JP4491235B2 - メラノコルチン受容体調節剤としての新規な1,2,4−チアジアゾリウム誘導体 - Google Patents
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Description
R1は、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロアリール−アルキル、ヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルキル−アルキル、シクロアルキルおよびシクロアルキル−アルキルから成る群から選択され、ここで、前記アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルキル−アルキルまたはシクロアルキル基は場合によりハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されていてもよく、
R2は、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキルおよびシクロアルキル−アルキルから成る群から選択され、ここで、前記アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキルまたはシクロアルキル基は場合によりハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されていてもよく、
R3は、水素、アルキル、アルケニルおよびアルキニルから成る群から選択され、ここで、前記アルケニルの二重結合または前記アルキニル基の三重結合は結合点から少なくとも炭素原子1個分離れており、
R4は、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキルおよびシクロアルキル−アルキルから成る群から選択され、ここで、前記アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキルまたはシクロアルキル基は場合によりハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されていてもよく、
X−は、ブロマイド、クロライド、ヨージド、アセテート、ベンゾエート、サイトレート、ラクテート、マレート、ナイトレート、ホスフェート、ジホスフェート、スクシネート、スルフェート、タートレートおよびトシレートから成る群から選択されるが、
但しR1がフェニル、クロロフェニルまたはベンジルであり、R2がフェニルまたはベンゾチエニルでありかつR4がフェニルまたはアラルキルの場合にはR3がアルキル、アルケニルおよびアルキニルから成る群から選択され、ここで、前記アルケニルの二重結合または前記アルキニル基の三重結合は結合点から少なくとも炭素原子1個分離れていることを条件とし、
更に、R1がベンジルまたはメチルフェニルであり、R2がフェニルまたはメチルフェニルでありかつR4がメチルフェニルまたは4−メトキシフェニルの場合にはR3がアルキル、アルケニルおよびアルキニルから成る群から選択され、ここで、前記アルケニルの二重結合または前記アルキニル基の三重結合は結合点から少なくとも炭素原子1個分離れていることも条件とし、
更に、R1がフェニルであり、R2がフェニルでありかつR4がフェニルの場合にはR3がC3−8アルキル(即ちメチルでもエチルでもない)、アルケニルおよびアルキニルから成る群から選択され、好適には、R3がアルケニルおよびアルキニルから成る群から選択され、ここで、前記アルケニルの二重結合または前記アルキニル基の三重結合は結合点から少なくとも炭素原子1個分離れていることも条件とする]
で表される化合物およびこれらの薬学的に受け入れられる塩に向けたものである。
R1は、アルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロアリール−アルキル、ヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルキル−アルキル、シクロアルキルおよびシクロアルキル−アルキルから成る群から選択され、ここで、前記アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロアリール−アルキル、ヘテロシクロアルキル、ヘテロシクロアルキル−アルキル、シクロアルキルまたはシクロアルキル−アルキル基は場合によりハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されていてもよく、
R2は、アルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキルおよびシクロアルキル−アルキルから成る群から選択され、ここで、前記アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキルまたはシクロアルキル−アルキル基は場合によりハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されていてもよく、
R3は、水素、アルキル、アルケニルおよびアルキニルから成る群から選択され、ここで、前記アルケニルの二重結合または前記アルキニル基の三重結合は結合点から少なくとも炭素原子1個分離れており、
R4は、水素、アルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキルおよびシクロアルキル−アルキルから成る群から選択され、ここで、前記アリール、アラルキル、ヘテロアリール、ヘテロシクロアルキルまたはシクロアルキル−アルキル基は場合によりハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されていてもよく、
X−は、ブロマイド、クロライド、ヨージド、アセテート、ベンゾエート、サイトレート、ラクテート、マレート、ナイトレート、ホスフェート、ジホスフェート、スクシネート、スルフェート、タートレートおよびトシレートから成る群から選択される]
で表される化合物およびこれの薬学的に受け入れられる塩を治療有効量で投与することを含んで成る。
(発明の詳細な説明)
本発明は、メラノコルチン受容体が介在する障害の治療で用いるに有用な新規な置換1,2,4−チアジアゾール−2−イウム誘導体に向けたものである。より詳細には、本発明は、メラノコルチン受容体の作動薬および拮抗薬として用いるに有用な式(I)
で表される化合物に向けたものである。
BHT=2,6−ビス−(t−ブチル)−4−メチル−フェノール
BSA=ウシ血清アルブミン
cAMPまたは環状AMP=環状アデノシンモノホスフェート
DCE=1,2−ジクロロエタン
DEAD=アゾジカルボン酸ジエチル
DM=分化用媒体
DMF=ジメチルホルムアミド
DMEM=Dulbeccos最少必須培地
DMSO=ジメチルスルホキサイド
DPBS=Dulbeccos燐酸塩緩衝食塩水
EDTA=エチレンジアミンテトラ酢酸
FBS=ウシ胎児血清
GDP=グアノシンジホスフェート
GTP=グアノシントリホスフェート
GM=増殖用培地
HBSS=Hankの緩衝塩溶液
HEPES=4−(2−ヒドロキシエチル)−1−ピペリジンエタンスルホン酸
HS=ヒト血清
IgG=免疫グロブリンG
%Inh=抑制パーセント
MEM=最少必須培地
NBS=N−ブロモスクシニミド
NCS=N−クロロスクシニミド
NDPαMSH=αMSHの類似物である[NIe4,D−Phe7]αMSH
PBS=燐酸塩緩衝食塩水
PEG=ポリエチレングリコール
PNC=ペニシリン
rtまたはRT=室温
SPA=シンチレーションプロキシミティーアッセイ(Scintillation Proximity Assay)
STM=ストレプトマイシン
TLC=薄層クロマトグラフィー
TM=転移用培地
TMS=トリメチルシリル
R3が水素である式(I)で表される化合物の調製はスキーム1に概略を示す方法に従って実施可能である。
o−アニシジン(15.0g、121.8ミリモル)とナトリウムアミド(トルエン中50重量%の懸濁液)(11.40g、146.2ミリモル)を無水トルエン(200ml)に入れることで生じさせた混合物を室温で1時間撹拌した。この混合物にベンゾニトリル(9.86ml、96.6ミリモル)を加えた後、還流下に16時間加熱した。この反応混合物を冷却した後、反応を停止させる目的で1.0NのHCl(150ml)を添加した。活性炭を添加した後、反応混合物をセライトの詰め物に通して濾過した。1.0NのNaOH(200ml)を添加して前記混合物のpHを約14に調整した。その水層をクロロホルム(3x150ml)で抽出した。その有機層を一緒にして無水MgSO4で乾燥させた後、蒸発させた。その結果として生じた固体をヘキサンで洗浄した後、真空下で乾燥させることで、生成物を淡白色固体として得た。
1H NMR(300MHz、CDCl3)TM3.83(s、3H)、4.79(s、2H)、6.96(m、3H)、7.04(m、1H)、7.43(m、3H)、7.93(d、2H)
MS(APCl、MH+)227
段階B:
段階Aと同様にして調製したN−アリールベンズアミジン(3.0g、13.27ミリモル)と4−トリルイソチオシアネート(2.18g、14.60)を無水クロロホルム(30ml)に入れることで生じさせた混合物を還流下に16時間加熱した。この反応混合物を冷却した後、溶媒を蒸発させた。その結果として得た残留物をジクロロメタン中25%のヘキサンを可動相として用いたフラッシュカラムクロマトグラフィーで精製した。その画分を一緒にして蒸発させ、その結果として生じた固体を真空下で乾燥させることで、生成物を黄色固体として得た。
1H NMR(300MHz、CDCl3)TM2.36(s、3H)、3.66(s、3H)、6.76(m、1H)、6.97(t、1H)、7.17−7.39(m、7H)、7.47(d、2H)、7.60(d、2H)、8.20(s、1H)、14.18(s、1H)
MS(ES、MH+)376.29
段階C:
段階Bと同様にして調製したチオ尿素(2.90g、7.73ミリモル)を無水クロロホルム(15ml)に入れることで生じさせた溶液に臭素(438μl、8.51ミリモル)をゆっくり添加した。撹拌を16時間行った後、溶媒を蒸発させた。その結果として生じた固体を無水エチルエーテルで洗浄した。その粗生成物をエタノール中20%の水から再結晶化させることで、生成物を黄色固体として得た。
1H NMR(300MHz、CDCl3)TM2.39(s、3H)、3.66(s、3H)、6.96(d、1H)、7.06(t、1H)、7.20−8.07(m、7H)、7.61(d、2H)、7.80(d、2H)、12.40(s、1H)
MS(ES、MH+)374.25
o−アニシジン(13.5g、110.0ミリモル)とナトリウムアミド(トルエン中50重量%の懸濁液)(9.40g、120.0ミリモル)を無水トルエン(200ml)に入れることで生じさせた混合物を室温で1時間撹拌した。この混合物に2−メトキシベンゾニトリル(16ml、131.0ミリモル)を加えた後、この反応混合物を還流下に16時間加熱した。この反応混合物を冷却した後、反応を停止させる目的で1.0NのHCl(150ml)を添加した。活性炭を添加した後、反応混合物をセライトの詰め物に通して濾過した。1.0NのNaOH(200ml)を添加して前記混合物のpHを約14に調整した。その水層をクロロホルム(3x150ml)で抽出した。その有機層を一緒にして無水MgSO4で乾燥させた後、蒸発させた。その結果として生じた固体をヘキサンで洗浄した後、真空下で乾燥させることで、生成物を淡白色固体として得た。
MS(APCl、MH+)257
段階B:
段階Aと同様にして調製したN−アリールベンズアミジン(15.5g、60.6ミリモル)とフェニルイソチオシアネート(8.70mL、72.7ミリモル)を無水クロロホルム(30ml)に入れることで生じさせた混合物を45℃に16時間加熱した。この反応混合物を冷却した後、溶媒を蒸発させた。その結果として得た残留物をジクロロメタン中25%のヘキサンを可動相として用いたフラッシュカラムクロマトグラフィーで精製した。その画分を一緒にして蒸発させ、その結果として生じた固体を真空下で乾燥させることで、生成物を黄色固体として得た。
MS(ES、MH+)391.50
段階C:
段階Bと同様にして調製したチオ尿素(12.95g、33.1ミリモル)を無水クロロホルム(15ml)に入れることで生じさせた溶液に臭素(1.78mL、34.75ミリモル)をゆっくり添加した。撹拌を16時間行った後、溶媒を蒸発させた。その結果として生じた固体を無水エチルエーテルで洗浄した。その粗生成物をエタノール中20%の水から再結晶化させることで、生成物を黄色固体として得た。
MS(ES、MH+)390.1
本明細書に開示した手順に従って、表1に挙げる如き本発明の式(I)で表される代表的な化合物を調製した。
MS(ES、MH+)390.1
本明細書に記述した手順に従って、表2に挙げる如き本発明の式(II)で表される代表的な化合物を調製した。
メラノコルチン[MC−4]膜[Receptor Biology Incから購入]をポリビニルトルエンを覆っている麦芽アグルチニン−Scintillation Proximity Assayビーズ[Amersham Pharmacia Inc.から購入]に25℃で30分間結合させた。96個ウエルのOptiプレート[Packard(CA)から購入]の各ウエルに入れた体積が100μLの培地の中で2.5μgの膜と0.25mgのビーズを混合した。前記培地は50mMのHEPES(pH7.4)であり、これにウシ血清アルブミンを0.1%、CaCl2を2mM、MgCl2を2mMおよびプロテアーゼ阻害剤を含有させた。前記プレートの個々のウエルに試験化合物(1.5μL)を30%DMSO−50mM HEPES(pH7.4)緩衝液中1mMで添加した。各ウエルに放射性リガンドである125I−NDP−メラノサイト刺激ホルモン[NEN、2000Ci/ミリモル]を加えた(ウエル1個当たり48.5μL、最終濃度40pM)。次に、前記プレートを密封した後、25℃に16時間放置した。非特異的結合(N)を確認する目的で、NDP−メラノサイト刺激ホルモンペプチドおよびα−メラノサイト刺激ホルモンペプチド[Palomar Research Incから購入、1μM]を基準阻害剤化合物として用いた。30%DMSO−50mM HEPES(pH7.4)緩衝液を用いて全結合(T)を確認した。各ウエル毎に結合した放射能(Y)[1分当たりのカウント数(cpm)として測定]をTopCount[Packard(CA)]で測定した。阻害パーセントを下記の如く計算した:
[(T−Y)/(T−N)]*100%
ヒトメラノコルチンMC−4受容体を発現するヒトBowes黒色腫細胞を24個ウエル培養プレートの中で集密になるまで増殖させた。増殖用培地を廃棄した後、各ウエルにHankの溶液を0.5mL加えた。96個ウエルプレートのウエルに試験化合物を加えた。正対照ウエルにはNDP−メラノサイト刺激ホルモンペプチド(1μM)を加える一方、負対照ウエルには媒体である30%DMSO−50mM HEPES(pH7.4)緩衝液を入れた。そのプレートを37℃において5%のCO2下で30分間インキュベートした。上澄み液を廃棄した後、細胞をHankの溶液で2回洗浄した。各ウエルにエタノール(80%、0.5mL)を加えた後、そのプレートを4℃で30分間インキュベートした。NEN Flashplateキット[NEN]を用いて環状AMPの含有量を測定した。この検定で結果としてcAMPの産生増加をもたらした試験化合物をメラノコルチン受容体の作動薬として定義する。
各検定毎にメラノコルチンMC−4受容体を発現する膜(5μg)を25℃で100μLの25mM HEPES緩衝液(pH7.5)[NaClを100mM、プロテアーゼ阻害剤、GDPを0.5μM、2−メルカプトエタノールを5mM、MgCl2を1mMに加えて試験化合物、1μMのNDP−メラノサイト刺激ホルモンまたはNDP−メラノサイト刺激ホルモンと試験化合物の組み合わせを含有させた]に入れた0.5nMの35S−GTPγSと一緒に5分間インキュベートした。DMSOを30%入れておいた10mMのHEPES(pH7.4)緩衝液を用いて基本的35S−GTPγS結合を確認した。停止用緩衝液[HEPES(pH7.5)を25mM、MgCl2を20mM、プロテアーゼ阻害剤、GDPを100μM、GTPを100μM、2−メルカプトエタノールを5mMに加えて界面活性剤(ジジトニン(digitonin)が0.5%でデオキシコール酸ナトリウムが0.2%でNP−40が0.5%)を含有]を50μl添加することで反応を停止させた。前記膜を25℃で30分間溶解させた。抗−ラビットIgG蛋白質A接合SPAと結合している抗Gαs(0.5μg)を用いて、35S−GTPγSと結合したGαs蛋白質を免疫沈澱させた。結合した放射能をTopcount[Packard]で測定した。通常のラビットIgG(0.5μg)を用いて35S−GTPγSを免疫沈澱させることで、非特異的35S−GTPγS結合を確認した。
基本的結合(B)=抗−Gαsで免疫沈澱した平均数/分(cpm)
非特異的結合(NSB)=通常のラビットIgGで免疫沈澱した平均cpm
特異的な基本的結合(SB)=B−NSB
各ウエルにおけるcpm=C
各ウエルにおける正味のcpm(N)=C−NSB
刺激%=[(N−SB)/SB]x100%
この上にメラノコルチンMC−4受容体に関して記述した手順をメラノコルチンMC−3受容体でも繰り返した。その記述した手順に従って、本発明の代表的な化合物に結合に関する試験をMC−4および/またはMC−3検定で受けさせ、それは表4に挙げる如きであった。
オスのLong−Evansラット(180−200グラム)を個別にケージに入れて、この動物が粉末食物(#5002 PMI Certified Rodent Meal)の食餌に順化するように指定時間の間隔離した後、5日間に渡って1日1回の食餌スケジュール(即ち10a.m.から4p.m.まで)に維持した。こぼれる度合が最小限になるように餌を覆う金属製従動部と一緒にワイヤーでケージの中に固定した開放ジャーの中に前記食物を入れて自由に入手できるようにした。水を随意に入手できるようにした。
細胞培養:
Mattson,M.P.、Barger,S.W.、Begley,J.およびMark,R.J.、「Methods Cell Biol.」、1994、46:087−216に記述されているようにして、胎芽日が18日目のラット胎児から分離した海馬および皮質細胞培養物を確立した。簡単に述べると、妊娠している母親(Sprague−Dawley)から胎児を帝王切開で取り出した後、EuthanasiaのAVMAパネルに従ってハロタンを用いて麻酔をかけた。子の首を切り落とした後、脳を取り出して、HEPES緩衝Hank’ Balanced Salt溶液(HBSS;Gibco)の中に入れた。海馬および皮質を切断して取り出して、組織の種類に従ってプールした。組織をトリプシンで15分間処理(1mg/mlのトリプシン−HBSS;Worthington)し、新鮮なHBSSで濯ぎ、トリプシン阻害剤(1mg/ml;Sigma)に入れて5分間インキュベートし、再び新鮮なHBSSで濯いだ後、1mlの新鮮なHBSSに入れて、炎で磨いておいたガラス製ピペットで磨り潰した。分離させた細胞をポリ−D−リシンで被覆しておいた96個ウエルプレート(Collaborative BioScience)にウエル1個当たり30,000個の細胞になるように種付けした。各ウエルにEagleの最少必須培地(MEM;Gibco)[NaHCO3(Sigma)を26mM、グルコース(Sigma)を56mM、KCl(Sigma)を15mM、ピルビン酸ナトリウム(Sigma)を1mM、L−グルタミン(Sigma)を1.1mM、熱で不活性にしておいたウシ胎児血清(Hyclone)を10%(体積/体積)および硫酸ゲンタマイシン(Sigma)を0.001%補充しておいた(pH7.4)]を100μl入れた。細胞を湿っている37℃の5%CO2インキュベーターの中で24時間付着させた後、実験処置を行った。3日毎に培養培地を吸引して、新しい培地と交換した。
検定:
平板培養して24時間後に培養物を媒体(PBS+0.1%BSA)でか、アルファ−メラノサイト刺激ホルモン(α−MSH)でか或は試験化合物(DPBSで希釈)で処理した。各処理条件を4回実施した。培養3日目に培地を吸引で除去して、新鮮な媒体および試験化合物と交換した。培養1週間目に細胞を10%燐酸塩緩衝ホルマリンで15分間固定し、DPBS(Sigma)で濯いだ後、ブロッキング用血清(ウマ血清;DPBSで1:50に希釈;Vector Labs)の中に30分間入れた。この培養物をDPBSで再び濯いだ後、一次抗体の中に入れて2時間インキュベートした[微小管結合蛋白質−2(MAP−2)が樹状突起の選択的マーカーである;抗マウスモノクローナル(Chemicon);MAP−2を抗体希釈剤(Zymed)で1:1000に希釈]。負の対照ウエルでは抗体希釈剤単独でインキュベートした。ブランクのウエル(細胞なし)を抗体の有り無しで培養することで背景シグナルを測定した。培養物を再びDPBSで濯いだ後、フルオレセインの中に1時間入れた[FITC;抗マウスIgG;ラット吸着(rat adsorbed);DPBSで1:50に希釈;Vector Labs]。培養物を最後にDPBSで濯いだ後、Cytofluor 4000蛍光プレート読み装置を用いて前記プレートを読み取った。神経突起生長を対照(媒体)からの変化パーセントとして表した。
試験化合物が神経保護または神経再生効果を示し得るか否かを顔面神経圧縮モデルで調査した。顔面神経運動軸索は充分に限定された核の脳橋中のニューロンから排他的に生じる。顔面神経を圧縮すると結果として損傷部位に近い所では逆行する反応がもたらされそしてそれの基部の所ではWallerian変性が生じ、それによって、損傷側のひげの動きが低下する。
(1)損傷側の顔面核の中でニューロン周囲のグリア細胞の数が多くなり、約D3−6のピークになるまで多くなることが観察される。
(2)損傷を与えてほぼ1週間後に圧縮顔面神経の中のミエリン殻が薄くなりかつミエリン塩基性蛋白質の染色が減少する。
(3)N−M連結およびひげ小胞領域の回りの形態が変化しかつ顔面核の中の運動ニューロンが次第に変性する。
(1)基本線対照として用いる反対側(見せかけの手術を施した)と比較した損傷側のひげの動きの頻度
(2)動くひげのパーセント、ひげの筋肉の筋肉状態および鼻の位置を観察することを基にして特徴付けたひげ筋肉の強度に関する半定量的測定(0から4+)。あらゆる観察に関して、挙動観察者が実験案を分からないようにした。
段階A:支持細胞層の調製
3T3マウス線維芽細胞(Swiss Albinoマウス、ATCC CCL−92)の半集密培養物をマイトマイシンC(4μg/ml)で3時間処理し、トリプシンで処理した後、Dulbeccos最少必須培地(DMEM)[Colorado Calf Serumを10%、PNC(100U/ml)、STM(100μg/ml)、Lグルタミン(0.3mg/ml)、ピルビン酸ナトリウム(1mM)および非必須アミノ酸(100μM)を含有]に入れて、組織培養プレート9.5cm2当たり2.5x105個の密度になるように種付けした。前記細胞を皮脂細胞用支持細胞層として用いるに先立って37℃で24時間インキュベートした。
段階B:ヒト皮脂細胞の単離
手術後のヒト皮膚片のDermatome薄切り片から0.4−0.8mmの深さの所のヒト皮脂細胞を単離した(前記皮膚のその部分には脂腺が豊富に存在することが以前に示されていた)。そのようにして得た薄切り片を37℃において血清含有量が10%のIscoves培地中1%のDispaseで20分間処理した。次に、前記組織を燐酸塩緩衝食塩水(PBS)中0.3%のトリプシン/1%のEDTAに37℃で10分間入れた。このインキュベーションを行った後、前記組織をDMEM/F12培地混合物(3:1)を含有させておいた増殖用培地(GM)[熱で不活性にしたFBSを8%、熱で不活性にしたヒト血清(HS)を2%、ピルビン酸ナトリウムを1mM、表皮成長因子(10ng/ml)、インシュリン(10μg/ml)、ヒドロコルチゾン(0.4μg/ml)および±コレラトキシン(100μg/ml)、L−グルタミンおよび抗生物質を補充]に入れて、それから細胞を穏やかにかき取った。そのようにして得た細胞をナイロンメッシュ(孔サイズが100μ)に通して濾過し、遠心分離に750RPMでかけ、GMに入れて再び懸濁させた後、数を数えた。
段階C:ヒト皮脂細胞の培養
この上に示した単離手順の結果として得た細胞を増殖用培地に入れて3T3支持細胞層の上で9.5cm2当たり2x105個になるように平板培養して、37℃において5%のCO2下に3日間維持した(段階I)。この初期増殖期間後、それらを移行培地(transition medium)(TM)[ピルビン酸ナトリウムを1mM、インシュリン(10μg/ml)、トランスフェリン(6.7ng/ml)およびセレン(5.5μg/ml)(ITS)、熱で不活性にしたFBSを2%および熱で不活性にしたヒト血清を2%に加えて±コレラトキシン(ch.t.)(100μg/ml)、L−グルタミンおよび抗生物質を補充しておいたDMEM/F12培地で構成]に移した(段階II)。3日後、細胞を分化培地(DM)、即ちITS、3,3’,5−トリイド−L−チロニンナトリウム(3nM)、微量元素混合物を1%(体積/体積)および選択した分化剤、即ちウシ下垂体抽出液(10μg/ml)を補充しておいたDMEM/F12に変えた。この培地を3日毎に交換した(段階III)。
段階D:脂肪細胞分化および脂質産生の刺激剤または抑制剤の試験
ホルモン、ホルモン混合物、即ちウシ下垂体抽出液または試験化合物を段階III開始時の前記培養物に添加した。前記材料が皮脂培養物に対して示す効果を評価する目的で下記の2つの判断基準を用いた:脂質蓄積または合成の1)目で見た観察および2)評価。ナイルレッド(Nile red)法を用いて脂質蓄積の評価を実施した。この方法は、ナイルレッドを用いて中性脂質を可視化しそしてプレート読み器を用いて535nmで励起させた時に起こる580nmの所の蛍光の発光を読み取ることで定量を行うことに頼っている。14Cアセテートを用いて放射線標識を付けそして4.1ソフトウエアを用いてBio Rad Phosphoimager(Molecular Imager、FX)で量化することで脂質合成の評価を行った。
段階E:脂質蓄積の目で見た観察およびナイルレッド評価
脂質蓄積の形態学的評価の識別は容易である、と言うのは、細胞が大きくなりかつ脂質粒[これは明視野光学顕微鏡で細胞の中の黄色がかった円として見られる]を示すからである。皮脂細胞の中の中性脂質の蓄積/抑制の量化をナイルレッド結合検定で達成した。簡単に述べると、皮脂細胞を試験化合物に接触させた後、その細胞をHanks緩衝食塩溶液(DMSOとPluronic F127を含有)中1μMのナイルレッドと相互作用させた。4時間のインキュベーション、洗浄および一晩のインキュベーション後、蛍光プレート読み器を用いて、535の所で励起させた時に起こる580の所の蛍光の発光を読み取った。当該化合物が細胞増殖に対して抑制効果を示すか否かを測定する目的で、細胞の数を数えた。
培養11日目の皮脂細胞に14Cアセテートによる標識を血清を含まない培養培地の中で最終濃度が2μCi/mlになるように24時間かけて付けた。次に、プレートから細胞をかき落とした後、ガラスびんに入れて−80℃で凍らせた。Bligh−Dyer法(Bligh,E.G.およびDyer,W.J.、Can.J.Biochem.Physiol.、1959、37、911−916頁)に本明細書に詳細に示す如き若干の修飾を受けさせた方法を用いて脂質抽出を実施した。簡単に述べると、細胞をクロロホルム:メタノールが2:1の混合物に入れてKClの存在下で均一にした。この混合物から有機相を取り出し、脂質を分離してアルゴン下で乾燥させた後、高性能の薄層クロマトグラフィー(HPTLC)板に斑点として付けた。前記板に現像を個々別々の3種類の可動相を用いて受けさせた。1番目の可動相はヘキサン(前記板の上部に付けた)に続いてトルエン(上部に付けた)そして最後にヘキサン:エーテル:酢酸が70:30:1の混合物を付けた(前記板の中間−10cm)。次に、前記板をラジオグラフフィルムに接触させることで、放射性脂質種を可視化した。標識を付けていない脂質の可視化では、前記板に8%の銅酸を噴霧した後、ホットプレートの上で焦がした。Image Pro Plus 3.0(Media Cybernetics、Silver Springs、MD)で結果の量化を行った。
重症複合性免疫不全マウス(SCID)は非常に貴重な皮膚異種移植モデルを与えるものである。このような動物ではTおよびB細胞免疫が欠如している。SCIDマウスに移植したヒト皮膚移植片はヒト細胞組織成分を保持し、そのような成分には、皮膚免疫細胞、即ちランゲルハンス細胞、マクロファージおよびリンパ球、そしてまた合体している内皮の一部が含まれる(Kaufman R.他、Exp.Dermatol.1993:2:209−216、1993)。そのような特性を用いて、ヒト皮膚細胞が試験化合物に対して示す生理学的および/または病理学的反応を研究することができる。
段階A:移植方法
5−6週令のC.B−17scid/scidマウス(Taconic、Germantown、N.Y.)を移植で用いた。Forman Dermatomeを用いてヒト顔面皮膚を〜0.4mmの全厚で切り取った。この皮膚薄切り片をDulbeccoの修飾Eagle培地(DMEM、Life Technologies)に入れた抗生物質および抗菌剤[ペニシリン、ストレプトマイシン、ファンギゾン](Life technologies)で3回洗浄した。この調製した移植床(graft bed)に楕円形(〜2.0−2.5x1.0−1.5)の皮膚を移植した後、4.0の絹を用いて縫合した。手術中、Ketaset(体重1g当たり0.16mg)とRompun(体重1g当たり8.0μg)の混合物を用いてマウスに麻酔をかける。
段階B:処理方法
ヒト顔面皮膚を移植して2−3カ月後のマウスを研究で用いた。移植領域をポリエチレングリコール−エタノールに所望濃度1種または2種以上で溶解させておいた試験化合物で処理した(20μl/2cm2)。対照には媒体単独による処理を受けさせた。試験化合物を週末を除いて毎日投与した。Sebutapeを用いて、処理後15日目および30日目に皮脂分泌を測定した。
段階C:実験の終結
SEBUTAPEを用いて皮脂の産生を予備的に臨床評価することを通して実験の終結を決定した。この時点で、ヒト皮膚移植片を切除して、代表的なサンプルを組織学的評価の目的で集めた。より詳細には、2mmのパンチバイオプシー(punch biopsies)を調製して、処理した組織における脂質合成および全脂質蓄積の評価で用いた。
段階D:試験を受けさせた組織における脂質合成および全脂質蓄積の評価
集めた2mmのパンチバイオプシーを個別にKrebs緩衝液に入れて96個ウエルのプレートに入れた後、10μCiの14Cアセテートによる標識を3時間かけて付けた。この標識付け期間の後のサンプルを培地で洗浄し、5個のバイオプシーをプールし、重量を測定した後、脂質抽出で用いた。脂質抽出およびHPTLCによる分析は組織培養誘導細胞で記述したそれらと同じであった。
経口用組成物の具体的な態様として、実施例2の化合物#74を100mg用いて、サイズが0の硬質ゲルカプセルを充填するに充分な量の微細ラクトースと一緒に全量が580から590mgになるように調合する。
A:ミクロエマルジョン
ミクロエマルジョン組成物の具体的態様として下記の成分を混合し、必要に応じて熱をかける:
B:水アルコール系ゲル
水アルコール系ゲル組成物の具体的態様として、ポリプロピレングリコール(10重量部)、ブチレングリコール(10重量部)、ベンジルアルコール(2重量部)、EDTA(0.05重量部)およびBHT(0.05重量部)を水(全体で74.85重量部)と混合する。この混合物の混合を全成分が溶解するまで行う。次に、絶えず回転させながらカルボマー(例えばGoodrichのCarbopol 934P)(3重量部)をゆっくり添加することでゲルを生じさせる。次に、このゲルを混合しながらこれに化合物#74(0.05重量部)を分散させる。このゲルのpHを約pH3−4に調整する。
C:無水ゲル
無水ゲルの具体的な態様として、イソプロパノール(20重量部)をブチレングリコール(20重量部)に添加する。次に、このイソプロパノール/ブチレングリコール混合物にBHT(0.05重量部)およびベンジルアルコール(1.0重量部)を添加する。次に、その結果として得た混合物を絶えず混合しながらこれにシクロテトラシロキサン(D4)およびオルガノポリシロキサン−11(例えばGrant IndustriesのGransil GSM Gel)(58.85重量部)を添加する。このゲルを絶えず混合しながらこれに化合物#74(0.1重量部)を入れて、それが均一に分散するまで微粉砕して分散させる。
D:クリーム
o/w(油/水)クリームの具体的な態様として、下記の成分を以下に示す如き量(重量部)で混合する。塩酸を用いて最終混合物のpHを約2に調整する。
Claims (26)
- 式(I)
R1は、アリールであり、かつ、前記アリールはハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されており、
R2は、アリールであり、かつ、前記アリールはハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されており、
R3は、水素であり、
R4は、アリールまたはアラルキルであり、かつ、前記アリールまたはアラルキルのアリール部分はハロゲン、ヒドロキシ、アルキル、アルコキシ、ハロゲン置換アルキル、ハロゲン置換アルコキシ、アミノ、アルキルアミノまたはジ(アルキル)アミノから独立して選択される1個以上の置換基で置換されていてもよく、
X-は、ブロマイド、クロライド、ヨージド、アセテート、ベンゾエート、サイトレート、ラクテート、マレート、ナイトレート、ホスフェート、ジホスフェート、スクシネート、スルフェート、タートレートおよびトシレートから成る群から選択される]
で表される化合物。 - R1がアリールであり、かつ、前記アリールがハロゲン、アルキルおよびアルコキシから独立して選択される1または2個の置換基で置換されており、
R2がアリールであり、かつ、前記アリールがアルキルおよびアルコキシから独立して選択される1または2個の置換基で置換されており、
R3が水素であり、
R4がアリールであり、かつ、前記アリールがハロゲン、アルキルおよびアルコキシから独立して選択される1個以上の置換基で置換されていてもよい、
請求項1記載の化合物。 - R1が2−クロロフェニル、4−クロロフェニル、2−メチルフェニル、4−メチルフェニル、2−メトキシフェニルおよび4−メトキシフェニルから成る群から選択され、
R2が4−メチルフェニル、2−メトキシフェニルおよび4−メトキシフェニルから成る群から選択され、
R3が水素であり、
R4がフェニル、2−クロロフェニル、4−クロロフェニル、4−ブロモフェニル、2−メチルフェニル、4−メチルフェニル、2−メトキシフェニル、4−メトキシフェニル、ベンジル、2−クロロベンジル、4−クロロベンジル、2−メチルベンジル、4−メチルベンジル、2−メトキシベンジル、4−メトキシベンジル、2,6−ジフルオロフェニル、3,5−ジフルオロフェニル、2−クロロ−6−メチルフェニルおよび3−ピリジルから成る群から選択される、
請求項1記載の化合物。 - 2−(2−メトキシフェニル)−3−(2−メトキシフェニル)−5−フェニルアミノ−[1,2,4]−チアジアゾール−2−イウム、
2−(2−メトキシフェニル)−3−(2−メトキシフェニル)−5−(2−メトキシフェニルアミノ)−[1,2,4]−チアジアゾール−2−イウム、または
2−(2−メトキシフェニル)−3−(2−メトキシフェニル)−5−(4−トリルアミノ)−[1,2,4]−チアジアゾール−2−イウムである請求項3記載の化合物。 - 2−(2−メトキシフェニル)−3−(2−メトキシフェニル)−5−フェニルアミノ−[1,2,4]−チアジアゾール−2−イウムである請求項4記載の化合物。
- 請求項1記載の化合物と薬学的に受け入れられる担体を含んで成る薬剤組成物。
- 薬剤組成物の製造方法であって、請求項1記載の化合物と薬学的に受け入れられる担体を混合することを含んで成る方法。
- 請求項1記載の化合物と薬学的に受け入れられる担体を混合することで調製された薬剤組成物。
- 請求項2記載の化合物と薬学的に受け入れられる担体を含んで成る薬剤組成物。
- 請求項3記載の化合物と薬学的に受け入れられる担体を含んで成る薬剤組成物。
- 薬剤組成物が局所調剤である請求項8記載の組成物。
- 薬剤組成物が局所調剤である請求項9記載の組成物。
- 薬剤組成物が局所調剤である請求項10記載の組成物。
- 請求項11記載の組成物であって、コメド溶解剤/角質溶解剤、抗菌剤、ステロイド系抗炎症剤および非ステロイド系抗炎症剤からなる群より選択される1種以上の成分をさらに含んでなる、上記組成物。
- 請求項14記載の組成物であって、コメド溶解剤/角質溶解剤がレチノイド、サリチル酸、グルコール酸およびセチルベタインからなる群より選択される、上記組成物。
- 請求項14記載の組成物であって、抗菌剤がベンゾイルパーオキサイド、エリスロマイシン、テトラサイクリン、クリダマイシンおよびアゼライン酸からなる群より選択される、上記組成物。
- X-がブロマイド、クロライドおよびヨージドからなる群より選択される、請求項1記載の化合物。
- X-がブロマイド、クロライドおよびヨージドからなる群より選択される、請求項2記載の化合物。
- X-がブロマイド、クロライドおよびヨージドからなる群より選択される、請求項3記載の化合物。
- X-がブロマイド、クロライドおよびヨージドからなる群より選択される、請求項4記載の化合物。
- X-がブロマイドである、請求項4記載の化合物。
- 2−(2−メトキシフェニル)−3−(2−メトキシフェニル)−5−フェニルアミノ−[1,2,4]−チアジアゾール−2−イウム ブロマイド。
- 請求項22記載の化合物と薬学的に受け入れられる担体を含んで成る薬剤組成物。
- 請求項22記載の化合物と薬学的に受け入れられる担体を混合することを含んでなる薬剤組成物の調製方法。
- 請求項22記載の化合物と薬学的に受け入れられる担体を混合することにより調製された薬剤組成物。
- 2−(2−メトキシフェニル)−3−(2−メトキシフェニル)−5−フェニルアミノ−[1,2,4]−チアジアゾール−2−イウムのブロマイド、クロライド、ヨージド、アセテート、ベンゾエート、サイトレート、ラクテート、マレート、ナイトレート、ホスフェート、ジホスフェート、スクシネート、スルフェート、タートレートまたはトシレート塩を有効成分として含んでなる、アクネの治療用製剤。
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