JP5751547B2 - 球状コロニーの形成方法 - Google Patents
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Description
なお、これら性質の違いを利用し、線維芽細胞と組織幹細胞とを分離することも試みられている。すなわち、線維芽細胞を培養器に接着させる一方で、浮遊培養を行い、形成された球状コロニーを回収することで、組織幹細胞濃度の高い細胞群が得られると考えられる。しかしながら、組織幹細胞は存在自体が非常に稀有なため、このようにして回収される組織幹細胞数は極めて少なく、単離された状態で利用するには、そもそも供給量が再生医療の需要に対応し切れないという問題がある。
また、このような皮膚由来幹/前駆細胞は、皮膚組織に分布している状態では、皮膚細胞へ分化し、同細胞源となり得ていると考えられるが、該幹細胞を単離・培養したものを注入治療などに利用する場合、その多分化能をコントロールする技術を要する。
本発明は前記問題に鑑みてなされたものであり、効率的に細胞の球状コロニーを形成する方法を提供することを目的とする。
すなわち、本発明に係る球状コロニーの製造方法は、下記(A)〜(B)工程を含むことを特徴とする。
(A)対象細胞を単離する工程、
(B)(A)工程後、前記対象細胞を回転・浮遊培養する工程。
また、前記製造方法においては、前記(B)工程において、浮遊培養における細胞播種密度を1×103〜1×106の範囲で調整することが好適である。
また、前記製造方法においては、前記(B)工程において、浮遊培養期間を1〜3日の範囲で調整することが好適である。
また、前記製造方法においては、前記(B)工程において、浮遊培養における回転速度が1〜3rpmであることが好適である。
また、前記製造方法においては、前記対象細胞が、線維芽細胞及び/又は骨髄間質細胞であることが好適である。
また、前記製造方法においては、前記球状コロニーの少なくとも一部が、組織幹/前駆細胞を含むものであることが好適である。
また、前記製造方法においては、前記(B)工程において、浮遊培養中に懸濁操作を行うことが好適である。
さらに、本発明にかかる再生医療・細胞治療用球状コロニーは、前記製造方法によるものであることを特徴とする。
培養細胞から球状コロニーを作成する場合の技術的困難さは、第一に培養細胞が球状コロニーを極めて形成し難いことにある。そもそも、細胞の球状コロニーの形成は偶然に起こることがほとんどであり、培養細胞からの球状コロニー形成を意図的に制御する技術は存在しなかった。そのため、培養中に球状コロニーが認められたとしても、その頻度は極僅かであった。
第二には、通常、球状コロニーは細胞同士が連続的に配置し、一つの構造を形成していることを特徴とするが、条件が適当でない場合、細胞が単に接着した細胞凝集体(cell aggregate)と呼ばれる状態となってしまうことにある。この状態でさらに培養すると、他の球状コロニーあるいは細胞凝集体が徐々に凝集体へ接合し、大きな細胞塊を形成してしまう。そうすると、その中央部には十分な酸素や栄養が供給されなくなり、多くの場合、これらの細胞は壊死することになる。
また、通常、球状コロニーは、単離した状態で浮遊する単離細胞や、前記細胞凝集体の中に混在しているため、これらの中から球状コロニーのみを得ることも困難であった。
本発明は、特定の工程に従って細胞培養を行うことにより、前記細胞塊を形成させず、且つ、単離細胞を可及的に除去した状態で注入等の細胞移植治療に適した球状コロニーを高頻度且つ高純度で得ようとするものである。
なお、治療によっては、単離細胞による治療効果が期待されることもある。したがって、本発明は、単離細胞が適切な割合で混合された状態で球状コロニーを得、該状態で細胞を使用することも意図している。
ただし、球状コロニーの大きさや1コロニー当たりの細胞数、球状コロニーと単離細胞との割合、コロニーを形成する細胞種などの条件は、球状コロニーを移植する組織や使用する細胞種によって異なるため、目的に応じて決定することが好ましい。これは、後述する本発明に係る方法において、細胞の密度、回転・浮遊培養期間、培地などの条件調整することによって行うことができる。すなわち、本発明に係る球状コロニーの製造方法は、球状コロニー形成細胞(sphere forming cells;SFCs)の選択的培養法を包含するものでもある。
(A)対象細胞を単離する工程と、
(B)(A)工程後、前記対象細胞を回転させながら浮遊培養する工程を含むものである。
まず、上記(A)及び(B)工程についてそれぞれ説明する。
本発明にかかる球状コロニーの製造方法において、(A)工程は、対象細胞を単離することを表している。
本発明に使用する対象細胞の種類は限定されないが、特に、表皮細胞などを含む上皮細胞、線維芽細胞、骨髄間質細胞、骨芽細胞、心筋細胞、軟骨細胞、腱細胞、脂肪細胞などを含む間葉系細胞が好ましく、より好ましくは高い接着性を備えた線維芽細胞、骨髄間質細胞である。これらの対象細胞は、単独で用いても2種以上組み合わせて用いてもよい。また、前記対象細胞には、勿論、各組織に分布する幹細胞や前駆細胞も包含されるが、本発明の球状コロニーにおいて幹細胞や前駆細胞の存在は必須ではない。すなわち、例えば、皮膚の真皮組織から得た細胞(群)から本発明の方法により球状コロニーを得る場合、得られたコロニーの全てが線維芽細胞から形成されていても、同コロニーの一部又は全部が幹細胞や前駆細胞を含んでいてもよい。本発明の球状コロニーに含まれ得る幹細胞、前駆細胞としては、例えば、皮膚由来幹/前駆細胞(SKPs)が挙げられる。球状コロニーの少なくとも一部が、SKPsを含んでいると、同コロニーに基づく細胞の増殖が亢進する可能性がある。
なお、本発明に使用する対象細胞の採取源としては、例えば、ヒトなどの哺乳類が好適であるが、それ以外の生物であっても構わない。また、前記採取源由来の細胞株を用いてもよい。
単離された細胞は、必要に応じて洗浄や、セルストレーナーによる分離を施し、(B)工程に供する。
前記接着培養は、単離された初代培養細胞を培養容器上に播種し、培養液又は培地中で培養することによって行う。
単離された細胞は、培養容器に播種されると、容器表面に接着し、伸展しながら増殖する。接着・伸展の形状は細胞種によって異なるが、通常、接着培養を続けることによって培養容器の表面には細胞の単層が形成される。
接着培養に使用する培養容器は、細胞が接着し得る材質・形状のものであれば特に限定されないが、一般的なものとして、ガラスないしプラスチック製の6ウェル、12ウェル、48ウェル、96ウェル等のプレート及びシャーレ等の培養皿やフラスコなどが挙げられる。また、コラーゲンなどを細胞接着の基質として用いてもよい。
また、前記培養液又は培地には、患者本人の血清(自己血清)、ウシ胎児血清(FBS(FCS))、新生子ウシ血清(NCS)、子ウシ血清(CS)、ウマ血清(HS)等の血清、もしくはこれらの代替物質を添加することが好ましい。また、培養中の培養液、培地は、必要に応じて交換することが好適である。
培養期間は、使用する細胞種や培養容器、培養条件などに応じて適宜設定することができ、培養容器表面の細胞密度が上昇し、おおよそ80〜90%コンフルエントの状態となるまでを培養の目安とする。
設定した期間培養を経た接着培養細胞は、トリプシン等の蛋白質分解酵素やキレート剤で処理し、培養容器から剥離する。剥離した細胞は、必要に応じて洗浄や、セルストレーナーによる分離を施し、(B)工程に供する。
上記初代培養を継代する場合、初代培養細胞が完全なコンフルエントに達する前に培地を交換し、再播種して行う。
継代法は特に限定されないが、例えば、培養容器上に接着した初代培養細胞から培地を除去し、必要に応じて細胞を洗浄後、トリプシン等の蛋白質分解酵素やキレート剤を添加して培養容器に接着した細胞を剥離し、回収して再度細胞培養容器に播くことで1継代目の細胞が得られる。なお、継代細胞の播種数は、初代培養細胞を適宜確認して決定すればよく、公知の方法に従って、血清培地による酵素反応の停止や、遠心分離等による細胞の洗浄などの操作を行ってもよい。
本発明にかかる方法において、(B)工程は、前記(A)工程で得た対象細胞を回転させながら浮遊培養することを表している。
(A)工程において単離された対象細胞は、培養液又は培地中に懸濁し、培養容器中に播種して浮遊培養を開始する。
浮遊培養は培養容器を回転ないし攪拌しながら行う培養法であり、これにより、容器表面に接着せず培養液又は培地に浮遊した状態で培養細胞を増殖させることができる。本発明においては、特に、回転させながら培養することが好ましい。培養容器に播種された対象細胞は、回転させることで、単離した状態で浮遊したままの細胞と、浮遊状態で全方向に均一に増殖し、球状の集合体、すなわち球状コロニーを形成する細胞とに分かれる。
浮遊培養における細胞播種密度は、使用する細胞の種類や大きさにもよるが、1×103〜1×106cells/mLの範囲とすることで好適に球状コロニーを得られる。なお、例えば、線維芽細胞においては、細胞播種密度を特に3.5〜7.0×104cells/mLとすることで球状コロニーの形成効率をより向上させることができる。
前記密度範囲を超えると、形成される球状コロニーの数はやや減少するものの、コロニーの平均サイズはより大きくなる傾向がある。また、前記密度に満たない場合も球状コロニーの形成数は減少するが、より小サイズの球状コロニーが得られることがある。すなわち、本発明においては、細胞播種密度を調整することにより、所望の球状コロニーを得ることができる。
また、本工程の培養条件(温度、雰囲気等)は、上記接着培養や公知の培養条件に準じて設定することができるが、培養中の細胞は、ローテーター等により1〜3rpm、特に1.3〜2rpmの回転速度で浮遊させることが好ましい。前記回転速度が早すぎると球状コロニー形成の効率が低下することがあり、遅すぎると球状コロニーよりも細胞凝集体が形成される傾向がある。
さらに、前記培養中には懸濁操作を間歇的に行い、細胞集合体同士を分離させるとことが好ましい。3日以上に亘る培養では、培養中に細胞凝集体様の細胞塊の形成が確認されるが、これは形成初期であれば分離可能な状態であると考えられる。したがって、培養中に懸濁操作を行うことによって、前記細胞塊が凝集することを防ぎ、より多数のコロニーを得ることができるのである。なお、前記懸濁操作はピペッティングにより行うことが好ましい。
上記の如く、3日未満の球状コロニーは未発達で大きさが小さく、接着しやすい状態を保っているため、移植後に直ちに生着する必要がある一部の細胞移植治療には有利である。一方、3日以上浮遊培養を行った球状コロニーは、接着しにくく浮遊状態を維持しやすいため、生着に時間がかかるものの、輸送や生体への注入には有利である。このように、本発明においては、浮遊培養期間を調整することにより、所望の球状コロニーを得ることができる。よって、本発明においては、目的に応じて浮遊培養期間を1〜3日間で調整することが好適である。
なお、ここでの血清は、患者本人の血清(自己血清)、ウシ胎児血清(FBS(FCS))、新生子ウシ血清(NCS)、子ウシ血清(CS)、ウマ血清(HS)等の細胞培養に通常用いられる血清、もしくはこれらの代替物質を示し、適宜濃度調整して使用する。
まず、本実施例で行った細胞の培養方法を次の(1)〜(2)に示す。
(1)初代培養細胞培養(接着培養)
BALB/cAJclマウス(7週齢、オス、日本クレア社)にソムノペンチル(共立製薬株式会社製)を腹腔内に過量投与して犠牲死させた後、バリカンで毛を刈りとった。脂肪や血管などの皮下組織が混入しないように丁寧に背部皮膚組織を切除し、採取した組織(1cm程度)を12%イソジン溶液(明治製菓株式会社製)に90秒間浸漬し、消毒を行った。PBS(−)(日水製薬株式会社製)で洗浄した後、クリーンベンチ内で、1〜2mm程度の小片になるように細切した。この組織小片を10mg/mL濃度のコラゲナーゼ溶液(和光純薬工業株式会社製)とともに37℃、CO25%の条件下で1時間インキュベートし、酵素消化を行った。次に、4℃、1500rpmで5分間遠心分離し、上清の除去後、α−MEM培地(和光純薬工業株式会社製)5mLで洗浄する操作を2回繰り返した。その後、上清を除去し、血清入りα−MEM(α−MEM培地+10%FBS+ペニシリン/ストレプトマイシン/ファンギゾン(GIBCO製))を6mL加えて細胞を懸濁し、細胞懸濁液を6ウェルプレートに1mL/ウェルずつ播種した。細胞播種後、血清入りα−MEMを各ウェルに更に1mLずつ加えた後、37℃、CO25%にて培養を行った。培地交換は、週2回全量交換を行った。継代は、細胞が80〜90%コンフルエントに達した時点でトリプシンEDTA(GIBCO製)あるいはTrypLE Select(GIBCO製)を用いて行った。目視顕微鏡で細胞がはがれたことを確認できた時点で、血清入りα−MEMで反応を停止させ、4℃、1500rpmで5分間遠心分離後、上清を除去し、PBSで再懸濁した。血球計算板を用いて細胞数をカウントした後、再度遠心し、血清入り培地で懸濁した後、目的に応じた細胞数でプレートあるいはディッシュに再度播種し、37℃、5%CO2で培養を続けた。
血清入りα−MEMで接着培養後(すなわち、前記(1)の操作後)の細胞をトリプシンEDTAにて回収し、4℃1500rpmで5分間遠心分離した。洗浄後、70μmのセルストレーナーを通過させ、細胞数をカウントし、SKPs用無血清培地(D−MEM/F12+2%B−27+20ng/mLbFGF+20ng/mLEGF+ペニシリン/ストレプトマイシン/ファンギゾン)、あるいは、血清入りα−MEMで細胞を再懸濁した。一定の細胞数で14mLチューブ(Falcon製)に播種し、37℃、CO25%の条件下で1〜3日間ローテーター(BIO CRAFT製)(1.3rpm)培養を行い、球状コロニーを形成させた。
上記(1)の操作で得た単離細胞を、そのまま回転・浮遊培養を行ったサンプル(単離細胞)、及び、上記(1)の操作で得た単離細胞を接着培養し、回転・浮遊培養を行ったサンプル(培養細胞)の位相差顕微鏡画像を3視野記録し、観察した。それぞれのサンプルにおける球状コロニー(sphere colony)及び細胞凝集体(cell aggregate)の数を図2aに、それらの大きさの平均を図2bに示す。
図2a及びbによって示されるとおり、前記単離細胞では明らかな球状コロニーの形成は認められなかったが、前記培養細胞では多数の球状コロニーの形成が認められた。
さらに詳細に試験を行った結果、上記のように成体の皮膚組織から得られる細胞を用いた場合、球状コロニーの頻度が極めて低くなるが、使用する細胞の種類や状態によっては、組織からの単離細胞からでも球状コロニーが形成されることが分かった。
なお、例えば、皮膚由来幹/前駆細胞(Skin−derived precursor cells:SKPs)では、接着培養や回転培養を経なくとも球状コロニーが形成される(図3)が、この場合、成体における細胞頻度が特に低いため効率的に該コロニーを得ることは難しい。
これに対し、本発明においては、単離した細胞に対し回転させながら浮遊培養を行うことによって、球状コロニーを得ることができる。また、特に通常浮遊増殖しない接着性の培養細胞は、接着培養後に回転させながら浮遊培養をすることが好適である。
上記(1)の操作で接着培養を行った細胞をトリプシンEDTAにて回収し、細胞数をカウントした。血清入りα−MEMで再懸濁後、異なる細胞数(1、2、4、8×105cells/8.5mL)で14mLチューブに入れ、37℃、CO25%で1日間ローテーター(1.3rpm)による回転培養(浮遊培養)を行った。各播種密度による球状コロニー(sphere colony)及び細胞凝集体(cell aggregate)の形成数を図4aに、それらの大きさの平均を図4bに示す。なお、細胞のカウントは、次の方法で行った。
細胞懸濁液から100μLを取り、同量のトリパンブルーと混合した。うち10μLをとり血球計算版にて位相差顕微鏡下で4カ所細胞数をカウントした。同様の測定を2回行い、平均値から細胞数を計算した。
さらに詳細に調査したところ、本発明においては、1×103〜1×106cells/mLであれば好適に球状コロニーを得ることができることが分かった。
上記(1)の操作で接着培養を行った細胞をトリプシンEDTAにて回収し、細胞数をカウントした。血清入りα−MEMで再懸濁後、4.7×104cells/mLの細胞播種密度で14mLチューブに入れ、37℃、CO25%で1、2、3日間ローテーター(1.3rpm)による回転培養(浮遊培養)を行った。1〜3の各日数で培養を行った場合、及び、3日間ピペッティングを行いながら培養を行った場合(「3日あり」と表示)における球状コロニー(sphere colony)及び細胞凝集体(cell aggregate)の形成数を図5aに、それらの大きさの平均を図5bに示す。
図5a及びbに示すとおり、ピペッティングを行わない場合、球状コロニーの形成数が少ない、あるいは細胞凝集体が多いなどの問題があった。一方、ピペッティングを行いながら培養を行ったサンプルでは、球状コロニーが著しく増加し、細胞凝集体が少なかった。
したがって、本発明において、接着培養後に3日以上の浮遊培養を行うことが好適である。さらに、浮遊培養中の細胞をピペッティングで懸濁することがより好ましい。
上記(1)の操作で接着培養を行った同数の細胞をSKPs用無血清培地(D−MEM/F12+2%B−27+20ng/mLbFGF+20ng/mLEGF+ペニシリン/ストレプトマイシン/ファンギゾン)、あるいは、血清入りα−MEMで再懸濁し、14mLチューブに入れ、37℃、CO25%で3日間ローテーター(1.3rpm)による回転培養(浮遊培養)を行った(細胞播種密度:4.7×104cells/mL)。無血清培地で浮遊培養を行った場合、及び、血清培地で浮遊培養を行った場合における球状コロニー(sphere colony)及び細胞凝集体(cell aggregate)の形成数を図6aに、それらの大きさの平均を図6bに示す。
図6a及びbに示すとおり、無血清培地で培養した場合、球状コロニーの数は多く、サイズは小さい傾向にあり、血清入りα−MEMで培養した場合には球状コロニーは少なく、サイズは大きくなる傾向にあった。
したがって、接着培養後の回転・浮遊培養は、その培地の選択によって、形成させる球状コロニーの数及び大きさの調整が可能であると示唆された。すなわち、本発明においては、培地調整により所望の治療に応じた球状コロニーの作成が可能である。
上記(1)の操作で得た培養細胞に下記PKH26による蛍光染色を施し、上記(2)の操作により3日間浮遊培養を行って球状コロニーを得た。次いで、回収した球状コロニーに対し、下記ゲルによる3次元培養を行った。このゲル培養は、皮膚結合組織のモデルとして広く使用されているものであり、結合組織への細胞移植として今回用いたものである。
また、上記(1)の操作で得た接着培養細胞に下記PKH26による蛍光染色を施し、懸濁したもの(浮遊培養を行わない)についても同様に3次元ゲル培養を行った。
球状コロニーを用いたサンプルの内、コロニー形成のための浮遊培養を10%FBS培地で行ったサンプル、及び、無血清培地で行ったサンプルに関し、それぞれの3次元ゲル培養10日目の蛍光顕微鏡写真を図7A及びBに示す。また、上記(1)の培養細胞を浮遊培養せずに懸濁したのみのサンプル(接着培養細胞由来)の3次元ゲル培養10日目の蛍光顕微鏡写真を図7Cに示す。図7A〜Cの写真は、同じサンプルを3ないし4視野で撮影したものである。
なお、PKHによる蛍光染色及びマトリゲル培養は、次の方法で行った。
上記(1)の操作で得た培養細胞(2×107細胞)を軽く遠心し、PBSで2回洗浄した。400×gで5分間遠心した後、細胞ペレットに25μL以上の上清が残らないように上清を吸引した。その後、細胞ペレットに1mLのDiluent Cを加えて混合して得た細胞懸濁液に対し、直ちに染色を行った。
前記細胞懸濁液1mLと2×染色液(4μLのPKH26((No.P9691)を1mLのDilutent Cに添加して得た4×10−6Mの色素溶液)1mLをピペッティングで迅速に懸濁し、25℃で2〜5分間インキュベートした。反応停止のために、等量(2mL)の血清又はタンパク質溶液を反応液に添加し、1分間インキュベートした。
400×g、25℃で10分間遠心後、上清を除去し、10mLのPBSを添加して新しいチューブへ移した。続いて400×g、25℃で5分間遠心し、上清を除去し、10mLのPBSを添加する操作を2回以上行い、細胞を洗浄した。
マトリゲルを4℃で溶解し、操作は全て氷上で行った。
接着培養の細胞では、ウェル上に2.0×105ずつ播き、112.5μLの培地に懸濁した。一方、上記(2)の操作で得た球状コロニーを培地ごと遠心し、上清を取り除き、同様に112.5μLの培地に懸濁した。なお、球状コロニーを作製する際の細胞数は、接着培養を懸濁した際の細胞数(2.0×105)と一致させた。
ラウンドチューブを用い、コラーゲンタイプ1 182.25μLに滅菌済み1NNaOH4μLを加えてpHを調整し(赤変する)、M199(×10)20.25μLを加え、コラーゲンを中性にする。成長因子減少型マトリゲル135μLを懸濁し、さらに細胞懸濁液を混ぜた(この操作は、マトリゲルが硬化しないよう手早く行う)。その後、150μLずつ48ウェルディッシュ上に載せ、5%CO2インキュベータにて培養した。
一方、ディッシュで培養し、単離(剥離)された細胞はゲルの中ではあまり増殖が見られなかった。さらに、培養を行うにつれて細胞の数に多少の減少が認められた(図7C)。すなわち、従来のように接着培養後、単離したのみの細胞では細胞源として十分な効果が得られなかった。
図8に示すとおり、血清入りないし無血清培地での浮遊培養によって得た球状コロニーを用いた場合、コロニーの形状をたもったまま生着している部分と、コロニーから周囲へと細胞が増殖している部分とが見られたが、生着している細胞数はいずれも多かった。一方、接着培養由来細胞を用いた場合も細胞は生着しているものの、皮下結合組織に散在しており、生着率は高くなかった。
以上の結果から、本発明の球状コロニー由来細胞は、細胞移植治療に有用である。
Claims (4)
- 下記(A)〜(B)工程を含むことを特徴とする球状コロニーの製造方法。
(A)線維芽細胞を単離して接着培養する工程、
(B)(A)工程後、前記線維芽細胞を培養容器から剥離して分離し、細胞播種密度が1×10 3 〜1×10 6 cells/mlとなるように調整して、1〜3rpmの回転速度で回転・浮遊培養する工程。 - 前記(B)工程において、浮遊培養期間を1〜3日の範囲で調整することを特徴とする請求項1に記載の球状コロニーの製造方法。
- 前記球状コロニーの少なくとも一部が、組織幹/前駆細胞を含むものであることを特徴とする請求項1又は2に記載の球状コロニーの製造方法。
- 前記(B)工程において、浮遊培養中に懸濁操作を行うことを特徴とする請求項1〜3のいずれかに記載の球状コロニーの製造方法。
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