JP5224719B2 - 毛乳頭細胞増殖促進剤、テストステロン5α−リダクターゼ阻害剤、アンドロゲン受容体結合阻害剤、血管内皮増殖因子産生促進剤、骨形成タンパク質−2産生促進剤、インスリン様増殖因子−1産生促進剤、育毛剤及び頭髪化粧料 - Google Patents
毛乳頭細胞増殖促進剤、テストステロン5α−リダクターゼ阻害剤、アンドロゲン受容体結合阻害剤、血管内皮増殖因子産生促進剤、骨形成タンパク質−2産生促進剤、インスリン様増殖因子−1産生促進剤、育毛剤及び頭髪化粧料 Download PDFInfo
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Description
前記サブユニットの中で、骨形成タンパク質−2(BMP−2)は、男性型脱毛症部位の毛乳頭細胞において、その遺伝子発現が低下していることが報告されている。そのため、この遺伝子に着目した育毛剤研究が注目されている(例えば、非特許文献11参照)。
しかしながら、従来においては、前記作用及び効果を有する具体的な有効成分が、未だに提案されていないという問題があった。また、具体的な有効成分が提案されているものについても、植物由来のものでなかったり、植物由来のものであっても前記作用及び効果が充分ではなかったりする、という問題があった。なお、植物由来であると、比較的安全性が高いので、日常的に摂取しやすいという利点がある。
しかしながら、チライトからの抽出物、アマロゲンチン又はアマロスウェリンが、前記各作用及び効果を有していることは従来全く知られておらず、本発明者らの新たな知見である。
<1> チライトからの抽出物、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする毛乳頭細胞増殖促進剤である。
<2> アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とするテストステロン5α−リダクターゼ阻害剤である。
<3> アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とするアンドロゲン受容体結合阻害剤である。
<4> チライトからの抽出物、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする血管内皮増殖因子(VEGF)産生促進剤である。
<5> チライトからの抽出物、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする骨形成タンパク質−2(BMP−2)産生促進剤である。
<6> アマロゲンチンを有効成分として含有することを特徴とするインスリン様増殖因子−1(IGF−1)産生促進剤である。
<7> アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする育毛剤である。
<8> アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを、毛乳頭細胞増殖促進作用、テストステロン5α−リダクターゼ阻害作用、アンドロゲン受容体結合阻害作用、血管内皮増殖因子(VEGF)産生促進作用、骨形成タンパク質−2(BMP−2)産生促進作用、インスリン様増殖因子−1(IGF−1)産生促進作用及び育毛効果のうち少なくとも1つの有効成分として含有することを特徴とする頭髪化粧料である。
本発明の毛乳頭細胞増殖促進剤は、チライトからの抽出物、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有し、更に必要に応じてその他の成分を含有してなる。
前記「チライト」(Chiraito)とは、リンドウ科の植物であって、学名は「Swertia chirata Buch−Ham.ex.C.B.Clarke(Fl.Br.Ind)」である。また、チライトは、「チレッタセンブリ」(Sweritia chirata)と称されることもある。
本発明において抽出される前記チライトの部位としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、地上部や地中部が挙げられる。中でも、抽出効率や毛乳頭細胞の増殖促進効果などの観点から、地上部が好ましい。
なお、前記精製物とは、毛乳頭細胞増殖促進作用を有する単一の化合物を意味するが、前記単一の化合物としては、後記するアマロゲンチンであってもよく、アマロスウェリンであってもよく、これら以外の化合物であってもよい。
本発明における前記アマロゲンチン(amarogentin)とは、IUPAC命名法で、[(2S,3R,4S,5S,6R)−2−[[(1S,9S,10S)−10−ethenyl−5−oxo−4,8−dioxabicyclo[4.4.0]dec−6−en−9−yl]oxy]−4,5−dihydroxy−6−(hydroxymethyl)oxan−3−yl] 2,4−dihydroxy−6−(3−hydroxyphenyl)benzoate)として表現される化合物である。アマロゲンチンの分子構造は、下記構造式(1)で表される。
本発明における前記アマロスウェリン(amaroswerin)とは、IUPAC命名法で、[(2S,3R,4S,5S,6R)−2−[(10−ethenyl−1−hydroxy−5−oxo−4,8−dioxabicyclo[4.4.0]dec−6−en−9−yl)oxy]−4,5−dihydroxy−6−(hydroxymethyl)oxan−3−yl] 2,4−dihydroxy−6−(3−hydroxyphenyl)benzoate)として表現される化合物である。アマロスウェリンの分子構造は、下記構造式(2)で表される。
前記毛乳頭細胞増殖促進剤中の有効成分の含有量としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができる。また、前記毛乳頭細胞増殖促進剤は、前記有効成分そのものであってもよい。
前記毛乳頭細胞増殖促進剤における前記その他の成分としては、本発明の効果を損なわない限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、薬理学的に許容される担体が挙げられる。前記担体としては、本発明の効果を損なわない限り、特に制限はなく、例えば、前記有効成分を各種の剤型として用いる場合において、その剤型に応じて適宜選択することができる。前記剤型としては、本発明の効果を損なわない限り、特に制限はなく、投与方法に応じて適宜選択することができ、例えば、経口固形剤(錠剤、被覆錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤、トローチ剤など)、経口液剤(内服液剤、シロップ剤、エリキシル剤など)、注射剤(溶液、懸濁液、用事溶解用固形剤など)、吸入散剤、軟膏剤、外用液剤、貼付剤、点眼剤、点鼻剤及び点耳剤が挙げられる。
−チライトから抽出物を抽出する方法−
チライトから抽出物を抽出する方法としては、特に制限はなく、一般に植物からその成分を抽出する際に用いられる抽出方法を適用することができ、例えば、抽出原料を乾燥した後、乾燥物をそのまま又は粗砕機を用いて粉砕して、抽出溶媒による抽出に供する方法が挙げられる。前記乾燥方法としては、特に制限はなく、例えば、天日で乾燥してもよく、通常使用される乾燥機を用いて乾燥してもよい。前記抽出原料としては、本発明の効果を損なわない限り、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、採取したままのチライトを抽出原料として用いてもよく、また、採取したチライトを、ヘキサン、ベンゼンなどの非極性溶媒によって脱脂などの前処理を施した後に、抽出原料として使用してもよい。抽出溶媒として極性溶媒を用いた場合には、チライトからの抽出処理が効率よく行うことができる点で、前記脱脂などの前処理を施すことが好ましい。
前記水としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、純水、水道水、井戸水、鉱泉水、鉱水、温泉水、湧水、淡水、これらの水に各種処理を施したものなどが挙げられる。前記各種処理としては、特に制限はなく、例えば、精製、加熱、殺菌、ろ過、イオン交換、浸透圧の調整、緩衝化などが挙げられる。したがって、前記水には、精製水、熱水、イオン交換水、生理食塩水、リン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩水なども含まれる。
また、前記任意の装置としては、例えば、ジムロート冷却管、ナス型フラスコ、三角フラスコ、マントルヒーターなどを組み合わせた装置などが挙げられる。
前記アマロゲンチン及びアマロスウェリンの製造方法としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、チライトからの抽出物からの単離・精製や、化学合成などにより製造することができる。
まず、乾燥したチライトをエタノールなどの抽出溶媒に浸漬して得られた抽出液を濃縮し、多孔性樹脂などを用いたカラムクロマトグラフィーに供して、水、アルコール(メタノールなど)の順で溶出させ、アルコール(メタノールなど)で溶出される分画物として得る。このとき、前記分画物に対して、さらにODS(オクタデシルシリル化シリカゲル)を用いた逆相シリカゲルクロマトグラフィーや再結晶などに供することで、粗精製物を得ることができる。
そして、前記分画物又は粗精製物を、例えば、液体クロマトグラフィーなどを用いて分離・精製することにより、精製されたアマロゲンチン及びアマロスウェリンを得ることができる。
本発明の毛乳頭細胞増殖促進剤は、チライトからの抽出物、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有し、前記有効成分は毛乳頭細胞の増殖促進作用を有するものである。また、本発明の毛乳頭細胞増殖促進剤は、毛乳頭細胞の増殖促進作用を介して、毛乳頭を活性化することができる。したがって、前記毛乳頭細胞増殖促進剤は、毛乳頭細胞増殖促進作用を発揮すること、又は、毛乳頭を活性化することに意義のある、全ての用途に用いることができる。例えば、前記毛乳頭細胞増殖促進剤は、毛乳頭細胞の増殖促進機構、毛乳頭細胞の増殖促進により改善される症状の研究、毛乳頭細胞の増殖促進により改善される症状の予防や治療に利用することができる。
前記症状としては、例えば、薄毛、脱毛、男性型脱毛症などが挙げられる。
また、前記毛乳頭細胞増殖促進剤は、例えば、毛包上皮細胞の増殖や分化、毛乳頭細胞の増殖促進を介したVEGFの産生促進などに好適に利用することができる。
前記毛乳頭細胞増殖促進剤の使用対象となる動物としては、特に制限はなく、目的に応じて適宜選択することできるが、特に哺乳類が好ましい。前記哺乳類としては、例えば、ヒト、サル、ウシ、ウマ、ブタ、マウス、ラットなどが挙げられ、中でも、ヒトが好ましい。
本発明のテストステロン5α−レダクターゼ阻害剤は、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくともいずれかを有効成分として含有することを特徴とする。もちろん、必要に応じて、その他の成分などを、適宜選択することができる。前記テストステロン5α−レダクターゼ阻害剤は、テストステロン5α−レダクターゼ阻害作用を発揮することに意義のある、全ての用途に用いることができる。例えば、前記テストステロン5α−レダクターゼ阻害剤は、テストステロン5α−レダクターゼの阻害機構、テストステロン5α−レダクターゼの阻害により改善される症状の研究、テストステロン5α−レダクターゼの阻害により改善される症状の予防や治療に利用することができる。
前記症状としては、例えば、男性型脱毛症、多毛症、脂漏症、座瘡(ニキビなど)、前立腺肥大症、前立腺腫瘍、男児性早熟などが挙げられる。
また、前記テストステロン5α−レダクターゼ阻害剤は、例えば、5α−ジヒドロテストステロンを介する性分化機構の研究などに好適に利用することができる。
本発明のアンドロゲン受容体結合阻害剤は、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくともいずれかを有効成分として含有することを特徴とする。もちろん、必要に応じて、その他の成分などを、適宜選択することができる。前記アンドロゲン受容体結合阻害剤は、アンドロゲン受容体結合阻害作用を発揮することに意義のある、全ての用途に用いることができる。例えば、前記アンドロゲン受容体結合阻害剤は、アンドロゲン受容体への結合を阻害する機構、アンドロゲン受容体への結合を阻害することにより改善される症状の研究、アンドロゲン受容体への結合を阻害することにより改善される症状の予防や治療に利用することができる。
前記症状としては、例えば、男性型脱毛症、多毛症、脂漏症、座瘡(ニキビなど)、前立腺肥大症、前立腺腫瘍、男児性早熟などが挙げられる。
また、前記アンドロゲン受容体結合阻害剤は、例えば、性分化機構の研究などに好適に利用することができる。
本発明のVEGF産生促進剤は、チライトからの抽出物、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくともいずれかを有効成分として含有することを特徴とする。もちろん、必要に応じて、その他の成分などを、適宜選択することができる。前記VEGF産生促進剤は、VEGF産生促進作用を発揮することに意義のある、全ての用途に用いることができる。例えば、前記VEGF産生促進剤は、VEGF産生の促進機構、VEGF産生の促進により改善される症状の研究、VEGF産生の促進により改善される症状の予防や治療に利用することができる。
前記症状としては、例えば、脱毛症、冠動脈疾患、閉塞性末梢動脈硬化症、軟骨損傷、血管形成不全、虚血性脚部疾患などが挙げられる。
また、前記VEGF産生促進剤は、例えば、血管内皮細胞の増殖や遊走の促進、血管新生の促進、血液凝固、血圧調節、皮膚におけるリンパ管の成長などに好適に利用することができる。
本発明のBMP−2産生促進剤は、チライトからの抽出物、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくともいずれかを有効成分として含有することを特徴とする。もちろん、必要に応じて、その他の成分などを、適宜選択することができる。前記BMP−2産生促進剤は、BMP−2産生促進作用を発揮することに意義のある、全ての用途に用いることができる。例えば、前記BMP−2産生促進剤は、BMP−2産生の促進機構、BMP−2産生の促進により改善される症状の研究、BMP−2産生の促進により改善される症状の予防や治療に利用することができる。
前記症状としては、例えば、脱毛症、皮膚老化、骨粗鬆症や骨折などの骨疾患などが挙げられる。
また、前記BMP−2産生促進剤は、例えば、骨形成の誘導、細胞全般の分化や増殖の調節、体軸形成やほとんど全ての器官形成、神経細胞の分化や機能維持などに好適に利用することができる。
本発明のVEGF産生促進剤は、アマロゲンチンを有効成分として含有することを特徴とする。もちろん、必要に応じて、その他の成分などを、適宜選択することができる。前記IGF−1産生促進剤は、IGF−1産生促進作用を発揮することに意義のある、全ての用途に用いることができる。例えば、前記IGF−1産生促進剤は、IGF−1産生の促進機構、IGF−1産生の促進により改善される症状の研究、IGF−1産生の促進により改善される症状の予防や治療に利用することができる。
前記症状としては、例えば、脱毛症、皮膚老化、糖尿病、下垂体機能低下症、下垂体性小人症などが挙げられる。
また、前記IGF−1産生促進剤は、例えば、細胞全般の分化・増殖・成長の促進、老化の進行抑制、血糖降下、生殖機能の調節、軟骨への硫酸イオンの取込みなどに好適に利用することができる。
本発明の育毛剤は、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする。もちろん、必要に応じて、その他の成分などを、適宜選択することができる。前記育毛剤は、育毛効果を発揮することに意義のある、全ての用途に用いることができる。例えば、前記育毛剤は、育毛機構、育毛により改善される症状の研究、育毛の促進により改善される症状の予防や治療に利用することができる。
前記症状としては、例えば、男性型脱毛症などが挙げられる。
本発明の頭髪化粧料は、アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを、毛乳頭細胞増殖促進作用、テストステロン5α−リダクターゼ阻害作用、アンドロゲン受容体結合阻害作用、VEGF産生促進作用、BMP−2産生促進作用、IGF−1産生促進作用及び育毛効果のうち少なくとも1つの有効成分として含有することを特徴とする。もちろん、必要に応じて、その他の成分などを、適宜選択することができる。
実施例1は、チライトから抽出物を抽出した実施例である。
チライトの地上部の乾燥物を粗砕したものそれぞれ100gに対し、抽出溶媒(水、80%エタノール又はエタノール)1,000mlを加え、還流抽出器で3時間加熱抽出し熱時濾過した。その後、得られた抽出液を40℃で減圧下に濃縮し、凍結乾燥機で乾燥して、チライトからの抽出物を得た。なお、前記80%エタノールにおけるエタノールと水との混合比は、重量基準による。
表1は、各抽出溶媒によるチライトからの抽出物の収率を示す表である。
実施例2は、実施例1で得られたチライトからの抽出物から、アマロゲンチン及びアマロスウェリンを精製した実施例である。
実施例1のチライトからの抽出物100.0gに対して水500mLを加え、懸濁した。これを、多孔性樹脂(DIAION HP−20,1.0L)上に付し、水5L、メタノール3Lの順で溶出させた。前記メタノール3Lで溶出させた画分からメタノールを留去して、メタノール溶出画分32.0gを得た。このメタノール溶出画分のうち、10.0gをメタノール:水=40:60(容量比)の混合溶液に溶解し、ODS(商品名:クロマトレックスODS DM1020T、富士シリシア化学(株))を充填したガラス製のカラム上部より流入させて、前記ODSに吸着させた。移動相としてメタノール:水=40:60(容量比)を流し、その溶出液を集め、脱溶媒して、分画物1.7gを得た。前記分画物1.7gをクロロホルム:メタノール=10:1(容量比)の混合溶液に溶解し、SiO2(商品名:シリカゲル60、富士シリシア化学(株)製)を充填したガラス製のカラム上部より流入させて、前記SiO2に吸着させた。移動相として、クロロホルム:メタノール=10:1(容量比)を流し、その溶出液を集め、脱溶媒して、アマロゲンチンとアマロスウェリンの濃縮物1.0gを得た。前記濃縮物を、液体クロマトグラフィーを用いて分画した。前記液体クロマトグラフィーの条件は以下の通りである。
固定相:YMC−Pack Pro C18((株)ワイエムシィ製)
カラム径:20mm
カラム長:250mm
移動相流量:9mL/min
検出:RI(Refractive Index、示差屈折率)
前記アマロゲンチン及びアマロスウェリンについて、13C−NMR(Nuclear Magnetic Resonance)分析を行った。下記にその結果を示す。
〔13C−NMRケミカルシフト・(帰属炭素,CD3OD)〕171.3(7’’−C),167.4(11−C),165.8(5’’−C),163.7(3’’−C),157.3(3’’’−C),153.5(3−C),148.4(1’’−C),146.4(1’’’−C),132.7(8−C),129.2(5’’’−C),121.1(6’’’−C),120.9(10−C),116.4(4’’’−C),114.4(2’’’−C),112.7(6’’−C),105.5(2’’−C),104.0(4−C),103.1(4’’−C),97.1(1’−C),96.7(1−C),78.2(5’−C),74.8(2’−C),74.6(3’−C),71.6(4’−C),69.5(7−C),62.4(6’−C),43.4(9−C),28.7(5−C),25.8(6−C).
〔13C−NMRケミカルシフト・(帰属炭素,CD3OD)〕171.3(7’’−C),167.2(11−C),166.2(5’’−C),163.9(3’’−C),157.4(3’’’−C),153.7(3−C),148.6(1’’−C),146.4(1’’’−C),133.1(8−C),129.4(5’’’−C),121.3(10−C),121.1(6’’’−C),116.4(4’’’−C),114.5(2’’’−C),112.6(6’’−C),109.3(2’’−C),103.9(4−C),103.2(4’’−C),98.9(1’−C),98.2(1−C),78.4(5’−C),74.9(2’−C),74.8(3’−C),71.3(4’−C),65.7(7−C),64.2(5−C),62.3(6’−C),51.9(9−C),33.5(6−C).
<毛乳頭細胞増殖促進作用試験>
実施例3は、実施例1、2で調製されたチライトからの抽出物、アマロスウェリン及びアマロゲンチンに対し、毛乳頭細胞増殖促進作用試験を行った実施例である。
まず、正常ヒト頭髪毛乳頭細胞(TOYOBO社、CA60205)を毛乳頭細胞増殖培地(TOYOBO社、TPGM−250)を用いて培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。回収した細胞は10%FBS(Fetal Bovine Serum)含有DMEM(Dulbecco’s modified minimal essential medium)を用いて1.0×104 cells/mLの濃度に希釈した後、コラーゲンコートした96wellプレートに1well当り200μL播種し、3日間培養した。培養後、培地を抜き、無血清DMEMに溶解した被験試料を各wellに200μL添加し、さらに4日間培養した。
〔ただし、前記(1)式中、Aは被験試料添加時の吸光度を表す。Bは被験試料無添加時の吸光度を表す。〕
<テストステロン5α−リダクターゼ阻害作用試験>
実施例4は、実施例1、2で調製されたチライトからの抽出物、アマロスウェリン及びアマロゲンチンに対し、テストステロン5α−リダクターゼ阻害作用試験を行った実施例である。
まず、蓋付V底試験管にて、プロピレングリコールで調製した4.2mg/mL テストステロン 20μL、1mg/mL NADPH(還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸)含有5mmol/mL Tris−HCl緩衝液(pH7.13)825μLを混合した。これに、エタノール、80%エタノール又は精製水で調製した被験試料80μL及びS−9(オリエンタル酵母工業株式会社) 75μLを加え再び混合し、37℃にて30分反応させた後、塩化メチレン 1mLを加え反応を停止した。これを遠心(1,600×g、10分)し、塩化メチレン層をガスクロマトグラフィーにより分析した。前記ガスクロマトグラフィーの条件は以下の通りである。また、同様の方法で空試験を行った。
なお、前記S−9とは、SDラットの雄に酵素誘導剤(フェノバルビタール、5,6−ベンゾフラボン)を腹腔内投与したのち肝臓をすりつぶして、9,000×gで遠心した上清である。
使用機器 :Shimadzu GC−7A
カラム :DB−1701(φ0.53mm×30m,膜厚;1.0μm)
カラム/注入温度:240℃/300℃
検出器 :FID
キャリアガス :窒素ガス
そして、S−9による反応後の3α−アンドロスタンジオール、ジヒドロテストステロン(DHT)及びテストステロンをガスクロマトグラフィーにより分析し、それぞれのピーク面積あたりの濃度を、下記の(2)式に従って算出した。次に、被験試料の変換率を下記の(3)式に従って算出した。そして、前記変換率に基づいて、テストステロン5α−リダクターゼ活性阻害率を、下記の(4)式に従って算出した。
〔ただし、前記(3)式中、Aは、3α−アンドロスタンジオールの濃度を表す。Bは、ジヒドロテストステロン(DHT)の濃度を表す。Cは、テストステロンの濃度を表す。〕
〔ただし、前記(4)式中、Dは、空試験での変換率を表す。Eは、被験試料添加での変換率を表す。〕
<アンドロゲン受容体結合阻害作用試験>
実施例5は、実施例1、2で調製されたチライトからの抽出物、アマロスウェリン及びアマロゲンチンに対し、アンドロゲン受容体結合阻害作用試験を行った実施例である。
まず、マウス自然発生乳がん(シオノギ癌:SC115)よりクローニングされたSC−3細胞を2%DCC−FBS(Dextran−coated charcoal fetal bovine serum)及び10−8mol/Lテストステロン含有MEM(Minimum Essential Medium、MEM)を用いて培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。回収した細胞を1.0×105cells/mLの濃度に2%DCC−FBS含有MEM(MEM)で希釈し、96wellプレートに1well当たり100μLずつ播種し、一晩培養した。培養終了後、培地を抜き、10−9mol/L DHTを含む0.5%BSA(Bovine Serum Albumin)含有Ham F12+MEM(HMB)に溶解した被験試料を100μL添加し、48時間培養した。その後、終濃度0.4g/mLで2%DCC−FBS含有MEMに溶解したMTTを各wellに100μL添加した。2時間培養した後に、細胞内に生成したブルーホルマザンを2−プロパノール200μLで抽出した。抽出後、波長570nmにおける吸光度を測定した。同時に濁度として波長650nmにおける吸光度を測定し、両者の差をもってブルーホルマザン生成量とした。空試験として、HMBのみで培養した細胞を、陽性対照として10−9mol/L DHTのみを含有したHMBで培養した細胞を用い、同様の方法で試験を行って補正した。
そして、アンドロゲンレセプター拮抗率を、下記(5)式に従って算出した。
〔ただし、前記(5)式中、Aは、DHT添加、被験試料無添加での570−650nmにおける吸光度を表す。Bは、DHT無添加、被験試料無添加での570−650nmにおける吸光度を表す。Cは、DHT添加、被験試料添加での570−650nmにおける吸光度を表す。Dは、DHT無添加、被験試料添加での570−650nmにおける吸光度を表す。〕
表4は、各有効成分によるアンドロゲン結合阻害率を示す表である。
<VEGF、BMP−2及びIGF−1の産生促進試験>
実施例6は、実施例1、2で調製されたチライトからの抽出物、アマロスウェリン及びアマロゲンチンに対し、VEGF、BMP−2及びIGF−1の産生促進試験を行った実施例である。前記産生促進試験は、mRNAの発現を評価するmRNA発現促進作用試験により行った。
各mRNA発現促進作用試験の具体的な手順は、以下の通りである。
まず、正常ヒト頭髪毛乳頭細胞(TOYOBO社、CA60205)を毛乳頭細胞増殖培地(TOYOBO社、TPGM−250)を用いて培養した後、トリプシン処理により細胞を回収した。回収した細胞を2×105個/mLの濃度になるように10%FBS含有DMEM培地で希釈した後、直径60mmシャーレに5mLずつ播種し、一晩培養した。培養終了後、被験試料を添加した無血清DMEM培地に交換し6時間培養した後、細胞を1mLのRNA抽出用試薬(ISOGEN:株式会社ニッポンジーン)で溶解し、クロロホルムを200μL添加後、遠心(12,000回転、4℃、15分間)にて上層RNA層を単離し、さらにイソプロパノールで濃縮を行った。濃縮沈殿させた総RNAをTE溶液(10mM Tris−HCl/1mM EDTA, pH8.0)に溶解して総RNA標品とし、PCR装置(TaKaRa PCR Themal Cycler MP:タカラバイオ社)及びリアルタイムPCRキット(TaKaRa ExScriptTM RT reagent Kit,RR035A:タカラバイオ社)を用いてVEGF、BMP−2及びIGF−1のmRNA発現量を測定するための鋳型に使用する一本鎖DNAを合成した。
VEGF遺伝子増幅用プライマーとして下記の配列を有するセンスプライマー及びアンチセンスプライマーを作製した(タカラバイオ社)。
センスプライマー :5’−gagccttgccttgctgctctac−3’
アンチセンスプライマー:5’−caccagggtctcgattggatg−3’
センスプライマー :5’−aacactgtgcgcagcttcc−3’
アンチセンスプライマー:5’−cctaaagcatcttgcatctgttctc−3’
センスプライマー :5’−tcttcagttcgtgtgtggagacag−3’
アンチセンスプライマー:5’−gggtgcgcaatacatctccag−3’
センスプライマー :5’−gcaccgtcaaggctgagaac−3’
アンチセンスプライマー:5’−atggtggtgaagacgccagt−3’
各サイクルのサイバーグリーン色素の発光量からVEGF、BMP−2、IGF−1及びG3PDHのそれぞれをコードするDNA断片の増幅曲線を作成した。検量線作成用一本鎖DNA溶液の希釈系列の増幅曲線から横軸に濃度、縦軸に増幅曲線の2次導関数が最大となるサイクル数をとった検量線を作成した。各発現定量用サンプルについては増幅曲線の2次導関数が最大となるサイクル数を検量線上にプロットし、相対的な発現量を算出した。VEGF、BMP−2及びIGF−1の発現量は、同一サンプルにおけるG3PDHの発現量の値で補正を行った後、さらに「被験試料無添加」の補正値を100とした時の「被験試料無添加」の補正値を算出した。
mRNA発現促進率(%)=B/A×100
A :「被験試料無添加」の補正値
B :「被験試料添加」の補正値
下記組成の養毛用のヘアトニックを常法により製造した。
チライト80%エタノール抽出物 1.0g
塩酸ピリドキシン 0.1g
レゾルシン 0.01g
D−パントテニルアルコール 0.1g
グリチルリチン酸ジカリウム 0.1g
l−メントール 0.05g
1,3−ブチレングリコール 4.0g
ニンジンエキス 0.5g
エタノール 25.0g
香料 適量
精製水 残部
合計 100.0g
下記組成の養毛用のヘアトニックを常法により製造した。
アマロゲンチン 0.1g
酢酸トコフェロール 適量
セファランチン 0.002g
イソプロピルメチルフェノール 0.1g
ヒアルロン酸ナトリウム 0.15g
ビワ葉エキス 1.0g
グリセリン 15g
エタノール 15g
香料 適量
キレート剤(エデト酸ナトリウム) 適量
防腐剤(ヒノキチオール) 適量
可溶化剤(ポリオキシエチレンセチルエーテル) 適量
精製水 残部
合計 100.0g
下記組成の育毛用の透明シャンプーを常法により製造した。
チライト水抽出物 1.0g
ヤシ油脂肪酸メチルタウリンナトリウム 10.0g
ヤシ油脂肪酸アミドプロピルベタイン 10.0g
ポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸ナトリウム 20.0g
ヤシ油脂肪酸ジエタノールアミド 4.0g
プロピレングリコール 2.0g
香料 適量
防腐剤(パラオキシ安息香酸メチル) 0.15g
精製水 残部
合計 100.0g
下記組成の育毛用のコンディショニングシャンプーを常法により製造した。
アマロスウェリン 0.2g
ポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸ナトリウム 30.0g
ヤシ油脂肪酸アミドプロピルベタイン 30.0g
ヤシ油脂肪酸メチルタウリンナトリウム 20.0g
ヤシ油ジエタノールアミド 3.0g
ジステアリン酸エチレングリコール 2.0g
香料 適量
防腐剤(パラオキシ安息香酸メチル) 0.15g
1,3−ブチレングリコール 3.0g
精製水 残部
合計 100.0g
Claims (8)
- アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする毛乳頭細胞増殖促進剤。
- アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とするテストステロン5α−リダクターゼ阻害剤。
- アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とするアンドロゲン受容体結合阻害剤。
- アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする血管内皮増殖因子(VEGF)産生促進剤。
- アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする骨形成タンパク質−2(BMP−2)産生促進剤。
- アマロゲンチンを有効成分として含有することを特徴とするインスリン様増殖因子−1(IGF−1)産生促進剤。
- アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを有効成分として含有することを特徴とする育毛剤。
- アマロゲンチン及びアマロスウェリンのうち少なくとも1つを、毛乳頭細胞増殖促進作用、テストステロン5α−リダクターゼ阻害作用、アンドロゲン受容体結合阻害作用、血管内皮増殖因子(VEGF)産生促進作用、骨形成タンパク質−2(BMP−2)産生促進作用、インスリン様増殖因子−1(IGF−1)産生促進作用及び育毛効果のうち少なくとも1つの有効成分として含有することを特徴とする頭髪化粧料。
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