JP5644009B2 - 一塩基多型を用いた炎症性疾患の判定方法 - Google Patents
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Description
(1)LBP−32遺伝子のイントロン1の塩基配列の151番目の塩基におけるG/Aの多型
(2)TSBP遺伝子のエキソン25の塩基配列の306番目の塩基におけるA/Gの多型
(3)WAP12遺伝子の3’フランキング領域の塩基配列の1264番目の塩基におけるG/Aの多型
(1)LBP−32遺伝子のイントロン1の塩基配列の151番目の塩基
(2)TSBP遺伝子のエキソン25の塩基配列の306番目の塩基
(3)WAP12遺伝子の3’フランキング領域の塩基配列の1264番目
(1)LBP−32遺伝子のイントロン1の塩基配列の151番目の塩基
(2)TSBP遺伝子のエキソン25の塩基配列の306番目の塩基
(3)WAP12遺伝子の3’フランキング領域の塩基配列の1264番目
(1)LBP−32遺伝子のイントロン1の塩基配列の151番目の塩基におけるG/Aの多型
(2)TSBP遺伝子のエキソン25の塩基配列の306番目の塩基におけるA/Gの多型
(3)WAP12遺伝子の3’フランキング領域の塩基配列の1264番目の塩基におけるG/Aの多型
本発明の方法は、炎症性疾患と関連性を示すLBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子に存在する遺伝子多型、特には一塩基多型(SNPs)を検出することによって、炎症性疾患の発症の有無、あるいは炎症性疾患の発症の可能性を判定する方法である。
(1)LBP−32遺伝子のイントロン1(その塩基配列を配列番号1に示す)の塩基配列の151番目の塩基におけるG/Aの多型;
(2)TSBP遺伝子のエキソン25の塩基配列(その塩基配列を配列番号2に示す)の306番目の塩基におけるA/Gの多型;
(3)WAP12遺伝子の3’フランキング領域の塩基配列(その塩基配列を配列番号3に示す)の1264番目の塩基におけるG/Aの多型;
を挙げることができる。
遺伝子多型の検出の対象は、ゲノムDNAが好ましいが、場合によっては(つまり多型部位及びその隣接領域の配列がゲノムと同一または完全相補的になっている場合)cDNA、又はmRNAを使用することもできる。また、上記対象を採取する試料としては、任意の生物学的試料、例えば血液、骨髄液、精液、腹腔液、尿等の体液;肝臓等の組織細胞;毛髪等の体毛等が挙げられる。ゲノムDNA等は、これらの試料より常法に従い抽出、精製し、調製することができる。
遺伝子多型を検出するにあたっては、まず遺伝子多型を含む部分を増幅する。増幅は、例えばPCR法によって行われるが、他の公知の増幅方法、例えばNASBA法、LCR法、SDA法、LAMP法等で行ってもよい。
プライマーは、前記の一塩基多型部位を含む所定塩基数の配列を増幅するためのプライマーとして機能し得る限り、その配列において1又はそれ以上の置換、欠失、付加を含んでいてもよい。
遺伝子多型の検出は、一の対立遺伝子型に特異的なプローブとのハイブリダイゼーションにより行うことができる。プローブは、必要に応じて、蛍光物質や放射性物質等の適当な手段により標識してもよい。プローブは、前記の一塩基多型部位を含み、被検試料とハイブリダイズし、採用する検出条件下に検出可能な程度の特異性を与えるものである限り何等限定はない。プローブとしては、例えば前記の一塩基多型部位を含む連続する少なくとも10塩基以上、好ましくは10〜100塩基の配列、より好ましくは10〜50塩基の配列、又はそれらの相補配列にハイブリダイズすることのできるオリゴヌクレオチドを用いることができる。例えばインベーダー法、TaqMan−PCR法を用いることができる。また、一塩基多型部位がプローブのほぼ中心部に存在するようにオリゴヌクレオチドを選択するのが好ましい。該オリゴヌクレオチドは、プローブとして機能し得る限り、即ち、目的の対立遺伝子型の配列とハイブリダイズするが、他の対立遺伝子型の配列とはハイブリダイズしない条件下でハイブリダイズする限り、その配列において1又はそれ以上の置換、欠失、付加を含んでいてもよい。また、プローブには、RCA(rolling circle amplification)法による増幅に用いられる一本鎖プローブ(パドロックプローブ)のように、ゲノムDNAとアニールし、環状になることによって上記のブロープの条件を満たすプローブが含まれる。
前記のプライマー又はプローブとしてのオリゴヌクレオチドは、これを含む炎症疾患診断用キットとして提供できる、キットは、上記遺伝子多型の分析法に使用される制限酵素、ポリメラーゼ、ヌクレオシド三リン酸、標識、緩衝液等を含んでいてもよい。
本発明によればまた、前記した一塩基多型を検出することによって、LBP-32、TSBP、又はWAPの発現状態を分析することができる。
例えば、LBP−32遺伝子のイントロン1の塩基配列の151番目の塩基におけるG/Aの多型において、当該塩基がAである場合は、LBP−32の発現量が低いと判断でき、当該塩基がGである場合は、LBP−32の発現量は高いと判断できる。
本発明によれば、候補物質の存在下で細胞内のLBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の発現量を分析し、その発現量を変化させる物質を選択することによって、炎症性疾患の治療薬をスクリーニングすることができる。例えば、候補物質の存在下で細胞内のLBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の発現量を分析し、その発現量を増大又は減少させる物質を選択することができ、特に好ましくはその発現量を増大させる物質を選択することができる。
本発明によればまた、前記した一塩基多型を含むLBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の断片を細胞に導入し、該細胞を培養し、該遺伝子の発現を分析することによってLBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の転写活性を測定することができる。
本発明の好ましい態様によれば、前記LBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の断片の下流にリポーター遺伝子を結合させた転写ユニットを細胞に導入し、該細胞を培養し、リポーター活性を測定することによって該遺伝子の発現を分析する。
本発明においては、前記した一塩基多型を含むLBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の断片を細胞に導入し、LBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の転写活性を阻害又は促進する候補物質の存在下で該細胞を培養し、該遺伝子の発現を分析することによってLBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の転写活性を阻害又は促進する物質をスクリーニングすることできる。
本発明の好ましい態様によれば、前記LBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の断片の下流にリポーター遺伝子を結合させた転写ユニットを細胞に導入し、該細胞を培養し、リポーター活性を測定することによって該遺伝子の発現を分析する。
候補物質としては任意の物質を使用することができる。候補物質の種類は特に限定されず、個々の低分子合成化合物でもよいし、天然物抽出物中に存在する化合物でもよく、あるいは化合物ライブラリー、ファージディスプレーライブラリー、コンビナトリアルライブラリーでもよい。候補物質は、好ましくは低分子化合物であり、低分子化合物の化合物ライブラリーが好ましい。化合物ライブラリーの構築は当業者に公知であり、また市販の化合物ライブラリーを使用することもできる。
本発明においてはまた、前記した一塩基多型を含む遺伝子断片と、LBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の転写制御因子の存在が予想される試料を接触させ、上記断片と転写制御因子との結合を検出することによって、LBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の転写制御因子をスクリーニングすることもできる。前記の一塩基多型を含む遺伝子断片と、LBP-32遺伝子、TSBP遺伝子、又はWAP遺伝子の転写制御因子の存在が予想される物質との結合の検出は、ゲルシフト法(電気泳動移動度シフト解析:electrophoretic mobility shift assay, EMSA)、DNase I フットプリント法等によって行うことがきるが、ゲルシフト法が好ましい。ゲルシフト法では、タンパク質(転写制御因子)が結合すると、分子サイズが大きくなり電気泳動におけるDNAの移動度が低下するので、32Pで標識した遺伝子断片と転写制御因子を混ぜ、ゲル電気泳動にかける。オートラジオグラフィーでDNAの位置を見ると、因子の結合したDNAはゆっくり動くので、通常のバンドよりも遅れて移動するバンドとして検出される。
以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
(1)被験者
心筋梗塞の日本人患者を用いた。明確な心筋梗塞の診断には以下の3つの基準のうちの2つが必要である(i)30分以上持続する中心位の圧迫、痛み又は苦しさの病歴、(ii)少なくとも1つの基準又は2つの胸部誘導における0.1mV以上のST−セグメントの上昇、又は(iii)通常の実験値より2倍以上への血清クレアチンキナーゼ濃度の上昇。コントロール群は日本人の通常者から構成した。全ての患者からは本実験への参加の同意を得た。
大規模相関分析のために、本発明者自身のSNPデータベース (Haga H, 他 (2002) Gene-based SNP discovery as part of the Japanese Millennium Genome Project: identification of 190,562 genetic variations in the human genome. Single-nucleotide polymorphism. J Hum Genet 47:605-610) を使用して、既報の通りSNPのスクリーニングを行った(Ohnishi Y, 他、(2001) A high-throughput SNP typing system for genome-wide association studies. J Hum Genet 46:471-477)。重要な領域にSNPマップを構築するために、参照配列としてLBP-32用にAC010969.11を組み立てることによって参照配列を作成した。Z84814.1, AL034394.2, AL035445.4, AF044083.1及びU89335.1をTSBP用に使用し、AL031663.2, AL121778.12, AL031671.12, AL109656.10 及びAL050348.21をWAP領域用に使用した。次に、SNPを参照配列中に預けた。強い連鎖不均衡を評価するために、SNP部位の190名の心筋梗塞患者と190名のコントロール被験者の遺伝子型を決定した。
重要領域中の遺伝子に基づいた変異を全て同定するために、重要領域に位置することが知られている全ての遺伝子をスクリーニングした。PCRプライマーの設計、PCR実験、DNA抽出、DNAシークエンス、及びSNP同定のプロトコールは既報の通りである(Iida et al. 2001)。重要領域のSNPの遺伝子型は、既報の通り、インベーダーアッセイ又はキャピラリーシークエンサー(ABI3700, Applied Biosystems, CA)を用いたPCR産物の直接シークエンスにより決定した(Iida A, 他、(2001) Catalog of 258 single-nucleotide polymorphisms (SNPs) in genes encoding three organic anion transporters, three organic anion-transporting polypeptides, and three NADH:ubiquinone oxidoreductase flavoproteins. J Hum Genet 46:668-683;及び Ohnishi Y, 他、(2001) A high-throughput SNP typing system for genome-wide association studies. J Hum Genet 46:471-477)。
EM−アルゴリズム(Excoffier L, 他、(1995) Maximum-likelihood estimation of molecular haplotype frequencies in a diploid population. Mol Biol Evol 12: 921-927)によりハプロタイプフェージングを見積もった。ハプロタイプブロックを、以下の改良を除き既報の通り構築した(Daly MJ, 他、(2001) High-resolution haplotype structure in the human genome. Nat Genet 29: 229-232)。先ず、次の解析を簡単にするために、単一の代表的なSNPに絶対的にリンクしている隣接するSNPをクラスター化した。次に、maxN+1,20.5N(式中、Nはブロック中のSNPの数を示す)の共通のハプロタイプのセットが集団の90%以上をカバーするという制約を加えた。曖昧さをなくすために、SNP部位のいずれもがハロタイプ頻度の計算から遺伝子タイピングできなかった試料は除いた。
既報の通り(Yamada R, 他、(2001) Association between a single-nucleotide polymorphism in the promoter of the human interleukin-3 gene and rheumatoid arthritis in Japanese patients, and maximum-likelihood estimation of combinatorial effect that two genetic loci have on susceptibility to the disease. Am J Hum Genet 68:674-685)、相関研究、Hardy-Weinberg均衡、及び連鎖不均衡係数(D')の計算について統計解析を行った。
LBP-32のイントロン1の+5 から+350に対応するDNA断片を、HindIII及びNcoI配列を用いてゲノムDNAを鋳型として使用してPCRによる増幅し、5'-3'方向にpGL3-プロモーターベクターのHindIII 及びNcoI部位にクローニングした。10%牛胎児血清を添加したDMEM培地でHeLa細胞を生育した。次いで、細胞(3X105) に0.5μgの野生型構築物又は変異体構築物及び0.5μgのpRL-TKベクター(トランスフェクション効率用の内部コントロールとして)をFuGeneトランスフェクション試薬(Roche, IN)を用いてトランスフェクションした。24時間後、細胞を回収し、Dual-Luciferase Reporter Assay System (Promega, WI)を用いてルシフェラーゼ活性を測定した。
既報の通り(Andrews and Faller 1991)、HeLa細胞から核抽出物を調製し、32Pで標識した28bpのオリゴヌクレオチド5'-TCCACGCCGCCACGGCCTTTGCCCCTTA-3' (アレルG)(配列番号4); 5'-TCCACGCCGCCACGACCTTTGCCCCTTA-3' (アレルA) (配列番号5)と一緒にインキュベートした。競合実験のために、32P-標識したオリゴヌクレオチドの添加前に、未標識のオリゴヌクレオチド(100倍過剰)と一緒に、抽出した核をプレインキュベートした。タンパク質−DNA複合体は、0.5×Tris-ホウ酸-EDTA緩衝液中で未変性8%ポリアクリルアミドゲル上で分離した。シグナルはオートラジオグラフィーで検出した。
TRIZOL試薬 (GibcoBRL)を用いてHCASMC(BioWhittaker)及びHCAEC(BioWhittaker)から全RNAを単離した。HCASMC及びHCAECの全RNA、及びヒト心臓組織のポリA RNA(Clontech)から、オリゴdTプライマーとSuperscript II逆転写酵素 (Invitrogen)を用いて一本鎖cDNAを調製した。これらのcDNAを鋳型とし、プライマーとして5'-ACTTTGGCTGTCATCCTGAC-3' (配列番号6)及び 5'-CTTGATAGGTCCTGTAGCTC-3' (配列番号7) (TSBP用), 5'-AGCGCGATGACACAGGAGTA-3' (配列番号8)及び5'-CGTTGCTATGGAGACAGTGA-3' (配列番号9)(LBP-32用), 5'-TGGTATCGTGGAAGGACTCAT-3' (配列番号10)及び 5'-GTGGGTGTCGCTGTTGAAGTC-3' (配列番号11) (内部参照としてのGAPDH )を用いて、PCR増幅を行った。
ヒト全長TSBP及びLBP-32 cDNAを以下のPCRプライマーセットを用いてRT-PCRにより作製した。
5'-ATAGCGGCCGCAATGACAGTCTTGGAAATAAC-3' (配列番号12)及び
5'- AGACTCGAGTTACTCTTCCACTTTTTTGTTGTAC-3' (配列番号13);
5'- GAGGCGGCCGCGATGACACAGGAGTACGACAAC-3' (配列番号14)及び
5'- AGAGTCGACGATCTCCGTCAGGGTGAGC-3' (配列番号15);
pTSBP-mycは、NotI-XhoIで切断したTSBP cDNA をpCMV-myc (Clontech, Palo Alto, CA)に挿入することによって構築した。pLBP32-Flagは、NotI-SalIで切断したLBP-32 cDNAをpFLAG-CMV5a (Sigma)に挿入することによって構築した。
HCASMC細胞(5X105)にヒトAoSMC Nucleofector Kit (amaxa biosystems)を用いて5μgのpTSBP-myc又はpLBP32-Flagをトランスフェクションし、コラーゲンコートしたガラススライドに接種した。24時間後、細胞を固定し、抗体で処理した。核をDAPI(Sigma)で染色した。
(1)SNP相関研究
先ず、65,671個のSNPについて、94名の心筋梗塞患者の遺伝子型の頻度と658名の健常人の遺伝子型の頻度とを比較し、その後、0.01未満のP値を有するSNPについてより大きな複製パネルでさらに遺伝子タイピングを行った。表1に示す通り、LTA部位を含む4個のSNP部位が心筋梗塞と有意な相関を示した(P<0.0001)。他の3個の部位は、染色体2p25.1上のLBP-32遺伝子内、染色体6p21上のTSBP遺伝子内、及び染色体20q13上のWAP12遺伝子内にそれぞれ位置した。
これらの重要領域における強い連鎖不均衡(LD)の伸長を見積もるために、これらのSNPについて95名の心筋梗塞患者と95名のコントロール被験者について遺伝子型を決定した。
TAF1B及びLBP-32を含む染色体2p25.1上の157kbに及ぶ11個のSNPの遺伝子型を決定した。LBP-32を含む強い連鎖不均衡の伸長したブロック(図1a)
BTNL2、TSBP及びNOTCH4を含む染色体6p21上の250kbに及ぶ22個のSNPの遺伝子型を決定した。これらのSNPのアレル頻度は30%以上であった。各対のSNPのD’値をプロットして標識した(図1a)。有意なSNPは強い連鎖不均衡の一つのブロック内に存在し、D’はTSBPの上流及び下流で低下している(図2a)。
WAP7-13及びTNNC2を含む染色体20q13 上の376kbに及ぶ15個のSNPの遺伝子型を決定した。WAP8-13を含む強い連鎖不均衡の伸長したブロック(図3a)
LBP−32中の遺伝子の変異を全て同定するために、LBP−32のエクソンの全てを包含する約52kbをスクリーニングした。この領域中に全部で40個の多型を同定し、190名の心筋梗塞患者と190名の健常被験者の遺伝子型を決定した。この遺伝子タイピングの結果、LBP-32イントロン1 +151G>A以外には、有意な相関は認められなかった。
RT-PCRを用いてTSBP及びLBP-32の遺伝子発現を解析した。TSBP転写物は、冠動脈内皮細胞(HCAEC)及び冠動脈平滑筋細胞(HCASMC)で検出された(図4a)。LBP-32転写物はヒト心臓組織及びHCAECで検出された(図4a)。
LBP-32中のSNP(イントロン1 +151G>A)に核因子が結合するかどうかを調べるために、SNP部位を含むオリゴヌクレオチドを用いてゲルシフトアッセイを行った。アレルAを含むオリゴヌクレオチドを用いた場合にのみ、印をつけたシフトのバンドが見られた(図1b)。
LBP-32のイントロン1 +151G>AのSNPがその発現量に影響を及ぼすかどうかを決定するために、ルシフェラーゼ遺伝子転写ユニットの上流の各アレルに対応するゲノムDNA断片を用いて2つのプラスミドを構築した。Aアレルに対応するクローンの相対ルシフェラーゼ活性は、Gアレルに対応するクローンの約半分であった(図1c)。
92,788個のSNPを用いて心筋梗塞について大規模相関研究を行った。65,671個のSNP(70.7%)において94名の心筋梗塞患者の遺伝子型を決定した。これらのSNPは、13,738個の遺伝子をカバーする。これは、今回のスクリーニングが全遺伝子の約43%をカバーしていることを意味する。一次スクリーニングについて0.01未満のp値が得られたスクリーニングしたSNPの96%以上が、他の試料では有意な相関を維持できなかった。この結果は、少数の試料を用いた相関研究は一般の疾患については無意味であることを示している。
Claims (1)
- TSBP遺伝子のエキソン25の塩基配列の306番目の塩基におけるA/Gの多型を検出し、上記塩基がGである場合には、心筋梗塞が発症している、あるいは発症の可能性が高いと判定し、上記塩基がAである場合には、心筋梗塞の発症の可能性が低いと判定する、心筋梗塞の罹患危険性の予想方法。
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