JP4397743B2 - 抗酸化剤 - Google Patents
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請求項2に記載の発明の抗酸化剤は、請求項1に記載の発明において、前記溶媒抽出物がオオバギの葉身又は茎の先端部を含む原料から溶媒抽出することにより得られることを要旨とする。
<溶媒抽出物の製造>
沖縄県那覇市首里金城町内において4月にオオバギの葉、茎、幹及び実を採取した後、それらを一つにまとめて細かく刻むとともに乳鉢ですり潰して原料を得た。次いで、原料0.1gに対して1mlの割合で溶媒としてのエタノールを加えた後、約1週間室温(25℃)暗所で放置して抽出工程を行った。続いて、ろ過により固液分離を行い溶媒抽出液を得た後、該溶媒抽出液を乾固させてオオバギの溶媒抽出物を得た。一方、前記オオバギの代わりとしてシロバナセンダンソウ(Bidens pilosa L. var. minor Scheff)、シークワーサー(Citrus depressa Hay)又は沖縄産プロポリス原体を用い、前記と同様にして各植物又は沖縄産プロポリス原体の溶媒抽出物を得た。ここで、前記沖縄産プロポリス原体としては、沖縄県那覇市を産地とするものを用いた。尚、以下の説明において、オオバギの溶媒抽出物をOEPといい、沖縄産プロポリス原体の溶媒抽出物をPEPという。
DPPH(α,α-diphenyl-β-picrylhydradil)は517nmに極大吸収を持つ紫色の安定ラジカルであり、水素を得ることにより無色のヒドラジンになる。この呈色反応を利用して以下の方法にてラジカル捕捉活性を測定した。即ち、試料としてのOEPをエタノールに溶解して試料溶液を調製した。続いて、試料溶液1250μlに0.5mMのDPPH溶液(溶媒はエタノール)を250μl加えて反応液を調製し、該反応液を撹拌し暗所にて1時間反応させた後に517nmにおける吸光度を測定した。一方、比較対照としては、前記OEPの代わりの試料として前記シロバナセンダンソウ若しくはシークワーサーの溶媒抽出物、PEP又はBHT(butylated hydroxytoluene)を用い同様に試験を実施した。ここで、反応液中の試料の最終濃度は、OEP及びBHTのときには10μg/mlとし、シロバナセンダンソウ及びシークワーサーの溶媒抽出物のときには20μg/mlとし、PEPのときには10μg/ml又は20μg/mlとした。また、前記試料を加えていないものをコントロールとして用い、同様に試験を実施した。次いで、ラジカル捕捉活性(%)を下記数1にて算出した。その結果を図1(a)に示す。尚、全ての試験は3回行い、その標準偏差も図1(a)に示す。
前記PEPを以下の条件のカラムクロマトグラフィーにて(1)〜(11)の画分に分画した。
充填材:シリカゲル 約590cm3
溶出溶媒: (1) ヘキサン:酢酸エチル=90:10( 350ml)
(2) ヘキサン:酢酸エチル=80:20( 220ml)
(3) ヘキサン:酢酸エチル=70:30( 250ml)
(4) ヘキサン:酢酸エチル=60:40(1000ml)
(5) ヘキサン:酢酸エチル=50:50( 200ml)
(6) ヘキサン:酢酸エチル=40:60( 100ml)
(7) ヘキサン:酢酸エチル=30:70( 100ml)
(8) ヘキサン:酢酸エチル=20:80( 100ml)
(9) ヘキサン:酢酸エチル=10:90( 100ml)
(10) 酢酸エチル(200ml)
(11) メタノール(700ml)
次に、各画分を下記HPLC条件1で分析したところ、(4)及び(6)〜(9)の画分に合計9つの主要成分が含まれていることが確認された。
カラム : Shiseido Capcell Pak ODS UG-120 (4.6×150mm)
溶媒 : A:水(2%酢酸)、B:アセトニトリル(2%酢酸)
溶出条件: 0-60min(グラジエント溶出;A:B=80:20 → A:B=20:80)
流速 : 1ml/min
検出 : UV280nm
次に、(6)〜(9)の各画分を用いて下記HPLC条件2にて分取を行い、化合物1、2、3及び4を単離した。さらに、化合物1及び2については下記HPLC条件3にて精製を行い、化合物3及び4については下記HPLC条件4にて精製を行った。
カラム: YMC-Pack R&D ODS (20×250mm)
溶媒 : 水(0.1%TFA):アセトニトリル(0.1%TFA)=45:55
流速 : 9ml/min
検出 : UV280nm
HPLC条件3(HPLC条件2と異なる条件のみを示す。)
溶媒 : 水(0.1%TFA):アセトニトリル(0.1%TFA)=50:50
流速 : 8ml/min
HPLC条件4(HPLC条件2と異なる条件のみを示す。)
溶媒 : 水(0.1%TFA):アセトニトリル(0.1%TFA)=40:60
また、画分(4)を用いて下記HPLC条件5にて分取を行い、化合物5、6、7、8及び9を単離した。さらに、化合物5及び6については下記HPLC条件6にて精製を行い、化合物7及び8については下記HPLC条件7にて精製を行い、化合物9については下記HPLC条件8にて精製を行った。
カラム: YMC-Pack R&D ODS (20×250mm)
溶媒 : 水(0.1%TFA):アセトニトリル(0.1%TFA)=40:60
流速 : 9ml/min
検出 : UV280nm
HPLC条件6(HPLC条件5と異なる条件のみを示す。)
溶媒 : 水(0.1%TFA):アセトニトリル(0.1%TFA)=35:65
HPLC条件7(HPLC条件5と異なる条件のみを示す。)
溶媒 : 水(0.1%TFA):アセトニトリル(0.1%TFA)=35:65
流速 : 8ml/min
HPLC条件8(HPLC条件5と異なる条件のみを示す。)
溶媒 : 水(0.1%TFA):アセトニトリル(0.1%TFA)=20:80
前記化合物1〜9のそれぞれについて、1H−NMR、13C−NMR、MS、IR、UVスペクトル等を測定することにより構造解析を行った。その結果、化合物1はプロポリンA(propolin A;5,7,3',4'-tetrahydroxy-2'-(7''-hydroxy-3'',7''-dimethyl-oct-2''-enyl)-flavanone)であり、化合物2は5,7,3',4'-tetrahydroxy-5'-(7''-hydroxy-3'',7''-dimethyl-oct-2''-enyl)-flavanoneであり、化合物3は5,7,3',4'-tetrahydroxy-6-(7''-hydroxy-3'',7''-dimethyl-oct-2''-enyl)-flavanoneであることが判明した。さらに、化合物4は5,7,4'-trihydroxy-3'-(7''-hydroxy-3'',7''-dimetyl-oct-2''-enyl)-flavanoneであり、化合物5はニムフェオール−B(nymphaeol-B;5,7,3',4'-tetrahydroxy-2'-geranylflavanone)であり、化合物6はイソニムフェオール−B(isonymphaeol-B;5,7,3',4'-tetrahydroxy-5'-geranylflavanone)であることが判明した。加えて、化合物7はニムフェオール−A(nymphaeol-A;5,7,3',4'-tetrahydroxy-6-geranylflavanone)であり、化合物8は5,7,4'-trihydroxy-3'-geranylflavanoneであり、化合物9はニムフェオール−C(nymphaeol-C;5,7,3',4'-tetrahydroxy-6-(3''',3'''-dimethylallyl)-2'-geranylflavanone)であることが判明した。
カラム : Shiseido Capcell Pak ODS UG-120 (4.6×250mm)
溶媒 : A:水(2%酢酸)、B:アセトニトリル(2%酢酸)
溶出条件: 0-60min(グラジエント溶出;A:B=80:20→A:B=20:80)
流速 : 1ml/min
検出 : UV280nm
注入量 : 10μl
温度 : 30℃
LC/MS条件
・LC条件
カラム : Shiseido Capcell Pak C18 UG-120 (4.6×250mm)
溶媒 : A:水(2%酢酸)、B:アセトニトリル(2%酢酸)
溶出条件: 0-60min(グラジエント溶出;A:B=80:20→A:B=20:80)
流速 : 200μl/min
検出 : UV280nm
注入量 : 5μl
温度 : 30℃
・MS条件
走査方式:MS
イオン源:ESI
極性:負
シースガス(sheath gas):70arb(N2)
スプレー電圧(spray voltage):5kV
キャピラリー温度:260℃
キャピラリー電圧:−10V
この結果、UVスペクトル及びMSのデータは示さないが、図2に示すように、OEPには化合物1及び5〜9が含有され、シロバナセンダンソウ及びシークワーサーの溶媒抽出物には各化合物が含有されていないことが明らかとなった。さらに、OEPには、化合物1〜9に比べて保持時間が短い化合物群が含有されていることが明らかとなった。
沖縄県那覇市首里金城町内において10月にオオバギの葉身、茎の先端部、葉柄、茎(先端部以外の部分)及び幹を採取した。次いで、茎及び幹を一つにまとめた以外は各構成成分を別々に分けた状態で各々を細かく刻むとともに乳鉢ですり潰し、特定の器官又は構成成分からなる原料を得た。続いて、各原料について、実施例1の<溶媒抽出物の製造>と同様にしてそれぞれ溶媒抽出物を得た。
前記OEPの代わりの試料として前記特定の器官又は構成成分の溶媒抽出物を用い、実施例1の<溶媒抽出物に関するDPPHラジカル捕捉活性試験>と同様の試験を行いラジカル捕捉活性を算出した。一方、前記OEP又は比較対照として前記PEPを用い、同様に試験を行いラジカル捕捉活性を算出した。ここで、反応液中の試料の最終濃度はそれぞれ10μg/mlとした。その結果を図1(b)に示す。尚、全ての試験は3回行い、その標準偏差も図1(b)に示す。
前記特定の器官又は構成成分の溶媒抽出物について、実施例1の<溶媒抽出物の成分分析>と同様にして分析、UVスペクトル及びMSの測定を行った。各HPLCクロマトグラムを図3及び図4に示す。尚、図3及び図4における各数字は図2と同じ凡例を示す。この結果、UVスペクトル及びMSのデータは示さないが、図3及び図4に示すように、葉身の溶媒抽出物には化合物5〜9が含有され、茎の先端部の溶媒抽出物には化合物1、5、7及び9が含有され、葉柄の溶媒抽出物には化合物1、5及び7〜9が含有されていることが明らかとなった。さらに、各溶媒抽出物には、化合物1〜9に比べて保持時間が短い化合物群が含有されていることが明らかとなった。
・ 前記溶媒抽出物を、抗アレルギー剤、抗菌剤又は抗腫瘍剤の有効成分として用いてもよい。ここで、溶媒抽出物は、抗酸化作用以外にも高い抗アレルギー作用、抗菌作用及び抗腫瘍作用を有している。このため、各製剤は、溶媒抽出物に起因して高い抗アレルギー作用、抗菌作用又は抗腫瘍作用をそれぞれ発揮する。
・ 請求項1から請求項3のいずれか一項に記載の抗酸化剤の製造方法であって、オオバギを原料とし、該原料を溶媒抽出する抽出工程を備えていることを特徴とする抗酸化剤の製造方法。この構成によれば、抗酸化剤の製造が容易である。
Claims (3)
- オオバギの溶媒抽出物からなることを特徴とする抗酸化剤。
- 前記溶媒抽出物がオオバギの葉身又は茎の先端部を含む原料から溶媒抽出することにより得られることを特徴とする請求項1に記載の抗酸化剤。
- 前記溶媒がエタノールであることを特徴とする請求項1又は請求項2に記載の抗酸化剤。
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