JP4854651B2 - ヘモグロビン類の測定装置及びヘモグロビン類の測定方法 - Google Patents

Description

本発明は、糖尿病の診断指標となる安定型ヘモグロビンＡ１ｃの測定を、短時間で高精度に行うことが可能なヘモグロビン類の測定装置、及び、ヘモグロビン類の測定方法に関する。

ヘモグロビン（Ｈｂ）類、特に糖化ヘモグロビン類の一種であるヘモグロビンＡ１ｃ（以下、ＨｂＡ１ｃという）は、過去１〜２カ月間の平均的な血糖値を反映しているため、糖尿病のスクリーニング検査や糖尿病患者の血糖管理状態を把握するための検査項目として広く利用されている。
従来、ＨｂＡ１ｃの測定方法としては、ＨＰＬＣ法、免疫法、電気泳動法等が用いられている。このうち、臨床検査分野で多く用いられているＨＰＬＣ法では、１試料当たり１〜２分での測定が可能であり、また、同時再現性試験のＣＶ値が１．０％程度の測定精度が実現されている。糖尿病患者の血糖管理状態を把握するための測定方法としては、このレベルの性能が必要とされている

一方、電気泳動法は、装置構成が簡便なため、マイクロチップ電気泳動のような安価で小型なシステムを作製することが可能な技術であり、電気泳動法におけるＨｂＡ１ｃの高精度測定技術の臨床検査への適用は、コスト面において非常に有益な効果が期待できる。
しかしながら、従来から汎用されているゲル電気泳動の手法では３０分以上の時間が必要であり、測定精度の点でも問題があるため、現在では糖尿病診断への応用は、ほとんど行われていない。

上記のゲル電気泳動法に対してキャピラリー電気泳動法は、一般に高分離・高精度測定が可能であるとされており、例えば、特許文献１及び特許文献２には、キャピラリー電気泳動法によってＨｂＡ１ｃを分離する手法が開示されている。
しかしながら、特許文献１に開示された方法では、測定時間が長いという問題点は解消されず、加えて、使用する緩衝液のｐＨが９〜１２と高く、Ｈｂが変性してしまう可能性があることから、この方法を臨床検査に適用することは困難であった。
また、特許文献２には、キャピラリーにカチオン性ポリマーを通液することによって、キャピラリー内面にカチオン性ポリマーを動的にコーティングし、硫酸化多糖類を含む緩衝液を用いる方法が開示されている。この方法によれば、１０分間程度で測定することができ、ゲル電気泳動法と比較して短時間で測定することが可能となる。しかしながら測定毎に動的コーティングが必要であるため操作時間が延長し、また測定毎のコーティングのバラツキが測定結果に悪影響を及ぼす可能性がある。

また、糖尿病診断を行う場合は、ＨｂＡ１ｃ成分のなかでも、特に糖尿病の指標となる安定型ＨｂＡ１ｃを、不安定型ＨｂＡ１ｃやカルバミル化Ｈｂ等の、測定の障害となる成分（以下、これらを修飾Ｈｂ類ともいう）から分離しなければならない。しかしながら、特許文献１及び特許文献２に開示された方法によって得られたエレクトロフェログラムでは分離性能が不充分であり、これらの方法の技術範囲では安定型ＨｂＡ１ｃを修飾Ｈｂ類から分離することは困難であり、従って、高精度に安定型ＨｂＡ１ｃ値を求めることはできなかった。また、上記の従来技術は、異常Ｈｂ類を分離することができなかった。

更に、特許文献１及び特許文献２に開示された方法は、大型で高価なキャピラリー電気泳動装置にのみ適用することが可能であることから、このような方法を、小型で安価なマイクロチップ電気泳動法に適用して測定を行うことは不可能であった。
特表平９−５１０７９２号公報 特開平９−１０５７３９号公報

本発明は、糖尿病の診断指標となる安定型ヘモグロビンＡ１ｃの測定を、短時間で高精度に行うことが可能なヘモグロビン類の測定装置、及び、ヘモグロビン類の測定方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、鋭意検討した結果、少なくとも泳動路の内面をカチオン性を有する素材により形成することによって、測定毎に泳動路の内面にカチオン性を付与するためのコーティング操作を行う必要がないため、安価で簡便にヘモグロビン類の測定を行うことができるとともに、短時間で高精度なヘモグロビン類の測定を行うことが可能となることを見出し、本発明を完成させるに至った。

本発明は、電気泳動法によりヘモグロビン類を測定するためのヘモグロビン類の測定装置であって、内表面がカチオン性を有する素材によって形成された泳動路を有するマイクロデバイスを有し、前記マイクロデバイスは、アニオン性ポリマーを含有する緩衝液類が充填された泳動路を有するヘモグロビン類の測定装置である。
以下、本発明を詳細に説明する。

本発明のヘモグロビン類の測定装置は、電気泳動法により安定型ヘモグロビンＡ１ｃを測定するヘモグロビン類の測定装置であって、マイクロデバイスを有する。
上記マイクロデバイスは、該マイクロデバイス内に電気泳動が実施できる流路が形成されていれば特に制限はなく、公知の素材、形状、大きさのものを使用することができる。
上記マイクロデバイスとしては、例えば、数ｃｍ〜数十ｃｍ角以下程度の大きさを有し、電気泳動を行うための泳動路が形成された基板からなる公知のマイクロデバイス等が挙げられ、具体的には例えば、μ−ＴＡＳ、Ｌａｂ−ｏｎ−ａ−ｃｈｉｐと呼ばれる技術に用いられる従来公知のマイクロチップ等を用いることができる。

上記マイクロデバイスを構成する素材としては特に限定されず、従来公知の素材を用いることができるが、例えば、ホウケイ酸ガラス、石英等のガラス系、フューズドシリカ、ポリジメチルシロキサン等のシリカ系、ポリアクリル系樹脂、ポリスチレン系樹脂、ポリ乳酸系樹脂、ポリカーボネート系樹脂、オレフィン系樹脂等の樹脂系等の素材を用いることが好ましい。なかでも、ガラス系、シリカ系、アクリル樹脂系の素材がより好ましい。

上記マイクロデバイスには、電気泳動を実施するための流路が形成されている。
上記流路は、内表面及び内空部を有し、電気泳動を実施する際には、内空部に緩衝液が満たされる。また、上記内空部に測定対象試料（以下、単に試料ともいう）が導入され、緩衝液に電圧が負荷されて同試料が移動することにより、試料の分離が行なわれる。分離された試料中の各分画は、流路部に設けられた検出部において、順次検出される。
本発明のヘモグロビン類の測定装置において、「泳動路」とは、電圧が負荷され始める時、すなわち、実質上、電気泳動が開始される時に、試料が位置する流路の部位から、各成分が移動して検出される流路の部位までの流路部分をいう。

上記流路及び泳動路の形状及び大きさとしては特に限定されず、電気泳動条件により適宜選択されればよい。また、上記流路及び泳動路は、一つのデバイス上に単数形成されてもよく、複数形成されていてもよい。
上記泳動路の長さは、好ましい下限が５ｍｍ、好ましい上限が２００ｍｍである。５ｍｍ未満であると、充分に試料が分離されないため、正確な測定をすることができないことがある。２００ｍｍを超えると、測定時間の延長や得られるエレクトロフェログラムにおいてピーク形状の変形が生じることによって、正確な測定をすることができないことがある。より好ましい下限は１０ｍｍ、より好ましい上限は１５０ｍｍである。

上記泳動路の幅は、好ましい下限が１μｍ、好ましい上限が２００μｍである。１μｍ未満であると、検出器により検出するための光路長が小さく、測定精度が低下することがある。２００μｍを越えると、泳動路内で試料が拡散することにより得られるエレクトロフェログラムにおいてピークがブロードになり、測定精度が低下することがある。より好ましい下限は５μｍ、より好ましい上限は１５０μｍである。

上記泳動路の形状としては特に限定されず、例えば、直線状、一定の曲率を有する曲線状、又は、渦巻状等が挙げられる。なかでも直線状であることが好ましい。
上記泳動路の断面の形状としては特に限定されず、例えば、矩形、円形等が挙げられる。
また、上記泳動路は、複数の泳動路を一度に用いる構成、すなわち、キャピラリーを複数本同時に使用できるものや、１つのデバイス上に複数の泳動路を有している構成でもよい。

本発明ヘモグロビン類の測定装置では、少なくとも上記泳動路の内表面は、カチオン性素材により形成されている。
本発明のヘモグロビン類の測定装置において、「カチオン性素材により形成される」とは、従来技術により開示される各種コーティングによる泳動路内面の性質の改変によりカチオン性を付与されて得られるカチオン性泳動路は含まない。すなわち、本発明のヘモグロビン類の測定装置において、「カチオン性素材により形成された」泳動路とは、該泳動路において電気泳動が実施される際において、動的コーティング法及び静的（コーティング剤が固定化される）コーティング法のいずれの動作も行なわれることなくカチオン性を有しており、電気泳動を実施する泳動路であることを意味する。

上記カチオン性素材とは、構造内にカチオン性官能基を有している素材であって、該カチオン性官能基が、電気泳動を実施する環境下において、カチオン性を示すものである。
上記カチオン性官能基としては特にされず、例えば、１〜３級のアミノ基、４級アンモニウム基、ピリジウム基、グアジニノ基、及びこれらを含む官能基等が挙げられる。
なかでも、１〜３級アミノ基及び４級アンモニウム基が好ましい。

上記カチオン性素材としては特に限定されないが、上記カチオン性基を有する高分子材料が好ましい。
上記カチオン性基を有する高分子材料を調整する方法としては特に限定されず、例えば、上記カチオン性基を有する単量体を重合する方法、又は、基材となる高分子材料に上記カチオン性基を導入する方法等が挙げられる。なかでも、上記カチオン性基を有する単量体を重合する方法が好ましい。
また、上記カチオン性基を有する素材は親水性であることが好ましい。

上記カチオン性基を有する単量体としては特に限定されず、例えば、（メタ）アクリルアミド；メチル（メタ）アクリルアミド、ジメチル（メタ）アクリルアミド、エチル（メタ）アクリルアミド、エチルヘキシル(メタ)アクリルアミド、Ｎ−イソプロピル(メタ)アクリルアミド等のアルキル（メタ）アクリルアミド類；メチルアミノエチル（メタ）アクリルアミド、ジエチルアミノプロピル(メタ)アクリルアミド、ジメチルアミノヒドロキシプロピル(メタ)アクリルアミド、Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチル−(メタ)アクリルアミド等のアルキルアミノアルキル（メタ）アクリルアミド類；メチルアミノ（メタ）アクリレート、エチルアミノ（メタ）アクリレート等のアルキルアミノ（メタ）アクリレート類；ジメチルアミノエチル（メタ）アクリレート、ジエチルアミノエチル（メタ）アクリレート、ジエチルアミノプロピル（メタ）アクリレート等のジアルキルアミノアルキル（メタ）アクリレート類；（メタ）アクリルアミドプロピル塩化トリメチルアンモニウム塩化物、（メタ）アクリロイルオキシエチルトリメチルアンモニウム塩化物、（メタ）アクリロイルオキシ２−ヒドロキシプロピルトリメチルアンモニウム塩化物、（メタ）アクリロイルアミノプロピルトリメチルアンモニウム塩化物等のトリメチルアンモニウム類；アリルアミン、アリルアミンアミド、ジアリルアミン、ジメチルアリルアミン、ジアリルジメチルアンモニウムクロライド、ジアリル(メタ)アクリルアミド、ジアリルアルキル(メタ)アクリルアミド等のアリル化合物、エチレンイミン、トリメチレンイミン、テトラメチレンイミン等のイミン類；ビニルアミン；ビニルピロリドン；オルニチン、リジン等のアミノ酸類；及びこれらの単量体のモノハロゲン化物による４級アンモニウム塩類等が挙げられる。
上記カチオン性基を有する単量体は、単独で用いてもよく、複数種を用いてもよく、他の単量体との共重合体としてもよい。

上記泳動路の内表面が上記カチオン性素材から形成されていればよく、上記泳動路の内表面以外の泳動路部分、流路部分及びデバイス部分は、カチオン性素材から形成されていてもよいし、カチオン性素材以外の素材から形成されていてもよい。

本発明のヘモグロビン類の測定装置では、上記流路及び泳動路に緩衝液類を充填して、電気泳動を行うことによってヘモグロビン類の測定を行う。
上記緩衝液類としては特に限定されず、従来公知の緩衝液を用いることができる。
本明細書において、「緩衝液類」とは、電気泳動時、電気泳動に用いる上記流路及び泳動路の内部に満たされる緩衝液の他、電気泳動に用いる陽極槽及び陰極槽に満たされる緩衝液、流路を洗浄する緩衝液、試料を溶解希釈する溶血希釈液等を含むものとする。

上記緩衝液としては、緩衝能を有する公知の緩衝液組成物を含有する溶液を使用することができるものであれば特に限定されず、具体的には例えば、クエン酸、コハク酸、酒石酸、リンゴ酸等の有機酸及びその塩類；グリシン、タウリン、アルギニン等のアミノ酸類；塩酸、硝酸、硫酸、リン酸、ホウ酸、酢酸等の無機酸及びその塩類等が挙げられる。
また、上記緩衝液には、他に一般に添加される物質、例えば、界面活性剤、各種ポリマー、親水性の低分子化合物等を適宜添加してもよい。

上記緩衝液は、水溶性のアニオン性ポリマーを含有することが好ましい。すなわち、上記マイクロデバイスは、アニオン性ポリマーを含有する緩衝液類が充填された泳動路を有することが好ましい。
上記アニオン性ポリマーとしては、アニオン性官能基を有し、電気泳動の実施条件下でアニオン性であるポリマーであれば特に限定されず、従来公知のものを用いることができる。

上記アニオン性官能基としては特に限定されず、例えば、カルボキシル基、リン酸基、スルホン酸基等が挙げられる。
上記アニオン性ポリマーは、上記緩衝液類の全てに含まれてもよいし、上記緩衝液類の一部にのみ含まれてもよい。

上記アニオン性ポリマーは、ポリマー構造を有する。
上記アニオン性ポリマーの重量平均分子量としては特に限定されないが、好ましい下限は５００である。分子量が５００未満であると、アニオン性ポリマーの添加効果が充分に発揮されないことがある。より好ましい下限は１０００である。

上記アニオン性ポリマーは水溶性であることが好ましい。
上記水溶性としては、電気泳動実施時に上記アニオン性ポリマーが上記緩衝液類に溶解している程度であれば特に限定されないが、水に対する溶解度の好ましい下限は１ｇ／Ｌである。１ｇ／Ｌ未満であると、アニオン性基を有する水溶性ポリマー低濃度でしか用いることができないため効果が現れにくく、測定精度が不充分となることがある。より好ましい下限が５ｇ／Ｌである。

上記アニオン性ポリマーの好ましい含有濃度としては特に限定されないが、好ましい下限が０．０１重量％、好ましい上限が１０重量％である。０．０１重量％未満であると、アニオン性ポリマーの添加の効果が発現しにくく、分離が不充分となることがあり、１０．０重量％を超えると、測定時間時間の延長や分離不良を引き起こすことがある。

上記水溶性のアニオン性ポリマーとしては特に限定されないが、具体的には例えば、上記アニオン性基を有する多糖類、及び、上記アニオン性基を有する水溶性の有機合成ポリマーが好ましい。

上記アニオン性基を有する多糖類としては特に限定されず、例えば、コンドロイチン硫酸、デキストラン硫酸、ヘパリン、ヘパラン、フコイダン等のスルホン酸基含有多糖類；アルギン酸、ペクチン酸等のカルボキシル基含有多糖類；セルロース、デキストラン、アガロース、マンナン、デンプン等の中性多糖類へのアニオン性基導入化物；及びこれらの多糖類の塩類、誘導体類等が挙げられる。

上記アニオン性基を有する有機合成ポリマーとしては特に限定されず、例えば、上記アニオン性の官能基を含有する水溶性の従来公知の有機合成ポリマーが挙げられるが、なかでも、アクリル系ポリマー、すなわち、（メタ）アクリル酸及びその誘導体類及びエステル類等を主成分とするポリマー等が好ましい。

上記アニオン性基を有する有機合成ポリマーとしては、具体的には例えば、（メタ）アクリル酸、２−（メタ）アクリロイロキシエチルコハク酸等のカルボキシル基を有するモノマーを重合して得られるアクリル系ポリマー、（（メタ）アクリロイルオキシエチル）アシッドホスフェート、（２−（メタ）アクリロイルオキシエチル）アシッドホスフェート、（３−（メタ）アクリロイルオキシプロピル）アシッドホスフェート等のリン酸基を有するモノマーを重合して得られるアクリル系ポリマー、２−（メタ）アクリルアミド−２−メチルプロパンスルホン酸、（メタ）アクリルアミドプロパンスルホン酸、スルホプロピル（メタ）アクリレート、（メタ）アクリロイルオキシナフタレンスルホン酸等のスルホン酸基を有するモノマーを重合して得られるアクリル系ポリマー等が挙げられる。
上記アクリル系ポリマーは、アニオン性基を有する（メタ）アクリルモノマーと、アニオン性基を有しない（メタ）アクリルモノマーとの共重合体であってもよい。

本発明のヘモグロビン類の測定装置を用いることによって、特に安定型ヘモグロビンＡ１ｃを他のヘモグロビン類から分離して測定することができる。
本明細書において、「安定型ヘモグロビンＡ１ｃを他のヘモグロビン類から分離して測定する」とは、安定型ＨｂＡ１ｃを、不安定型ＨｂＡ１ｃ、カルバミル化Ｈｂ等の修飾Ｈｂ類、その他のＨｂ類、すなわち、ＨｂＡ１ａ、ＨｂＡ１ｂ、ＨｂＦ、ＨｂＡ_０から分離して測定することができることを意味し、更に、安定型ＨｂＡ１ｃを他のヘモグロビン類から分離して測定することと同時に、ＨｂＳ、ＨｂＣ、ＨｂＡ２等を分離して測定することができることを意味する。
このように電気泳動法によりヘモグロビン類を測定する方法であって、本発明のヘモグロビン類の測定装置を用いるヘモグロビン類の測定方法もまた、本発明の一つである。
更に、このような本発明のヘモグロビン類の測定方法を用いることによって、安定型ヘモグロビンＡ１ｃと、異常ヘモグロビン類とを同時に測定するする安定型ヘモグロビンＡ１ｃ及び異常ヘモグロビン類の同時測定方法もまた、本発明の一つである。
なお、本明細書おいて、異常ヘモグロビン類とは、ＨｂＳ、ＨｂＣ等の他に、ＨｂＡ２も含めたヘモグロビン類を意味する。

本発明によれば、糖尿病の診断指標となる安定型ヘモグロビンＡ１ｃの測定を、短時間で高精度に行うことが可能なヘモグロビン類の測定装置、及び、ヘモグロビン類の測定方法を提供することが可能である。すなわち、本発明のヘモグロビン類の測定装置によれば、システムの小型化・低価格化が容易なマイクロデバイスを搭載した電気泳動法に基づき、従来行なわれていた泳動路のコーティング操作を行なうことなく、短時間で高精度に安定型ＨｂＡ１ｃの測定な可能なヘモグロビン類の測定を行うことが可能となる。

以下に実施例を掲げて本発明を更に詳しく説明するが、本発明はこれらの実施例のみに限定されるものではない。

（実施例１）
（ジエチルアミノエチルメタクリレート（カチオン性官能基を有する単量体））−（２−ヒドロキシエチルメタクリレート）−（メチルメタクリレート）の３元共重合体によりマイクロデバイスを作製した（５０ｍｍ×８０ｍｍ）。得られたマイクロデバイス内に流路（内径１００μ×５０ｍｍ）を作製した。
緩衝液として、２．０重量％のコンドロイチン硫酸（アニオン性ポリマー）を含むクエン酸緩衝液（ｐＨ５．０）を上述の流路に注入した。
試料として、健常人血よりフッ化ナトリウム採血した健常人全血７０μＬに、０．５重量％のサポニンを含むクエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）２００μＬを添加して溶血希釈したもの（健常人試料）を用いた。

（健常人試料の測定）
得られた健常人試料を上述の流路内に注入し、流路の両端に８００Ｖの電圧をかけて電気泳動を行った。流路の途中に４１５ｎｍの可視光を照射し、透過した光の吸光度変化を測定したところ、図１に示すエレクトロフェログラムが得られた。図１中、ピーク１は安定型ＨｂＡ１ｃ、ピーク２はＨｂＡ_０を示す。

（修飾Ｈｂ分離能試験）
上述の健常人全血に、グルコースを２０００ｍｇ／ｄＬとなるよう添加して、不安定型ＨｂＡ１ｃを多量に含む試料（Ｌ−Ａ１ｃ試料）、及び、上述の健常人全血に、シアン酸ナトリウムを５０ｍｇ／ｄＬとなるように添加してカルバミル化Ｈｂを多量に含む試料（ＣＨｂ試料）をそれぞれ人為的に調製した。
Ｌ−Ａ１ｃ試料を測定した結果、得られたエレクトロフェログラムを図２に示す。図２中、ピーク１は安定型ＨｂＡ１ｃ、ピーク２はＨｂＡ_０、ピーク３は不安定型ＨｂＡ１ｃを示す。安定型ＨｂＡ１ｃと修飾Ｈｂである不安定型ＨｂＡ１ｃが良好に分離された。
同様に、ＣＨｂ試料を測定した結果、上述の図２と同様のエレクトロフェログラムが得られ、図２のピーク３の位置にカルバミル化Ｈｂが確認された。

（実施例２）
カチオン性官能基を有する単量体としてアクリルアミドを用いてマイクロデバイスを作製し、緩衝液として、１．５重量％の硫酸デキストランを含むリン酸緩衝液（ｐＨ５．４）を用いたこと以外は、実施例１と同様にして、健常人試料、Ｌ−Ａ１ｃ試料、ＣＨｂ試料の測定を行った。得られたエレクトロフェログラムは、図１及び図２と同様であった。

（実施例３）
（エチレンイミン（カチオン性官能基を有する単量体））−（エチレンビニルアルコール）−（メチルメタクリレート）の３元共重合体を用いてマイクロデバイスを作製し、緩衝液として、１．０重量％の（２−（メタ）アクリルアミド−２−メチルプロパンスルホン酸）−（２-ヒドロキシエチルメタクリレート）共重合体を含むリンゴ酸緩衝液（ｐＨ４．９）を用いたこと以外は、実施例１と同様にして、健常人試料、Ｌ−Ａ１ｃ試料、ＣＨｂ試料の測定を行った。得られたエレクトロフェログラムは、図１及び図２と同様であった。

（比較例１）
実施例１のマイクロデバイスの作製に用いた素材（単量体）のうち、カチオン性官能基を有する単量体を除いた単量体のみからなる共重合体を用いたこと、すなわち、（２−ヒドロキシエチルメタクリレート）−（メチルメタクリレート）共重合体を用いたこと以外は、実施例１と同様にして、マイクロデバイスを作製し、健常人試料、Ｌ−Ａ１ｃ試料、ＣＨｂ試料の測定を行った。
いずれの測定においても、Ｈｂのいずれの成分のピークも検出されなかった。

（比較例２）
実施例３のマイクロデバイスの作製に用いた素材（単量体）のうち、カチオン性官能基を有する単量体を除いた単量体のみからなる共重合体を用いたこと、すなわち、（エチレンビニルアルコール）−（メチルメタクリレート）共重合体を用いたこと以外は、実施例３と同様にして、マイクロデバイスを作製し、健常人試料、Ｌ−Ａ１ｃ試料、ＣＨｂ試料の測定を行った。
いずれの測定においても、Ｈｂのいずれの成分のピークも検出されなかった。

（比較例３）
フューズドシリカを用いて、実施例１と同様のマイクロデバイスを作製した。得られたマイクロデバイスの泳動路に、０．０１％のポリブレン水溶液を２０分間通液した後、空気を注入して乾燥することにより、泳動路内面にポリカチオンをコーティングした。実施例１と同様にして、健常人試料、Ｌ−Ａ１ｃ試料、ＣＨｂ試料の測定を行った。健常人試料を測定して得られたエレクトロフェログラムは、図１と同様であったが、Ｌ−Ａ１ｃ試料及びＣＨｂ試料を測定して得られたエレクトロフェログラムは、図５に示すように、分離が不充分であった。図５中、ピーク１は安定型ＨｂＡ１ｃ、ピーク２はＨｂＡ_０、ピーク３は不安定型ＨｂＡ１ｃを示す。

（評価）
（ΔＨｂＡ１ｃ値）
実施例１〜３及び比較例３で得られたヘモグロビン類の測定システムを用いて、グルコースを添加する前の健常人試料と、同一人を元に調製したＬ−Ａ１ｃ試料の安定型ＨｂＡ１ｃ値の差（ΔＨｂＡ１ｃ）を求めた。同様に、シアン酸ナトリウムを添加する前の健常人試料と、同一人を元に調製したＣＨｂ試料の安定型ＨｂＡ１ｃ値の差（ΔＨｂＡ１ｃ）を求めた。
結果を表１に示す。

実施例１〜３では、両者は、ほぼ同等の値を示し、不安定型ＨｂＡ１ｃを含むＬ−Ａ１ｃ試料においても、不安定型ＨｂＡ１ｃを含むＣＨｂ試料においても、精度よく安定型ＨｂＡ１ｃを測定できることが確認された。一方、比較例３では、ΔＨｂＡ１ｃが大きく変動し、不安定型ＨｂＡ１ｃ又はカルバミル化Ｈｂの存在する試料では、安定型ＨｂＡ１ｃが正確に測定できないことがわかった。

（同時再現性試験）
実施例１〜３及び比較例３で得られたヘモグロビン類の測定システムを用いて、同一健常人試料を１０回連続して測定した際の、安定型ＨｂＡ１ｃ値のＣＶ値を算出した。
なお、ＣＶ値は（標準偏差／平均値）を算出することにより求めた。
結果を表２に示す。

表２に示すように、実施例１〜３では、同時再現性試験において、バラツキ度合いを示すＣＶ値は１．０％と良好であった。比較例３では、ＣＶ値が大きく、安定型ＨｂＡ１ｃを高精度に測定することができないことがわかった。

（異常Ｈｂ分離試験）
実施例１について、異常Ｈｂ類として、ＨｂＳ及びＨｂＣを含む試料（ＡＦＳＣヘモコントロール、ヘレナ研究所社製）を用いて、上述の健常人試料の電気泳動による測定と同様の測定をした結果、得られたエレクトロフェログラムを図３に示す。図３中、ピーク１は安定型ＨｂＡ１ｃ、ピーク２はＨｂＡ_０、ピーク４はＨｂＦ（胎児性Ｈｂ）、ピーク５はＨｂＳ、ピーク６はＨｂＣを示す。図３に示すように、安定型ＨｂＡ１ｃとともに、ＨｂＳ及びＨｂＣが良好に分離された。実施例２、３及び比較例１について得られたエレクトロフェログラムも図３と同様であった。

また、実施例１について、ＨｂＡ２を含む試料（Ａ２コントロール レベル２、バイオラッド社製）を用いて、上述の健常人試料の電気泳動による測定と同様の測定をした結果、得られたエレクトロフェログラムを図４に示す。図４中、ピーク１は安定型ＨｂＡ１ｃ、ピーク２はＨｂＡ_０、ピーク４はＨｂＦ（胎児性Ｈｂ）、ピーク７はＨｂＡ２を示す。図４に示すように、安定型ＨｂＡ１ｃとともに、ＨｂＡ２が良好に分離された。実施例２、３及び比較例１について得られたエレクトロフェログラムも図４と同様であった。

本発明によれば、糖尿病の診断指標となる安定型ヘモグロビンＡ１ｃの測定を、短時間で高精度に行うことが可能なヘモグロビン類の測定装置、及び、ヘモグロビン類の測定方法を提供することができる。

実施例１の測定条件により、健常人試料を測定した場合に得られたエレクトロフェログラムを示す。 実施例１の測定条件により、Ｌ−Ａ１ｃ試料を測定した場合に得られたエレクトロフェログラムを示す。 実施例１の測定条件により、ＨｂＳ及びＨｂＣを含む試料を測定した場合に得られたエレクトロフェログラムを示す。 実施例１の測定条件により、ＨｂＡ２を含む試料を測定した場合に得られたエレクトロフェログラムを示す。 実施例３の測定条件により、Ｌ−Ａ１ｃ試料及びＣＨｂ試料を測定した場合に得られたエレクトロフェログラムを示す。

符号の説明

１ 安定型ＨｂＡ１ｃ
２ ＨｂＡ_０
３ 修飾Ｈｂ（不安定型ＨｂＡ１ｃ）
４ ＨｂＦ（胎児性Ｈｂ）
５ ＨｂＳ
６ ＨｂＣ
７ ＨｂＡ２

Claims (3)

1. 電気泳動法によりヘモグロビン類を測定するためのヘモグロビン類の測定装置であって、
   内表面がカチオン性を有する素材によって形成された泳動路を有するマイクロデバイスを有し、
   前記マイクロデバイスは、アニオン性ポリマーを含有する緩衝液類が充填された泳動路を有することを特徴とするヘモグロビン類の測定装置。
2. 電気泳動法によりヘモグロビン類を測定する方法であって、
   請求項１記載のヘモグロビン類の測定装置を用いることを特徴とするヘモグロビン類の測定方法。
3. 請求項２記載のヘモグロビン類の測定方法を用いることによって、安定型ヘモグロビンＡ１ｃと異常ヘモグロビン類とを同時に検出することを特徴とする安定型ヘモグロビンＡ１ｃ及び異常ヘモグロビン類の同時測定方法。

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