JP5061315B2

JP5061315B2 - 糖蜜色素を脱色する微生物とそれを利用する脱色処理方法

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Publication number: JP5061315B2
Application number: JP2007229486A
Authority: JP
Inventors: 未来田中; 貴志渡部; 真実岡田; 和夫正木; 力藤井; 治幸家藤
Original assignee: National Research Institute of Brewing
Current assignee: National Research Institute of Brewing
Priority date: 2007-09-04
Filing date: 2007-09-04
Publication date: 2012-10-31
Anticipated expiration: 2027-09-04
Also published as: JP2009061367A

Description

本発明は、難脱色性である糖蜜色素を脱色できる微生物を利用した、糖蜜色素、メラノイジン、ポリフェノール系色素等を含有する各種着色液（廃液）の生物的脱色処理方法を提供するものである。

ビートやケーンなど砂糖原料農産物より砂糖が生産され、またはバイオエタノールの発酵原料として利用される際、黒褐色の廃液が生じる。この黒褐色色素はポリフェノールやメラノイジンを主体とするものと分析されているが、いずれも極めて難脱色性であり、微生物的、化学的、物理的処理が困難となっている。いくつかの微生物に、その脱色効果があるとの報告はなされているが、いずれも実際に利用されるに到っておらず、その有効性は疑問視される。

また、廃水にはポリフェノールやメラノイジン以外にも、その他色素成分不明の有色廃液が多く存在する。しかし、それら着色物質を効率良く、また安価に脱色する方法は少なく、広く効率的な脱色法が求められているところである。

上記したように、着色廃水を脱色できる微生物の探索が行われており、例えば白色腐朽菌による脱色性についての報告例はあるものの（例えば、非特許文献１）、長期間の検討や実廃水での検討例は少なく、実用化にはいたっていないのが現状である。
水環境学会誌、Ｖｏｌ．２２、Ｎｏ．６、ｐｐ．４６５〜４７１（１９９９）

本発明は、廃水中の色素（糖蜜の褐色色素等）を効率的に脱色する技術を新たに開発する目的でなされたものである。

砂糖を製造する際に、粘度の高い褐色の副産物（廃糖蜜）が副生してくる。この廃糖蜜には、精製しきれない糖類等が残っており、バイオエタノールなどの発酵原料として注目されているが、脱色困難な褐色色素（以下、糖蜜色素ということもある）を含有している。

この廃糖蜜を発酵させてアルコール（例えば、バイオエタノール）を生成させ、これを蒸留分離した後の残渣（廃糖蜜発酵蒸留廃液）にも、多量の糖蜜色素が含有されている。同様に、黒糖を原料として焼酎を製造する際に副生する副産物（黒糖焼酎粕）にも糖蜜色素が含有されている。これら糖蜜色素含有廃液は、黒褐色の不快な色を呈し、効率的脱色法の開発が求められている。

また、アントシアニンなどのポリフェノール系色素を効率的に脱色することは、本来、非常に困難なことであるが、その効率的脱色法の開発が求められている。

本発明は、上記した当業界の要望に応えるためになされたものであって、糖蜜色素が単一の物質ではなくしかも未同定の物質等も含まれていることから、そしてまた、糖蜜色素を含有した廃水を低コストで安全で且つできる限り小さな規模で効率的に大量処理するには、目的とする微生物をスクリーニングし、そして得られた微生物を利用する方法が最適であるとの結論に達した。

そこで本発明者らは、糖蜜色素を多量に含有する廃水の直接処理を目標に、実際の廃水処理工程での苛酷な物理的及び化学的変化にも充分耐え得る微生物を、細菌、糸状菌、酵母、担子菌、不完全菌等莫大な天然のあるいは人工の微生物の中からスクリーニングした。

すなわち、我々は、まずは糖蜜、廃糖蜜着色（廃）液の脱色を効率良く行うことのできる微生物を自然界より広くスクリーニングした。長期にわたる多量のスクリーニング試験を鋭意行った結果、ついに顕著に脱色効果を示す数株の微生物を分離することに成功した。それらはすべて同じＰｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ属であり、しかもＰｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍに属していた。本菌の性能の検証を重ねた結果、本菌は難脱色性で問題となっている糖蜜色素を効率良くしかも安定して脱色することが判明した。従来は、糖蜜色素に対して脱色が認められるものであっても、その脱色は一時的なもので、培養の時間が経緯するとまた着色が戻ってくるものが多かつた。しかし、本菌の脱色ではそのような色戻りもなく、安定した脱色性を示す。

さらに、本菌は、糖蜜色素だけではなくポリフェノール系色素であるアントシアニン、その他色素成分不明の有色廃液を広く脱色することが示された。

このことより、本菌は、広く有色液（廃液）の脱色処理に有効であり、その性質を利用することで従来脱色が困難であった有色廃液の効率的な脱色処理を行わせることが可能となる。

本発明は、これらの有用新知見に基づき更に検討の結果遂に完成されたものであって、その態様を例示すれば、次のとおりである。

（１）ペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）属菌を用いること、を特徴とする有色廃液の脱色方法、更に詳細には、ペニシリウム属に属する脱色作用を有する微生物を使用すること、具体的には該微生物を用いて有色廃液を処理すること（両者を接触せしめること）、を特徴とする有色廃液の脱色方法、ないし有色廃液処理方法。

（２）ペニシリウム属に属する該微生物がペニシリウム・オギザリカム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍ）であること、を特徴とする上記（１）に記載の方法。
（３）ペニシリウム・オギザリカムが、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｂ−１（ＮＩＴＥＡＰ−４０７）、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｄ（ＮＩＴＥＡＰ−４０８、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｅ−２（ＮＩＴＥＡＰ−４０９）の少なくともひとつであること、を特徴とする上記（１）又は（２）に記載の方法。

（４）該脱色作用が、糖蜜色素（廃糖蜜中に存在する褐色色素：通常、脱色するのが困難である）、ポリフェノール系色素、メラノイジン系色素、の少なくともひとつを脱色する作用（脱色率４０％以上、６０％又は６５％、あるいはそれ以上も可能）、しかも、この作用が長時間（例えば、３日間以上、例えば４日間、あるいは５日間）安定的に保持、継続すること、を特徴とする上記（１）〜（３）のいずれか１項に記載の方法。

（５）該有色廃液が、廃糖蜜、廃糖蜜発酵蒸留廃液、黒糖焼酎廃液、ポリフェノール系色素、メラノイジン系色素含有廃液の少なくともひとつ（原液又は希釈液）であること、を特徴とする上記（１）〜（４）のいずれか１項に記載の方法。
（６）該有色廃液に栄養源（例えば、グルコース、シュークロース等の糖類）を添加して脱色率を向上せしめること、を特徴とする上記（５）に記載の方法。

（７）脱色作用（例えば、糖蜜色素、ポリフェノール系色素、メラノイジン系色素の少なくともひとつ）を有するペニシリウム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍ）属に属する微生物菌株：
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｂ−１（ＮＩＴＥＡＰ−４０７）
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｄ（ＮＩＴＥＡＰ−４０８）
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｅ−２（ＮＩＴＥＡＰ−４０９）

本発明によれば、自然界から新しく分離するのに成功したペニシリウム属菌を使用することによって、有色廃水（例えば、糖蜜色素、ポリフェノール系色素、メラノイジン系色素含有廃水といった従来脱色するのが非常に困難であった廃水）をきわめて効率よく脱色することができ、しかも、脱色作用が長期間安定して継続するという新規にして卓越した効果が奏される。したがって、本発明は卓越した廃水処理方法を提供できるという著効も奏するものである。

本発明を実施するには、すぐれた脱色作用を有する（高い脱色能を有する）微生物を開発する必要がある。しかしながら、既存の廃水処理用の各種微生物等について検討したが、目的とする高脱色菌を見出すには至らなかった。そこで、本発明者らは発想を完全に転換して、自然界から新しい微生物を分離することとした。

本発明は、このような新規技術課題を新たに設定し、鋭意研究の結果、目的微生物の分離に成功し、遂に完成されたものである。

本発明者らは、糖蜜色素含有培地を用いて、自然界の土壌や水のサンプル１０７点より脱色性を示す菌株の探索を行い、３点から脱色能が高いと思われる糸状菌１３株を単離した。前培養して菌体を回収し、３倍希釈した廃液に加え、７２時間振とう処理したところ、河川水（広島市中央公園）から単離した３株は、４７５ｎｍの吸光度で４０〜５５％の高い脱色能を示した。

これらの３株は、いずれも、ほうき状の胞子形成細胞を形成し、ペニシリは複輪生であることから、ペニシリウム属に属するものと認められた。そして、これらの３株について、ｒＤＮＡ（ｒｉｂｏｓｏｍａｌＤＮＡ）の塩基配列を用いた菌株の同定を試みたところ、いずれの株も、ペニシリウム・オギザリカム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍ）のＩＴＳ（ＩｎｔｅｒｎａｌＴｒａｎｓｃｒｉｂｅｄＳｐａｃｅｒ）領域、及び、Ｄ１／Ｄ２領域の塩基配列と１００％一致したので、これら３株はペニシリウム・オギザリカム（Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍ）と同定した。

また、これらの３菌株は、いずれも、次のような菌学的性質を有しており、上記した遺伝子による同定結果と一致するものであった。
（生育）
麦芽寒天培地、２５℃、１週間培養で、平坦、ビロード状の大きなコロニーを形成、淡青緑色の分生子を生じる。
（形態）
箒（ほうき）状の胞子形成細胞を形成。ペニシリは複輪生。分生子は、楕円状、滑面、４〜５×２〜３μｍ。

これらの３菌株は、非常に高い脱色能を有するペニシリウム属糸状菌という特徴を有する新規菌株であるので、それぞれ、次のように命名し、これらを独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センター（〒２９２−０８１８日本国千葉県木更津市かずさ鎌足２丁目５番８号）に、２００７年８月２９日付で寄託した。それらの受領番号は、それぞれ、次のとおりである。
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｂ−１（ＮＩＴＥＡＰ−４０７）
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｄ（ＮＩＴＥＡＰ−４０８）
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｅ−２（ＮＩＴＥＡＰ−４０９）

本発明を実施するには、上記菌株の１種又は２種以上を有色廃水と接触せしめればよい。有色廃水としては、廃糖蜜、廃糖蜜発酵蒸留廃液（以下、廃糖蜜蒸留廃液ということもある）、黒糖焼酎粕が例示される。本菌株は、これら有色廃水の希釈液を脱色できることはもちろんのこと、原液（実廃水）も直接脱色できるという特徴を有している。

本発明によれば、４０〜５５％という高い脱色率が得られ、約６０％の場合も確認された。このように高い脱色率は７２時間の培養でも認められ、本菌株による高い脱色能は長期間（例えば、３〜４日間以上、５日間以上も可能）安定して継続することが確認された。

脱色率は、糖蜜色素については、４７５ｎｍの吸光度（ＯＤ₄₇₅）、メラノイジンについては、４３０ｎｍの吸光度（ＯＤ₄₃₀）を測定し、下記の式で計算した。
脱色率（％）＝（Ａ／Ｂ）×１００
Ａ：ブランクの吸光度−試料の吸光度
Ｂ：ブランクの吸光度

本発明において使用するペニシリウム属菌は、これらの１株又は２株以上を有色廃液（原液又は希釈液）に加えて、通気して又は通気することなく、静置、撹拌、もしくは振とう培養すれば、きわめて効率よく有色廃液を脱色することができる。

その際、有色廃液に栄養源を添加すれば、更に脱色率を向上させることができる。栄養源としては、グルコース、フラクトース、マルトース、シュークロース等の易発酵性糖類が１種又は２種以上使用される。例えば、グルコースを添加した場合（１０〜２０ｇ／Ｌ）、脱色率が、グルコース無添加の場合が約５０％であったサンプルにおいて、約６０〜６５％に増加することが確認され、更には、７２時間の培養で約６７％という高い脱色率が達成される例も確認された。

以下、本発明の実施例について述べるが、本発明はこれらの実施例のみに限定されるものではない。

（スクリーニング）
５倍希釈した黒糖焼酎粕にＹＮＢ（ｗ／ｏＡ．Ａ．＆Ａ．Ｓ．）を０．８５ｇ／Ｌ加え、Ｃ：Ｎ：Ｐがおよそ１００：５：１となるように調整し、オートクレーブ。その後、真核微生物をスクリーニングするため、フィルターろ過したペニシリン＋ストレプトマイシン（１００×）を１００ｍＬの培地に対し１ｍＬ加え（最終濃度１００ｕｎｉｔｓ／ｍＬＰｅｎｉｃｉｌｌｉｎＧ、１００μｇ／ｍＬＳｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎｓｕｌｆａｔｅｉｎｎｏｒｍａｌｓａｌｉｎｅ）、スクリーニング用黒糖焼酎培地を作成した。

（一次スクリーニング）
１０ｍＬ用Ｌ字管に黒糖焼酎粕培地（スクリーニング用）を１０ｍＬと、さまざまな場所から取得した土壌、河川水などのサンプルの水懸濁液（水溶液のサンプルはそのまま使用）１ｍＬを加え、２５℃で１週間ほど振とう培養。培養後、５ｍＬ採取し、遠心上清を取り（１００００ｒｐｍ、５ｍｉｎ）、目視と４７５ｎｍの吸光度を測定した。脱色を示したサンプルの残りの培養液より廃糖蜜プレート培地（５倍希釈廃糖蜜に寒天を２％添加）を利用し、脱色株を単離した。菌体懸濁液を１０⁷希釈し、１０〜２０枚のプレートに塗布し、２５℃で約１週間培養後、得た単コロニーを新しいプレートに採取した。

単離株は、ＹＭプレート培地（Ｄｉｆｃｏ社のＹＭ培地（イーストエキストラクト３．０ｇ／Ｌ、麦芽エキストラクト３．０ｇ／Ｌ、ペプトン５．０ｇ／Ｌ、デキストロース１０．０ｇ／Ｌ、ｐＨ６．２）に寒天０．２％を添加した培地）上に保存した。

（二次スクリーニング）
廃糖蜜培地（酵母処理後）を次のようにして調製した。
廃糖蜜１６倍（重量比）希釈液をオートクレーブし、廃水処理酵母ＨａｎｓｅｎｕｌａｆａｂｉａｎｉｉＪ６４０で４８時間培養することで窒素を軽減させ、培養酵母を除去した後、炭素源としてグルコース、リン及びミネラル・ビタミン源としてＹＮＢ（ｗ／ｏＡｍｉｎｏＡｃｉｄｓＡｍｍｏｎｉｕｍＳｕｌｆａｔｅ、Ｄｉｆｃｏ社）を添加し、Ｃ：Ｎ：Ｐがおよそ１００：３：１となるように調整し、作成した。

１０ｍＬ用Ｌ字管に、廃糖蜜培地を１０ｍＬ入れ、菌体及び菌の胞子を懸濁し、２５℃で３〜４日振とう培養し、培養後、培養液の遠心上清（１００００ｒｐｍ、５ｍｍ）の目視及び吸光度とｐＨを測定することにより、二次スクリーニングを行った。

（廃糖蜜の脱色試験）
上記のスクリーニングにより、培養２日目で明瞭な脱色効果の観察される株を選択し、さらに以下の方法で廃糖蜜蒸留廃液での脱色試験を行った。
２００ｍＬ容バッフル付三角フラスコに廃糖蜜蒸留廃液培地（５倍希釈廃糖蜜蒸留廃液培地＋ＹＮＢＹｅａｓｔＮｉｔｒｏｇｅｎＢａｓｅ（Ｄｉｆｃｏ社製）０．７％添加）、を５０ｍＬ加え、酵母懸濁液を初期ＯＤ₆₆₀が０．１となるように接種し、３０℃、１２０ｒｐｍで振とう培養。１２ｈ毎に１．５ｍＬずつサンプリングし、遠心上清のＯＤ₆₆₀、ＯＤ₄₇₅、ｐＨを測定。ブランクと培養液のＯＤ₄₇₅の差より求めた脱色率、ＯＤ₆₆₀、ｐＨの変化を評価した。

図１に、選択した菌による廃糖蜜蒸留廃液脱色の経時的変化を示す。
一度脱色したものが再度着色するものも見られたが、そのような菌は除外し、安定し多脱色の見られる菌を３株（ｂ−１、ｄ、ｃ−２）取得することに成功した。

図２に、これら３株での脱色安定性の再現性を調べるため行った試験の、脱色率と培地のｐＨ変化を示す。
分離株は、色戻りもなく安定した脱色能力を持つことが示された。

従来、廃糖蜜の脱色効果を持つ株のスクリーニングが試みられてきたものの、それらの株では、脱色は一時的なもので、色の戻りがある、と言われてきた。しかし我々が取得したこれら３株では、安定した脱色効果を持つ、従来にない優れた性質を持つことが明らかとなった。

なお、これら菌株は、実廃水、黒糖焼酎粕（原液）についても、それぞれ６０％程度の安定した脱色性を示し、広く糖蜜色素含有液の脱色に効果のあることが確認された。

また、廃糖蜜蒸留排液等の有色廃液に栄養源（グルコース、フラクトース、マルトース、シュークロース等の糖類、特に易発酵性糖類が好適）を添加することにより、脱色率が更に向上する。栄養源として、グルコースを使用した場合、１０〜２０ｇ／Ｌ添加すればよく、他の糖類を使用する場合には、これに準じて添加量を規定すればよい。

５倍希釈した廃糖蜜蒸留廃液に、ＹＮＢ（ｗ／ｏＡ．Ａ．＆Ａ．Ｓ．）１．７ｇ／Ｌ、グルコース１５ｇ／Ｌを加えた培地に本発明に係る菌株の菌体を添加して４８時間培養した場合、脱色率が約６０〜６５％に増加した。また、７２時間の培養では約６７％という高い脱色率が達成された。胞子を接種した場合であっても、７２時間目より菌の生育が見られ、１２０時間後には約５５％の脱色率が確認された。

（メラノイジン系色素の脱色（吸着）効果）
ｄ株について、その洗浄菌株をメラノイジン溶液（トリプトファンメラノイジン溶液）に添加して、振とう処理して、菌体への色素の吸着試験を行った。

湿潤菌体量６ｇ／Ｌ、メラノイジン濃度１００ｍｇ／Ｌの場合、菌体添加後より迅速なメラノイジン吸着が観察され、約３０分間で２４０分処理後の吸着量（ｄｙｅ・ｍｇ／Ｄｒｙｃｅｌｌｓ・ｇ）と比較して、ほぼ半分が吸着された。

この効果は、他のｂ−１株、ｅ−２株においても充分に予測され、結局、これら３株は色素吸着能力が高く、結果、色素含有廃液を効率的に脱色できるものである。

（同定）
分離菌の同定を行った。

同定方法
単離株の同定はｒｉｂｏｓｏｍａｌＤＮＡ（ｒＤＮＡ）のＩｎｔｅｒｎａｌＴｒａｎｓｃｒｉｂｅｄＳｐａｃｅｒ（ＩＴＳ）領域、及び２６ＳｒＤＮＡのＤ１／Ｄ２領域の塩基配列をデータベース検索し、比較することで行った（図３）。

〈同定法〉
５ｍＬ用Ｌ字管にＹＭ培地を５ｍＬ加え、酵母を一白金耳接種、３０℃、２日振とう培養。前培養した菌体を滅菌水で洗浄後Ｇｅｎとるくん（酵母用）（宝バイオ株式会社商標）を使用してＤＮＡを抽出した。ＤＮＡサンプルの１８ＳｒＤＮＡのＩＴＳ領域、２６ＳｒＤＮＡのＤ１／Ｄ２領域を以下に示す条件で、ＰＣＲにより増幅した。

プライマーは、ＩＴＳ領域についてはＩＴＳ４（配列番号１：ＴＣＣＴＣＣＧＣＴＴＡＴＴＧＡＴＡＴＧＣ）、ＩＴＳ５（配列番号２：ＧＧＡＡＧＴＡＡＡＡＧＴＣＧＴＡＡＣＡＡＧＧ）を使用した。Ｄ１／Ｄ２領域については、ＮＬ１（配列番号３：ＧＣＡＴＡＴＣＡＡＴＡＡＧＣＧＧＡＧＧＡＡＡＡＧ）、ＮＬ４（配列番号４：ＧＧＴＣＣＧＴＧＴＴＴＣＡＡＧＡＣＧＧ）を使用した。なお、これらプライマーの塩基配列は、まとめて図４に示した。

ＰＣＲ条件は、９４℃２分後、（９４℃３０秒、５５℃３０秒、７２℃２分）を３０サイクル回す条件で行った。

ＰＣＲ産物は、ＱＩＡｑｕｉｃｋＰＣＲＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎＫｉｔ（株式会社キアゲン）を用い、精製後、ＢｉｇＤｙｅＴｅｒｍｉｎａｔｏｒｖ１．１ＣｙｃｌｅＳｅｑｕｅｎｃｉｎｇＫｉｔ（ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍ社）を用い、蛍光標識を付加。蛍光標識付加後、ＰＣＲ産物をＡｕｔｏＳｅｑＧ−５０（ＡｍｅｒｓｈａｍＢｉｏｓｃｉｅｎｃｃｓ社）により精製し、シーケンサー（ＡＢＩＰＲＩＳＭ３１０ＧｅｎｅｔｉｃＡｎａｌｙｚｅｒ：ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ社）を用いて塩基配列を解析した。解析後、塩基配列のデータをＧＥＮＥＴＹＸ（株式会社ゼネティックス）を用い、編集後、日本ＤＮＡデータバンク（ＤＤＢＪ：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｄｄｂｊ．ｎｉｇ．ａｃ．ｊｐ）のＢＬＡＳＴを用い、相同性を検索した。

読み取られたＩＴＳ領域のＤＮＡ配列による同定の結果、ｂ−１株、ｄ株、ｅ−２株ともＩＴＳ領域、Ｄ１／Ｄ２領域とも糸状菌Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍと１００％、一部９９％の相同性を示し、これらの結果より、いずれの株もＰｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍと同定された。

このようにして単離、同定された菌株は、高い脱色能を有する点できわめて特徴的である。そこで、各菌株を、それぞれ、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｂ−１、同ｄ、同ｅ−２と命名して、（独）製品評価技術基盤機構（ＮＩＴＥ）、特許微生物寄託センター（ＮＰＭＤ）に寄託した。

すなわち、これらの菌株は、独立行政法人製品評価技術基盤機構、特許微生物寄託センター（〒２９２−０８１８日本国千葉県木更津かずさ鎌足２丁目５番８号）に、２００７年８月２９日に受領され、それぞれ、下記の受領番号が付与された。
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｂ−１（ＮＩＴＥＡＰ−４０７）
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｄ（ＮＩＴＥＡＰ−４０８）
Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｅ−２（ＮＩＴＥＡＰ−４０９）

糖蜜色素（廃糖蜜発酵蒸留廃液）脱色の経時的変化を示す図である。分離株の糖蜜色素（廃糖蜜発酵蒸留廃液）脱色の経時的変化を示す図である。但し、左図は脱色率を示し、右図はｐＨを示す。ＩＴＳ領域とＤ１／Ｄ２領域の概要を示す図である。使用した各種プライマーの塩基配列を示す図である。

Claims

Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｂ−１（ＮＩＴＥＡＰ−４０７）、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｄ（ＮＩＴＥＡＰ−４０８）、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｅ−２（ＮＩＴＥＡＰ−４０９）の少なくともひとつを使用すること、を特徴とする廃糖蜜、廃糖蜜発酵蒸留廃液、黒糖焼酎粕の少なくともひとつに含有されている糖蜜色素の脱色方法。
請求項１に記載の方法に使用する、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｂ−１（ＮＩＴＥＡＰ−４０７）、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｄ（ＮＩＴＥＡＰ−４０８）、Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｕｍｏｘａｌｉｃｕｍｅ−２（ＮＩＴＥＡＰ−４０９）の少なくともひとつの菌株。