JP5897205B2 - 抗ｒｏｂｏ４抗体 - Google Patents

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Description

本発明は、血管新生抑制活性を有する抗体、より具体的には、ＲＯＢＯ４に対する抗体、該抗体を含有する医薬組成物に関する。
Ｒｏｕｎｄａｂｏｕｔ ｈｏｍｏｌｏｇ ４（ＲＯＢＯ４）は、分子量１１０ｋＤａの１回膜貫通構造を有する蛋白質であり（非特許文献１）、血管新生抑制因子として知られているＳｌｉｔ ｈｏｍｏｌｏｇ ２（Ｓｌｉｔ２）と結合することで、血管新生を抑制することが知られている（特許文献１、非特許文献２）。Ｓｌｉｔ２は、血管内皮増殖因子（ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ）（ＶＥＧＦ）で促進されるＨＵＶＥＣの遊走を抑制することが報告されているとともに、ＲＯＢＯ４遺伝子を導入した血管内皮細胞（ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ：以下「ＥＣ」と称することもある）では、空ベクターを導入したＥＣと比較して、ＶＥＧＦやｂＦＧＦで促進される細胞遊走が抑制されることが報告されている（特許文献１、非特許文献２〜４）。
また、ＲＯＢＯ４遺伝子ノックアウトマウス由来のＥＣやｓｉＲＮＡを導入することでＲＯＢＯ４遺伝子をノックダウンしたＥＣでは、野生型マウス由来のＥＣやコントロールｓｉＲＮＡを導入したＥＣで認められるＶＥＧＦによる細胞遊走促進、管腔形成促進や透過性亢進に対するＳｌｉｔ２の抑制効果が認められないことが報告されている（特許文献２、非特許文献４〜６）。さらに、滲出型加齢黄斑変性や糖尿病網膜症の動物病態モデルである、マウスのレーザー誘導脈絡膜血管新生モデルや酸素誘導網膜症モデルにおいて、Ｓｌｉｔ２はＲＯＢＯ４を介してこれらの病態モデルでの血管新生や血管透過性亢進を抑制することが報告されている（特許文献２、非特許文献４）。
上記のような知見がある一方、ＲＯＢＯ４とＳｌｉｔ２は結合しないことを示している報告もある（非特許文献９、特許文献５）。機能面でも、ＲＯＢＯ４遺伝子をノックアウトしたＥＣでは、その遊走や管腔形成が阻害されることから、ＲＯＢＯ４は血管新生抑制ではなく、血管新生促進に関与するという報告もある （非特許文献１０、１１）。
臨床においては、ＲＯＢＯ４は大腸癌肝転移、神経節膠腫、膀胱癌、乳癌、転移性メラノーマ、腎癌、肺癌、肝癌や大腸癌の腫瘍内血管で高発現していることが報告されている（特許文献３、非特許文献１、３、７）。また、増殖性糖尿病網膜症患者の線維血管増殖膜内にある血管にもＲＯＢＯ４が発現していることが報告されている（非特許文献８）。このように、ＲＯＢＯ４は血管内皮細胞、特に病的な状態で新生した血管の内皮細胞に発現している。これは、ＲＯＢＯ４が高発現したために病的な血管新生が生じたとも考えられる一方で、病的な血管新生を抑制するためにＲＯＢＯ４が代償性に発現しているものとも考えられる。
以上の通り、ＲＯＢＯ４は血管新生抑制作用に関与することから、ＲＯＢＯ４に対する抗体及びその機能断片は、血管新生が関与する疾患の治療に有用であると考えられるが、ＲＯＢＯ４に対するアゴニスト抗体あるいはアンタゴニスト抗体のいずれが、血管新生を抑制するのか、促進するのかは明らかではない。
ＲＯＢＯ４に対する抗体（以下、「抗ＲＯＢＯ４抗体」という）として欧州特許第１，５６５，４９１号（特許文献４）及びＷＯ２００８／１００８０５（特許文献５）に記載の抗体が知られているが、いずれもｉｎ ｖｉｖｏにおける血管新生抑制又は阻害作用は示されていない。
ＷＯ２００４／００３１６３ ＷＯ２００８／０７３４４１ ＷＯ２００２／０３６７７１ 欧州特許第１，５６５，４９１号 ＷＯ２００８／１００８０５
Ｇｅｎｏｍｉｃｓ、２００２年、第７９巻、ｐ．５４７−５５２ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ、２００３年、第２６１巻、ｐ．２５１−２６７ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ、２００５年、第３３２巻、ｐ．５３３−５４１ Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、２００８年、第１４号、ｐ．４４８−４５３ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ、２０１０年、第２巻、ｐ．２３ｒａ１９ Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、２０１０年、第１０７巻、ｐ．１０５２０−１０５２５ Ｏｎｃｏｌｏｇｙ Ｒｅｐｏｒｔｓ、２００６年、第１５巻、ｐ．１４３７−１４４３ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｖｉｓｉｏｎ、２００９年、第１５巻、ｐ．１０５７−１０６９ Ｔｈｅ ＦＡＳＥＢ Ｊｏｕｒｎａｌ、２００５年、第１９巻、ｐ．１２１−１２３ ＢＭＣ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ、２００８年、第９巻、ｐ．６１−７２ Ｔｈｅ ＦＡＳＥＢ Ｊｏｕｒｎａｌ、２００９年、第２３巻、ｐ．５１３−５２２
本発明の一つの課題は、ＲＯＢＯ４に対する抗体を提供することである。
本発明の他の一つの課題は血管新生抑制効果を有する抗ＲＯＢＯ４抗体を含有する医薬組成物等を提供することである。
本発明の他の一つの課題は、該抗体の製造方法を提供することである。
本発明の他の一つの課題は、該抗体を用いた血管新生の抑制方法等を提供することである。
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意、検討を行ったところ、ＲＯＢＯ４の下流シグナルの活性化を検出するスクリーニング系の構築に成功した。また、本発明者らはそのスクリーニング系を利用することで、ＲＯＢＯ４の下流シグナルを活性化し、ＲＯＢＯ４発現ＥＣにおいてＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、ＨＧＦ、ＰＤＧＦ−ＢＢ及びＳＤＦ−１など種々の血管新生因子により誘導される細胞遊走に対して抑制活性を有し、ｉｎ ｖｉｖｏモデルにおいても血管新生抑制作用を示す新規の抗ＲＯＢＯ４モノクローナル抗体を取得することに成功し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、
（１）下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ）記載の性質を有する抗体又はその機能断片：
（Ｉ）好適には１ｘ１０−８以下のＫＤ値で、特に好適には５ｘ１０−９以下のＫＤ値でＲＯＢＯ４蛋白質に結合する、
（ＩＩ）イン・ビトロにおいて、クロスリンク抗体非存在下で血管内皮細胞遊走を抑制又は阻害する、及び
（ＩＩＩ）イン・ビボにおいて、血管新生を抑制又は阻害する、
（２）ＲＯＢＯ４蛋白質が、ヒトＲＯＢＯ４蛋白質である、（１）に記載の抗体又はその機能断片、
（３）ＲＯＢＯ４蛋白質が、配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜１００７のアミノ酸配列からなる蛋白質である、（１）に記載の抗体又はその機能断片、
（４）ＲＯＢＯ４蛋白質が、配列表の配列番号２のアミノ酸番号４６〜１００７のアミノ酸配列からなる蛋白質である、（１）に記載の抗体又はその機能断片、
（５）配列表の配列番号２のアミノ酸番号１３２〜２０９のアミノ酸配列からなる部位に結合する、（３）又は（４）に記載の抗体又はその機能断片、
（６）モノクローナル抗体又はその機能断片である、上記（１）に記載の抗体又はその機能断片、
（７）抗体が、配列表の配列番号４４（図２５）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列表の配列番号４６（図２６）に示されるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１個のアミノ酸が置換されたアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２、及び配列表の配列番号４８（図２７）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３を含む重鎖、並びに、配列表の配列番号５０（図２８）に示されるアミノ酸配列又は該アミノ酸配列において１〜３個のアミノ酸が置換されたアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列表の配列番号５２（図２９）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２、及び配列表の配列番号５４（図３０）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３を含む軽鎖からなる、上記（１）〜（６）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片、
（８）抗体が、配列表の配列番号４４（図２５）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列表の配列番号４６（図２６）に示されるアミノ酸配列又は配列表の配列番号６８（図４４）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２、及び配列表の配列番号４８（図２７）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３を含む重鎖、並びに、配列表の配列番号５０（図２８）に示されるアミノ酸配列又は配列表の配列番号７０（図４６）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列表の配列番号５２（図２９）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２、及び配列表の配列番号５４（図３０）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３を含む軽鎖からなる、（１）〜（７）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片、
（９）抗体が、配列表の配列番号３１（図１６）に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号３３（図１８）に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、（１）〜（７）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片、
（１０）抗体が、下記ａ）〜ｄ）より選択されるいずれか一つの重鎖可変領域、及びｅ）又はｆ）から選択される軽鎖可変領域を含む、上記（１）〜（８）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片：
ａ）配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖（ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ）可変領域、
ｂ）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖（ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ）可変領域、
ｃ）配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖（ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ）可変領域、及び
ｄ）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖（ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ）可変領域；並びに
ｅ）配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ）可変領域、及び
ｆ）配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ）可変領域、
（１１）抗体が、下記１）〜６）に記載の重鎖可変領域及び軽鎖可変領域の組合せのいずれか一つを含む、上記（１）〜（８）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片：
１）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
２）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
３）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
４）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
５）配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、及び
６）配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
（１２）キメラ抗体又はその機能断片である、上記（１）〜（１１）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片、
（１３）ヒト化抗体又はその機能断片である、上記（１）〜（１１）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片、
（１４）抗体が、ヒトＩｇＧ１又はヒトＩｇＧ２の重鎖定常領域を含む、上記（１）〜（１３）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片、
（１５）上記（７）〜（１４）に記載のいずれか一つの抗体が認識する抗原上の部位に結合する、上記（１）〜（６）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片、
（１６） ＲＯＢＯ４蛋白質への結合に対して、上記（７）〜（１４）に記載のいずれか一つの抗体と競合する、（１）〜（６）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片、
（１７）下記１）〜６）に記載の重鎖及び軽鎖の組合せのいずれか一つを含む、上記（１）〜（８）のいずれか一つに記載の抗体：
１）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−１１４０）、
２）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−１１４３）、
３）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−２１４３）、
４）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−２１４０）、
５）配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−１０４０）、及び
６）配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−２０４０）、
（１８）上記（１７）に記載のいずれか一つの抗体の重鎖の修飾体を含む抗体であって、該修飾体が、１〜数個の該重鎖のカルボキシル末端側のアミノ酸、好適には、１〜８個の該重鎖のカルボキシル末端側のアミノ酸、より好適には、１〜２個の該重鎖のカルボキシル末端側のアミノ酸を欠失している、抗体、
（１９）（１７）に記載のいずれか一つの抗体とアミノ酸配列が９５％以上同一であり、ヒトＲＯＢＯ４に対して１ｘ１０−８以下のＫＤ値を有し、イン・ビトロにおいてクロスリンク抗体非存在下で血管内皮細胞遊走を抑制又は阻害し、且つイン・ビボにおいて血管新生を抑制又は阻害する、（１）〜（６）のいずれか一つに記載の抗体、
（２０）ヒト抗体又はその機能断片である、（１５）に記載の抗体又はその機能断片、
（２１）下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ）からなる群より選択されるヌクレオチド配列：
（Ｉ）上記（１）〜（２０）のいずれか一つに記載の抗体の重鎖または軽鎖の一部または全部のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含んでなるヌクレオチド配列、
（ＩＩ）上記（１）〜（２０）のいずれか一つに記載の抗体の重鎖または軽鎖の一部または全部のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含むヌクレオチド配列からなるヌクレオチド配列、及び
（ＩＩＩ）上記（１）〜（２０）のいずれか一つに記載の抗体の重鎖または軽鎖の一部または全部のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列からなるヌクレオチド配列、
（２２）上記（２１）記載のヌクレオチド配列が挿入された組換えベクター、
（２３）上記（２１）記載のヌクレオチド又は上記（２２）記載の組換えベクターが導入された組換え細胞、
（２４）好適には哺乳動物細胞、より好適にはＣＨＯ細胞、より一層好適にはＣＨＯＫ１ＳＶである、上記（１）〜（２０）のいずれか一つに記載の抗体を産生する細胞、
（２５）下記の工程（Ｉ）及び（ＩＩ）を含む、上記（１）〜（２０）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片の製造方法：
（Ｉ）上記（２３）又は（２４）記載の細胞を培養する工程；及び
（ＩＩ）前記工程（Ｉ）で得られた培養物から上記（１）〜（２０）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片を回収する工程、
（２６）上記（２５）に記載の製造方法により製造された抗体又はその機能断片、
（２７）上記（１）〜（２０）及び（２６）のいずれか一つに記載の抗体又はその機能断片の修飾体、
（２８）上記（１）〜（２０）及び（２６）のいずれか一つに記載の抗体もしくはその機能断片、または上記（２７）記載の修飾体を有効成分として含んでなる医薬組成物、
（２９）血管新生性疾患の治療薬または予防薬である、上記（２８）に記載の医薬組成物、
（３０）血管新生性疾患が滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性もしくは悪性の腫瘍、アテローム性動脈硬化症、水晶体後部線維増殖症、血管腫、慢性炎症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織もしくは他の移植組織の免疫拒絶、関節リウマチ、乾癬、急性炎症、敗血症、又は、肥満症である、上記（２８）記載の医薬組成物、
（３１）血管新生性疾患が滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、水晶体後部線維増殖症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、又は移植角膜組織の免疫拒絶である、上記（２８）記載の医薬組成物、
（３２）上記（１）〜（２０）及び（２６）のいずれか一つに記載の抗体もしくはその機能断片、または（２７）記載の修飾体を有効成分として含んでなる血管新生阻害剤、
（３３）上記（１）〜（２０）及び（２６）のいずれか一つに記載の抗体もしくはその機能断片又は上記（２７）記載の修飾体、又は上記（２８）〜（３１）のいずれか一つに記載の組成物の有効量を、それを必要とする対象に投与する工程を含む、血管新生性疾患を治療又は予防するための方法であって、好適には、血管新生性疾患が、ＲＯＢＯ４蛋白質の発現を有する個体における血管新生性疾患である、方法、及び
（３４）好適には血管新生抑制薬、抗炎症薬及び／又は抗がん薬であるさらなる治療薬又は予防薬と併用される、上記（２８）〜（３１）のいずれか一つに記載の医薬組成物
に関する。
本発明によれば、ＲＯＢＯ４に結合し、血管新生抑制作用を有する抗体を含有する血管新生疾患の治療剤等を得ることができる。
ヒトＲＯＢＯ４のＨＥＫ２９３細胞への一過性発現で、ＮＦ−κＢ、ＧＡＳ、ＩＳＲＥ、ＩＬ−８プロモーター、又はＴＣＦを応答エレメントとしたレポーター活性の変動の有無を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝３）を示す。 ヒトＲＯＢＯ４の全長あるいはヒトＲＯＢＯ４の細胞内領域欠損体のＨＥＫ２９３細胞への一過性発現で、ＩＬ−８プロモーター活性の変動の有無を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝５あるいは１０）を示す。 抗ＲＯＢＯ４抗体、ＭＡｂ１によるヒトＲＯＢＯ４導入ＨＥＫ２９３細胞でのＩＬ−８プロモーター活性の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝３）を示す。 抗ＲＯＢＯ４抗体、ＭＡｂ２、ＭＡｂ３あるいはＭＡｂ４によるヒトＲＯＢＯ４導入ＨＥＫ２９３細胞でのＩＬ−８プロモーター活性の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝３）を示す。 抗ＲＯＢＯ４抗体、ＭＡｂ１によるＶＥＧＦあるいはｂＦＧＦ存在下でのＨＵＶＥＣの遊走能の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝３あるいは４）を示す。 抗ＲＯＢＯ４抗体、ＭＡｂ２、ＭＡｂ３、またはＭＡｂ４によるｂＦＧＦ存在下でのＨＵＶＥＣの遊走能の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝４）を示す。 抗ＲＯＢＯ４抗体、ＭＡｂ１のヒトＲＯＢＯ４、マウスＲＯＢＯ４、ラットＲＯＢＯ４あるいはカニクイザルＲＯＢＯ４に対する結合活性の有無を示す図。 抗ＲＯＢＯ４抗体、ＭＡｂ１のヒトＲＯＢＯ１、ヒトＲＯＢＯ２あるいはヒトＲＯＢＯ３に対する結合活性の有無を示す図。上段はＭＡｂ１での結果を示し、下段はこれらの蛋白質が細胞表面上に発現しているかを確認するポジティブコントロール抗体での結果を示す。 抗ＲＯＢＯ４抗体、ＭＡｂ１のヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体に対する結合活性の有無を示す図。上段はＭＡｂ１での結果を示し、下段はこれらの蛋白質が細胞表面上に発現しているかを確認する抗ＦＬＡＧ抗体での結果を示す。 抗ＲＯＢＯ４抗体、ＭＡｂ１によるレーザー誘発脈絡膜血管新生モデルにおける血管新生の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝４眼）を示し、■あるいは□は各眼の結果を示す。 抗ＲＯＢＯ４キメラ抗体、ｃＭＡｂ１−１またはｃＭＡｂ１−２によるヒトＲＯＢＯ４導入ＨＥＫ２９３細胞でのＩＬ−８プロモーター活性の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝３）を示す。 抗ＲＯＢＯ４キメラ抗体、ｃＭＡｂ１−１またはｃＭＡｂ１−２によるｂＦＧＦ存在下でのＨＵＶＥＣの遊走能の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝４）を示す。 ヒトＲＯＢＯ４全長をコードするｃＤＮＡ（配列番号１）。 ヒトＲＯＢＯ４の全長アミノ酸配列（配列番号２）。 ＭＡｂ１重鎖可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号３０）。 ＭＡｂ１重鎖可変領域のアミノ酸配列（配列番号３１）。 ＭＡｂ１軽鎖可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号３２）。 ＭＡｂ１軽鎖可変領域のアミノ酸配列（配列番号３３）。 ｃＭＡｂ１軽鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号３７）。 ｃＭＡｂ１軽鎖のアミノ酸配列（配列番号３８）。 ｃＭＡｂ１−１重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号３９）。 ｃＭＡｂ１−１重鎖のアミノ酸配列（配列番号４０）。 ｃＭＡｂ１−２重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号４１）。 ｃＭＡｂ１−２重鎖のアミノ酸配列（配列番号４２）。 ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ１のアミノ酸配列（配列番号４４）。 ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ２のアミノ酸配列（配列番号４６）。 ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ３のアミノ酸配列（配列番号４８）。 ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ１のアミノ酸配列（配列番号５０）。 ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ２のアミノ酸配列（配列番号５２）。 ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ３のアミノ酸配列（配列番号５４）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号５５）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖のアミノ酸配列（配列番号５６）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号５７）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖のアミノ酸配列（配列番号５８）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号５９）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖のアミノ酸配列（配列番号６０）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号６１）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のアミノ酸配列（配列番号６２）。 ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号６３）。 ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖のアミノ酸配列（配列番号６４）。 ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号６５）。 ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のアミノ酸配列（配列番号６６）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ２又はｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のＣＤＲＨ１のアミノ酸配列（配列番号６７）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ２又はｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のＣＤＲＨ２のアミノ酸配列（配列番号６８）。 ｈＭＡｂ１−Ｈ２又はｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のＣＤＲＨ３のアミノ酸配列（配列番号６９）。 ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のＣＤＲＬ１のアミノ酸配列（配列番号７０）。 ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のＣＤＲＬ２のアミノ酸配列（配列番号７１）。 ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のＣＤＲＬ３のアミノ酸配列（配列番号７２）。 Ｈ−１０４０、Ｈ−１１４３、Ｈ−１１４０、Ｈ−２０４０、Ｈ−２１４３、またはＨ−２１４０によるヒトＲＯＢＯ４導入ＨＥＫ２９３細胞でのＩＬ−８プロモーター活性の変動を示す図。 Ｈ−１１４３、Ｈ−２１４０、またはＨ−２１４３によるｂＦＧＦ存在下でのＨＵＶＥＣの遊走能の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝４）を示す。 Ｈ−１１４３の種交差性を示す図。 Ｈ−２１４０の種交差性を示す図。 Ｈ−２１４３の種交差性を示す図。 Ｈ−１１４３、Ｈ−２１４０、又はＨ−２１４３の結合特異性を示す図。 Ｈ−２１４３によるレーザー誘発脈絡膜血管新生モデルにおける血管新生の変動を示す図。図中のエラーバーは標準誤差（ｎ＝３〜４眼）を示す。
１．定義
本発明において、「遺伝子」とは、蛋白質のアミノ酸をコードするヌクレオチド配列が含まれるヌクレオチドもしくはヌクレオチド配列、またはその相補鎖を意味し、例えば、蛋白質のアミノ酸をコードするヌクレオチド配列が含まれるヌクレオチド配列またはその相補鎖であるポリヌクレオチド、オリゴヌクレオチド、ＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ、ｃＲＮＡ等は「遺伝子」の意味に含まれる。かかる遺伝子は一本鎖、二本鎖又は三本鎖以上のヌクレオチド配列であり、ＤＮＡ鎖とＲＮＡ鎖の会合体、一本のヌクレオチド鎖上にリボヌクレオチド（ＲＮＡ）とデオキシリボヌクレオチド（ＤＮＡ）が混在するもの及びそのようなヌクレオチド鎖を含む二本鎖又は三本鎖以上のヌクレオチド配列も「遺伝子」の意味に含まれる。本発明の「ＲＯＢＯ４遺伝子」としては、例えば、ＲＯＢＯ４蛋白質のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列が含まれるＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ｃＤＮＡ、ｃＲＮＡ等をあげることができる。
本発明において、「ヌクレオチド」又は「ヌクレオチド配列」と「核酸」は同義であり、例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、プローブ、オリゴヌクレオチド、ポリヌクレオチド、プライマー等も「ヌクレオチド」又は「ヌクレオチド配列」の意味に含まれる。かかるヌクレオチド配列は一本鎖、二本鎖又は三本以上の鎖からなるヌクレオチドであり、ＤＮＡ鎖とＲＮＡ鎖の会合体、一本のヌクレオチド鎖上にリボヌクレオチド（ＲＮＡ）とデオキシリボヌクレオチド（ＤＮＡ）が混在するもの及びそのようなヌクレオチド鎖を含む二本鎖又は三本以上の鎖の会合体も「ヌクレオチド」配列の意味に含まれる。
本発明において、「ポリペプチド」、「ペプチド」および「蛋白質」は同義である。
本発明において、「抗原」を「免疫原」の意味に用いることがある。
本発明において、「細胞」には、動物個体に由来する各種細胞、継代培養細胞、初代培養細胞、細胞株、組換え細胞等も含まれる。
本発明においては、ＲＯＢＯ４蛋白質を認識する抗体を「抗ＲＯＢＯ４抗体」と表記することがある。「抗ＲＯＢＯ４抗体」には、抗ＲＯＢＯ４キメラ抗体、抗ＲＯＢＯ４ヒト化抗体、抗ＲＯＢＯ４ヒト抗体等が含まれる。
本発明における「抗体の機能断片」とは、元の抗体が奏する機能、例えば、結合親和性（ＫＤ値）等の少なくとも一部を奏する抗体断片を意味する。「抗体の機能断片」としては、例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ'）２、ｓｃＦｖ、Ｆａｂ'、一本鎖免疫グロブリン等をあげることができるが、それらに限定されるものではない。かかる抗体の機能断片は、抗体蛋白質の全長分子をパパイン、ペプシン等の酵素で処理することによって得られたものに加え、組換え遺伝子を用いて適当な宿主細胞において産生された組換え蛋白質であってもよい。好ましい「機能断片」はまた、元の抗体の生物活性の少なくとも一部も有する。
さらに、本発明でいう重鎖または軽鎖の「一部のアミノ酸配列」をコードするヌクレオチド配列は、上記本明細書において定義する「抗体の機能断片」をコードするヌクレオチド配列であるか、あるいはそのような配列を含む。
本発明において、抗体が結合する「部位」、すなわち抗体が認識する「部位」とは、抗体が結合又は認識する抗原上の部分ペプチド又は部分高次構造を意味する。本発明においては、かかる部位のことをエピトープ又は抗体の結合部位とも呼ぶ。本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体が結合又は認識するＲＯＢＯ４蛋白質上の部位としては、ＲＯＢＯ４蛋白質上の部分ペプチド又は部分高次構造等を例示することができる。
抗体分子の重鎖及び軽鎖にはそれぞれ３箇所の相補性決定領域（ＣＤＲ：Ｃｏｍｐｌｅｍｅｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）があることが知られている。相補性決定領域は、超可変領域（ｈｙｐｅｒｖａｒｉａｂｌｅ ｄｏｍａｉｎ）とも呼ばれ、抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域内にあって、一次構造の変異性が特に高い部位であり、重鎖及び軽鎖のポリペプチド鎖の一次構造上において、通常、それぞれ３ヶ所に分離している。本発明においては、抗体の相補性決定領域について、重鎖の相補性決定領域を重鎖アミノ酸配列のアミノ末端側からＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２、及びＣＤＲＨ３と表記し、軽鎖の相補性決定領域を軽鎖アミノ酸配列のアミノ末端側からＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２、及びＣＤＲＬ３と表記する。これらの部位は立体構造の上で相互に近接し、結合する抗原に対する特異性を決定している。
本発明において、「抗体変異体」とは、元の抗体が有するアミノ酸配列においてアミノ酸が置換、欠失、付加及び／又は挿入（以下、「変異」と総称する）してなるアミノ酸配列を有し、且つ本発明のＲＯＢＯ４蛋白質に結合するポリペプチドを意味する。かかる抗体変異体における変異アミノ酸の数は、１〜２個、１〜３個、１〜４個、１〜５個、１〜６個、１〜７個、１〜８個、１〜９個、１〜１０個、１〜１２個、１〜１５個、１〜２０個、１〜２５個、１〜３０個、１〜４０個又は１〜５０個である。かかる抗体変異体も本発明の「抗体」に包含される。
本発明において、「１〜数個」における「数個」とは、２〜１０個、好適には２〜８個、より好適には２個を指す。
本発明の抗体が奏する活性又は性質としては、例えば、生物的活性又は理化学的性質等を挙げることができ、具体的には、各種生物活性、抗原やエピトープに対する結合活性、製造や保存時における安定性、熱安定性等をあげることができる。
本発明において、「ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする」とは、５×ＳＳＣを含む溶液中で６５℃にてハイブリダイゼーションを行い、ついで２×ＳＳＣ−０．１％ＳＤＳを含む水溶液中で６５℃にて２０分間、０．５×ＳＳＣ−０．１％ＳＤＳを含む水溶液中で６５℃にて２０分間、ならびに、０．２×ＳＳＣ−０．１％ＳＤＳを含む水溶液中で６５℃にて２０分間洗浄する条件、又はそれと同等の条件でハイブリダイズすることを意味する。ＳＳＣとは１５０ｍＭ ＮａＣｌ−１５ｍＭクエン酸ナトリウムの水溶液を意味し、ｎ×ＳＳＣはｎ倍濃度のＳＳＣを意味する。
２．ＲＯＢＯ４蛋白質
本明細書において、「ＲＯＢＯ４」と「ＲＯＢＯ４蛋白質」は同義で用いている。
（２−１）特性
本発明のＲＯＢＯ４蛋白質は以下の性質を有する。
（ｉ）ＲＯＢＯ４は分子量約１１０ｋＤａの１回膜貫通構造を有し、且つ、血管新生に関与するＳＬＩＴ２蛋白質の受容体蛋白質である。本発明のＲＯＢＯ４蛋白質は、いずれも細胞膜等の膜から遊離した形状で存在し得るが、細胞膜等の膜に結合した形状であってもよい。ここでいう分子量とは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにおける非還元状態下での見かけ上の分子量を意味する。ＲＯＢＯ４のＮ末端側の細胞外領域には、２カ所の免疫グロブリン様ドメイン（以下、「Ｉｇ様ドメイン」という）と２カ所のフィブロネクチンタイプＩＩＩドメインが存在し、Ｃ末端側の細胞内領域にはプロリンリッチ領域が存在している。本明細書において、これら２カ所の免疫グロブリン様ドメインをそれぞれアミノ末端側からＩｇ様ドメイン１及びＩｇ様ドメイン２という。ヒトＲＯＢＯ４蛋白質は配列表の配列番号２のアミノ酸番号２８〜１００７のアミノ酸配列からなる。配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜２７は分泌シグナルであり、そのアミノ酸番号２８〜４６７は細胞外領域であり、そのアミノ酸番号４６〜１３１はＩｇ様ドメイン１であり、そのアミノ酸番号１３７〜２２４はＩｇ様ドメイン２であり、そのアミノ酸番号２５２〜３４０はフィブロネクチンタイプＩＩＩドメイン１であり、そのアミノ酸番号３４７〜４３８はフィブロネクチンタイプＩＩＩドメイン２であり、そのアミノ酸番号４６８〜４９０は細胞膜内領域であり、そのアミノ酸番号４９１〜１００７は細胞内領域である。
（ｉｉ）ＲＯＢＯ４は血管新生抑制作用を有する。本発明において「血管新生抑制」とは、分子が単独で、他の因子と共同して、または、他の因子との会合体として、直接に又は間接的に、血管新生を抑制及び／又は阻害することを意味する。血管新生抑制作用は、たとえばＶＥＧＦによる血管透過性亢進、細胞遊走促進活性、又は管腔形成活性に対する抑制作用を指標として評価することができる。
（ｉｉｉ）ＲＯＢＯ４は次の（ａ）〜（ｅ）のいずれか一つに記載のアミノ酸配列（以下、「ＲＯＢＯ４アミノ酸配列」という）を含んでなるか、ＲＯＢＯ４アミノ酸配列を含むアミノ酸配列からなるか、またはＲＯＢＯ４アミノ酸配列からなる：
（ａ）配列表の配列番号２（図１４）で示されるアミノ酸配列；
（ｂ）配列表の配列番号２（図１４）で示されるアミノ酸配列と８０％以上、８２％以上、８４％以上、８６％以上、８８％以上、９０％以上、９２％以上、９４％以上、９６％以上、９８％以上又は９９％以上の配列同一性を示し且つ血管新生抑制作用を示すポリペプチドのアミノ酸配列；
（ｃ）配列表の配列番号２（図１４）で示されるアミノ酸配列において１〜５０個、１〜４５個、１〜４０個、１〜３５個、１〜３０個、１〜２５個、１〜２０個、１〜１５個、１〜１０個、１〜８個、１〜６個、１〜５個、１〜４個、１〜３個、１若しくは２個、または１個のアミノ酸が置換、欠失、付加または挿入してなるアミノ酸配列を含み、且つ、血管新生を抑制するポリペプチドのアミノ酸配列；
（ｄ）配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜４５又は１〜１３１が欠失してなるアミノ酸配列を含み、且つ、血管新生を抑制するポリペプチドのアミノ酸配列；及び、
（ｅ）配列表の配列番号２（図１４）で示されるアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列と相補的なヌクレオチド配列を有するヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチドのヌクレオチド配列によりコードされ、且つ、血管新生を抑制するポリペプチドのアミノ酸配列。
また、ＲＯＢＯ４蛋白質は２つ以上のサブユニットから構成されるホモ又はヘテロのオリゴ会合体の全部又は一部としても存在し得る。
個体、組織、体液、細胞、ＲＯＢＯ４蛋白質を含有する画分、精製又は部分精製ＲＯＢＯ４蛋白質標品等において、又は、複数の個体、組織、細胞、ＲＯＢＯ４蛋白質含有画分又はＲＯＢＯ４蛋白質標品の間で、ＲＯＢＯ４蛋白質のアミノ酸配列及び／又はその他の性質は同一でなくてもよく、均一でなくてもよい。一つの個体、組織、体液、細胞、ＲＯＢＯ４蛋白質を含有する画分、精製又は部分精製ＲＯＢＯ４蛋白質標品等には、アミノ酸配列及び／又は性質が異なる複数種のＲＯＢＯ４蛋白質が含まれていてもよい。また、複数の個体、組織、細胞、ＲＯＢＯ４蛋白質含有画分又はＲＯＢＯ４蛋白質標品の間で、ＲＯＢＯ４蛋白質のアミノ酸配列及び／又はその他の性質が異なっていてもよい。かかるアミノ酸配列及び／又は性質が互いに異なる蛋白質であっても、上記（ｉ）〜（ｉｉｉ）記載の性質を具備していれば、いずれも本発明の「ＲＯＢＯ４蛋白質」に包含される。
（ｉｖ）本発明のＲＯＢＯ４蛋白質は、脊椎動物、好適には哺乳動物、より好適にはマウスもしくはラット等のげっ歯類又はヒト、より一層好適にはヒト又はマウスの組織、かかる組織由来の細胞、かかる細胞の培養物等より得ることができる。かかる組織及び細胞としては、ＲＯＢＯ４蛋白質が存在すれば特に限定されるものではないが、例えば、関節組織、血液、リンパ液、胸腺、脾臓、それらのいずれかに由来する細胞等をあげることができる。好適な組織及び細胞は、血管新生が生じている動物又は患者に由来する組織及び細胞である。ただし、本発明のＲＯＢＯ４蛋白質の由来は、前記のものに限定されず、他の動物種、他の組織、他の細胞等に由来するものであっても、上記（ｉ）〜（ｉｉｉ）記載の性質を具備していれば本発明のＲＯＢＯ４蛋白質の意味に含まれる。
本発明のＲＯＢＯ４蛋白質は天然型及び組換え型のいずれであってもよい。また、担体やタグなど他のペプチドや蛋白質との融合物もＲＯＢＯ４蛋白質の意味に含まれる。さらに、ＰＥＧ等のポリマー付加を含む化学修飾、及び／又は、糖鎖修飾を含む生物学的修飾がなされたものもＲＯＢＯ４蛋白質の意味に含まれる。また、ＲＯＢＯ４蛋白質断片も本発明のＲＯＢＯ４蛋白質の意味に含まれる。ＲＯＢＯ４蛋白質断片のうち上記（ｉｉ）記載の性質を具備したものをＲＯＢＯ４蛋白質機能断片と呼ぶ。
（２−２）ＲＯＢＯ４遺伝子
本発明のＲＯＢＯ４遺伝子は、次の（ａ）〜（ｃ）のいずれか一つに記載のヌクレオチド配列（以下、「ＲＯＢＯ４遺伝子配列」という）を含んでなるか、ＲＯＢＯ４遺伝子配列を含むヌクレオチド配列からなるか、またはＲＯＢＯ４遺伝子配列からなる：
（ａ）配列表の配列番号１（図１３）で示されるヌクレオチド配列；
（ｂ）配列表の配列番号１（図１３）で示されるヌクレオチド配列に相補的なヌクレオチド配列からなるヌクレオチドとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし且つ血管新生を抑制するポリペプチドのアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列；及び
（ｃ）配列表の配列番号１（図１３）で示されるヌクレオチド配列において１〜１５０個、１〜１４０個、１〜１３０個、１〜１２０個、１〜１１０個、１〜１００個、１〜９０個、１〜８０個、１〜７０個、１〜６０個、１〜５０個、１〜４５個、１〜４０個、１〜３０個、１〜２５個、１〜２０個、１〜１５個、１〜１０個、１〜８個、１〜６個、１〜５個、１〜４個、１〜３個、１若しくは２個、または１個の塩基が置換、欠失、付加または挿入してなるヌクレオチド配列を含み、且つ血管新生を抑制するポリペプチドのアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列。
ＲＯＢＯ４遺伝子の発現は、血管新生が生じる疾患、例えば、増殖性糖尿病網膜症患者の線維血管増殖膜内にある血管あるいは腫瘍内血管において亢進している。その他、滲出型加齢黄斑変性、黄斑浮腫、アテローム性動脈硬化症、水晶体後部線維増殖症、血管腫、慢性炎症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織又は他の移植組織の免疫拒絶、関節リウマチ、乾癬、急性炎症、敗血症、肥満等など、血管新生が関与すると考えられる疾患に罹患した患者または当該疾患モデル動物に由来する組織又は血液画分において、ＲＯＢＯ４遺伝子の発現が亢進していると考えられる。
ＲＯＢＯ４遺伝子の発現及び発現量の測定は、ＲＯＢＯ４遺伝子の転写産物及びＲＯＢＯ４蛋白質のいずれを指標としてもよく、前者はＲＴ−ＰＣＲ法、ノーザンブロット・ハイブリダーゼーション法等により、後者は（ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏ−ｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ：以下、「ＥＬＩＳＡ」という等の）免疫アッセイ法等により、測定することができる。
（２−３）蛋白質の調製
本発明のＲＯＢＯ４蛋白質は、動物組織（体液を含む）、該組織由来の細胞もしくは該細胞培養物から精製又は単離することができ、遺伝子組換え、イン・ビトロ翻訳、化学合成等により調製することができる。
（２−３−１）天然型ＲＯＢＯ４の精製又は単離
天然型ＲＯＢＯ４蛋白質は、例えば滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性又は悪性の腫瘍、アテローム性動脈硬化症、水晶体後部線維増殖症、血管腫、慢性炎症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織又は他の移植組織の免疫拒絶、関節リウマチ、乾癬、急性炎症、敗血症、肥満等の血管新生性疾患に罹患した患者又は非ヒト動物に由来する組織（体液、細胞等を含む）、かかる組織に由来する細胞、かかる細胞の培養物等より精製又は単離することができる。かかる非ヒト動物には該疾患モデル動物も含まれる。モデルの作製に供する動物としては、脊椎動物であればとくに限定されないが、好適には哺乳動物であり、より好適にはマウスやラット等のげっ歯類であり、より一層好適にはマウスまたはラットである。そのような患者又はモデル動物の組織及び細胞としては、ＲＯＢＯ４蛋白質が存在すれば特に限定されるものではないが、例えば、関節組織、血液、リンパ液、胸腺、脾臓、それらのいずれかに由来する細胞等をあげることができる。好適な組織及び細胞は、血管新生を発症しているか類似の症状を呈している患者又はモデル動物に由来するものである。ただし、本発明のＲＯＢＯ４蛋白質の由来は、前記のものに限定されず、他の動物種、他の組織、他の細胞等に由来するものであってもよい。
かかる組織、細胞、細胞培養物等からの精製又は単離は当業者に周知の分画、クロマトグラフィー等の手法を組み合わせることにより行うことができる。かかる手法には、塩析、ゲルろ過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、順相又は逆相クロマトグラフィー等が含まれるが、それらに限定されるものではない。アフィニティークロマトグラフィー用のカラムは、抗ＲＯＢＯ４モノクローナル抗体を架橋したアフィニティーゲルを作製してカラムに充填することにより作製することができる。かかるカラムにＲＯＢＯ４蛋白質を含有する粗画分又は部分精製画分を添加し、次いで滅菌したリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で非特異的吸着物を除去した後、溶出用緩衝液を添加することによりＲＯＢＯ４蛋白質を選択的に回収することができる。ＲＯＢＯ４蛋白質含有溶液は、ゲルろ過やＣｅｎｔｒｉｐｒｅｐ等の濃縮装置でバッファー交換及び／又は濃縮することができる。
（２−３−２）組換型ＲＯＢＯ４蛋白質の調製
本発明のＲＯＢＯ４蛋白質は、組換型としても調製することができる。すなわち、ＲＯＢＯ４蛋白質又はＲＯＢＯ４蛋白質断片のアミノ酸配列をコードする遺伝子を宿主細胞に導入し、かかる細胞の培養物からＲＯＢＯ４蛋白質を回収することができる。例えば、ＲＯＢＯ４遺伝子又はその断片を発現ベクターに挿入し、次いで、原核又は真核の宿主細胞に該組換えベクターを導入して得られる組換え細胞を保温すれば、該細胞にＲＯＢＯ４蛋白質を発現させることができる。発現形態としては、分泌発現、細胞内可溶発現、インクルージョンボディー法など当技術分野において公知の形態を用いることができる。また、アミノ末端（Ｎ末）及び／又はカルボキシ末端（Ｃ末）が天然型と同一の分子のみならず、分泌シグナル、細胞内局在化シグナル、アフィニティー精製用タグ、又はパートナーペプチドとの融合蛋白質として、ＲＯＢＯ４タンパク質を発現させることもできる。かかる組換え細胞培養物からのＲＯＢＯ４蛋白質の精製又は単離は、（２−３−１）天然型ＲＯＢＯ４蛋白質の精製又は単離に記載の分画、クロマトグラフィー等の操作を適宜組み合わせることにより行うことができる。
ＲＯＢＯ４遺伝子又はその断片は、当業者に周知の方法により調製することができる。
例えば、ＲＯＢＯ４を発現しているｃＤＮＡライブラリーを鋳型とし、当該配列を特異的に増幅し得る一組のプライマーを用いたポリメラーゼ連鎖反応（以下、「ＰＣＲ」という：Ｓａｉｋｉ，Ｒ．Ｋ．，ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９８８）２３９，ｐ．４８７−４８９）、ＲＯＢＯ４を発現しているｍＲＮＡ画分を鋳型とし、当該配列を逆転写し得るプライマー及び当該配列を特異的に増幅し得る一組のプライマーを用いた逆転写ＰＣＲ（以下、「ＲＴ−ＰＣＲ」という）、免疫アッセイを利用した発現クローニング、精製ＲＯＢＯ４蛋白質の部分アミノ酸配列を利用したｃＤＮＡクローニング等をあげることができる。
（２−３−３）イン・ビトロ翻訳
本発明のＲＯＢＯ４蛋白質はイン・ビトロ翻訳によっても調製することができる。かかる翻訳法としては、転写及び翻訳に必要な酵素、基質並びにエネルギー物質を含む無細胞翻訳系を利用した方法であれば特に限定されるものではないが、例えば、ロシュ・ダイアグノスティックス社製のラピッドトランスレーションシステム（ＲＴＳ）を利用する方法をあげることができる。
（２−３−４）化学合成
本発明のＲＯＢＯ４蛋白質は化学合成によっても調製することができる。化学合成法としては、例えば、Ｆｍｏｃ合成法、Ｂｏｃ合成法などのペプチド固相合成法をあげることができる。
３．抗ＲＯＢＯ４抗体
（３−１）抗ＲＯＢＯ４抗体の種類
本発明の抗体は、モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体のいずれであってもよい。本発明のモノクローナル抗体としては、非ヒト動物由来の抗体（非ヒト動物抗体）、ヒト由来の抗体（ヒト抗体）、キメラ抗体、ヒト化抗体等、好適にはキメラ抗体、ヒト化抗体、及びヒト由来の抗体（ヒト抗体）、より好適にはヒト化抗体、及びヒト由来の抗体（ヒト抗体）をあげることができる。
非ヒト動物抗体としては、哺乳類、鳥類等の脊椎動物に由来する抗体等をあげることができる。哺乳類由来の抗体としては、マウス抗体、ラット抗体等げっ歯類由来の抗体等をあげることができる。鳥類由来の抗体としては、ニワトリ抗体等をあげることができる。
キメラ抗体としては、ヒト抗体（ヒト免疫グロブリン）定常領域と結合してなる非ヒト動物抗体由来の可変領域を含む抗体等をあげることができるが、それに限定されるものではない。非ヒト動物抗体由来の可変領域としては、後述のＭＡｂ１由来の重鎖及び軽鎖可変領域を例示することができる。
ヒト化抗体としては、非ヒト動物抗体の可変領域中のＣＤＲをヒト抗体（ヒト免疫グロブリンの可変領域）に移植したもの、ＣＤＲに加え非ヒト動物抗体のフレームワーク領域の配列も一部ヒト抗体に移植したもの、それらのヒト化抗体いずれかにおいてヒト抗体アミノ酸を非ヒト動物抗体由来の１つ又は２つ以上のアミノ酸に置換したもの等をあげることができるが、それらに限定されるものではない。非ヒト動物抗体の可変領域中のＣＤＲとしては、後述のＭＡｂ１由来の重鎖可変領域中のＣＤＲＨ１〜３および軽鎖可変領域中のＣＤＲＬ１〜３を例示することができる。
ヒト抗体としては、本発明の抗原を認識する抗体であれば特に限定されるものではないが、本発明の抗体のＣＤＲを有する抗体と同一の部位に結合するヒト抗体や前述のＭＡｂ１とＲＯＢＯ４上で同一の部位に結合するヒト抗体等を例示することができる。
本発明における抗体は、複数の異なる抗体に由来する部分から構成される抗体であってもよく、例えば、複数の異なる抗体間で重鎖及び／又は軽鎖を交換したもの、重鎖及び／又は軽鎖の全長を交換したもの、可変領域のみ又は定常領域を交換したもの、ＣＤＲの全部又は一部を交換したもの等をあげることができる。キメラ抗体の重鎖可変領域と軽鎖可変領域は、異なる本発明の抗体に由来してもよい。ヒト化抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域中のＣＤＲＨ１〜３並びにＣＤＲＬ１〜３は、２種又はそれ以上の異なる本発明の抗体に由来してもよい。ヒト抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域中のＣＤＲＨ１〜３並びにＣＤＲＬ１〜３は、２種又はそれ以上の異なる本発明の抗体が有するＣＤＲの組合せであってもよい。
本発明のモノクローナル抗体のアイソタイプは特に限定されるものではないが、例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４等のＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２等のＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ等をあげることができ、好適にはＩｇＧおよびＩｇＭ、さらに好適にはＩｇＧ２を挙げることができる。モノクローナル抗体のアイソタイプ及びサブクラスは、例えば、オクテルロニー（Ｏｕｃｈｔｅｒｌｏｎｙ）法、ＥＬＩＳＡ法、ｒａｄｉｏ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ（以下、「ＲＩＡ」という）法等で決定することができる、市販の同定用のキット（マウスタイパーキット：バイオラッドラボラトリー社製、ＲＡＴ ＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬ ＡＮＴＩＢＯＤＹ ＩＳＯＴＹＰＩＮＧ ＴＥＳＴ ＫＩＴ：ｓｅｒｏｔｅｃ社製等）も利用することができる。
（３−２）抗ＲＯＢＯ４抗体の結合特異性
本発明の抗体はＲＯＢＯ４蛋白質を認識する。言い換えれば、本発明の抗体はＲＯＢＯ４蛋白質に結合する。かかる抗体は「抗ＲＯＢＯ４抗体」と表記される。また、本発明の好適な抗体はＲＯＢＯ４蛋白質を特異的に認識する。言い換えれば、本発明の好適な抗体はＲＯＢＯ４蛋白質に特異的に結合する。さらに、本発明のより好適な抗体はＲＯＢＯ４蛋白質の有するＩｇ様ドメインに特異的に結合する。かかるＩｇ様ドメインとしては、Ｉｇ様ドメイン１、Ｉｇ様ドメイン２を例示することができ、本発明のより好適な抗体は、配列表の配列番号２のアミノ酸番号１３２〜２０９のアミノ酸配列からなる領域を認識する。本発明の抗体は、ヒトＲＯＢＯ４蛋白質、サル、好ましくはカニクイザルＲＯＢＯ４蛋白質、及びウサギＲＯＢＯ４蛋白質に結合するが、マウス及びラットＲＯＢＯ４蛋白質には結合しない（実施例４）−３及び実施例１１）−４の種交差性）。
本発明において「特異的な認識」、すなわち「特異的な結合」とは、非特異的な吸着ではない結合を意味する。結合が特異的であるか否かの判定基準としては、例えば、解離定数（ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｃｏｎｓｔａｎｔ：以下、「ＫＤという」）をあげることができる。本発明の好適な抗体のＲＯＢＯ４蛋白質に対するＫＤ値は１×１０−５以下、５×１０−６以下、２×１０−６以下または１×１０−６以下、より好適には５×１０−７以下、２×１０−７以下または１×１０−７以下、より一層好適には５×１０−８以下、２×１０−８以下または１×１０−８以下、さらにより一層好適には５×１０−９以下、２×１０−９以下または１×１０−９以下、最適には５×１０−１０以下、２×１０−１０以下または１×１０−１０以下である。より具体的には、本発明の好適な抗体のＲＯＢＯ４タンパク質に対するＫＤ値は、２×１０−８以下、より好適には１×１０−８以下、より一層好適には５×１０−９以下である。
本発明における抗原と抗体の結合は、ＥＬＩＳＡ法、ＲＩＡ法、Ｓｕｒｆａｃｅ Ｐｌａｓｍｏｎ Ｒｅｓｏｎａｎｃｅ（以下、「ＳＰＲ」という）解析法等により測定または判定することができる。ＳＰＲ解析に用いる機器としては、ＢＩＡｃｏｒｅ（商標）（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）、ＰｒｏｔｅＯｎ（商標）（ＢｉｏＲａｄ社製）、ＳＰＲ−Ｎａｖｉ（商標）（ＢｉｏＮａｖｉｓＯｙ社製）、Ｓｐｒｅｅｔａ（商標）（Ｔｅｘａｓ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社製）、ＳＰＲｉ−ＰｌｅｘＩＩ（商標）（ホリバ社製）、Ａｕｔｏｌａｂ ＳＰＲ（商標）（Ｍｅｔｒｏｈｍ社製）等を例示することができる。細胞表面上の発現している抗原と抗体との結合は、フローサイトメトリー法等により測定することができる。
（３−３）抗ＲＯＢＯ４抗体のイン・ビトロ血管新生抑制活性
本発明の抗体は、イン・ビトロにおいて、クロスリンク抗体非存在下で血管新生抑制活性を有する。イン・ビトロにおいて、クロスリンク抗体非存在下で薬理活性を示さず、イン・ビボにおいて、クロスリンク抗体非存在下で薬理活性を示す抗体が知られている（Ｃａｎｃｅｒ Ｃｅｌｌ（２０１１），１９，ｐ．１０１−１１３）。これは、イン・ビボにおいては、クロスリンク抗体と同様の機能を有するＦｃγ ｒｅｃｅｐｔｏｒを発現する白血球が存在するため（Ｎａｔｕｒｅ（２００８），８，ｐ．３４−４７）、クロスリンク抗体がなくても、白血球存在下でクロスリンクが架かり、薬理活性を示すと考えられる。しかし、実際の生体においては、病変部における白血球数は個体により異なるため（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ（２０１１），７１，５６７０−５６７７）、白血球によるクロスリンクに依存し、薬理活性を示す抗体は、個体によって抗体の効果に違いがでてくることが予想される。本発明の抗体は、イン・ビトロにおいてクロスリンク抗体非存在下でも優れた血管新生抑制活性を示すことから、イン・ビボにおいても白血球数に依存しない血管新生抑制作用を有すると考えられ、医薬として好適である。
血管新生抑制活性とは、血管内皮細胞の増殖、遊走、管腔形成等を抑制する活性を意味する。血管新生抑制活性は、イン・ビトロにおいては、血管透過性試験、血管内皮細胞遊走試験、又は管腔形成試験によって評価できる。
たとえば、血管透過性試験は、１μｍのポアサイズのＢｏｙｄｅｎ Ｃｈａｍｂｅｒ上層に正常ヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）を播種して単層を形成させた後、ＦＩＴＣ標識デキストラン等の細胞層透過量を測定することで評価できる。ＦＩＴＣ標識デキストランの細胞層透過量は、例えば、Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ Ａｓｓａｙ（Ｃａｔ． ＥＣＭ６４０、ミリポア社製）等を用いて測定され得る。抗体が、５μｇ／ｍＬ以下の添加でＦＩＴＣ標識デキストランの細胞層透過量を抑制する作用を示す場合は、この抗体は、血管透過性抑制作用を有し、血管新生抑制活性を有すると評価できる。本発明の抗体は、上記の測定条件において、好ましくは５μｇ／ｍＬ以下、さらに好ましくは１μｇ／ｍＬ以下、特に好ましくは０．５μｇ／ｍＬ以下の濃度で、血管透過性抑制活性を示す。
細胞遊走試験は、３〜８μｍのポアサイズのＢｏｙｄｅｎ Ｃｈａｍｂｅｒ上層にＨＵＶＥＣを播種し、下層にＶＥＧＦなどの内皮細胞遊走促進因子を含む培地を添加し、下層に遊走する細胞数を測定することで評価できる。抗体がＨＵＶＥＣの遊走細胞数を減少させる作用を示す場合は、この抗体は血管内皮細胞遊走抑制作用を有し、血管新生抑制活性を有すると評価できる。遊走細胞数は、例えば、血管内皮細胞遊走アッセイシステム（Ｃａｔ．３５４１４３、 ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）等を用いて測定され得る。本発明の抗体は、上記の測定条件において、好ましくは５μｇ／ｍＬ以下、さらに好ましくは１μｇ／ｍＬ以下、特に好ましくは０．５μｇ／ｍＬ以下の濃度で、細胞遊走抑制活性を示す。
管腔形成試験は、マトリゲルでコートした細胞培養容器にＨＵＶＥＣを播種し、ＨＵＶＥＣがマトリゲル上で形成する管腔構造の分岐点数や管腔長などを測定することで評価できる。抗体が管腔構造の分岐点数や管腔長が減少する作用を示す場合は、この抗体は管腔形成抑制作用を有し、血管新生抑制活性を有すると評価できる。管腔構造の分岐点数や管腔長は、例えば、血管内皮細胞チューブ形成アッセイシステム（Ｃａｔ．３５４１４９、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）等を用いて測定され得る。本発明の抗体は、上記の測定条件において、好ましくは５μｇ／ｍＬ以下、さらに好ましくは１μｇ／ｍＬ以下、特に好ましくは０．５μｇ／ｍＬ以下の濃度で、管腔形成抑制活性を示す。
ただし、かかる評価系は、ＲＯＢＯ４蛋白質により誘発される血管新生およびその抑制を測定できる系であれば、上述の試験に限定されるものではない。
クロスリンク抗体とは、本発明の抗体のＦｃ領域に結合し、２分子以上の本発明の抗体を架橋する作用を持つ抗体を意味する。例えば、本発明の抗体のＦｃ領域がマウス由来である場合、マウスＦｃ領域に結合する抗体であって、クロスリンク抗体の２箇所の結合部位に、本発明の２分子の抗体をそれぞれ結合することにより２分子以上の本発明の抗体を会合させる抗体をクロスリンク抗体という。
「クロスリンク抗体非存在下で血管新生抑制活性を有する」とは、血管新生抑制に関する評価系、例えば、上述の評価系においてクロスリンク抗体を共存させなくても、抗体が血管新生抑制作用を示すことを意味する。
「クロスリンク抗体存在下で血管新生抑制活性を有する」とは、抗体が、血管新生に関する評価系、例えば、上述の血管新生抑制活性に関する評価系において、クロスリンク抗体非存在下では血管新生抑制活性を示さず、本発明の抗体１分子に対し、クロスリンク抗体を１分子以上、好適には２分子以上の割合で共存させた場合において、血管新生抑制活性を示すことを意味する。
（３−４）抗ＲＯＢＯ４抗体のイン・ビボ血管新生抑制又は阻害活性
本発明の抗体はイン・ビボ（ｉｎ ｖｉｖｏ）で、血管新生を抑制又は阻害する。イン・ビボにおける血管新生抑制又は阻害活性は、定法に従って病態モデル動物により評価することができる。例えば、後述の実施例４）−６に記載のレーザー誘発脈絡膜血管新生モデルは血管新生病態モデルとして広く使用されており、新生血管量をスコアとして評価することができる。患者の場合も、例えば、本発明の抗体の投与前後で、腫瘍患者からバイオプシーで腫瘍検体を採取し、腫瘍内血管の血管密度を免疫組織化学解析（ＩＨＣ）にて測定し、新生血管量をスコア化することが可能である。
（３−５）抗ＲＯＢＯ４抗体による下流シグナル活性化
本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体は、ＲＯＢＯ４蛋白質により何らかの応答が誘発される細胞株あるいは初代培養細胞を用いた評価系に供されてもよい。そのような細胞株としてはマウス血管内皮細胞株（ＡＴＣＣ ＮＯ． ＣＲＬ−２７７９）等、初代培養細胞としてはマウス血管内皮細胞やヒト血管内皮細胞等をそれぞれ例示することができる。
本発明の抗体は、ＲＯＢＯ４に対するアゴニスト抗体である。すなわち、本発明の抗体は、ＲＯＢＯ４に結合し、ＲＯＢＯ４の下流シグナルを活性化する。したがって、本発明の抗体の血管新生抑制作用は、ＲＯＢＯ４の下流シグナルの活性化を指標としても評価することが可能である。ＲＯＢＯ４の下流シグナルとして、ＩＬ−８プロモーターの活性を例示できる。ＩＬ−８のプロモーター活性は、ヒトＲＯＢＯ４非発現細胞と比較して、全長ヒトＲＯＢＯ４発現細胞で大幅に上昇し、細胞内ドメインを欠損させたヒトＲＯＢＯ４発現細胞ではほとんど認められないことから、ＩＬ−８プロモーター活性の上昇は、ＲＯＢＯ４シグナルの活性化を検出していることが示された（実施例３）。ＩＬ−８のプロモーター活性は、例えば、ＩＬ−８プロモーター配列を挿入したレポーターベクターとヒトＲＯＢＯ４発現プラスミドを導入した細胞に抗ＲＯＢＯ４抗体を添加、あるいは抗ＲＯＢＯ４抗体とクロスリンク抗体を共添加したあと、レポーター活性を測定することで評価できる。
（３−６）抗ＲＯＢＯ４マウスモノクローナル抗体及び該キメラ抗体
ＭＡｂ１は実施例２に記載の方法により得られた抗ＲＯＢＯ４マウスモノクローナル抗体である。
ＭＡｂ１の重鎖可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列は配列表の配列番号３０（図１５）に、アミノ酸配列は配列番号３１（図１６）に記載されている。ＣＤＲＨ１のアミノ酸配列は配列番号４４（図２５）に、ＣＤＲＨ２のアミノ酸配列は配列番号４６（図２６）に、ＣＤＲＨ３のアミノ酸配列は配列番号４８（図２７）に記載されている。ＭＡｂ１の軽鎖可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列は配列表の配列番号３２（図１７）に、アミノ酸配列は配列番号３３（図１８）に記載されている。ＣＤＲＬ１のアミノ酸配列は配列番号５０（図２８）に、ＣＤＲＬ２のアミノ酸配列は配列番号５２（図２９）に、ＣＤＲＬ３のアミノ酸配列は配列番号５４（図３０）に記載されている。
本発明の抗体変異体には、好適には、蛋白質の分解もしくは酸化に対する感受性の低下、生物活性の改善、抗原結合能の改善、又は理化学的性質もしくは機能的性質の付与等がなされている。そのような抗体変異体の例として、元の抗体の有するアミノ酸配列において保存的アミノ酸置換されてなるアミノ酸配列を有する抗体をあげることができる。保存的アミノ酸置換とは、アミノ酸側鎖に関連のあるアミノ酸グループ内で生じる置換である。
好適なアミノ酸グループは、以下のとおりである：酸性グループ＝アスパラギン酸、グルタミン酸；塩基性グループ＝リジン、アルギニン、ヒスチジン；非極性グループ＝アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン；および非帯電極性ファミリー＝グリシン、アスパラギン、グルタミン、システイン、セリン、スレオニン、チロシン。他の好適なアミノ酸グループは次のとおりである：脂肪族ヒドロキシグループ＝セリン及びスレオニン；アミド含有グループ＝アスパラギン及びグルタミン；脂肪族グループ＝アラニン、バリン、ロイシン及びイソロイシン；並びに芳香族グループ＝フェニルアラニン、トリプトファン及びチロシン。かかる抗体変異体におけるアミノ酸置換は、元の抗体が有する抗原結合活性を低下させない範囲で行うのが好ましい。
本発明のＭＡｂ１が有するアミノ酸配列において保存的アミノ酸置換がなされたアミノ酸配列を有する抗体変異体、ならびに、ＭＡｂ１由来のＣＤＲＨ１〜３及びＣＤＲＬ１〜３のいずれかのアミノ酸配列において保存的アミノ酸変異がなされたＣＤＲアミノ酸配列を含むマウス抗体、ラット抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体等も本発明に包含される。
本発明の抗体の定常領域としては、とくに限定されるものではないが、ヒトの疾患を治療または予防するための本発明の抗体としては、好適にはヒト抗体のものが使用される。ヒト抗体の重鎖定常領域としては、例えば、Ｃγ１、Ｃγ２、Ｃγ３、Ｃγ４、Ｃμ、Ｃδ、Ｃα１、Ｃα２、Ｃε等をあげることができる。ヒト抗体の軽鎖定常領域としては、例えば、Ｃκ、Ｃλ等をあげることができる。
本発明のマウス−ヒトＩｇＧ１タイプキメラ抗体として例示されるｃＭＡｂ１−１の分泌シグナルを含む軽鎖をコードするヌクレオチド配列及びそのアミノ酸配列ならびに重鎖をコードするヌクレオチド配列及びそのアミノ酸配列は、配列表の配列番号３７、３８、３９及び４０（図１９、２０、２１及び２２）にそれぞれ示される。同じく、本発明のマウス−ヒトＩｇＧ２タイプキメラ抗体として例示されるｃＭＡｂ１−２の分泌シグナルを含む軽鎖をコードするヌクレオチド配列及びそのアミノ酸配列ならびに重鎖をコードするヌクレオチド配列及びそのアミノ酸配列は、配列表の配列番号３７、３８、４１及び４２（図１９、２０、２３及び２４）にそれぞれ示される。
（３−７）抗ＲＯＢＯ４抗体の機能断片
本発明は一つの態様として、本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体の機能断片を提供する。抗体の機能断片とは、該抗体の有する機能の少なくとも一部を保持する断片又は（３−１０）に後述のその修飾体を意味する。かかる抗体の機能としては、一般的には、抗原結合活性、抗原の活性を調節する活性、抗体依存性細胞障害活性及び補体依存性細胞傷害活性等を挙げることができる。本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体の機能としては、例えば、ＲＯＢＯ４蛋白質結合活性、血管新生抑制活性、ＲＯＢＯ４下流シグナル活性化作用等をあげることができる。より具体的には、本発明のＲＯＢＯ４に対する抗体が示す上記（３−３）〜（３−５）記載の活性の全部又は一部を有する限り、本発明の抗体の機能断片に含まれる。
抗体の機能断片としては、該抗体の有する活性の少なくとも一部を保持している該抗体の断片またはその修飾体であれば特に限定されないが、例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ'）２、Ｆｖ、重鎖及び軽鎖のＦｖを適当なリンカーで連結させた一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）、ｄｉａｂｏｄｙ（ｄｉａｂｏｄｉｅｓ）、線状抗体、抗体断片より形成された多特異性抗体、Ｆ（ａｂ'）２を還元条件下で処理した抗体の可変領域の一価の断片であるＦａｂ'等をあげることができるが、それらに限定されるものではない。リンカー部分を保有するｓｃＦｖのように、本発明の抗体の断片以外の部分を含む分子も、本発明の抗体の機能断片の意味に包含される。
抗体蛋白質のアミノ末端及び／又はカルボキシ末端のアミノ酸が１〜数個又はそれ以上を欠失してなり、且つ該抗体の有する機能の少なくとも一部を保持している分子も、本発明の抗体の機能断片の意味に包含される。
本発明の抗体又はその機能断片は、少なくとも２種類の異なる抗原に対して特異性を有する多特異性抗体であってもよい。多特異性抗体は、２種類の異なる抗原に結合する二重特異性抗体（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔｉｂｏｄｙ）に限定されず、３種以上の異なる抗原に対して特異性を有する抗体も本発明の「多特異性抗体」の意味に包含される。
本発明の多特異性抗体は、全長抗体又はその機能断片であってもよい（例えば、Ｆ（ａｂ'）２二重特異性抗体）。二重特異性抗体は２種類の抗体の重鎖と軽鎖（ＨＬ対）を結合させて作製することもできる。また、モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを２種類以上融合させて、二重特異性抗体産生融合細胞を作製することによっても、得ることができる（Ｍｉｌｌｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９８３）３０５，ｐ．５３７−５３９）。多特異的抗体も上記の同様の方法により調製することができる。
本発明の抗体の一つの態様は、一本鎖抗体（一本鎖Ｆｖ；以下、「ｓｃＦｖ」という）である。ｓｃＦｖは、抗体の重鎖可変領域と軽鎖可変領域とをポリペプチドのリンカーで連結することにより得られる（Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ，Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，１１３，Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ及びＭｏｏｒｅ編，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ｐ．２６９−３１５（１９９４）、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５），２３，ｐ．１１２６−１１３６）。また、ポリペプチドリンカーで結合させた２つのｓｃＦｖを含むｂｉ−ｓｃＦｖを二重特異性抗体として使用することができる。さらに３つ以上のｓｃＦｖを含むｍｕｌｔｉ−ｓｃＦｖも多特異性抗体として使用することができる。
本発明には、適切なリンカーを用いて連結した抗体の重鎖及び軽鎖の全長配列を含む一本鎖イムノグロブリン（ｓｉｎｇｌｅ ｃｈａｉｎ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ）が含まれる（Ｌｅｅ，Ｈ−Ｓ，ｅｔ．ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９９９）３６，ｐ．６１−７１；Ｓｈｉｒｒｍａｎｎ，Ｔ．ｅｔ．ａｌ．，ｍＡｂｓ（２０１０），２，（１）ｐ．１−４）。このような一本鎖イムノグロブリンは二量体化することによって、本来は四量体である抗体と類似した構造と活性を保持することが可能である。また、本発明の抗体は、単一の重鎖可変領域を有し、軽鎖配列を有さない抗体であってもよい。このような抗体は、単一ドメイン抗体（ｓｉｎｇｌｅ ｄｏｍａｉｎ ａｎｔｉｂｏｄｙ：ｓｄＡｂ）又はナノボディ（ｎａｎｏｂｏｄｙ）と呼ばれており、抗原結合能が保持されていることが報告されている（Ｍｕｙｌｄｅｍａｎｓ Ｓ．ｅｔ．ａｌ．，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ．（１９９４）７（９），１１２９−３５，Ｈａｍｅｒｓ−Ｃａｓｔｅｒｍａｎ Ｃ．ｅｔ．ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９９３）３６３（６４２８）４４６−８）。これらの抗体も、本発明における抗体の機能断片の意味に包含される。
（３−８）抗ヒトＲＯＢＯ４ヒト化抗体（以下「抗ＲＯＢＯ４ヒト化抗体」という）
本発明はその一つの態様において、ヒト化抗体又はその機能断片を提供する。本発明の抗ＲＯＢＯ４ヒト化抗体又はその機能断片は、血管新生抑制活性を有し、好適にはイン・ビボ（ｉｎ ｖｉｖｏ）で血管新生抑制活性を有する。また、かかるヒト化抗体又はその機能断片は、好適にはＲＯＢＯ４蛋白質に特異的に結合する。また、かかるヒト化抗体又はその機能断片は、ＲＯＢＯ４のアゴニスト抗体であり、下流シグナルを活性化する。さらに、イン・ビトロにおいて、クロスリンク抗体非存在下で、血管内皮細胞遊走を抑制又は阻害する。
本発明のヒト化抗体としては、非ヒト動物抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ；ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）に置き換えられたＭａｂ１のＣＤＲを有するヒト由来の抗体（Ｎａｔｕｒｅ（１９８６）３２１，ｐ．５２２−５２５参照）、ＣＤＲ移植法によって、ＣＤＲの配列に加え一部のフレームワーク領域のアミノ酸残基も移植したヒト抗体（国際公開パンフレットＷＯ９０／０７８６１）を挙げることができる。また、さらに各ＣＤＲ中の１〜３個のアミノ酸残基を他のアミノ酸残基に置換したヒト化抗体変異体も、上記（３−３）〜（３−５）記載の活性の全部又は一部を有する限り、本発明の抗体に含まれる。
好ましくは、本発明の抗ＲＯＢＯ４ヒト化抗体又はその機能断片としては、例えば、配列表の配列番号４４（図２５）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列表の配列番号４６（図２６）に示されるアミノ酸配列又は該配列表の配列番号４６のアミノ酸配列において１個のアミノ酸が置換されたアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２及び配列表の配列番号４８（図２７）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３を含む可変領域を有する重鎖、並びに、配列表の配列番号５０（図２８）に示されるアミノ酸配列又は該配列表の配列番号５０のアミノ酸配列の１〜３個のアミノ酸が置換されたアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列表の配列番号５２（図２９）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２及び配列表の配列番号５４（図３０）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３を含む可変領域を有する軽鎖からなり、本発明のＲＯＢＯ４蛋白質を認識する抗体、又は該抗体のＲＯＢＯ４蛋白質結合活性を保持している該抗体の部分等をあげることができる。
ＣＤＲＨ２におけるアミノ酸の置換例として、配列表の配列番号４６のアミノ酸番号４番のアミノ酸を置換したＣＤＲＨ２を例示できる。具体的には、配列表の配列番号４６のアミノ酸番号４番のアスパラギンをグルタミンに置換することができる。置換するアミノ酸は、本発明のＲＯＢＯ４に対する抗体が示す（３−３）〜（３−５）記載の活性の全部又は一部を有する限り、限定されない。
ＣＤＲＬ１におけるアミノ酸置換例として、配列表の配列番号５０のアミノ酸番号９番、１１番及び１３番のいずれか１〜３個のアミノ酸、好適には３個のアミノ酸を置換したＣＤＲＬ１を例示できる。具体的には、配列表の配列番号５０のセリン（アミノ酸番号９番）、グリシン（アミノ酸番号１１番）およびスレオニン（アミノ酸番号１３番）をグルタミン酸、リジン及びロイシンから選択されるアミノ酸に、好適には、それぞれグルタミン酸、リジン及びロイシンに置換することができる。置換するアミノ酸は、本発明のＲＯＢＯ４に対する抗体が示す（３−３）〜（３−５）記載の活性の全部又は一部を有する限り、限定されない。
ペプチド又は蛋白質におけるアスパラギン残基は、ある条件ではアミド分解を受け易いことが報告されており（Ｇｅｒｇｅｒ ｅｔ ａｌ： Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｖｏｌ．２６２ Ｎｏ．２， ７８５−７９４， １９８７）、したがって、上記のＣＤＲにおけるアミノ酸置換は本発明のヒト化抗体の安定性を向上させることができる。
上記ＣＤＲＨを有するより好適なヒト化抗体の重鎖可変領域として、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３が配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号５０〜５４、６９〜８５および１１８〜１２６にそれぞれ示されている配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３が配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号５０〜５４、６９〜８５および１１８〜１２６にそれぞれ示されている配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列、ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３が配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号５０〜５４、６９〜８５および１１８〜１２６にそれぞれ示されている配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列、及びＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３が配列表の配列番号６０（図３８）のアミノ酸番号５０〜５４、６９〜８５および１１８〜１２６に示されている配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列を例示でき、上記ＣＤＲＬを有するより好適なヒト化抗体の軽鎖可変領域として、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３が配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号４４〜５９、７５〜８１及び１１４〜１２２にそれぞれ示されている配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列、及びＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３が配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号４４〜５９、７５〜８１及び１１４〜１２２にそれぞれ示されている配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列を例示できる。
より好適なヒト化抗体の重鎖可変領域及び軽鎖可変領域のより好適な組合せとして、配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、および、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含むヒト化抗体、配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、および、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含むヒト化抗体、配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、および、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含むヒト化抗体、配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、および、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含むヒト化抗体、配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含むヒト化抗体、および、配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、および、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含むヒト化抗体を例示できる。
上記重鎖可変領域及び軽鎖可変領域のより好適な組合せを含む全長ヒト化抗体のより一層好適な例として、配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含むヒト化抗体（Ｈ−１１４０）、配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含むヒト化抗体（Ｈ−１１４３）、配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含むヒト化抗体（Ｈ−２１４３）、配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含むヒト化抗体（Ｈ−２１４０）、配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含むヒト化抗体（Ｈ−１０４０）、及び、配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖を含むヒト化抗体（Ｈ−２０４０）をあげることができる。
本発明の最も好適な抗体はＨ−１１４０、Ｈ−１１４３、Ｈ−２１４０及びＨ−２１４３である。
Ｈ−１１４０は、１）ヒトＲＯＢＯ４に特異的に結合し、ＲＯＢＯ１、ＲＯＢＯ２及びＲＯＢＯ３には結合しない、２）ヒトＲＯＢＯ４に対して３．９ｎＭのＫＤ値を有する、３）４０℃で４週間ヒトＲＯＢＯ４への親和性を維持する、４）ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、ＨＧＦ、ＰＤＧＦ−ＢＢ及びＳＤＦ−１から選択される１つまたは複数の血管新生因子、特にＶＥＧＦ又はｂＦＧＦにより誘導されるＨＵＶＥＣ遊走を阻害する、５）イン・ビボで血管新生を阻害する、及び６）ＩＳＰＲＩ ウェブベース免疫原性スクリーニング（ＥｐｉＶａｘ，Ｉｎｃ）において免疫原性が低いという性質を有する。
Ｈ−１１４３は、１）ヒトＲＯＢＯ４に特異的に結合し、ＲＯＢＯ１、ＲＯＢＯ２及びＲＯＢＯ３には結合しない、２）ヒトＲＯＢＯ４に対して３．５ｎＭのＫＤ値を有する、３）４０℃で４週間ヒトＲＯＢＯ４への親和性を維持する、４）ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、ＨＧＦ、ＰＤＧＦ−ＢＢ及びＳＤＦ−１から選択される１つまたは複数の血管新生因子、特にＶＥＧＦ及びｂＦＧＦにより誘導されるＨＵＶＥＣ遊走を阻害する、５）イン・ビボで血管新生を阻害する、及び６）ＥｐｉＳｃｒｅｅｎ（商標）免疫原性試験（Ａｎｔｉｔｏｐｅ Ｌｔｄ．）において免疫原性が低いという性質を有する。
Ｈ−２１４０は、１）ヒトＲＯＢＯ４に特異的に結合し、ＲＯＢＯ１、ＲＯＢＯ２及びＲＯＢＯ３には結合しない、２）ヒトＲＯＢＯ４に対して１．８ｎＭのＫＤ値を有する、３）４０℃で４週間ヒトＲＯＢＯ４への親和性を維持する、４）ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、ＨＧＦ、ＰＤＧＦ−ＢＢ及びＳＤＦ−１等の種々の血管新生因子、特にＶＥＧＦ及びｂＦＧＦにより誘導されるＨＵＶＥＣ遊走を阻害する、５）イン・ビボで血管新生を阻害する、６）ＥｐｉＳｃｒｅｅｎ（商標）免疫原性試験（Ａｎｔｉｔｏｐｅ Ｌｔｄ．）において免疫原性が低いという性質を有する。
Ｈ−２１４３は、１）ヒトＲＯＢＯ４に特異的に結合し、ＲＯＢＯ１、ＲＯＢＯ２及びＲＯＢＯ３には結合しない、２）ヒトＲＯＢＯ４に対して１．７ｎＭのＫＤ値を有する、３）４０℃で４週間ヒトＲＯＢＯ４への親和性を維持する、４）ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、ＨＧＦ、ＰＤＧＦ−ＢＢ及びＳＤＦ−１等の種々の血管新生因子、特にＶＥＧＦ及びｂＦＧＦにより誘導されるＨＵＶＥＣ遊走を阻害する、５）イン・ビボで血管新生を阻害する、６）ＥｐｉＳｃｒｅｅｎ（商標）免疫原性試験（Ａｎｔｉｔｏｐｅ Ｌｔｄ．）において免疫原性が低い、及び７）カニクイザルへの単回硝子体内注入（２．７５ｍｇ／眼）後に臨床兆候、体重、飼料摂取量、血液学的検査、血液化学検査、病理検査、網膜電図検査において重篤な変化を示さないという性質を有する。
Ｈ−１１４０、Ｈ−１１４３、Ｈ−２１４３、Ｈ−２１４０、Ｈ−１０４０及びＨ−２０４０等の抗体のアミノ酸配列との同一性が９５％以上、好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９９％以上であるアミノ酸配列を含む抗体も上記（３−３）〜（３−５）記載の活性の全部又は一部を有する限り、本発明の抗体に含まれる。また、上記重鎖可変領域及び軽鎖可変領域の組合せを含む抗体、又は、上記重鎖及び軽鎖の組合せを含む抗体のＣＤＲと同一のアミノ酸配列からなるＣＤＲを有し、かつ該ＣＤＲのアミノ酸配列をのぞいたアミノ酸配列の同一性が９５％以上、好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９９％以上である抗体も、上記（３−３）〜（３−５）記載の活性の全部又は一部を有する限り、本発明の抗体に含まれる。
（３−９）同一の部位に結合する抗体
本発明の提供する抗体と「同一の部位に結合する抗体」も本発明の抗体に含まれる。ある抗体と「同一の部位に結合する抗体」とは、該抗体が認識する抗原分子上の部位に結合する他の抗体を意味する。第一抗体が結合する抗原分子上の部分ペプチド又は部分立体構造に第二抗体が結合すれば、第一抗体と第二抗体は同一の部位に結合すると判定することができる。また、第一抗体の抗原に対する結合に対して第二抗体が競合する、すなわち、第二抗体が第一抗体と抗原の結合を妨げることを確認することによって、具体的な結合部位のペプチド配列又は立体構造が決定されていなくても、第一抗体と第二抗体が同一の部位に結合すると判定することができる。さらに、第一抗体と第二抗体が同一の部位に結合し、且つ第一抗体が血管新生抑制活性など本発明の抗体の一つの態様に特徴的な効果を有する場合、第二抗体も同様の活性を有する蓋然性は極めて高い。従って、第一の抗ＲＯＢＯ４抗体の結合する部位に第二の抗ＲＯＢＯ４抗体が結合すれば、第一抗体と第二抗体がＲＯＢＯ４蛋白質上の同一の部位に結合すると判定することができる。また、第一の抗ＲＯＢＯ４抗体のＲＯＢＯ４蛋白質への結合に対して第二の抗ＲＯＢＯ４抗体が競合することを確認できれば、第一抗体と第二抗体がＲＯＢＯ４蛋白質上の同一の部位に結合する抗体と判定することができる。
本発明のＭＡｂ１が認識するＲＯＢＯ４蛋白質上の部位に結合する抗体も本発明に含まれる。
抗体の結合部位は、免疫アッセイ法など当業者に周知の方法により決定することができる。例えば、抗原のアミノ酸配列をＣ末またはＮ末から適宜削ってなる一連のペプチドを作製し、それらに対する抗体の反応性を検討し、大まかな認識部位を決定した後に、さらに短いペプチドを合成してそれらのペプチドへの抗体の反応性を検討することにより、結合部位を決定することができる。抗原断片ペプチドは、遺伝子組換、ペプチド合成等の技術を用いて調製することができる。
抗体が抗原の部分高次構造に結合又は認識している場合、かかる抗体の結合部位は、Ｘ線構造解析を用いて、当該抗体に隣接する抗原上のアミノ酸残基を特定することにより決定することができる。
（３−１０）抗ＲＯＢＯ４抗体又はその機能断片の修飾体
本発明は、抗体又はその機能断片の修飾体を提供する。本発明の抗体又はその機能断片の修飾体とは、本発明の抗体又はその機能断片に化学的又は生物学的な修飾が施されてなるものを意味する。化学的な修飾体には、アミノ酸骨格への化学部分の結合を有する修飾体、Ｎ−結合またはＯ−結合炭水化物鎖の化学修飾体等が含まれる。かかる化学部分又は修飾体は毒性又は細胞毒性を有し得る。生物学的な修飾体には、翻訳後修飾（例えば、Ｎ−結合またはＯ−結合への糖鎖付加、Ｎ末またはＣ末のプロセッシング、脱アミド化、アスパラギン酸の異性化、メチオニンの酸化）されたもの、原核生物宿主細胞を用いて発現させることによりＮ末にメチオニン残基が付加したもの等が含まれる。また、本発明の抗体または抗原の検出または単離を可能にするために標識されたもの、例えば、酵素標識体、蛍光標識体、アフィニティー標識体もかかる修飾体の意味に含まれる。このような本発明の抗体又はその機能断片の修飾体は、元の本発明の抗体又はその機能断片の安定性又は血中滞留性の改善、抗原性の低減、かかる抗体又は抗原の検出又は単離等に有用である。
化学的修飾体に含まれる化学部分としては、ポリエチレングリコール、エチレングリコール／プロピレングリコールコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール等の水溶性ポリマーを例示することができる。
生物学的な修飾体としては、酵素処理や細胞処理等により修飾が施されたもの、遺伝子組換えにより付加されたタグ等他のペプチドとの融合体、ならびに内因性又は外来性の糖鎖修飾酵素を発現する細胞を宿主として調製されたもの等をあげることができる。
かかる修飾は、抗体またはその機能断片における任意の位置に、または所望の位置において施されてもよく、１つ又は２つ以上の位置に同一又は２種以上の異なる修飾がなされてもよい。
本発明において「抗体断片の修飾体」は「抗体の修飾体の断片」をもその意味に含むものである。
たとえば、哺乳類培養細胞で生産される抗体は、重鎖のカルボキシル末端のリジン残基が欠失する場合があることが知られており（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ Ａ，７０５：１２９−１３４（１９９５））、また、同じく重鎖カルボキシル末端の２アミノ酸残基（すなわち、グリシンおよびリジン）が欠失し、新たにカルボキシル末端に位置するプロリン残基がアミド化される場合があることが知られている（Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３６０：７５−８３（２００７））。しかし、これらの重鎖配列の欠失又は修飾は、抗体の抗原結合能及びエフェクター機能（補体の活性化や抗体依存性細胞障害作用など）には影響を及ぼさない。従って、本発明の抗体には当該修飾を受けた抗体及び当該抗体の機能断片も含まれ、重鎖カルボキシル末端において１又は２つのアミノ酸が欠損又は欠失した本発明の抗体の欠失体、及びアミド化残基（例えば、重鎖のカルボキシル末端のアミド化されたプロリン残基）を有する欠失体等を挙げることができる。但し、抗原結合能及び（３−３）〜（３−５）記載の活性の全部又は一部が保たれている限り、本発明に係る抗体の欠失体は上記の種類に限定されない。本発明に係る抗体を構成する２本の重鎖は、完全長の重鎖及び上記の欠失体の重鎖からなる群から選択される重鎖のいずれか一種であっても良いし、いずれか二種を組み合わせたものであっても良い。欠失体重鎖の量比は、例えば、本発明に係る抗体を産生する哺乳類培養細胞の種類及び培養条件等の影響を受け得る。本発明に係る抗体の主成分としての欠失体重鎖は、例えば、２本の重鎖の双方でカルボキシル末端の１つのアミノ酸残基が欠失している場合を挙げることができる。それらも全て本発明の抗体変異体、抗体の機能断片またはそれらの修飾体の意味に包含される。
４．抗体の製造方法
（４−１）ハイブリドーマを用いる方法
本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体は、コーラーとミルスタインの方法（Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ （１９７５）２５６，ｐ．４９５−４９７、Ｋｅｎｎｅｔ，Ｒ．ｅｄ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ，ｐ．３６５−３６７，Ｐｒｅｎｕｍ Ｐｒｅｓｓ，Ｎ．Ｙ．（１９８０））に従って、ＲＯＢＯ４蛋白質で免疫した動物の脾臓より抗ＲＯＢＯ４抗体の産生細胞を単離し、該細胞とミエローマ細胞とを融合させることによりハイブリドーマを樹立し、かかるハイブリドーマの培養物からモノクローナル抗体を取得することにより作製することができる。
（４−１−１）抗原の調製
抗ＲＯＢＯ４抗体を作製するための抗原は、本明細書の他の段落に記載された天然型または組換え型のＲＯＢＯ４蛋白質の調製法等に従って、取得することができる。そのようにして調製し得る抗原としては、ＲＯＢＯ４蛋白質若しくはその少なくとも６個の連続した部分アミノ酸配列を含むＲＯＢＯ４蛋白質断片、それらに任意のアミノ酸配列や担体がさらに付加された誘導体等（以下、まとめて「ＲＯＢＯ４抗原」とよぶ）を挙げることができる。
組換え型ＲＯＢＯ４抗原は、ＲＯＢＯ４抗原の有するアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列が含まれる遺伝子を宿主細胞に導入し、該細胞の培養物から該抗原を回収することにより、調製することができる。天然型ＲＯＢＯ４抗原は、例えば、ヒト若しくはげっ歯類の血管新生組織もしくは該組織由来の細胞、または該細胞の培養物から精製又は単離することができる。また、ＲＯＢＯ４抗原のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列が含まれる遺伝子からイン・ビトロ（ｉｎ ｖｉｒｔｏ）無細胞翻訳系において得られるＲＯＢＯ４抗原も本発明の「ＲＯＢＯ４抗原」に含まれる。
（４−１−２）抗ＲＯＢＯ４モノクローナル抗体の製造
モノクローナル抗体の製造は、通常、下記のような工程を経る：
（ａ）抗原を調製する工程、
（ｂ）抗体産生細胞を調製する工程、
（ｃ）骨髄腫細胞（以下、「ミエローマ」という）を調製する工程、
（ｄ）抗体産生細胞とミエローマとを融合させる工程、
（ｅ）目的とする抗体を産生するハイブリドーマ群を選別する工程、及び
（ｆ）単一細胞クローンを得る工程（クローニング）。
この製造方法には、必要に応じてさらに、（ｇ）ハイブリドーマの培養工程、ハイブリドーマを移植した動物の飼育工程等、（ｈ）モノクローナル抗体の生物活性の測定工程又は判定工程等が加わる。
以下、モノクローナル抗体の作製法を上記工程に沿って詳述するが、該抗体の作製法はこれに制限されず、例えば脾臓細胞以外の抗体産生細胞及びミエローマを使用することもできる。
（ａ）抗原を調製する工程
抗原は、前記（２−３）記載のＲＯＢＯ４蛋白質の調製法に準じて調製することができる。
（ｂ）抗体産生細胞を調製する工程
工程（ａ）で得られた抗原と、フロインドの完全又は不完全アジュバント、又はカリミョウバンのような助剤とを混合し、免疫原として実験動物に免疫する。実験動物は当技術分野において公知のハイブリドーマ作製法に用いられる動物を、これらに限定されることはないが、使用することができる。具体的には、たとえばマウス、ラット、ヤギ、ヒツジ、ウシ、ウマ等を使用することができる。ただし、摘出した抗体産生細胞と融合させるミエローマ細胞の入手容易性等の観点から、マウス又はラットを被免疫動物とするのが好ましい。
また、実際に使用するマウス及びラットの系統は特に制限はなく、マウスの場合には、例えば、Ａ、ＡＫＲ、ＢＡＬＢ／ｃ、ＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊ、ＢＤＰ、ＢＡ、ＣＥ、Ｃ３Ｈ、５７ＢＬ、Ｃ５７ＢＬ、Ｃ５７Ｌ、ＤＢＡ、ＦＬ、ＨＴＨ、ＨＴ１、ＬＰ、ＮＺＢ、ＮＺＷ、ＲＦ、Ｒ ＩＩＩ、ＳＪＬ、ＳＷＲ、ＷＢ、１２９等が、ラットの場合には、例えば、Ｗｉｓｔａｒ、Ｌｏｗ、Ｌｅｗｉｓ、Ｓｐｒａｇｕｅ‐Ｄａｗｌｅｙ、ＡＣＩ、ＢＮ、Ｆｉｓｃｈｅｒ等を用いることができる。
これらのマウス及びラットは例えば日本クレア、日本チャ−ルスリバー等実験動物飼育販売業者より入手することができる。
このうち、後述のミエローマ細胞との融合適合性を勘案すれば、マウスではＢＡＬＢ／ｃ系統が、ラットではＷｉｓｔａｒ及びＬｏｗ系統が被免疫動物として特に好ましい。
また、抗原のヒトとマウスでの相同性を考慮し、自己抗体を除去する生体機構を低下させたマウス、すなわち自己免疫疾患マウスを用いることも好ましい。
なお、これらマウス又はラットの免疫時の週齢は、好ましくは５〜１２週齢、さらに好ましくは６〜８週齢である。
ＲＯＢＯ４蛋白質で動物を免疫するには、例えば、Ｗｅｉｒ， Ｄ．Ｍ．，Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｖｏｌ．Ｉ．ＩＩ．ＩＩＩ．，Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｏｘｆｏｒｄ（１９８７）、Ｋａｂａｔ，Ｅ．Ａ．ａｎｄ Ｍａｙｅｒ，Ｍ．Ｍ．，Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｃｈａｒｌｅｓ Ｃ Ｔｈｏｍａｓ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒ Ｓｐｉｇｆｉｅｌｄ，Ｉｌｌｉｎｏｉｓ（１９６４） 等の法を用いることができる。
抗体価の測定法としては、例えば、ＲＩＡ法、ＥＬＩＳＡ法等の免疫アッセイを挙げることができるが、それらの方法に限定されるものではない。
免疫された動物から分離された脾臓細胞又はリンパ球に由来する抗体産生細胞は、例えば、Ｋｏｈｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６，ｐ．４９５，；Ｋｏｈｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｎｏｌ．（１９７７）６，ｐ．５１１，；Ｍｉｌｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７７），２６６，ｐ．５５０，；Ｗａｌｓｈ，Ｎａｔｕｒｅ，（１９７７）２６６，ｐ．４９５，）等の当技術分野において公知の方法に従って調製することができる。
脾臓細胞の場合には、脾臓を細切して細胞をステンレスメッシュで濾過した後、イーグル最小必須培地（ＭＥＭ）等に浮遊させて抗体産生細胞を分離する一般的方法を採用することができる。
（ｃ）ミエローマを調製する工程
細胞融合に用いるミエローマ細胞には特段の限定はなく、当技術分野において公知の細胞株から適宜選択して用いることができるが、融合細胞からハイブリドーマを選択する際の利便性を考慮して、その選択手続が確立しているＨＧＰＲＴ（ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ−ｇｕａｎｉｎｅ ｐｈｏｓｐｈｏｒｉｂｏｓｙｌ ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ）欠損株、すなわちマウス由来のＸ６３−Ａｇ８（Ｘ６３）、ＮＳ１−ＡＮＳ／１（ＮＳ１）、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８．Ｕｌ（Ｐ３Ｕｌ）、Ｘ６３−Ａｇ８．６５３（Ｘ６３．６５３）、ＳＰ２／０−Ａｇ１４（ＳＰ２／０）、ＭＰＣ１１−４５．６ＴＧ１．７（４５．６ＴＧ）、ＦＯ、Ｓ１４９／５ＸＸＯ、ＢＵ．１等、ラット由来の２１０．ＲＳＹ３．Ａｇ．１．２．３（Ｙ３）等、又はヒト由来のＵ２６６ＡＲ（ＳＫＯ−００７）、ＧＭ１５００・ＧＴＧ−Ａ１２（ＧＭ１５００）、ＵＣ７２９−６、ＬＩＣＲ−ＬＯＷ−ＨＭｙ２（ＨＭｙ２）、８２２６ＡＲ／ＮＩＰ４−１（ＮＰ４１）等を用いるのが好ましい。これらのＨＧＰＲＴ欠損株は例えば、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ （ＡＴＣＣ）等から入手することができる。
これらの細胞株は、適当な培地、例えば８−アザグアニン培地［ＲＰＭＩ−１６４０培地にグルタミン、２−メルカプトエタノール、ゲンタマイシン、及びウシ胎児血清（以下「ＦＣＳ」という）を加えた培地に８−アザグアニンを加えた培地］、イスコフ改変ダルベッコ培地（Ｉｓｃｏｖｅ'ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ'ｓ Ｍｅｄｉｕｍ；以下「ＩＭＤＭ」という）、又はダルベッコ改変イーグル培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ'ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ Ｍｅｄｉｕｍ；以下「ＤＭＥＭ」という）で継代培養するが、細胞融合の３〜４日前に正常培地［例えば、１０％ ＦＣＳを含むＡＳＦ１０４培地（味の素（株）社製）］で継代培養し、融合当日に２×１０７以上の細胞数を確保しておく。
（ｄ）抗体産生細胞とミエローマ細胞を融合させる工程
抗体産生細胞とミエローマ細胞との融合は、当技術分野において公知の方法（Ｗｅｉｒ，Ｄ．Ｍ．，Ｈａｎｄｂｏｏｋｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｖｏｌ．Ｉ．ＩＩ．ＩＩＩ．，Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｏｘｆｏｒｄ（１９８７）、Ｋａｂａｔ，Ｅ．Ａ．ａｎｄ Ｍａｙｅｒ，Ｍ．Ｍ．，Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｃｈａｒｌｅｓ Ｃ Ｔｈｏｍａｓ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒ Ｓｐｉｇｆｉｅｌｄ，Ｉｌｌｉｎｏｉｓ（１９６４）等）に従い、細胞の生存率を極度に低下させない程度の条件下で実施することができる。例えば、ポリエチレングリコール等の高濃度ポリマー溶液中で抗体産生細胞とミエローマ細胞とを混合する化学的方法、電気的刺激を利用する物理的方法等を用いることができる。
（ｅ）目的とする抗体を産生するハイブロドーマ群を選別する工程
細胞融合により得られるハイブリドーマの選択方法は特に制限はないが、通常ＨＡＴ（ヒポキサンチン・アミノプテリン・チミジン）選択法（Ｋｏｈｌｅｒ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６，ｐ．４９５；Ｍｉｌｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７７）２６６，ｐ．５５０）が用いられる。この方法は、アミノプテリンの存在下で生存し得ないＨＧＰＲＴ欠損株のミエローマ細胞を用いてハイブリドーマを得る場合に有効である。すなわち、未融合細胞及びハイブリドーマをＨＡＴ培地で培養することにより、アミノプテリンに対する耐性を持ち合わせたハイブリドーマのみを選択的に残存させ、かつ増殖させることができる。
（ｆ）単一細胞クローンを得る工程（クローニング）
ハイブリドーマのクローニング法としては、例えば、メチルセルロース法、軟アガロース法、限界希釈法等の当技術分野において公知の方法を用いることができるが（例えば、Ｂａｒｂａｒａ， Ｂ．Ｍ． ａｎｄ Ｓｔａｎｌｅｙ， Ｍ．Ｓ．：Ｓｅｌｅｃｔｅｄ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，Ｗ．Ｈ． Ｆｒｅｅｍａｎ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｎｙ，Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ（１９８０）参照）、好適には限界希釈法である。
（ｇ）ハイブリドーマの培養工程、ハイブリドーマを移植した動物の飼育工程
選択されたハイブリドーマを培養することにより、モノクローナル抗体を産生することができるが、好適には所望のハイブリドーマをクローニングしてから抗体の産生に供する。
かかるハイブリドーマが産生するモノクローナル抗体は、該ハイブリドーマの培養物から回収することができる。また、該モノクローナル抗体遺伝子が導入された細胞の培養物から組換え抗体として回収することもできる。さらに、該モノクローナル抗体は、同系統のマウス（例えば、上記のＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｊ）、あるいはＮｕ／Ｎｕマウスの腹腔内にハイブリドーマを注射し、該ハイブリド−マを増殖させることにより、その腹水から回収することもできる。
（ｈ）モノクローナル抗体の生物活性の測定工程又は判定工程
各種生物試験を目的に応じて選択し、適用することができる。
（４−２）細胞免疫法
天然型のＲＯＢＯ４蛋白質を発現する細胞、組換え型ＲＯＢＯ４蛋白質またはその断片を発現する細胞等を免疫原として使用することにより、前記のハイブリドーマ法により抗ＲＯＢＯ４抗体を調製することができる。
天然型のＲＯＢＯ４蛋白質を発現する細胞としては、増殖性糖尿病網膜症や腫瘍等の血管新生性疾患に罹患した患者由来の細胞及び該患者の組織由来の細胞等をあげることができる。かかる細胞は、好適には血管内皮細胞であるが、それに限定されるものではない。それらのＲＯＢＯ４蛋白質発現細胞は、１×１０５〜１×１０９個、好適には１×１０６〜１×１０８個、より好適には０．５〜２×１０７個、より一層好適には１×１０７個を１回の免疫に用いるが、ＲＯＢＯ４蛋白質の発現量に応じて免疫に供する細胞数を変えることができる。かかる免疫源は、一般的には腹腔内に投与するが、皮内等に投与することもできる。ハイブリドーマの作製手法としては（４−１−２）記載の方法を適用することができる。
（４−３）遺伝子組換え及び宿主細胞
本発明の抗体は、その重鎖アミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列が含まれるヌクレオチド（重鎖ヌクレオチド）及びその軽鎖アミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列が含まれるヌクレオチド（軽鎖ヌクレオチド）、又は、かかる重鎖ヌクレオチドが挿入されたベクター及び軽鎖ヌクレオチドが挿入されたベクターを宿主細胞に導入し、該細胞を培養した後その培養物からかかる抗体を回収することにより調製することができる。一つのベクターに重鎖ヌクレオチド及び軽鎖ヌクレオチドが挿入されていてもよい。
宿主細胞としては、原核細胞又は真核細胞を用いることができる。真核細胞を宿主として使用する場合、動物細胞、植物細胞、又は真核微生物を用いることができる。
動物細胞としては、例えば、哺乳類由来の細胞、すなわち、サル由来のＣＯＳ細胞（Ｇｌｕｚｍａｎ， Ｙ． Ｃｅｌｌ（１９８１）２３，ｐ．１７５−１８２、ＡＴＣＣ ＣＲＬ−１６５０）、マウス繊維芽細胞ＮＩＨ３Ｔ３（ＡＴＣＣ Ｎｏ．ＣＲＬ−１６５８）、マウスＮＳ０細胞株（ＥＣＡＣＣ）、チャイニーズ・ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ細胞、ＡＴＣＣ ＣＣＬ−６１）、そのジヒドロ葉酸還元酵素欠損株（ＣＨＯｄｈｆｒ−：Ｕｒｌａｕｂ，Ｇ．ａｎｄ Ｃｈａｓｉｎ，Ｌ．Ａ． Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８０）７７，ｐ．４１２６−４２２０）、Ｌｏｎｚａ Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓが開発したＣＨＯＫ１ＳＶ、ニワトリ等鳥類由来の細胞、昆虫由来の細胞等を挙げることができる。
また、本発明の宿主細胞には、抗体蛋白質に付着している糖鎖構造の改変により、修飾を施さない抗体と比較して抗体の生物活性を好適に高められるよう改変された抗体蛋白質を産生し得る細胞も含まれる。例えば、かかる本発明の宿主細胞には、抗体のＦｃ領域に結合する全Ｎ−グリコシド結合複合型糖鎖のうち、糖鎖還元末端のＮ−アセチルグルコサミンにフコースが結合していない糖鎖の割合が２０％以上になる、抗体のＦｃ領域に結合するＮ−グリコシド結合複合型糖鎖を有する抗体蛋白質を産生し得るＣＨＯ細胞が含まれる（ＷＯ２０００／６１７３９号、ＷＯ２００２／３１１４０号）。
真核微生物としては、例えば、酵母等をあげることができる。原核細胞としては、例えば、大腸菌（Ｅ． ｃｏｌｉ）、枯草菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）等をあげることができる。
本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体を産生するための宿主細胞として、好適には哺乳動物由来の細胞、より好適にはＣＨＯ細胞、より一層好適にはＣＨＯＫ１ＳＶが用いられる。
本発明の抗体（各種動物種由来のモノクローナル抗体、ラット抗体、マウス抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体等）を分泌させるためのシグナルペプチドとしては、当該抗体と同種、同タイプ及び同サブタイプの抗体の分泌シグナル、又は、当該抗体自体の分泌シグナルに限定されるものではなく、他のタイプもしくはサブタイプの抗体の分泌シグナル、または、他の真核生物種もしくは原核生物種由来の蛋白質の分泌シグナルであれば、任意のものを選択して利用することができる。
（４−４）ヒト化抗体のデザイン法および調製法
ヒト化抗体としては、ＣＤＲが非ヒト動物抗体のＣＤＲに置き換えられているヒト由来の抗体（Ｎａｔｕｒｅ（１９８６）３２１，ｐ．５２２−５２５参照）、ＣＤＲ移植法によりＣＤＲの配列に加え一部のフレームワーク領域のアミノ酸残基も移植したヒト抗体（ＷＯ９０／０７８６１号、ＵＳ６９７２３２３号公報参照）、それらのヒト化抗体のいずれかにおける非ヒト動物抗体由来の１つまたは２つ以上のアミノ酸がヒト抗体アミノ酸で置換されてなる抗体等を挙げることができるが、それらに限定されるものではない。
（４−５）ヒト抗体の調製法
本発明の抗体としては、さらに、ヒト抗体を挙げることができる。抗ＲＯＢＯ４ヒト抗体とは、ヒト由来の抗体のアミノ酸配列からなる抗ＲＯＢＯ４抗体を意味する。抗ＲＯＢＯ４ヒト抗体は、ヒト抗体の重鎖と軽鎖をコードする遺伝子を含むヒトゲノムＤＮＡ断片を有するヒト抗体産生マウスを用いた方法（Ｔｏｍｉｚｕｋａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ（１９９７）１６，ｐ．１３３−１４３，； Ｋｕｒｏｉｗａ，Ｙ．ｅｔ．ａｌ．，Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９８）２６，ｐ．３４４７−３４４８；Ｙｏｓｈｉｄａ， Ｈ．ｅｔ．ａｌ．，Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：Ｂａｓｉｃ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｅｄ Ａｓｐｅｃｔｓ ｖｏｌ．１０，ｐ．６９−７３（Ｋｉｔａｇａｗａ， Ｙ．，Ｍａｔｕｄａ，Ｔ．ａｎｄ Ｉｉｊｉｍａ，Ｓ．ｅｄｓ．），Ｋｌｕｗｅｒ Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，１９９９．；Ｔｏｍｉｚｕｋａ，Ｋ．ｅｔ．ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（２０００）９７，ｐ．７２２−７２７等を参照。）によって取得することができる。
このようなヒト抗体産生動物は、具体的には、非ヒト哺乳動物の内在性免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の遺伝子座を破壊し、代わりに酵母人工染色体（ｙｅａｓｔ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ，ＹＡＣ）ベクターなどを介してヒト免疫グロブリン重鎖及び軽鎖の遺伝子座を導入することによって作製することができる。また、遺伝子組換え技術により、そのようなヒト抗体の重鎖及び軽鎖をコードするｃＤＮＡにより、好ましくは該ｃＤＮＡの各々を含むベクターにより真核細胞を形質転換し、遺伝子組換えヒトモノクローナル抗体を産生する形質転換細胞を培養することにより、この抗体を培養上清中から得ることもできる。
ここで、宿主としては例えば真核細胞、好ましくはＣＨＯ細胞、リンパ球やミエローマ等の哺乳動物細胞を用いることができる。
また、ヒト抗体ライブラリーより選別したファージディスプレイ由来のヒト抗体を取得する方法（Ｗｏｒｍｓｔｏｎｅ，Ｉ．Ｍ．ｅｔ．ａｌ，Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｖｅ Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ ＆ Ｖｉｓｕａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ．（２００２）４３（７），ｐ．２３０１−２３０８；Ｃａｒｍｅｎ，Ｓ．ｅｔ．ａｌ．，Ｂｒｉｅｆｉｎｇｓ ｉｎ Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ Ｇｅｎｏｍｉｃｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ（２００２），１（２），ｐ．１８９−２０３；Ｓｉｒｉｗａｒｄｅｎａ，Ｄ．ｅｔ．ａｌ．，Ｏｐｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ（２００２）１０９（３），ｐ．４２７−４３１等参照。）も知られている。
例えば、ヒト抗体の可変領域を一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）としてファージ表面に発現させて、抗原に結合するファージを選択するファージディスプレイ法（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５），２３，（９），ｐ．１１０５−１１１６）を用いることができる。
抗原に結合することで選択されたファージの遺伝子を解析することによって、抗原に結合するヒト抗体の可変領域をコードするＤＮＡ配列を決定することができる。
抗原に結合するｓｃＦｖのＤＮＡ配列が明らかになれば、当該配列を有する発現ベクターを作製し、適当な宿主に導入して、ヒト抗体を発現させることができる（ＷＯ９２／０１０４７，ＷＯ９２／２０７９１，ＷＯ９３／０６２１３，ＷＯ９３／１１２３６，ＷＯ９３／１９１７２，ＷＯ９５／０１４３８，ＷＯ９５／１５３８８、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ（１９９４）１２，ｐ．４３３−４５５、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５）２３（９），ｐ．１１０５−１１１６）。
（４−６）抗体の機能断片の調製法
一本鎖抗体を作製する方法は当技術分野において周知である（例えば、米国特許第４，９４６，７７８号、米国特許第５，２６０，２０３号、米国特許第５，０９１，５１３号、米国特許第５，４５５，０３０号等を参照）。このｓｃＦｖにおいて、重鎖可変領域と軽鎖可変領域は、コンジュゲートを作らないようなリンカー、好ましくはポリペプチドリンカーを介して連結される（Ｈｕｓｔｏｎ，Ｊ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８８），８５，ｐ．５８７９−５８８３）。ｓｃＦｖにおける重鎖可変領域及び軽鎖可変領域は、同一の抗体に由来してもよく、別々の抗体に由来してもよい。
可変領域を連結するポリペプチドリンカーとしては、例えば１２〜１９残基からなる任意の一本鎖ペプチドが用いられる。
ｓｃＦｖをコードするＤＮＡは、前記抗体の重鎖又は重鎖可変領域をコードするＤＮＡ、及び軽鎖又は軽鎖可変領域をコードするＤＮＡの配列のうち全部又は所望のアミノ酸配列をコードする各ＤＮＡ部分を鋳型とし用いて、その両端に隣接するプライマー対を用いてＰＣＲ法により増幅し、次いで、さらにポリペプチドリンカー部分をコードするＤＮＡをその両端に隣接するプライマー対と組み合わせて増幅し、重鎖および軽鎖とそれぞれ連結することにより得られる。
ｓｃＦｖをコードするＤＮＡを用いて、該ＤＮＡを含有する発現ベクター、及び該発現ベクターにより形質転換された宿主細胞を常法に従って調製することができ、また、その宿主細胞を培養することにより、常法に従ってかかる培養物から該ｓｃＦｖを回収することができる。
その他の抗体の機能断片も、前記の方法に準じて各機能断片をコードする遺伝子を取得して細胞に導入し、該細胞の培養物から対象となる該機能断片を回収することにより、得ることができる。
本発明の抗体は、多量化して抗原に対する親和性を高めたものであってもよい。多量化する抗体としては、１種類の抗体であっても、それぞれ複数のエピトープを認識するあるいは同一の抗原を認識する複数の抗体であってもよい。抗体を多量化する方法としては、ＩｇＧ ＣＨ３ドメインと２つのｓｃＦｖとの結合、ストレプトアビジンとの結合、へリックス−ターン−へリックスモチーフの導入等を挙げることができる。
本発明の抗体は、アミノ酸配列が異なる複数種類の抗ＲＯＢＯ４抗体の混合物、すなわちポリクローナル抗体であってもよい。ポリクローナル抗体としては、例えば、ＣＤＲセットの一部又は全部が異なる複数種類の抗体の混合物を挙げることができる。そのようなポリクローナル抗体は、異なる抗体の産生細胞を混合培養した、該培養物から回収することができる（ＷＯ２００４／０６１１０４号）。また、別個に調製した抗体を混合することも可能である。さらに、ポリクローナル抗体の一つの態様である抗血清は、動物を所望の抗原で免疫し、定法に従って、該動物から血清を回収することにより調製することができる。
抗体の修飾体として、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の各種分子と結合した抗体を使用することもできる。
本発明の抗体は、更にこれらの抗体と他の薬剤がコンジュゲートを形成しているもの（Ｉｍｍｕｎｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ）でもよい。このような抗体の例としては、該抗体が放射性物質や薬理作用を有する化合物と結合している物を挙げることができる（Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（２００５）２３，ｐ．１１３７−１１４６）。
（４−７）抗体の精製
得られた抗体は、均一レベルにまで精製することができる。抗体の分離及び精製は通常の蛋白質で使用されている分離及び精製方法を使用すればよい。
例えばクロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾過、塩析、透析、調製用ポリアクリルアミドゲル電気泳動、および／または等電点電気泳動等を適宜選択または組み合わせれば、抗体を分離及び精製することができる（Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ ｆｏｒ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｈａｒｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｙ Ｃｏｕｒｓｅ Ｍａｎｕａｌ，Ｄａｎｉｅｌ Ｒ．Ｍａｒｓｈａｋ ｅｔ ａｌ．ｅｄｓ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（１９９６）；Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ．Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８８））が、これらに限定されるものではない。
クロマトグラフィーとしては、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、ゲル濾過、逆相クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー等が挙げられる。
これらのクロマトグラフィーは、ＨＰＬＣやＦＰＬＣ等の液相クロマトグラフィーを用いて行うことができる。
アフィニティークロマトグラフィーに用いるカラムとしては、プロテインＡカラム、プロテインＧカラム、抗原カラム等をあげることができる。
プロテインＡカラムとしては、例えば、Ｈｙｐｅｒ Ｄ（ポール社製）、ＰＯＲＯＳ（アプライドシステムズ社製）、Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ Ｆ．Ｆ．（ＧＥヘルスケアバイオサイエンス社製）等が挙げられる。
また抗原を固定化した担体を用いて、抗原への結合性を利用して抗体を精製することも可能である。
本発明は、本発明の抗体もしくはその機能断片またはその修飾体をコードする遺伝子、該遺伝子が挿入された組換えベクター、該遺伝子又はベクターが導入された細胞、及び本発明の抗体を産生する細胞をも提供する。
（４−１）〜（４−６）のいずれかの方法により産生される抗体またはその機能断片も本発明に含むことができる。
５．医薬組成物
本発明は抗ＲＯＢＯ４抗体もしくはその機能断片またはその修飾体を含む医薬組成物を提供する。
本発明の医薬組成物は、発症、進展および／又は増悪化の過程において、病理的所見の一つとして血管新生が見られ、且つ、かかる血管新生又は血管透過性を抑制することにより病態の改善がもたらされ得る可能性のある疾患（以下、便宜上「血管新生性疾患」という）の治療または予防に有用である。血管新生性疾患としては、例えば、滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性又は悪性の腫瘍、アテローム性動脈硬化症、水晶体後部線維増殖症、血管腫、慢性炎症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織又は他の移植組織の免疫拒絶、関節リウマチ、乾癬、急性炎症、敗血症、及び肥満等をあげることができる。本発明の医薬組成物は、血管新生性疾患の治療又は予防、好ましくは、滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性又は悪性の腫瘍、水晶体後部線維増殖症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、及び移植角膜組織の免疫拒絶の治療又は予防、より好ましくは、滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性又は悪性の腫瘍、水晶体後部線維増殖症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、及び血管新生緑内障の治療又は予防に薬剤として有用である。
本発明において、疾患の治療及び／又は治療には、かかる疾患、好適にはＲＯＢＯ４蛋白質を発現している個体におけるかかる疾患の発症の予防、増悪化又は進行の抑制又は阻害、かかる疾患に罹患した個体が呈する一つ又は二つ以上の症状の軽減、増悪化若しくは進行の抑制または寛解、二次性疾患の治療又は予防等が含まれるが、それらに限定されるものではない。
本発明の医薬組成物には、治療または予防に有効な量の抗ＲＯＢＯ４抗体又は該抗体の機能断片と薬学上許容される希釈剤、担体、可溶化剤、乳化剤、保存剤及び／又は補助剤を含有せしめることができる。
「治療または予防に有効な量」とは、特定の投与形態および投与径路により特定の疾患に対して治療又は予防効果を奏する量を意味する。
本発明の医薬組成物には、ｐＨ、浸透圧、粘度、透明度、色、等張性、無菌性、該組成物又はそれに含まれる組成物又は抗体の安定性、溶解性、徐放性、吸収性、浸透性、剤型、強度、性状、形状等を変化させたり、維持したり、保持したりするための物質（以下、「製剤用の物質」という）を含有せしめることができる。製剤用の物質としては、薬理学的に許容される物質であれば特に限定されるものではない。例えば、非毒性又は低毒性であることは、製剤用の物質が好適に具備する性質である。
製剤用の物質として、例えば、以下のものをあげることができるが、これらに限定されるものではない：グリシン、アラニン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン及びリジン等のアミノ酸類；抗菌剤；アスコルビン酸、硫酸ナトリウム及び亜硫酸水素ナトリウム等の抗酸化剤；リン酸、クエン酸、又はホウ酸バッファー、炭酸水素ナトリウム溶液、及びトリス−塩酸（Ｔｒｉｓ−Ｈｃｌ）溶液等の緩衝剤；マンニトールやグリシン等の充填剤；エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）等のキレート剤；カフェイン、ポリビニルピロリジン、β−シクロデキストリンやヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン等の錯化剤；グルコース、マンノース及びデキストリン等の増量剤；単糖類、二糖類やグルコース、マンノースやデキストリン等の他の炭水化物；着色剤；香味剤；希釈剤；乳化剤；ポリビニルピロリジン等の親水ポリマー；低分子量ポリペプチド；塩形成対イオン；塩化ベンズアルコニウム、安息香酸、サリチル酸、チメロサール、フェネチルアルコール、メチルパラベン、プロピルパラベン、クロルヘキシジン、ソルビン酸及び過酸化水素等の防腐剤；グリセリン、プロピレングリコール及びポリエチレングリコール等の溶媒；マンニトール及びソルビトール等の糖アルコール；懸濁剤；ＰＥＧ、ソルビタンエステル、ポリソルベート２０やポリソルベート８０等ポリソルベート、トリトン（ｔｒｉｔｏｎ）、トロメタミン（ｔｒｏｍｅｔｈａｍｉｎｅ）、レシチン及びコレステロール等の界面活性剤；スクロースやソルビトール等の安定化増強剤；塩化ナトリウム、塩化カリウム、マンニトールやソルビトール等の弾性増強剤；輸送剤；希釈剤；賦形剤；及び／又は薬学上の補助剤。
これらの製剤用の物質の添加量は、抗ＲＯＢＯ４抗体もしくはその機能断片またはその修飾体の重量に対して０．００１〜１０００倍、好適には０．０１〜１００倍、より好適には０．１〜１０倍である。
抗ＲＯＢＯ４抗体もしくはその機能断片またはその修飾体をリポソーム中に含有せしめたイムノリポソーム、または抗体とリポソームとが結合してなる抗体修飾体（米国特許第６２１４３８８号等）を含有する医薬組成物も、本発明の医薬組成物に含まれる。
賦形剤や担体は、通常液体又は固体であり、注射用の水、生理食塩水、人工脳脊髄液、その他の、経口投与又は非経口投与用の製剤に用いられる物質であれば特に限定されない。生理食塩水としては、中性のもの、血清アルブミンを含むもの等をあげることができる。
緩衝剤としては、医薬組成物の最終ｐＨが７．０〜８．５になるように調製されたＴｒｉｓバッファー、同じく最終ｐＨが４．０〜５．５になるように調製された酢酸バッファー、同じく最終ｐＨが５．０〜８．０になるように調製されたクエン酸バッファー、同じく最終ｐＨが５．０〜８．０になるように調製されたヒスチジンバッファー等を例示することができる。
本発明の医薬組成物は、固体、液体、懸濁液等である。本発明の別の医薬組成物の例として、凍結乾燥製剤をあげることができる。凍結乾燥製剤を成型するには、スクロース等の賦形剤を用いることができる。
本発明の医薬組成物の投与径路としては、経腸投与、局所投与及び非経口投与のいずれでもよく、対象となる疾患によって、好適な投与経路を選択すればよい。具体的には、静脈内投与、動脈内投与、筋肉内投与、皮内投与、皮下投与、腹腔内投与、経皮投与、骨内投与、関節内投与等をあげることができる。また、滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、水晶体後部線維増殖症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織の免疫拒絶等の眼科系の血管新生性疾患に対しては、眼球内への投与も好適に使用できる。
かかる医薬組成物の組成は、投与方法、抗体のＲＯＢＯ４蛋白質結合親和性等に応じて決定することができる。本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体もしくはその機能断片またはその修飾体のＲＯＢＯ４蛋白質に対する親和性が高いほど（ＫＤ値が低いほど）、少ない投与量でその薬効を発揮し得る。
本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体の投与量は、個体の種、疾患の種類、症状、性別、年齢、持病、該抗体のＲＯＢＯ４蛋白質結合親和性又はその生物活性、及びその他の要素に応じて適宜決定することができるが、通常、０．０１〜１０００ｍｇ／ｋｇ、好適には０．１〜１００ｍｇ／ｋｇを、１〜１８０日間に１回、又は１日２回若しくは３回以上投与することができる。
医薬組成物の形態としては、注射剤（凍結乾燥製剤、点滴剤を含む）、坐剤、経鼻型吸収製剤、経皮型吸収製剤、舌下剤、カプセル、錠剤、軟膏剤、顆粒剤、エアーゾル剤、丸剤、散剤、懸濁剤、乳剤、点眼剤、生体埋め込み型製剤等を例示することができる。
本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体もしくはその機能断片またはその修飾体を有効成分として含む医薬組成物は、さらなる治療剤または予防剤と併用してもよい。該薬剤の例として、血管新生抑制薬、抗炎症薬及び／又は抗がん薬が挙げられる。例えば、血管新生抑制薬、抗炎症薬及び／又は抗がん薬を対象に投与した後に抗ＲＯＢＯ４抗体又は該抗体の機能断片を有効成分として含む医薬組成物を投与するか、当該医薬組成物を対象に投与した後に、血管新生抑制薬、抗炎症薬及び／又は抗がん薬を投与するか、または、当該医薬組成物と血管新生抑制薬、抗炎症薬及び／又は抗がん薬を対象に同時に投与してもよい。血管新生抑制薬としてはラニビズマブ等をあげることができる。
本発明は、滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性又は悪性の腫瘍、アテローム性動脈硬化症、水晶体後部線維増殖症、血管腫、慢性炎症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織又は他の移植組織の免疫拒絶、関節リウマチ、乾癬、急性炎症、敗血症、肥満等血管新生性疾患の治療方法または予防方法、及び該血管新生性疾患の治療用または予防用医薬組成物を調製するための本発明の抗体の使用、該血管新生性疾患の治療または予防のための本発明の抗体の使用、をも提供する。本発明の抗体を含む治療用または予防用キットも本発明に含まれる。
６．診断用組成物
本発明は、本発明の抗ＲＯＢＯ４抗体もしくはその機能断片またはその修飾体を含む検査用または診断用組成物（以下、まとめて「診断用組成物」という）を提供する。
本発明の診断用組成物は、滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性又は悪性の腫瘍、アテローム性動脈硬化症、水晶体後部線維増殖症、血管腫、慢性炎症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織又は他の移植組織の免疫拒絶、関節リウマチ、乾癬、急性炎症、敗血症、肥満等の血管新生性疾患の検査または診断に有用である。本発明の診断用組成物は、従来の診断基準を満たさない早期の血管新生または前血管新生症状、血管新生へと進展する診断未確定症状等の検査または診断にも有用である。本発明において検査または診断には、例えば、罹患リスクの判定又は測定、罹患の有無の判定、進行や増悪化の程度の測定、抗ＲＯＢＯ４抗体等を含む医薬組成物による薬物治療の効果の測定又は判定、薬物治療以外の治療の効果の測定又は判定、再発リスクの測定、再発の有無の判定等が含まれるが、通常の検査または診断であればそれらに限定されるものではない。
健常人サンプルと比較して対象サンプルにおいて２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９もしくは２０倍またはそれ以上、好適には１０倍またはそれ以上のＲＯＢＯ４蛋白質量が検出された場合、該対象を血管新生性疾患に罹患しているか又は罹患するリスクが高いと診断することができる。また、ＲＯＢＯ４蛋白質の血清中濃度が特定の基準値を超えた場合には、当該対象は血管新生性疾患に罹患していると診断するか、あるいは当該対象は血管新生性疾患に罹患するリスクが高いと診断することができる。かかる基準値は、通常０．０１〜１０ｎｇ／ｍｌ、好適には０．１〜１ｎｇ／ｍｌ、より好適には０．１〜０．３ｎｇ／ｍｌである。
かかる診断用組成物には、ｐＨ緩衝剤、浸透圧調節剤、塩類、安定化剤、防腐剤、顕色剤、増感剤、凝集防止剤等を含有せしめることができる。
本発明は滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性又は悪性の腫瘍、アテローム性動脈硬化症、水晶体後部線維増殖症、血管腫、慢性炎症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織又は他の移植組織の免疫拒絶、関節リウマチ、乾癬、急性炎症、敗血症、肥満等の血管新生性疾患検査方法または診断方法、該血管新生性疾患の診断用組成物を調製するための本発明の抗体の使用、該血管新生性疾患の検査または診断のための本発明の抗体の使用、をも提供する。本発明の抗体を含む検査または診断用キットも本発明に含まれる。
本発明の抗体を含む検査または診断の方法としてはサンドウィッチＥＬＩＳＡが望ましいが、通常のＥＬＩＳＡ法やＲＩＡ法、ＥＬＩＳＰＯＴ（Ｅｎｚｙｍｅ−Ｌｉｎｋｅｄ ＩｍｍｕｎｏＳｐｏｔ）法、ドットブロット法、オクタロニー法、ＣＩＥ（ｃｏｕｎｔｅｒｉｍｍｕｎｏｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ）法などの抗体を利用した検出方法が利用可能である。サンドウィッチＥＬＩＳＡ測定系に供する抗体としてはＲＯＢＯ４を認識するが、互いに競合しない２種類の抗体のいずれの組み合わせであってもよい。抗体の標識法としてはビオチンのほか、ＨＲＰ、アルカリフォスファターゼ、ＦＩＴＣなど生化学的解析に実施可能な標識法が利用できる。酵素標識を利用した検出にはＴＭＢ（３，３'，５，５'−ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌｂｅｎｚｉｄｉｎｅ）、ＢＣＩＰ（５−ｂｒｏｍｏ−４−ｃｈｌｏｒｏ−３−ｉｎｄｏｌｙｌ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）、ρ−ＮＰＰ（ρ−ｎｉｔｒｏｐｈｅｎｙｌ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）、ＯＰＤ（ｏ−Ｐｈｅｎｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅ）、ＡＢＴＳ（３−Ｅｔｈｙｌｂｅｎｚｏｔｈｉａｚｏｌｉｎｅ−６−ｓｕｌｆｏｎｉｃ ａｃｉｄ）、ＳｕｐｅｒＳｉｇｎａｌ ＥＬＩＳＡ Ｐｉｃｏ Ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ（サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）などの発色基質やＱｕａｎｔａＢｌｕ（商標）Ｆｌｕｏｒｏｇｅｎｉｃ Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ Ｓｕｂｓｔｒａｔｅ（サーモフィッシャーサイエンティフィック社製）等の蛍光基質、及び化学発光基質を用いることができる。本測定には、ヒト又は非ヒト動物由来の試料に加え、組換え蛋白質等の人工的な処理を加えた試料をも供することができる。生物個体由来の被検試料としては、例えば、血液、関節液、腹水、リンパ液、脳脊髄液、組織ホモジネート上清等をあげることができるが、それらに限定されるものではない。
本発明の抗体を含む検査または診断用のサンドウィッチＥＬＩＳＡキットには、ＲＯＢＯ４蛋白質標準液、発色試薬、希釈用緩衝液、固相用抗体、検出用抗体、ならびに洗浄液等が含まれてよい。抗原に結合した抗体量は、吸光法、蛍光法、発光法、ＲＩ（ｒａｄｉｏｉｓｏｔｏｐｅ）法等の方法を用いてが好適に測定でき、測定には、吸光プレートリーダー、蛍光プレートリーダー、発光プレートリーダー、ＲＩ液体シンチレーションカウンター等が好適に使用される。
以下、実施例において本発明を更に詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されない。
なお、下記実施例において遺伝子操作に関する各操作は特に明示がない限り、「モレキュラークローニング（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ）」（Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．，Ｆｒｉｔｓｃｈ，Ｅ．Ｆ．およびＭａｎｉａｔｉｓ，Ｔ．著，Ｃｏｌｄ ＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓより１９８９年発刊）に記載の方法もしくはその他の当業者が使用する実験書に記載の方法により行うか、または、市販の試薬やキットを用いる場合には市販品の指示書に従って行った。
（実施例１） 発現ベクター作製
１）−１ ヒトＲＯＢＯ４発現ベクターの作製
１）−１−１ 全長ヒトＲＯＢＯ４発現ベクターの作製
ヒトＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡ（アクセッションＮｏ．ＢＣ０３９６０２）を含むプラスミド（Ｏｐｅｎ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）からＥｃｏＲ Ｖ及びＮｏｔ ＩでヒトＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡを切り出し、これをｐＣＩベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）のＥｃｏＲ Ｖ／Ｎｏｔ Ｉ間に組込むことで、全長ヒトＲＯＢＯ４発現ベクター（以下、「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４」と記す）を作製した。また本ベクターにクローニングされたヒトＲＯＢＯ４遺伝子の配列は配列表の配列番号１に示されている。また、ヒトＲＯＢＯ４のアミノ酸配列は配列表の配列番号２に示されている。
１）−１−２ ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域発現ベクターの作製
ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域ポリペプチド（配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜４６１に示されるアミノ酸配列からなる、以下「ヒトＲＯＢＯ４−ＥＣＤ」と略す）をコードするｃＤＮＡをプライマーセット：
プライマー１Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１Ｒ：
Figure 0005897205
を用いてＰＣＲ反応で増幅した。得られたＰＣＲ産物をｐＥＦ６／Ｖ５−Ｈｉｓ−ＴＯＰＯベクター（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）にクローニングした（以下「ｐＥＦ６−ＲＯＢＯ４−ＥＣＤ」と略す。また、以下で「ｐＥＦ６−ＲＯＢＯ４−ＥＣＤ」によって発現する組換え蛋白質を「ｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤ」と記す）。
１）−１−３ Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型全長ヒトＲＯＢＯ４及びヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体発現ベクターの作製
Ｎ末端にＦＬＡＧ−ｔａｇが付加された、ヒトＲＯＢＯ４の配列表の配列番号２のアミノ酸番号２８〜１００７に示されるアミノ酸配列からなる領域（図中で、「ｈＲＯＢＯ４−２８」と記す。）、アミノ酸番号４６〜１００７に示されるアミノ酸配列からなる領域（図中で、「ｈＲＯＢＯ４−４６」と記す。）、アミノ酸番号１３２〜１００７に示されるアミノ酸配列からなる領域（図中で、「ｈＲＯＢＯ４−１３２」と記す。）、アミノ酸番号２１０〜１００７に示されるアミノ酸配列からなる領域（図中で、「ｈＲＯＢＯ４−２１０」と記す。）、アミノ酸番号２２５〜１００７に示されるアミノ酸配列からなる領域（図中で、「ｈＲＯＢＯ４−２２５」と記す。）、又はアミノ酸番号３４１〜１００７に示されるアミノ酸配列からなる領域（図中で、「ｈＲＯＢＯ４−３４１」と記す。）を含む蛋白質が発現するベクターを構築するため、
ｈＲＯＢＯ４−２８増幅用プライマーセット：
プライマー２Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー２Ｒ：
Figure 0005897205
、
ｈＲＯＢＯ４−４６増幅用プライマーセット：
プライマー３Ｆ：
Figure 0005897205
及び、プライマー２Ｒ、
ｈＲＯＢＯ４−１３２増幅用プライマーセット：
プライマー４Ｆ：
Figure 0005897205
及び、プライマー２Ｒ、
ｈＲＯＢＯ４−２１０増幅用プライマーセット：
プライマー５Ｆ：
Figure 0005897205
及び、プライマー２Ｒ、
ｈＲＯＢＯ４−２２５増幅用プライマーセット：
プライマー６Ｆ：
Figure 0005897205
及び、プライマー２Ｒ、
ｈＲＯＢＯ４−３４１増幅用プライマーセット：
プライマー７Ｆ：
Figure 0005897205
及び、プライマー２Ｒ、
のそれぞれのプライマーセットを用いてｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４を鋳型にしてＰＣＲ反応を行った。得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ−ＴＯＰＯベクター（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）に組込み、クローニングベクターを作製した。各クローニングベクターからＫｐｎ Ｉ及び、Ｎｈｅ Ｉで各ｃＤＮＡを切り出し、これをｐＣＩベクターの Ｋｐｎ Ｉ／Ｎｈｅ Ｉ間に組込むことで、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型全長ヒトＲＯＢＯ４発現ベクター及び４つのヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体発現ベクターを作製した。Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型全長ヒトＲＯＢＯ４ベクターは、Ｎ末端側からＲＯＢＯ４のシグナル配列（配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜２７のアミノ酸）＋ＦＬＡＧ配列（ＤＹＫＤＤＤＤＫ）＋ＲＯＢＯ４（配列表の配列番号２のアミノ酸番号２８〜１００７のアミノ酸）をコードするヌクレオチドからなる。以下、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型全長ヒトＲＯＢＯ４を発現するベクターを「ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−２８」という。また、ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体発現ベクター、例えば配列表の配列番号２のアミノ酸番号４６〜１００７からなるＲＯＢＯ４を発現するベクターは、ＲＯＢＯ４のシグナル配列（配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜２７のアミノ酸）＋ＦＬＡＧ配列（ＤＹＫＤＤＤＤＫ）＋細胞外領域欠損ＲＯＢＯ４（配列表の配列番号２のアミノ酸番号４６〜１００７のアミノ酸）をコードするヌクレオチドからなる。該ベクターを「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４−４６」という。同様に、ＲＯＢＯ４の細胞外領域が一部欠損したＲＯＢＯ４をコードするベクターをそれぞれ、「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４−１３２」、「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４−２１０」、「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４−２２５」、「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４−３４１」という。
ベクターにクローニングされたＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型全長ヒトＲＯＢＯ４又は各ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は配列表の配列番号３、５、７、９、１１、又は１３に示されている。また、対応するＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型全長ヒトＲＯＢＯ４又はヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列は、配列表の配列番号４、６、８、１０、１２、又は１４に示されている。
１）−１−４ ヒトＲＯＢＯ４細胞内領域欠損体発現ベクターの作製
ヒトＲＯＢＯ４の配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜５１１に示されるアミノ酸配列からなる領域（以下、「ｈＲＯＢＯ４−ΔＣ」と記す。）を含む蛋白質が発現するベクターを構築するため、
ｈＲＯＢＯ４−ΔＣ用プライマーセット：
プライマー８Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー８Ｒ：
Figure 0005897205
、
を用いてｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４を鋳型にしてＱｕｉｋＣｈａｎｇｅ ＸＬ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）でヒトＲＯＢＯ４の５１１番目のアミノ酸をコードするコドンの直後にストップコドンを挿入することで、ｈＲＯＢＯ４−ΔＣ発現ベクターを作製した（以下、「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４−ΔＣ」と記す）。
１）−２ マウスＲＯＢＯ４発現ベクターの作製
Ｍｏｕｓｅ Ｈｅａｒｔ ＱＵＩＣＫ−Ｃｌｏｎｅ ｃＤＮＡ（タカラバイオ社製）を鋳型にプライマーセット：
プライマー９Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー９Ｒ：
Figure 0005897205
を用いてＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ−ＢｌｕｎｔＩＩ−ＴＯＰＯベクター（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）に組込むことで、マウスＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡを含むクローニングベクターを作製した。クローニングベクターから Ｋｐｎ Ｉ及び Ｎｏｔ Ｉ でマウスＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡ を切り出し、これをｐＣＩ ベクターの Ｋｐｎ Ｉ／Ｎｏｔ Ｉ間に組込むことで、マウスＲＯＢＯ４発現ベクターを作製した（以下、「ｐＣＩ−ｍＲＯＢＯ４」と記す）。また本ベクターにクローニングされたマウスＲＯＢＯ４遺伝子のＯＲＦ部分の配列は配列表の配列番号１５のヌクレオチド番号７〜３０５１に示されている。また、マウスＲＯＢＯ４のアミノ酸配列は配列表の配列番号１６に示されている。
１）−３ ラットＲＯＢＯ４発現ベクターの作製
Ｒａｔ Ｓｐｌｅｅｎ ＱＵＩＣＫ−Ｃｌｏｎｅ ｃＤＮＡ （タカラバイオ社製）を鋳型に、プライマーセット：
プライマー１０Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１０Ｒ：
Figure 0005897205
を用いＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ−ＴＯＰＯベクターに組込むことで、ラットＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡを含むクローニングベクターを作製した。クローニングベクターからＫｐｎ Ｉ及びＮｏｔ ＩでラットＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡを切り出し、これをｐＣＩベクターのＫｐｎ Ｉ／Ｎｏｔ Ｉ間に組込むことで、ラットＲＯＢＯ４発現ベクターを作製した（以下、「ｐＣＩ−ｒａＲＯＢＯ４」と記す）。ラットＲＯＢＯ４のｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列表の配列番号１７に、当該ヌクレオチド配列がコードするアミノ酸配列を配列表の配列番号１８に示した。
１）−４ Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型カニクイザルＲＯＢＯ４発現ベクターの作製
カニクイザル腎ｔｏｔａｌ ＲＮＡより合成したｃＤＮＡを鋳型にプライマーセット：
プライマー１１Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１１Ｒ：
Figure 0005897205
を用いＰＣＲ反応を行った。得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ―ＴＯＰＯベクターに組込むことで、カニクイザルＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡ（以下、ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−１又はｃｙｎｏＲＯＢＯ４−２と記す）をそれぞれ含む２種類のクローニングベクターを作製した（以下、それぞれｐＣＲ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−１及びｐＣＲ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−２と記す）。
次に、ｐＣＲ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−１又はｐＣＲ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−２を鋳型にプライマーセット：
プライマー１２Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１２Ｒ：
Figure 0005897205
を用いてＰＣＲ反応を行った。得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ―ＴＯＰＯベクターに組込むことで、それぞれのカニクイザルＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡを含むクローニングベクターを作製した。クローニングベクターからＢａｍＨ Ｉ及びＮｏｔ Ｉで対応するカニクイザルＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡを切り出し、これをｐＣＩベクターのＢａｍＨ Ｉ／Ｎｏｔ Ｉ間に組込むことで、２種類のカニクイザルＲＯＢＯ４発現ベクターを作製した（以下、それぞれｐＣＩ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−１及びｐＣＩ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−２と記す）。
次に、ｐＣＩ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−１又はｐＣＩ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−２を鋳型にしてプライマーセット：
プライマー１３Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１２Ｒ
を用いてＰＣＲ反応を行った。得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ−ＴＯＰＯベクター（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）に組込むことで、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型カニクイザルＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡを含む各クローニングベクターを作製した。クローニングベクターからＫｐｎ Ｉ及びＮｏｔ Ｉで対応するカニクイザルＲＯＢＯ４ ｃＤＮＡを切り出し、これをｐＣＩベクターのＫｐｎ Ｉ／Ｎｏｔ Ｉ間に組込むことで、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型カニクイザルＲＯＢＯ４発現ベクターを作製した（以下、それぞれ「ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−１」及び「ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−２」と記す）。また、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−１とｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−２の各々にクローニングされたカニクイザルＲＯＢＯ４のｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列表の配列番号１９と２１に、各ヌクレオチド配列がコードするアミノ酸配列を配列表の配列番号２０と２２にそれぞれ示した。
１）−５ Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ１発現ベクターの作製
Ｈｕｍａｎ Ｈｅａｒｔ ＱＵＩＣＫ−Ｃｌｏｎｅ ｃＤＮＡ（タカラバイオ社製）を鋳型に、プライマーセット：
プライマー１３Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１３Ｒ：
Figure 0005897205
を用いＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物とｐＤＯＮＲ２２１ベクター（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）とでＢＰ反応を行うことで、ヒトＲＯＢＯ１ ｃＤＮＡを含むドナーベクターを作製した。
次に、ドナーベクターを鋳型に、プライマーセット：
プライマー１４Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１４Ｒ：
Figure 0005897205
を用いＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ−ＴＯＰＯベクターに組込むことで、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ１ ｃＤＮＡを含むクローニングベクターを作製した。クローニングベクターからＮｈｅ Ｉ及びＮｏｔ ＩでＮ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ１ ｃＤＮＡを切り出し、これをｐＣＩベクターのＮｈｅ Ｉ／Ｎｏｔ Ｉ間に組込むことで、発現ベクターを作製した（以下、「ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ１」と記す）。Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ１のｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列表の配列番号２３に、当該ヌクレオチド配列がコードするアミノ酸配列を配列表の配列番号２４に示した。
１）−６ ヒトＲＯＢＯ２発現ベクターの作製
Ｈｕｍａｎ Ｌｕｎｇ ＱＵＩＣＫ−Ｃｌｏｎｅ ｃＤＮＡ（タカラバイオ社製）を鋳型に、プライマーセット：
プライマー１５Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１５Ｒ：
Figure 0005897205
を用いＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ―ＴＯＰＯベクターに組込むことで、ヒトＲＯＢＯ２ ｃＤＮＡを含むクローニングベクターを作製した。クローニングベクターからＮｏｔ Ｉ及びＮｈｅ ＩでヒトＲＯＢＯ２ ｃＤＮＡを切り出し、これをｐＣＩベクターのＮｏｔ Ｉ／Ｎｈｅ Ｉ間に組込むことで、発現ベクターを作製した（以下、「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ２」と記す）。ヒトＲＯＢＯ２のｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列表の配列番号２５に、当該ヌクレオチド配列がコードするアミノ酸配列を配列表の配列番号２６に示した。
１）−７ ヒトＲＯＢＯ３発現ベクターの作製
ヒトＲＯＢＯ３／ｐＥＮＴＲ２２３．１（Ｏｐｅｎ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を鋳型に、プライマーセット：
プライマー１６Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１６Ｒ：
Figure 0005897205
を用いＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ―ＴＯＰＯベクターに組込むことで、ヒトＲＯＢＯ３ ｃＤＮＡ を含むクローニングベクターを作製した。クローニングベクターからＮｏｔ Ｉ及びＮｈｅ ＩでヒトＲＯＢＯ３ ｃＤＮＡを切り出し、これをｐＣＩベクターのＮｏｔ Ｉ／Ｎｈｅ Ｉ間に組込むことで、発現ベクターを作製した（以下、「ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ３」と記す）。また本ベクターにクローニングされたヒトＲＯＢＯ３遺伝子のＯＲＦ部分の配列は配列表の配列番号２７のヌクレオチド番号３５〜４１９２に示されている。また、ヒトＲＯＢＯ３のアミノ酸配列は配列表の配列番号２８に示されている。
（実施例２） モノクローナル抗体作製
２）−１ 抗原蛋白質の調製
ｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤを発現させるため、ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３−Ｆ細胞（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）にｐＥＦ６−ＲＯＢＯ４−ＥＣＤを２９３ｆｅｃｔｉｎ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いてトランスフェクションし、３７℃、８％ ＣＯ２条件下で６日間培養した。培養完了後、遠心分離により培養液を回収し、ｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤの精製原料として用いた。得られた培養上清を分子量分画１５０００の透析チューブを用いて２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５に対して透析し、フィルター濾過（０．４５μｍ）した後、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５で平衡化されたＨｉＴｒａｐ １６／１０ Ｑ ＸＬ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏ−Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）に添加した。溶出はＮａＣｌの段階的溶出（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５／０．２Ｍ ＮａＣｌ、２０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５／１Ｍ ＮａＣｌ）で行った。溶出画分の一部をＳＤＳ―ポリアクリルアミドゲル電気泳動（以下「ＳＤＳ−ＰＡＧＥ」と略す。）で分離後、ゲルにクマシーブリリアントブルー染色（以下「ＣＢＢ染色」と略す）及びウェスタンブロット法による検出を行い、ｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤの含まれる画分を確認した。次にｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤを含む画分を集め、ＰＢＳで平衡化されたＨｉＬｏａｄ １６／６０ Ｓｕｐｅｒｄｅｘ ７５ｐｇ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏ−Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）に添加した。ＰＢＳで溶出し、溶出分画の一部をＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分離後、ゲルにＣＢＢ染色及びウェスタンブロット法による検出を行い、ｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤの含まれる画分を確認した。ｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤを含む画分を集め、免疫用抗原及び結合親和性測定時の抗原として使用した。蛋白質濃度はＢＣＡ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｐｉｅｒｃｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）を用いて測定した。
２）−２ 免疫
６週齢のＢＡＬＢ／ｃマウスの雌を使用した。０日目に５０μｇのｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤとＦｒｅｕｎｄ'ｓ Ｃｏｍｐｌｅｔｅ Ａｄｊｕｖａｎｔを混合したものを各マウスの皮下あるいは皮内に投与した。７日目、１４日目と２１日目に５０μｇのｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤとＦｒｅｕｎｄ'ｓ Ｉｎｃｏｍｐｌｅｔｅ Ａｄｊｕｖａｎｔを混合したものをマウスの皮下あるいは皮内に投与した。３８日目に５０μｇのｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤをマウスの腹腔内に投与し、４２日目にマウスのリンパ節あるいは脾臓を採取しハイブリドーマ作製に用いた。
２）−３ ハイブリドーマ作製
リンパ節細胞あるいは脾臓細胞とマウスミエローマＳＰ２／０−ａｇ１４細胞とをＨｙｂｒｉｍｕｎｅ Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｃｙｔｏ Ｐｕｌｓｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）を用いて電気細胞融合し、ＣｌｏｎａＣｅｌｌ−ＨＹ Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ Ｍｅｄｉｕｍ Ｄ（ＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）に希釈して培養した。出現したハイブリドーマコロニーを回収することでモノクローンハイブリドーマを作製した。回収された各ハイブリドーマコロニーを培養し、得られたハイブリドーマ培養上清を用いて抗ＲＯＢＯ４抗体産生ハイブリドーマのスクリーニングを行った。
２）−４ 抗体スクリーニング
２）−４−１ Ｃｅｌｌ−ＥＬＩＳＡ用抗原遺伝子発現細胞の調製
ＨＥＫ２９３細胞を１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中７．５×１０５細胞／ｍＬになるよう調製した。それに対し、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４もしくはネガティブコントロールとしてｐＣＩ−ｍｏｃｋを導入し、９６−ｗｅｌｌハーフエリアｐｌａｔｅ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社製）に５０μＬ／ｗｅｌｌの濃度で分注し、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中で３７℃、５％ＣＯ２の条件下で一晩培養した。得られた導入細胞を接着状態のまま、Ｃｅｌｌ−ＥＬＩＳＡに使用した。
２）−４−２ フローサイトメトリー解析用抗原遺伝子発現細胞の調製
ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を１．１２５×１０７細胞／フラスコになるよう２２５ｃｍ２フラスコ（住友ベークライト社製）に播種し、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中で３７℃、５％ＣＯ２の条件下で一晩培養した。翌日、ｐＣＩ−ＲＯＢＯ４もしくはネガティブコントロールとしてｐＣＩ−ｍｏｃｋをＨＥＫ２９３Ｔ細胞にＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ ２０００を用いて導入し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下でさらに一晩培養した。翌日、発現ベクター導入ＨＥＫ２９３Ｔ細胞をＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）で処理し、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭで細胞を洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳに懸濁した。得られた細胞懸濁液をフローサイトメトリー解析に使用した。
２）−５ Ｃｅｌｌ−ＥＬＩＳＡ
２）−４−１で調製した発現ベクター導入ＨＥＫ２９３細胞の上清を除去後、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４導入ＨＥＫ２９３細胞とｐＣＩ−ｍｏｃｋ導入ＨＥＫ２９３細胞のそれぞれに対しハイブリドーマ培養上清を添加し、４℃で１時間静置した。各ウェル中の細胞を５％ ＦＢＳ含有ＰＢＳで１回洗浄後、５％ ＦＢＳ含有ＰＢＳで５００倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ−Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｉｎ ｇｏａｔ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社製）を加えて、４℃で１時間静置した。各ウェル中の細胞を５％ ＦＢＳ含有ＰＢＳで５回洗浄した後、ＯＰＤ発色液（ＯＰＤ溶解液（０．０５ Ｍ クエン酸３ナトリウム、０．１Ｍ リン酸水素２ナトリウム・１２水 ｐＨ４．５）にｏ−フェニレンジアミン二塩酸塩（和光純薬社製）、Ｈ２Ｏ２をそれぞれ０．４ｍｇ／ｍＬ、０．６％（ｖ／ｖ）になるように溶解）を２５μＬ／ウェルで添加した。時々攪拌しながら発色反応を行い、１Ｍ ＨＣｌを２５μＬ／ウェルを添加して発色反応を停止させた後、プレートリーダー（ＥＮＶＩＳＩＯＮ：ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ社製）で４９０ｎｍの吸光度を測定した。細胞膜表面上に発現するＲＯＢＯ４に特異的に結合する抗体を産生するハイブリドーマを選択するため、ネガティブコントロールのｐＣＩ−ｍｏｃｋ導入ＨＥＫ２９３細胞と比較し、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４導入ＨＥＫ２９３細胞の方でより高い吸光度を示す培養上清におけるハイブリドーマを抗ＲＯＢＯ４抗体産生陽性ハイブリドーマとして選択した。
２）−６ フローサイトメトリー解析
２）−５ Ｃｅｌｌ−ＥＬＩＳＡで陽性と判定された各ハイブリドーマが産生する抗体のＲＯＢＯ４に対する結合をフローサイトメトリー法によりさらに確認した。２）−４−２で調製したＨＥＫ２９３Ｔ細胞懸濁液を遠心し、上清を除去した後、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４導入細胞とｐＣＩ−ｍｏｃｋ導入細胞のそれぞれに対しハイブリドーマ培養上清を加え、４℃で１時間静置した。細胞を５％ ＦＢＳ含有ＰＢＳで２回洗浄した後、５％ ＦＢＳ含有ＰＢＳで１０００倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ ＦＩＴＣ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社製）あるいは５％ ＦＢＳ含有ＰＢＳで３２０倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｒａｔ ＩｇＧ ＦＩＴＣ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社製）を加え、４℃で１時間静置した。細胞を５％ ＦＢＳ含有ＰＢＳで３回洗浄した後、５％ ＦＢＳ及び２μｇ／ｍＬ ７−ａｍｉｎｏａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ Ｄ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ社製）を含有するＰＢＳに再懸濁し、フローサイトメーター（ＦＣ５００：ＢｅｃｋｍａｎＣｏｕｌｔｅｒ社製）で検出を行った。データ解析はＦｌｏｗｊｏ（ＴｒｅｅＳｔａｒ社製）で行った。７−ａｍｉｎｏａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ Ｄ陽性の死細胞をゲートで除外した後、生細胞のＦＩＴＣ蛍光強度のヒストグラムを作成した。ネガティブコントロールであるｐＣＩ−ｍｏｃｋ導入２９３Ｔ細胞の蛍光強度ヒストグラムに対しｐＣＩ−ＲＯＢＯ４導入ＨＥＫ２９３Ｔ細胞のヒストグラムが強蛍光強度側にシフトしているサンプルを産生するハイブリドーマを抗ＲＯＢＯ４抗体産生ハイブリドーマとして取得した。取得したハイブリドーマの産生する抗ＲＯＢＯ４抗体を各々ＭＡｂ１、ＭＡｂ２、ＭＡｂ３、及びＭＡｂ４とした。
２）−７ モノクローナル抗体のアイソタイプ決定
各モノクローナル抗体のアイソタイプは、Ｍｏｕｓｅ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ｉｓｏｔｙｐｉｎｇ ｋｉｔあるいはＲａｔ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ｉｓｏｔｙｐｉｎｇ ｋｉｔ（ＡｂＤ Ｓｅｒｏｔｅｃ社製）により決定された。その結果、ＩｇＧ１（ＭＡｂ１、ＭＡｂ２）、ＩｇＧ２ｂ（ＭＡｂ３、ＭＡｂ４）であった。
２）−８ モノクローナル抗体の調製
各モノクローナル抗体は、ハイブリドーマ培養上清（以下「抗体精製原料」という）から精製された。
抗体精製原料は以下のように調製した。８〜９×１０７個のハイブリドーマを１２７２ｃｍ２フラスコ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社製）に播種し、２０％ ウルトラ−ＬｏＷ ＩｇＧ ウシ胎児血清含有ハイブリドーマＳＦＭ培地（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）中で３７℃、５％ＣＯ２の条件下で４日間培養の後、上清を回収した。
抗体はＨｉｔｒａｐ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ ＨＰ、あるいはＨｉｔｒａｐ ＭａｂＳｅｌｅｃｔ ＳｕＲｅ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏ−Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）で精製した。Ｈｉｔｒａｐ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ ＨＰでは、抗体精製原料をカラムに添加し、結合バッファー（０．０２Ｍ リン酸ナトリウム ｐＨ７．０）で洗浄後、０．１Ｍグリシン ｐＨ２．７で溶出した。一方、Ｈｉｔｒａｐ ＭａｂＳｅｌｅｃｔ ＳｕＲｅでは、抗体精製原料をカラムに添加しＰＢＳで洗浄後、２Ｍ ａｒｇｉｎｉｎｅ−ＨＣｌ ｐＨ４．０で溶出した。溶出された抗体溶液は中和後、ＰＢＳにバッファー置換された。Ｈｉｔｒａｐ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ ＨＰで精製した抗体の濃度は、ＢＣＡ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔを用いて濃度を測定した。なお、検量線用の標準物質は、Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａ（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を用いた。また、Ｈｉｔｒａｐ ＭａｂＳｅｌｅｃｔ ＳｕＲｅで精製した抗体の濃度は、ＰＯＲＯＳ Ｇ ２０μｍ Ｃｏｌｕｍｎ ＰＥＥＫ，４．６ｍｍ×５０ｍｍ，０．８３ｍＬ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）に結合させた抗体の溶出液の吸光度（Ｏ．Ｄ．２８０ｎｍ）を測定することにより求めた。具体的には、平衡化バッファー（３０．６ｍＭ リン酸２水素ナトリウム・１２水、１９．５ｍＭ リン酸１カリウム、０．１５Ｍ ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）で平衡化したＰＯＲＯＳ Ｇ ２０μｍにＰＢＳで希釈した抗体サンプルを添加し、平衡化バッファーでカラムを洗浄後、カラムに結合した抗体を溶離液（０．１％（ｖ／ｖ） ＨＣｌ、０．１５Ｍ ＮａＣｌ）で溶出した。溶出液の吸光度（Ｏ．Ｄ．２８０ｎｍ）のピーク面積を測定し、次式で濃度を算出した。抗体サンプル濃度（ｍｇ／ｍＬ）＝（抗体サンプルのピーク面積）／（標準品（ヒトＩｇＧ１）のピーク面積）×標準品の濃度（ｍｇ／ｍＬ）×サンプルの希釈倍率。
（実施例３） ＲＯＢＯ４の下流シグナル活性化の検出
３）−１ Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−８（ＩＬ−８）のプロモーター領域を応答エレメントとしたレポーターベクターの作製
ＩＬ−８ プロモーター領域のＤＮＡを鋳型に、プライマーセット：
プライマー１７Ｆ：
Figure 0005897205
及び、
プライマー１７Ｒ：
Figure 0005897205
を用いＰＣＲ反応を行い、得られたＰＣＲ産物をｐＣＲ４Ｂｌｕｎｔ―ＴＯＰＯベクターに組込むことで、ＩＬ−８プロモーター領域（−２５３〜−５９）のＤＮＡを含むクローニングベクターを作製した。クローニングベクターからＫｐｎ Ｉ及びＳａｃ ＩでＩＬ−８プロモーター領域（−２５３〜−５９）のＤＮＡを切り出し、これをｐＧＬ４．１５ベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）のＫｐｎ Ｉ／Ｓａｃ Ｉ間に組込むことで、ＩＬ−８プロモーター領域を応答エレメントとしたレポーターベクターを作製した。ＩＬ−８プロモーター領域（−２５３〜−５９）のＤＮＡのヌクレオチド配列を配列表の配列番号２９に示した。
３）−２ Ｎｕｃｌｅａｒ Ｆａｃｔｏｒ―κＢ（ＮＦ−κＢ）、Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ｇａｍｍａ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｓｅｑｕｅｎｃｅ（ＧＡＳ）、Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ ｓｔｉｍｕｌａｔｅｄ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｅｌｅｍｅｎｔ（ＩＳＲＥ）、Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ ｇｒａｄｅ Ｔ ｃｅｌｌ ｆａｃｔｏｒ（ＴＣＦ）を応答エレメントとしたレポーターベクター
ＮＦ−κＢ、ＧＡＳ、ＩＳＲＥ、又はＴＣＦを応答エレメントとしたレポーターベクターは、それぞれｐＧＬ４．３２［ｌｕｃ２Ｐ／ＮＦ−κＢ−ＲＥ／Ｈｙｇｒｏ］ Ｖｅｃｔｏｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）、ｐＧＡＳ−ＴＡ−Ｌｕｃ Ｖｅｃｔｏｒ（タカラバイオ社製）、ｐＩＳＲＥ−ＴＡ−Ｌｕｃ Ｖｅｃｔｏｒ（タカラバイオ社製）とＴＯＰｆｌａｓｈ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）を用いた。また、ネガティブコントロールとして、応答配列を含まないｐＴＡ−Ｌｕｃ Ｖｅｃｔｏｒ（タカラバイオ社製）を用い、インターナルコントロールとして、ｐＲＬ−ＴＫ Ｖｅｃｔｏｒ（タカラバイオ社製）を用いた。
３）−３ ヒトＲＯＢＯ４の一過性発現細胞で変動するシグナル解析
ＨＥＫ２９３細胞を２×１０４細胞／ウェルの濃度で９６ウェルプレート（コラーゲンＩコート、旭硝子社製）に播種し、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中で３７℃、５％ＣＯ２の条件下で一晩培養した。翌日、ｐＣＩ−ＲＯＢＯ４、ｐＣＩ−ＲＯＢＯ４−ΔＣもしくはネガティブコントロールのｐＣＩ−ｍｏｃｋと３）−１や３）−２で示したレポーターベクターをそれぞれＨＥＫ２９３細胞にＦｕＧｅｎｅ６ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔを用いて導入し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下でさらに一晩培養した。翌日、Ｄｕａｌ―Ｇｌｏ Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ Ａｓｓａｙ Ｓｙｓｔｅｍ（プロメガ社製）を用いてプレートリーダー（Ｍｉｔｈｒａｓ：Ｂｅｒｔｈｏｌｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）で各ウェルのホタルルシフェラーゼ活性とウミシイタケルシフェラーゼ活性を発光強度として測定し、次式で各ウェルのレポーター活性を算出した：レポーター活性＝ホタルルシフェラーゼ活性由来の発光強度／ウミシイタケルシフェラーゼ活性由来の発光強度。その結果、ネガティブコントロールのｐＣＩ−ｍｏｃｋ導入細胞と比較して、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４導入細胞でＩＬ−８プロモーター活性のみが上昇した（図１）。また、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４導入細胞で検出されたＩＬ−８プロモーター活性の上昇は、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４−ΔＣ導入細胞（ｈＲＯＢＯ４の細胞内領域を欠損させた変異体）では大幅に減弱したことから、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４導入細胞で検出されるＩＬ−８プロモーター活性の上昇に、ＲＯＢＯ４の細胞内領域が必要なことが示された（図２）。よって、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４導入細胞におけるＩＬ−８のプロモーター活性の上昇は、ＲＯＢＯ４の下流シグナルの活性化を検出していることが示された。
（実施例４） ＭＡｂ１の性質
４）−１ ＭＡｂ１のＲＯＢＯ４の下流シグナル活性化
３）−３で調製したｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４導入細胞もしくはｐＣＩ−ｍｏｃｋ導入細胞を一晩培養し、翌日、各抗ＲＯＢＯ４抗体（ＭＡｂ１、ＭＡｂ２、ＭＡｂ３、又はＭＡｂ４）もしくはネガティブコントロールとしてＭｏｕｓｅ ＩｇＧ１（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ社製）を、０、０．３１２５、１．２５、５、及び２０μｇ／ｍＬもしくは０、０．２５、１、４、及び１６μｇ／ｍＬの濃度で添加し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下で５時間培養した。その後、Ｄｕａｌ―Ｇｌｏ Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ Ａｓｓａｙ Ｓｙｓｔｅｍ（プロメガ社製）を用いてプレートリーダー（Ｍｉｔｈｒａｓ）で各ウェルのホタルルシフェラーゼ活性とウミシイタケルシフェラーゼ活性を発光強度として測定し、次式で各ウェルのレポーター活性を算出した：レポーター活性＝ホタルルシフェラーゼ活性由来の発光強度／ウミシイタケルシフェラーゼ活性由来の発光強度。その結果、ネガティブコントロールのｍｏｕｓｅ ＩｇＧはヒトＲＯＢＯ４一過性発現細胞でのＩＬ−８プロモーター活性に影響しなかったが、ＭＡｂ１はＩＬ−８プロモーター活性を上昇させた（図３）。また、ＭＡｂ２もＭＡｂ１と同様、ＩＬ−８プロモーター活性を上昇させたが、ＭＡｂ３やＭＡｂ４はＩＬ−８プロモーター活性を上昇させなかった（図４）。なお、ｐＣＩ−ｍｏｃｋ細胞において、ＭＡｂ１やＭＡｂ２はＩＬ−８プロモーター活性を上昇させなかった。これらの結果から、ＭＡｂ１は、ＲＯＢＯ４の下流シグナルを活性化すること、さらに、全てのＲＯＢＯ４抗体がＲＯＢＯ４の下流シグナルを活性化することはないことが明らかとなった。
ＲＯＢＯ４下流シグナルの活性上昇が認められなかったＭＡｂ３及びＭＡｂ４について、クロスリンク抗体（ＡｆｆｉＰｕｒｅ Ｇｏａｔ Ａｎｔｉ−Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ Ｆｃ Ｆｒａｇｍｅｎｔ Ｓｐｅｃｉｆｉｃ、Ｃａｔ ＮＯ．１１５−００５−０７１、Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ）共存下（１分子のＭＡｂ３又はＭＡｂ４に対し、２分子のクロスリンク抗体）で、プロモーター活性を評価したところ、いずれの抗体においてもプロモーター活性の上昇が認められた。
４）−２ ＨＵＶＥＣ遊走試験
ＨＵＶＥＣ（ＫＵＲＡＢＯ社製）を０．１％ＢＳＡ含有ＨｕＭｅｄｉａ−ＥＢ２（ＫＵＲＡＢＯ社製）で一晩３７℃、５％ＣＯ２条件下で培養したあと、０．１％ＢＳＡ含有ＨｕＭｅｄｉａ−ＥＢ２で４×１０５個／ｍＬとなるよう調製した。メンブレンをゼラチンコートしたＢＤ Ｆａｌｃｏｎフルオロブロック２４マルチウェルインサートシステム（Ｐｏｒｅ ｓｉｚｅ：８μｍ）のチャンバー上層に、４×１０５個／ｍＬの細胞懸濁液を０．２５ｍＬ添加したあと、チャンバー下層に０．１％ＢＳＡと１０ｎｇ／ｍＬのヒトＶＥＧＦ１６５（ＰｅｐｒｏＴｅｃｈ社製）あるいはヒトｂＦＧＦ（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）と２μｇ／ｍＬのＭｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａあるいは各抗ＲＯＢＯ４抗体（ＭＡｂ１、ＭＡｂ２、ＭＡｂ３、又はＭＡｂ４）を含むＨｕＭｅｄｉａ−ＥＢ２を添加した。３７℃、５％ＣＯ２条件下、２〜３時間インキュベーションし、下層へ遊走したＨＵＶＥＣを４μｇ／ｍＬ Ｃａｌｃｅｉｎ−ＡＭ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）含有ＨｕＭｅｄｉａ−ＥＢ２で１５分間染色した。その後、各ウェルの蛍光強度（励起波長／蛍光波長：４８５ｎｍ／５３８ｎｍ）をプレートリーダー（ＦｌｅｘＳｔａｔｉｏｎ：Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社）で測定し、次式で各ウェルの遊走細胞の量を算出した：遊走細胞の量＝ＨＵＶＥＣ添加ウェルの蛍光強度−ＨＵＶＥＣ非添加ウェルの蛍光強度。その結果、ＭＡｂ１はＶＥＧＦあるいはｂＦＧＦで誘導されるＨＵＶＥＣの遊走を抑制した（図５）。また、ＭＡｂ２もＭＡｂ１と同様、ｂＦＧＦで誘導されるＨＵＶＥＣの遊走を抑制したが、ＭＡｂ３やＭＡｂ４は細胞遊走を抑制しなかった（図６）。これらの結果から、抗ＲＯＢＯ４抗体のＩＬ−８プロモーター活性の上昇とＨＵＶＥＣの遊走抑制活性は相関することが示された。
４）−３ 種交差性
４）−３−１ 抗原遺伝子発現細胞の調製
ＨＥＫ２９３細胞を１．５×１０６細胞／ｄｉｓｈの濃度で６０ｍｍ ｄｉｓｈ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社製）に播種し、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中で３７℃、５％ＣＯ２の条件下で一晩培養した。翌日、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４、ｐＣＩ−ｍＲＯＢＯ４、ｐＣＩ−ｒａＲＯＢＯ４、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−１、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｃｙｎｏＲＯＢＯ４−２、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ１、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ２もしくはｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ３をＨＥＫ２９３細胞にＦｕＧＥＮＥ６ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔを用いて導入し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下でさらに一晩培養した。翌日、発現ベクター導入細胞をＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）で処理し、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで細胞を洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳに懸濁した。得られた細胞懸濁液をフローサイトメトリー解析に使用した。
４）−３−２ フローサイトメトリー解析
４）−３−１で調製した各細胞懸濁液を遠心し、上清を除去した後、２×１０５細胞の発現ベクター導入細胞に対し、ＭＡｂ１又はネガティブコントロールとして、Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａを１０μｇ／ｍＬの濃度で添加し、生じた懸濁液を４℃で１時間静置した。細胞を５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで１回洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで１０００倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ ＦＩＴＣ ｃｏｎｊｕｇａｔｅを加え、生じた懸濁液を４℃で１時間静置した。細胞を５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで３回洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳに再懸濁し、フローサイトメーター（ＢＤ ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ）で検出を行った。データ解析はＦｌｏｗｊｏで行った。ＦＩＴＣ蛍光強度のヒストグラムを作成し、ネガティブコントロールであるＭｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａの蛍光強度ヒストグラムに対し、ＭＡｂ１のヒストグラムが強蛍光強度側にシフトしている場合を、抗体が種交差の形で結合すると判断した。その結果、種交差性の検討では、ＭＡｂ１は、マウスＲＯＢＯ４やラットＲＯＢＯ４に結合しなかったが、ヒトＲＯＢＯ４とカニクイザルＲＯＢＯ４に結合することが明らかとなった（図７）。
４）−４ 結合特異性
４）−４−１ 抗原遺伝子発現細胞の調製
ＨＥＫ２９３細胞を１．２×１０６細胞／ｄｉｓｈもしくは１．５×１０６細胞／ｄｉｓｈの濃度で６０ｍｍ ｄｉｓｈ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社製）に播種し、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中で３７℃、５％ＣＯ２の条件下で一晩培養した。翌日、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ４、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ１、ｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ２もしくはｐＣＩ−ｈＲＯＢＯ３をＨＥＫ２９３細胞にＦｕＧＥＮＥ６ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔを用いて導入し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下でさらに一晩培養した。翌日、発現ベクター導入細胞をＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）で処理し、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで細胞を洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳに懸濁した。得られた細胞懸濁液をフローサイトメトリー解析に使用した。
４）−４−２ フローサイトメトリー解析
４）−４−１で調製した各細胞懸濁液を遠心し、上清を除去した後、２×１０５細胞の発現ベクター導入細胞に対し、ＭＡｂ１、ポジティブコントロールとしてＨｕｍａｎ ＲＯＢＯ４ Ａｎｔｉｂｏｄｙ（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ社製）、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ＡＮＴＩ−ＦＬＡＧ Ｍ２ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｉｎ ｍｏｕｓｅ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社製）、Ｈｕｍａｎ ＲＯＢＯ２ Ａｎｔｉｂｏｄｙ（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ社製）もしくはＭｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉ−ｈｕｍａｎ ＲＯＢＯ３ Ａｎｔｉｂｏｄｙ（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ社製）、又はネガティブコントロールとして、Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ１もしくはＭｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａを１０μｇ／ｍＬの濃度で添加し、生じた懸濁液を４℃で１時間静置した。細胞を５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで１回洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで１０００倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ ＦＩＴＣ ｃｏｎｊｕｇａｔｅを加え、生じた懸濁液を４℃で１時間静置した。細胞を５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで３回洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳに再懸濁し、フローサイトメーター（ＢＤ ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ）で検出を行った。データ解析はＦｌｏｗｊｏで行った。ＦＩＴＣ蛍光強度のヒストグラムを作成し、ネガティブコントロールであるＭｏｕｓｅ ＩｇＧ１もしくはＭｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａの蛍光強度ヒストグラムに対し、ＭＡｂ１のヒストグラムが強蛍光強度側にシフトしている場合を、抗体が特異的に結合すると判断した。その結果、ＭＡｂ１は、ｈＲＯＢＯ１、ｈＲＯＢＯ２あるいはｈＲＯＢＯ３には結合せず、ｈＲＯＢＯ４に特異的に結合することが明らかとなった（図８）。なお、ｈＲＯＢＯ４、ｈＲＯＢＯ１、ｈＲＯＢＯ２、及びｈＲＯＢＯ３が細胞膜上に発現していることはポジティブコントロールの抗体を用いて各々確認された（図８）。
４）−５ エピトープ決定
４）−５−１ 抗原遺伝子発現細胞の調製
ＨＥＫ２９３細胞を１．５×１０６細胞／ｄｉｓｈの濃度で６０ｍｍ ｄｉｓｈ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社製）に播種し、１０％ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ培地中で３７℃、５％ＣＯ２の条件下で一晩培養した。翌日、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−２８、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−４６、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−１３２、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−２１０、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−２２５、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−３４１をＨＥＫ２９３細胞にＦｕＧＥＮＥ６ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔを用いて導入し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下でさらに一晩培養した。翌日、発現ベクター導入細胞をＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）で処理し、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで細胞を洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳに懸濁した。得られた細胞懸濁液をフローサイトメトリー解析に使用した。
４）−５−２ フローサイトメトリー解析
４）−５−１で調製した各細胞懸濁液を遠心し、上清を除去した後、２×１０５細胞の発現ベクター導入細胞に対し、ＭＡｂ１、ポジティブコントロールとしてＭｏｎｏｃｌｏｎａｌ ＡＮＴＩ−ＦＬＡＧ Ｍ２ ａｎｔｉｂｏｄｙ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｉｎ ｍｏｕｓｅ、又はネガティブコントロールとして、Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａを１０μｇ／ｍＬの濃度で添加し、生じた懸濁液を４℃で１時間静置した。細胞を５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで１回洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで１０００倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ ＦＩＴＣ ｃｏｎｊｕｇａｔｅを加え、生じた懸濁液を４℃で１時間静置した。細胞を５％ＦＢＳ含有ＰＢＳで３回洗浄した後、５％ＦＢＳ含有ＰＢＳに再懸濁し、フローサイトメーター（ＢＤ ＦＡＣＳＣａｌｉｂｕｒ：ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社製）で検出を行った。データ解析はＦｌｏｗｊｏで行った。ＦＩＴＣ蛍光強度のヒストグラムを作成し、ネガティブコントロールであるＭｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａの蛍光強度ヒストグラムに対し、ＭＡｂ１のヒストグラムが強蛍光強度側にシフトしている場合を、抗体が細胞に結合すると判断した。その結果、ＭＡｂ１は、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−２８、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−４６もしくはｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−１３２導入細胞には結合し、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−２１０、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−２２５もしくはｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−３４１導入細胞には結合しなかった。したがって、ＭＡｂ１は、配列表の配列番号２に示される、ヒトＲＯＢＯ４の１３２〜２０９番目のアミノ酸配列を認識することが示された（図９）。なお、各細胞内領域／ドメイン欠損体が細胞膜上に発現していることはポジティブコントロールの抗ＦＬＡＧ抗体を用いて確認された（図９）。
４）−６ サルレーザー誘導脈絡膜血管新生モデルでの薬効評価
４）−６−１ 麻酔
各カニクイザルに０．０４ｍｇ／ｋｇの投与量で塩酸メデトミジン（日本全薬工業社製）を筋注し、その１５分後に１５ｍｇ／ｋｇの投与量で塩酸ケタミン（第一三共社製）を筋注した。
４）−６−２ モデル作製
４）−６−１で麻酔した各カニクイザルをモンキーチェアーに保定した。両眼に４％キシロカイン点眼液（アストラゼネカ社製）を点眼し、眼表面を麻酔・鎮痛処置した。５ｍｇ／ｍＬ トロピカミド・５ｍｇ／ｍＬ フェニレフリン塩酸塩混合点眼液（参天製薬社製）を点眼し散瞳させ、グリーンレーザー光凝固装置 ＯｃｕＬｉｇｈｔ ＧＬｘ（イリデリック社製）を用いて網膜黄斑部にレーザー照射（照射熱量：３５０−５００ｍＷ，照射時間：０．１秒，スポットサイズ：５０μｍ，スポット数：６あるいは９スポット）して熱損傷を加えた。
４）−６−３ 被験物質投与
モデル作製後７日目に Ｖｅｈｉｃｌｅあるいは１３．２ｍｇ／ｍＬ ＭＡｂ１ ５０μＬを、３３Ｇナノパスニードルを結膜より硝子体内に刺入し、ＰＥ２０ポリエチレンチューブを介して１００μＬハミルトンシリンジを用いて２分間かけて注入した。試験は各群４眼で実施した。投与終了後、０．５％レボフロキサシン水和物点眼液（参天製薬社製）を点眼した。
４）−６−４ 薬効評価
モデル作製後７日目、１４日目、２１日目に、麻酔下、ハイブリット眼底カメラＣＸ−１（キャノン社製）により眼底通常撮影した。その後、１０％フルオレセインを０．１ｍＬ／ｋｇの投与量で静注した。フルオレセイン静注後、１分毎に最大６分後まで蛍光血管造影撮影を行った。画像データを保存し、画像解析装置（ＷｉｎＲｏｏｆ、三谷商事社製）にてフルオレセイン滞留部の面積を算出した：新生血管量は次式で算出した。新生血管量＝モデル作製後２１日目のフルオレセイン滞留部の面積−モデル作製後７日目のフルオレセイン滞留部の面積。Ｖｅｈｉｃｌｅ投与群とＭＡｂ１投与群の新生血管量を比較した結果、ＭＡｂ１投与群の４眼中１眼ではＶｅｈｉｃｌｅ群の新生血管量と差異は認められなかったものの、３眼では新生血管量の減少が認められた。すなわち、ＭＡｂ１の投与によって、レーザー誘導脈絡膜血管新生が抑制された（図１０）。
（実施例５）ＭＡｂ１のｃＤＮＡのクローニングと配列の決定
５）−１ ＭＡｂ１の重鎖および軽鎖のＮ末端アミノ酸配列の決定
ＭＡｂ１の重鎖および軽鎖のＮ末端アミノ酸配列を決定するために、実施例２）−８で精製したＭＡｂ１をＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離した。分離後のゲルからＳｅｑｕｉ−Ｂｌｏｔ ＰＶＤＦ膜（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社製）にゲル中のタンパク質を転写し、次に洗浄バッファー（２５ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭ ホウ酸ナトリウムバッファー ｐＨ８．０）で洗浄した後、染色液（５０％ メタノール、２０％ 酢酸、０．０５％ クマシーブリリアントブルー）に５分間浸して染色してから、９０％ メタノールで脱色した。ＰＶＤＦ膜上で可視化された重鎖（移動度が小さい方のバンド）および軽鎖（移動度が大きい方のバンド）に相当するバンド部分を切りとった。Ｐｒｏｃｉｓｅ ｃＬＣ プロテインシーケンサー Ｍｏｄｅｌ ４９２ｃＬＣ （Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を用いて、自動エドマン法（Ｅｄｍａｎ ｅｔ ａｌ． （１９６７） Ｅｕｒ． Ｊ． Ｂｉｏｃｈｅｍ． １， ８０参照）によりそれぞれのＮ末端アミノ酸配列を同定した。その結果、ＭＡｂ１の重鎖に相当するバンドのＮ末端のアミノ酸配列は、
Figure 0005897205
であり、軽鎖に相当するバンドのＮ末端アミノ酸配列は、
Figure 0005897205
であった。
５）−２ ＭＡｂ１産生ハイブリドーマからのｍＲＮＡの調製
ＭＡｂ１の重鎖及び軽鎖をコードするｃＤＮＡをクローニングするため、ＭＡｂ１産生ハイブリドーマよりｍＲＮＡ Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｋｉｔ（Ｒｏｃｈｅ ａｐｐｌｉｅｄ ｓｃｉｅｎｃｅ社製）を用いてｍＲＮＡを調製した。
５）−３ ＭＡｂ１のｃＤＮＡのクローニングと配列の決定
ＭＡｂ１の重鎖及び軽鎖のアイソタイプがそれぞれγ１とκであること（実施例２）−７）、５−１）で決定した重鎖および軽鎖のＮ末端アミノ酸配列、及びカバトらにより作成された抗体のアミノ酸配列データベース（Ｓｔｒａｕｓｂｅｒｇ，Ｒ．Ｌ．， ｅｔ ａｌ． （２００２） Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ． Ｕ．Ｓ．Ａ． ９９． １６８９９−１６９０３、及びＫａｂａｔ， Ｅ． Ａ．， ｅｔ ａｌ．（１９９１） ｉｎ Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ Ｖｏｌ． Ｉ及びＩＩ， Ｕ．Ｓ． Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅａｌｔｈ ａｎｄ Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ参照）を参考にして、抗体遺伝子翻訳領域の５'末端配列と終止コドンを含む３'末端配列にそれぞれハイブリダイズするオリゴヌクレオチドプライマーをいくつか合成し、５）−２で調製したｍＲＮＡとＴａＫａＲａ Ｏｎｅ Ｓｔｅｐ ＲＮＡ ＰＣＲ Ｋｉｔ（ＡＭＶ）（タカラバイオ社製）を用いて重鎖、及び軽鎖をコードするｃＤＮＡを増幅したところ、下記のプライマーセットで抗体の重鎖、及び軽鎖をコードするｃＤＮＡを増幅することができた。
重鎖用プライマーセット
ＬＹＨＦ６：
Figure 0005897205
Ｇ１ＥＶＲ１：
Figure 0005897205
軽鎖用プライマーセット
ＭＫ１９ＥＩＦ１：
Figure 0005897205
ＫＥＶＲ１：
Figure 0005897205
ＰＣＲで増幅された重鎖、及び軽鎖のｃＤＮＡをそれぞれｐＥＦ６／Ｖ５−Ｈｉｓ ＴＯＰＯ ＴＡ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を用いてクローニングし、クローニングされた重鎖、軽鎖の各可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を遺伝子配列解析装置（「ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ３７００ ＤＮＡ Ａｎａｌｙｚｅｒ；Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製」あるいは「Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ３７３０ｘｌ Ａｎａｌｙｚｅｒ；Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製」）を用いて決定した。シーケンスの反応は、ＧｅｎｅＡｍｐ ９７００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を用いて行われた。
決定されたＭＡｂ１の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列表の配列番号３０に示し、アミノ酸配列を配列番号３１に示した。マウス抗体ＭＡｂ１の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列を配列表の配列番号３２に示し、アミノ酸配列を配列表の配列番号３３に示した。
（実施例６）キメラＭＡｂ１（ｃＭＡｂ１）の作製
６）−１ 発現ベクターｐＣＭＡ−ＬＫ、ｐＣＭＡ−Ｇ１、及びｐＣＭＡ−Ｇ２の作製
６）−１−１ キメラ及びヒト化軽鎖発現ベクターｐＣＭＡ−ＬＫの構築
プラスミドｐｃＤＮＡ３．３−ＴＯＰＯ／ＬａｃＺ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を制限酵素ＸｂａＩ及びＰｍｅＩで消化して得られる約５．４ｋｂのフラグメントと、ヒトκ鎖分泌シグナル及びヒトκ鎖定常領域をコードするＤＮＡ配列（配列番号３４）を含むＤＮＡ断片をＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を用いて結合して、ｐｃＤＮＡ３．３／ＬＫを作製した。
ｐｃＤＮＡ３．３／ＬＫを鋳型として、下記プライマーセットでＰＣＲを行い、得られた約３．８ｋｂのフラグメントをリン酸化後セルフライゲーションすることによりｐｃＤＮＡ３．３／ＬＫからＣＭＶプロモーターの下流にシグナル配列コード配列、クローニングサイト、及びヒトκ鎖定常領域コード配列を持つ、キメラ及びヒト化軽鎖発現ベクターｐＣＭＡ−ＬＫを構築した。
プライマーセット
３．３−Ｆ１：
Figure 0005897205
３．３−Ｒ１：
Figure 0005897205
６）−１−２ キメラ及びヒト化ＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ−Ｇ１の構築
ｐＣＭＡ−ＬＫをＸｂａＩ及びＰｍｅＩで消化してκ鎖分泌シグナル及びヒトκ鎖定常領域をコードする配列を取り除いたＤＮＡ断片と、ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ１定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列（配列番号３５）を含むＤＮＡ断片をＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を用いて結合して、ＣＭＶプロモーターの下流にシグナル配列コード配列、クローニングサイト、及びヒトＩｇＧ１重鎖定常領域コード配列をもつキメラ及びヒト化ＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ−Ｇ１を構築した。
６）−１−３ キメラ及びヒト化ＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ−Ｇ２の構築
ｐＣＭＡ−ＬＫをＸｂａＩ及びＰｍｅＩで消化してκ鎖分泌シグナル及びヒトκ鎖定常領域をコードする配列を取り除いたＤＮＡ断片と、ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ２定常領域のアミノ酸をコードするＤＮＡ配列（配列番号３６）を含むＤＮＡ断片をＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を用いて結合して、ＣＭＶプロモーターの下流にシグナル配列コード配列、クローニングサイト、及びヒトＩｇＧ２重鎖定常領域コード配列をもつキメラ及びヒト化ＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターｐＣＭＡ−Ｇ２を構築した。
６）−２ ＭＡｂ１キメラタイプ軽鎖発現ベクターの構築
ＭＡｂ１の軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとして、ＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−（ＴＯＹＯＢＯ社製）と下記のプライマーセットで軽鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含む部分を増幅し、キメラ及びヒト化抗体軽鎖発現汎用ベクター ｐＣＭＡ−ＬＫを制限酵素ＢｓｉＷＩで切断した箇所にＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を用いて挿入することにより、ＭＡｂ１キメラタイプ軽鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−ＬＫ／ＭＡｂ１Ｌ」と命名した。ＭＡｂ１キメラタイプ軽鎖をコードするヌクレオチド配列を配列表の配列番号３７に示し、アミノ酸配列を配列番号３８に示した。配列表の配列番号３７のヌクレオチド番号１〜６０はシグナル配列、６１〜４０２は可変領域、４０３〜７１７は定常領域をコードするヌクレオチド配列であり、配列番号３８のアミノ酸番号１〜２０はシグナル配列、２１〜１３４は可変領域、１３５〜２３９は定常領域のアミノ酸である。
軽鎖用プライマーセット
ＭＡｂ１ＬＦ：
Figure 0005897205
ＭＡｂ１ＬＲ：
Figure 0005897205
６）−３ ＭＡｂ１キメラＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターの構築
ＭＡｂ１の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとして、ＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−（ＴＯＹＯＢＯ社製）と下記のプライマーセットで重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含む部分を増幅し、キメラ及びヒト化ＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクター ｐＣＭＡ−Ｇ１を制限酵素ＢｓｉＷＩで切断した箇所にＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を用いて挿入することにより、ＭＡｂ１キメラＩｇＧ１タイプ重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−Ｇ１／ＭＡｂ１Ｈ」と命名した。ＭＡｂ１キメラＩｇＧ１タイプ重鎖をコードするヌクレオチド配列を配列表の配列番号３９に示し、アミノ酸配列を配列番号４０に示した。配列表の配列番号３９のヌクレオチド番号１〜５７はシグナル配列、５８〜４１１は可変領域、４１２〜１４０１は定常領域をコードするヌクレオチド配列であり、配列番号４０のアミノ酸番号１〜１９はシグナル配列、２０〜１３７は可変領域、１３８〜４６７は定常領域のアミノ酸配列である。
ＩｇＧ１タイプ重鎖用プライマーセット
ＭＡｂ１ＨＦ：
Figure 0005897205
ＭＡｂ１Ｈ１Ｒ：
Figure 0005897205
６）−４ ＭＡｂ１キメラＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターの構築
ＭＡｂ１の重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡをテンプレートとして、ＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−（ＴＯＹＯＢＯ社製）と下記のプライマーセットで重鎖の可変領域をコードするｃＤＮＡを含む部分を増幅し、キメラ及びヒト化ＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクター ｐＣＭＡ−Ｇ２を制限酵素ＢｓｉＷＩで切断した箇所にＩｎ−Ｆｕｓｉｏｎ Ａｄｖａｎｔａｇｅ ＰＣＲクローニングキット（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を用いて挿入することにより、ＭＡｂ１キメラＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−Ｇ２／ＭＡｂ１」と命名した。ＭＡｂ１キメラＩｇＧ２タイプ重鎖をコードするヌクレオチド配列を配列表の配列番号４１に示し、アミノ酸配列を配列番号４２に示した。
ＩｇＧ２タイプ重鎖用プライマーセット
ＭＡｂ１ＨＦ：
Figure 0005897205
ＭＡｂ１２Ｒ：
Figure 0005897205
（実施例７）ＩｇＧ１タイプキメラＭＡｂ１抗体及びＩｇＧ２タイプキメラＭＡｂ１抗体の調製
７）−１ ＩｇＧ１タイプキメラＭＡｂ１抗体及びＩｇＧ２タイプキメラＭＡｂ１抗体の生産
ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）はマニュアルに従い、継代及び培養をおこなった。対数増殖期の１．２×１０９個のＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を３Ｌ Ｆｅｒｎｂａｃｈ Ｅｒｌｅｎｍｅｙｅｒ Ｆｌａｓｋ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社製）に播種し、ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ２９３ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｍｅｄｉｕｍ （Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）で１．０×１０６細胞／ｍＬに希釈したのちに、３７℃、８％ＣＯ２インキュベーター内で、９０ｒｐｍで一時間振とう培養した。Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅ社製 ＃２４７６５）３．６ｍｇをＯｐｔｉ−Ｐｒｏ ＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）２０ｍＬに溶解し、次にＰｕｒｅＬｉｎｋ ＨｉＰｕｒｅ Ｐｌａｓｍｉｄキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を用いて調製したＨ鎖発現ベクター（０．４ｍｇ）及びＬ鎖発現ベクター（０．８ｍｇ）を２０ｍＬのＯｐｔｉ−Ｐｒｏ ＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）に懸濁した。Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ／Ｏｐｔｉ−Ｐｒｏ ＳＦＭ混合液２０ｍＬに、発現ベクター／Ｏｐｔｉ−Ｐｒｏ ＳＦＭ混合液２０ｍＬを加え穏やかに攪拌し、さらに５分間放置した後にＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞に添加した。細胞を３７℃、８％ＣＯ２インキュベーターで７日間、９０ｒｐｍで振とう培養して得られた培養上清をＤｉｓｐｏｓａｂｌｅ Ｃａｐｓｕｌｅ Ｆｉｌｔｅｒ （Ａｄｖａｎｔｅｃ社製 ＃ＣＣＳ−０４５−Ｅ１Ｈ）でろ過した。
ｐＣＭＡ−Ｇ１／ＭＡｂ１ＨとｐＣＭＡ−ＬＫ／ＭＡｂ１Ｌ、及びｐＣＭＡ−Ｇ２／ＭＡｂ１ＨとｐＣＭＡ−ＬＫ／ＭＡｂ１Ｌとの組合せによって取得されたＩｇＧ１タイプ、及びＩｇＧ２タイプキメラＭＡｂ１抗体を各々「ｃＭＡｂ１−１」、及び「ｃＭＡｂ１−２」と略す。「ｃＭＡｂ１」は、ＩｇＧ１タイプ及びＩｇＧ２タイプキメラＭＡｂ１抗体の両方を意味する。
７）−２ ｃＭＡｂ１−１及びｃＭＡｂ１−２の精製
上記７−１）で得られた培養上清を、ｒＰｒｏｔｅｉｎＡアフィニティークロマトグラフィー（４−６℃下）で精製した。ｒＰｒｏｔｅｉｎＡアフィニティークロマトグラフィー精製後のバッファー置換工程は室温下で実施した。最初に、培養上清１１００−１２００ｍｌを、ＰＢＳで平衡化したＭａｂＳｅｌｅｃｔＳｕＲｅ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製、ＨｉＴｒａｐカラム：容積１ｍＬ×２連結）にアプライした。培養液がカラムに全て入ったのち、ＰＢＳでカラムを洗浄した。次に２Ｍアルギニン塩酸塩溶液（ｐＨ４．０）で溶出し、抗体の含まれる画分を集めた。その画分のバッファーを脱塩カラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製、ＨｉＴｒａｐ Ｄｅｓａｌｔｉｎｇカラム：容積５ｍＬ×２連結）でＰＢＳへ置換を行った。最後に、当該画分をＣｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ ＵＦ Ｆｉｌｔｅｒ Ｄｅｖｉｃｅ ＶＩＶＡＳＰＩＮ２０（分画分子量３０Ｋ，Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ社製，４℃下）にてＩｇＧ濃度を２０．０ｍｇ／ｍＬ以上に濃縮し精製サンプルとした。
７）−３ ｃＭＡｂ１−１及びｃＭＡｂ１−２の性質
７）−３−１ ＲＯＢＯ４の下流シグナル活性化
この試験を４）−１の方法に従って実施した。ただし、ネガティブコントロールとして、Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社製）を用いた。また、Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ、ｃＭＡｂ１−１、又はｃＭＡｂ１−２は最終濃度が０．３１３μｇ／ｍＬになるように培地に添加した。その結果、ネガティブコントロールのＨｕｍａｎ ＩｇＧはヒトＲＯＢＯ４一過性発現細胞でのＩＬ−８プロモーター活性に影響しなかったが、ｃＭＡｂ１−１及びｃＭＡｂ１−２はＩＬ−８プロモーター活性を上昇させた（図１１）。これらの結果から、ｃＭＡｂ１−１あるいはｃＭＡｂ１−２は、ＭＡｂ１と同様に、ＲＯＢＯ４の下流シグナルを活性化することが明らかとなった。
７）−３−２ ＨＵＶＥＣ遊走試験
この試験を４）−２の方法に従って実施した。ただし、ネガティブコントロールとして、Ｈｕｍａｎ ＩｇＧを用いた。また、Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ、ｃＭＡｂ１−１、又はｃＭＡｂ１−２は最終濃度が０．５μｇ／ｍＬになるように培地に添加した。その結果、ｃＭＡｂ１−１又はｃＭＡｂ１−２はｂＦＧＦで誘導されるＨＵＶＥＣの遊走を抑制した（図１２）。これらの結果から、ｃＭＡｂ１−１あるいはｃＭＡｂ１−２は、ＭＡｂ１と同様に、ＨＵＶＥＣの遊走を抑制することが明らかとなった。
（実施例８）マウス抗ヒトＲＯＢＯ４モノクローナル抗体ＭＡｂ１のヒト化抗体の設計
８）−１ ＭＡｂ１のヒト化バージョンの設計
８）−１−１ ＭＡｂ１の可変領域の分子モデリング
ＭＡｂ１の可変領域の分子モデリングは、相同性モデリングとして一般的に公知の方法（Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，２０３，１２１−１５３，（１９９１））によって実行された。Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｄａｔａ Ｂａｎｋ（Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．３５，Ｄ３０１−Ｄ３０３（２００７））に登録されるヒト免疫グロブリンの可変領域の１次配列（Ｘ線結晶構造から誘導される三次元構造が入手可能である）を、上で決定されたＭＡｂ１の可変領域と比較した。結果として、３ＦＦＤが、ＭＡｂ１の重鎖の可変領域に対してフレームワーク中に欠損がある抗体の中で、最も高い配列相同性を有するとして選択された。また、１Ｔ６６が、ＭＡｂ１の軽鎖の可変領域に対して最も高い配列相同性を有するとして選択された。フレームワーク領域の三次元構造は、ＭＡｂ１の重鎖及び軽鎖に対応する３ＦＦＤ及び１Ｔ６６座標を組み合わせて、「フレームワークモデル」を得ることによって作製された。ＭＡｂ１のＣＤＲは、Ｔｈｏｒｎｔｏｎ ｅｔ ａｌ．（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２６３，８００−８１５，（１９９６））の分類に従って、ＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２、ＣＤＲＬ３、ＣＤＲＨ１及びＣＤＲＨ２は、それぞれクラスター１６Ａ、７Ａ、９Ａ、１０Ａ、および１０Ｂに割り当てられた。ＣＤＲＨ３は、Ｈ３ルール（ＦＥＢＳ ｌｅｔｔｅｒ ３９９，１−８（１９９６））を使用して、ｋ（７）Ｂに分類された。次いで、それぞれのＣＤＲについての代表的なコンホメーションがフレームワークモデルに組み込まれた。
最後に、エネルギーの点でＭＡｂ１の可変領域の可能性のある分子モデルを得るために、不利な原子間接触を除くためのエネルギー計算を行った。上記手順を、市販の蛋白質立体構造予測プログラムＰｒｉｍｅ及び配座探索プログラムＭａｃｒｏＭｏｄｅｌ（Ｓｃｈｒｏｄｉｎｇｅｒ， ＬＬＣ）を用いて行った。
８）−１−２ ヒト化ＭＡｂ１アミノ酸配列の設計
各ヒト化ＭＡｂ１抗体（ｈＭＡｂ１）の構築を、ＣＤＲグラフティング（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９−１００３３（１９８９））として一般的に公知の方法によって行った。アクセプター抗体は、フレームワーク領域内のアミノ酸相同性に基づいて２通り選択された。ＭＡｂ１のフレームワーク領域の配列を、抗体のアミノ酸配列のＫａｂａｔデータベース（Ｎｕｃ．Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．２９，２０５−２０６（２００１））の全てのヒトフレームワークと比較し、結果として、Ｂ３抗体がフレームワーク領域についての８３％の配列相同性に起因して、アクセプターとして選択された。Ｂ３についてのフレームワーク領域のアミノ酸残基を、ＭＡｂ１についてのアミノ酸残基と整列させ、異なるアミノ酸が使用される位置を同定した。これらの残基の位置は、上で構築されたＭＡｂ１の三次元モデルを使用して分析され、そしてアクセプター上にグラフティングされるべきドナー残基が、Ｑｕｅｅｎ ｅｔ ａｌ．（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６，１００２９−１００３３（１９８９））によって与えられる基準によって選択された。選択されたいくつかのドナー残基をアクセプター抗体に移入することによって、ヒト化ＭＡｂ１配列を以下の実施例に記載されるように構築した。また、ｈＭＡｂ１の各ＣＤＲ中の１〜３個のアミノ酸残基を他のアミノ酸残基に置換したｈＭＡｂ１変異体についても以下の実施例に記載されるように構築した。
８）−２ ｃＭＡｂ１重鎖のヒト化
８）−２−１ ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖：
配列表の配列番号４２に示されるｃＭＡｂ１−２重鎖のアミノ酸番号３２（リジン）をグルタミンに、アミノ酸番号３８（リジン）をアルギニンに、アミノ酸番号５９（スレオニン）をアラニンに、アミノ酸番号６１（グルタミン酸）をグリシンに、アミノ酸番号６３（アルギニン）をグリシンに、アミノ酸番号９５（グルタミン酸）をリジンに、アミノ酸番号１０３（セリン）をアスパラギンに、アミノ酸番号１０７（セリン）をアラニンに、アミノ酸番号１１２（メチオニン）をバリンに、アミノ酸番号１１４（フェニルアラニン）をチロシンに、アミノ酸番号１２９（ヒスチジン）をグルタミンに、アミノ酸番号１３２（スレオニン）をロイシンに、及びアミノ酸番号１３３（ロイシン）をバリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化ＭＡｂ１重鎖を「ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖」と命名した。
ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号５６に記載されている。配列番号５６のアミノ酸配列の１〜１９番目のアミノ残基からなる配列、２０〜１３７番目のアミノ酸残基からなる配列、１３８〜４６３番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号５６のアミノ酸配列の５０〜５４番目のアミノ残基からなる配列、６９〜８５番目のアミノ酸残基からなる配列、１１８〜１２６番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれＣＤＲＨ１配列、ＣＤＲＨ２配列、ＣＤＲＨ３配列に相当する。配列番号５６のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５５に記載されている。配列番号５５のヌクレオチド配列の１〜５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８〜４１１番目のヌクレオチドからなる配列、４１２〜１３８９番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号５５のヌクレオチド配列及び配列番号５６のアミノ酸配列は、それぞれ図３１及び図３２にも記載されている。
８）−２−２ ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖：
配列表の配列番号４２に示されるｃＭＡｂ１−２重鎖のアミノ酸番号３２（リジン）をグルタミンに、アミノ酸番号３８（リジン）をアルギニンに、アミノ酸番号５９（スレオニン）をアラニンに、アミノ酸番号６１（グルタミン酸）をグリシンに、アミノ酸番号６３（アルギニン）をグリシンに、アミノ酸番号７２（アスパラギン）をグルタミンに、アミノ酸番号９５（グルタミン酸）をリジンに、アミノ酸番号１０３（セリン）をアスパラギンに、アミノ酸番号１０７（セリン）をアラニンに、アミノ酸番号１１２（メチオニン）をバリンに、アミノ酸番号１１４（フェニルアラニン）をチロシンに、アミノ酸番号１２９（ヒスチジン）をグルタミンに、アミノ酸番号１３２（スレオニン）をロイシンに、アミノ酸番号１３３（ロイシン）をバリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化ＭＡｂ１重鎖を「ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖」と命名した。
ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号５８に記載されている。配列番号５８のアミノ酸配列の１〜１９番目のアミノ残基からなる配列、２０〜１３７番目のアミノ酸残基からなる配列、１３８〜４６３番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号５８のアミノ酸配列の５０〜５４番目のアミノ残基からなる配列、６９〜８５番目のアミノ酸残基からなる配列、１１８〜１２６番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれＣＤＲＨ１配列、ＣＤＲＨ２配列、ＣＤＲＨ３配列に相当する。配列番号５８のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５７に記載されている。配列番号５７のヌクレオチド配列の１〜５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８〜４１１番目のヌクレオチドからなる配列、４１２〜１３８９番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号５７のヌクレオチド配列及び配列番号５８のアミノ酸配列は、それぞれ図３３及び図３４にも記載されている。
８）−２−３ ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖：
配列表の配列番号４２に示されるｃＭＡｂ１−２重鎖のアミノ酸番号３２（リジン）をグルタミンに、アミノ酸番号３８（リジン）をアルギニンに、アミノ酸番号５９（スレオニン）をアラニンに、アミノ酸番号６１（グルタミン酸）をグリシンに、アミノ酸番号９５（グルタミン酸）をリジンに、アミノ酸番号１０３（セリン）をアスパラギンに、アミノ酸番号１０７（セリン）をアラニンに、アミノ酸番号１１２（メチオニン）をバリンに、アミノ酸番号１１４（フェニルアラニン）をチロシンに、アミノ酸番号１２９（ヒスチジン）をグルタミンに、アミノ酸番号１３２（スレオニン）をロイシンに、アミノ酸番号１３３（ロイシン）をバリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化ＭＡｂ１重鎖を「ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖」と命名した。
ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６０に記載されている。配列番号６０のアミノ酸配列の１〜１９番目のアミノ残基からなる配列、２０〜１３７番目のアミノ酸残基からなる配列、１３８〜４６３番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号６０のアミノ酸配列の５０〜５４番目のアミノ残基からなる配列、６９〜８５番目のアミノ酸残基からなる配列、１１８〜１２６番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれＣＤＲＨ１配列、ＣＤＲＨ２配列、ＣＤＲＨ３配列に相当する。配列番号６０のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号５９に記載されている。配列番号５９のヌクレオチド配列の１〜５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８〜４１１番目のヌクレオチドからなる配列、４１２〜１３８９番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号５９のヌクレオチド配列及び配列番号６０のアミノ酸配列は、図３５及び図３６にも記載されている。
８）−２−４ ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖：
配列表の配列番号４２に示されるｃＭＡｂ１−２重鎖のアミノ酸番号３２（リジン）をグルタミンに、アミノ酸番号３８（リジン）をアルギニンに、アミノ酸番号５９（スレオニン）をアラニンに、アミノ酸番号６１（グルタミン酸）をグリシンに、アミノ酸番号７２（アスパラギン）をグルタミンに、アミノ酸番号９５（グルタミン酸）をリジンに、アミノ酸番号１０３（セリン）をアスパラギンに、アミノ酸番号１０７（セリン）をアラニンに、アミノ酸番号１１２（メチオニン）をバリンに、アミノ酸番号１１４（フェニルアラニン）をチロシンに、アミノ酸番号１２９（ヒスチジン）をグルタミンに、アミノ酸番号１３２（スレオニン）をロイシンに、アミノ酸番号１３３（ロイシン）をバリンに置き換えることを伴い設計されたヒト化ＭＡｂ１重鎖を「ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖」と命名した。
ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６２に記載されている。配列番号６２のアミノ酸配列の１〜１９番目のアミノ残基からなる配列、２０〜１３７番目のアミノ酸残基からなる配列、１３８〜４６３番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域、重鎖定常領域に相当する。配列番号６２のアミノ酸配列の５０〜５４番目のアミノ残基からなる配列、６９〜８５番目のアミノ酸残基からなる配列、１１８〜１２６番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれＣＤＲＨ１配列、ＣＤＲＨ２配列、ＣＤＲＨ３配列に相当する。配列番号６２のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号６１に記載されている。配列番号６１のヌクレオチド配列の１〜５７番目のヌクレオチドからなる配列、５８〜４１１番目のヌクレオチドからなる配列、４１２〜１３８９番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、重鎖可変領域配列、重鎖定常領域配列をコードしている。配列番号６１のヌクレオチド配列及び配列番号６２のアミノ酸配列は、それぞれ図３７及び図３８にも記載されている。
８）−３ ＭＡｂ１軽鎖のヒト化
８）−３−１ ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖：
配列表の配列番号３８に示されるｃＭＡｂ１軽鎖のアミノ酸番号２２（アラニン）をイソロイシンに、アミノ酸番号２７（スレオニン）をセリンに、アミノ酸番号３４（セリン）をスレオニンに、アミノ酸番号３７（アスパラギン酸）をグルタミン酸に、アミノ酸番号３８（グルタミン）をプロリンに、アミノ酸番号６２（フェニルアラニン）をロイシンに、アミノ酸番号８４（ロイシン）をプロリンに、アミノ酸番号１０８（フェニルアラニン）をバリンに、アミノ酸番号１１２（フェニルアラニン）をチロシンに、アミノ酸番号１２５（グリシン）をプロリンに、アミノ酸番号１２９（ロイシン）をバリンに、アミノ酸番号１３０（グルタミン酸）をアスパラギン酸に、アミノ酸番号１３４（アラニン）をスレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化ＭＡｂ１軽鎖を「ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖」と命名した。
ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６４に記載されている。配列番号６４のアミノ酸配列の１〜２０番目のアミノ残基からなる配列、２１〜１３４番目のアミノ酸残基からなる配列、１３５〜２３９番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号６４のアミノ酸配列の４４〜５９番目のアミノ残基からなる配列、７５〜８１番目のアミノ酸残基からなる配列、１１４〜１２２番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれＣＤＲＬ１配列、ＣＤＲＬ２配列、ＣＤＲＬ３配列に相当する。配列番号６４のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号６３に記載されている。配列番号６３のヌクレオチド配列の１〜６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１〜４０２番目のヌクレオチドからなる配列、４０３〜７１７番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号６３のヌクレオチド配列及び配列番号６４のアミノ酸配列は、それぞれ図３９及び図４０にも記載されている。
８）−３−２ ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖：
配列表の配列番号３８に示されるｃＭＡｂ１軽鎖のアミノ酸番号２２（アラニン）をイソロイシンに、アミノ酸番号２７（スレオニン）をセリンに、アミノ酸番号３４（セリン）をスレオニンに、アミノ酸番号３７（アスパラギン酸）をグルタミン酸に、アミノ酸番号３８（グルタミン）をプロリンに、アミノ酸番号５２（セリン）をグルタミン酸に、アミノ酸番号５４（グリシン）をリジンに、アミノ酸番号５６（スレオニン）をロイシンに、アミノ酸番号６２（フェニルアラニン）をロイシンに、アミノ酸番号８４（ロイシン）をプロリンに、アミノ酸番号１０８（フェニルアラニン）をバリンに、アミノ酸番号１１２（フェニルアラニン）をチロシンに、アミノ酸番号１２５（グリシン）をプロリンに、アミノ酸番号１２９（ロイシン）をバリンに、アミノ酸番号１３０（グルタミン酸）をアスパラギン酸に、アミノ酸番号１３４（アラニン）をスレオニンに置き換えることを伴い設計されたヒト化ＭＡｂ１軽鎖を「ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖」と命名した。
ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のアミノ酸配列は、配列表の配列番号６６に記載されている。配列番号６６のアミノ酸配列の１〜２０番目のアミノ残基からなる配列、２１〜１３４番目のアミノ酸残基からなる配列、１３５〜２３９番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域、軽鎖定常領域に相当する。配列番号６６のアミノ酸配列の４４〜５９番目のアミノ残基からなる配列、７５〜８１番目のアミノ酸残基からなる配列、１１４〜１２２番目のアミノ酸残基からなる配列が、それぞれＣＤＲＬ１配列、ＣＤＲＬ２配列、ＣＤＲＬ３配列に相当する。配列番号６６のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、配列表の配列番号６５に記載されている。配列番号６５のヌクレオチド配列の１〜６０番目のヌクレオチドからなる配列、６１〜４０２番目のヌクレオチドからなる配列、４０３〜７１７番目のヌクレオチドからなる配列が、それぞれシグナル配列、軽鎖可変領域配列、軽鎖定常領域配列をコードしている。配列番号６５のヌクレオチド配列及び配列番号６６のアミノ酸配列は、それぞれ図４１及び図４２にも記載されている。
（実施例９） ヒト化ＭＡｂ１の作製
９）−１ ヒト化ＭＡｂ１の重鎖発現ベクターの構築
９）−１−１ ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖発現ベクターの構築
配列表の配列番号５６のアミノ酸番号２０〜１３７に示される、ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖可変領域をコードする遺伝子を含むＤＮＡを合成し（ＧｅｎｅＡｒｔ社 人工遺伝子合成サービス）、制限酵素ＢｌｐＩで切り出されるＤＮＡ断片を、キメラ及びヒト化ＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクター（ｐＣＭＡ−Ｇ２）を制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に挿入することにより、ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ１」と命名した。ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖のヌクレオチド配列を配列表の配列番号５５に示した。
９）−１−２ ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖発現ベクターの構築
９）−１−１で構築したｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ１をテンプレートとして、下記に示す下記に示すプライマーセットとＱｕｉｋＣｈａｎｇｅ ＸＬ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−Ｇ１／ｈＭＡｂ１−Ｈ２」と命名した。ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖のヌクレオチド配列を配列表の配列番号５７に示し、アミノ酸配列を配列番号５８に示した。
プライマーセット
Ｈ−Ｎ５３Ｑ−Ｆ：
Figure 0005897205
Ｈ−Ｎ５３Ｑ−Ｒ：
Figure 0005897205
９）−１−３ ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖発現ベクターの構築
配列表の配列番号６０のアミノ酸番号２０〜１３７に示される、ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖可変領域をコードする遺伝子を含むＤＮＡを合成し（ＧｅｎｅＡｒｔ社 人工遺伝子合成サービス）、制限酵素ＢｌｐＩで切り出されるＤＮＡ断片を、キメラ及びヒト化ＩｇＧ２タイプ重鎖発現ベクター（ｐＣＭＡ−Ｇ２）を制限酵素ＢｌｐＩで切断した箇所に挿入することにより、ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ３」と命名した。ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖のヌクレオチド配列を配列表の配列番号５９に示した。
９）−１−４ ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖発現ベクターの構築
９）−１−３で構築したｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ３をテンプレートとして、下記に示すプライマーセットとＱｕｉｋＣｈａｎｇｅ ＸＬ Ｓｉｔｅ−Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｋｉｔ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて、ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−Ｇ１／ｈＭＡｂ１−Ｈ４」と命名した。ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のヌクレオチド配列を配列表の配列番号６１に示し、アミノ酸配列を配列番号６２に示した。
プライマーセット
Ｈ−Ｎ５３Ｑ−Ｆ：
Figure 0005897205
Ｈ−Ｎ５３Ｑ−Ｒ：
Figure 0005897205
９）−２ ヒト化ＭＡｂ１の軽鎖発現ベクターの構築
９）−２−１ ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖発現ベクターの構築
配列番号６４のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖可変領域をコードする遺伝子を含むＤＮＡを合成し（ＧＥＮＥＡＲＴ社、人工遺伝子合成サービス）、制限酵素ＢｓｉＷＩで切り出されるＤＮＡ断片を、キメラ及びヒト化抗体軽鎖発現汎用ベクター（ｐＣＭＡ−ＬＫ）を制限酵素ＢｓｉＷＩで切断した箇所に挿入することにより、ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡｂ１−Ｌ１」と命名した。ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖のヌクレオチド配列を配列表の配列番号６３に示した。
９）−２−２ ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖発現ベクターの構築
９）−２−１で構築したｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡｂ１−Ｌ１をテンプレートとして、ＫＯＤ−Ｐｌｕｓ−（ＴＯＹＯＢＯ社製）とプライマーセットＡ及びＢの各々を用いてＰＣＲを行うことにより得られたＤＮＡ断片を、プライマーセットＣを用いたＯｖｅｒｌａｐ Ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ＰＣＲにより結合することにより、ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖をコードする遺伝子を含むＤＮＡを作製し、制限酵素ＸｂａＩと制限酵素ＰｍｅＩで切り出されるＤＮＡ断片を、キメラ及びヒト化抗体軽鎖発現汎用ベクター（ｐＣＭＡ−ＬＫ）を制限酵素ＸｂａＩと制限酵素ＰｍｅＩで切断した箇所に挿入することにより、ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖発現ベクターを構築した。得られた発現ベクターを「ｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡｂ１−Ｌ２」と命名した。ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のヌクレオチド配列を配列表の配列番号６５に示し、アミノ酸配列を配列番号６６に示した。

プライマーセットＡ
Ｌ ｉｎｆ−Ｆ：
Figure 0005897205
Ｌ−ＥＫＬ−Ｒ：
Figure 0005897205

プライマーセットＢ
Ｌ−ＥＫＬ−Ｆ：
Figure 0005897205
Ｌ ｉｎｆ−Ｒ：
Figure 0005897205

プライマーセットＣ
Ｌ ｉｎｆ−Ｆ：
Figure 0005897205
Ｌ ｉｎｆ−Ｒ：
Figure 0005897205
（実施例１０） ヒト化ＭＡｂ１の調製
１０−７−１）ヒト化ＭＡｂ１の生産
ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）はマニュアルに従い、継代及び培養をおこなった。
対数増殖期の１．２×１０９個のＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を３Ｌ Ｆｅｒｎｂａｃｈ Ｅｒｌｅｎｍｅｙｅｒ Ｆｌａｓｋ（Ｃｏｒｎｉｎｇ社製）に播種し、ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ２９３ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｍｅｄｉｕｍ （Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）で１．０×１０６細胞／ｍＬに希釈したのちに、３７℃、８％ＣＯ２インキュベーター内で９０ｒｐｍで一時間振とう培養した。Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅ社 ＃２４７６５）３．６ｍｇをＯｐｔｉ−Ｐｒｏ ＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）２０ｍＬに溶解し、次にＰｕｒｅＬｉｎｋ ＨｉＰｕｒｅ Ｐｌａｓｍｉｄキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を用いて調製したＨ鎖発現ベクター（０．４ｍｇ）及びＬ鎖発現ベクター（０．８ｍｇ）を２０ｍＬのＯｐｔｉ−Ｐｒｏ ＳＦＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）に懸濁した。Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｉｍｉｎｅ／Ｏｐｔｉ−Ｐｒｏ ＳＦＭ混合液２０ｍＬに、発現ベクター／Ｏｐｔｉ−Ｐｒｏ ＳＦＭ混合液２０ｍｌを加え穏やかに攪拌し、さらに５分間放置した後にＦｒｅｅＳｔｙｌｅ ２９３Ｆ細胞に添加した。細胞を３７℃、８％ＣＯ２インキュベーターで７日間、９０ｒｐｍで振とう培養して得られた培養上清をＤｉｓｐｏｓａｂｌｅ Ｃａｐｓｕｌｅ Ｆｉｌｔｅｒ （Ａｄｖａｎｔｅｃ ＃ＣＣＳ−０４５−Ｅ１Ｈ）でろ過し、７）−２と同様に精製した。
ｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ１とｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡｂ１−Ｌ１との組合せによって取得されたヒト化ＭＡｂ１抗体を「Ｈ−１０４０」、ｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ２とｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡｂ１−Ｌ１との組合せによって取得されたヒト化ＭＡｂ１抗体を「Ｈ−１１４０」、ｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ２とｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡＢ１−Ｌ２との組合せによって取得されたヒト化ＭＡｂ１抗体を「Ｈ−１１４３」、ｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ３とｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡｂ１−Ｌ１との組合せによって取得されたヒト化ＭＡｂ１抗体を「Ｈ−２０４０」、ｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ４とｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡｂ１−Ｌ１との組合せによって取得されたヒト化ＭＡｂ１抗体を「Ｈ−２１４０」、及びｐＣＭＡ−Ｇ２／ｈＭＡｂ１−Ｈ４とｐＣＭＡ−ＬＫ／ｈＭＡｂ１−Ｌ２との組合せによって取得されたヒト化ＭＡｂ１抗体を「Ｈ−２１４３」と命名した。
（実施例１１） ヒト化抗ＲＯＢＯ４抗体の性質
１１）−１ 結合親和性
各抗体とｒＲＯＢＯ４−ＥＣＤの解離定数は、Ｂｉａｃｏｒｅ ３０００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を使用し、抗体をリガンドとして固定化し、抗原をアナライトとして測定した。抗体は、アミンカップリング法にてセンサーチップＣＭ５（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）へ固定化した抗ヒトＩｇＧ抗体（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社製）を介し、約８０ＲＵを結合させた。ランニングバッファーとして０．０５％Ｓｕｒｆａｃｔａｎｔ Ｐ２０含有ＰＢＳを用いた。抗体を結合したチップ上に、抗原の希釈系列溶液（０．１−２００ｎＭ）を流速３０μＬ／分で３００秒間添加し、引き続き３００秒間の解離相をモニターした。再生溶液として、３Ｍ ＭｇＣｌ２を流速１０μＬ／分で３０秒間添加した。データの解析には、分析ソフトウェア（ＢＩＡｅｖａｌｕａｔｉｏｎ Ｓｏｆｔｗａｒｅ， ｖｅｒｓｉｏｎ ４．１）の１：１結合モデルを用いて、結合速度定数ｋｏｎ、解離速度定数ｋｏｆｆ及び解離定数（ＫＤ；ＫＤ＝ｋｏｆｆ／ｋｏｎ）を算出した。その結果、ＫＤ値はＨ−１０４０が０．４１ｎＭ、Ｈ−１１４３が３．５ｎＭ、Ｈ−１１４０が３．９ｎＭ、Ｈ−２０４０が０．４０ｎＭ、Ｈ−２１４３が１．７ｎＭ、Ｈ−２１４０が１．８ｎＭであった。
１１）−２ ＲＯＢＯ４の下流シグナル活性化
この試験を４）−１の方法に従って実施した。ただし、ネガティブコントロールとして、Ｈｕｍａｎ ＩｇＧを用いた。また、Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ、Ｈ−１０４０、Ｈ−１１４０、Ｈ−１１４３、Ｈ−２０４０、Ｈ−２１４０、Ｈ−２１４３又はｃＭＡｂ１−２は最終濃度が０．６３μｇ／ｍＬになるように培地に添加した。その結果、ネガティブコントロールのＨｕｍａｎ ＩｇＧはヒトＲＯＢＯ４一過性発現細胞でのＩＬ−８プロモーター活性に影響しなかったが、いずれのヒト化抗ＲＯＢＯ４抗体もｃＭＡｂ１−２と同等の水準でＩＬ−８プロモーター活性を上昇させた（図４９）。これらの結果から、いずれのヒト化抗ＲＯＢＯ４抗体も、ＭＡｂ１と同様に、ＲＯＢＯ４の下流シグナルを活性化することが明らかとなった。
１１）−３ ＨＵＶＥＣ遊走試験
この試験を４）−２の方法に従って実施した。ただし、ネガティブコントロールとして、ｈｕｍａｎ ＩｇＧを用いた。また、Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ、Ｈ−１１４３、Ｈ−２１４０又はＨ−２１４３は最終濃度が０．５μｇ／ｍＬになるように培地に添加した。各ウェルの蛍光強度（励起波長／蛍光波長：４８５ｎｍ／５３８ｎｍ）はプレートリーダー（ＥｎＶｉｓｉｏｎ：ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ社製）で測定した。その結果、Ｈ−１１４３、Ｈ−２１４０又はＨ−２１４３はｂＦＧＦで誘導されるＨＵＶＥＣの遊走を抑制した（図５０）。さらに、Ｈ−１１４０もＨＵＶＥＣ遊走に対して抑制活性を示した。これらの結果から、Ｈ−１１４０、Ｈ−１１４３、Ｈ−２１４０あるいはＨ−２１４３は、ＨＵＶＥＣの遊走を抑制することが明らかとなった。
１１）−４ 種交差性
１１）−４−１ 抗原遺伝子発現細胞の調製
細胞を４）−３−１の方法に従って調製した。
１１）−４−２ フローサイトメトリー解析
この試験を４）−３−２の方法に従って実施した。ただし、ネガティブコントロールとして、ｈｕｍａｎ ＩｇＧを用い、二次抗体は、ＦＩＴＣ−ＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅ Ｇｏａｔ Ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｆｃγ Ｆｒａｇｍｅｎｔ Ｓｐｅｃｉｆｉｃ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社製）を用いた。また、検出機器は、フローサイトメーター（ＦＣ５００：Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ社製）を用いた。その結果、Ｈ−１１４３、Ｈ−２１４０又はＨ−２１４３は、親抗体のＭＡｂ１と同様、マウスＲＯＢＯ４とラットＲＯＢＯ４に結合しなかったが、ヒトＲＯＢＯ４とカニクイザルＲＯＢＯ４に結合することが明らかとなった（図５１、図５２、および図５３）。さらに、Ｈ−１１４０はＨ−１１４３、Ｈ−２１４０およびＨ２１４３と同様の結果を示した。
１１）−５ Ｈ−１１４０、Ｈ−１１４３，Ｈ−２１４０，又はＨ−２１４３の結合特異性
１１）−５−１ 抗原遺伝子発現細胞の調製
細胞を４）−４−１の方法に従って調製した。ただし、ヒトＲＯＢＯ４発現ベクターは、ｐＣＩ−ＦＬＡＧ−ｈＲＯＢＯ４−２８を用いた。
１１）−５−２ フローサイトメトリー解析
この試験を４）−４−２の方法に従って実施した。ただし、ネガティブコントロールとして、ｈｕｍａｎ ＩｇＧあるいはＭｏｕｓｅ ＩｇＧ２ａを用い、二次抗体は、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ−ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ ｇｏａｔ ＩｇＧ ｆｒａｃｔｉｏｎ ｔｏ ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ（Ｃａｐｐｅｌ社製）もしくはＦＩＴＣ−ＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅ Ｇｏａｔ Ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ，Ｆｃγ Ｆｒａｇｍｅｎｔ Ｓｐｅｃｉｆｉｃを用いた。また、検出機器は、フローサイトメーター（ＦＣ５００）を用いた。その結果、Ｈ−１１４３，Ｈ−２１４０，Ｈ−２１４３は、親抗体のＭＡｂ１と同様、ｈＲＯＢＯ１、ｈＲＯＢＯ２あるいはｈＲＯＢＯ３には結合せず、ｈＲＯＢＯ４に特異的に結合することが明らかとなった（図５４）。さらに、Ｈ−１１４０はＨ−１１４３、Ｈ−２１４０及びＨ−２１４３と同様の結果を示した。なお、ｈＲＯＢＯ４、ｈＲＯＢＯ１、ｈＲＯＢＯ２、及びｈＲＯＢＯ３が細胞膜上に発現していることはポジティブコントロールの抗体を用いてそれぞれ確認された（図５４）。
１１）−６ サルレーザー誘導脈絡膜血管新生モデルでの薬効評価
１１）−６−１ 麻酔
各カニクイザルに０．０８ｍｇ／ｋｇの投与量で塩酸メデトミジンを筋注し、その１５分後に１５ｍｇ／ｋｇの投与量で塩酸ケタミンを筋注した。
１１）−６−２ モデル作製
１１）−６−１で麻酔した各カニクイザルをステンレス手術台上に仰臥位に保定し、５ｍｇ／ｍＬ トロピカミド ５ｍｇ／ｍＬ フェニレフリン塩酸塩混合点眼液を点眼し散瞳させ、グリーンレーザー光凝固装置 ＯｃｕＬｉｇｈｔ ＧＬｘを用いて網膜黄斑部にレーザー照射（照射熱量：５００ｍＷ，照射時間：０．１秒，スポットサイズ：５０μｍ，スポット数：９スポット）して熱損傷を加えた。術後はクラビット点眼液を術眼に滴下した。
１１）−６−３ 被験物質投与
モデル作製後７日目に、各カニクイザルを麻酔後、ステンレス手術台上に仰臥位に保定した。その後、滅菌精製水で４倍希釈したＰＡ・ヨード点眼液（日本点眼薬研究所社製）を点眼して外眼部を殺菌し、３３Ｇ針を結膜より硝子体内に刺入し、１ｍＬシリンジにて生理食塩水もしくは１．１ｍｇ／０．０５ｍＬに調製したＨ−２１４３を０．０５ｍＬ 注入した。投与後は眼・耳科用リンデロンＡ軟膏を滅菌綿棒にて結膜に塗布し、瞼を開閉させて眼表面全体に行き渡らせた。
１１）−６−４ 薬効評価
モデル作製後７日目、１４日目、および２１日目に、麻酔下、ハイブリット眼底カメラＣＸ−１を用いて通常の方法により眼底を撮影した。その後、フルオレセインを０．０５ｍＬ／ｋｇの投与量で静注した。フルオレセイン静注後、１分毎に最大１０分後まで蛍光血管造影撮影を行い、画像データとして保存した。画像データから、Ｚａｈｎ Ｇらの方法（Ｚａｈｎ Ｇ ｅｔ．ａｌ Ａｒｃｈ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．２００９ １２７：１３２９−１３３５）に従って、それぞれのレーザー照射部位のフルオレセイン滞留部の蛍光強度の強さに基づきグレード１から５のスケールで重症度分類を行った。その後、全レーザー照射部位における重症度分類の中でグレード４と５の重症度分類に相当する割合をパーセントで算出し、脈絡膜血管新生を評価した。Ｓａｌｉｎｅ投与群とＨ−２１４３投与群の脈絡膜血管新生を比較した結果、Ｓａｌｉｎｅ投与群では、モデル作製後の時間経過と共に、グレード４と５の割合が増加したのに対し、Ｈ−２１４３投与群ではその増加が認められなかった。すなわち、Ｈ−２１４３の投与によって、レーザー誘導脈絡膜血管新生が抑制された（図５５）。
本発明の提供する抗体を用いることにより、滲出型加齢黄斑変性、糖尿病性網膜症、黄斑浮腫、良性又は悪性の腫瘍、アテローム性動脈硬化症、水晶体後部線維増殖症、血管腫、慢性炎症、眼内新生血管疾患、増殖性網膜症、血管新生緑内障、移植角膜組織又は他の移植組織の免疫拒絶、関節リウマチ、乾癬、急性炎症、敗血症、又は肥満等の血管新生性疾患の治療または予防、ならびに、該血管新生性疾患の検査または診断が可能となる。
配列番号１：ヒトＲＯＢＯ４全長ｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図１３）
配列番号２；ヒトＲＯＢＯ４のアミノ酸配列（図１４）
配列番号３：Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型全長ヒトＲＯＢＯ４のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号４：Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型全長ヒトＲＯＢＯ４のアミノ酸配列
配列番号５：配列番号２のアミノ酸番号４６〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号６：配列番号２のアミノ酸番号４６〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列
配列番号７：配列番号２のアミノ酸番号１３２〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号８：配列番号２のアミノ酸番号１３２番〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列
配列番号９：配列番号２のアミノ酸番号２１０〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域ド／メイン欠損体のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号１０：配列番号２のアミノ酸番号２１０〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列
配列番号１１：配列番号２のアミノ酸番号２２５〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号１２：配列番号２のアミノ酸番号２２５〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列
配列番号１３：配列番号２のアミノ酸番号３４１〜１００７のアミノ酸配列からなるＮ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号１４：配列番号２のアミノ酸番号３４１〜１００７のアミノ酸配列からなる、Ｎ末端ＦＬＡＧ−ｔａｇ付加型ヒトＲＯＢＯ４細胞外領域／ドメイン欠損体のアミノ酸配列
配列番号１５：マウスＲＯＢＯ４ｃＤＮＡのヌクレオチド配列
配列番号１６：マウスＲＯＢＯ４アミノ酸配列
配列番号１７：ラットＲＯＢＯ４ｃＤＮＡのヌクレオチド配列
配列番号１８：ラットＲＯＢＯ４アミノ酸配列
配列番号１９：サルＲＯＢＯ４ｃＤＮＡ１のヌクレオチド配列
配列番号２０：サルＲＯＢＯ４アミノ酸配列１
配列番号２１：サルＲＯＢＯ４ｃＤＮＡ２のヌクレオチド配列
配列番号２２：サルＲＯＢＯ４アミノ酸配列２
配列番号２３：ヒトＲＯＢＯ１ｃＤＮＡのヌクレオチド配列
配列番号２４：ヒトＲＯＢＯ１アミノ酸配列
配列番号２５：ヒトＲＯＢＯ２ｃＤＮＡのヌクレオチド配列
配列番号２６：ヒトＲＯＢＯ２アミノ酸配列
配列番号２７：ヒトＲＯＢＯ３ｃＤＮＡのヌクレオチド配列
配列番号２８：ヒトＲＯＢＯ４アミノ酸配列
配列番号２９：ＩＬ−８プロモーター領域のヌクレオチド配列
配列番号３０：ＭＡｂ１重鎖可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図１５）
配列番号３１：ＭＡｂ１重鎖可変領域のアミノ酸配列（図１６）
配列番号３２：ＭＡｂ１軽鎖可変領域をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図１７）
配列番号３３：ＭＡｂ１軽鎖可変領域のアミノ酸配列（図１８）
配列番号３４：ヒトκ鎖分泌シグナル及びヒトκ鎖定常領域のアミノ酸をコードするｃＤＮＡを含むヌクレオチド配列
配列番号３５：ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ１定常領域のアミノ酸をコードするｃＤＮＡを含むヌクレオチド配列
配列番号３６：ヒト重鎖シグナル配列及びヒトＩｇＧ２定常領域のアミノ酸をコードするｃＤＮＡを含むヌクレオチド配列
配列番号３７：ｃＭＡｂ１軽鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図１９）
配列番号３８：ｃＭＡｂ１軽鎖のアミノ酸配列（図２０）
配列番号３９：ｃＭＡｂ１−１重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図２１）
配列番号４０：ｃＭＡｂ１−１重鎖のアミノ酸配列（図２２）
配列番号４１：ｃＭＡｂ１−２重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図２３）
配列番号４２：ｃＭＡｂ１−２重鎖のアミノ酸配列（図２４）
配列番号４３：ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号４４：ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ１のアミノ酸配列（図２５）
配列番号４５：ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ２のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号４６：ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ２のアミノ酸配列（図２６）
配列番号４７：ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ３のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号４８：ＭＡｂ１重鎖ＣＤＲＨ３のアミノ酸配列（図２７）
配列番号４９：ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ１のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号５０：ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ１のアミノ酸配列（図２８）
配列番号５１：ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ２のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号５２：ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ２のアミノ酸配列（図２９）
配列番号５３：ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ３のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列
配列番号５４：ＭＡｂ１軽鎖ＣＤＲＬ３のアミノ酸配列（図３０）
配列番号５５：ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図３１）
配列番号５６：ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ重鎖のアミノ酸配列（図３２）
配列番号５７：ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図３３）
配列番号５８：ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ重鎖のアミノ酸配列（図３４）
配列番号５９：ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図３５）
配列番号６０：ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ重鎖のアミノ酸配列（図３６）
配列番号６１：ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図３７）
配列番号６２：ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のアミノ酸配列（図３８）
配列番号６３：ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ軽鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図３９）
配列番号６４：ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ重鎖のアミノ酸配列（図４０）
配列番号６５：ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ重鎖をコードするｃＤＮＡのヌクレオチド配列（図４１）
配列番号６６：ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ重鎖のアミノ酸配列（図４２）
配列番号６７：ｈＭＡｂ１−Ｈ２又はｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のＣＤＲＨ１（図４３）
配列番号６８：ｈＭＡｂ１−Ｈ２又はｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のＣＤＲＨ２（図４４）
配列番号６９：ｈＭＡｂ１−Ｈ２又はｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ重鎖のＣＤＲＨ３（図４５）
配列番号７０：ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のＣＤＲＬ１（図４６）
配列番号７１：ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のＣＤＲＬ２（図４７）
配列番号７２：ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ軽鎖のＣＤＲＬ３（図４８）

Claims (27)

  1. （Ｉ）１×１０−８以下のＫＤ値でＲＯＢＯ４蛋白質に結合する性質、
    （ＩＩ）イン・ビトロにおいて、クロスリンク抗体非存在下で血管内皮細胞遊走を抑制又は阻害する性質、及び
    （ＩＩＩ）イン・ビボにおいて、血管新生を抑制又は阻害する性質
    を有する抗体又はその抗原結合断片であって、
    該抗体が、配列表の配列番号４４（図２５）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ１、配列表の配列番号４６（図２６）に示されるアミノ酸配列又は配列表の配列番号６８（図４４）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ２、及び配列表の配列番号４８（図２７）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＨ３を含む重鎖、並びに、配列表の配列番号５０（図２８）に示されるアミノ酸配列又は配列表の配列番号７０（図４６）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ１、配列表の配列番号５２（図２９）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ２、及び配列表の配列番号５４（図３０）に示されるアミノ酸配列からなるＣＤＲＬ３を含む軽鎖からなる、
    抗体又はその抗原結合断片。
  2. 抗体が、配列表の配列番号３１（図１６）に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号３３（図１８）に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む、
    請求項１に記載の抗体又はその抗原結合断片。
  3. 抗体が、下記ａ）〜ｄ）より選択されるいずれか一つの重鎖可変領域、及びｅ）及びｆ）から選択される軽鎖可変領域を含む、請求項１に記載の抗体又はその抗原結合断片：
    ａ）配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖（ｈＭＡｂ１−Ｈ１タイプ）可変領域、
    ｂ）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖（ｈＭＡｂ１−Ｈ２タイプ）可変領域、
    ｃ）配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖（ｈＭＡｂ１−Ｈ３タイプ）可変領域、及び
    ｄ）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖（ｈＭＡｂ１−Ｈ４タイプ）可変領域、
    並びに
    ｅ）配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（ｈＭＡｂ１−Ｌ１タイプ）可変領域、及び
    ｆ）配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（ｈＭＡｂ１−Ｌ２タイプ）可変領域。
  4. 抗体が、下記１）〜６）に記載の重鎖可変領域及び軽鎖可変領域の組合せのいずれか一つを含む、請求項１に記載の抗体又はその抗原結合断片：
    １）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
    ２）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
    ３）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域
    ４）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、
    ５）配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域、並びに
    ６）配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜１３７に示されるアミノ酸配列からなる重鎖可変領域、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜１３４に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域。
  5. ＲＯＢＯ４蛋白質が、ヒトＲＯＢＯ４蛋白質である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の抗体又はその抗原結合断片。
  6. ＲＯＢＯ４蛋白質が、配列表の配列番号２のアミノ酸番号１〜１００７のアミノ酸配列からなる蛋白質である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の抗体又はその抗原結合断片。
  7. ＲＯＢＯ４蛋白質が、配列表の配列番号２のアミノ酸番号４６〜１００７のアミノ酸配列からなる蛋白質である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の抗体又はその抗原結合断片。
  8. 配列表の配列番号２のアミノ酸番号１３２〜２０９のアミノ酸配列からなる部位に結合する、請求項６又は７に記載の抗体又はその抗原結合断片。
  9. モノクローナル抗体又はその抗原結合断片である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の抗体又はその抗原結合断片。
  10. キメラ抗体又はその抗原結合断片である、請求項１、２、５〜９のいずれか一つに記載の抗体又はその抗原結合断片。
  11. ヒト化抗体又はその抗原結合断片である、請求項１、３〜９のいずれか一つに記載の抗体又はその抗原結合断片。
  12. 抗体が、ヒトＩｇＧ１又はヒトＩｇＧ２の重鎖定常領域を含む、請求項１〜１１のいずれか一つに記載の抗体又はその抗原結合断片。
  13. 下記１）〜６）に記載の重鎖及び軽鎖の組合せのいずれか一つを含む、請求項１に記載の抗体：
    １）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−１１４０）、
    ２）配列表の配列番号５８（図３４）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−１１４３）、
    ３）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６６（図４２）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−２１４３）、
    ４）配列表の配列番号６２（図３８）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−２１４０）、
    ５）配列表の配列番号５６（図３２）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−１０４０）、並びに
    ６）配列表の配列番号６０（図３６）のアミノ酸番号２０〜４６３に示されるアミノ酸配列からなる重鎖、及び、配列表の配列番号６４（図４０）のアミノ酸番号２１〜２３９に示されるアミノ酸配列からなる軽鎖（Ｈ−２０４０）。
  14. 請求項１３に記載のいずれか一つの抗体において、Ｎ−結合への糖鎖付加、Ｏ−結合への糖鎖付加、Ｎ末のプロセッシング、Ｃ末のプロセッシング、脱アミド化、アスパラギン酸の異性化、メチオニンの酸化、プロリン残基のアミド化及びカルボキシル末端において１つ又は２つのアミノ酸が欠失した重鎖からなる群より選択される１又は２以上の修飾を含む、抗体。
  15. 請求項１３に記載のいずれか一つの抗体とアミノ酸配列が９５％以上同一であり、ヒトＲＯＢＯ４に対して１×１０−８以下のＫＤ値を有し、イン・ビトロにおいてクロスリンク抗体非存在下で血管内皮細胞遊走を抑制又は阻害し、且つイン・ビボにおいて血管新生を抑制又は阻害する、請求項１〜９のいずれか一つに記載の抗体。
  16. 下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ）からなる群より選択される核酸：
    （Ｉ）請求項１〜１５のいずれか一つに記載の抗体の重鎖および軽鎖のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含んでなる核酸、
    （ＩＩ）請求項１〜１５のいずれか一つに記載の抗体の重鎖および軽鎖のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含むヌクレオチド配列からなる核酸、及び
    （ＩＩＩ）請求項１〜１５のいずれか一つに記載の抗体の重鎖および軽鎖のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列からなる核酸。
  17. 請求項１６記載の核酸が挿入された組換えベクター。
  18. 請求項１６記載の核酸又は請求項１７記載の組換えベクターが導入された組換え細胞。
  19. 請求項１〜１５のいずれか一つに記載の抗体を産生する細胞。
  20. 下記の工程（Ｉ）及び（ＩＩ）を含む、請求項１〜１５のいずれか一つに記載の抗体又はその抗原結合断片の製造方法：
    （Ｉ）請求項１８又は１９記載の細胞を培養する工程；及び
    （ＩＩ）前記工程（Ｉ）で得られた培養物から請求項１〜１５のいずれか一つに記載の抗体又はその抗原結合断片を回収する工程。
  21. 請求項２０に記載の製造方法により製造された抗体又はその抗原結合断片。
  22. Ｎ−結合への糖鎖付加、Ｏ−結合への糖鎖付加、Ｎ末のプロセッシング、Ｃ末のプロセッシング、脱アミド化、アスパラギン酸の異性化、メチオニンの酸化、プロリン残基のアミド化及びカルボキシル末端において１つ又は２つのアミノ酸が欠失した重鎖からなる群より選択される１又は２以上の修飾を含む、請求項１〜１５及び２１のいずれか一つに記載の抗体又はその抗原結合断片。
  23. 請求項１〜１５、２１及び２２のいずれか一つに記載の抗体又はその抗原結合断片を有効成分として含んでなる医薬組成物。
  24. 血管新生性疾患の治療または予防で使用するためのものである、請求項２３に記載の医薬組成物。
  25. 請求項１〜１５、２１及び２２のいずれか一つに記載の抗体又はその抗原結合断片を有効成分として含んでなる血管新生阻害剤。
  26. さらなる治療薬または予防薬と併用される、請求項２３又は２４に記載の医薬組成物。
  27. さらなる治療薬または予防薬と併用される、請求項２５に記載の血管新生阻害剤。
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