JP5299964B2 - Ｄｎａ３’末端の修飾基除去用酵素試薬 - Google Patents
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Description
本発明は、ＤＮＡポリメラーゼからなるＤＮＡ３’末端の修飾基除去用酵素試薬及び該試薬の使用法に関する。
DNAポリメラーゼは、１本鎖の核酸を鋳型として、それに相補のDNAを合成する酵素であり、現在まで、アミノ酸配列の共通性から大きく６つのファミリーに分類されている。
DNAポリメラーゼは、DNAシークエンス反応、遺伝子増幅反応、DNAの放射活性標識、変異遺伝子の試験管内合成等に有用であり、遺伝子等を扱う生物、医療、食品等の分野において欠かせないものとなっている。
その中で、一般的に用いられている酵素試薬としては、大腸菌DNAポリメラーゼIや、好熱菌サーマス・アクアティクスＤＮＡポリメラーゼ（Taq DNAポリメラーゼ）に代表されるファミリーＡのＤＮＡポリメラーゼ、あるいはＴ４ファージＤＮＡポリメラーゼに代表されるファミリーＢのＤＮＡポリメラーゼが挙げられる。このほか、現在まで種々のＤＮＡポリメラーゼが細菌、動植物から発見されているが、これらはその多くが常温生物由来にＤＮＡポリメラーゼであるため耐熱性が乏しく、９４℃以上での熱変性反応を含むＰＣＲ反応等には不適当であった。一方、上記好熱菌サーマス・アクアティクスＤＮＡポリメラーゼ（Taq DNAポリメラーゼ）は耐熱性ではあるが、3’-5’校正エキソヌクレアーゼ活性を欠くため、ＰＣＲ反応においてエラーを誘発しやすく、ＰＣＲ反応等に不向きであった。
DNAポリメラーゼは、DNAシークエンス反応、遺伝子増幅反応、DNAの放射活性標識、変異遺伝子の試験管内合成等に有用であり、遺伝子等を扱う生物、医療、食品等の分野において欠かせないものとなっている。
その中で、一般的に用いられている酵素試薬としては、大腸菌DNAポリメラーゼIや、好熱菌サーマス・アクアティクスＤＮＡポリメラーゼ（Taq DNAポリメラーゼ）に代表されるファミリーＡのＤＮＡポリメラーゼ、あるいはＴ４ファージＤＮＡポリメラーゼに代表されるファミリーＢのＤＮＡポリメラーゼが挙げられる。このほか、現在まで種々のＤＮＡポリメラーゼが細菌、動植物から発見されているが、これらはその多くが常温生物由来にＤＮＡポリメラーゼであるため耐熱性が乏しく、９４℃以上での熱変性反応を含むＰＣＲ反応等には不適当であった。一方、上記好熱菌サーマス・アクアティクスＤＮＡポリメラーゼ（Taq DNAポリメラーゼ）は耐熱性ではあるが、3’-5’校正エキソヌクレアーゼ活性を欠くため、ＰＣＲ反応においてエラーを誘発しやすく、ＰＣＲ反応等に不向きであった。
一方、このような状況下、本出願人は、超好熱細菌パイロコッカス・ホリコシ由来の、耐熱性で、かつ3’-5’校正エキソヌクレアーゼ活性を有するＤＮＡポリメラーゼとして、７７５アミノ酸残基からなるＤＮＡポリメラーゼ（特許文献１参照）、同じく小サブユニットと、インテイン配列が除去されたヘテロダイマーＤＮＡポリメラーゼ（特許文献２参照）、及び該ヘテロダイマーＤＮＡポリメラーゼの変異体（特許文献３参照）を提案している。
このほか、ＤＮＡポリメラーゼの中には、5’-3校正エキソヌクレアーゼ作用あるいは損傷乗り越え修復機能を有するものも知られている。
しかし、ＤＮＡポリメラーゼの有する作用、機能、性質についての全容は未だ明らかになってはおらず、未知の作用、機能を有する可能性は否定できない。
このほか、ＤＮＡポリメラーゼの中には、5’-3校正エキソヌクレアーゼ作用あるいは損傷乗り越え修復機能を有するものも知られている。
しかし、ＤＮＡポリメラーゼの有する作用、機能、性質についての全容は未だ明らかになってはおらず、未知の作用、機能を有する可能性は否定できない。
本発明の課題は、ＤＮＡポリメラーゼ、特に耐熱性のＤＮＡポリメラーゼの未知の機能を探索、発見し、該機能を生かしたＤＮＡポリメラーゼの新たな用途、あるいはその利用法を提供する点にある。
本発明者は、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、ＤＮＡポリメラーゼが、ＤNA3’末端のデオキシリボース-3’-リン酸エステルを切断する機能を有すること、および、該切断機能は、該エステルのリン酸基に結合する置換基の種類によらず、その基質特異性が低いことを見いだし、新たなDNAポリメラーゼの用途及びその利用法を創出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下のとおりである。
すなわち、本発明は以下のとおりである。
（１）DNAポリメラーゼからなる、DNA3’末端ヌクレオチド3’ 位に結合した遊離または修飾リン酸エステルの切断用酵素試薬。
（２）修飾リン酸エステルの切断後のDNA3’ 末端から、テンプレートDNA配列に対応する相補鎖伸長作用を有することを特徴とする、上記（１）に記載の酵素試薬。
（３）DNAポリメラーゼが耐熱性であることを特徴とする、上記（１）または（２）に記載の酵素試薬。
（４）DNAポリメラーゼが、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するか、あるいは該アミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつDNAポリメラーゼ活性を有する酵素であることを特徴とする、上記（３）に記載の酵素試薬。
（５）DNAポリメラーゼが、小サブユニットと、大サブユニットとからなるDNAポリメラーゼ活性を有するヘテロダイマー酵素であって、
小サブユニットが配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であるか、あるいは該アミノ酸配列において1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であり、大サブユニットが配列番号５に示されるアミノ酸配列中インテイン配列によりコードされるアミノ酸配列(955番目〜1120番目)を除去した配列を有するタンパク質であるか、あるいは該配列において1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、上記（３）に記載の酵素試薬。
（６）小サブユニットが、さらに、配列番号９に示すアミノ酸配列において、少なくとも１６７〜２００番目の領域が削除されたアミノ酸配列を有するか、あるいは該削除されたアミノ酸配列において、1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、上記（５）に記載の酵素試薬。
（７）修飾リン酸エステルが、リン酸残基を介して蛍光色素、ビオチンまたは酵素と結合していることを特徴とする、上記（１）〜（６）のいずれかに記載の酵素試薬。
（８）修飾リン酸エステルが、損傷ヌクレオチド由来のリン酸エステルであることを特徴とする上記（１）〜（６）のいずれかに記載の酵素試薬。
（９）テンプレートDNA配列に該配列と一部相補の配列を有するプライマーがハイブリダイズしたDNAに、DNAポリメラーゼを作用させて、プライマー配列の3’末端伸長反応を行い、２本鎖DNAを調製する方法であって、プライマーDNA配列の3’末端ヌクレオチドにおけるデオキシリボース3’ 位水酸基が、遊離または修飾リン酸によりエステル化されていることを特徴とする、上記方法。
（１０）増幅対象のDNAを、アッパー及びローワープライマー並びにDNAポリメラーゼを用いるPCR法により増幅する方法であって、少なくとも一方のプライマーの3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がりン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して標識化合物と結合していることを特徴とする、上記方法。
（１１）標識化合物が、蛍光化合物、ビオチン、または酵素であることを特徴とする、上記（１０）に記載の方法。
（１２）測定対象のDNAを、アッパー及びローワープライマーDNA並びにDNAポリメラーゼを用いるリアルタイムPCR法により定量する方法であって、少なくとも一方のプライマーDNAの3’末端ヌクレオチドの3’水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して蛍光色素が結合しており、5’末端がクエンチャーにより標識されていることを特徴とする上記（１１）に記載の方法。
（１３）古代生物試料中の、DNAの3’末端ヌクレオチドの3’水酸基が損傷に伴うヌクレオチド分解によって生じた置換基により修飾されたリン酸または遊離リン酸によりエステル化されて、相補鎖の一方が中断した部分を有する損傷遺伝子ＤＮＡの修復法であって、該損傷遺伝子ＤＮＡに対し、デネイチャー及びアニーリングを行った後、ＤＮＡポリメラーゼを作用させて、修飾リン酸エステルの切断及び相補鎖伸長反応を行うことを特徴とする、古代生物試料中の損傷遺伝子の修復方法。
（１４）DNAポリメラーゼが耐熱性であることを特徴とする、上記（９）〜（１３）のいずれかに記載の方法。
（１５）DNAポリメラーゼが、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するか、あるいは該アミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつDNAポリメラーゼ活性を有する酵素であることを特徴とする、上記（１４）に記載の方法。
（１６）DNAポリメラーゼが、小サブユニットと、大サブユニットとからなるDNAポリメラーゼ活性を有するヘテロダイマー酵素であって、
小サブユニットが配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であるか、あるいは該アミノ酸配列において1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含むタンパク質であり、大サブユニットが配列番号５に示されるアミノ酸配列中インテイン配列によりコードされるアミノ酸配列(955番目〜1120番目)を除去した配列を有するタンパク質であるか、あるいは該配列において1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、上記（１４）に記載の方法。
（１７）小サブユニットが、さらに、配列番号９に示すアミノ酸配列において、少なくとも１６７〜２００番目の領域が削除されたアミノ酸配列を有するか、あるいは該削除されたアミノ酸配列において、1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、上記（１４）に記載の方法。
（１８）増幅対象のDNAの各末端側配列と相補の配列を有する、アッパー及びローワープライマーDNA、およびＤＮＡポリメラーゼを少なくとも含む、PCR用試薬キットであって、少なくとも一方のプライマーDNAの3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がりン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して標識化合物と結合していることを特徴とする、上記試薬キット。
（１９）測定対象のDNAの各末端側配列と相補の配列を有するアッパー及びローワープライマーDNA、およびＤＮＡポリメラーゼを少なくとも含む、DNAのリアルタイムPCR定量用試薬キットであって、一方のプライマーDNAが、その3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がりン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して蛍光色素と結合しており、5’末端がクエンチャーで標識されていることを特徴とする、上記試薬キット。
（２）修飾リン酸エステルの切断後のDNA3’ 末端から、テンプレートDNA配列に対応する相補鎖伸長作用を有することを特徴とする、上記（１）に記載の酵素試薬。
（３）DNAポリメラーゼが耐熱性であることを特徴とする、上記（１）または（２）に記載の酵素試薬。
（４）DNAポリメラーゼが、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するか、あるいは該アミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつDNAポリメラーゼ活性を有する酵素であることを特徴とする、上記（３）に記載の酵素試薬。
（５）DNAポリメラーゼが、小サブユニットと、大サブユニットとからなるDNAポリメラーゼ活性を有するヘテロダイマー酵素であって、
小サブユニットが配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であるか、あるいは該アミノ酸配列において1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であり、大サブユニットが配列番号５に示されるアミノ酸配列中インテイン配列によりコードされるアミノ酸配列(955番目〜1120番目)を除去した配列を有するタンパク質であるか、あるいは該配列において1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、上記（３）に記載の酵素試薬。
（６）小サブユニットが、さらに、配列番号９に示すアミノ酸配列において、少なくとも１６７〜２００番目の領域が削除されたアミノ酸配列を有するか、あるいは該削除されたアミノ酸配列において、1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、上記（５）に記載の酵素試薬。
（７）修飾リン酸エステルが、リン酸残基を介して蛍光色素、ビオチンまたは酵素と結合していることを特徴とする、上記（１）〜（６）のいずれかに記載の酵素試薬。
（８）修飾リン酸エステルが、損傷ヌクレオチド由来のリン酸エステルであることを特徴とする上記（１）〜（６）のいずれかに記載の酵素試薬。
（９）テンプレートDNA配列に該配列と一部相補の配列を有するプライマーがハイブリダイズしたDNAに、DNAポリメラーゼを作用させて、プライマー配列の3’末端伸長反応を行い、２本鎖DNAを調製する方法であって、プライマーDNA配列の3’末端ヌクレオチドにおけるデオキシリボース3’ 位水酸基が、遊離または修飾リン酸によりエステル化されていることを特徴とする、上記方法。
（１０）増幅対象のDNAを、アッパー及びローワープライマー並びにDNAポリメラーゼを用いるPCR法により増幅する方法であって、少なくとも一方のプライマーの3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がりン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して標識化合物と結合していることを特徴とする、上記方法。
（１１）標識化合物が、蛍光化合物、ビオチン、または酵素であることを特徴とする、上記（１０）に記載の方法。
（１２）測定対象のDNAを、アッパー及びローワープライマーDNA並びにDNAポリメラーゼを用いるリアルタイムPCR法により定量する方法であって、少なくとも一方のプライマーDNAの3’末端ヌクレオチドの3’水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して蛍光色素が結合しており、5’末端がクエンチャーにより標識されていることを特徴とする上記（１１）に記載の方法。
（１３）古代生物試料中の、DNAの3’末端ヌクレオチドの3’水酸基が損傷に伴うヌクレオチド分解によって生じた置換基により修飾されたリン酸または遊離リン酸によりエステル化されて、相補鎖の一方が中断した部分を有する損傷遺伝子ＤＮＡの修復法であって、該損傷遺伝子ＤＮＡに対し、デネイチャー及びアニーリングを行った後、ＤＮＡポリメラーゼを作用させて、修飾リン酸エステルの切断及び相補鎖伸長反応を行うことを特徴とする、古代生物試料中の損傷遺伝子の修復方法。
（１４）DNAポリメラーゼが耐熱性であることを特徴とする、上記（９）〜（１３）のいずれかに記載の方法。
（１５）DNAポリメラーゼが、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するか、あるいは該アミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつDNAポリメラーゼ活性を有する酵素であることを特徴とする、上記（１４）に記載の方法。
（１６）DNAポリメラーゼが、小サブユニットと、大サブユニットとからなるDNAポリメラーゼ活性を有するヘテロダイマー酵素であって、
小サブユニットが配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であるか、あるいは該アミノ酸配列において1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含むタンパク質であり、大サブユニットが配列番号５に示されるアミノ酸配列中インテイン配列によりコードされるアミノ酸配列(955番目〜1120番目)を除去した配列を有するタンパク質であるか、あるいは該配列において1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、上記（１４）に記載の方法。
（１７）小サブユニットが、さらに、配列番号９に示すアミノ酸配列において、少なくとも１６７〜２００番目の領域が削除されたアミノ酸配列を有するか、あるいは該削除されたアミノ酸配列において、1個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、上記（１４）に記載の方法。
（１８）増幅対象のDNAの各末端側配列と相補の配列を有する、アッパー及びローワープライマーDNA、およびＤＮＡポリメラーゼを少なくとも含む、PCR用試薬キットであって、少なくとも一方のプライマーDNAの3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がりン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して標識化合物と結合していることを特徴とする、上記試薬キット。
（１９）測定対象のDNAの各末端側配列と相補の配列を有するアッパー及びローワープライマーDNA、およびＤＮＡポリメラーゼを少なくとも含む、DNAのリアルタイムPCR定量用試薬キットであって、一方のプライマーDNAが、その3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がりン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して蛍光色素と結合しており、5’末端がクエンチャーで標識されていることを特徴とする、上記試薬キット。
本発明は、DNAポリメラーゼが、ＤNA3’末端ヌクレオチド3’ 位に結合した遊離または修飾リン酸エステルを切断し、その3’末端ヌクレオチド3’ 位に結合した遊離または修飾リン酸エステルを有するDNAが、テンプレートDNAとハイブリダイズしたとき該配列に対応する相補鎖伸長作用を有し、しかも、その基質特性は極めて低いことを見いだしてなされたものであり、DNA3’末端に蛍光、ビオチン、酵素等の標識リン酸エステル基あるいは他の修飾リン酸エステル基を有していても、そのほとんどを切除し、3’末端からの相補鎖伸長が可能となる。このようなDNAポリメラーゼの基質特異性の低い修飾リン酸エステルの切断活性およびその後の相補鎖伸長活性を利用することにより、例えばPCRによる遺伝子増幅法あるいは古代生物の損傷遺伝子の修復、増幅が極めて簡便に行えるようになる。
例えば、PCRにおいて、蛍光色素等で標識リンエステルを3’末端に有するDNAをプライマーとして使用すれば、該プライマーはプローブを兼用させることできるから、従来のようにプライマーとプローブを別途合成する必要がなくなるほか、実験操作も簡便化する。特にパイロコッカス・ホリコシ由来のポリメラーゼB、ポリメラーゼDおよびポリメラーゼD変異体は、耐熱性が高く、3’−5’校正エキソヌクレアーゼ活性を有し、しかも、3’末端リン酸エステル基の切断活性は高く、PCRによる遺伝子増幅、リアルタイムPCRにおける上記プローブ兼用プライマーを使用する手法において、特に有利に使用できる。
本発明は、DNAポリメラーゼからなる、DNA3’末端ヌクレオチド3’ 位に結合した遊離または修飾リン酸エステルの切断用酵素試薬に関し、DNAポリメラーゼに見いだされたホスホエステラーゼ活性により、DNAの3’末端におけるヌクレオチドのデオキシリボース3’の水酸基が修飾リン酸基によりエステル化されたエステル部分を加水分解するために用いるものである。
DNAポリメラーゼによる修飾リン酸エステルの加水分解は、テンプレートDNAの非存在化でも進行するが、テンプレートとなるDNAと上記修飾リン酸エステルを３’末端に有するDNAとがハイブリダイズしている場合、DNAポリメラーゼは、基質となるヌクレオシド三リン酸（ｄＮＴＰ）の存在下、修飾燐酸エステルを切断し、３’末端からテンプレートDNAの配列に対応する相補鎖を伸長し２本鎖DNAを形成する。
DNAポリメラーゼによる修飾リン酸エステルの加水分解は、テンプレートDNAの非存在化でも進行するが、テンプレートとなるDNAと上記修飾リン酸エステルを３’末端に有するDNAとがハイブリダイズしている場合、DNAポリメラーゼは、基質となるヌクレオシド三リン酸（ｄＮＴＰ）の存在下、修飾燐酸エステルを切断し、３’末端からテンプレートDNAの配列に対応する相補鎖を伸長し２本鎖DNAを形成する。
このようなDNAポリメラーゼとしては、例えばKlenow FragmentあるいはT4 DNA polymerase等を挙げることができるが、その中でも好熱性古細菌である、パイロコッカス・ホリコシ由来の耐熱性DNAポリメラーゼが、他のＤＮＡポリメラーゼと比べて修飾エステル基の加水分解が特に高く、また修飾基の種類によらず基質特異性が広い点で好ましく用いられる。
このようなパイロコッカス・ホリコシ由来のDNAポリメラーゼとしては、本出願人の出願に係る以下の（ａ）〜（ｃ）のものが挙げられる。
（ａ）配列番号１のアミノ酸配列（その遺伝子塩基配列は配列番号２に示される）からなるタンパク質中のインテインを除去した、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼ（特許第３０１５８７号公報）。このＤＮＡポリメラーゼについて、以下ＰｈＰｏｌＢという。
（ｂ）小サブユニットと、大サブユニットとからなるヘテロダイマー酵素であって、小サブユニットが配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であり、大サブユニットが配列番号５に示されるアミノ酸配列中インテイン配列によりコードされるアミノ酸配列(955番目〜1120番目)を除去した配列（配列番号７）を有するタンパク質である、ＤＮＡポリメラーゼ（特許第３８２９１７４号公報）。このＤＮＡポリメラーゼについて、以下、ＰｈＰｏｌＤという。
（ｃ）上記（ｂ）のＤＮＡポリメラーゼにおける、小サブユニットのアミノ酸配列（配列番号９）において、さらに、少なくとも１６７〜２００番目の領域であって、3’−5’エキソヌクレアーゼ活性抑制領域が削除されたアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼが挙げられ、変異体の種類としては、小サブユットのＮ末端から１−２００番目のアミノ酸を欠損した変異体（配列番号１１）、小サブユットのＮ末端から１−６５番目のアミノ酸を欠損した変異体、小サブユットのＮ末端から１６７−２００番目のアミノ酸を欠損した変異体、あるいは小サブユットのＮ末端から１４０−２００番目のアミノ酸を欠損した変異体が挙げられ、これらはいずれも3’−5’エキソヌクレアーゼ活性が増大している（特開２００７−２２８８９７号公報）。このＤＮＡポリメラーゼについて、以下 ＰｈＰｏｌＤ変異体という。
（ａ）配列番号１のアミノ酸配列（その遺伝子塩基配列は配列番号２に示される）からなるタンパク質中のインテインを除去した、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼ（特許第３０１５８７号公報）。このＤＮＡポリメラーゼについて、以下ＰｈＰｏｌＢという。
（ｂ）小サブユニットと、大サブユニットとからなるヘテロダイマー酵素であって、小サブユニットが配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であり、大サブユニットが配列番号５に示されるアミノ酸配列中インテイン配列によりコードされるアミノ酸配列(955番目〜1120番目)を除去した配列（配列番号７）を有するタンパク質である、ＤＮＡポリメラーゼ（特許第３８２９１７４号公報）。このＤＮＡポリメラーゼについて、以下、ＰｈＰｏｌＤという。
（ｃ）上記（ｂ）のＤＮＡポリメラーゼにおける、小サブユニットのアミノ酸配列（配列番号９）において、さらに、少なくとも１６７〜２００番目の領域であって、3’−5’エキソヌクレアーゼ活性抑制領域が削除されたアミノ酸配列を有するＤＮＡポリメラーゼが挙げられ、変異体の種類としては、小サブユットのＮ末端から１−２００番目のアミノ酸を欠損した変異体（配列番号１１）、小サブユットのＮ末端から１−６５番目のアミノ酸を欠損した変異体、小サブユットのＮ末端から１６７−２００番目のアミノ酸を欠損した変異体、あるいは小サブユットのＮ末端から１４０−２００番目のアミノ酸を欠損した変異体が挙げられ、これらはいずれも3’−5’エキソヌクレアーゼ活性が増大している（特開２００７−２２８８９７号公報）。このＤＮＡポリメラーゼについて、以下 ＰｈＰｏｌＤ変異体という。
一方、上記ＰｏｌＢの遺伝子の塩基配列は、配列番号４に示され、ＰｏｌＤの大サブユニット及び小サブユニットの塩基配列、およびインテイン配列除去後の大サブユニットの遺伝子の塩基配列は、それぞれ順に配列番号６、１０，８に示される。また、ＰｏｌＤ変異体における、3’−5’エキソヌクレアーゼ活性抑制領域として１〜２００番目が削除された小サブユニットのアミノ酸配列及びその遺伝子の塩基配列は、それぞれ配列番号１２に示される。
また、これらＰｏｌＢ、ｐｏｌＤ及びｐｏｌＤ変異体は、ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する限り、本発明においては、上記（ａ）〜（ｃ）のＤＮＡポリメラーゼあるいは各サブユニットのアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有するものも包含する。
これらＤＮＡポリメラーゼのＤＮＡ3’末端修飾リン酸エステルの切断活性を比較すると、ＰｈＰｏｌＤ，あるいはＰｈｐｏｌＤ変異体がより高い活性を有する。
また、これらＰｏｌＢ、ｐｏｌＤ及びｐｏｌＤ変異体は、ＤＮＡポリメラーゼ活性を有する限り、本発明においては、上記（ａ）〜（ｃ）のＤＮＡポリメラーゼあるいは各サブユニットのアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有するものも包含する。
これらＤＮＡポリメラーゼのＤＮＡ3’末端修飾リン酸エステルの切断活性を比較すると、ＰｈＰｏｌＤ，あるいはＰｈｐｏｌＤ変異体がより高い活性を有する。
ＰｈＰｏｌＢ、ＰｈＰｏｌＤ、ＰｈＰｏｌＤ変異体は、上記ＰｈＰｏｌＢ遺伝子の塩基配列に基づき合成したプライマー、あるいはＰｈＰｏｌＤ、ＰｈＰｏｌＤの小サブユニット、大サブユニットの各遺伝子の塩基配列及び残存させる領域の塩基配列を基に合成したプライマーを使用し、パイロコッカス・ホリコシのゲノム由来のＤＮＡを鋳型としてＰＣＲ増幅することにより得た各遺伝子を用いて、大腸菌等の宿主を形質転換し、該形質転換体からたやすく得ることが可能である。なお、ＰｈＰｏｌＤ、ＰｈＰｏｌＤ変異体の場合においては、小サブユニット遺伝子と大サブユニットを形質転換体において共発現することが好ましい。この製法の詳細は上記公報において明らかにされている。
本発明のＤＮＡポリメラーゼの利用法について以下説明する。
ＤＮＡポリメラーゼのホスホエステラーゼ活性の基質特異性は非常に広く、遊離または様々な修飾基で修飾されたリン酸エステルを切断する。例えば、蛍光色素、ビオチン、酵素等で標識されたリン酸エステルであっても切断除去可能であり、標識が除去されたＤＮＡ3’末端から、テンプレートＤＮＡに対応する相補鎖を伸長することができる。
このような特性を生かした利用法として、プラーマーにプローブ機能を兼用させたＰＣＲ法が挙げられ、この方法は以下に例示される。
ＤＮＡポリメラーゼのホスホエステラーゼ活性の基質特異性は非常に広く、遊離または様々な修飾基で修飾されたリン酸エステルを切断する。例えば、蛍光色素、ビオチン、酵素等で標識されたリン酸エステルであっても切断除去可能であり、標識が除去されたＤＮＡ3’末端から、テンプレートＤＮＡに対応する相補鎖を伸長することができる。
このような特性を生かした利用法として、プラーマーにプローブ機能を兼用させたＰＣＲ法が挙げられ、この方法は以下に例示される。
目的遺伝子の探査、増幅（図１）
１）まず、目的とする遺伝子に対応する一対のプライマーＤＮＡを合成し、少なくともそのうちの一方の3’末端のデオキシリボース3’水酸基にリン酸基を介して上記蛍光色素等の標識化合物が結合した、3’末端標識プライマーを作成する。
２）この3’末端標識プライマーはプローブ機能を有し、例えば、候補遺伝子試料が固定化されたPCR用ウエルに、この3’末端標識プライマーを加え、ハイブリダイズしなかった3’末端標識プライマーを洗浄除去し、3’末端標識プライマーがハイブリダイズした候補遺伝子試料を蛍光検出し、選別する。
１）まず、目的とする遺伝子に対応する一対のプライマーＤＮＡを合成し、少なくともそのうちの一方の3’末端のデオキシリボース3’水酸基にリン酸基を介して上記蛍光色素等の標識化合物が結合した、3’末端標識プライマーを作成する。
２）この3’末端標識プライマーはプローブ機能を有し、例えば、候補遺伝子試料が固定化されたPCR用ウエルに、この3’末端標識プライマーを加え、ハイブリダイズしなかった3’末端標識プライマーを洗浄除去し、3’末端標識プライマーがハイブリダイズした候補遺伝子試料を蛍光検出し、選別する。
３）次いで、使用した3’末端標識プライマーが、目的遺伝子の一方端部に対応するもののみの場合には、選別されたウエルに、他方の端部に対応するプライマーを加え、また、目的遺伝子の両端部に対応する一対の3’末端標識プライマーを使用した場合には、そのまま、DNAポリメラーゼ及びｄNTP試薬を加え、PCR反応を行う。このとき3’末端標識プライマーの標識は、DNAポリメラーゼのホスホエステラーゼ作用により除去されて相補鎖が伸長され、目的遺伝子は増幅される。
４）増幅された目的遺伝子は、ベクターに導入し、クローニングを行う。
この方法においては、PCR増幅用プライマーがプローブ機能を有しているため、従来のように、プローブとプライマーの作成、使用を別々に行うことなく、PCRを極めて簡便に行うことが可能となる。
４）増幅された目的遺伝子は、ベクターに導入し、クローニングを行う。
この方法においては、PCR増幅用プライマーがプローブ機能を有しているため、従来のように、プローブとプライマーの作成、使用を別々に行うことなく、PCRを極めて簡便に行うことが可能となる。
リアルタイムPCR（図２）
測定対象の遺伝子に対応する一対のプライマーDNAを合成し、一方のプライマーDNAの3’末端のデオキシリボース3’水酸基にリン酸基を介して上記蛍光色素等の標識化合物が結合させ、5’末端にＢＨＱ−１等のクエンチャーを結合させて、両末端標識プライマーを作成し、測定対象遺伝子含有試料に該標識プライマー及びもう一方のプライマー、並びにｄNTPおよびDNAポリメラーゼを加えて、PCR反応を行う。
両末端標識プライマーは、測定対象遺伝子とハイブリダイズするが、このハイブリダイズした時点では、3’末端の蛍光標識は、クエンチャーにより励起光を照射しても蛍光の発生は抑制されている。しかし、ＰＣＲ反応において、DNAポリメラーゼのホスホエステラーゼ活性により、蛍光標識は除去されて、クエンチャーによる蛍光抑制の解除により、蛍光を発生するようになる。
測定対象の遺伝子に対応する一対のプライマーDNAを合成し、一方のプライマーDNAの3’末端のデオキシリボース3’水酸基にリン酸基を介して上記蛍光色素等の標識化合物が結合させ、5’末端にＢＨＱ−１等のクエンチャーを結合させて、両末端標識プライマーを作成し、測定対象遺伝子含有試料に該標識プライマー及びもう一方のプライマー、並びにｄNTPおよびDNAポリメラーゼを加えて、PCR反応を行う。
両末端標識プライマーは、測定対象遺伝子とハイブリダイズするが、このハイブリダイズした時点では、3’末端の蛍光標識は、クエンチャーにより励起光を照射しても蛍光の発生は抑制されている。しかし、ＰＣＲ反応において、DNAポリメラーゼのホスホエステラーゼ活性により、蛍光標識は除去されて、クエンチャーによる蛍光抑制の解除により、蛍光を発生するようになる。
この蛍光強度は、ＰＣＲサイクル数に対応して増幅したPCR産物量を反映し、PCR産物量は当初の測定対象遺伝子の量（濃度）に依存するから、各サイクルにおける蛍光強度をリアルタイムモニタリングすることにより、各サイクル数に対応する測定対象遺伝子の増幅曲線を求めることができ、段階希釈した測定対象遺伝子を用いて得られた増幅曲線から、Ct（Threshold Cycle）値と当初の測定対象遺伝子量に関する検量線を作成できる。
本発明においては、濃度未知の測定対象遺伝子試料について得られたCt値から、上記検量線を用いて。測定遺伝子を定量することができる。このような検量線の作成及び遺伝子の定量手法自体、従来のTagManプローブを用いるリアルタイムPCR法と変わらないが、本発明のリアルタイム法は、従来法と比べ、プライマーとプローブを別途作成する必要がない点で極めて簡便に対象遺伝子の定量を行うことができる。
本発明においては、濃度未知の測定対象遺伝子試料について得られたCt値から、上記検量線を用いて。測定遺伝子を定量することができる。このような検量線の作成及び遺伝子の定量手法自体、従来のTagManプローブを用いるリアルタイムPCR法と変わらないが、本発明のリアルタイム法は、従来法と比べ、プライマーとプローブを別途作成する必要がない点で極めて簡便に対象遺伝子の定量を行うことができる。
本発明においては、上記した、目的とする遺伝子の探査、増幅及びリアルタイムPCR法による特定遺伝子の定量を行うための、試薬キットの提供を含む。
目的とする遺伝子の探査、増幅を行うための試薬キットは、少なくとも、探査、増幅対象の遺伝子DNAの各末端側配列と相補の配列を有する、アッパー及びローワープライマーDNA、およびＤＮＡポリメラーゼを含むが、少なくとも、一方のプライマーDNAとして、3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して標識化合物と結合しているプライマーを含む。この試薬キットにおいては、さらに、ｄNTP（ATP、GTP 、TTP、CTPの等量混合物）、緩衝液作成材料、MgSO4,等のマグネシウム剤、 KCl, (NH4)2SO4,等の酵素安定化剤、Triton X100等の界面活性化剤、ＰＣＮA，ＲＦＣ等の複製因子、ＤＮＡポリメラーゼの抗体等を含めても良い。さらに、ＤＮＡポリメラーゼは、混合物でもよい。
目的とする遺伝子の探査、増幅を行うための試薬キットは、少なくとも、探査、増幅対象の遺伝子DNAの各末端側配列と相補の配列を有する、アッパー及びローワープライマーDNA、およびＤＮＡポリメラーゼを含むが、少なくとも、一方のプライマーDNAとして、3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して標識化合物と結合しているプライマーを含む。この試薬キットにおいては、さらに、ｄNTP（ATP、GTP 、TTP、CTPの等量混合物）、緩衝液作成材料、MgSO4,等のマグネシウム剤、 KCl, (NH4)2SO4,等の酵素安定化剤、Triton X100等の界面活性化剤、ＰＣＮA，ＲＦＣ等の複製因子、ＤＮＡポリメラーゼの抗体等を含めても良い。さらに、ＤＮＡポリメラーゼは、混合物でもよい。
DNAポリメラーゼとしては、上記PhPolB、PhPolD及びPhPolD変異体が、PCR条件下でも充分な耐熱性を有し、かつ他3’−5’校正エキソヌクレアーゼ活性を有している点で、いずれも望ましいが、酵素活性の点で後２者がもっとも好ましい。
標識化合物としては、例えば、ＦＩＴＣ，ＦＡＭ，ＴＥＴ，ＪＯＥ，Ｃｙ３，Ｃｙ５，等の蛍光色素、ビオチン、ビオチンとアビジンの複合体、あるいはペルオキシダーゼ、ルシフェラーゼ等の酵素、蛍光タンパク質等が挙げられる。また、同位元素で放射能標識しリン酸を3’末端の3水酸基にエステル結合させても良い。酵素等のタンパク質を標識する場合、例えば、後記実施例に示されるような末端にアミノ基、ヒドロキシ基、カルボキシル基等の官能基を有する修飾基をリンカーとして、標識するタンパク質のカルボキシル基、アミノ基を利用して結合させることができる。
標識化合物としては、例えば、ＦＩＴＣ，ＦＡＭ，ＴＥＴ，ＪＯＥ，Ｃｙ３，Ｃｙ５，等の蛍光色素、ビオチン、ビオチンとアビジンの複合体、あるいはペルオキシダーゼ、ルシフェラーゼ等の酵素、蛍光タンパク質等が挙げられる。また、同位元素で放射能標識しリン酸を3’末端の3水酸基にエステル結合させても良い。酵素等のタンパク質を標識する場合、例えば、後記実施例に示されるような末端にアミノ基、ヒドロキシ基、カルボキシル基等の官能基を有する修飾基をリンカーとして、標識するタンパク質のカルボキシル基、アミノ基を利用して結合させることができる。
また、リアルタイムPCR法による特定遺伝子の定量を行うための、試薬キットは、測定対象のDNAの各末端側配列と相補の配列を有するアッパー及びローワープライマーDNA、およびＤＮＡポリメラーゼを少なくとも含むが、一方のプライマーDNAが、その3’末端ヌクレオチドの3’ 水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して蛍光色素と結合しており、5’末端がクエンチャーで標識されていることが必要である。
この試薬キットには、さらに、ｄNTP（ATP、GTP 、TTP、CTPの等量混合物）、緩衝液作成材料MgSO4,等のマグネシウム剤、 KCl, (NH4)2SO4,等の酵素安定化剤、Triton X100等の界面活性化剤、ＰＣＮA, ＲＦＣ等の複製因子、ＤＮＡポリメラーゼの抗体等を含めてもよい。使用する蛍光色素としては、上記例示した蛍光色素と同様なものが用いられ、クエンチャーとしてはTAMRA、dabcyl, Black Hole Quencher Dyes (BHQ-0, BHQ-1, BHQ-2, BHQ-3)等が挙げられる。
DNAポリメラーゼとしては、上記と同様にPhPolB、PhPolD及びPhPolD変異体が望ましいが、PhPolD及びPhPolD変異体がさらに好ましい。
この試薬キットには、さらに、ｄNTP（ATP、GTP 、TTP、CTPの等量混合物）、緩衝液作成材料MgSO4,等のマグネシウム剤、 KCl, (NH4)2SO4,等の酵素安定化剤、Triton X100等の界面活性化剤、ＰＣＮA, ＲＦＣ等の複製因子、ＤＮＡポリメラーゼの抗体等を含めてもよい。使用する蛍光色素としては、上記例示した蛍光色素と同様なものが用いられ、クエンチャーとしてはTAMRA、dabcyl, Black Hole Quencher Dyes (BHQ-0, BHQ-1, BHQ-2, BHQ-3)等が挙げられる。
DNAポリメラーゼとしては、上記と同様にPhPolB、PhPolD及びPhPolD変異体が望ましいが、PhPolD及びPhPolD変異体がさらに好ましい。
古代生物試料中の損傷遺伝子の修復、増幅（図３）
本発明のDNAポリメラーゼの他の利用法としては、古代生物試料に含まれる損傷遺伝子DNAの修復、増幅が挙げられる。
化石や古い骨などの、古代生物試料に含まれる遺伝子ＤＮＡは損傷を受けており、損傷を受けた部分は、損傷特異的なＡＰヌクレアーゼ等で、切断され、3’末端や、5’末端に損傷が残る場合がある。さらに、これら遺伝子ＤＮＡは、紫外線等にさらされて細かく切断されている。このために、ＰＣＲ法でのＤＮＡ増幅は極めて困難とされてきた。例えば、このような古代生物試料に含まれる遺伝子DNAにおいては、遺伝子の相補鎖の一方が途中で欠落し、その3’末端ヌクレオチドがさらに損傷している場合が多々ある。このような損傷遺伝子ＤＮＡにおいては、該損傷に伴うヌクレオチド分解産物を置換基とするリン酸エステルあるいは遊離リン酸エステルにより修飾された３’水酸基を有するヌクレオチドを３’末端に有している。
本発明のDNAポリメラーゼの他の利用法としては、古代生物試料に含まれる損傷遺伝子DNAの修復、増幅が挙げられる。
化石や古い骨などの、古代生物試料に含まれる遺伝子ＤＮＡは損傷を受けており、損傷を受けた部分は、損傷特異的なＡＰヌクレアーゼ等で、切断され、3’末端や、5’末端に損傷が残る場合がある。さらに、これら遺伝子ＤＮＡは、紫外線等にさらされて細かく切断されている。このために、ＰＣＲ法でのＤＮＡ増幅は極めて困難とされてきた。例えば、このような古代生物試料に含まれる遺伝子DNAにおいては、遺伝子の相補鎖の一方が途中で欠落し、その3’末端ヌクレオチドがさらに損傷している場合が多々ある。このような損傷遺伝子ＤＮＡにおいては、該損傷に伴うヌクレオチド分解産物を置換基とするリン酸エステルあるいは遊離リン酸エステルにより修飾された３’水酸基を有するヌクレオチドを３’末端に有している。
この3’末端ヌクレオチドの損傷としては、例えば、以下の場合が挙げられる。
１）塩基が損傷されて、次にＤNAグルコシラーゼで損傷塩基が除かれ、次にＡＰエンドヌクレアーゼ等で損傷部位の5’側が切断された時に、3’末端にデオキシリボースリン酸が残る。これらが、さらに分解されて、アルファー、ベーター不飽和アルデヒドができる。２）活性酸素による一本鎖切断、電離放射線、ブレオマイシン等で、3’末端にホスホグリコール酸ができる。３）活性酸素による一本鎖切断で3’末端にリン酸が残る。このような場合、3’末端はブロックされていることになり、3’末端からの相補鎖伸長は困難とされてきた。
１）塩基が損傷されて、次にＤNAグルコシラーゼで損傷塩基が除かれ、次にＡＰエンドヌクレアーゼ等で損傷部位の5’側が切断された時に、3’末端にデオキシリボースリン酸が残る。これらが、さらに分解されて、アルファー、ベーター不飽和アルデヒドができる。２）活性酸素による一本鎖切断、電離放射線、ブレオマイシン等で、3’末端にホスホグリコール酸ができる。３）活性酸素による一本鎖切断で3’末端にリン酸が残る。このような場合、3’末端はブロックされていることになり、3’末端からの相補鎖伸長は困難とされてきた。
しかし、上記の場合であっても、DNAポリメラーゼは、このような3’末端の損傷ヌクレオチドを修飾リン酸エステルとみなして、切断除去し、損傷ヌクレオチドが除去された新たな3’末端から、残存する一方のDNA鎖を鋳型として、 相補鎖を伸長して、損傷を修復する。
ＤＮＡポリメララーゼを用いて、古代生物試料中の損傷遺伝子ＤＮＡの修復、増幅を使って、ＰＣＲを使って行う方法について以下説明する。
始めに、試料ＤＮＡを、高温でデイネイチャーさせ、アニーリングを行う。断片化されているＤＮＡは、色々な組み合わせでアニーリングされ、長いテンプレートの、上流域に3’末端が損傷されていているプライマーが結合しているような組み合わせが一部できる。次に伸長反応を行う、ＤＮＡポリメラーゼは、3’末端の損傷を除去し、ＤＮＡ鎖を5’方向に伸ばし、ダブルストランドＤＮＡができる。これを、繰り返し行うことで、より長いダブルストランドＤＮＡができる。次に、これを、ベクターに入れ、クローニングを行う。ベクターのマルチクローニングサイトのプライマーを使って、ＰＣＲ増幅させ、シークエンスを行う。得られた、大量のシークエンスデータをコンピューター解析し遺伝子解析を行う。
以下に、本発明の実施例を示すが、本発明はこれら実施例により限定されるものではない。
始めに、試料ＤＮＡを、高温でデイネイチャーさせ、アニーリングを行う。断片化されているＤＮＡは、色々な組み合わせでアニーリングされ、長いテンプレートの、上流域に3’末端が損傷されていているプライマーが結合しているような組み合わせが一部できる。次に伸長反応を行う、ＤＮＡポリメラーゼは、3’末端の損傷を除去し、ＤＮＡ鎖を5’方向に伸ばし、ダブルストランドＤＮＡができる。これを、繰り返し行うことで、より長いダブルストランドＤＮＡができる。次に、これを、ベクターに入れ、クローニングを行う。ベクターのマルチクローニングサイトのプライマーを使って、ＰＣＲ増幅させ、シークエンスを行う。得られた、大量のシークエンスデータをコンピューター解析し遺伝子解析を行う。
以下に、本発明の実施例を示すが、本発明はこれら実施例により限定されるものではない。
実施例 １
１）ＦＩＴＣ修飾オリゴヌクレオタイドの合成
3’-フルオレセインＣＰＧ [1-ジメトキシトリチルオキシ-2-(N-チオウレア-(ジ-O-ピバロイル-フルオレセイン)-4-アミノブチル)-プロピル-3-O-スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPG] に、dＣ-CEホスホアミダイド[5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、3’末端にリン酸基のついたデオキシシチジンのリン酸基とフルオロセインに結合しているリンカーのＤＭＴをはずして、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CEホスホアミダイド {5’-ジメトキシトリチル-2’-デオキシチミジン，3’-[(2-シアノエチル)-，(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド} ・dG-CEホスホアミダイド｛5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシグアノシン，3’-[(2-シアノエチル)-(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド｝・dA-CEホスホアミダイド｛5’-ジメトキシトリチル-N-ベンゾイル-2’-デオキシアデノシン，3’-[(2-シアノエチル)-(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド｝・dC-CEホスホアミダイド｛5’-ジメトキシトリチル-N-ベンゾイル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド｝）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成した。合成終了後に、ＣＰＧから切り出しと脱保護（室温下、水酸化アンモニウムで2時間反応）を行い、スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPGを外し、3’ＦＩＴＣ修飾オリゴヌクレオタイドを得た。
１）ＦＩＴＣ修飾オリゴヌクレオタイドの合成
3’-フルオレセインＣＰＧ [1-ジメトキシトリチルオキシ-2-(N-チオウレア-(ジ-O-ピバロイル-フルオレセイン)-4-アミノブチル)-プロピル-3-O-スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPG] に、dＣ-CEホスホアミダイド[5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、3’末端にリン酸基のついたデオキシシチジンのリン酸基とフルオロセインに結合しているリンカーのＤＭＴをはずして、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CEホスホアミダイド {5’-ジメトキシトリチル-2’-デオキシチミジン，3’-[(2-シアノエチル)-，(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド} ・dG-CEホスホアミダイド｛5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシグアノシン，3’-[(2-シアノエチル)-(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド｝・dA-CEホスホアミダイド｛5’-ジメトキシトリチル-N-ベンゾイル-2’-デオキシアデノシン，3’-[(2-シアノエチル)-(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド｝・dC-CEホスホアミダイド｛5’-ジメトキシトリチル-N-ベンゾイル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N，N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド｝）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成した。合成終了後に、ＣＰＧから切り出しと脱保護（室温下、水酸化アンモニウムで2時間反応）を行い、スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPGを外し、3’ＦＩＴＣ修飾オリゴヌクレオタイドを得た。
上記合成に用いた化合物の構造を以下に示す。
1-ジメトキシトリチルオキシ-2-(N-チオウレア-(ジ-O-ピバロイル-フルオレセイン)-4-アミノブチル)-プロピル-3-O-スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPG
２）ビオチン修飾オリゴヌクレオタイドの合成
以下の構造式で示される、3'-ビオチンTEG CPG ｛1-ジメトキシトリチルオキシ-3-O-(N-ビオチニル-3-アミノプロピル)-トリエチレングリコリル-グリセリル-2-O-スクシニル-長鎖アルキルアミノ-CPG｝に dＣ-CEホスホアミダイド[5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、3’末端にリン酸基のついたデオキシシチジンのリン酸基とビオチンに結合しているリンカーのＤＭＴを外して、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CE，dA-CG，dC-CA，dG-CAホスホアミダイド）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成した。合成終了後に、切り出しと脱保護（室温下、水酸化アンモニウムで2時間反応）を行い、スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPGを外す。3’ビオチン修飾オリゴヌクレオタイドを得た。
以下の構造式で示される、3'-ビオチンTEG CPG ｛1-ジメトキシトリチルオキシ-3-O-(N-ビオチニル-3-アミノプロピル)-トリエチレングリコリル-グリセリル-2-O-スクシニル-長鎖アルキルアミノ-CPG｝に dＣ-CEホスホアミダイド[5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、3’末端にリン酸基のついたデオキシシチジンのリン酸基とビオチンに結合しているリンカーのＤＭＴを外して、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CE，dA-CG，dC-CA，dG-CAホスホアミダイド）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成した。合成終了後に、切り出しと脱保護（室温下、水酸化アンモニウムで2時間反応）を行い、スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPGを外す。3’ビオチン修飾オリゴヌクレオタイドを得た。
３）3’アミノプロピル基修飾オリゴヌクレオタイドの合成
以下の構造式で示される3'-PT-アミノ修飾C3 CPG ｛N-(3-(O-ジメトキシトリチル)-プロピル)-(2-カルボキシアミン)-フタルイミジル-lcaa-CPG｝に dＣ-CEホスホアミダイド [5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、3’末端にリン酸基のついたデオキシシチジンのリン酸基と｛N-(3-(O-ジメトキシトリチル)-プロピル)-(2-カルボキシアミン)-フタルイミジル-lcaa-CPG｝のＤＭＴ基を外して、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CE，dA-CG，dC-CA，dG-CAホスホアミダイド）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成する。合成終了後に、切り出しを行い（55°C、水酸化アンモニウムで一晩；同時に核酸塩基の脱保護もできる。）、3’末端にアミノプロピル基修飾オリゴヌクレオチドを得た。
以下の構造式で示される3'-PT-アミノ修飾C3 CPG ｛N-(3-(O-ジメトキシトリチル)-プロピル)-(2-カルボキシアミン)-フタルイミジル-lcaa-CPG｝に dＣ-CEホスホアミダイド [5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、3’末端にリン酸基のついたデオキシシチジンのリン酸基と｛N-(3-(O-ジメトキシトリチル)-プロピル)-(2-カルボキシアミン)-フタルイミジル-lcaa-CPG｝のＤＭＴ基を外して、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CE，dA-CG，dC-CA，dG-CAホスホアミダイド）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成する。合成終了後に、切り出しを行い（55°C、水酸化アンモニウムで一晩；同時に核酸塩基の脱保護もできる。）、3’末端にアミノプロピル基修飾オリゴヌクレオチドを得た。
４）3’-ヒドロキシ-プロピル基修飾オリゴヌクレオタイドの合成
以下の構造式で示される3'-スペーサーC3 CPG ｛(1-ジメトキシトリチルオキシ-プロパンジオール-3-スクシノイル)-長鎖アルキルアミノ-CPG｝に dＣ-CEホスホアミダイド[5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、3’末端にリン酸基のついたデオキシシチジンのリン酸基とＣＰＧに結合しているプロピル基のＤＭＴをはずして、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CE，dA-CG，dC-CA，dG-CAホスホアミダイド）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成した。合成終了後に、切り出しと脱保護を行い（室温下、水酸化アンモニウムで2時間反応）、スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPGが外れ、3’末端にプロパノール基のついたオリゴヌクレオチドを得た。
以下の構造式で示される3'-スペーサーC3 CPG ｛(1-ジメトキシトリチルオキシ-プロパンジオール-3-スクシノイル)-長鎖アルキルアミノ-CPG｝に dＣ-CEホスホアミダイド[5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、3’末端にリン酸基のついたデオキシシチジンのリン酸基とＣＰＧに結合しているプロピル基のＤＭＴをはずして、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CE，dA-CG，dC-CA，dG-CAホスホアミダイド）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成した。合成終了後に、切り出しと脱保護を行い（室温下、水酸化アンモニウムで2時間反応）、スクシノイル-長鎖アルキルアミノ-CPGが外れ、3’末端にプロパノール基のついたオリゴヌクレオチドを得た。
５）3’末端に修飾リン酸エステル基を有するオリゴヌクレオチドの合成
以下の構造式で示される3'-リン酸エステルCPG ｛2-[2-(4,4'-ジメトキシトリチルオキシ)エチルスルホニル]エチル-2-スクシノイル)-長鎖アルキルアミノ-CPG｝に dＣ-CEホスホアミダイド[5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、デオキシシチジンに結合している３‘リン酸基と2-[2-(4，4'-ジメトキシトリチルオキシ)エチルスルホニル]エチル-2-スクシノイル)-長鎖アルキルアミノ-CPGの ＤＭＴ基をはずして、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CE，dA-CG，dC-CA，dG-CAホスホアミダイド）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成した。合成終了後に、ＣＰＧからの切り出しを行い（室温下、水酸化アンモニウムで2時間反応）、次に、脱保護を行う（55°Cにて水酸化アンモニウムで4時間）。最終的に、３’末端にリン酸エステル基がついたヌクレオチドを得た。
以下の構造式で示される3'-リン酸エステルCPG ｛2-[2-(4,4'-ジメトキシトリチルオキシ)エチルスルホニル]エチル-2-スクシノイル)-長鎖アルキルアミノ-CPG｝に dＣ-CEホスホアミダイド[5’-ジメトキシトリチル-N-イソブチリル-2’-デオキシシチジン，3’-[(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)]-ホスホアミダイド]を加えて、デオキシシチジンに結合している３‘リン酸基と2-[2-(4，4'-ジメトキシトリチルオキシ)エチルスルホニル]エチル-2-スクシノイル)-長鎖アルキルアミノ-CPGの ＤＭＴ基をはずして、エステル結合を作った。次に、ホスホアミダイド試薬（dT-CE，dA-CG，dC-CA，dG-CAホスホアミダイド）を、合成する順番に順次加えてオリゴヌクレオタイドを合成した。合成終了後に、ＣＰＧからの切り出しを行い（室温下、水酸化アンモニウムで2時間反応）、次に、脱保護を行う（55°Cにて水酸化アンモニウムで4時間）。最終的に、３’末端にリン酸エステル基がついたヌクレオチドを得た。
なお、ビオチン修飾、アミノプロピル基修飾、3’-ヒドロキシ-プロピル基修飾及び遊離リン酸修飾の場合、切断活性を蛍光検出するため、5’末端ヌクレオチド残基のデオキシリボースの５位にリン酸基を介して検出用の蛍光基ＦＡＭを結合させ、修飾した。
上記ＦＡＭ標識は以下のように行った。
ホスホアミダイド法でオリゴヌクレオチドを3’末端から合成し、最後に、以下の構造式で示される5'-フルオレセインホスホアミダイド 化学名[(3',6'-ジピバロイルフルオレセインイル)-6-カルボキシアミドヘキシル]-1-O-(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)-ホスホアミダイドを加え、カップリングを行い、切り出し、脱保護をおこなった。
上記ＦＡＭ標識は以下のように行った。
ホスホアミダイド法でオリゴヌクレオチドを3’末端から合成し、最後に、以下の構造式で示される5'-フルオレセインホスホアミダイド 化学名[(3',6'-ジピバロイルフルオレセインイル)-6-カルボキシアミドヘキシル]-1-O-(2-シアノエチル)-(N,N-ジイソプロピル)-ホスホアミダイドを加え、カップリングを行い、切り出し、脱保護をおこなった。
得られた3’末端に修飾リン酸エステル基を有する各オリゴヌクレオチドの化学構造の概略は、図４に示される。なお、このFAM標識は、コントロールとして3’末端に修飾リン酸エステル基を有しない（3’水酸基）オリゴヌクレオチドについても行った。
上記3’末端に修飾リン酸エステル基を有する各オリゴヌクレオチドおよび3’末端未修飾のオリゴヌクレオチド部分の塩基配列は以下に示される。
ＦＩＴＣ標識オリゴヌクレオタイドの配列；27mer, CTTGAGGCAGAGTCCGACATCTAGCTC（配列番号１３）
ビオチン修飾、アミノプロピル基修飾、３−ハイドロキシープロピル基修飾、及び遊離リン酸基修飾を有する各ヌクレオチド、及び3’末端未修飾オリゴヌクレオタイドの配列；34mer
GTAACGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGACGTTGTA（配列番号１６）
上記3’末端に修飾リン酸エステル基を有する各オリゴヌクレオチドおよび3’末端未修飾のオリゴヌクレオチド部分の塩基配列は以下に示される。
ＦＩＴＣ標識オリゴヌクレオタイドの配列；27mer, CTTGAGGCAGAGTCCGACATCTAGCTC（配列番号１３）
ビオチン修飾、アミノプロピル基修飾、３−ハイドロキシープロピル基修飾、及び遊離リン酸基修飾を有する各ヌクレオチド、及び3’末端未修飾オリゴヌクレオタイドの配列；34mer
GTAACGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGACGTTGTA（配列番号１６）
実施例２
テンプレート非存在下での修飾リン酸エステルの切断
10μlの５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（pH8.0, 15mMMgCl2,）に、基質として、1pmolesの実施例１で合成したFITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチドおよび3-アミノプロピルリン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチドそれぞれ加え、これらの各基質毎にPｈPolB（Pyrococcus horikoshii DNA Polymerase B）２μｇ、PhPolD（Pyrococcus horikoshii DNA Polymerase）0.4μｇをそれぞれ加え、６０度で１０分反応させた。次に１０μｌの９５％ホルムアミド、10mM EDTA, 1mg/mlキシレンシアノールを加え酵素反応を停止させた。これを、１００度加熱、氷中急冷後、7M尿素を含む12%olyacrylamide gel電気泳動（PAGE）で分析した。FITC標識基質は、10cm x 10cnサイズ、3-アミノプロピルリン酸修飾基質は、20cm x 50cm サイズのgelを使用した。
この電気泳動パターンをphosphoImager (Bio-Rad 社製)でオートラジオグラフィー化した。
テンプレート非存在下での修飾リン酸エステルの切断
10μlの５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（pH8.0, 15mMMgCl2,）に、基質として、1pmolesの実施例１で合成したFITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチドおよび3-アミノプロピルリン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチドそれぞれ加え、これらの各基質毎にPｈPolB（Pyrococcus horikoshii DNA Polymerase B）２μｇ、PhPolD（Pyrococcus horikoshii DNA Polymerase）0.4μｇをそれぞれ加え、６０度で１０分反応させた。次に１０μｌの９５％ホルムアミド、10mM EDTA, 1mg/mlキシレンシアノールを加え酵素反応を停止させた。これを、１００度加熱、氷中急冷後、7M尿素を含む12%olyacrylamide gel電気泳動（PAGE）で分析した。FITC標識基質は、10cm x 10cnサイズ、3-アミノプロピルリン酸修飾基質は、20cm x 50cm サイズのgelを使用した。
この電気泳動パターンをphosphoImager (Bio-Rad 社製)でオートラジオグラフィー化した。
結果をこれらDNAポリメラーゼの使用しない場合を含めて図５、６に示す。これによれば、PｈPolBとPｈPolDはともに、FITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチド（図中、3’FITC）を基質とする場合において、オリゴヌクレオタイドの3’末端に結合している蛍光色素（ＦＩＴＣ）を切断し切り離すことが明らかとなった。切断産物は、オリゴヌクレオタイドを含まない蛍光色素（FITC）である（図５−１）。また、3-アミノ-プロピルリン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチド（図中、3’AMI5’FAM）を基質にして、PhPol B とPhPol Dを使って、部分分解した結果、PｈPolBとPｈPolDはともに、3’末端未修飾のオリゴヌクレオタイドと移動度が同じ位置にバンドが検出された。これは、3-アミノ-プロピルリン酸エステル基が外れたものである。
以上のことから、リン酸エステルは切断されることが明らかとなった（図５−２）。
また、ビオチン修飾、アミノプロピル基修飾、ヒドロキシープロピル基修飾、遊離リン酸でエステルについて、PhPolB, PhPol Dの活性を観たみた結果、5’末端ラベルの分子量の小さなヌクレオチドが検出された（図６）。これは、3’末端のビオチン、アミノプロピル基、ヒドリキシープロピル基で修飾されたリン酸エステル結合が切断され、修飾基が外れた後に、3’-5’エキソヌクレアーゼで分解された結果であると推測される。
以上のことから、リン酸エステルは切断されることが明らかとなった（図５−２）。
また、ビオチン修飾、アミノプロピル基修飾、ヒドロキシープロピル基修飾、遊離リン酸でエステルについて、PhPolB, PhPol Dの活性を観たみた結果、5’末端ラベルの分子量の小さなヌクレオチドが検出された（図６）。これは、3’末端のビオチン、アミノプロピル基、ヒドリキシープロピル基で修飾されたリン酸エステル結合が切断され、修飾基が外れた後に、3’-5’エキソヌクレアーゼで分解された結果であると推測される。
実施例３
DNAポリメラーゼによる3’末端の修飾リン酸エステルの切断及び3’末端からのＤＮＡ鎖の伸長
テンプレートDNAとして、ホスホアミダイド法により以下の配列のDNAを合成した。
Template strand １；GAGCTAGATGTCGGACTCTGCCTCAAGACGGTAGTCAACGTGCACTCGAGGTCA（配列番号１４）
Template strand ２； TCCTCTAGAGTCGACCTGCAGGCATGCAAGCTTGGCACTGGCCGTCCTTTTACAACGTCGTGACTGGGAAAACCCTGGCGTTAC（配列番号１５）
DNAポリメラーゼによる3’末端の修飾リン酸エステルの切断及び3’末端からのＤＮＡ鎖の伸長
テンプレートDNAとして、ホスホアミダイド法により以下の配列のDNAを合成した。
Template strand １；GAGCTAGATGTCGGACTCTGCCTCAAGACGGTAGTCAACGTGCACTCGAGGTCA（配列番号１４）
Template strand ２； TCCTCTAGAGTCGACCTGCAGGCATGCAAGCTTGGCACTGGCCGTCCTTTTACAACGTCGTGACTGGGAAAACCCTGGCGTTAC（配列番号１５）
一方、プライマーとして実施例で合成した以下の修飾プライマーを用いた。
プライマーDNA１；
3’FITC 5’TAMRA修飾オリゴヌクレオタイド
プライマーDNA１（27mer）の塩基配列； CTTGAGGCAGAGTCCGACATCTAGCTC（配列番号１３）
プラーマーDNA２；3’末端ビオチン修飾リン酸、5’末端ＦＡＭ、修飾
プライマーDNA３；3’ 末端３-アミノプロピルリン酸、5’末端ＦＡＭ、修飾
プライマーDNA４；3’ 末端3’-ヒドロキシ-プロピルリン酸、5’末端ＦＡＭ、修飾
プライマーDNA５；3’ 末端遊離リン酸, 5’末端ＦＡＭ、修飾
上記プライマー２−５（34mer）の塩基配列；
GTAACGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGACGTTGTA（配列番号１６）
プライマーDNA１；
3’FITC 5’TAMRA修飾オリゴヌクレオタイド
プライマーDNA１（27mer）の塩基配列； CTTGAGGCAGAGTCCGACATCTAGCTC（配列番号１３）
プラーマーDNA２；3’末端ビオチン修飾リン酸、5’末端ＦＡＭ、修飾
プライマーDNA３；3’ 末端３-アミノプロピルリン酸、5’末端ＦＡＭ、修飾
プライマーDNA４；3’ 末端3’-ヒドロキシ-プロピルリン酸、5’末端ＦＡＭ、修飾
プライマーDNA５；3’ 末端遊離リン酸, 5’末端ＦＡＭ、修飾
上記プライマー２−５（34mer）の塩基配列；
GTAACGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGACGTTGTA（配列番号１６）
上記プライマーＤＮＡ１はtemplate strand 1とアニールし、プラーマーＤＮＡ２−５は、template strand ２とアニールさせ、以下のようにDNAポリメラーゼによる、3’末端の修飾リン酸エステルの切断及び3’末端からのＤＮＡ鎖の伸長活性を調べた。
１０μlの５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（pH8.0, 15mMMgCl2、）に0.25mMdNTPを加え、1pmolesの上記アニールさせたテンプレートと各オリゴヌクレオチドをそれぞれ加え、さらに各オリゴヌクレオチド毎にPｈPolB（Pyrococcus horikoshii DNA Polymerase B）２μｇ、PhPolD（Pyrococcus horikoshii DNA Polymerase ）0.4μｇをそれぞれ加え、６０度で１０分反応させた。次に１０μlの９５％ホルムアミド、10mM EDTA, 1mg/mlキシレンシアノールを加え酵素反応を停止させた。これを、１００℃加熱、氷中急冷後、7M尿素を含む12%olyacrylamide gel電気泳動（PAGE）で分析した。この電気泳動パターンをphosphoImager (Bio-Rad 社製)でオートラジオグラフィー化した。結果をＤＮＡポリメラーゼを使用しなかった場合を含め、図７，８に示す。
この結果によれば、プライマーとして、FITC修飾リン酸エステル基を3’末端に有するオりゴヌクレオチドを使用した場合において、FITC蛍光色素成分と、該プライマーとして使用した該オリゴヌクレオチドの分子長よりも長く伸長した5’末端にTAMRAの付いたオリゴヌクレオタイドを検出した。PhPolB、PhPolDは、ｄＮＴＰ存在下であっても、3’末端の修飾基を切断して、ＤＮＡ鎖を伸ばした。(図７)
１０μlの５０ｍＭトリス塩酸緩衝液（pH8.0, 15mMMgCl2、）に0.25mMdNTPを加え、1pmolesの上記アニールさせたテンプレートと各オリゴヌクレオチドをそれぞれ加え、さらに各オリゴヌクレオチド毎にPｈPolB（Pyrococcus horikoshii DNA Polymerase B）２μｇ、PhPolD（Pyrococcus horikoshii DNA Polymerase ）0.4μｇをそれぞれ加え、６０度で１０分反応させた。次に１０μlの９５％ホルムアミド、10mM EDTA, 1mg/mlキシレンシアノールを加え酵素反応を停止させた。これを、１００℃加熱、氷中急冷後、7M尿素を含む12%olyacrylamide gel電気泳動（PAGE）で分析した。この電気泳動パターンをphosphoImager (Bio-Rad 社製)でオートラジオグラフィー化した。結果をＤＮＡポリメラーゼを使用しなかった場合を含め、図７，８に示す。
この結果によれば、プライマーとして、FITC修飾リン酸エステル基を3’末端に有するオりゴヌクレオチドを使用した場合において、FITC蛍光色素成分と、該プライマーとして使用した該オリゴヌクレオチドの分子長よりも長く伸長した5’末端にTAMRAの付いたオリゴヌクレオタイドを検出した。PhPolB、PhPolDは、ｄＮＴＰ存在下であっても、3’末端の修飾基を切断して、ＤＮＡ鎖を伸ばした。(図７)
一方、プライマーとして、ビオチン修飾リン酸、３-アミノプロピルリン酸、3’-ヒドロキシ-プロピルリン酸及び遊離のリン酸の各エステル基 を３末端に有する各オリゴヌクレオチドを使用した場合の結果は、図８に示される。（なお、図８中、Amino基は３-アミノ-プロピルリン酸、BIOTINはビオチン修飾リン酸、Ｃ３は3-ヒドロキシ-プロピルリン酸、リン酸基は遊離のリン酸を示す。）
この結果から明らかなように、これらの各エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いた場合も、3’末端修飾リン酸基が外され、ＤＮＡ鎖を伸長させることができた。以上のことから、どのような修飾基であっても、ｄＮＴＰ存在下で、外されて、ＤＮＡ鎖が伸長することが可能であるといえる。
この結果から明らかなように、これらの各エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いた場合も、3’末端修飾リン酸基が外され、ＤＮＡ鎖を伸長させることができた。以上のことから、どのような修飾基であっても、ｄＮＴＰ存在下で、外されて、ＤＮＡ鎖が伸長することが可能であるといえる。
実施例４
各温度条件におけるPｈPolB、及びPhPolDのオリゴヌクレオチド3’末端修飾基切除活性
実施例１、２）で合成したFITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチドを基質として、PｈPolB及びPhPolDによる3’末端修飾エステル基の切除活性を各反応温度条件下で調べた。酵素反応条件は、温度条件の他は、実施例２に記載したものと同様であり、反応温度条件は、60度、70度、80度に設定した結果を図９に示す。この結果によれば、Pol B, Pol Dともに、８０℃においても、切断されたＦＩＴＣ成分が、基質と切り離されて検出されいることが明らかであり、80度まで3’ 末端修飾基切除活性が存在した。
各温度条件におけるPｈPolB、及びPhPolDのオリゴヌクレオチド3’末端修飾基切除活性
実施例１、２）で合成したFITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチドを基質として、PｈPolB及びPhPolDによる3’末端修飾エステル基の切除活性を各反応温度条件下で調べた。酵素反応条件は、温度条件の他は、実施例２に記載したものと同様であり、反応温度条件は、60度、70度、80度に設定した結果を図９に示す。この結果によれば、Pol B, Pol Dともに、８０℃においても、切断されたＦＩＴＣ成分が、基質と切り離されて検出されいることが明らかであり、80度まで3’ 末端修飾基切除活性が存在した。
実施例５
他のポリメラーゼの3’末端修飾基の切断活性
DNAポリメラーゼとして、PｈPolB及びPhPolDをKlenow Fragment , T4 DNA polymeraseに代え、実施例２と同様の酵素反応条件で、FITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチド、及び遊離リン酸エステル基を３末端に有するオリゴヌクレオチドを基質として、3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性を調べた。
結果を図１０に示す。これによれば、上記いずれのDNAポリメラーゼも3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性を示した。しかし、基質が残存しており、これらDNAポリメラーゼ3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性はPｈPolB及びPhPolDよりも低いと考えられる。
他のポリメラーゼの3’末端修飾基の切断活性
DNAポリメラーゼとして、PｈPolB及びPhPolDをKlenow Fragment , T4 DNA polymeraseに代え、実施例２と同様の酵素反応条件で、FITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチド、及び遊離リン酸エステル基を３末端に有するオリゴヌクレオチドを基質として、3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性を調べた。
結果を図１０に示す。これによれば、上記いずれのDNAポリメラーゼも3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性を示した。しかし、基質が残存しており、これらDNAポリメラーゼ3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性はPｈPolB及びPhPolDよりも低いと考えられる。
実施例６
DNAポリメラーゼとしてPhPolDとPhPolD変異体（小サブユットのＮ末端から１−２００番目のアミノ酸を欠損した変異体）を同じ濃度使用し、実施例２と同様の酵素反応条件で、FITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチド、及びビオチン標識リン酸エステル基 を３末端に有するオリゴヌクレオチドを基質として、3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性を調べた。
結果を図１１に示す。これによれば、変異体DNAも3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性を示し、さらに、PhPolDと同じ程度の活性が存在すると考えられる。
DNAポリメラーゼとしてPhPolDとPhPolD変異体（小サブユットのＮ末端から１−２００番目のアミノ酸を欠損した変異体）を同じ濃度使用し、実施例２と同様の酵素反応条件で、FITC標識リン酸エステル基を3’末端に有するオリゴヌクレオチド、及びビオチン標識リン酸エステル基 を３末端に有するオリゴヌクレオチドを基質として、3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性を調べた。
結果を図１１に示す。これによれば、変異体DNAも3’末端修飾リン酸エステル基の切断活性を示し、さらに、PhPolDと同じ程度の活性が存在すると考えられる。
Claims (19)
- DNAポリメラーゼからなる、DNA3’末端ヌクレオチド3’位に結合した遊離またはデオキシリボヌクレオチドで修飾されたリン酸エステル以外の修飾リン酸エステルを切断するための酵素試薬。
- 修飾リン酸エステルの切断後のDNA3’末端から、テンプレートDNA配列に対応する相補鎖伸長作用を有することを特徴とする、請求項１に記載の酵素試薬。
- DNAポリメラーゼが耐熱性であることを特徴とする、請求項１または２に記載の酵素試薬。
- DNAポリメラーゼが、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するか、あるいは該アミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつDNAポリメラーゼ活性を有する酵素であることを特徴とする、請求項３に記載の酵素試薬。
- DNAポリメラーゼが、小サブユニットと、大サブユニットとからなるDNAポリメラーゼ活性を有するヘテロダイマー酵素であって、
小サブユニットが配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であるか、あるいは該アミノ酸配列において１個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であり、大サブユニットが配列番号５に示されるアミノ酸配列中インテイン配列によりコードされるアミノ酸配列(955番目〜1120番目)を除去した配列を有するタンパク質であるか、あるいは該配列において１個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、請求項３に記載の酵素試薬。 - 小サブユニットが、さらに、配列番号９に示すアミノ酸配列において、少なくとも167〜200番目の領域が削除されたアミノ酸を有するか、あるいは該削除されたアミノ酸配列において、１個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、請求項５に記載の酵素試薬。
- 修飾リン酸エステルが、リン酸残基を介して蛍光色素、ビオチン、または酵素と結合していることを特徴とする、請求項１〜６のいずれかに記載の酵素試薬。
- 修飾リン酸エステルが、損傷ヌクレオチド由来のリン酸エステルであることを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載の酵素試薬。
- テンプレートDNA配列に該配列と一部相補の配列を有するプライマーがハイブリダイズしたDNAに、請求項１に記載されたDNAポリメラーゼ酵素試薬を作用させて、プライマー配列の3’末端伸長反応を行い、２本鎖DNAを調製する方法であって、プライマーDNA配列の3’末端ヌクレオチドにおけるデオキシリボース3’位水酸基が、遊離またはデオキシリボヌクレオチドで修飾されたリン酸以外の修飾リン酸によりエステル化されていることを特徴とする、上記方法。
- 増幅対象のDNAを、アッパー及びローワープライマー並びに請求項１に記載されたDNAポリメラーゼ酵素試薬を用いるPCR法により増幅する方法であって、少なくとも一方のプライマーの3’末端ヌクレオチドの3’水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して標識化合物と結合していることを特徴とする、上記方法。
- 標識化合物が、蛍光化合物、ビオチン、または酵素であることを特徴とする、請求項１０に記載の方法。
- 測定対象のDNAを、アッパー及びローワープライマーDNA並びに請求項１に記載されたDNAポリメラーゼ酵素試薬を用いるリアルタイムPCR法により定量する方法であって、少なくとも一方のプライマーDNAの3’末端ヌクレオチドの3’水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して蛍光色素が結合しており、5’末端がクエンチャーにより標識されていることを特徴とする請求項１１に記載の方法。
- 古代生物試料中の、DNAの3’末端ヌクレオチドの3’水酸基が損傷に伴うヌクレオチド分解によって生じた置換基により修飾されたリン酸または遊離リン酸によりエステル化されて、相補鎖の一方が中断した部分を有する損傷遺伝子DNAの修復法であって、該損傷遺伝子DNAに対し、デネイチャー及びアニーリングを行った後、請求項１に記載されたDNAポリメラーゼ酵素試薬を作用させて、修飾リン酸エステルの切断及び相補鎖伸長反応を行うことを特徴とする、古代生物試料中の損傷遺伝子の修復方法。
- DNAポリメラーゼが耐熱性であることを特徴とする、上記請求項９〜１３のいずれかに記載の方法。
- DNAポリメラーゼが、配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するか、あるいは該アミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸残基が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列を有し、かつDNAポリメラーゼ活性を有する酵素であることを特徴とする、請求項１４に記載の方法。
- DNAポリメラーゼが、小サブユニットと、大サブユニットとからなるDNAポリメラーゼ活性を有するヘテロダイマー酵素であって、
小サブユニットが配列番号９に示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であるか、あるいは該アミノ酸配列において１個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含むタンパク質であり、大サブユニットが配列番号５に示されるアミノ酸配列中インテイン配列によりコードされるアミノ酸配列(955番目〜1120番目)を除去した配列を有するタンパク質であるか、あるいは該配列において１個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、請求項１４に記載の方法。 - 小サブユニットが、さらに、配列番号９に示すアミノ酸配列において、少なくとも１６７〜２００番目の領域が削除されたアミノ酸配列を有するか、あるいは該削除されたアミノ酸配列において、１個もしくは数個のアミノ酸残基の置換、欠失または付加を含む蛋白質であることを特徴とする、請求項１４に記載の方法。
- 増幅対象のDNAの各末端側配列と相補の配列を有する、アッパー及びローワープライマーDNA、および請求項１に記載されたDNAポリメラーゼ酵素試薬を少なくとも含む、PCR用試薬キットであって、少なくとも一方のプライマーDNAの3’末端ヌクレオチドの3’水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して標識化合物と結合していることを特徴とする、上記試薬キット。
- 測定対象のDNAの各末端側配列と相補の配列を有するアッパー及びローワープライマーDNA、および請求項１に記載されたDNAポリメラーゼ酵素試薬を少なくとも含む、DNAのリアルタイムPCR定量用試薬キットであって、一方のプライマーDNAが、その3’末端ヌクレオチドの3’水酸基がリン酸基とのエステルを形成し、該リン酸基を介して蛍光色素と結合しており、5’末端がクエンチャーで標識されていることを特徴とする、上記試薬キット。
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