JP4684906B2 - タイトジャンクション形成促進剤 - Google Patents
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Description
このような障壁は主として細胞間の接着により形成されるが、その接着の1つがタイトジャンクション(以下「TJ」と略記する)である。TJは、隣接する細胞同士を結合させるだけでなく、消化管の粘膜上皮や血管内皮の細胞間を、シールする結合装置である。
TJを構成しているのは、細胞膜タンパク質クローディンやオクルディンである。これらのタンパク質はTJストランドの骨格を構成し、足場タンパク質によってF−アクチンと連結されており、TJ機能を制御すると考えられている。
クローディンやオクルディンの発現が何らかの原因で減少した場合、TJの構造的な破壊が起こり、有害物質に対する抵抗力は低下する。これは、細菌による感染症や敗血症および多臓器不全等の原因となる。また、消化管では食物アレルゲン、病原性微生物および環境ホルモン等の体内への侵入を許し、健康を著しく害する恐れがある。
処方 配合量(%)
1.dl−α−トコフェリルリン酸ナトリウム 2.0
2.クエン酸 0.7
3.果糖ブドウ糖液糖 60.0
4.香料 適量
5.精製水にて全量を100とする。
[製法]5に1〜4を加え、攪拌溶解してろ過し、加熱殺菌後、50mLガラス瓶に充填する。
処方 配合量(%)
1.d−α−トコフェリルリン酸ナトリウム 1.0
2.クエン酸 0.7
3.ショ糖 60.0
4.香料 適量
5.精製水にて全量を100とする。
[製法]5に1〜4を加え、攪拌溶解してろ過し、加熱殺菌後、50mLガラス瓶に充填する。
処方 配合量(%)
1.dl−α−トコフェリルリン酸ジナトリウム 3.0
2.還元麦芽糖水あめ 38.0
3.微結晶セルロース 59.0
[製法]成分1〜3に70%エタノールを適量加えて練和し、押出し造粒した後、乾燥して顆粒剤を得る。
処方 配合量(%)
1.d−α−トコフェリルリン酸カリウム 4.0
2.乾燥コーンスターチ 25.0
3.還元麦芽糖水あめ 20.0
4.粉糖 48.0
5.ショ糖脂肪酸エステル 3.0
[製法]成分1〜4に70%エタノールを適量加えて練和し、押出し造粒した後、乾燥して顆粒を得る。顆粒に成分5を加えて打錠し、1錠0.52gの錠剤を得る。
処方 配合量(%)
1.dl−α−トコフェリルリン酸ナトリウム 0.9
2.乾燥コーンスターチ 51.1
3.エリスリトール 39.0
4.クエン酸 5.0
5.ショ糖脂肪酸エステル 3.0
6.香料 1.0
[製法]成分1〜4に水を適量加えて練和し、押出し造粒した後、乾燥して顆粒を得る。顆粒に成分5及び6を加えて打錠し、1個1.0gの錠菓を得る。
処方 配合量(%)
1.dl−α−トコフェリルリン酸ナトリウム 15.0
2.セルロース 85.0
[製法]成分1および2を混合し、2号硬カプセルに250mg充填してカプセル剤を得る。
処方
1.dl−α−トコフェリルリン酸ナトリウム 2.0
2.スクワラン 5.5
3.オリーブ油 3.0
4.ステアリン酸 2.0
5.ミツロウ 2.0
6.ミリスチン酸オクチルドデシル 3.5
7.ポリオキシエチレンセチルエーテル(20E.O.)3.0
8.ベヘニルアルコール 1.5
9.モノステアリン酸グリセリン 2.5
10.香料 0.1
11.1,3−ブチレングリコール 8.5
12.パラオキシ安息香酸エチル 0.05
13.パラオキシ安息香酸メチル 0.2
14.精製水にて全量を100とする
[製法]成分2〜9を加熱溶解して混合し、70℃に保ち油相とする。成分1および11〜14を加熱溶解して混合し、75℃に保ち水相とする。油相に水相を加えて乳化して、かき混ぜながら冷却し、45℃で成分10を加え、さらに30℃まで冷却して製品とする。
処方
1.d−α−トコフェリルリン酸ナトリウム 0.1
2.1,3−ブチレングリコール 8.0
3.グリセリン 2.0
4.キサンタンガム 0.02
5.クエン酸 0.01
6.クエン酸ナトリウム 0.1
7.エタノール 5.0
8.パラオキシ安息香酸メチル 0.1
9.ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油(40E.O.) 0.1
10.香料 適量
11.精製水にて全量を100とする
[製法]成分1〜6および11と、成分7〜10をそれぞれ均一に溶解し、両者を混合し濾過して製品とする。
処方
1.dl−α−トコフェリルリン酸ジナトリウム 0.5
2.スクワラン 5.0
3.オリーブ油 5.0
4.ホホバ油 5.0
5.セタノール 1.5
6.モノステアリン酸グリセリン 2.0
7.ポリオキシエチレンセチルエーテル(20E.O.)3.0
8.ポリオキシエチレンソルビタン
モノオレエート(20E.O.) 2.0
9.香料 0.1
10.プロピレングリコール 1.0
11.グリセリン 2.0
12.パラオキシ安息香酸メチル 0.2
13.精製水にて全量を100とする
[製法]成分2〜8を加熱溶解して混合し、70℃に保ち油相とする。成分1および10〜13を加熱溶解して混合し、75℃に保ち水相とする。油相に水相を加えて乳化して、かき混ぜながら冷却し、45℃で成分9を加え、さらに30℃まで冷却して製品とする。
処方
1.d−α−トコフェリルリン酸カリウム 0.1
2.エタノール 5.0
3.パラオキシ安息香酸メチル 0.1
4.ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油 0.1
5.香料 適量
6.1,3−ブチレングリコール 5.0
7.グリセリン 5.0
8.キサンタンガム 0.1
9.カルボキシビニルポリマー 0.2
10.水酸化カリウム 0.2
11.精製水にて全量を100とする
[製法]成分2〜5と、成分1および6〜11をそれぞれ均一に溶解し、両者を混合して製品とする。
処方
1.dl−α−トコフェリルリン酸ナトリウム 1.0
2.ポリオキシエチレンセチルエーテル(30E.O.)2.0
3.モノステアリン酸グリセリン 10.0
4.流動パラフィン 5.0
5.セタノール 6.0
6.パラオキシ安息香酸メチル 0.1
7.プロピレングリコール 10.0
8.精製水にて全量を100とする
[製法]成分2〜5を加熱溶解して混合し、70℃に保ち油相とする。成分1および6〜8を加熱溶解して混合し、75℃に保ち水相とする。油相に水相を加えて乳化し、かき混ぜながら30℃まで冷却して製品とする。
処方
1.dl−α−トコフェリルリン酸カリウム 0.1
2.ポリビニルアルコール 12.0
3.エタノール 5.0
4.1,3−ブチレングリコール 8.0
5.パラオキシ安息香酸メチル 0.2
6.パラオキシエチレン硬化ヒマシ油(20E.O.) 0.5
7.クエン酸 0.1
8.クエン酸ナトリウム 0.3
9.香料 適量
10.精製水にて全量を100とする
[製法]成分1〜10を均一に溶解し製品とする。
処方
1.d−α−トコフェリルリン酸ジナトリウム 1.0
2.ステアリン酸 2.4
3.ポリオキシエチレンソルビタン
モノステアレート(20E.O.) 1.0
4.ポリオキシエチレンセチルエーテル(20E.O.)2.0
5.セタノール 1.0
6.液状ラノリン 2.0
7.流動パラフィン 3.0
8.ミリスチン酸イソプロピル 6.5
9.パラオキシ安息香酸ブチル 0.1
10.カルボキシメチルセルロースナトリウム 0.1
11.ベントナイト 0.5
12.プロピレングリコール 4.0
13.トリエタノールアミン 1.1
14.パラオキシ安息香酸メチル 0.2
15.二酸化チタン 8.0
16.タルク 4.0
17.ベンガラ 1.0
18.黄酸化鉄 2.0
19.香料 適量
20.精製水にて全量を100とする
[製法]成分2〜9を加熱溶解し、80℃に保ち油相とする。成分20に成分10をよく膨潤させ、続いて、成分1および11〜14を加えて均一に混合する。これに粉砕機で粉砕混合した成分15〜18を加え、冷却し、45℃で成分19を加え、かき混ぜながら30℃まで冷却して製品とする。
処方
1.dl−α−トコフェリルリン酸ナトリウム 1.0
2.炭酸水素ナトリウム 50.0
3.黄色202号 適量
4.香料 適量
5.無水硫酸ナトリウムにて全量を100とする
[製法]成分1〜5を均一に混合し製品とする。
ヒト消化管上皮細胞Caco−2に試料を10μMとなるように添加し、10日間培養した。TJ形成の確認はCaco−2細胞の経上皮電気抵抗値をMillicell−ERS(ミリポア)で測定した。その結果、表1に示すように、化学式(1)で表される化合物のナトリウム塩及びカリウム塩はTJ形成を促進した。
コンフルエントな状態の正常ヒト角化細胞に、試料を10μMとなるように添加し、24時間後に総RNAの抽出を行った。総RNAを基にRT−PCR法によりクローディンおよびオクルディンmRNA発現量の測定を行った。RT−PCR法はTaKaRa RNA PCR Kit(AMV)Ver.2.1を用いた。また、内部標準としてはGAPDHを用いた。その他の操作は定められた方法に従い、PCR反応液をアガロースゲル電気泳動に供し、クローディン、オクルディン、GAPDHのmRNA発現をバンドとして確認した。これらのバンドをポラロイドカメラにて撮影してデンシトメーターを用いて定量化し、クローディンおよびオクルディンmRNAの発現量を内部標準であるGAPDH mRNA発現量に対する割合として求め、対照を1とした場合の発現比で表した。その結果、表2に示すように、化学式(1)で表される化合物のナトリウム塩及びカリウム塩はクローディンおよびオクルディンmRNAの発現を亢進した。
コンフルエントな状態の正常ヒト角化細胞に、試料を10μMとなるように添加し、24時間後にUVBを30mJ/cm2照射した。照射3時間後に総RNAを抽出し、総RNAを基にRT−PCR法によりクローディンおよびオクルディンmRNA発現量の測定を行った。RT−PCR法はTaKaRa RNA PCR Kit(AMV)Ver.2.1を用いた。また、内部標準としてはGAPDHを用いた。その他の操作は定められた方法に従い、PCR反応液をアガロースゲル電気泳動に供し、クローディン、オクルディン、GAPDHのmRNA発現をバンドとして確認した。これらのバンドをポラロイドカメラにて撮影してデンシトメーターを用いて定量化し、クローディンおよびオクルディンmRNAの発現量を内部標準であるGAPDH mRNA発現量に対する割合として求め、対照を1とした場合の発現比で表した。その結果、表3に示すように、化学式(1)で表される化合物のナトリウム塩及びカリウム塩は、紫外線によるクローディンおよびオクルディンmRNAの発現低下を抑制し、防御効果を示した。
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