JP5366406B2 - アンジオポエチン様タンパク質4(angptl4)に対するモノクローナル抗体 - Google Patents
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Description
アンジオポエチン様タンパク質4(ANGPTL4)と特異的に結合するモノクローナル抗体を提供する。アンジオポエチン様タンパク質4(ANGPTL4)と特異的に結合するモノクローナル抗体の使用方法を提供する。アンジオポエチン様タンパク質4(ANGPTL4)と特異的に結合するモノクローナル抗体を含有する医薬組成物を提供する。
アンジオポエチン様タンパク質4はいくつかの哺乳動物種の間で保存されている。Geら (2004) J. Biol. Chem. 279:2038-2045。アンジオポエチン様タンパク質4は、N末端のコイルドコイルドメインとC末端のフィブリノーゲン様ドメインを含む。Kimら (2000) Biochem. J. 346:603-610。N末端のコイルドコイルドメインはアンジオポエチン様タンパク質4のオリゴマー化を媒介する。Geら (2004) J. Biol. Chem. 279:2038-2045。オリゴマー化されたアンジオポエチン様タンパク質4がin vivoでタンパク質加水分解プロセッシングを受けると、フィブリノーゲン様ドメインの切断が生じる。Geら (2004) J. Biol. Chem. 279:2038-2045。
ある実施形態においては、ANGPTL4と特異的に結合し、かつANGPTL4の少なくとも1つの活性を中和するモノクローナル抗体を提供する。ある実施形態では、該モノクローナル抗体がマウスモノクローナル抗体である。ある実施形態では、該モノクローナル抗体がヒト化モノクローナル抗体である。ある実施形態では、該モノクローナル抗体がヒトモノクローナル抗体である。ある実施形態では、該モノクローナル抗体がLPL活性を増加させる。ある実施形態では、該モノクローナル抗体がin vivoで少なくとも1つの血清脂質のレベルを低下させる。
本明細書の最後に記載する。
上記の一般的な説明および下記の詳細な説明は、単に典型的かつ説明的なものであり、特許請求の範囲に記載の本発明を制限するものではない。
「ポリペプチド」、「ペプチド」および「タンパク質」という用語は、アミノ酸残基の重合体をさすために、本明細書では互換的に使用される。これらの用語は、天然のアミノ酸を含むアミノ酸重合体だけでなく、1個または複数のアミノ酸残基が対応する天然アミノ酸の人工的な化学類似体であるアミノ酸重合体にも当てはまる。アミノ酸の重合体はどのような長さのものであってもよい。
1) 疎水性: ノルロイシン、Met、Ala、Val、Leu、Ile;
2) 中性親水性: Cys、Ser、Thr、Asn、Gln;
3) 酸性: Asp、Glu;
4) 塩基性: His、Lys、Arg;
5) 鎖の配向に影響を与える残基: Gly、Pro;
6) 芳香族: Trp、Tyr、Phe。
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天然抗体は通常、四量体構造をとる。四量体は通常、2つの同一のポリペプチド鎖対を有し、それぞれの対は1つの軽鎖(特定の実施形態では、約25kDa)と1つの重鎖(特定の実施形態では、約50〜70kDa)とを有する。天然抗体では、重鎖は可変領域、VH、ならびに3つの定常領域、CH1、CH2、およびCH3を有する。VHドメインは重鎖のアミノ末端にあり、CH3ドメインはカルボキシ末端にある。天然抗体では、軽鎖は可変領域、VL、および定常領域、CLを有する。軽鎖の可変領域は軽鎖のアミノ末端にある。天然抗体では、それぞれの軽鎖/重鎖対の可変領域が通常、抗原結合部位を形成する。定常領域は通常、エフェクター機能に関与する。
特定の実施形態では、ANGPTL4に特異的に結合するモノクローナル抗体が提供される。このような特定の実施形態では、モノクローナル抗体は、in vivoおよび/またはin vitroにおいてANGPTL4の少なくとも1つの活性を低下させる中和モノクローナル抗体である。
特定の実施形態では、非ヒト抗体はキメラ化される。特定の実施形態では、ヒトANGPTL4に特異的に結合するマウスモノクローナル抗体がキメラ化される。キメラ抗体を作製するための特定の代表的な方法は、例えば、Morrisonら(1984) Proc. Nat’l Acad. Sci. USA 81:6851-6855; Neubergerら(1984) Nature 312:604-608; Takedaら(1985) Nature 314:452-454; ならびに米国特許第6,075,181号および第5,877,397号において提供される。
特定の実施形態では、ANGPTL4に対する抗体は、IgM、IgD、IgG、IgA、およびIgEより選択される任意のアイソタイプである。特定の実施形態では、ANGPTL4に対する抗体は、IgGアイソタイプである。このような特定の実施形態では、抗体は、サブクラスIgG1、IgG2、IgG3、またはIgG4である。特定の実施形態では、ANGPTL4に対する抗体は、IgMアイソタイプである。このような特定の実施形態では、抗体は、サブクラスIgM1またはIgM2である。特定の実施形態では、ANGPTL4に対する抗体は、IgAアイソタイプである。このような特定の実施形態では、抗体は、サブクラスIgA1またはIgA2である。特定の実施形態では、ANGPTL4に対する抗体は、ヒトカッパ軽鎖およびヒトIgG1またはIgG2重鎖を有する。特定の実施形態では、ANGPTL4に対する抗体は、マウスカッパ軽鎖およびマウスIgG1またはIgG2重鎖を有する。
様々な実施形態において、抗体は、その1つ以上の特性を改変するために修飾される。特定の実施形態では、修飾抗体は、安定性の増加、循環時間の増加、または免疫原性の減少のような、非修飾抗体を越える利点を持ちうる(例えば、米国特許第4,179,337号を参照されたい)。特定の実施形態では、抗体は、それを非タンパク質性成分に結合することによって、修飾される。特定の実施形態では、抗体は、抗体のグリコシル化状態を改変することによって(例えば、抗体上の炭水化物鎖の数、種類、結合、および/または位置を改変することによって)修飾される。特定の実施形態では、抗体はグリコシル化されないように改変される。
1. 特定のハイブリドーマ法
特定の実施形態では、モノクローナル抗体は標準的な方法によって産生される。特定の実施形態では、モノクローナル抗体はハイブリドーマに基づく方法によって産生される。このような特定の方法は当業者に知られている。例えば、Kohlerら(1975) Nature 256:495-497; HarlowおよびLane (1988) Antibodies: A Laboratory Manual Ch. 6 (Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY)を参照されたい。このような特定の実施形態では、マウス、ラット、ハムスター、サル、または他の哺乳動物などの適切な動物が、抗体分泌細胞を作製するために、免疫原によって免疫される。特定の実施形態では、抗体分泌細胞は、リンパ球または脾細胞などのB細胞である。特定の実施形態では、リンパ球(例えば、ヒトリンパ球)は、抗体分泌細胞を作製するためにin vitroで免疫される。例えば、Borrebackら(1988) Proc. Nat’l Acad. Sci. USA 85:3995-3999を参照されたい。
特定の実施形態では、ヒトモノクローナル抗体は、例えば、下記に記載される任意の方法のような、ディスプレイに基づく方法を用いて産生される。
特定の実施形態では、特定の抗原に対する抗体の親和性は、抗体にin vitroでの親和性成熟(すなわち「指向進化」)を受けさせることによって増加する。In vivoでは、自然抗体は、体細胞超変異とそれに続く選択によって親和性成熟を受ける。特定のin vitroでの方法はそのin vivoでの過程を模倣し、それによって、自然抗体の親和性と同等またはそれを上回る親和性を有する抗体の産生を可能にする。
特定の実施形態では、モノクローナル抗体は組換え技術によって産生される。例えば、米国特許第4,816,567号を参照されたい。このような特定の実施形態では、モノクローナル抗体鎖をコードする核酸がクローニングされ、適切な宿主細胞において発現される。例えば、特定の実施形態では、成熟B細胞またはハイブリドーマ細胞などの目的とする抗体を発現している細胞から、標準的な方法を用いてRNAが調製され得る。特定の実施形態では、RNAはその後、標準的な方法を用いてcDNAを作製するために使用され得る。特定の実施形態では、重鎖または軽鎖ポリペプチドをコードするcDNAは、例えばPCRによって、特異的なオリゴヌクレオチドプライマーを用いて増幅される。特定の実施形態では、cDNAは適切な発現ベクターにクローニングされる。特定の実施形態では、発現ベクターはその後、内因的に抗体を産生しない宿主細胞のような適切な宿主細胞に形質転換またはトランスフェクトされる。特定の代表的な宿主細胞としては、E. coli、COS細胞、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、および骨髄腫細胞が挙げられるが、それらに限定されない。重鎖および軽鎖が同一宿主内で共発現する特定の実施形態では、再構成された抗体が単離されうる。
特定の実施形態では、抗体を作製するために、動物を免疫原で免疫する。特定の実施形態では、免疫原はANGPTL4を含むポリペプチドである。特定の実施形態では、免疫原はANGPTL4の断片を含むポリペプチドである。特定の実施形態では、免疫原はANGPTL4のN末端コイルドコイルドメインを含むポリペプチドである。
1. 特定の結合アッセイ
特定の実施形態では、抗体は、ANGPTL4への結合について、抗体の抗原への結合を検出する特定の日常的な方法を用いてスクリーニングされる。例えば、特定の実施形態では、モノクローナル抗体のANGPTL4への結合能力は、ウェスタンブロットなどの標準的な免疫ブロッティング法によってアッセイされる。例えば、Ausubelら(1992) Current Protocols in Molecular Biology Ch. 10.8 (John Wiley & Sons, NY); HarlowおよびLane (1988) Antibodies: A Laboratory Manual (Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY)を参照されたい。特定の実施形態において、このようなアッセイに使用されるANGPTL4は単離されていてもよく、またはタンパク質および/もしくは高分子の複合混合物中に存在してもよい。
様々な実施形態において、モノクローナル抗体が結合するエピトープは、任意の多数のアッセイによって同定される。特定の代表的なアッセイは、例えば、Morris, Methods in Molecular Biology Vol.66: Epitope Mapping Protocols (1996) (Humana Press, Totowa, NJ)に記載される。例えば、エピトープマッピングは、遺伝子断片発現アッセイまたはペプチドに基づくアッセイによって達成されうる。遺伝子断片発現アッセイの特定の実施形態では、例えば、ANGPTL4の断片をコードする核酸が原核細胞において発現され、単離される。このような特定の実施形態では、それらの断片に結合するモノクローナル抗体の能力はその後、例えば、免疫沈降または免疫ブロッティングによって評価される。特定の実施形態では、ANGPTL4の断片をコードする核酸は、in vitroにおいて放射性アミノ酸の存在下で転写され、翻訳される。ANGPTL4の放射性標識断片はその後、モノクローナル抗体への結合について検査される。特定の実施形態では、ANGPTL4の断片はタンパク質分解的断片化によって生成される。特定の実施形態では、エピトープは、ファージまたは酵母の表面に提示されたランダムペプチドのライブラリーを用いて同定される。特定の実施形態では、エピトープは、ANGPTL4の重複合成ペプチド断片のライブラリーを、モノクローナル抗体への結合について検査することにより同定される。特定の実施形態では、エピトープは、下記に記載されるもののような、競合アッセイを用いて同定される。
特定の実施形態では、関心のあるモノクローナル抗体と同一のANGPTL4のエピトープに結合するモノクローナル抗体が同定される。特定の実施形態では、このようなモノクローナル抗体は、例えば、上述のようなエピトープマッピングによって同定される。特定の実施形態では、このようなモノクローナル抗体は、通常の競合アッセイによって同定される。例えば、HarlowおよびLane (1988) Antibodies: A Laboratory Manual ch. 14 (Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY)を参照されたい。非限定的な例となる競合アッセイでは、ANGPTL4またはその断片はマルチウェルプレートのウェル上に固定化される。特定のこのような実施形態では、関心のあるモノクローナル抗体は、標準的な方法によって蛍光標識(特定の実施形態では、フルオレセインイソチオシアネート)で標識される。特定のこのような実施形態では、関心のある標識モノクローナル抗体と標識されていないテストモノクローナル抗体との混合物がウェルに添加される。特定のこのような実施形態では、各ウェルの蛍光が定量化され、標識されていないテストモノクローナル抗体が関心のある標識モノクローナル抗体の結合を遮断する程度を測定する。特定の実施形態において、互いの結合を50%以上遮断する場合、モノクローナル抗体はエピトープを共有すると見なされる。代表的な競合アッセイもまた、例えば、Morris, Methods in Molecular Biology Vol.66: Epitope Mapping Protocols (1996) (Humana Press, Totowa, NJ)に記載される。非限定的な例となる競合アッセイは、下記の第VI部のOにおいて提供される。
特定の実施形態では、モノクローナル抗体は、中和抗体、すなわち、in vivoおよび/またはin vitroにおいてANGPTL4の活性を低下させるものについてスクリーニングされる。特定の実施形態において、ANGPTL4の活性とは、LPLを阻害するANGPTL4の能力である。従って、特定の実施形態では、中和抗体は、ANGPTL4の存在下でのLPL活性を増加させるその能力によって同定される。このような特定の実施形態では、中和抗体は、対照抗体と比較して少なくとも約20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%、または95%まで LPL活性を増加させる。in vivoおよびin vitroにおいてLPL活性を測定する特定の代表的なアッセイは、それぞれ下記の第VI部のDおよび第VI部のIにおいて提供される。
特定の実施形態では、中和抗体は治療抗体として使用されうる。治療抗体として使用される特定の代表的な中和抗体としては、キメラ抗体、ヒト化抗体、およびヒト抗体が挙げられるがそれらに限定されない。当業者は特定の抗体の治療薬としての使用に精通している。例えば、1980年代半ば以来、1ダース以上もの抗体が、治療薬としての使用のためにFDAによって認可されている。例えば、Hudsonら(2003) Nature Med. 9:129-134; Gura (2002) Nature 417:584-586; Brekkeら(2002) Nature Reviews 2:52-62を参照されたい。特定のFDAに認可された抗体としては、様々な癌、炎症、およびウイルス感染を治療するために使用されるもの、ならびに移植片拒絶反応を防ぐために使用されるものが挙げられる。例えば、Gura (2002) Nature 417:584-586; Brekkeら(2002) Nature Reviews 2:52-62を参照されたい。更に、1ダース以上もの抗体が現在臨床試験中である。例えば、Brekkeら(2002) Nature Reviews 2:52-62を参照されたい。
特定の実施形態では、ANGPTL4に対する抗体はin vivoまたはin vitroにおけるANGPTL4の存在を検出するために使用される。特定の実施形態では、in vivoにおけるANGPTL4のレベルは、脂質代謝障害などの病状と相関し、従ってその病状の診断を可能にする。ANGPTL4に対する抗体によって診断されうる特定の典型的な病状は、上記に記載されている。
特定の実施形態では、ANGPTL4に結合する薬剤のスクリーニング方法が提供される。特定の実施形態では、スクリーニング方法は、ANGPTL4を適切な条件下で1つ以上の薬剤候補に暴露すること、およびANGPTL4と該1つ以上の薬剤候補との結合を評価することを含む。特定の実施形態では、スクリーニング方法は、競合的結合アッセイにおけるANGPTL4に対する抗体の使用を含む。このような特定の実施形態では、ANGPTL4に対する抗体およびANGPTL4を含有する第一結合混合物が用いられる。第一結合混合物におけるANGPTL4と抗体との間の結合量(M0)が測定される。抗体、ANGPTL4、およびスクリーニングされるべき薬剤を含有する第二結合混合物もまた用いられる。第二結合混合物におけるANGPTL4と抗体との間の結合量(M1)が測定される。第一結合混合物における結合量は、例えば、M1/M0比の計算によって第二結合混合物における結合量と比較される。第二結合混合物におけるANGPTL4に対する抗体の結合量が第一結合混合物におけるANGPTL4に対する抗体の結合量より少ない場合、薬剤はANGPTL4に結合できると考えられる。特定の実施形態では、ANGPTL4に結合する薬剤は、抗体のANGPTL4への結合を少なくとも約10%(すなわち、M1/M0<0.9)、少なくとも約30%(すなわち、M1/M0<0.7)、少なくとも約50%(すなわち、M1/M0<0.5)、少なくとも約70%(すなわち、M1/M0<0.3)、少なくとも約80%(すなわち、M1/M0<0.2)、少なくとも約90%(すなわち、M1/M0<0.1)、または少なくとも約95%(すなわち、M1/M0<0.05)減少させる。
特定の実施形態では、ANGPTL4をコードする核酸の発現を減少させる単離核酸が提供される。特定の実施形態では、ANGPTL4をコードする核酸はマウスANGPTL4をコードする。特定の実施形態では、ANGPTL4をコードする核酸はヒトANGPTL4をコードする。特定の実施形態では、単離核酸はアンチセンス核酸である。このような特定の実施形態では、アンチセンス核酸は、RNaseHに基づく機構によって標的mRNAの分解を促進する一本鎖DNA分子である。特定の実施形態では、アンチセンス核酸は約8〜30ヌクレオチドの長さ(両端値の間のすべての点を含む)のオリゴヌクレオチドである。特定の実施形態では、アンチセンス核酸は約18〜26ヌクレオチドの長さのオリゴヌクレオチドである。
A. マウス飼育および食餌研究
マウス研究は、連邦政府の指針に沿って行った。下に示すように、マウスを12時間明/12時間暗の一定周期にて24℃で飼育し、水および齧歯類用の固形飼料(chow)(脂質由来カロリー22%) (製品番号5001; Purina, St. Louis, MO)または高脂質食餌(HFD)(脂質由来カロリー60%) (製品番号D12492; Research Diets, New Brunswick, NJ.)を自由に摂取できるようにした。HFDを与えるマウスには、その食餌を4〜5週齢以降に与えた。以下に「絶食状態」にあると呼ぶマウスには、飼料を16時間与えなかった。
1. マウスANGPTL4の過剰発現
全長マウスANGPTL4(配列番号1)をコードするcDNAをアデノウイルスベクターpFADのAd E1-欠失領域に挿入して、該cDNAをサイトメガロウイスルプロモーターの制御下に配置した。Cell Biology: A Laboratory Handbook 第1巻, pp. 500-512 (J.E. Celis編, 第2版 1998)中のHittら,“Construction and propagation of human adenovirus vectors”を参照されたい。得られた構築物Ad5-mAngptl-4Tを、CHO細胞に感染させるために使用した。対照として、β-ガラクトシダーゼをコードするcDNAをアデノウイルスベクターpFADのAd E1-欠失領域に挿入し、該cDNAをサイトメガロウイスルプロモーターの制御下に配置した。得られた構築物Ad5-β-galもCHO細胞に感染させるために使用した。マウスANGPTL4 cDNAまたはβ-ガラクトシダーゼcDNAの発現は、感染CHO細胞の抽出物のウェスタンブロットにより確認した。
ヒトANGPTL4のマウスに対する影響を調べるために、ヒトANGPTL4を野生型マウスで過剰発現させた。全長ヒトANGPTL4 (配列番号2)をコードするcDNAを、アデノウイルスベクターpFADのAd E1-欠失領域に挿入して、該cDNAをサイトメガロウイスルプロモーターの制御下に配置した。得られた構築物Ad5-hAngptl4T、または対照構築物Ad5-β-galを5 x 1010 vpにてC57BL/6Jマウスの尾静脈に注射した。血清中のトリグリセリドおよびコレステロールレベルを注射後4日目に測定した。図4および図5に示すように、ヒトANGPTL4は、対照構築物と比べて、絶食時血清トリグリセリドおよびコレステロールレベルを著しく増加させた。この調査において、ヒトANGPTL4はマウスではグルコースレベルに対して何ら影響を及ぼさなかった(データ未掲載)。こうした結果は、ヒトANGPTL4が、マウスANGPTL4と同様に、マウスにおいて絶食時血清脂質レベルを増加させることができる、ということを実証する。
ANGPTL4の欠失が、ANGPTL4の過剰発現と比べて血清脂質レベルに対して逆の影響を及ぼすかを調べるために(すなわちANGPTL4の欠失が血清脂質レベルを減少させるかを調べるために)、Angptl4をマウスから「ノックアウト」させた。マウスにおいてAngptl4をノックアウトするために、Angptl4遺伝子座にレトロウイルスベクターが挿入されたES細胞クローンをC57BL/6-Tyrc-Brd 宿主胚盤胞内に注入した。Zambrowiczら(1998) Nature 392:608-611を参照されたい。キメラマウスを作製し、C57BL/6-Tyrc-Brdマウスへと育てた。得られたAngptl4+/-子孫を近親交配させてAngptl4-/-マウスを作製した。ウイルスの組込みおよび単一コピーの内在性遺伝子を検出するために、それぞれネオマイシンホスホトランスフェラーゼ遺伝子断片およびマウスCsk遺伝子(MMU05247)のエクソン1を含む断片をプローブとして使用して定量的ドットブロット(Bio-Rad, Hercules, CA)を行うことにより、尾部DNAの遺伝子型を決定した。
摂食状態および絶食状態の野生型およびノックアウトマウス由来の脂肪組織(精巣上体の脂肪パッド組織)中の内在性LPL活性を検査した。Kinematicaホモジェナイザーを用いて、氷冷ホモジェナイズ用バッファー(0.025 M NH3 (pH 8.2)、BSA 1 mg/ml、5 mM EDTA、ヘパリン5 IU/ml、およびプロテアーゼ阻害剤カクテル)中で、組織サンプル(0.3〜1.0 g)をホモジェナイズした。3,000 g、4℃で10分の遠心分離後に上清を回収した。
HFDは肝臓脂肪症(脂肪肝)と関連している。Angptl4欠失がHFD-誘発型肝臓脂肪症からの保護を示すかを調べるために、局在化陽子磁気共鳴分光学(MRS)を用いて、HFDおよび標準食餌を与えた野生型マウスおよびノックアウトマウス由来の肝臓中の脂質レベルを測定した。肝脂肪濃度と脂肪浸潤の程度の両方を評価した。
高レベルの肝臓および筋肉細胞内脂質含有率はインスリン非感受性と関連することが知られている。さらに、HFDはグルコース不耐性と関連することが知られている。Angptl4欠失がこうした影響から保護するかを検討するために、野生型マウスおよびノックアウトマウスにおけるグルコースおよびインスリンの血清レベルを調べた。
マウスANGPTL4の過剰発現がAngptl4ノックアウトマウスのいずれかの表現型をレスキュー(rescue)することができるかを調べるために、Ad5-mAngptl-4T構築物(上述、第VI部のB.1)を5 x 1010 vpでノックアウトマウスの尾静脈内に注射した。対照として、Ad5-β-gal構築物(上述、第VI部のB.1)を5 x 1010 vpでノックアウトマウスの尾静脈内に注射した。注射から3日後に、Ad5-mAngptl-4T構築物を注射したノックアウトマウスは、対照構築物を注射したノックアウトマウスよりも著しく高いレベルの絶食時血清トリグリセリドおよびコレステロールを示した。図12および13を参照されたい。その上、Ad5-mAngptl-4T構築物を注射したノックアウトマウスのトリグリセリドおよびコレステロールのレベルは、Ad5-mAngptl-4T構築物を注射した野生型マウスにおけるそれらと同程度であった。図12および13を、図2および3と比較されたい。こうした結果は、マウスANGPTL4の過剰発現が、Angptl4ノックアウトマウスの低減された血清脂質レベルを反転させる、ということを実証した。
組換えANGPTL4を発現させるために、CHO細胞に1.5 x 1011 vpの組換えアデノウイルスAd5-mAngptl-4T(上述、第VI部のB.1)を感染させた。16〜24時間後に、培地を無血清培地(EX-CELL 325-PF CHO培地, 14335, JRH, Lenexa, KS)と交換した。24〜36時間ごとに、条件培地(conditioned medium)を回収し、新鮮な無血清培地と交換し、合計5回の回収を行った。
マウスANGPTL4がLPL活性に及ぼす影響を、in vitroアッセイを用いて調べた。LPL活性は、以下のように、基質グリセロール-トリ[9,10(n)-3H]オレエートから放出されるオレイン酸の量から測定した(Shimizugawaら(2002) J. Biol. Chem. 277:33742-33748の方法に基づく)。
マウスANGPTL4に対するモノクローナル抗体を生成させるために、上の第VI部のHに説明したように製造した精製マウスANGPTL4を用いて、Angptl4ノックアウトマウスを初回免疫(prime)し、その後2〜3週ごとに追加免疫(boost)した。初回免疫および追加免疫にはそれぞれ完全および不完全フロイントアジュバントも使用した。2〜3回の追加免疫後に、ELISAを用いて血清力価をモニタリングした。適度に高い力価が達成されたら、脾細胞を免疫マウスから回収し、PEG1500を融合物質として用いて骨髄腫細胞(P3/NSI/1-Ag4-1)と融合させた。得られた細胞融合生成物をハイブリドーマ培地に希釈し、次いで96ウェル型組織培養プレートに播種した。1日後、ハイブリドーマ培養物にHAT培地を添加した。必要に応じて培地を3または4日おきに交換した。10〜14日の選択と培養後に、マウスANGPTL4を抗原として使用するELISAによりハイブリドーマをスクリーニングした。14D12、15F2、2G12、10E4、1A4、5A6、14D2、および6G11と命名した9種のモノクローナル抗体が、マウスANGPTL4への特異的結合を示した。
ELISAを用いてマウスANGPTL4への結合について抗体をスクリーニングした。96ウェル型Nunc Maxi-Sorp ImmunoPlatesTM (Nunc #446612, Roskilde, Denmark)に、コーティングバッファー(BupHTM 炭酸-重炭酸バッファー, Pierce #28382, Rockford, IL)中の2.5μg/mlのANGPTL4溶液を50μl/ウェルで添加して、一晩4℃でコーティングを行った。コーティングバッファーを除去し、250μl/ウェルのブロッキングバッファー(1%BlockerTM BSA, Pierce #37525, PBS中)を室温で2時間添加することによりプレートをブロッキングした。50μlのハイブリドーマ上清(未希釈またはブロッキングバッファー中に希釈)または単離した抗ANGPTL4抗体(未希釈またはブロッキングバッファー中に希釈)をウェルに添加し、室温で少なくとも1時間インキュベートした。PBS/Tween 20を用いてウェルを4回洗浄した。100μlの希釈(1:5,000〜1:10,000)HRP-コンジュゲート ヤギ抗マウスIgG(Pierce #31446)をウェルに添加し37℃で1時間インキュベートした。PBS/Tween 20を用いてウェルを6回洗浄した。50μlのTMB(テトラメチルベンジジン)溶液(ImmunoPure(登録商標)TMB基質キット, Pierce #34021)を5〜10分、ウェルに添加することにより抗ANGPTL4抗体を検出した。プレートは、マイクロプレートリーダー(Molecular Devices, Sunnyvale, CA)を用いて分光光度法的に450 nmで読み取った。
モノクローナル抗体を、上の第VI部のIで説明したLPL活性のin vitroアッセイにおいてANGPTL4活性を中和する能力について評価した。別々のLPL活性アッセイを、25 nMマウスANGPTL4および約125 nMのそれぞれの上記9種のモノクローナル抗体の存在下で行った。結果を図15に示す。各抗体の中和活性は、LPL活性を増大させるその抗体の能力、すなわちANGPTL4による阻害からLPLを「レスキュー(rescue)」する能力により実証される。レスキュー活性は、ANGPTL4のみの存在下でのLPL活性と比べたときの、ANGPTL4および抗ANGPTL4抗体の両方の存在下でのLPL活性の増大パーセンテージとして図15に表されている。9種の抗体のうちの5種、4A8、14D12、15F2、2G12、および10E4は、LPL活性の増大をもたらし、このことは、これらの抗体がANGPTL4活性を中和することによりLPL活性をレスキューしたことを示す。特に、抗体4A8、14D12、および15F2は50%より多くLPL活性をレスキューした。9種の抗体のうちの4種、1A4、5A6、14D2、および6G11は、LPLをより一層阻害するようであり、このことは、これらの抗体がANGPTL4活性を増強することができることを示す。
14D12、15F2、4A8、および6G11のアイソタイプを標準法により決定した。4A8と6G11はIgG1アイソタイプのものであり、また、14D12と15F2はIgG2aアイソタイプのものである。(下の第VI部のPの表2の第3および4列を参照されたい)。
モノクローナル抗体14D12、15F2、および6G11を、マウスANGPTL4のN末端コイルドコイルドメイン(配列番号1のアミノ酸21〜174由来)およびマウスANGPTL4のC末端フィブリノーゲン様ドメイン(配列番号1のアミノ酸174〜410由来)への結合についてELISAにより試験した。14D12および15F2はマウスANGPTL4のN末端コイルドコイルドメインに特異的に結合した。6G11はマウスANGPTL4のC末端フィブリノーゲン様ドメインに特異的に結合した。
モノクローナル抗体14D12、15F2、および4A8が同じエピトープに結合するかを調べるために、Luminex(登録商標) 100マルチプレックス技術およびLuminex(登録商標) 100TM分析器(Luminex Corporation, Austin, TX)を用いてエピトープ・ビニングを実施した。Jiaら(2004) J. Immunol. Methods 288:91-98を参照されたい。エピトープ・ビニングは、典型的には抗体サンドイッチ型競合アッセイを利用し、該アッセイでは「参照」抗体に結合した抗原への結合について「プローブ」抗体を試験する。もしプローブ抗体が参照抗体と同じエピトープに結合するならば、そのエピトープは参照抗体によりマスキングされていることから、該プローブ抗体は抗原に効率的には結合しない。
in vitro中和活性を有する抗体をマウスに投与して、かかる抗体がAngptl4ノックアウトマウスの表現型を再現することができるかを調べた。抗体をin vivo投与するために、下の表2に示すように、標準食餌を与えたマウス(「chowを与えた」マウス)またはHFD-誘発型DIOを有するマウスに、30μgのモノクローナル抗体を体重1グラム当たり10μlの容量で注射した。抗KLH抗体を対照抗体として投与した。トリグリセリド、コレステロール、およびFFAの絶食時血清レベルを4日後に測定した。
マウスANGPTL4のアミノ末端ドメインの一部を有するN-mANGPTL4を用いて、ヒトおよびマウスANGPTL4の両方と交差反応するモノクローナル抗体をAngptl4ノックアウトマウスにおいて誘発させた。
抗体14D12、19C9、18G3、18A2、9C10、および90B4、ならびに対照としての抗KLHを、次のようにして、マウス中で特定のin vivo活性について試験した。30mg/kg体重の抗体をC57アルビノ野生型マウスに腹腔内注射した。各抗体を5匹のマウスで試験した。4日後に絶食時血清トリグリセリドおよび総コレステロールレベルを測定した。この実験における抗体注射マウスの絶食時血清トリグリセリドレベルを図31に示す。抗体14D12および90B4は、絶食時血清トリグリセリドを、統計的に有意に、それぞれ73.6%および54.9%減少させた。この実験における抗体注射マウスの絶食時総コレステロールレベルを図32に示す。抗体14D12および90B4は、絶食時総コレステロールを、統計的に有意に、それぞれ25.2%および22.2%減少させた。
N-mANGPTL4およびN-hANGPTL4のそれぞれに対する、抗体90B4、15F2、および14D12の結合親和性をELISAにより測定した。N-hANGPTL4を、上の実施例QにおいてN-mANGPTL4について記載したように、細菌から発現させ精製した。ヒトANGPTL4のアミノ酸24〜175をコードするポリヌクレオチド配列を、発現ベクターpET22b(+)(このベクターはN末端pelBリーダー配列およびC末端Hisタグをコードする)にクローニングした。タンパク質の翻訳とpelB配列の11アミノ酸以外の全アミノ酸の除去を経て、N-hANGPTL4は配列番号11に示す配列を有する。その配列はpelB配列由来の11アミノ酸、それに続くヒトANGPTL4のアミノ酸24〜175(表6で下線を施した)、それに続く2アミノ酸リンカーおよびHisタグを有する。ウェル当たり50μlの0.25μg/mlタンパク質(N-mANGPTL4またはN-hANGPTL4)を用いてプレートをコーティングした以外は、上の実施例Kに記載のようにELISAを実施した。0μg/ml、0.08μg/ml、0.4μg/ml、2μg/ml、および10μg/ml抗体における結合を測定した。この実験の結果を図33に示す。90B4は、15F2または14D12のいずれよりも、N-mANGPTL4(パネルA)およびN-hANGPTL4(パネルB)の両方に対する親和性が大きかった。15F2は14D12よりもN-mANGPTL4に対する親和性が大きかったが、N-hANGPTL4に対しては14D12と同程度の親和性であった。
HFDを与えた5匹のC57アルビノ野生型マウスに、下に記載する特定濃度の14D12抗体または抗KLH抗体のいずれかを皮下注射した。4日および7日後に、時間0と比べた総トリグリセリドの減少パーセントを決定した。この実験において試験した抗体濃度は0.3 mg/kg 体重、1 mg/kg体重、3 mg/kg体重、10 mg/kg体重、30 mg/kg体重、および90 mg/kg体重であった。この実験の結果を図34に示す。10 mg/kg 体重、30 mg/kg 体重、および90 mg/kg体重の投与は、4日後に、血清トリグリセリドの統計的に有意な減少をもたらした。図34のパネルAを参照されたい。この効果は持続し、7日後にも統計的に有意なままであった。図34のパネルBを参照されたい。
14D12の薬力学を決定するために、C57アルビノマウスに30μg/g体重の14D12を注射し、次いで下の表4に示す特定の時間間隔後に該マウスの絶食時血清トリグリセリドおよび総コレステロールレベルを測定した。マウスには通常の(「chow」)食餌を与えた。各3匹のマウスからなる合計8グループを実験に使用した。3匹のマウスからなる1グループには抗体を注射せず、ベースラインとして用いた。残りの7グループのマウスには14D12注射を施した。次のスケジュールに従い、マウスに注射を施し、絶食させ、採血した:
特定のモノクローナル抗体が、ヒトANGPTL4を過剰発現するマウスにおいて絶食時血清トリグリセリドおよび総コレステロールを減少させることができるか否かを調べるために、Ad5-hAngptl4T(上の実施例B.2に記載)を1 x 109 IU/マウスにてC57アルビノマウスの尾静脈に注射した。それぞれが5匹のマウスからなる合計4グループにAd5-hAngptl4Tを注射した。4グループのそれぞれに、ウイルス感染と同時に、30 mg/kgの抗体も注射した。注射した抗体は、抗KLH、14D12、15F2、および90B4であった。4日後に、マウスの絶食時血清トリグリセリドおよび総コレステロールレベルを測定した。
LDLrノックアウトマウスは、高い血清コレステロールレベルを有することが見出されており、特に高脂質食餌を与えたときはそうである。例えばIshibashiら(1993) J. Clin. Invest. 92 :883-93を参照のこと。ANGPTL4に対する特定のモノクローナル抗体がLDLrノックアウトマウスの血清コレステロールおよびトリグリセリドレベルを減少させることができるかを調べるために、次の実験を行った。それぞれ15匹の12〜13週齢LDLrノックアウトマウス(Jackson Laboratories、系統B6.129S7-Ldlrtm1Her/J)からなる3グループに、ビヒクルのみ、30 mg/kg 抗KLH、または30 mg/kg 14D12を腹腔内注射した。各マウスに週1回の注射を15週間にわたり施した。15匹のマウスからなる第4のグループを未処置のままとした。すべてのマウスには最初の注射の日から開始して、Clinton食餌(Research Diets、製品番号D12107)を与えた。
ApoEノックアウトマウスは自然発症高コレステロール血症を発症することが見出されている。例えば、Piedrahitaら(1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89(10):4471-5; およびZhangら(1992) Science 258(5081):468-71を参照のこと。ANGPTL4に対する特定のモノクローナル抗体がApoEノックアウトマウスの血清コレステロールおよびトリグリセリドレベルを減少させることができるか否かを調べるために、次の実験を行った。それぞれ14週齢のApoEノックアウトマウス(Taconic Aminal Models、系統B6.129P2-Apoetm1Unc N11)15匹からなる3グループに、ビヒクルのみ、30 mg/kgの抗KLH、または30 mg/kgの14D12を腹腔内注射した。各マウスに週1回の注射を15週間にわたり施した。15匹のマウスからなる第4のグループを未処置のままとした。すべてのマウスに最初の注射の日から開始してWestern食餌(Research Diets, 製品番号D12079B)を与えた。
db/dbマウスは肥満および糖尿病の表現型を示すことが見出されている。例えばChenら(1996) Cell 84 :491-495;およびChua Jrら(1996) Science 271 :994-996を参照のこと。ANGPTL4に対する特定のモノクローナル抗体の、肥満および糖尿病パラメーターに対する影響を検討するために、次の実験を行った。
Gillilandら(1996) Tissue Antigens 47: 1-20に記載の方法の改良法を用いて、14D12、15F2、および90B4の重鎖および軽鎖可変領域をクローニングし配列決定した。マウス遺伝的バックグラウンドに適当なRACEプライマーおよびPCRプライマーを使用するように該方法を改変した。図47には、コンセンサス配列(配列番号15)を含めて、重鎖可変領域のアライメントを示す。さらに、各抗体同士の重鎖可変領域の相同性パーセントをその図中に示す。14D12の重鎖可変領域(配列番号12)および15F2の重鎖可変領域(配列番号13)は99%同一であり、これに対して90B4の重鎖可変領域(配列番号14)は14D12および15F2の重鎖可変領域と40%同一であるに過ぎない。
モノクローナル抗体15F2、14D12、および90B4についてのエピトープを同定するために、次の実験を行った。マウスANGPTL4の種々の断片をin vitroで翻訳させた。断片の位置を表5に示し、断片の配列を表6に示す(配列番号40〜48)。表5中の開始アミノ酸および終了アミノ酸は、配列番号50に示されるmANGPTL4のアミノ酸配列を参照している。
SMARTselectionTM法(Dharmacon, Inc., Lafayette, CO)を用いてsiRNA用のオリゴヌクレオチドを同定した。この方法は、標的mRNAを強力かつ特異的に分解する蓋然性が高いsiRNAを同定するための多重成分アルゴリズムを使用する。この方法を用いて、siRNAとして使用するための4種の二本鎖RNAオリゴヌクレオチドを同定した。この4種のオリゴヌクレオチドの配列を配列番号5〜8に示す。
Claims (30)
- ANGPTL4と特異的に結合し、
配列番号2の残基21から残基169までの領域内にあるエピトープと結合し、且つ、
ANGPTL4の存在下in vitroでリポタンパク質リパーゼ(LPL)活性を高める活性、及び、少なくとも1つの血清脂質のレベルをin vivoで下げる活性、から選択される少なくとも1つの活性を有する、
モノクローナル抗体。 - 前記モノクローナル抗体がマウスモノクローナル抗体である、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体がヒト化モノクローナル抗体である、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体がヒトモノクローナル抗体である、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が配列番号1または配列番号50の残基21から残基174までの領域内にあるエピトープと結合する、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が重鎖と軽鎖を含み、該重鎖が配列番号12の配列を含む可変領域を含み、該軽鎖が配列番号16の配列を含む可変領域を含む、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が重鎖と軽鎖を含み、該重鎖が配列番号14の配列を含む可変領域を含み、該軽鎖が配列番号18の配列を含む可変領域を含む、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が、重鎖と軽鎖を含み、該重鎖が配列番号12の配列を含む可変領域を含み、該軽鎖が配列番号16の配列を含む可変領域を含むモノクローナル抗体と同じエピトープに特異的に結合する、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が、重鎖と軽鎖を含み、該重鎖が配列番号13の配列を含む可変領域を含み、該軽鎖が配列番号17の配列を含む可変領域を含むモノクローナル抗体と同じエピトープに特異的に結合する、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が抗体フラグメントである、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体がscFvフラグメントである、請求項10に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体がFabフラグメントである、請求項10に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体がF(ab’)2フラグメントである、請求項10に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体がFab’フラグメントである、請求項10に記載のモノクローナル抗体。
- 配列番号13に示すアミノ酸配列を含む重鎖及び配列番号17に示すアミノ酸配列を含む軽鎖を含む、請求項1に記載の抗体。
- 前記抗体が配列番号40のペプチドと結合する、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記抗体が配列番号41のペプチドと結合する、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記抗体が配列番号43のペプチドと結合する、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記抗体が配列番号41のペプチドと結合し、かつ配列番号43のペプチドと結合する、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が、重鎖と軽鎖を含み、該重鎖が配列番号21に示すCDR1、配列番号22に示すCDR2、および配列番号23に示すCDR3を含み、該軽鎖が配列番号30に示すCDR1、配列番号31に示すCDR2、および配列番号32に示すCDR3を含む、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が、重鎖と軽鎖を含み、該重鎖が配列番号24に示すCDR1、配列番号25に示すCDR2、および配列番号26に示すCDR3を含み、該軽鎖が配列番号33に示すCDR1、配列番号34に示すCDR2、および配列番号35に示すCDR3を含む、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が、重鎖と軽鎖を含み、該重鎖が配列番号27に示すCDR1、配列番号28に示すCDR2、および配列番号29に示すCDR3を含み、該軽鎖が配列番号36に示すCDR1、配列番号37に示すCDR2、および配列番号38に示すCDR3を含む、請求項1に記載のモノクローナル抗体。
- 請求項1〜22のいずれか1項に記載のモノクローナル抗体を含有する医薬組成物。
- 脂質代謝障害の治療のための、請求項23に記載の医薬組成物。
- 1以上の血清脂質レベルを低下させるための、請求項23に記載の医薬組成物。
- 高トリグリセリド血症の治療のための、請求項23に記載の医薬組成物。
- 高コレステロール血症の治療のための、請求項23に記載の医薬組成物。
- 肥満の治療のための、請求項23に記載の医薬組成物。
- 糖尿病の治療のための、請求項23に記載の医薬組成物。
- 虚血性心疾患の治療のための、請求項23に記載の医薬組成物。
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