KR20120019898A - 세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법 및 상기의 방법에 의해 제조된 줄기세포 - Google Patents
세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법 및 상기의 방법에 의해 제조된 줄기세포 Download PDFInfo
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Abstract
본 발명은 혈액에 미량으로만 존재하는 혈중 성체줄기세포 및 전구세포들을 혈액 단핵구 세포를 이용하여 효과적으로 배양, 증식시킴으로써 효율적으로 대량 확보하는 기술에 관한 것이다. 본 발명에 따르면, 줄기세포를 혈액에서 미량으로 채취할 수밖에 없었던 한계를 극복할 수 있으며, 줄기세포의 다능성을 쉽게 확보할 수 있다.
Description
본 발명은 혈액에 미량으로만 존재하는 혈중 성체줄기세포 및 전구세포들을 혈액 단핵구 세포를 이용하여 효과적으로 배양, 증식시킴으로써 효율적으로 대량 확보하는 기술에 관한 것이다.
줄기세포(stem cell)는 생물 조직을 구성하는 다양한 세포들로 분화할 수 있는 세포로서 배아, 태아 및 성체의 각 조직에서 얻을 수 있는 분화(differentiation)되기 전 단계의 미분화 세포들을 총칭한다. 여러 가지 줄기세포 중 혈중 성체줄기세포(adult stem cell)이라 함은 골수 유래의 세포로, 인체의 모든 장기와 혈액을 구성하는 모든 세포로 분화할 수 있는 다기능성을 지닌 줄기세포들을 지칭한다.
골수유래 줄기세포는 혈액암 및 림프종 그리고 골수부전등의 질병의 궁극적인 치료수단으로서 여겨지고 있다. 하지만, 골수를 직접 채취해야 하는 어려움이 있어 최근에는 G-CSF 주사를 통해 골수의 줄기세포를 혈액으로 동원하는 방법을 사용하고 있으나, 이 방법도 G-CSF 약물자체의 잠재적인 부작용의 가능성이 있다. 한편, 제대혈에 포함되어 있는 줄기세포들도 활발하게 냉결 보관되어 제대혈 은행에 보관되고 있으나, 그 수가 제한되어 있다. 위와 같은 상황에서 충분한 수의 혈중 성체줄기세포를 확보하기 위한 체외 혈중 성체줄기세포 기술개발이 중요한 사항이다.
기존의 체외 혈중 성체줄기세포 증폭기술은 대부분 인공물질들을 이용하여 골수내 환경을 인공적으로 조성하려는 노력이 대부분이었고 부분적인 성공을 거두었다(Peerani R, Zandstra PW. Enabling stem cell therapies through synthetic stem cell-niche engineering. Journal of Clinical Investigation. 2010;120:60-70.). 혈중 성체줄기세포의 골수 내 환경에는 다양한 지지세포들과의 접촉 이들이 제공하는 사이토카인 그리고 세포외 기질이 포함되어 있기 때문에 이러한 인공물로는 충분히 혈중 성체줄기세포의 증식을 촉진시키는 환경을 제공하기 힘들다.
한편, 기존 성체 조직 유래 줄기세포 연구에서 여러 연구진들이 뇌 조직 혹은 심장 조직 유래의 세포들을 구형으로 배양함으로써 줄기세포의 수를 증폭시키거나 다능성을 유지하는 방법을 성공적으로 개발하였다(Caldwell MA, He X, Wilkie N, et al. Growth factors regulate the survival and fate of cells derived from human neurospheres. Nat Biotech. 2001;19:475-479. 과 Messina E, De Angelis L, Frati G, et al. Isolation and expansion of adult cardiac stem cells from human and murine heart. Circ Res. 2004;95:911-921.).
이에 본 발명은 혈중 성체줄기세포를 체외 배양하고 증폭시키는 기존 방법의 한계점을 극복하고자, 배양법이 용이하면서도 줄기세포의 다능성을 간직할 수 있는 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 배양 방법을 개발하였다.
본 발명은 세포치료 또는 연구를 위해 골수유래 혈중 성체줄기세포를 골수에서 채취하거나 G-CSF를 주사하여 말초혈액으로 동원하는 번거로움과 잠재적인 부작용을 피하고, 제대혈 유래 혈중 성체줄기세포의 제한된 수의 문제를 해결하고자, 체외에서 혈중 성체줄기세포를 대량으로 배양 증식을 하여, 세포 공급의 문제점을 최소화하는 제조방법을 제시하고자 한다. 또한 치료의 효능 측면에서는 본 발명에 의해 대량 증식 후 이식 준비가 된 세포는 혈중 성체줄기세포 뿐 아니라 배양 방법에 따라 다양한 장기의 줄기세포로 분화할 수 있음을 제시하고자 한다.
상기와 같은 과제를 해결하기 위하여, 본 발명은 인간 혈액 유래 혈구 세포괴를 이용하여 혈중 성체줄기세포를 증폭하는 새로운 방법을 제공하는 한편, 대량 배양한 세포의 줄기세포 다능성을 유지 또는 향상시키는 새로운 방법을 제공하고자 한다. 또한, 본 발명은 본 발명을 통해 만들어진 줄기세포에 의한 혈액병 치료가능성을 더불어 제시하고자 한다.
본 발명에 따르면 혈액에 존재하는 단핵구를 응집 배양하여 세포괴를 형성할 경우 세포괴 내부에서 혈중 성체줄기세포가 서식 및 증폭하며 줄기세포의 효능(potency) 극대화가 가능하다. 이는 시험관 내(in vitro) 방식으로 생산이 가능하므로 반복적으로 골수를 채취하거나 G-CSF 주사 후 혈액을 얻어야 하는 번거로움과 때때로 발생할 수 있는 윤리적, 경제적 문제를 해결할 수 있다.
도 1 내지 도 5는 인간의 혈액으로부터 분리한 단핵구 세포를 고밀도 응집 배양하여 인간 혈액 유래 혈구 세포괴(blood-born hematosphere, BBHS)를 배양 및 제작하는 과정을 보여준다.
도 6 내지 도 7은 본 발명에 의하여 배양된 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 내 혈중 성체줄기세포 표지자 양성인 세포의 증가 모습을 보여준다.
도 8 내지 도 9는 본 발명에 의하여 배양된 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 내 혈중 성체줄기세포의 실험관 내(in vitro) 체내(in vivo) 기능성을 보여준다.
도 6 내지 도 7은 본 발명에 의하여 배양된 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 내 혈중 성체줄기세포 표지자 양성인 세포의 증가 모습을 보여준다.
도 8 내지 도 9는 본 발명에 의하여 배양된 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 내 혈중 성체줄기세포의 실험관 내(in vitro) 체내(in vivo) 기능성을 보여준다.
이하, 본 발명의 바람직한 실시예를 첨부된 도면들을 참조하여 상세히 설명한다. 본 발명을 설명함에 있어, 관련된 공지 구성 또는 기능에 대한 구체적인 설명이 본 발명의 요지를 흐릴 수 있다고 판단되는 경우에는 그 상세한 설명은 생략한다. 또한, 이하에서 본 발명의 바람직한 실시예를 설명할 것이나, 본 발명의 기술적 사상은 이에 한정하거나 제한되지 않고 당업자에 의해 변형되어 다양하게 실시될 수 있음은 물론이다.
본 발명을 설명함에 있어서는, 혈중 성체줄기세포(adult stem cells), 인간 혈액 유래 단핵 세포괴(blood-born hematosphere, BBHS), 성체 유래 세포, 분화(differentiation) 등의 몇 가지 용어가 사용되고 있는데, 이에 대하여 먼저 언급하면 다음과 같다.
'혈중 성체줄기세포(adult stem cells)'는 골수에 상주하며 혈액을 순환하는 세포로, 혈액을 구성하는 모든 세포로 분화할 수 있고 적절한 분화자극에 따라 다양한 장기의 전구세포를 분화할 수 있는 다기능성을 지닌 세포들을 지칭한다.
'인간 혈액 유래 단핵 세포괴(blood-born hematosphere, BBHS)'는 혈액 내에 존재하고 있는 단핵구 세포들과 줄기성을 가지고 있는 특정 세포들과의 응집체로서, 3차원적 구조를 형성하여 배반포기의 내부 세포덩어리들과 같은 구형을 형성하고 있는 모습을 지칭한다.
'성체 유래 세포'는 배아세포와 반대되는 용어로, 태어나서 생존하는 성체로부터 유래한 세포를 지칭한다.
'분화(differentiation)'는 세포가 분열 증식하여 성장하는 동안에 서로 구조나 기능이 특수화하는 현상, 즉 생물의 세포, 조직 등이 각각에게 주어진 일을 수행하기 위하여 형태나 기능이 변해가는 것을 말한다. 일반적으로 비교적 단순한 계(系)가 둘 이상의 질적으로 다른 부분계(部分系)로 분리되는 현상이다. 예를 들면, 개체발생에서 처음에 동질적이었던 알 부분 사이에 머리나 몸통 등의 구별이 생기거나 세포에도 근세포라든가 신경세포 등의 구별이 생기는 것과 같이 처음에 거의 동질이었던 어떤 생물계의 부분 사이에 질적인 차이가 생기는 것, 또는 그 결과로서 질적으로 구별할 수 있는 부역 또는 부분계로 나누어져 있는 상태를 분화라고 한다.
도 1 내지 도 5는 인간의 혈액으로부터 분리한 단핵구 세포를 고밀도 응집 배양하여 인간 혈액 유래 혈구 세포괴(blood-born hematosphere, BBHS)를 배양 및 제작하는 과정을 보여준다. 보다 구체적으로, 도 1은 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 배양 및 혈중 성체줄기세포 증폭 과정을, 도 2는 고밀도 배양방법 및 배양시간에 따른 인간 혈액유래 혈구 세포괴의 모양을, 도 3은 제대혈 유래 혈구세포괴 및 G-CSF 동원 혈구세포괴의 모습을, 도 4는 배양 표면 및 세포 밀도에 따른 혈액유로 혈구 세포괴의 숫자 및 크기를, 도 5는 배양시간에 따른 혈액유도 혈구 세포괴의 숫자 및 크기의 시계열 변화를 보여준다.
본 발명에 따른 세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법은, 혈액으로부터 단핵구세포를 분리하는 제1단계; 분리된 세포를 3차원 응집 배양으로 만드는 제2단계; 3차원 구조로 배양된 세포를 증식 및 장기 배양시키는 제3단계 및; 세포괴를 해체하여 단일 세포로 분리하는 제4단계;를 포함하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 바, 이하에서는 도 1 내지 도 5를 참조하여 본 발명에 대하여 단계별로 설명한다.
1) 제1단계 : 혈액으로부터
단핵구세포를
분리하는 단계
혈액 내 다양한 세포를 밀도 구배 원심분리법을 이용하여 단핵구세포만을 분리해 낸다. 구체적으로 혈액 10ml을 실온의 PBS(phosphate buffered saline) 25ml에 희석함으로써 혈액응고를 방지하고 Ficoll-Paque™ PLUS(GE healthcare) 12ml 위에 위의 현탁액 35ml을 조심스럽게 올린다. 이후 실온에서 400xg로 30min 동안 브레이크를 끄고 원심분리한 후 단핵구 층을 조심스럽게 따낸다.
2) 제2단계 : 분리된 세포를 3차원 응집 배양으로 만드는 단계
분리된 세포는 헹굼 과정을 통해서 밀도 구배에 사용된 물질 및 혈액 내 잔류물들을 제거한다. 분리 시작 당시 혈액 부피 10ml당 50ml의 PBS로 세포를 헹군 뒤 침전시키는 과정을 통하여 혈액내 잔류물과 혈소판을 제거하는데 이를 실온에서 브레이크를 끄고 다섯 번 반복한다. 다섯 번의 헹굼 동안 각각 침전을 위한 원심분리속도를 1900-1800-1700-1600-1500rpm으로 순차적으로 감소시킨다. 위의 헹굼 과정이 끝난 세포를 다시 EBM(Lonza)에 serum 없이 또는 5% FBS를 첨가한 배양액 또는 동물유래물질제거 배양액 Stemline II(Sigma-aldrich) 또는 Stempro34 (Invitrogen) 또는 mTeSR？1(STEMCELL Technologies)에 부유한다.
이때 세포의 밀도는 3-5x10^6/ml의 고밀도를 유지해야만 한다. 이보다 더 낮은 밀도에서는 충분한 세포간의 접촉이 이루어지지 않아 세포 응집 및 뒤이은 세포괴 형성이 충분히 이루어지지 않기 때문이다.
위에서 배양액에 부유한 세포를 초저부착 배양접시(Ultra-low attach culture dish)에 배양한다. 이때 배양액 및 세포의 양은 60mm 접시를 기준으로 배양액은 충분한 부유가 가능하도록 6ml, 세포 수는 2-3x10^7개가 되도록 한다. 배양접시를 일반 배양접시나 플라스틱 접시를 사용할 경우 세포괴가 형성되지 않고 세포응집체가 바닥에 부착하게 된다.
이 단계까지 도달하였을 때 혈액 50ml로부터 약 1x10^8의 단핵구 세포를 분리하게 된다.
3) 제3단계 : 3차원 구조로 배양된 세포를 증식 및 장기 배양시키는 단계
제2단계에서 분리하여 응집 배양한 단핵구 세포들은 3일에 걸쳐 부유한 채로 지름 50~100um 사이의 세포괴를 형성하게 된다. 세포괴의 숫자는 0~3일 사이에 증가하며 유지되고 크기는 7일까지 꾸준히 증가한다(도 1). 이 단계까지 도달했을 때 혈액 50ml로부터 총 80000~120000개의 인간 혈액 유래 혈구 세포괴를 얻을 수 있다. 형성된 인간 혈액 유래 혈구 세포괴는 격일로 초기 배양과 동일한 세포 배양액 0.5~1ml을 한 방울씩 첨가하며 30일까지 유지될 수 있음을 확인하였다. 배양접시 안에는 세포괴 안에 포함된 세포와 세포괴에 포함되지 않은 단일 부유 세포들이 섞여있는데, 혈중 성체줄기세포는 세포괴 안에 포함되어 있으며 세포괴 내에서 증식한다.
4) 제4단계 :
세포괴를
해체하여 단일 세포로 분리하는 단계
상기 배양법으로 증폭한 줄기세포 및 전구세포를 분석하거나 치료용으로 사용하기 위해서는 세포괴를 해체하여야 한다. 배양액과 세포괴들을 한 튜브(tube)에 모아 1500rpm으로 10분 동안 침전시킨 후, 0.125%의 트립신-EDTA와 0.5mg/ml의 디스파아제를 포함한 PBS 용액에 37℃에서 5분 동안 노출시킨 후 다시 세포를 침전시켜서 단일세포로 분리한다. 이때 효소로 세포괴의 세포외 기질들을 녹이기 전에는 조심스럽게 세포괴를 다뤄야 한다.
도 6 내지 도 7은 본 발명에 의하여 배양된 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 내 혈중 성체줄기세포 표지자 양성인 세포의 증가 모습을 보여준다. 보다 구체적으로, 도 6은 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 내 다양한 줄기세포 표지자 양성 세포(붉은색)의 증식(녹색-Ki67)을 보여주는 면역형광염색이며, 도 7은 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 내 줄기세포 표지자 양성세포의 시간에 따른 증가를 보이는 유세포 분석 결과에 관한 그래프이다.
한편, 도 8 내지 도 9는 본 발명에 의하여 배양된 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 내 혈중 성체줄기세포의 실험관 내(in vitro) 체내(in vivo) 기능성을 보여준다. 보다 구체적으로, 도 8은 고형 배양액에서의 혈액세포 군집 형성 결과를 보여주며, 도 9는 면역 결핍 생쥐에 인간 혈액 유래 혈구 세포괴 유래 줄기세포를 이식함으로써 생쥐 내 혈액장기에 인간의 혈액세포들이 키메리즘(chimerism)을 보이는 것을 확인한 결과를 보여준다.
이상의 설명은 본 발명의 기술 사상을 예시적으로 설명한 것에 불과한 것으로서, 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자라면 본 발명의 본질적인 특성에서 벗어나지 않는 범위 내에서 다양한 수정, 변경 및 치환이 가능할 것이다. 따라서, 본 발명에 개시된 실시예 및 첨부된 도면들은 본 발명의 기술 사상을 한정하기 위한 것이 아니라 설명하기 위한 것이고, 이러한 실시예 및 첨부된 도면에 의하여 본 발명의 기술 사상의 범위가 한정되는 것은 아니다. 본 발명의 보호 범위는 아래의 청구범위에 의하여 해석되어야 하며, 그와 동등한 범위 내에 있는 모든 기술 사상은 본 발명의 권리범위에 포함되는 것으로 해석되어야 할 것이다.
Claims (6)
- 혈액으로부터 단핵구세포를 분리하는 제1단계;
분리된 세포를 3차원 응집 배양으로 만드는 제2단계;
3차원 구조로 배양된 세포를 증식 및 장기 배양시키는 제3단계 및;
세포괴를 해체하여 단일 세포로 분리하는 제4단계;
를 포함하는 것을 특징으로 하는,
세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법. - 제1항에 있어서,
상기 제1단계는,
혈액 10ml을 실온의 PBS(phosphate buffered saline) 25ml에 희석함으로써 혈액응고를 방지하는 단계;
Ficoll-Paque™ PLUS(GE healthcare) 12ml 위에 상기 현탁액 35ml을 올리는 단계 및;
실온에서 400xg로 30min 동안 브레이크를 끄고 원심분리한 후 단핵구 층을 조심스럽게 따내는 단계;
를 포함하는 것을 특징으로 하는,
세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법. - 제1항에 있어서,
상기 제2단계는,
분리 시작 당시 혈액 부피 10ml당 50ml의 PBS로 세포를 헹군 뒤 침전시키는 과정을 통하여 혈액내 잔류물과 혈소판을 제거하는 단계 및;
상기 헹굼 과정이 끝난 세포를 다시 EBM(Lonza)에 serum 없이 또는 5% FBS를 첨가한 배양액 또는 동물유래물질제거 배양액 Stemline II(Sigma-aldrich) 또는 Stempro34 (Invitrogen) 또는 mTeSR？1(STEMCELL Technologies)에 부유시키는 단계;
를 포함하는 것을 특징으로 하는,
세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법. - 제3항에 있어서,
배양액에 부유한 세포를 초저부착 배양접시(Ultra-low attach culture dish)에서 3-5x10^6/ml의 고밀도를 유지하도록 배양하는 것을 특징으로 하는,
세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법. - 제1항에 있어서,
상기 제4단계는,
배양액과 세포괴들을 한 튜브(tube)에 모아 1500rpm으로 10분 동안 침전시킨 후, 0.125%의 트립신-EDTA와 0.5mg/ml의 디스파아제를 포함한 PBS 용액에 37℃에서 5분 동안 노출시킨 후 다시 세포를 침전시켜서 단일세포로 분리하는 것을 특징으로 하는,
세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법. - 제1항의 세포응집을 이용한 인간 혈액 유래 혈구 세포괴의 유도와 이를 이용한 혈중 성체줄기세포 및 전구세포의 증폭방법에 의해 제조된 줄기세포.
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