JP4733378B2 - 細胞表層に提示された酵素の活性を高める方法 - Google Patents
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本発明において細胞表層に酵素が提示されている組換え微生物は、細胞表層に酵素を提示するように遺伝子操作された組換え体であれば、特に限定されない。例えば、細菌、真菌、植物細胞などが挙げられる。好適には、細胞壁を有する細胞であり、より好適には酵母である。
本発明において、細胞表層に提示され得る酵素は、特に限定されない。天然に存在する微生物の細胞表層に局在しない酵素であって、微生物の細胞表層に固定することを目的として配置される酵素が好ましい。例えば、分泌性酵素、外来酵素などが挙げられる。分泌性酵素としては、リパーゼ、アミラーゼ類、セルラーゼ類などが挙げられる。
本発明において、細胞表層に酵素を固定する手段は、固定すべき微生物に応じて適宜決定され得る。例えば、酵母の場合は、GPIアンカーや糖鎖結合タンパク質ドメインを利用し、細菌の場合は、外膜局在タンパク質の一部を利用することができる。
GPIアンカーによって、異種遺伝子を発現する方法は、分泌シグナル配列をコードするDNA−細胞表層局在タンパク質をコードする構造遺伝子−GPIアンカー付着認識シグナルをコードするDNA配列から発現され、細胞膜外に分泌された細胞表層局在タンパク質がGPIアンカー付着認識シグナルを介して細胞膜のGPIアンカーと結合することを利用する。すなわち、この細胞表層局在タンパク質をコードする構造遺伝子の全部または一部の配列を、酵素の構造遺伝子の配列に置換することにより、酵素が細胞表層に提示される。GPIアンカー付着認識シグナル配列としては、例えば、酵母のα−アグルチニンのC末端から数えて320アミノ酸の配列中に存在するGPIアンカー付着認識シグナル配列が利用される。
細胞表層局在タンパク質が糖鎖結合タンパク質である場合、その糖鎖結合タンパク質ドメインは、複数の糖鎖を有し、この糖鎖が細胞壁中の糖鎖と相互作用を行う、または絡み合うことによって、細胞表層に留まることが可能である。例えば、レクチン、レクチン様タンパク質などの糖鎖結合部位などが挙げられる。代表的には、GPIアンカータンパク質の凝集機能ドメインが挙げられる。GPIアンカータンパク質の凝集機能ドメインとは、GPIアンカリングドメインよりもN末端側にあり、複数の糖鎖を有し、凝集に関与していると考えられているドメインをいう。
(1)分泌シグナル配列をコードするDNA−酵素の構造遺伝子−細胞表層局在タンパク質(凝集機能ドメイン)をコードする構造遺伝子、
(2)分泌シグナル配列をコードするDNA−細胞表層局在タンパク質(凝集機能ドメイン)をコードする構造遺伝子−酵素の構造遺伝子、
(3)分泌シグナル配列をコードするDNA−酵素の構造遺伝子−細胞表層局在タンパク質(凝集機能ドメイン)をコードする構造遺伝子−酵素の構造遺伝子、などのDNA配列を作成し、酵母に導入することにより、細胞表層に酵素を提示する酵母が得られる。上記のように、(2)のDNA配列が、最も好ましく利用できる。
本発明の細胞表層に提示された酵素の活性を高める方法において、まず、得られた細胞表層提示酵素を有する組換え微生物を、当業者が通常行うように凍結乾燥して保存する。次いで、この凍結乾燥した微生物を水に懸濁し、得られた懸濁液を室温にて少なくとも4日間保存する。
A:FLO1の5’領域(シグナル配列および凝集機能ドメイン)の遺伝子の取得
次のようにしてFLO1の遺伝子を取得した。まず、S. cerevisiae ATCC60715から染色体DNAを抽出した。次いでこれをテンプレートとし、プライマーとして配列番号1および配列番号2に記載のヌクレオチド配列を用いてPCR増幅し、BamHIおよびBglIIで切断して、約3300bpの長さのBamHI-BglII断片(BamHI-BglII FLO1 3300bp断片)を得た。この3300bp断片は、FLO1の5’側の配列(分泌シグナル配列およびFLO1凝集機能ドメイン)を有していると思われる。
次のようにして、Rhizopus oryzaeのリパーゼの遺伝子を取得した。簡単に述べると、まず、R. oryzae IFO4697から染色体DNAを抽出した。次いで、これをテンプレートとし、プライマーとして配列番号3および配列番号4に記載のヌクレオチド配列を用いてPCR増幅を行い、BamHIおよびSalIで切断して、約1100bpの長さのBamHI-SalI断片(BamHI-SalIリパーゼ断片)を得た。このリパーゼ断片は、リパーゼのプロ配列および成熟タンパク質配列を有しており、Beerらの報告(Biochim Biophys Acta, 1399: 173-180, 1998)に記載の配列とほぼ一致するものであった。
目的のDNAを有するプラスミドは、上記Aで得られたFLO1の5’領域遺伝子と上記Bで得られたプロリパーゼ遺伝子とを接続することにより得られる。FLO1誘導体とリパーゼとの融合タンパク質を作成するために、以下の操作を行った。
得られたプラスミドpWIFSpmROLを、Yeast Maker(Clontech Laboratories, Inc., Palo Alto, CA)を用いた酢酸リチウム法によって非凝集性酵母S. cerevisiae MT8-1(MATa ade his3 leu2 trp1 ura3)(Tajimaら、Yeast, 1:67-77, 1985)に導入した。これを、L-トリプトファンを含まない適切なアミノ酸および塩基を補充したSD−W寒天選択培地(6.7% Yeast nitrogen base w/o amino acids (Difco Laboratories製)、2%グルコース、2%寒天末)を用いて培養した。生育した酵母を選択し、S. cerevisiae MT8-1/pWIFSproROLと命名した。以下、この株をFS株という。
上記調製例で得られたFS株を以下のように培養した。なお、培養に用いた培地は、SDC液体培地(pH6.0)(Yeast nitrogen base w/o amino acids:6.7g/L、D−グルコース:20.0g/L、カザミノ酸:20.0g/L、L−ロイシン:100mg/L、ヒスチジン:20mg/L、ウラシル:20mg/L、アデニン:20mg/L)であった。プレート上のFS株のコロニーを、1白金耳ずつ試験管中の培地(5ml×2)に植菌し、30℃、100opmにて24時間培養した。次いで、培養物を三角フラスコ中の培地(100ml×2)に移し、30℃、100opmにて73時間培養した。さらに、消泡剤PE−M(和光純薬工業製):300〜1,500μl/Lを含む500mLのSDC液体培地を入れた1Lジャーファーメンター中で、30℃、600rpm、および1.5VVMにて167時間培養した。培養後、卓上遠心分離機を使用して菌体を収集した。収集した湿潤菌体収量は18.4gであった。収集した菌体の一部を凍結乾燥し、1.7gの菌体を蒸留水100mLに懸濁し、室温にて9日間放置した。放置後、一旦凍結乾燥して保存した後、市販リパーゼ活性測定キット(大日本製薬 リパーゼキットS)を用いて、酵素の力価を測定した。なお、比較のために、培養後の収集した菌体の一部を、凍結乾燥せずに直接蒸留水に懸濁して(54.9g/mL)、9日間室温で放置した後、凍結乾燥して、酵素の力価を測定した。結果を図1に示す。
Claims (2)
- 細胞表層にリパーゼを提示する組換え酵母を凍結乾燥する工程、および
該凍結乾燥した酵母を水に懸濁して室温にて少なくとも4日間保存する工程、
を含む、酵母細胞表層に提示されたリパーゼの活性を高める方法。 - 請求項1に記載の方法によって活性が高められた、酵母細胞表層に提示されたリパーゼ。
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