌｏｎｉｎｇ ｓｔｒａｔｅｇｙ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ、ＣＡ）を使用する、入ってくる可変領域と、その５’末端におけるリーダー配列とのシームレスなインフレーム融合およびその３’末端における定常領域とのシームレスなインフレーム融合のために、クローニング配列を含有する。Ｉｎ−Ｆｕｓｉｏｎ（商標）Ｄｒｙ−Ｄｏｗｎ ＰＣＲ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔｓ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ、ＣＡ）を、可変領域のＰＣＲ増幅のために使用した。ｄｒｙ−ｄｏｗｎ ｃｌｏｎｉｎｇ ｋｉｔは、ＰＣＲ反応に必要なすべての成分を含有する。ＰＣＲプライマーおよび鋳型ＤＮＡを加えた。発現ベクターは、ＥＢＶウイルスゲノム由来のｏｒｉＰを担持する。ｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１対は、多くの場合、トランスフェクトされた細胞内部の発現ベクターの存在を遅延するために使用され、２９３ＥＢＮＡ細胞、カナマイシン選択マーカーのための細菌配列および大腸菌の複製起点における遅延発現のための、発現期間の延長のために広く使用される（Ｌｉｎｄｎｅｒら、２００７，Ｐｌａｓｍｉｄ ５８：１−１２）。可変領域を挿入した場合、ＩｇＧが、哺乳動物細胞において直接発現された。本明細書のすべての重鎖可変領域を、ＩｇＧ１発現ベクター（ｐＶ１ＪＮＳＡ−ＢＦ−ＨＣＧ１）内にクローニングし、軽鎖可変領域を、適合するカッパまたはラムダ発現ベクター（ｐＶ１ＪＮＳＡ−ＧＳ−ＦＢ−ＬＣＫ）内にクローニングした。

Ｃ．抗体のクローニング
得られた抗体発現ベクターのためのクローニング手順は以下のとおりである。可変領域をＰＣＲ増幅し、ＰＣＲ反応は、高正確性ＰＣＲマスターミックス（ｈｉｇｈ ｆｉｄｅｌｉｔｙ ＰＣＲ ｍａｓｔｅｒ ｍｉｘ）、鋳型体積１μＬおよびフォワードプライマーおよびリバースプライマー：各１μＬを含有する体積２５μＬで実施した。ＰＣＲ条件：９４℃、２分を１サイクル；９４℃、１．５分；６０℃、１．５分；７２℃、１．５分および７２℃、７分を２５サイクル；取り出しまで４℃。ＰＣＲ産物を、次いでＤｐｎＩを用いて消化し、ＱＩＡｑｕｉｃｋ ｐｌａｔｅ ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ、Ｖｅｎｌｏ、Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）を用いて精製した。１００ｎｇの対応する、すでに直線化された重鎖または軽鎖ベクターを、１０ｎｇのＰＣＲ断片にＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ（ＩＮ−Ｆｕｓｉｏｎ Ｄｒｙ−Ｄｏｗｎ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｋｉｔ、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ、Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ、ＣＡ）を用いてアニーリングした。反応混合物を、ＸＬ２ Ｂｌｕｅ ＭＲＦ’コンピテント細胞に形質転換させ、５０μｇ／ｍＬのカナマイシンを含有する寒天プレートに一晩プレーティングした。軽鎖構築体を、ＨｉｎｄＩＩＩ＋ＮｏｔＩを用いて消化し、重鎖構築体をＡｓｐＩ＋Ｈｉｎｄｌｌｌを用いて消化し、制限分析により構造を確認した。すべてのクローンに関するＤＮＡ配列を、シークエンシングにより確認した。

Ｄ．哺乳動物細胞における抗体発現および精製
軽鎖および重鎖ＤＮＡｍｐシークエンシングにより確認された構築体を、２９３Ｆｒｅｅｓｔｙｌｅ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）にトランスフェクトした。２９３Ｆｒｅｅｓｔｙｌｅ細胞を、２９３Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｎ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を使用してトランスフェクトした。ＥＢＮＡ単相細胞を、ＰＥＩに基づくトランスフェクション試薬を使用してトランスフェクトした。トランスフェクトされた細胞を、３７℃／５％ＣＯ_２において７日間、Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ無血清培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）においてインキュベートした。培地を回収し、遠沈させ、０．２２μｍのろ過系（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、ＭＡ）を介してろ過し、その後、Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎ（登録商標）遠心フィルター（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ、ＭＡ）により濃縮した。濃縮された培地を結合緩衝液（Ｐｉｅｒｃｅ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）と１：１で混合し、次いで、予備平衡化プロテインＡ／Ｇカラム（Ｐｉｅｒｃｅ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）またはＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、Ｗａｕｋｅｓｈａ、ＷＩによるＨＩ ｔｒａｐ ｒＰｒｏｔｅｉｎ Ａ ＦＦに添加した。添加されたカラムを結合緩衝液で洗浄し、溶出緩衝液（Ｐｉｅｒｃｅ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）で溶出した。溶出された抗体を迅速に中和し、緩衝液ＰＢＳに対して一晩透析した。透析された抗体を、Ａｍｉｃｏｎ 遠心フィルター（Ｐｉｅｒｃｅ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）を用いて濃縮し、タンパク質濃度を、ＯＤ_{２８０ｎｍ}により１．３４ｍｇ／ｍＬの減衰係数を用いて決定した。生成された抗体を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）またはタンパク質用ラボチップ（ｐｒｏｔｅｉｎ ｌａｂｃｈｉｐ）（Ｃａｌｉｐｅｒ ＬｉｆｅＳｃｉｅｎｃｅｓ、Ｈｏｐｋｉｎｔｏｎ、ＭＡ）を使用して分析した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥを、非還元条件下で行った。

抗体１９．３に関する軽鎖ＣＤＲ１の３３位のアスパラギン（Ｎ３３）の、Ｎ３３Ｓ（配列番号５５）、Ｎ３３Ｔ（配列番号５６）、Ｎ３３Ｅ（配列番号６７）またはＮ３３Ｄ（配列番号６８）への突然変異誘発を、ＱｕｉｋＣｈａｎｇｅ ＩＩ ＸＬ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）を使用して、ＷＴ発現ベクターのｐＶ１ＪＡＳＮ−ＧＳ−１９．３−ＬＣＫから部位特異的突然変異誘発により実施した。Ｎに関するコドンＡＡＴを、１９．３Ｓ３３（配列番号５５）においてＳに関するＡＧＴに、１９．３Ｔ３３（配列番号５６）においてＴに関するＡＣＴに、１９．３Ｅ３３（配列番号６７）においてＥに関するＧＡＡに、または１９．３Ｄ３３（配列番号６８）においてＤに関するＧＡＴに突然変異させ、この位置における新しいコドンがＤＮＡシークエンシングにより確認された。これらの突然変異体に関する完全長ＩｇＧ抗体を作製するために、それぞれの軽鎖プラスミドを、２９３ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ｃｅｌｌｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）における一時的トランスフェクションのために、同族重鎖プラスミドｐＶ１ＪＮＳＡ−１９．３−ＨＣＧ２と対形成させた。発現および精製の方法は、この実施例の上に記載した。精製された突然変異抗体のアリコートと一緒に１９．３親抗体（配列番号１）を、４℃、２５℃または４０℃においてさまざまな条件下で１ヵ月間インキュベートし、その後図４Ａ−４Ｃに示したＥＬＩＳＡ分析に供した。

抗ＡＤＤＬ抗体の特徴付け
選択された抗ＡＤＤＬ抗体、すなわち親抗体のｈ３Ｂ３に由来する抗体を、まず三方向ＡβＥＬＩＳＡにおいて査定し、モノマーＡβ、ＡＤＤＬおよび線維性Ａβに対する抗体の結合を評価した。図１に示すように、抗体９．２を除くすべての抗ＡＤＤＬ抗体が、ｈ３Ｂ３、選択的（Ｃｏｍｐ１および３：ＡＤＤＬだけに結合）、非選択性（Ｃｏｍｐ２：評価したすべてのＡβ型と結合する）比較因子および対照（抗体なし）と相対的なＡＤＤＬの優先的結合を示した。抗体９．２は、Ａβのすべての型と低い結合を示し、これは、その結合親和性がＩｇＧ変換および／または抗体産生の間に悪影響を及ぼすことを示唆した。全滴定曲線（図２）を、各抗体およびｈ３Ｂ３に関して作製し、モノマーＡβと比較した、ＡＤＤＬに関するそれらの結合親和性を決定した。７つの親和性成熟抗体のうちの６つがＡＤＤＬに対して優先的結合を示したにもかかわらず、出願者らは、ＡＤＤＬへの優先的結合を有するいくつかの抗ＡＤＤＬ抗体が、初代海馬ニューロンへのＡＤＤＬの結合を防止できないことをすでに示している（Ｓｈｕｇｈｒｕｅら、２０１０、Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌ．Ａｇｉｎｇ，３１：１８９−２０２、図１）。

ＡＤＤＬに対する優先的結合だけでは有効性の正確な予測因子にはなり得ないので、さらにニューロンへのＡＤＤＬの結合を遮断する抗ＡＤＤＬ抗体を同定することが望ましいものであり、このことは、以下のような細胞に基づく結合アッセイにおいて評価できる。抗体をＡＤＤＬと一緒に予備インキュベートし、その後、初代海馬培養液に加え、ＡＤＤＬ結合のそれらの遮断を査定した。この研究の結果は、本明細書の抗ＡＤＤＬ抗体、特に抗体１９．３が、ニューロンへのＡＤＤＬの結合を劇的に減少させたことを示した（図３）。しかし、抗体を熱変性させた場合、このアッセイにおける抗体活性の著しい減少が観察された（図３）。

ＥＣ５０の決定。高タンパク質結合プレート（Ｃｏｓｔａｒ、Ｃｏｒｎｉｎｇ、Ｌｏｗｅｌｌ、ＭＡ）を、ＰＢＳにおいて一晩、４℃において標的リガンドを用いてコーティングした。コーティングタンパク質の濃度は、Ａβ４０（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｐｅｐｔｉｄｅ、Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ、ＣＡ）に関しては１００ｐｍｏｌ／ウェルおよびＡＤＤＬに関しては５０ｐｍｏｌ／ウェルであった。ＡＤＤＬを、実施例１Ｂに記載のように作製した。翌日、プレートをＰＢＳ＋０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０（Ｓｉｇｍａ Ａｌｄｒｉｃｈ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を用いて５回洗浄し、カゼインブロッキング緩衝液（ＴｈｅｒｍｏＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）および０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０を用いて一晩遮断した。実施例３に記載のように作製された３つの代表的抗体、１９．３（図Ａ）、１９．３Ｓ３３（図４Ｂ）および１９．３Ｔ３３（図４Ｃ）を、１５μｇ／ｍｌから０μｇ／ｍｌで、１２点の３倍段階希釈液において試験した。室温におけるインキュベーションの２時間後、プレートを洗浄し、アルカリホスファターゼ標識抗ヒトＩｇＧ（ＴｈｅｒｍｏＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）を０．０８μｇ／ｍｌで加えた。室温におけるインキュベーションの４５分後、プレートを洗浄し、Ｔｒｏｐｉｘ（登録商標）ＣＤＰ（登録商標）−Ｓｔａｒ化学発光基質（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（商標）、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を加えた。

発光を、３０分後にＥｎＶｉｓｉｏｎ（登録商標）マイクロプレートリーダー（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ、Ｗａｌｔｈａｍ、ＭＡ）において検出した。曲線適合を、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ、Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）ソフトウェアを使用して完了した。

抗ＡＤＤＬ抗体のインビトロのＦｃＲｎの結合
固定化されたヒトＦｃＲｎと結合および解離する抗ＡＤＤＬ抗体の能力を特徴付けるために、７種の本明細書の抗ＡＤＤＬ抗体を、Ｂｉａｃｏｒｅ ＦｃＲｎ結合アッセイにおいて評価し、代理系を使用して、抗体のＰＫを評価し、非ヒト霊長類における抗体の末期相半減期（ｔ_１／２）を予測した。

簡潔に言うと、精製されたヒトＦｃＲｎタンパク質をＢｉａｃｏｒｅ ＣＭ５バイオセンサーチップに固定し、ＰＢＳＰ（５０ｍＭのＮａＰＯ４、１５０ｍＭのＮａＣｌおよび０．０５％（ｖ／ｖ）Ｓｕｒｆａｃｔａｎｔ２０）ｐＨ７．３を、ランニング緩衝液として使用した。ｍＡｂをＰＢＳＰ、ｐＨ６．０を用いて１００ｎＭに希釈し、ＦｃＲｎを３分結合させ、平衡に到達させ、その後ｐＨ７．３のランニング緩衝液において解離させた。報告点（安定性）を、ｍＡｂの結合の終了後５秒に報告点（安定性）を挿入し、「結合％」を、ＲＵ_{Ｓｔａｂｉｌｉｔｙ}／ＲＵ_{Ｂｉｎｄｉｎｇ}（％）として計算した。出願人らは、同一のＦｃ配列を含むが、異なるＦａｂドメインを含むモノクローナル抗体（ｍＡｂ）は、かなりの違いでＦｃＲｎと結合および解離できる（データ未掲載）ことを見出した。さらに、中性ｐＨにおける解離とインビボの薬物動態との間には明らかな相関が観察され、ゆっくりとした解離率を有するｍＡｂ（すなわちより高い「結合％」）は、インビボでより短いｔ_１／２を示す傾向がある。この特性を、抗体の薬物動態に関するインビトロのスクリーニングツールとして使用した。

本明細書の７つの抗ＡＤＤＬ抗体とともにｈ３Ｂ３、２つのＡＤＤＬ優先性抗体（Ｃｏｍｐ１および３）および非選択性（Ｃｏｍｐ２：評価したすべてのＡβ型に結合する）比較因子をＦｃＲｎ結合アッセイにおいて比較した。ｐＨ６．０において抗体の初期結合を示し、その後、１８０秒からｐＨ７．３において抗体の解離を示すセンサーグラムを作成した（図５）。図５に示されるように、ｈ３Ｂ３および査定した他の抗体の間には顕著な違いがある。ｈ３Ｂ３は、ＦｃＲｎへの高い結合パーセントを有したが、一方、７種の本発明の抗ＡＤＤＬ抗体および２つの比較抗体は、大幅に低い結合を示した。

抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の特徴付け
親和性成熟抗体１９．３を、さらなる特徴付けのために選択した。軽鎖の可変領域に関する完全ＤＮＡ配列および推定アミノ酸配列、それぞれ配列番号１４および１５を決定した。重鎖可変領域（配列番号１７）および軽鎖（配列番号１５）可変領域ともっとも近い生殖細胞系（配列番号４７）とのアライメントを図６Ａに示した。重鎖および軽鎖の可変領域の３Ｄモデルおよび６つの相補性決定領域（ＣＤＲ）の位置を、図６Ｂに示す。

Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ、Ｗａｕｋｅｓｈａ、ＷＩ）およびＫｉｎＥｘＡ（Ｓａｐｉｄｙｎｅ、Ｂｏｉｓｅ、ＩＤ）分析を実施し、ＡＤＤＬに対する抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の結合親和性を確かめ、ＡＤＤＬ対モノマーＡβに対する１９．３の選択性を決定した。Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）およびＫｉｎＥｘＡに基づく技術は、抗体およびタンパク質標的などの巨大分子の間の結合親和性の測定に広く使用されている。Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）の基になる表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）技術において、１つまたは複数の分子間の結合相互作用の定量的測定は、標的分子のセンサーチップ表面への固定化に依存する。標的に対する結合パートナーはチップを通過するので、それらは捕捉できる。表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）は、屈折率の変化を測定することによって、センサーチップ表面に近い水層における質量の変化を検出する。試験溶液中の分子が標的分子に結合した場合、質量は増え（ｋ_ａ）、それらが解離した場合、質量は減る（ｋ_ｄ）。この単純な原理がセンサーグラム−相互作用する分子の会合および解離の、連続するリアルタイムのモニタリング−の基礎を形成する。センサーグラムは、結合特異性、試料中の分子の活性濃度、動態および親和性に関するリアルタイムの定量的情報を提供する。

Ｓａｐｉｄｙｎｅ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ、Ｂｏｉｓｅ、ＩｄａｈｏによるＫｉｎＥｘＡ技術は、結合定数を測定し、溶液相中の生体分子結合事象を特徴付けるが、溶液相と固相との間の結合事象は特徴付けない。溶液において、十分なインキュベーション後、結合パートナーは平衡に達する。未結合分子を滴定により定量化し、これはパートナーに結合した分子の部分を反映するものである。ＫｉｎＥｘＡ法は、研究下の分子の改変を必要としない。ＫｉｎＥｘＡにより、測定される反応が溶液中の改変されない分子間で起こる。したがって、どのように改良が「天然の」結合反応を変化させるかの懸念が排除される。ＫｉｎＥｘＡ法は、１０^−１３Ｍ程度の厳しい、より広範囲の結合定数も可能である。ＫｉｎＥｘＡソフトウェアはデータ分析を実行し、これは、古典的な結合方程式（ｋ_ｄ数学）に対する厳密解に基づき、疑似一次近似には基づかない。ＫｉｎＥｘＡは、任意データ操作および範囲選択を必要としない。

表６に示すように、抗体１９．３は、Ｂｉａｃｏｒｅ（商標）アッセイにおいて、モノマーＡβに対する１５０ｎＭの親和性と比較して、ＡＤＤＬに対して４．８ｎＭの親和性を有した。Ａβモノマーに対する親和性を３０倍のＡＤＤＬに対する抗体１９．３の選択性は、親抗体のｈ３Ｂ３に見られるものより著しく優れており、親抗体のｈ３Ｂ３は、Ａβモノマーと対比してＡＤＤＬにわずか１０倍の優先性を示した。

同様に、抗体１９．３を、ＫｉｎＥｘＡに基づく平衡定数測定において評価した。表７に示すように、抗体１９．３は、２．７ｎＭの平衡定数を有し、これは、同じアッセイにおいて、Ａβ４０モノマーの結合と対比してＡＤＤＬオリゴマーに６倍を超える優先性を提示する。

抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の生物物理学的特徴付け
抗体凝集体形成に関する可能性を査定するための生物物理学的特徴付けを実施し、本明細書の抗ＡＤＤＬ抗体がストレス条件下で安定であり、治療としての使用に適切であることを示す。抗ＡＤＤＬ抗体１９．３を５０ｍｇ／ｍＬを上回るように濃縮し、ｐＨが５．０から８．０の範囲の多くの製剤に配置した。２組の試料を、３７℃および４５℃において１週間インキュベートした。第３の試料のセットは、−７０℃に配置し、５回の凍結／解凍のサイクルを開始した。サイズ排除クロマトグラフィー分析により、抗体調製物が主に（＞９５％）モノマー状態であり、ダイマーは少量であることが示され、これはモノクローナル抗体に典型的であった。ダイマーおよび高分子量オリゴマーの量は、すべての緩衝液にわたって温度ストレス後に増加せず、分裂は観察されなかった。表８に要約するように、近紫外濁度分析もまた、凝集の欠如を示した。凍結／解凍ストレスがかかった試料は、濁度において緩衝液依存性増加を示し、これは他のモノクローナル抗体に匹敵した。５０ｍｇ／ｍＬにおける粘度は２センチポイズを下回り、２０センチポイズレベルが皮下注射の実用限界であると一般的に考えられているので、許容可能な注射粘度を示した。示差走査熱量測定法もまた、許容可能な熱安定性を明らかにし、Ｆａｂは約７２℃においてアンフォールディングであり、もっとも安定性が低いＣＨ２ドメインは６５℃より上でアンフォールディングであった。総合すると、抗体１９．３は、皮下送達に対応する生物物理学的特性を有する非常に優れた構造安定性が実証された。

１９．３の薬物動態分析およびＡＤモデルにおける有効性
Ａ．ヒトＦｃＲｎマウスにおける薬物動態研究
ヒトＦｃＲｎマウス（ヘテロ接合Ｔｇ２７６）（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｂａｒ Ｈａｒｂｏｒ、ＭＥ）は、近年、モノクローナル抗体薬物動態を評価するための有益な代理システムとして提案されている。ヒトＦｃＲｎマウスにおいて抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の薬物動態を特徴付けるために、３匹の動物に、尾静脈を介して１０ｍｇ／ｋｇの抗体１９．３の単回静脈内注射を与えた。その後、一連の１０μＬの血液試料を、抗体１９．３またはｈ３Ｂ３のＩＶ投与後０、２５、５０、７５、１００、１５０、２５０および３５０時間の時点で回収し、認証された抗ヒトＩｇＧ免疫アッセイを使用して、抗体の血中レベルを決定した。図７に示すように、抗体１９．３の血中レベルは二相の様式で低下し、明白なｔ_１／２は７７±６時間であり、これは親抗体のｈ３Ｂ３の半減期の約２９±９時間より大幅に長かった。これらの半減期は、インビトロのＦｃＲｎ結合アッセイにより予測された差と一致した（図５）。排出相末期相半減期を、非コンパートメントモデル（ＷｉｎＮｏｎｌｉｎ（登録商標）、Ｐｈａｒｓｉｇｈｔ、Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ、ＣＡ）を使用して決定し、データは、投薬後３日および１５日の間を示す。

Ｂ．非ヒト霊長類における薬物動態研究
霊長類における１９．３の予測ｔ_１／２を確認するために、霊長類の薬物動態研究を、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３に関して、大槽内移植アカゲザルのコホートにおいて実施した。６匹の動物（３匹の雄／３匹の雌）に、抗体１９．３（５ｍｇ／ｋｇ）の単回静脈内ボーラス投与または皮下注射を投薬し、抗体投与後に血液試料を回収した。同時に、ＣＳＦ試料を、大槽内移植から０、２、４、８、１２、２４、３０、４８、５４および７２時間に回収し、血清およびＣＳＦ中の抗体１９．３の濃度を、抗ヒトＩｇＧ ＥＬＩＳＡアッセイを用いて決定した。動物に、抗体１９．３の単回ＩＶボーラス注射を投与した場合、２５４±２８時間のｔ_１／２が観察され、一方、皮下投与後２０４±４９時間のｔ_１／２が見られた（図８）。さらに、出願者らは、抗体１９．３が霊長類のＣＳＦを超えることができ、最初の４８時間の間に濃度が上昇し、投薬された抗体の約０．１％でピークに達したことを見出した（図９）。

Ｃ．マウスの脳における^１２５Ｉ標識抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の分布
脳に達する抗体の濃度を決定する試みにおいて、１２ヵ月齢の雄Ｔｇ２５７６マウス（Ｂ６系統；ＳＪＬ−ＴｇＮ ＡＰＰＳＷＥ）に、２００μｇの^１２５Ｉ標識１９．３抗体（約８ｍｇ／ｋｇ）、または２つの比較抗体のうちの１つを注射し（尾静脈）、血液およびＣＳＦを２時間後に回収した。残留放射能を、脳の取り出し前にＰＢＳを用いて心かん流を介して脳の血管から一掃した。血液、ＣＳＦおよび脳全体の試料を、次いでガンマカウンターに配置し、各試料中に存在する放射標識抗体の量を決定した。計数後、脳を、４％パラホルムアルデヒドにおいて４８時間固定し、その後、浮遊性免疫細胞化学のために処理した。マウス脳における抗体１９．３の局在化を、抗ヒト二次抗体および標準ＡＢＣ検出方法を用いて検出した。この免疫反応性を、次いでチオフラビンＳ染色（プラークを検出する染料）と組み合わせ、マウスの脳における抗体とプラークの共局在化を決定した。

図１０Ａおよび１０Ｂに示すように、放射標識抗体１９．３は、血液脳関門からマウスＣＳＦおよび脳に貫通できた。さらに、データは、ＣＳＦにおいて見られたレベル（０．０２％）と比較した場合、抗体１９．３が脳において豊富であった（０．１９％）ことを示した。脳におけるこの濃度が抗体１９．３とＡβとの会合によるかどうかを決定するために、脳を固定し、免疫細胞化学のために処理した。老齢のＴｇ２５７６マウスの脳における抗体分布の分析により、抗体１９．３が、脳においてチオフラビンＳ陽性アミロイドプラークと会合したことが明らかにされた（図１０Ｃおよび１０Ｄ）。これらのデータは、抗体１９．３が、トランスジェニックマウスの脳に貫通でき、対象となるＡβ種と結合できたことの最初の証拠を提供した。

プラーク沈着モデル
脳においてＡＤＤＬのアミロイドプラークへの沈着を減らす、抗ＡＤＤＬ抗体１９．３の能力をさらに査定するために、１２ヵ月齢の雄Ｔｇ２５７６マウス（Ｔａｃｏｎｉｃ、ＮＹ）に、毎週片側性にカニューレを挿入し、ｂＡＤＤＬ（５０ｐｍｏｌ／μＬ）を毎週、４週間の間海馬に注入した（図１１Ａ）。最終のｂＡＤＤＬ処置の１週間後、マウスの半数（ｎ＝５／処置）に、毎週、４週間の間ＰＢＳを投薬し（尾静脈）、一方、残りの動物には、２００μｇの抗ＡＤＤＬ抗体（約８ｍｇ／ｋｇ）を毎週投薬した。すべての動物を、最終処置の１週間後に安楽死させ、それらの脳を免疫細胞化学のために処理した。ｂＡＤＤＬおよびプラークの検出のために、脳の切片を、Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ（登録商標）５９４（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）とともにインキュベートし、スライドに載せ、プラークはチオフラビンＳを用いて染色した。その後、プラークの蛍光画像を、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ Ｒａｐｉｄ Ｃｏｎｆｏｃａｌ ＩｍａｇｅｒおよびＵｌｔｒａＶＩＥＷ ＥＲＳソフトウェアを用いて取り込み、プラーク成長の違いを定量化した。このモデルの詳細は、近年発表された（Ｇａｓｐａｒら、２０１０，Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．，２２３：３９４−４００）。処置の１ヵ月後、ビヒクル単独で処置した動物と比較した場合（図１１Ｂ）、新しいＡＤＤＬの既存のプラークへの沈着における有意な減少が、抗体１９．３（図１１Ｃ）を用いて処置された動物において見られた。

Claims (13)

1. （ａ）
   （ｉ）配列番号１のＣＤＲ１、
   （ｉｉ）配列番号２のＣＤＲ２、および
   （ｉｉｉ）配列番号１０のＣＤＲ３
   を含む軽鎖可変領域；ならびに
   （ｂ）
   （ｉ）配列番号４のＣＤＲ１、
   （ｉｉ）配列番号５のＣＤＲ２、および
   （ｉｉｉ）配列番号６のＣＤＲ３
   を含む重鎖可変領域
   を含む、アミロイドβ由来拡散性リガンドと結合する単離抗体またはこれらの抗原結合断片。
2. 前記抗体の軽鎖可変領域が配列番号１５を含み、前記抗体の重鎖可変領域が配列番号１７を含む、請求項１に記載の単離抗体。
3. 配列番号２１の重鎖定常領域をさらに含む、請求項１に記載の単離抗体。
4. 抗体がモノクローナル抗体である、請求項１に記載の単離抗体。
5. 請求項１に記載の抗体または抗原結合断片を、医薬として許容可能な担体と混合して含む医薬組成物。
6. ニューロンへのアミロイドβ由来拡散性リガンドの結合を減衰させるための、請求項５に記載の医薬組成物。
7. アミロイドβ１−４２ペプチドを含有する試料と、請求項１に記載の抗体または抗原結合断片とを接触させ、その結果Ａβ由来拡散性リガンドのアセンブリを阻害するステップを含む、アミロイドβ由来拡散性リガンドのアセンブリを阻害する方法。
8. タウタンパク質を含有する試料と、請求項１に記載の抗体または抗原結合断片とを接触させ、その結果Ｓｅｒ２０２／Ｔｈｒ２０５におけるタウタンパク質のリン酸化を阻害するステップを含む、Ｓｅｒ２０２／Ｔｈｒ２０５におけるタウタンパク質のリン酸化を阻害する方法。
9. アミロイドβ由来拡散性リガンドに関連する疾患の症状を減衰させる治療薬を製造するための請求項１に記載の抗体または抗原結合断片の使用。
10. （ａ）ニューロンを含む組成物とアミロイドβ由来拡散性リガンドとを、薬剤の存在下で接触させるステップ、
    （ｂ）該組成物と請求項１に記載の抗体または抗原結合断片とを接触させるステップ、および
    （ｃ）薬剤の存在下で結合した、抗体または抗原結合断片の量を検出するステップ
    を含み、薬剤の不在下で結合した抗体の量と比較して、薬剤の存在下で結合した抗体または抗原結合断片の量の減少が、薬剤が、ニューロンへのアミロイドβ由来拡散性リガンドの結合を減衰させるための推定治療薬であることを示す、ニューロンへのアミロイドβ由来拡散性リガンドの結合を減衰させる推定治療薬を同定する方法。
11. 試料と請求項１に記載の抗体または抗原結合断片とを接触させるステップ、およびアミロイドβ由来拡散性リガンドおよび前記抗体または抗原結合断片を含む複合体の存在を決定するステップを含む、試料中のアミロイドβ由来拡散性リガンドを検出する方法。
12. アミロイドβ由来拡散性リガンドに関連する疾患を診断する方法に使用される請求項１に記載の抗体または抗原結合断片を含むキットであって、該方法は、試料と請求項１に記載の抗体または抗原結合断片とを接触させるステップおよびアミロイドβ由来拡散性リガンドおよび前記抗体または抗原結合断片を含む複合体の存在を決定するステップを含み、前記複合体が、アミロイドβ由来拡散性リガンドに関連する疾患の診断である、当該キット。
13. 請求項１に記載の抗体または抗原結合断片を含む、アミロイドβ由来拡散性リガンドを検出するためのキット。

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