JP4771713B2 - チャ花の含有成分とその用途 - Google Patents
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Description
より詳細には、本発明は、ツバキ科植物であるチャの花部であるチャ花の水または含水低級アルコール抽出物および/またはこの抽出物に含まれる新規サポニン化合物またはそ
の塩の用途に関する。
また、チャの興奮作用および利尿作用は古くから知られ、中国においては、明時代の「本草綱目」に、そして我が国においては、江戸時代の「本朝食鑑」に記載されているほどである。
しかしながら、チャ花の成分およびその作用についてはなんら報告されていない。
で表されるサポニン化合物またはその塩が提供される。
に応じてさらに精製したチャ花抽出物に含まれる、上記の一般式(I)で表されるサポニン化合物またはその塩およびそれらの使用に関している。
本発明において、チャ花は、採取したものをそのまま、または乾燥して、あるいは当業者に公知の前記のいずれかの方法で製茶して用いることができる。
これらの抽出用溶媒は、抽出材料に対して1〜50倍 (容量)程度、好ましくは2〜1
0倍 (容量)程度用いられる。
することによって行うのが適当である。抽出材料を振盪下に浸漬する場合には、30分間〜5時間程度行うのが適当であり、非振盪下に浸漬する場合には、1時間〜20日間程度行うのが適当である。また、抽出溶媒の還流下に抽出するときは、30分〜数時間加熱還流するのが好ましい。
ってもよいが、複数回、例えば、2〜5回程度繰り返すのが抽出効率の点から好ましい。
抽出物は、そのまま本発明の組成物を調製するのに用いてもよいが、粉末状または凍結乾燥品等として用いてもよい。これらの固形物とする方法は、当該分野で公知の方法を採用することができる。
すなわち、チャ花の水または含水低級アルコール抽出物を濃縮して得られた抽出物を、必要に応じて酢酸エチルと水を用いて分配し、酢酸エチル可溶画分と水溶性画分として得ることができる。
この場合の非水和性有機溶媒としては、n-ブタノール、ヘキサン、クロロホルムなどが挙げられるが、中でもn-ブタノールが好ましい。
すなわち、上記の酢酸エチルと水との分配後の水溶性画分をそのままn-ブタノールと
の分配に付すか、または該水溶性画分を濃縮して得られる残渣をさらに水とn-ブタノー
ルとの分配に付し、n-ブタノール画分と水溶性画分を得ることができる。
1)加えて行うのが適当である。
精製処理には、上記の溶媒による分配抽出以外に、当業者に公知のクロマトグラフ法、イオン交換クロマトグラフ法等を単独で、または組み合わせて採用することができる。例えば、クロマトグラフ法としては、順相もしくは逆相担体またはイオン交換樹脂を用いるカラムクロマトグラフィー、薄層クロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィーまたは遠心液体クロマトグラフィー等のいずれか、またはそれらを組み合わせて行う方法が挙げられる。この際の担体、溶出溶媒等の精製条件は、各種クロマトグラフィーに対応して適宜選択することができる。
さらに本発明者は、チャ花抽出物を上記の溶媒による分配抽出に付して得られた、酢酸エチル可溶画分およびn-ブタノール可溶画分が強い中性脂肪吸収抑制作用を示すことも見出した。
クトピラノシド、ケンペロール3-O-β-D-ガラクトピラノシド、ミリセチン3-O-β-D-ガラクトピラノシド、(-)-エピカテキンガレート、ケンペロール3-O-グルコシル-(1→3)-ラムノシル-(1→6)-ガラクトシドおよびケンペロール3-O-グルコシル-(1→3)-ラムノシル-(1
→6)-グルコシドを得ると共に、さらに以下の新規化合物を見出した。
で表されるサポニン化合物またはその塩が提供される。
より詳細には、本発明によれば、式(II):
当該化合物が有しているカルボキシ基とナトリウムまたはカリウムのようなアルカリ金属との塩が挙げられる。
さらに、上記の化合物が有するエステル結合のいずれかが常法によって部分加水分解された化合物(R1とR2の両者または何れか一方が水素原子である)も本発明の一部を構成する。
対して強い活性を有することを見出し、本発明を完成した。
V)で表されるTFB-1、TFB-2およびTFB-3の少なくとも一つを有効成分として含む医薬組成物が提供される。
B-2およびTFB-3の少なくとも一つを有効成分として含む糖吸収抑制用組成物が提供される。
される。
さらに、本発明によれば、チャ花抽出物または該抽出物に含まれるTFB-1、TFB-2およびTFB-3の少なくとも一つを有効成分として含む中性脂肪吸収抑制用組成物が
提供される。
したがって、本発明によれば、現代病として代表的なこれら糖尿病、胃障害、および肥満などの生活習慣病の予防または治療を意図した医薬組成物が提供される。
その上、本発明によれば、該組成物を含む健康食品が提供される。
適当な媒体で希釈して、あるいは医薬品の製造分野において公知の方法により、散剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤または液剤等、種々の医薬品の形態に製剤化して使用することができる。
糖、トウモロコシ澱粉、リン酸カルシウム、ソルビトールまたはグリシン)、滑沢剤 (例
えばステアリン酸マグネシウム、タルクまたはポリエチレングリコール)、崩壊剤 (例え
ば馬鈴薯澱粉)または湿潤剤 (例えばラウリル硫酸ナトリウム)等が挙げられる。
シチン、ソルビタンモノオレエートまたはアラビアゴム)、(食用脂を含んでいてもよい)
非水性賦形剤 (例えばアーモンド油、分画ココヤシ油またはグリセリン、プロピレングリコールまたはエチルアルコールのような油性エステル)、保存剤 (例えばp-ヒドロキシ安息香酸メチルまたはプロピル、またはソルビン酸)、および所望により着色剤または香料
等を含んでいてもよい。
剤、カプセル剤または液剤等のほか、クッキー、せんべい、ゼリー、ようかん、ヨーグルト、まんじゅう等の菓子類、清涼飲料、お茶類、栄養飲料、スープ等の形態が挙げられる。
これらの食品の製造工程において、あるいは最終製品に、上記の抽出物を添加して、健康食品とすることができる。
の実施例は、本発明を説明するためのものであり、本発明を何等制限するものではない。
Wistar系雄性ラット:紀和実験動物研究所(和歌山)
ddYマウス:紀和実験動物研究所(和歌山)
メタノール(MeOH):ナカライテスク社製、特級
エタノール(EtOH):ナカライテスク社製、特級
クロロホルム:ナカライテスク社製、特級
酢酸エチル(AcOEt):ナカライテスク社製、特級
カラムクロマトグラフィー用シリカゲル (SiO2):富士シリシア社製、BW-200、150〜350メッシュ
カラムクロマトグラフィー用ODSシリカゲル:富士シリシア社製、Chromatorex ODS DM1020T、100〜200メッシュ。
HPLC用ODSカラム:YMC社製、YMC-Pack ODS-A (250×20mm)
また、核磁気共鳴 (NMR)スペクトルにおいて、化学シフトδは百万分の一 (ppm)で表示し、略語はそれぞれ次の意味を有する:s:シングレット; d:ダブレット;dd:ダブル
ダブレット;t:トリプレット; q:クァルテット;dq:ダブルクァルテット;Ac;アセ
チル基;Ang:アンゲロイル基;MB;2-メチルブチル基。
チャ花抽出物の調製および該抽出物の精製
例えば、約80%の含水エタノールを用いて、チャ花抽出物を調製し、該チャ花抽出物を精製した例を表1および以下に示す。
チャ花1.1 kgを80%エタノール3 Lで加熱還流下に3時間抽出し、冷却後にろ過し、ろ取物をエタノールでの抽出に付した。この操作を3回繰り返し、合わせたろ液を減圧下に濃
縮してエタノール抽出エキス375.1 g (34.1%)を得た。
次いで、上記で得られたエタノール抽出エキス300gを、酢酸エチル2 Lと水2 Lとによる分配抽出に付し、各抽出液を減圧下に濃縮して、酢酸エチル可溶画分 (43.7g、5.0%)と
水可溶画分 (256.3 g、95%)を得た。
さらに、上記で得られた水可溶画分250 gを、n-ブタノール2 Lと水1 Lとによる分配抽出に付し、各抽出液を減圧下に濃縮し、n-ブタノール可溶画分 (139.2g、15.8%)と水可溶画分 (117.1g、13.3%)を得た。
上記で得られたn-ブタノール可溶画分95.2 gをクロロホルム:メタノール:水 (10:3:1〜7:3:1〜6:4:1)の濃度勾配の混液で溶出し、最後にメタノールで溶出するシリカゲルクロマトグラフィー (シリカゲル3.0 kg)に付し、フラクション1〜10を得た。
られたフラクション6 (35.2 g、5.84%)をメタノール:水 (50:50〜70:30)の濃度勾配
の混液で溶出し、最後にメタノールで溶出するODSカラムクロマトグラフィー (ODS 700 g)に付し、フラクション6-1〜6-6の各画分を得た。
次いで、フラクション6-2 (0.23 g、0.04%)をメタノール:水 (40:60)の混液を移動
相とするHPLCに付し、既知物質ミリセチン3-O-β-D-ガラクトピラノシド (17 mg、0.0030%)を得た。
相とするHPLCに付し、既知物質ケンペロール3-O-グルコシル-(1→3)-ラムノシル-(1→6)-ガラクトシド (160 mg、0.115%)およびケンペロール3-O-グルコシル-(1→3)-ラムノシル-(1→6)-グルコシド (173 mg、0.125%)を得た。
mg、0.398%)およびFTB-3 (74 mg、0.295%)をそれぞれ無色微細結晶として得た。
次いで、上記で得られたフラクション5 (9.82 g、1.63%)をメタノール:水 (20:80〜30:70〜50:50〜70:30)の濃度勾配の混液で溶出し、最後にメタノールで溶出するODSカラムクロマトグラフィー (ODS 240 g)に付し、フラクション5-1〜5-8の各画分を得た。
既知物質ケルセチン3-O-β-D-ガラクトピラノシド (66 mg、0.0184%)およびケンペロー
ル3-O-β-D-ガラクトピラノシド (63 mg、0.0176%)を得た。
さらに、フラクション5-3 (1.05 g、0.17%)をメタノール:水 (35:65)の混液を移動
相とするHPLCに付し、新規配糖体化合物FTB-4 (55 mg、0.0187%)を白色粉末として得た
。
ならびに新規配糖体化合物TFB-4を、以下に示す旋光度、各種質量分析、1H-および13C-NMR (溶媒:ピリジン-d5)などの種々の測定結果に基づき同定した。
さらに、絶対構造を2次元NMR、例えばH-H COSYやHMBCなどの種々の手法により決定した
(2次元スペクトルデータは非表示)。
なお、以下の1H-および13C-NMRによる構造解析に用いたナンバリングは、例えば前記式(II)に示したように、各化合物のナンバリングに基づいている。
[α]D 26 -3.3° (c=0.50、EtOH)
高分解ポジティブFAB-MS
計算値 (C59H92O26Na):1239.5774
実測値:1239.5764
UV[MeOH、nm (logε)]:201 (4.25),262 (3.41)
IR (KBr,cm-1) (図1にスペクトルを示した):3505,2928,2951,1719,1655,1379,1078,1047
(125MHz,δ):データを下記表1に示し、また図3にスペクトルを示した。
ネガティブFAB-MS:m/z: 1215 (M-H)-, 1083 (M-C5H904)-, 921 (M-C11H1909)-
[α]D 23 −1.4° (c=0.50,EtOH)
高分解能陽イオンFAB-MS:
計算値 (C62H96027Na):1295.6037
実測値:1295.6029
UV[MeOH,nm (logε)]:277 (3.52)
IR (KBr,cm-1) (図4にスペクトルを示した。):3431,2953,2930,1716,1084,1043
,1.33,1.76,1.83 (3H,全てs,25,26,29,24,23,30,22-0-Ang5,27-H3),1.97 (3H,d,J=7.4 Hz,22-0-Ang4-H3),2.01 (3H,s,21-0-Ang5-H3),2.09 (3H,d,J=7.1
Hz,21-0-Ang4-H3),3.48,3.74 (1H,全てd,J=11.3 Hz,28-H),3.99 (1H,dd,J=8.3,8.6 Hz,3''''-H),4.11 (1H,dd,J=7.6,8.3Hz,2''''-H),4.92 (1H,d,J=7.3Hz,1'-H),5.00 (1H,d,J=7.6 Hz,1''''-H),5.81 (1H, dq様,3''''''-H),5.98 (1H,dq様,21-0-Ang3-H),6.27 (1H,d,J=10.4 Hz,22-H),6.67 (1H,d,J=10.4 Hz
,21-H)
13C-NMR (125MHz,δ):データを表1に示し、また図6にスペクトルを示した。
ネガティブFAB-MS:m/z 1271 (M-H)-,1109 (M-C6H11O5)-
[α]D 25 +4.6° (c=0.50,EtOH)
高分解能FAB-MS:
計算値(C62H98O27Na):1297.6194
実測値:1297.6187
UV[MeOH,nm (logε)]:277 (3.23)
IR (KBr、cm-1) (図7にスペクトルを示した):3453,2963,2932,1717,1653,1078,1047
(1H,d,J=7.3Hz,1'-H),5.01 (1H,d,J=7.3Hz,1''''-H),6.07 (1H,dq様,21-0-Ang3-H),6.20 (1H,d,J=10.0 Hz,22-H),6.62 (1H,dd,J=10.0 Hz,21)
13C-NMR (125MHz,δ):データを表1に示し、また図9にスペクトルを示した。
ポジティブFAB-MS:m/z 1297 (M+Na)+
ネガティブFAB-MS:m/z 1273 (M-H)-,1141 (M-C5H904)-,1111 (M-C6H11O5)-
[α]D 23 -81.5° (c=0.50,EtOH)
高分解能FAB-MS:
計算値 (C19H28O10Na):439.1580
実測値:439.1573
UV[MeOH、nm (logε)]:280 (3.21)
IR (KBr、cm-1):3354,2930,1456,1374,1078,1040
1H-NMR (270 MHz,δ):1.53 (3H,d,J=6.6 Hz,2-H3),3.69 (1H,dd,J=9.3,10.2 Hz,5''-H),4.74 (1H,d,J=7.4 Hz,1'-H),5.08 (1H,dd,J=2.4,7.2 Hz,1''-H)
,7.32 (2H,dd様,5,8-H4),7.73 (2H,d,J=7.9 Hz,4,6-H4)
13C-NMR (270MHz,δ):データを表2に示した。
ポジティブFAB-MS:m/z 439 (M+Na)+
以下の表に示した数からなる群の約24時間絶食させたWistar系雄性ラット(体重約150 g)をそれぞれの投与試験に用いた。以下の表に示した各被験物質の規定量をアラビアゴム
末の5%水溶液に懸濁させて被験サンプルとし、この被験サンプルを5 ml/kgの割合で各群のラットに経口投与した。被験サンプルの投与30分後に、10%ブドウ糖または20%ショ糖水溶液を5 ml/kgの割合で各群のラットにそれぞれ経口投与した。糖溶液の投与30、60お
よび120分後に、エーテル麻酔下でラットの眼窩静脈より採血し、血液を遠心分離 (5000 rpm、10分)により血清を分離後、グルコースオキシダーゼ法(グルコースCIIテストワコー、和光純薬)により血清中グルコース濃度を測定した。
なお、コントロール(正常)群には、アラビアゴム末の5%水溶液および水のみを投与し
た。
また、コントロール(糖負荷)群には、アラビアゴム末の5%水溶液および上記の糖溶液
をそれぞれ投与した。
チャ花のエタノール抽出エキス、TFB-1、TFB-2およびTFB-3のブドウ糖負荷
ラットにおける血糖値上昇抑制作用
上記の測定方法にしたがって、実施例1で得られたチャ花のエタノール抽出エキス、TFB-1、TFB-2およびTFB-3を被験物質とし、以下の表に示した量を用いて各被
験サンプルを調製し、ラットに経口投与して、各被験サンプルのブドウ糖負荷ラットにおける血糖上昇抑制効果を比較した。その結果を以下の表4に示す。
チャ花のエタノール抽出エキスのショ糖負荷ラットにおける血糖値上昇抑制作用
上記の測定方法にしたがって、実施例1で得られたチャ花のエタノール抽出エキスを被験物質とし、以下の表に示した量を用いて各被験サンプルを調製し、ラットに経口投与して、各被験サンプルのショ糖負荷ラットにおける血糖上昇抑制効果を比較した。その結果を以下の表5に示す。
チャ花エタノール抽出エキスのアルドース還元酵素の活性阻害試験:
Wister系雄性ラットの水晶体を10 mM、2-メルカプトエタノール含有135 mMリン酸緩衝
液(pH 7.0)中でホモジナイズし、遠心分離(100,000 rpm,30分、4℃)した。その上清を粗
酵素含有溶液として用いた。粗酵素含有溶液をリン酸緩衝液(pH 7.0)に溶解し、以下の反応条件で、10 nmolのNADPが生成する濃度に希釈し、酵素フラクションとして用いた。
のDMSO溶解25μlを含むように調製した。反応は30℃でNADPHの添加により開始した。30分間インキュベートした後、0.5MHCl 150μlを加え反応を停止した。反応停止後、溶解に10
mMイミダゾール含有6M NaOH 0.5 mlを加え、60℃で20分間加熱して、NADPを蛍光性物質
に変換させた。生成した蛍光性物質を、室温で蛍光分光光度計(LS50B、パーキンエルマ
ー製)を用いて測定(励起波長360nm、測定波長460nm)し、得られた値より50%阻害濃度(1C50)を算出した。
酵素液の調製:
Wister系雄性ラット(体重約150〜350g)の空腸から調整した刷子縁膜を粗酵素として用
いた。刷子縁膜を0.1Mマイレン酸緩衝液(pH 6.0)に懸濁し、上記の反応条件で、スクラーゼ阻害試験においては約0.05 mg、マルターゼ阻害試験においては約0.1 mgのD-グルコー
スが生成する濃度に希釈して用いた。
基質としてショ糖および麦芽糖を用い、それぞれ74 mMの濃度となるように0.1Mマイレ
ン酸緩衝液(pH6.0)に溶解した。また、被験サンプル溶液は、チャ花のエタノール抽出エ
キス40 mgのDMSO (1 ml)溶液を0.1 Mマレイン酸緩衝液(pH 6.0)に、DMSOの最終濃度が2.5%となるように調製した。
ショ糖または麦芽糖の基質溶液100μlに被験サンプル溶液50μlを加え、37℃で2〜3
分間インキュベーションした。上記の酵素液50μlを加えて30分間反応させ、水800μlを
加え、沸騰水浴中で2分間加熱し、酵素を失活させた。別に、各サンプルにつき酵素液を加えた後、直ちに水を加えて沸騰水浴中で2分間加熱し、酵素を失活させたものをブランクとした。生成したD-グルコースの量をグルコースオキシターゼ法(グルコースCIIテス
トワコー、和光純薬)により測定した。得られた値より50%阻害濃度(IC50)を算出した結果、以下の表6に示すように、チャ花のエタノール抽出エキスはアルドース還元酵素および小腸のα-グルコシダーゼ(スクラーゼおよびマルターゼ)に対して阻害活性を有する
ことが判明した。
チャ花エタノール抽出エキス、TFB-1、TFB-2およびTFB-3のエタノール誘発
性胃粘膜損傷に対する抑制効果
チャ花エタノール抽出エキス、TFB-1、TFB-2およびTFB-3を被験物質とし
て、以下の表7に記載の各投与量におけるエタノール誘発性胃粘膜損傷に対する抑制効果
を調べた。
た。この被験サンプルを5 ml/kgの割合で、以下の表に示した数からなる群の24時間絶食
したSD系雄性ラット(体重約250g)にそれぞれ経口投与し、さらに、1時間後に99.5%エタノールを1.5ml/匹ずつ投与した。エタノール投与1時間後に胃を摘出し、1.5%ホルマリンで固定した後、胃を切り開き、胃粘膜に発生した損傷の長さ(mm、損傷長)を測定した結果を次の表7に示す。
チャ花エタノール抽出エキスのインドメタシン誘発性胃粘膜損傷に対する抑制効果
チャ花エタノール抽出エキスを被験物質として、以下の表8に記載の各投与量におけるインドメタシン誘発性胃粘膜損傷に対する抑制効果を調べた。
た。この被験サンプルを5 ml/kgの割合で、以下の表に示した数からなる群の24時間絶食
したSD系雄性ラット(体重約250g)にそれぞれ経口投与し、さらに、1時間後にインドメタシンを20 mg/kgの割合で経口投与した。インドメタシン投与4時間後に胃を摘出し、1.5%ホルマリンで固定した後、胃を切り開き、胃粘膜に発生した損傷の長さ(mm、損傷長)を測
定した結果を次の表8に示す。
チャ花エタノール抽出エキス、チャ花エタノール抽出エキスの酢酸エチル可溶画分およびブタノール可溶画分ならびに水溶性画分の中性脂肪吸収抑制効果
チャ花エタノール抽出エキス、チャ花エタノール抽出エキスの酢酸エチル可溶画分およびブタノール可溶画分ならびに水溶性画分を被験物質として、以下の表9に記載の各投与量における中性脂肪吸収抑制効果を調べた。
マウス(6週齢)にそれぞれ経口投与し、その30分後にオリーブ油(和光純薬)を5 ml/kgの割合で経口投与した。オリーブ油負荷の2、4および6時間後に眼窩静脈からガラス製キャピ
ラリーで採血し、血液を遠心分離 (5000 rpm、10分)により血清を分離後、血清中のトリ
グリセライド(TG)をトリグリセライドE-テストワコー(和光純薬)を用いて測定した。なお、被験物質は、アラビアゴム末を用いて懸濁したものを10 mg/kgの割合で経口投与した。
各被験物質の投与後の血清中のTGを測定した結果を以下の表9に示す。
TFB-1、TFB-2およびTFB-3の中性脂肪吸収抑制効果
上記の試験例6と全く同様にして、TFB-1、TFB-2およびTFB-3を被験物質
としてオリーブ油負荷マウスにおける中性脂肪吸収抑制効果を調べた結果を以下の表10に示す。
当該分野で公知の方法にしたがって、チャ花エタノール抽出物10重量部を乳糖25重量部と混合し、ゼラチンカプセルに充填し、1カプセル中に抽出物が500 mg含有されるゼラチンカプセル剤を得た。
実施例1で得られた酢酸エチル可溶画分を実施例2のエタノール抽出物に替えて、実施
例2と同様にして、ゼラチンカプセル剤を得た。
実施例1で得られたブタノール可溶画分を実施例2のエタノール抽出物に替えて、実施
例2と同様にして、ゼラチンカプセル剤を得た。
Claims (6)
- 請求項1または2に記載の化合物またはその塩の少なくとも一つを有効成分として含む医薬用組成物。
- 前記組成物が、中性脂肪吸収抑制用組成物である請求項3に記載の組成物。
- 前記組成物が、糖吸収抑制用組成物である請求項3に記載の組成物。
- 前記組成物が、胃粘膜保護用組成物である請求項3に記載の組成物。
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