JP5236249B2 - キメラ組換え（ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ - Google Patents

Description

本発明は、新規（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ、該（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡ、および該（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ遺伝子を用いて（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼを製造する方法、製造した（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼを用いて光学活性シアノヒドリンを製造する方法に関する。

生体触媒を用いる合成プロセスは化学工業にとってきわめて重要になっている。また、生体触媒を使った化学反応の実施は、基質特異性の高い生体触媒の性質を利用する分野では、とりわけ興味深い。酵素が持つこの有利な性質を利用するには、安定性が高く、目的の反応を触媒する活性の高い酵素を入手することが必須条件になる。

光学活性シアノヒドリンは特に興味深い光学活性化合物群であり、医薬活性物質、ビタミンまたはピレスロイド化合物などの生物活性物質の製造に使用されるα−ヒドロキシ酸、α−ヒドロキシケトン、β−アミノアルコールの合成等に重要である。また、光学活性シアノヒドリンのうちハロゲン化シアノヒドリンは、医薬活性物質の中間体としてニーズが高い。シアノヒドリンは、カルボニル化合物のカルボニル基へのシアン化水素酸の付加によって製造される。例えば（Ｓ）−シアノヒドリンなどの光学活性化合物の工業的生産はパラゴムノキ（Ｈｅｖｅａ ｂｒａｓｉｌｉｅｎｓｉｓ）由来の酵素（Ｓ）−ヒドロキシニトリルリアーゼを利用することによって可能になっている。

特許文献１には、真核細胞である酵母を宿主として、アーモンド由来のヒドロキシニトリルリアーゼを遺伝子組換えにより製造した例が報告されている。また、特許文献２には、バラ科植物由来（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードする遺伝子の塩基配列を改変して（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの発現量を増大させる方法が開示されている。

また、非特許文献１には、サクラ属植物が（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのイソ酵素を含有しうることが開示されている。これらのイソ酵素は当該植物の様々な組織に異なるレベルで発現される。アメリカザクラには、現在までに５種類の異なるイソ酵素が同定され、それらの遺伝子が配列決定されている。その中でアメリカザクラ由来のＭＤＬ１遺伝子は非特許文献２に記載されている。アメリカザクラと近縁関係にあるアーモンド由来のイソ酵素としては、例えば、非特許文献３にＭＤＬ１遺伝子が、特許文献１にＨＮＬ１、ＨＮＬ２、ＨＮＬ３、ＨＮＬ４、ＨＮＬ５遺伝子が記載されており、ｃＤＮＡ配列は、ＭＤＬ１、ＨＮＬ１およびＨＮＬ５の３種が配列決定されている。

特開２００２−３３０７９１号公報 特開２００６−１４１２６３号公報 Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，Ａｐｒｉｌ（１９９９）１１９：１５３５〜１５４６ Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓｉｏｌ．（１９９３）３４：１１３９〜１１４３ Ｐｌａｎｔａ（１９９８）２０６：３８８〜３９３

本発明者らは、ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、ハロゲン化シアノヒドリン合成反応を触媒する活性が高いが、耐熱性および耐酸性が低く、一方、ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、ハロゲン化シアノヒドリンの合成反応を触媒する活性は低いが、耐熱性および耐酸性が高いため、いずれを使用してもハロゲン化シアノヒドリンの効率的な合成が難しいという問題があることを見出した。

従って、本発明は、ハロゲン化シアノヒドリンの合成反応を触媒する活性が高く、かつ耐熱性および耐酸性が高い新規（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼを提供することを目的とする。

本発明者らは、ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質を複数製造し、ハロゲン化シアノヒドリンの合成反応を触媒する活性が高く、かつ耐熱性および耐酸性が高い（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのキメラ組換えタンパク質を見出した。そして、ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列における３１４〜４４８位の連続するアミノ酸が、ハロゲン化シアノヒドリンの合成反応を触媒する活性に重要であること、ならびにＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列における１〜１１２位の連続するアミノ酸が、酵素の耐熱性および耐酸性に重要であることを見出した。

すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
（１）ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質であって、
ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列における３１４〜４４８位の連続するアミノ酸と、ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列における１〜１１２位の連続するアミノ酸を少なくとも含み、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有する前記タンパク質。
（２）ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列が、配列番号２のアミノ酸配列、または配列番号２のアミノ酸配列と９４％以上の同一性を有するアミノ酸配列であり、
ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列が、配列番号４のアミノ酸配列、または配列番号４のアミノ酸配列と９４％以上の同一性を有するアミノ酸配列である、
（１）記載のタンパク質。
（３）以下の（ａ）または（ｂ）のタンパク質：
（ａ）配列番号６、８、１０または１２のいずれかで表されるアミノ酸配列からなるタンパク質、
（ｂ）配列番号６、８、１０または１２のいずれかで表されるアミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつ（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質。
（４）（１）〜（３）のいずれかに記載のタンパク質をコードするＤＮＡ。
（５）ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質をコードするＤＮＡであって、
ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列における９４０〜１３４４位の連続する塩基と、ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列における１〜３３６位の連続する塩基を少なくとも含み、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質をコードする前記ＤＮＡ。
（６）ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列が、配列番号１の塩基配列または配列番号１の塩基配列と９４％以上の同一性を有する塩基配列であり、
ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列が、配列番号３の塩基配列または配列番号３の塩基配列と９４％以上の同一性を有する塩基配列である、
（５）記載のＤＮＡ。
（７）以下の（ａ）または（ｂ）のＤＮＡ：
（ａ）配列番号５、７、９または１１のいずれかで表される塩基配列からなるＤＮＡ、
（ｂ）配列番号５、７、９または１１のいずれかで表される塩基配列と８０％以上の同一性を有する塩基配列からなり、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ。
（８）（４）〜（７）のいずれかに記載のＤＮＡを宿主細胞に導入することによって得られる形質転換体。
（９）（８）に記載の形質転換体を培養することを含む、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの製造方法。
（１０）（１）〜（３）のいずれかに記載のタンパク質とカルボニル化合物およびシアノ基供与体とを反応させ、反応液から光学活性シアノヒドリンを回収することを含む、光学活性シアノヒドリンの製造方法。

本発明により、ハロゲン化シアノヒドリンの合成反応を触媒する活性が高く、かつ耐熱性および耐酸性が高い（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのキメラ組換えタンパク質が提供される。

本発明において、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとは、当技術分野において通常用いられる意味を有し、シアノ基供与体の存在下、カルボニル化合物を基質としてシアノヒドリンを合成する反応を触媒する活性および／または逆反応のシアノヒドリンを分解して青酸とカルボニル化合物を遊離する反応を触媒する活性を有するタンパク質を意味する。シアノ基供与体、カルボニル化合物およびシアノヒドリンについては、後述する。

ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、ハロゲン化シアノヒドリン合成反応を触媒する活性が高いが、耐熱性および耐酸性が低い。より具体的には、ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、配列番号１の塩基配列からなるＤＮＡによってコードされるタンパク質、ならびに配列番号１の塩基配列と９４％以上、好ましくは９６％以上、より好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９８％以上の同一性を有する塩基配列からなるＤＮＡによってコードされ、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの活性を有するタンパク質をさす。ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼには、配列番号２のアミノ酸配列を有するタンパク質、または配列番号２のアミノ酸配列と９４％以上、好ましくは９６％以上、より好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの活性を有するタンパク質も包含される。

ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの具体例としては、例えば、Ｐｒｕｎｕｓ ｓｅｒｏｔｉｎａ由来のＭＤＬ１（Ｓｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ ｅｎｔｒｙ：Ｐ５２７０６）、Ｐｒｕｎｕｓ ａｍｙｇｄａｌｕｓ由来のＨＮＬ１（特開２００２−３３０７９１）などが挙げられる。

ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、ハロゲン化シアノヒドリン合成反応を触媒する活性が低いが、耐熱性および耐酸性が高い。より具体的には、ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、配列番号３の塩基配列からなるＤＮＡによってコードされるタンパク質、ならびに配列番号３の塩基配列と９４％以上、好ましくは９６％以上、より好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９８％以上の同一性を有する塩基配列からなるＤＮＡによってコードされ、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの活性を有するタンパク質をさす。ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼには、配列番号４のアミノ酸配列を有するタンパク質、または配列番号４のアミノ酸配列と９４％以上、好ましくは９６％以上、より好ましくは９７％以上、さらに好ましくは９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの活性を有するタンパク質も包含される。

ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの具体例としては、例えば、Ｐｒｕｎｕｓ ａｍｙｇｄａｌｕｓ由来のＭＤＬ１（Ｓｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ ｅｎｔｒｙ：Ｏ２４２４３）、Ｐｒｕｎｕｓ ｓｅｒｏｔｉｎａ由来のＭＤＬ５（ＤＤＢＪ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｕｍｂｅｒ：Ｏ０７２４３５）、およびＰｒｕｎｕｓ ａｍｙｇｄａｌｕｓ由来のＨＮＬ５（特開２００２−３３０７９１）などが挙げられる。

本発明のＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質（以下、本発明のキメラ組換えタンパク質と称する場合がある）は、ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列における３１４〜４４８位、好ましくは３１４〜末端までの連続するアミノ酸と、ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列における１〜１１２位、より好ましくは１〜１９４位、さらに好ましくは１〜３１３位の連続するアミノ酸を少なくとも含み、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するものである。本発明におけるＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質は、そのアミノ酸配列の一部がＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼに由来し、残りがＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼに由来するものである。

本明細書において、「アミノ酸配列におけるＸ〜Ｙ位の連続するアミノ酸」という表現は、配列番号２のアミノ酸配列を参照配列として、アミノ酸配列中の所定のアミノ酸の位置を指定するために使用される。すなわち、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列（以下、アミノ酸配列Ｚと証する）を、配列番号２のアミノ酸配列とアラインメントしたときに、配列番号２のアミノ酸配列の１位の塩基から数えてＸ〜Ｙ位の塩基に対してアラインされる（すなわち、アラインメントにおいて同じ縦列に整列される）、アミノ酸配列Ｚ中の連続するアミノ酸の配列を意味する。本発明におけるアミノ酸の位置は、特に、アラインメントソフトとしてＧＥＮＥＴＹＸ Ｖｅｒ．７遺伝情報処理ソフトウェア（株式会社ゼネティックス製）を用いてアラインメントをとったときのアミノ酸の位置を意味する。

本発明のキメラ組換えタンパク質としては、以下の（ａ）または（ｂ）のタンパク質が挙げられる：
（ａ）配列番号６、８、１０または１２のいずれかで表されるアミノ酸配列からなるタンパク質、
（ｂ）配列番号６、８、１０または１２のいずれかで表されるアミノ酸配列と８０％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９４％以上、さらに好ましくは９８％以上、最も好ましくは９９％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつ（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質。

上記タンパク質には、配列番号６、８、１０または１２のいずれかで表されるアミノ酸配列において１若しくは数個、例えば２〜３個のアミノ酸が欠失、置換、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質も包含される。

上記各配列番号で表されるアミノ酸配列における、１または数個のアミノ酸の欠失、付加、挿入または置換は、常用される技術、例えば、部位特異的変異誘発法（Ｚｏｌｌｅｒら、Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．１０ ６４７８−６５００，１９８２）により、各配列番号で表されるアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするＤＮＡの配列を改変することにより実施することができる。上記におけるアミノ酸残基の置換は保存的置換であることが好ましい。アミノ酸残基間の保存的置換の例としては、グリシン（Ｇｌｙ）とプロリン（Ｐｒｏ）、グリシンとアラニン（Ａｌａ）またはバリン（Ｖａｌ）、ロイシン（Ｌｅｕ）とイソロイシン（Ｉｌｅ）、グルタミン酸（Ｇｌｕ）とグルタミン（Ｇｌｎ）、アスパラギン酸（Ａｓｐ）とアスパラギン（Ａｓｎ）、システイン（Ｃｙｓ）とスレオニン（Ｔｈｒ）、スレオニンとセリン（Ｓｅｒ）またはアラニン、リジン（Ｌｙｓ）とアルギニン（Ａｒｇ）等のアミノ酸の間での置換が知られている。

また、本発明のＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質をコードするＤＮＡ（以下、本発明のＤＮＡと称する場合がある）は、ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列における９４０〜１３４４位、好ましくは９４０〜３’末端までの連続する塩基と、ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列における１〜３３６位、より好ましくは１〜５８２位、さらに好ましくは１〜９３９位の連続する塩基を少なくとも含むＤＮＡであって、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡである。本発明におけるＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質をコードするＤＮＡは、その塩基配列の一部がＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼＤＮＡに由来し、残りがＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼＤＮＡに由来するものである。

本明細書において、「塩基配列におけるＸ〜Ｙ位の連続する塩基」という表現は、配列番号１の塩基配列を参照配列として、塩基配列中の所定の塩基の位置を指定するために使用される。すなわち、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列（以下、塩基配列Ｚと証する）を、配列番号１の塩基配列とアラインメントしたときに、配列番号１の塩基配列の１位の塩基から数えてＸ〜Ｙ位の塩基に対してアラインされる（すなわち、アラインメントにおいて同じ縦列に整列される）、塩基配列Ｚ中の連続する塩基を意味する。本発明における塩基の位置は、特に、アラインメントソフトとしてＧＥＮＥＴＹＸ Ｖｅｒ．７遺伝情報処理ソフトウェア（株式会社ゼネティックス製）を用いてアラインメントをとったときの塩基の位置を意味する。

アラインメントは、手作業で行うこともできるが、例えばマルチプルアラインメントプログラム（Ｔｈｏｍｐｓｏｎ，Ｊ．Ｄ． ｅｔ ａｌ，（１９９４）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２２，ｐ．４６７３−４６８０）をデフォルト設定で用いることにより作成することができる。当該プログラムは、例えば、欧州バイオインフォマティクス研究所（Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ：ＥＢＩ、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｅｂｉ．ａｃ．ｕｋ／ｉｎｄｅｘ．ｈｔｍｌ）や、国立遺伝学研究所が運営する日本ＤＮＡデータバンク（ＤＤＢＪ、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｄｄｂｊ．ｎｉｇ．ａｃ．ｊｐ／Ｗｅｌｃｏｍｅ−ｊ．ｈｔｍｌ）のウェブサイトから利用することができる。当業者であれば、得られたアラインメントを、必要に応じて最適なアラインメントとなるように更に調整することできる。

本発明のキメラ組換えタンパク質をコードするＤＮＡの具体例としては、上記タンパク質をコードするＤＮＡ、ならびに以下の（ａ）または（ｂ）のＤＮＡが挙げられる：
（ａ）配列番号５、７、９または１１のいずれかで表される塩基配列からなるＤＮＡ、
（ｂ）配列番号５、７、９または１１のいずれかで表される塩基配列と８０％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９４％以上、さらに好ましくは９８％以上、最も好ましくは９９％以上の同一性を有する塩基配列からなり、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ。

本発明のキメラ組換えタンパク質は、ハロゲン化シアノヒドリンの合成反応を触媒する活性が高い。ハロゲン化シアノヒドリンの合成反応を触媒する活性とは、シアノ基供与体の存在下、ハロゲン置換基を有するカルボニル化合物を基質としてハロゲン化シアノヒドリンを合成する反応を触媒する活性が高い、すなわち当該反応を触媒する特異性が高いことをさす。（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、シアノ基供与体の存在下、ハロゲン置換基を有するカルボニル化合物を基質としてハロゲン化シアノヒドリンを合成する反応と、ハロゲン化シアノヒドリンを分解する反応の両方を触媒する活性を有するが、通常、上記２種の反応の一方を触媒する活性の高い（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、もう一方の反応を触媒する活性も高い。合成反応も分解反応も酵素の同じ基質ポケットを介して行われると考えられるため、通常、分解活性の高い酵素は逆反応の合成活性も高いと考えられる。

ハロゲン置換基を有するカルボニル化合物およびハロゲン化シアノヒドリンについては、後述するが、より具体的には、本発明のキメラ組換えタンパク質は、マンデロニトリルの合成反応を触媒する活性に対する、Ｒ−クロロマンデロニトリルの合成反応を触媒する活性が高い。従って、本発明のキメラ組換えタンパク質は、Ｒ−マンデロニトリルの分解反応を触媒する活性に対する、Ｒ−クロロマンデロニトリル（特に、Ｒ−２−クロロマンデロニトリル）の分解反応を触媒する活性も高い。

また、本発明のキメラ組換えタンパク質は、耐熱性が高く、７５℃で３０分間インキュベートする処理において、１５％以上、好ましくは１６％以上、より好ましくは２０％以上で、好ましくは８０％以下、より好ましくは７０％以下の残存活性を示す。さらに、本発明のキメラ組換えタンパク質は、耐酸性が高く、ｐＨ３．０および３７℃で３時間インキュベートすると、ｐＨ５．５および３７℃で３時間インキュベートした場合を１００％として、２５％以上、より好ましくは５０％以上、さらに好ましくは６０％以上で、好ましくは９５％以下、より好ましくは９０％以下の残存活性を示す。

本発明のキメラ組換えタンパク質は、例えば、作成したいキメラ組換えタンパク質のためのＤＮＡ配列を２つのＤＮＡの配列をもとに設計し、ＤＮＡを化学合成で作成する方法、２つのＤＮＡ配列を元に任意の部位で２つ配列にオーバーラップするプライマーを作成してＰＣＲの技術を用いて作成する方法、ＤＮＡ間で共通の制限酵素部位でＤＮＡ配列を組換える方法、または２つのＤＮＡ間で共通の塩基配列の位置で生体内組換えする方法などにより調製することができる。

具体的には、以下の方法で実施できる。ＨＮＬ１型の酵素およびＨＮＬ５型の酵素のＤＮＡ配列を元にハイブリッドさせる位置を検討し、作成する配列を決定する。その配列を元にＤＮＡを化学合成してこれを鋳型として宿主細胞にＤＮＡを導入することができる。
あるいは２つのＤＮＡ配列から設計したＤＮＡ配列の２つの遺伝子の結合部の前後の配列をプライマーとして１つのＤＮＡ配列を鋳型に前半部分をＰＣＲで増幅し、他方のＤＮＡ配列を鋳型に後半部分を増幅する。増幅された２つの遺伝子は結合部の前後の配列部分に相同性があるのでアニールできる。そこで前半の先端部分のプライマー（５’→３’）と後半の末端部分のプライマー（３’→５’）および増幅した２つのＤＮＡ断片を用いてＰＣＲ反応することにより目的のＤＮＡ配列を増幅することができる。

一旦そのアミノ酸配列が決定されたキメラ組換えタンパク質については、その配列を元に当業者に公知の手法、例えば、アミノ酸１つ１つを化学的に重合してポリペプチドを合成する方法（ペプチド合成法）に従って調製することもできる。しかし、このような方法はコストの観点から工業的な利用には好適でないため、本発明のキメラ組換えタンパク質をコードするＤＮＡを含む組換えベクターを作製し、該ベクターを適切な宿主細胞中に導入して得られる形質転換体を培地に培養し、その培養物から採取する方法が好ましく用いられる。あるいは、本発明のキメラ組換えタンパク質をコードするＤＮＡを無細胞タンパク質合成系で発現させることにより、本発明のキメラ組換えタンパク質を製造することもできる。以下、形質転換体を用いる方法について説明する。

まず、本発明のキメラ組換えタンパク質をコードするＤＮＡをベクター中に連結し、組換えベクターを製造する。上記ベクターには、宿主細胞で自律的に増殖し得るファージ、コスミド、人工染色体またはプラスミドが使用されるほかに、例えば、プラスミドを発現カセットとして染色体に導入するような場合にはその発現カセットの構築に必要な宿主（例えば大腸菌）での自律複製能は必要だが、その発現カセットを導入する宿主（例えば酵母）での自律複製能は必ずしも必要でない。これらの組換えベクターは例えば大腸菌と酵母の両方で使用可能なように設計したシャトルベクター等も使用可能である。プラスミドとしては、大腸菌由来のプラスミド（例えばｐＥＴ２１ａ（＋）、ｐＥＴ３２ａ（＋）、ｐＥＴ３９ｂ（＋）、ｐＥＴ４０ｂ（＋）、ｐＥＴ４３．１ａ（＋）、ｐＥＴ４４ａ（＋）、ｐＫＫ２２３−３、ｐＧＥＸ４Ｔ、ｐＵＣ１１８、ｐＵＣ１１９、ｐＵＣ１８、ｐＵＣ１９等）、枯草菌由来のプラスミド（例えばｐＵＢ１１０、ｐＴＰ５等）、酵母由来のプラスミド（例えばＹＥｐ１３、ＹＥｐ２４、ＹＣｐ５０等）、また酵母でもピキア・パストリス用のプラスミド（例えばｐＰＩＣＺ、ｐＰＩＣＺα、ｐＨＩＬ−Ｄ２、ｐＰＩＣ３．５、ｐＨＩＬ−Ｓ１、ｐＰＩＣ９、ｐＰＩＣ９Ｋ、ｐＰＩＣ６、ｐＧＡＰＺ、ｐＰＩＣ９Ｋ、ｐＰＩＣ３．５Ｋ、ｐＡＯ８１５、ｐＦＬＤ、ｐＪＬ−ＩＸ、ｐＪＬ−ＳＸ）などが挙げられ、ファージＤＮＡとしてはλファージ（λｇｔ１１、λＺＡＰ等）が挙げられる。さらに、ワクシニアウイルスなどの動物ウイルス、バキュロウイルスなどの昆虫ウイルスベクターを用いることもできる。また、クローニング、シークエンス確認用にｐＣＲ４−ＴＯＰＯ（登録商標）などの市販のクローニング用ベクターを用いてもよい。

ベクターに本発明のＤＮＡを挿入するには、まず、精製されたＤＮＡを適当な制限酵素で切断し、適当なベクターＤＮＡの制限酵素部位またはマルチクローニングサイトに挿入してベクターに連結する方法などが採用される。例えば本発明のＤＮＡは、通常知られている方法により合成することができ、ベクターに組み込むため、適当な制限酵素の切断部位を両末端に含むように、プライマーを用いてＰＣＲ法により増幅してもよい。ＰＣＲ反応の条件は、当業者が適宜決定することができるが、例えば９４℃で３０秒→６０℃で３０秒→７４℃で３０秒を１サイクルとして３０サイクル反応させ、増幅されたＤＮＡを得ることができる。

その他、組換えベクターには、プロモーターおよび本発明のＤＮＡに加えて、所望によりエンハンサーなどのシスエレメント、スプライシングシグナル、ポリＡ付加シグナル、選択マーカー、リボソーム結合配列（ＳＤ配列）などが連結されていてもよい。選択マーカーの例としては、カナマイシン、アンピシリン、テトラサイクリン、クロラムフェニコールなどの薬剤耐性マーカー、ロイシン、ヒスチジン、リジン、メチオニン、アルギニン、トリプトファン、ウラシルなどの栄養要求性マーカーが挙げられるがこれに限定されない。

ＤＮＡ断片とベクター断片とを連結させるには、公知のＤＮＡリガーゼを用いる。そして、ＤＮＡ断片とベクター断片とをアニーリングさせた後連結させ、組換えベクターを作成する。好ましくは市販のライゲーションキット、例えばライゲーションｈｉｇｈ（東洋紡株式会社製）を用いて、規定の条件にてライゲーション反応を行うことにより組換えベクターを得ることができる。

また、これらのベクターを、必要であればボイル法、アルカリＳＤＳ法、磁性ビーズ法およびそれらの原理を使用した市販されているキット等により精製し、さらに例えばエタノール沈殿法、ポリエチレングリコール沈殿法などの濃縮手段により濃縮することができる。

形質転換に使用する宿主としては、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼを発現できるものであれば特に限定されるものではない。例えば、細菌（大腸菌、枯草菌等）、酵母、動物細胞（ＣＯＳ細胞、ＣＨＯ細胞等）、昆虫細胞が挙げられる。本発明においては、細菌または真核微生物が好ましく、サッカロミセス・セレビシェまたはピキア・パストリスなどの酵母が特に好ましい。例えば、ピキア・パストリスＧＳ１１５株、ピキア・パストリスＫＭ７１株、ピキア・パストリスＫＭ７１Ｈ株、ピキア・パストリスＳＭＤ１１６８株、ピキア・パストリスＳＭＤ１１６８Ｈ株、ピキア・パストリスＭＳ１０５株等を使用できる。

宿主細胞への組換えベクターの導入方法は、特に限定されないが、例えばカルシウムイオンを用いる方法、エレクトロポレーション法、リポフェクション法等が挙げられる。

本発明のＤＮＡを含む形質転換体は、その組換えベクターが有するマーカー遺伝子により、例えば、アンピシリン、カナマイシンなどの抗生物質を含むＬＢ培地寒天プレート上でコロニーを形成することにより選抜することができるが、クローニングされた宿主細胞が本発明の組換えベクターにより形質転換されたものかどうかを確認するため、一部を用いて、ＰＣＲ法によるインサートの増幅確認、またはシーケンサーを用いたダイデオキシ法による配列解析をしてもよい。また、上記の自律複製可能なプラスミドを導入する形式の他に、染色体ＤＮＡと相同な領域をベクター内に配置し、相同組換えを起こさせて目的ＤＮＡを導入させる染色体組み込み型の導入方法を使用してもよい。

上記形質転換体を培地で培養する方法は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って行われる。大腸菌や酵母菌等の微生物を宿主として得られた形質転換体を培養する培地としては、微生物が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類等を含有し、形質転換体の培養を効率的に行うことができる培地であれば、天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。

炭素源としては資化可能な炭素化合物であればよく、例えば、グルコースなどの糖類、グリセリンなどのポリオール類、メタノールなどのアルコール類、またはピルビン酸、コハク酸もしくはクエン酸等の有機酸類を使用することができる。また、窒素源としては利用可能な窒素化合物であればよく、例えば、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、カゼイン加水分解物、大豆粕アルカリ抽出物、メチルアミンなどのアルキルアミン類、またはアンモニアもしくはその塩などを使用することができる。その他、リン酸塩、炭酸塩、硫酸塩、マグネシウム、カルシウム、カリウム、鉄、マンガン、亜鉛などの塩類、特定のアミノ酸、特定のビタミン、消泡剤なども必要に応じて使用してもよい。また、イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシドなどのタンパク質発現誘導剤を必要に応じて培地に添加してもよい。

培養は、通常、振盪培養または通気攪拌培養などの好気的条件下、好ましくは０〜４０℃、より好ましくは１０〜３７℃、特に好ましくは１５〜３７℃で培養を行う。培養期間中、培地のｐＨは宿主の発育が可能で、生産された（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの活性が損なわれない範囲で適宜変更することができるが、好ましくはｐＨ４〜８程度の範囲である。ｐＨの調整は、無機または有機酸、アルカリ溶液等を用いて行う。培養中は必要に応じてアンピシリンやテトラサイクリン等の抗生物質を培地に添加してもよい。

培養後、本発明のキメラ組換えタンパク質が菌体内または細胞内に生産される場合には、通常知られている方法、例えば、菌体または細胞を機械的方法、リゾチームなどを用いた酵素的方法または界面活性剤などを用いた化学的処理によって破壊することにより当該酵素を抽出できる。また、当該酵素が菌体外または細胞外に生産される場合には、培養液をそのまま使用するか、遠心分離等により菌体または細胞を除去する。

本発明のキメラ組換えタンパク質が封入体として得られる場合には、好ましくはさらにリフォールディングを行うことにより、活性型でかつ可溶性の本発明のキメラ組換えタンパク質を得ることができる。リフォールディングは、当技術分野で通常用いられる方法に従って実施することができ、例えば、Ａｐｐｌｉｅｄ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ（１９９８）６４：１４０５−１４１１に記載された方法に従って、実施することができる。

具体的には、培養後、遠心分離等の方法により集菌した後、細胞を破砕し、封入体を変性剤で可溶化することによって、本発明のキメラ組換えタンパク質を抽出することができる。細胞の破砕は、常法で、例えば超音波により実施できる。懸濁媒体としてはｐＨ５．０〜８．０のｐＨ値に調整した好適な緩衝液（例えばクエン酸緩衝液やリン酸緩衝液等）を用いることが好ましい。この際、細胞の破砕を促進させるためＥＤＴＡを添加してもよい。このようにして細胞を破砕した後に、不溶性成分（封入体）を任意の方法で、遠心分離するか、濾過することにより分取する。異種のタンパク質をできる限り除去するため、例えば水、リン酸緩衝液を用いて洗浄することが好ましいが、場合により界面活性剤や４Ｍ程度の尿素で洗浄してもよい。得られた沈殿（ペレット）を変性剤で可溶化するが、変性剤としては、公知の変性剤、特にグアニジンまたは尿素を使用することができる。この可溶化に当っての変性剤の濃度は、グアニジンでは４〜８モル／リットル、好ましくは約６モル／リットル、尿素では５〜９モル／リットル、好ましくは約８モル／リットルである。グアニジンは通常グアニジン塩酸塩等のグアニジンの酸付加塩として用いられる。

上記のようにして封入体の可溶化を行った後、遠心分離等で不純物を除去し、得られた上清を必要により精製工程に付した後、リフォールディング（活性化、再生化）を行うことができる。リフォールディングは、精製した本発明のキメラ組換えタンパク質にレドックスバッファーを添加するか、あるいは本発明のキメラ組換えタンパク質を含有する上澄液をレドックスバッファーで希釈することにより行われる。本発明のキメラ組換えタンパク質を含有する上澄液をレドックスバッファーで希釈する場合、変性剤の濃度を活性化に適した中性ｐＨにおいて不作用濃度まで希釈することが必要であり、グアニジンでは０〜２．０モル／リットル、好ましくは約１モル／リットル以下まで、尿素では０〜４．０モル／リットル、好ましくは約２モル／リットル以下まで希釈する。

レドックスバッファーとしては、酸化型グルタチオン（ＧＳＳＧ）および還元型グルタチオン（ＧＳＨ）、システインおよびシスチン、またはシステアミンおよびシスタミンを含有する緩衝液（例、リン酸緩衝液、酢酸緩衝液、クエン酸緩衝液、Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ緩衝液）が好ましいものとして挙げられ、中でもＧＳＳＧおよびＧＳＨを含有するＴｒｉｓ／ＨＣｌ緩衝液が好ましい。ＧＳＳＧおよびＧＳＨを用いる場合、ＧＳＳＧの濃度は０．１〜１０ミリモル／リットル、好ましくは０．１〜１．０ミリモル／リットル、ＧＳＨの濃度は０．１〜１０ミリモル／リットル、好ましくは０．１〜１．０ミリモル／リットルである。

また、レドックスバッファーには、通常、グリセリン等の添加剤を添加してもよい。添加量としてグリセリンは１〜５０％、好ましくは５〜２０％の濃度で添加するのがよい。また、当該酵素は補酵素としてＦＡＤが必要なので、これを添加してもよい。添加量としては１〜１０００μＭ、好ましくは１０〜１００μＭの濃度で添加するのがよい。

該リフォールディングに当っての温度は０〜３０℃、好ましくは０〜１５℃、ｐＨは７〜９、好ましくはｐＨ７．５〜８．５である。リフォールディングに要する時間は通常１時間〜１０週間、好ましくは３日〜１週間である。

その後、タンパク質の単離精製に用いられる一般的な生化学的方法、例えば硫安分画法、有機溶媒沈殿法、イオン交換体などによる吸着処理法、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、電気泳動法、限外ろ過膜を使用しての濃縮・脱塩・バッファー交換等を単独でまたは適宜組み合わせて用いることにより、前記培養物中から本発明のキメラ組換えタンパク質を単離精製することができる。本発明のキメラ組換えタンパク質が得られたか否かは、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動等により確認することができる。

本発明はまた、本発明のキメラ組換えタンパク質とカルボニル化合物およびシアノ基供与体とを反応させ、反応液から光学活性シアノヒドリンを回収することを含む、光学活性シアノヒドリンの製造方法に関する。

このような光学活性シアノヒドリンの製造方法としては、上記のように製造した本発明のＤＮＡを含む組換えベクターを用いて宿主細胞を形質転換し、得られた形質転換体を培養し、培養物とカルボニル化合物およびシアノ基供与体とを反応させ、反応液から光学活性シアノヒドリンを回収することを含む方法が挙げられる。あるいは、無細胞タンパク質合成系を用いる方法が挙げられる。無細胞タンパク質合成系は、細胞抽出液を用いて試験管内でタンパク質を合成する系である。「無細胞タンパク質合成系」は、ｍＲＮＡの情報を読み取ってリボソーム上でタンパク質を合成する無細胞翻訳系とＤＮＡを鋳型としてＲＮＡを合成する無細胞転写系との両者を含む。無細胞タンパク質合成系は、系を容易に改変することができるため、目的のタンパク質に適した発現系を構築しやすいという利点がある。なお、無細胞タンパク質合成系の詳細については、特開２０００−１７５６９５号などに記載されている。

従って、本発明のキメラ組換えタンパク質とカルボニル化合物およびシアノ基供与体とを反応させることには、精製された本発明のキメラ組換えタンパク質とカルボニル化合物およびシアノ基供与体とを反応させることだけでなく、本発明のＤＮＡを含む形質転換体を培養した培養物とカルボニル化合物およびシアノ基供与体とを反応させること、ならびに無細胞タンパク質合成系から得られる反応液とカルボニル化合物およびシアノ基供与体とを反応させることも含まれる。

ここで「培養物」とは、培養上清、培養細胞、培養菌体、細胞または菌体の破砕物、およびこれらから精製された本発明のキメラ組換えタンパク質自体のいずれをも意味するものである。本発明においては、好ましくは精製された本発明のキメラ組換えタンパク質を用いる。

シアノヒドリンを合成する酵素反応の形態については制限されず、水・有機溶媒混合系、有機溶媒系、有機溶媒水二相系、固定化酵素を使う反応系などのいずれの反応系においても効果的に実施することができる。

光学活性シアノヒドリンとは、一方の鏡像異性体が他方の鏡像異性体より多く含まれているシアノヒドリン、または、いずれか一方の鏡像異性体のみからなるシアノヒドリンをいう。（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼを用いることにより、用いた基質に応じて（Ｒ）−シアノヒドリンおよび（Ｓ）−シアノヒドリンの双方を製造することができる。

ここでカルボニル化合物とは、アルデヒドまたはケトンをいい、具体的には、次式（Ｉ）：
Ｒ^１−ＣＯ−Ｒ^２ （Ｉ）
（式中、Ｒ^１およびＲ^２は、互いに同一でも異なっていてもよく、それぞれ水素原子または炭素数２２以下の１価の炭化水素基を表し、前記炭化水素基中、−ＣＨ_２−ならびに−ＣＨ_３のＣＨ_２はカルボニル基、スルホニル基、−Ｏ−またはＳ−で置き換えられていてもよく、＝ＣＨ_２は＝Ｏまたは＝Ｓで置き換えられていてもよく、また−ＣＨ_２−のＣ−Ｈ、−ＣＨ_３のＣ−Ｈ、＞ＣＨ−のＣ−Ｈ、＝ＣＨ−のＣ−Ｈならびに＝ＣＨ_２のＣ−Ｈは、ＮまたはＣ−ハロゲンで置き換えられていてもよく、また、Ｒ^１およびＲ^２は、共同して２価の基を表してもよい。）で示される。

前記式（Ｉ）において、炭素数２２以下の１価の炭化水素基とは、直鎖状または分岐状の鎖状炭化水素基、側鎖のないまたは側鎖のある単環式炭化水素基、側鎖のないまたは側鎖のある多環式炭化水素基、側鎖のないまたは側鎖のあるスピロ炭化水素基、側鎖のないまたは側鎖のある環集合構造の炭化水素基、あるいは、前記の環式炭化水素基が置換した鎖状炭化水素基のいずれをも含む。また、飽和な炭化水素基ならびに不飽和な炭化水素基のいずれをも含むが、不飽和な炭化水素基において、Ｃ＝Ｃ＝Ｃのアレン構造を含む基は除く。

なお、以下においては、側鎖のない芳香族基、側鎖のある芳香族基、ならびに、フェニルフェニル基または側鎖のあるフェニルフェニル基などを併せて、アリール基といい、このアリール基で置換された直鎖状または分岐状のアルキル基をアラルキル基という。他の環式炭化水素基に関しても、特に明記しない場合、環上に側鎖のないものとあるものを併せて指す場合には、単にシクロアルキル基等の名称を用いる。鎖状炭化水素基についても、直鎖状のものと分岐状のものを併せて指す場合には、単にアルキル基等の名称を用いる。

前記炭化水素基中、−ＣＨ_２−がカルボニル基、スルホニル基、−Ｏ−またはＳ−で置き換えられると、それぞれケトン、スルホン、エーテルまたはチオエーテルの構造が導入され、−ＣＨ_３の−ＣＨ_２−がカルボニル基、−Ｏ−またはＳ−で置き換わると、それぞれホルミル基（アルデヒド）、水酸基またはメルカプト基に変わり、あるいは、末端の＝ＣＨ_２が＝Ｏまたは＝Ｓに置き換わると、ケトン、チオケトンの構造が導入されることを意味し、また、−ＣＨ_２−のＣ−ＨがＮに変わると、−ＮＨ−となり、＞ＣＨ−のＣ−ＨがＮに変わると、＞Ｎ−となり、＝ＣＨ−のＣ−ＨがＮに変わると、＝Ｎ−となり、末端の−ＣＨ_３のＣ−ＨがＮに変わると、−ＮＨ_２が導入され、＝ＣＨ_２のＣ−ＨがＮに変わると、＝ＮＨとなる。また、−ＣＨ_３、−ＣＨ_２−、＝ＣＨ−、≡ＣＨまたは＞ＣＨ−のＣ−ＨがＣ−ハロゲンで置き換えられると、当該炭素上へハロゲン原子を置換することになる。なお、炭素鎖中における−Ｏ−、−Ｓ−、Ｎへの置き換えは、当該炭化水素基に対する、それぞれオキサ置換、チア置換、アザ置換に当たり、例えば、炭化水素環の環の骨格炭素で起こると、炭化水素環のそれぞれ含酸素複素環、含硫黄複素環、含窒素複素環への変換となる。該炭化水素基中、ＣＨ_２ならびにＣ−Ｈにおける置き換えは、それぞれ独立に行われてよく、加えて、前記の置き換えを行った後、なお当該炭素上にＣＨ_２またはＣ−Ｈが残存する際には、更に置き換えがなされてもよい。更には、前記の置き換えにより、−ＣＨ_２−ＣＨ_３の−ＣＯ−Ｏ−Ｈ；カルボン酸構造への変換などもなされる。

本明細書において、ハロゲン原子とは、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、ヨウ素原子を指すが、フッ素原子、塩素原子、臭素原子が好ましい。

従って、前記炭化水素基としては、鎖状炭化水素基ならびに環式炭化水素基など環構造を有する炭化水素基のいずれをも選択でき、例えば、飽和鎖状炭化水素基である直鎖状または分岐状のアルキル基、不飽和鎖状炭化水素基である直鎖状または分岐状のアルケニル基、直鎖状または分岐状のアルキニル基、直鎖状または分岐状のアルカジエニル基など、飽和な環式炭化水素基であるシクロアルキル基、不飽和な環式炭化水素基であるシクロアルケニル基、シクロアルキニル基、シクロアルカジエニル基など、芳香族炭化水素基であるアリール基、アラルキル基、アリールアルケニル基などが挙げられる。

前記炭化水素基中のＣＨ_２がカルボニル基、スルホニル基、ＯまたはＳで、またはＣ−ＨがＮまたはＣ−ハロゲンで置き換えられた基としては、ケトン、アルデヒド、カルボン酸、スルホン、エーテル、チオエーテル、アミン、アルコール、チオール、ハロゲン、複素環（例えば、含酸素複素環、含硫黄複素環、含窒素複素環）などの構造を一つ以上含む基が挙げられる。なお、含酸素複素環、含硫黄複素環、含窒素複素環とは、環式炭化水素基の環骨格の炭素がそれぞれ酸素、硫黄、窒素で置き換わるものを意味し、更には、これらヘテロ原子置換が二種以上ある複素環であってもよい。前記の置換を有する炭化水素基としては、例えば、ケトン構造のアセチルメチル基、アセチルフェニル基；スルホン構造のメタンスルホニルメチル基；エーテル構造のメトキシメチル基、メトキシエチル基、エトキシエチル基、メトキシプロピル基、ブトキシエチル基、エトキシエトキシエチル基、メトキシフェニル基、ジメトキシフェニル基、フェノキシメチル基；チオエーテル構造のメチルチオメチル基、メチルチオフェニル基；アミン構造のアミノメチル基、２−アミノエチル基、２−アミノプロピル基、３−アミノプロピル基、２，３−ジアミノプロピル基、２−アミノブチル基、３−アミノブチル基、４−アミノブチル基、２，３−ジアミノブチル基、２，４−ジアミノブチル基、３，４−ジアミノブチル基、２，３，４−トリアミノブチル基、メチルアミノメチル基、ジメチルアミノメチル基、メチルアミノエチル基、プロピルアミノメチル基、シクロペンチルアミノメチル基、アミノフェニル基、ジアミノフェニル基、アミノメチルフェニル基；含酸素複素環のテトラヒドロフラニル基、テトラヒドロピラニル基、モルホリルエチル基；含酸素複素芳香環のフリル基、フルフリル基、ベンゾフリル基、ベンゾフルフリル基；含硫黄複素芳香環のチエニル基；含窒素複素芳香環のピロリル基、イミダゾリル基、オキサゾリル基、チアジアゾリル基、ピリジル基、ピリミジニル基、ピリダジニル基、ピラジニル基、テトラジニル基、キノリル基、イソキノリル基、ピリジルメチル基；アルコール構造の２−ヒドロキシエチル基、２−ヒドロキシプロピル基、３−ヒドロキシプロピル基、２，３−ジヒドロキシプロピル基、２−ヒドロキシブチル基、３−ヒドロキシブチル基、４−ヒドロキシブチル基、２，３−ジヒドロキシブチル基、２，４−ジヒドロキシブチル基、３，４−ジヒドロキシブチル基、２，３，４−トリヒドロキシブチル基、ヒドロキシフェニル基、ジヒドロキシフェニル基、ヒドロキシメチルフェニル基、ヒドロキシエチルフェニル基；チオール構造の２−メルカプトエチル基、２−メルカプトプロピル基、３−メルカプトプロピル基、２，３−ジメルカプトプロピル基、２−メルカプトブチル基、３−メルカプトブチル基、４−メルカプトブチル基、メルカプトフェニル基；ハロゲン化炭化水素基である２−クロロエチル基、２−クロロプロピル基、３−クロロプロピル基、２−クロロブチル基、３−クロロブチル基、４−クロロブチル基、フルオロフェニル基、クロロフェニル基、ブロモフェニル基、ジフルオロフェニル基、ジクロロフェニル基、ジブロモフェニル基、クロロフルオロフェニル基、トリフルオロフェニル基、トリクロロフェニル基、フルオロメチルフェニル基、トリフルオロメチルフェニル基；アミン構造とアルコール構造を有する２−アミノ−３−ヒドロキシプロピル基、３−アミノ−２−ヒドロキシプロピル基、２−アミノ−３−ヒドロキシブチル基、３−アミノ−２−ヒドロキシブチル基、２−アミノ−４−ヒドロキシブチル基、４−アミノ−２−ヒドロキシブチル基、３−アミノ−４−ヒドロキシブチル基、４−アミノ−３−ヒドロキシブチル基、２，４−ジアミノ−３−ヒドロキシブチル基、３−アミノ−２，４−ジヒドロキシブチル基、２，３−ジアミノ−４−ヒドロキシブチル基、４−アミノ−２，３−ジヒドロキシブチル基、３，４−ジアミノ−２−ヒドロキシブチル基、２−アミノ−３，４−ジヒドロキシブチル基、アミノヒドロキシフェニル基；ハロゲンと水酸基で置換された炭化水素基であるフルオロヒドロキシフェニル基、クロロヒドロキシフェニル基；カルボン構造のカルボキシフェニル基などが挙げられる。

Ｒ^１およびＲ^２で表される非対称の２価の基としては、特に制限はなく、例えば、ノルボルナン−２−イリデン、２−ノルボルネン−５−イリデンが挙げられる。

前記式（Ｉ）で示されるカルボニル化合物としては、例えば、ベンズアルデヒド、ｍ−フェノキシベンズアルデヒド、ｐ−メチルベンズアルデヒド、２−クロロベンズアルデヒド、３−クロロベンズアルデヒド、４−クロロベンズアルデヒド、ｍ−ニトロベンズアルデヒド、３，４−メチレンジオキシベンズアルデヒド、２，３−メチレンジオキシベンズアルデヒド、フェニルアセトアルデヒド、フルフラール等の芳香族アルデヒド；アセトアルデヒド、ブチルアルデヒド、イソブチルアルデヒド、バレルアルデヒド、シクロヘキサンアルデヒド等の脂肪族アルデヒド；エチルメチルケトン、ブチルメチルケトン、メチルプロピルケトン、イソプロピルメチルケトン、メチルペンチルケトン、メチル（２−メチルプロピル）ケトン、メチル（３−メチルブチル）ケトン等の飽和脂肪族ケトン；メチル（２−プロペニル）ケトン、（３−ブテニル）メチルケトン等の不飽和脂肪族ケトン；（３−クロロプロピル）メチルケトン等のアルキル（ハロアルキル）ケトン；２−（アルコキシカルボニルアミノ）−３−シクロヘキシルプロピオンアルデヒド等の２−（保護アミノ）アルデヒド；３−メチルチオプロピオンアルデヒド等のアルキルチオ脂肪族アルデヒドが挙げられる。

本発明において、基質としてのカルボニル化合物をシアノヒドリンに変換するためには、シアノ基供与体の存在下で酵素反応を実施する。本明細書中、シアノ基供与体とは、反応系へ添加することによって、シアニド、すなわちシアン化物イオン（ＣＮ−）を生じる物質を意味し、例えば、シアン化水素、青酸（シアン化水素酸）、シアン化ナトリウムやシアン化カリウムなどのシアン化水素の塩、または、アセトンシアノヒドリン等のシアノヒドリン類が挙げられる。特に回収リサイクルが容易な青酸（シアン化水素酸）を用いるのが好ましい。シアノ基供与体の供給方法としては常法により液体として供給する方法、または常法により気体として供給する方法のいずれをも採用することができる。

本発明のキメラ組換えタンパク質は、従来の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼと比べて、ハロゲン化シアノヒドリン合成反応を触媒する活性が高い。ハロゲン化シアノヒドリンは、ハロゲン置換基を有するカルボニル化合物を基質として、シアノ基供与体の存在下での酵素反応によって合成される。ハロゲン置換基を有するカルボニル化合物としては、好ましくはハロゲン化ベンズアルデヒドが挙げられ、ハロゲン化ベンズアルデヒドからは、ハロゲン化マンデロニトリルが合成される。ハロゲン化ベンズアルデヒドとしては、Ｒ−クロロベンズアルデヒド（例えば、Ｒ−２−クロロベンズアルデヒド、Ｒ−３−クロロベンズアルデヒド、Ｒ−４−クロロベンズアルデヒド）、ブロモベンズアルデヒド（例えば、Ｒ−２−ブロモベンズアルデヒド、Ｒ−３−ブロモベンズアルデヒド、Ｒ−４−ブロモベンズアルデヒド）、フルオロベンズアルデヒド（例えば、Ｒ−２−フルオロベンズアルデヒド、Ｒ−３−フルオロベンズアルデヒド、Ｒ−４−フルオロベンズアルデヒド）などが挙げられる。これらのハロゲン置換基を有するカルボニル化合物から合成される、ハロゲン化シアノヒドリンとしては、Ｒ−クロロマンデロニトリル（例えば、Ｒ−２−クロロマンデロニトリル、Ｒ−３−クロロマンデロニトリル、Ｒ−４−クロロマンデロニトリル）、ブロモマンデロニトリル（例えば、Ｒ−２−ブロモマンデロニトリル、Ｒ−３−ブロモマンデロニトリル、Ｒ−４−ブロモマンデロニトリル）、フルオロマンデロニトリル（例えば、Ｒ−２−フルオロマンデロニトリル、Ｒ−３−フルオロマンデロニトリル、Ｒ−４−フルオロマンデロニトリル）などが挙げられる。

本発明において酵素反応は、有機溶媒系、水系、二相系またはエマルジョン系いずれでも実施できるが、反応原料の濃度を高め、生産性を高めるために、反応溶媒として、水と実質的に混和しない有機溶媒を用いることが好ましい。ここで水系は本発明のＨＮＬを含有する水溶液または緩衝液でクエン酸Ｎａ緩衝液やリン酸緩衝液がその例である。また、ここで、「水と実質的に混和しない有機溶媒」とは、水に任意の割合で溶解する溶媒を除く有機溶媒を意味する。有機溶媒としては、水と実質的に混和せず、基質および生成物を充分に溶解し、酵素反応に悪影響を与えないものであれば特に制限なく用いることができる。このような有機溶媒は、原料のアルデヒドまたはケトンの物性、生成物であるシアノヒドリンの物性に応じて適宜選択することができる。

水と実質的に混和しない有機溶媒としては、具体的には、ハロゲン化されていてもよい炭化水素系溶媒（例えば、直鎖状、分岐状または環状の飽和または不飽和脂肪族炭化水素、芳香族炭化水素）、例えば、ペンタン、ヘキサン、シクロヘキサン、ベンゼン、トルエン、キシレン、塩化メチレン、クロロホルムなど；ハロゲン化されていてもよいアルコール系溶媒（例えば、直鎖状、分岐状または環状の飽和または不飽和脂肪族アルコール、アラルキルアルコール）、例えば、ｎ−ブタノール、イソブタノール、ｔ−ブタノール、ヘキサノール、シクロヘキサノール、ｎ−アミルアルコールなど；ハロゲン化されていてもよいエーテル系溶媒（例えば、直鎖状、分岐状または環状の飽和または不飽和脂肪族エーテル、芳香族エーテル）、例えば、ジエチルエーテル、ジプロピルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジブチルエーテル、ｔ−ブチルメチルエーテル、ジメトキシエタンなど；ハロゲン化されていてもよいエステル系溶媒（例えば、直鎖状、分岐状または環状の飽和または不飽和脂肪族エステル、芳香族エステル）、例えば、ギ酸メチル、酢酸メチル、酢酸エチル、酢酸ブチル、プロピオン酸メチル等が挙げられ、これらを単独で用いてもまた２種以上を混合して用いてもよい。特に、ジイソプロピルエーテル、ジブチルエーテル、ｔ−ブチルメチルエーテル、ｔ−ブチルエチルエーテル、酢酸エチルを用いるのが好ましい。

前記有機溶媒は、水または水性緩衝液で飽和されているのが好ましい。ここで水性緩衝液としては、特に制限はないが、酵素活性の最適ｐＨ（ｐＨ４〜７）の付近において緩衝能を発揮する緩衝液、例えば、リン酸、クエン酸、グルタル酸、リンゴ酸、マロン酸、ｏ−フタル酸、コハク酸などの塩等によって構成される緩衝液等が好ましく用いられる。

本発明において、酵素、基質およびシアノ基供与体の使用量、反応温度は、用いる基質に応じて適宜決定される。通常、酵素の使用量は基質であるカルボニル化合物５０ｍｍｏｌに対して２５０〜１００，０００単位、好ましくは５００〜５０，０００単位である。

ここで、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの活性１単位は、（Ｒ）−マンデロニトリル（アルドリッチ製）を基質として１分間に１μｍｏｌのベンズアルデヒドを遊離する酵素量を１Ｕと定義した。測定方法は、２０℃に保温した０．２Ｍクエン酸−ＮａＯＨバッファー（ｐＨ５．５）７ｍＬに０．９３１μＬのＲ−マンデロニトリルを添加混合し、３ｍＬずつ測定セルと対照セルに分注し、分光光度計の２０℃に保温したセルホルダーの測定側と対照側にセット後、濃縮酵素液を１０μＬ添加して３０秒間の２４９．６ｎｍの吸光度変化からベンズアルデヒドの２４９．６ｎｍでのモル吸光係数１２３５０（Ｍ^−１・ｃｍ^−１）を用いて容量活性（Ｕ／ｍＬ）を算出した。カルボニル化合物の濃度は通常０．０１〜１０ｍｏｌ／Ｌの範囲に設定し、シアノ基供与体は用いるカルボニル化合物に対して１〜１０倍モル、好ましくは１〜５倍モル、より好ましくは１〜３倍モルの濃度で添加する。本反応は基質濃度によって酵素活性および反応速度が変化するので、用いるカルボニル化合物の種類に応じて基質濃度を適宜決定する。反応時間は、基質であるカルボニル化合物の転換率が８０％以上、好ましくは９０％以上に達するまでの時間が適当であるが、これに限定されない。反応温度は酵素の活性が十分発揮される温度であればよく、通常０〜４０℃、好ましくは４〜３０℃である。

反応系において、回分式で反応を行う場合には、撹拌などにより、酵素が反応系内に分散するようにする。カラムなどに固定化酵素を充填して反応を行う場合には、基質を含む溶液を適当な流速でカラムに流入させ、流出液を採取することで実施できる。回分反応の場合には、反応が完結した時点で混合を止め、生産物が溶解している有機相を常法により取り出すことで生産物を回収できる。これらの酵素は初回と同じ方法で調製した基質を含む溶液と混合することによって再使用することができる。

酵素反応終了後のシアノヒドリンを含む反応液からの反応溶媒および未反応のシアノ基供与体の回収は、蒸留等の操作をすることにより行うことができる。蒸留は、シアノヒドリンが高温では不安定であるため、常圧高温下で実施するよりも、比較的低い温度で減圧下で実施することが好ましい。また、この蒸留操作においては、公知のシアノヒドリンの安定化剤を添加することもできる。安定化剤としては蒸留ボトムを酸性に維持できるものであればよく、ｐ−トルエンスルホン酸、酢酸などの有機酸、硫酸などの無機酸などをシアノヒドリンに対して１／２００〜１／１０モル添加することで実施できる。

以下本発明を、実施例を参照することにより詳細に説明するが、本発明の範囲は実施例の範囲に限定されない。

実施例１：キメラ組換え酵素ＤＮＡの作成
ハロゲン化シアノヒドリン合成反応を触媒する活性は高いが、耐酸性・耐熱性が低いＨＮＬ１型（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ（ＰａＲＨＮＬ１）のＤＮＡ（配列番号１）と、ハロゲン化シアノヒドリン合成反応を触媒する活性は低いが、耐酸性・耐熱性が高いＨＮＬ５型（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ（ＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅ）のＤＮＡ（配列番号３）をハイブリッドさせることで両酵素の利点を併せ持つキメラ組換え酵素の創出を検討した。両酵素をコードするＤＮＡの塩基配列を元にして以下のＤＮＡ（ＲＥ−１、ＲＥ−２、ＲＥ−３、ＲＥ−４、ＲＥ−５）を設計し、化学合成した。ＰａＲＨＮＬ１のアミノ酸配列を配列番号２に、ＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅのアミノ酸配列を配列番号４に示す。

ＲＥ−１はＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅの１〜３３６位の塩基に続いてＰａＲＨＮＬ１の３３７〜１６１１位の塩基をつなげたキメラ組換えＤＮＡであり、該ＤＮＡの塩基配列を配列番号５に示す。該ＤＮＡがコードするアミノ酸配列は、ＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅのアミノ酸配列における１〜１１２位のアミノ酸に続いてＰａＲＨＮＬ１のアミノ酸配列における１１３〜５３６位のアミノ酸をつなげた配列に相当する（配列番号６）。

ＲＥ−２はＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅの１〜５８２塩基に続いてＰａＲＨＮＬ１の５８３〜１６１１塩基をつなげたキメラ組換えＤＮＡであり、該ＤＮＡの塩基配列を配列番号７に示す。該ＤＮＡがコードするアミノ酸配列は、ＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅのアミノ酸配列における１〜１９４位のアミノ酸に続いてＰａＲＨＮＬ１のアミノ酸配列における１９５〜５３６位のアミノ酸をつなげた配列に相当する（配列番号８）。

ＲＥ−３はＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅの１〜９３９塩基に続いてＰａＲＨＮＬ１の９３７〜１６１１塩基をつなげたキメラ組換えＤＮＡであり、該ＤＮＡの塩基配列を配列番号９に示す。該ＤＮＡがコードするアミノ酸配列は、ＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅのアミノ酸配列における１〜３１３位のアミノ酸に続いてＰａＲＨＮＬ１のアミノ酸配列における３１３〜５３６位のアミノ酸をつなげた配列に相当する（配列番号１０）。

ＲＥ−４はＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅの１〜１３４４塩基に続いてＰａＲＨＮＬ１の１３４２〜１６１１塩基をつなげたキメラ組換えＤＮＡであり、該ＤＮＡの塩基配列を配列番号１１に示す。該ＤＮＡがコードするアミノ酸配列は、ＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅのアミノ酸配列における１〜４４８位のアミノ酸に続いてＰａＲＨＮＬ１のアミノ酸配列における４４８〜５３６位のアミノ酸をつなげた配列に相当する（配列番号１２）。

ＲＥ−５はＰａＲＨＮＬ１の１〜５８２塩基に続いてＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅの５８３〜１５９９塩基をつなげたキメラ組換えＤＮＡであり、該ＤＮＡの塩基配列を配列番号１３に示す。該ＤＮＡがコードするアミノ酸配列は、ＰａＲＨＮＬ１のアミノ酸配列における１〜１９４位のアミノ酸に続いてＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅのアミノ酸配列における１９５〜５３２位のアミノ酸をつなげた配列に相当する（配列番号１４）。

実施例２：ピキア・パストリスにおけるキメラ組換えＤＮＡの異種発現用の発現カセットの構築
Ｍｕｌｔｉ−Ｃｏｐｙ Ｐｉｃｈｉａ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製）を用いてピキア・パストリスにおいてキメラ組換えＤＮＡを異種発現させるための発現カセットを作成した。発現カセットにはメタノールでの誘導発現で酵素を分泌させるためのシグナル配列にα−ファクターのシグナル配列を採用しているｐＰＩＣ９Ｋベクターを用いた。方法は以下に従った。まず、ｐＰＩＣ９Ｋに各（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼをコードするＤＮＡを制限酵素サイトＥｃｏＲＩとＮｏｔＩを介してクローニングするために実施例１で合成した各ＤＮＡをテンプレートとして２種のプライマーを用いてＰＣＲ反応を行った。プライマーの組み合わせはＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅはプライマー１とプライマー２、ＰａＲＨＮＬ１はプライマー３とプライマー４、ＲＥ−１、ＲＥ−２、ＲＥ−３、ＲＥ−４はプライマー１とプライマー４、ＲＥ−５はプライマー２とプライマー３を用いた。増幅には正確性の高い、「ＫＯＤ ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ」（東洋紡績製）を使用した。マニュアルに従って３０μＬの滅菌水に、５μＬの１０×Ｂｕｆｆｅｒ＃１、５μＬのｄＮＴＰ（各２ｍＭ）ミックス、２μＬの２５ｍＭ塩化マグネシウム溶液、各２０ｐｍｏｌのプライマー、テンプレートとして１μＬの１０ｎｇ／μＬの各（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼＤＮＡ溶液を添加混合後、１μＬのＫＯＤ ＤＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅを添加（全量５０μＬ）し、混合溶液を作成した。９４℃で２分間の変性工程から出発して、３０サイクルの増幅（９４℃で３０秒、６０℃で３０秒、７４℃で３０秒）を行った。ＰＣＲ反応で増幅した当該断片はプラスミドｐＰＩＣ９Ｋ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製）にＥｃｏＲＩ、ＮｏｔＩ切断部位を介してクローニングした。ベクター部分から組み込まれた（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼＤＮＡの移行が正しいことを、配列決定によって確認した。形成されたピキア・パストリスにおける発現用のプラスミドを、それぞれｐ９Ｋ−ＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅ、ｐ９Ｋ−ＰａＲＨＮＬ１、ｐ９Ｋ−ＲＥ−１、ｐ９Ｋ−ＲＥ−２、ｐ９Ｋ−ＲＥ−３、ｐ９Ｋ−ＲＥ−４、ｐ９Ｋ−ＲＥ−５と名づけた。
プライマー１（配列番号１５）
５’−ＧＧＧＧＧＧＧＡＡＴＴＣＣＴＴＧＣＣＡＡＴＡＣＴＴＣＴＧＣＴＣＡＴＧＡＴＴＴＴＡＧＣ−３’
プライマー２（配列番号１６）
５’−ＧＧＧＧＧＧＧＣＧＧＣＣＧＣＴＣＡＣＡＴＧＧＡＣＴＣＴＴＧＡＡＴＡＴＴＡＴＧＡＡＴＡＧＣＣ−３’
プライマー３（配列番号１７）
５’−ＧＧＧＧＧＧＧＡＡＴＴＣＣＴＴＧＣＣＡＣＧＡＣＴＴＣＴＧＡＴＣＡＴＧ−３’
プライマー４（配列番号１８）
５’−ＧＧＧＧＧＧＧＣＧＧＣＣＧＣＴＴＡＡＡＧＡＡＣＣＡＡＧＧＡＴＧＣＴＧＣＴＧＡＣ−３’

実施例３：ピキア・パストリスにおけるキメラ組換え酵素の発現試験
プラスミドｐＰＩＣ９Ｋに各ＤＮＡを導入した発現用のプラスミドｐ９Ｋ−ＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅ、ｐ９Ｋ−ＰａＲＨＮＬ１、ｐ９Ｋ−ＲＥ−１、ｐ９Ｋ−ＲＥ−２、ｐ９Ｋ−ＲＥ−３、ｐ９Ｋ−ＲＥ−４、ｐ９Ｋ−ＲＥ−５をそれぞれ制限エンドヌクレアーゼＳａｃＩで切断し、ピキア・パストリスＧＳ１１５（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製）にそれぞれ形質転換した。形質転換はＭｕｌｔｉ−Ｃｏｐｙ Ｐｉｃｈｉａ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製）のプロトコールに従って行った。

ヒスチジン栄養要求性クローンをＭｕｌｔｉ−Ｃｏｐｙ Ｐｉｃｈｉａ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ製）のプロトコールに従って液体培地ＢＭＧＹ２０ｍＬで振盪培養し、培地をＢＭＭＹに変更し、メタノールで１２０時間誘導した。細胞を遠心分離によって取り除き、培養上清を０．４５μｍのフィルターで精密ろ過後、限外ろ過で２００μＬまでに濃縮し、これを濃縮酵素液とした。

実施例４：キメラ組換え酵素の活性測定
（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、シアノ基供与体の存在下、ハロゲン置換基を有するカルボニル化合物を基質としてハロゲン化シアノヒドリンを合成する反応と、ハロゲン化シアノヒドリンを分解する反応の両方を触媒する活性を有し、通常、上記分解反応を触媒する活性の高い（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼは、合成反応を触媒する活性も高いことから、測定が容易なハロゲン化シアノヒドリン分解反応を測定することにより、酵素活性を評価した。

実施例３で得られた各濃縮酵素液に関してＲ−マンデロニトリル（ＲＭＮ）とＲ−２−クロロマンデロニトリル（Ｒ２ＣＭＮ）の２種類の基質に関して分光光度計を用いた活性測定を行った。ＲＭＮに関してはＲＭＮ ０．９３１μＬを０．２Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ５．５）７ｍＬに溶解させ、３ｍＬずつ測定セル、対照セルに分注し、測定セルに０．０１ｍＬの濃縮酵素液を添加混合し、対照セルとのベンズアルデヒド（モル吸光係数：１２３５０Ｍ^−１ｃｍ^−１）に由来する２４９．６ｎｍの吸光度勾配ｍＡＢＳ／ｍｉｎを測定し容量活性（Ｕ／ｍＬ）を算出した。Ｒ２ＣＭＮに関してはＲＭＮとほぼ同様であるが次のように測定した。Ｒ２ＣＭＮエタノール溶液（８００ｇ／Ｌ）０．９３１μＬを０．２Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ５．５）７ｍＬに溶解させ、３ｍＬずつ測定セル、対照セルに分注し、測定セルに０．１ｍＬの濃縮酵素液を添加混合し、対照セルとの２−クロロベンズアルデヒド（モル吸光係数８３４９．６Ｍ^−１ｃｍ^−１）に由来する２４９．６ｎｍの吸光度勾配ｍＡＢＳ／ｍｉｎを測定し容量活性（Ｕ／ｍＬ）を算出した。

次にＲ２ＣＭＮに対する活性が向上したかをみるためにＲ２ＣＭＮに対する活性とＲＭＮに対する活性の比を１０００倍した値を算出しこれをＲ２ＣＭＮに対する活性の高さの指標の「Ｒ２ＣＭＮ活性比」とした。計算式を下に示す。

測定結果を以下の表１示す。

表１から、ＲＥ−１、ＲＥ−２、ＲＥ−３はＰａＲＨＮＬ１と同等のＲ２ＣＭＮ活性を有することがわかる。また、ＲＥ−４およびＲＥ−５はＰａＲＨＮＬ１よりは劣るがＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅよりは高いＲ２ＣＭＮ活性を有していた。

実施例５：キメラ組換え酵素の耐酸性試験
酵素の安定性の指標として以下のように耐酸性試験を実施した。実施例３で得られた濃縮酵素液をＲＭＮ容量活性が１００Ｕ／ｍＬになるように０．２Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ５．５）で希釈または限外ろ過で濃縮した。この濃縮酵素液１０μＬを２００μＬ容積のＰＣＲチューブに入れ、さらに０．２Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ３．０）１９０μＬを混合して３７℃で３時間、サーマルサイクラー（ｉＣｙｃｌｅｒ，日本バイオラッド製、日本）でインキュベートした。その後容量活性を実施例４と同様に測定した。同様に０．２Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ５．５）でも実験し、０．２Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ５．５）の場合の容量活性を１００％として０．２Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ３．０）の場合の残存活性を算出した。結果を以下の表２に示す。

表２から、ＲＥ−２、ＲＥ−３、ＲＥ−４はＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅと同等の残存活性を示し同等の耐酸性を有することがわかる。また、ＲＥ―１およびＲＥ−５はＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅよりは劣るがＰａＲＨＮＬ１よりは高い残存活性を示し、ＰａＲＨＮＬ１よりは高い耐酸性を有することがわかる。

実施例６：キメラ組換え酵素の耐熱性試験
酵素の安定性の指標として以下のように耐熱性試験を実施した。実施例３で得られた濃縮酵素液をＲＭＮ容量活性が１０Ｕ／ｍＬになるように０．２Ｍクエン酸バッファー（ｐＨ５．５）で希釈した。この濃縮酵素液をＰＣＲチューブに２０μＬに分注し、７５℃で３０分、サーマルサイクラー（ｉＣｙｃｌｅｒ，日本バイオラッド製）でインキュベートした。その後容量活性を実施例４と同様に測定した。容量活性１０Ｕ／ｍＬを１００％として７５℃で処理した場合の残存活性を算出した。結果を以下の表３に示す。

表３から、ＲＥ−４はＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅと同等の残存活性を示し、同等の耐熱性を有することがわかる。また、ＲＥ―１、ＲＥ−２、ＲＥ−３はＫＲ１２−Ｄ１９９Ｅよりは劣るがＰａＲＨＮＬ１よりは高い残存活性を示し、ＰａＲＨＮＬ１よりは高い耐熱性を有することがわかる。ＲＥ−５はＰａＲＨＮＬ１と同等の残存活性であったのでＰａＲＨＮＬ１と同等の耐熱性を有することがわかる。

以上から、ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列における３１４〜４４８位の連続するアミノ酸と、ＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼのアミノ酸配列における１〜１１２位の連続するアミノ酸を少なくとも含むキメラ組換え酵素、特にＲＥ−３は、ハロゲン化シアノヒドリンの合成反応を触媒する活性が高く、かつ耐熱性および耐酸性が高いことが示された。

Claims (8)

1. ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質であって、
   そのアミノ酸配列の一部が配列番号２のアミノ酸配列または配列番号２のアミノ酸配列と９４％以上の同一性を有するアミノ酸配列に由来し、残りが配列番号４のアミノ酸配列または配列番号４のアミノ酸配列と９４％以上の同一性を有するアミノ酸配列に由来するものであり、
   配列番号２のアミノ酸配列または配列番号２のアミノ酸配列と９４％以上の同一性を有するアミノ酸配列における、配列番号２のアミノ酸配列を参照配列としたときの３１４〜４４８位の連続するアミノ酸と、配列番号４のアミノ酸配列または配列番号４のアミノ酸配列と９４％以上の同一性を有するアミノ酸配列における、配列番号２のアミノ酸配列を参照配列としたときの１〜１１２位の連続するアミノ酸を少なくとも含み、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有する前記タンパク質。
2. 以下の（ａ）または（ｂ）のタンパク質：
   （ａ）配列番号６、８、１０または１２のいずれかで表されるアミノ酸配列からなるタンパク質、
   （ｂ）配列番号６、８、１０または１２のいずれかで表されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつ（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質。
3. 請求項１または２記載のタンパク質をコードするＤＮＡ。
4. ＨＮＬ１型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとＨＮＬ５型の（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼとの間のキメラ組換えタンパク質をコードするＤＮＡであって、
   その塩基配列の一部が配列番号１の塩基配列または配列番号１の塩基配列と９４％以上の同一性を有する塩基配列に由来し、残りが配列番号３の塩基配列または配列番号３の塩基配列と９４％以上の同一性を有する塩基配列に由来するものであり、
   配列番号１の塩基配列または配列番号１の塩基配列と９４％以上の同一性を有する塩基配列における、配列番号１の塩基配列を参照配列としたときの９４０〜１３４４位の連続する塩基と、配列番号３の塩基配列または配列番号３の塩基配列と９４％以上の同一性を有する塩基配列における、配列番号１の塩基配列を参照配列としたときの１〜３３６位の連続する塩基を少なくとも含み、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質をコードする前記ＤＮＡ。
5. 以下の（ａ）または（ｂ）のＤＮＡ：
   （ａ）配列番号５、７、９または１１のいずれかで表される塩基配列からなるＤＮＡ、
   （ｂ）配列番号５、７、９または１１のいずれかで表される塩基配列と９０％以上の同一性を有する塩基配列からなり、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ。
6. 請求項３〜５のいずれか１項記載のＤＮＡを宿主細胞に導入することによって得られる形質転換体。
7. 請求項６に記載の形質転換体を培養することを含む、（Ｒ）−ヒドロキシニトリルリアーゼの製造方法。
8. 請求項１または２記載のタンパク質とカルボニル化合物およびシアノ基供与体とを反応させ、反応液から光学活性シアノヒドリンを回収することを含む、光学活性シアノヒドリンの製造方法。