JP5879349B2 - 口腔衛生のためのプロバイオティック組成物 - Google Patents
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Description
歯垢関連疾患、特に歯肉炎、歯周炎および齲蝕は、世界口腔疾患負担の大部分を示す。
本発明者らは、ヒト口腔微生物叢由来の新規株を単離した。該株のラクトバチルス・プランタラムCECT7481およびラクトバチルス・ブレビスCECT7480は、それらを口腔衛生の改善における使用に適当にする種々の機能特性を示す。このような特性は、口腔病原体に対する良いアンタゴニスト特性だけでなく、口腔にコロニーを作る能力および低酸性化プロフィールもまた含む。以下に議論されているとおり、両方の株が単一の組合せにおいて使用されるとき、口腔における健康上の利益が顕著であることも見いだした。
以下の部は、本発明の株の特性および口腔衛生適用に関する特定のプロバイオティック特徴を記載する。
新規株F2096およびI3141は、熱帯の南アメリカの開発地域の0−5歳の子供由来の唾液から単離された。唾液をPBSバッファー(pH7.4)に溶解させ、アリコートし、10μg/mlのバンコマイシン(SIGMA)を補ったMRS(Man Rogosa Sharp, Sigma-Aldrich Chem, Spain)寒天上に置いた。株を37℃で微好気的条件(5%CO2)下で培養した。増殖させた後、単離された株を、15%のスキムミルク粉末を有するPBS 0.1X中で凍結乾燥により保存した。
2.1.属および種の遺伝的同定
A)方法
本発明の株を、37℃で5% CO2を含む雰囲気下でMRS培地(pH6.4)上で一晩培養した。さらに、細菌を回収し、洗浄し、前溶解バッファー(480μlのEDTA 50mM pH8.0;120μlのリゾチーム 10mg/ml)に再懸濁し、さらに37℃で60分インキュベートした。DNAを、WizardゲノムDNA精製キット(Promega)を使用して抽出した。14000gで2分間、前処理された細菌を遠心分離し、上清を除去した後、Promegaのプロトコールを続けた。簡潔には、細菌を核溶解溶液に再懸濁し、80℃で5分間インキュベートし、次に室温に冷やした。細胞溶解物をRNase溶液中で37℃で60分間インキュベートし、タンパク質にタンパク質沈殿溶液を加え、高速で回転させることにより、沈殿させた。サンプルを冷やし、15000gで3分間遠心した。DNAを含む上清をきれいな1.5ml微量遠心チューブに移し、反転により600μlのイソプロパノールと混合した。DNAを15000gで2分間遠心分離により回収し、注意深く上清を捨てた。DNAサンプルを、穏やかにチューブを数回反転させることにより、600μlの70%エタノールで洗浄した。エタノールを、15000gで2分間遠心分離後に、吸引により除去した。最後に、DNAペレットは、65℃で1時間インキュベートすることにより、100μlのRehydration溶液に再懸濁した。サンプルを2−8℃で貯蔵した。
表1.16S遺伝子を増幅し、シーケンシングするために使用されるプライマー
RDP(Ribosimal Database Project)ツールによって、株F2096がラクトバチルス・プランタラム種に属し、株I3141がラクトバチルス・プランタラム種に属すると同定された。
A)方法
特性評価は、ゲノム消化およびパルスフィールドゲル電気泳動により行った。F2096およびI3141株を、以前に記載されたプロトコール(Rodas AMら “Polyphasic study of wine Lactobacillus strains: taxonomic implications”, Int J Syst Evol Microbiol, 2005, vol. 55, p. 197-207)に付した。市販の株、ラクトバチルス・プランタラム299V、ラクトバチルス・プランタラムVSL#3、ラクトバチルス・カゼイVSL#3およびラクトバチルス・カゼイDN114.001はまた、コントロール株としてアッセイに含んだ。全ての株をMRS寒天プレート上で増殖させ、37℃で5% CO2下で18時間インキュベートした。細胞を回収し、8mlのPET(10mM Tris pH7.6、1M NaCl)中で3回洗浄し、次に、6000rpmで10分間遠心した。ペレットを700μlの溶解バッファー(6mM Tris、1M NaCl、0.1M EDTA、0.5% SLS、0.2% デオキシコール酸;1mg/ml リゾチーム;40U/ml ムタノリシン;20(g/ml RNase)に再懸濁した。同等の容量の1.6%低融点アガロース(FMC BioProducts, Rockland, ME, USA)を再懸濁された細胞に加え、4℃で1時間で凝固させた。挿入物を2ml溶解バッファーII(0.5M EDTA pH9.2、1% N−ラウロイルサルコシンおよび1mg/ml プロナーゼ)に移し、50℃で48時間インキュベートした。次に、挿入物を室温でTEバッファー(10mM Tris、1mM EDTA pH8.0)で洗浄した。全DNA消化をSfi−IおよびSma−I制限酵素(Roche Diagnostics)により行った。
表2.F2096およびI3141株由来のSfi−IおよびSma−I制限ゲノムDNAに対する電気泳動状態
図1に示されるとおり、F2096株に対するパルスフィールド電気泳動Sfi−IおよびSma−I制限パターンは、市販のラクトバチルス・プランタラム299vおよびラクトバチルス・プランタラムVSL#3株のものと異なり、I3141に対する制限パターンは、非常に関連した市販のラクトバチルス・カゼイ株のものと異なる。したがって、F2096およびI3141株が新規株であると結論づけることができる。
A)方法
株F2096およびI3141がアンタゴニスト活性を示すか否かを評価するために、Campbellプロトコールを、Oxoid培地中に細菌性病原体で播種された寒天プレートを使用して行った。試験において使用される病原体は、ヒトの口腔において一般的に存在するものの中から選択された(表1参照)。簡潔には、F2096、I3141およびペデイオコッカス・アシディラクティシィ、ヒトの唾液から単離された別の株を、それぞれ上記特定の状態下で一晩培養した。インキュベーション後、培養物を108cfu/mlに標準化し、以下の混合培養物を調製した:F2096+I3141、F2096+ペデイオコッカス・アシディラクティシィ、およびI3141+ペデイオコッカス・アシディラクティシィ。該混合培養物は、等量のそれぞれのこれらの構成株および単一株の培養物として同じ全細菌濃度、すなわち108cfu/mlを含んだ。固定された容量のそれぞれの単一株の培養物および混合培養物を一様に播種し、適当な温度で5% CO2インキュベーターでコンフルエンスにまで増殖させた。次に、コンフルエンス寒天プレートの一様なサイズのシリンダー部を、病原体プレート上にローン トゥ ローン(loan-to-loan)で置き、37℃で一晩インキュベートした。
A)方法
凝集物を形成する能力を、凝集物および沈殿物の形成による、一晩培養物の620nmでの光学濃度の減少をモニタリングすることにより評価した。凝集能力パーセント(%AC)値を、以下の式:%AC=(1−(ODtf/ODt0)/100(式中、ODtfおよびODt0はそれぞれ最後および最初の光学濃度である)を使用して得た。最初のODは、全ての培養物が等量のcfu/mlを含むことができるように、調節した。混合された培養物は、50%のそれぞれの株を含む所望の全cfu/mlを得るように、適当な量の単一の株を混合することにより調製された。
凝集物を形成する能力は、該株が、病原体生物膜形成に干渉することにより歯垢を阻害または減少させることができるため、口腔衛生適用でのプロバイオティック株に重要である。
表4.凝集能力(%)
A)方法
ヒト食物に存在する種々の糖を補った培養培地において増殖させるときの、新規株が酸を生産する能力を評価した。該株を、以下の培地中で5% CO2下で37℃で18時間増殖した:MRSおよび4% グルコース、4% フルクトース、4% ラクトースまたは4% スクロースを補った最小培地。最小培地は、2g/L ペプトン水、2g/L 酵母抽出物、0.1g/L NaCl、0.04g/L K2HPO4、0.04g/L KH2PO4、0.01g/L MgSO4*7H2O、0.01g/L CaCl2*6H2O、2g/L NaHCO3、0.05g/L ヘルミナ(hemina)(少数の1mol/L NaOH滴に溶解させた)、0.5g/L システインHCl、0.5g/L 胆汁塩、2g/L Tween 80、および10μl ビタミン K1(Sigma−Aldrich Chem、Spainから全ての成分を得た)を含んだ。培養物をHClでpH7に調節した。pHおよび生存細胞の数(cfu/ml)を、インキュベーション時間の最後に測定した。それぞれの培養培地に対する酸価の生産は、以下の式:PA値=pH*log(cfu/ml)により得た。
上記式にしたがって、低い値は、高い酸産生性の株に対応する。高い酸生産は、齲蝕形成を促進するため、口腔プロバイオティックに対する望ましくない副次的作用である。種々の糖において増殖されるF2096およびI3141ならびにいくつかのプロバイオティックコントロール株に対する酸生産値は、市販の株に対して得られた値と共に、表5に示すことができる。MMは最小培地を表す。
表5.酸の生産
A)方法
新規株による悪臭揮発性化合物の生産を、ヒトの食物に類似している培養培地において培養したとき、感覚評価の手段により決定した。簡潔には、株を、5% CO2下で37℃で48時間、グルコース(0.5% w/v)、フルクトース(0.5% w/v)、酵母抽出物(1% w/v)、肉抽出物(1% w/v)、真核細胞(200 細胞/ml)およびペクチン(0.5% w/v)を含む培地において培養した。株は、1が臭気がなく、5が非常に不快な臭気である1から5の悪臭値の生産をもたらす。
悪臭化合物の生産は、口腔プロバイオティックに対して非常に望ましくない。しかしながら、本発明の株は、ヒトの食物に類似している培養培地において培養されている間、一切不快な臭気を生産しなかった。
表6.不快な臭気の生産
A)方法
口腔における株の生存は、それらを口腔ストレス状態に置くことにより試験した。5*107cfuのそれぞれの細菌株を、F2096、I3141およびラクトバチルス・ロイテリATCC55730の場合、200μlのMRS培地の、またはストレプトコッカス・サリバリウスK12の場合、トリプシン分解ダイズ培養液(TSB, Oxoid)の96ウェル培養プレートに播種した。培養物に、生理学的濃度のリゾチーム(Sigma-Aldrich Chem, Spain)または過酸化水素(Sigma-Aldrich Chem, Spain)を補った。プレートを、5% CO2下で37℃で6時間インキュベートした。細菌増殖を、620nmで光学濃度を測定することにより定量した。細菌増殖値を、補足なしの標準MRS培地中で同じ株によりなし遂げられる増殖と比較することにより得た。
全生存パーセント値(%SV)を以下のとおりに計算した:%SV=[(ODtf−ODt0(補足あり))/(ODtf−ODt0(補足なし))]*100(式中、ODは光学濃度であり、tfおよびt0はそれぞれ最後および最初の時間である)。以下の値は、トリプリケート結果の平均である:
表7.口腔状態に対する生存
A)方法
腸のブタの舌、Caco−2細胞(歯肉を刺激するため)およびヒドロキシアパタイト(HA)ビーズ(歯を刺激するため)へのF2096、I3141および市販のコントロール株のインビトロでの付着アッセイを行った。それぞれの株を10μl/mlの5−[3H]チミジン(1.0μCi/ml、Amersham Biosciences, UK)で一晩インキュベートした。調製物を遠心し、ペレットを108cfu/mlの濃度にPBSバッファーで再懸濁した。微生物に取り込まれたトリチウムシグナルは、シンチレーションリーダー(Wallac 1410)において最初のトリチウムシグナルおよび上清シグナルから計算した。この数(バイオマスに取り込まれたシグナル)と培養物中の微生物の数の比は、cpm/cfu(シグナル/細菌)をもたらす。
B)結果
表8.口腔組織への付着
A)方法
株F2096およびI3141に対する抗生物質感受性を、欧州食品安全機関(EFSA)による技術的ガイドラインにしたがって試験した(“Update of the criteria used in the assessment of bacterial resistance to antibiotics of human or veterinary importance”. The EFSA Journal, 2008, vol. 732, p. 1-15)。株に対する培養条件は以下のとおりであった:37℃で5%CO2下でEFSA推奨抗生物質濃度を含むMRS寒天プレートの表面上の増殖。
抗生物質含有培地上での株の増殖は、表9に示される。EFSAにより推奨されるアッセイのそれぞれの抗生物質の濃度は、mg/mlにおいて与えられる。抗生物質濃度に対して示されていない値は、ラクトバチルス・ブレビス種に対するEFSAにより記載されており、したがって、ラクトバチルス・ブレビス株I3141における抗生物質耐性は、この種が属するグループの偏性ヘテロ型発酵性のラクトバチルスに対して推奨される濃度を使用してアッセイした。
表9.株F2096およびI3141の抗生物質耐性
Claims (17)
- 受入番号CECT7481の下にスペイン・タイプ・カルチャー・コレクション(CECT)において寄託されたラクトバチルス・プランタラム(Lactobacillus plantarum)株および/またはその変異体であって、該変異体は、出発物質として寄託された株CECT7481を使用することにより、変異誘発または再単離技術により得られ、該変異体は、出発物質として使用された寄託された株と少なくとも同程度で、口腔ストレス状態に対して生存し、口腔組織に付着し、凝集物を形成し、口腔病原体を阻害する能力を保持する変異体、および/または、
受入番号CECT7480の下にスペイン・タイプ・カルチャー・コレクション(CECT)において寄託されたラクトバチルス・ブレビス(Lactobacillus brevis)株および/またはその変異体であって、該変異体は、出発物質として寄託された株CECT7480を使用することにより、変異誘発または再単離技術により得られ、該変異体は、出発物質として使用された寄託された株と少なくとも同程度で、口腔ストレス状態に対して生存し、口腔組織に付着し、凝集物を形成し、口腔病原体を阻害する能力を保持する変異体を含む組成物。 - 医薬としての使用のための、請求項1に記載の組成物。
- ヒトを含む動物において口腔病原体により引き起こされる口腔における障害の予防および/または処置における使用のための、請求項2に記載の組成物。
- 口腔における障害が歯垢関連障害である、請求項3に記載の組成物。
- 歯垢関連障害が、歯肉炎、歯周炎、齲蝕または知覚過敏である、請求項4に記載の組成物。
- 口腔における障害が口臭である、請求項3に記載の組成物。
- 口腔における障害がカンジダ症である、請求項3に記載の組成物。
- 請求項1−7のいずれかに記載の組成物および少なくとも1つの薬学的に許容される賦形剤を含む医薬組成物。
- 請求項1−8のいずれかに記載の組成物を含むプロバイオティック(probiotic)製品。
- 請求項1−8のいずれかに記載の組成物および少なくとも1つの食用成分を含む食用製品。
- 栄養補助食品である、請求項10に記載の食用製品、請求項1−8のいずれかに記載の組成物または請求項9に記載のプロバイオティック製品。
- 請求項1−8のいずれかに記載の組成物および少なくとも1つの美容上許容される賦形剤を含む美容用組成物。
- 有効量の、請求項1−8のいずれかに記載の組成物または請求項12に記載の美容用組成物を含む、口腔ケア製品。
- チューインガム、練り歯磨き、マウススプレー(mouth spray)、ロゼンジまたは口腔分散性錠剤である、請求項13に記載の口腔ケア製品。
- 受入番号CECT7481の下にスペイン・タイプ・カルチャー・コレクション(CECT)において寄託されたラクトバチルス・プランタラム株および/またはその変異体であって、該変異体は、出発物質として寄託された株CECT7481を使用することにより、変異誘発または再単離技術により得られ、該変異体は、出発物質として使用された寄託された株と少なくとも同程度で、口腔ストレス状態に対して生存し、口腔組織に付着し、凝集物を形成し、口腔病原体を阻害する能力を保持する変異体。
- 受入番号CECT7480の下にスペイン・タイプ・カルチャー・コレクション(CECT)において寄託されたラクトバチルス・ブレビス株および/またはその変異体であって、該変異体は、出発物質として寄託された株CECT7480を使用することにより、変異誘発または再単離技術により得られ、該変異体は、出発物質として使用された寄託された株と少なくとも同程度で、口腔ストレス状態に対して生存し、口腔組織に付着し、凝集物を形成し、口腔病原体を阻害する能力を保持する変異体。
- 出発物質としてラクトバチルス・プランタラムCECT7481またはラクトバチルス・ブレビスCECT7480を使用すること、および、変異誘発または再単離技術を適用することを含む、ラクトバチルス・プランタラムCECT7481またはラクトバチルス・ブレビスCECT7480の変異体を得るための方法であって、該得られた変異体は、出発物質として使用された寄託された株の、口腔ストレス状態に対して生存し、口腔組織に付着し、凝集物を形成し、口腔病原体を阻害する能力を少なくとも保持する、方法。
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