JP4388824B2 - 生産物 - Google Patents
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Description
(Violet Red Bile Agar)、XLD Agar (Xylose Lysine Deoxycholate Agar)、CASO (Casein-peptone Soybean-peptone)、TSB (Tryptic Soy Broth)およびNB (Nutrient Broth)などの広く市販されている酵母、肉エキスまたは植物抽出物を使うのが一般的である。中でも酵母抽出物増殖基質(たとえばMRS、VRBD、VRB Agar、PCA、Baird-Parker Agar BaseおよびXLD Agarに含まれる)は、Merck社およびDifco社から市販されている。
[発明の開示]
今回我々が見出したのは、特別に有効な微生物増殖培地が、メタン栄養細菌を含む培養物から得られるバイオマス(たとえばWO 01/60974に記載されたように生産されるバイオ
マス)を用いて生産することができるという驚くべきことである。
とからなる微生物を培養する方法であって、該増殖培地が、必要に応じて追加の栄養素を添加した、メタン栄養細菌を含む細菌の培養物のバイオマスから得られる無菌的栄養組成物であるか、または該組成物から調製されることを特徴とする方法を提供するものである。
容は本明細書中に引用して取り込まれる。特に適切な組み合わせの具体例は、メチロコッカス・カプスラタス(Methylococcus capsulatus)(Bath) (NCIMB 11132株)、ラルストニア(Ralstonia)sp. DB3 (NCIMB 13287株)、アニュリニバチラス(Aneurinibacillus)sp. DB4 (NCIMB 13288株)およびブレビバチラウス・アグリ(Brevibacillus agri)DB5 (NCIMB 13289株)である(これらの微生物のそれぞれは、特許の存続期間中はノルウェーのNorferm DA社から入手できる)。
る微生物増殖培地の調製のための好ましい原料である。ホモジナイズ化、自己融解または加水分解されたバイオマスをろ過(たとえば限外ろ過)して得られる前駆体原料、すなわち、濾液自体およびそのろ過残留物もまた使用してもよい。しかし、最も好ましいのは乾燥した自己融解物である。
に基づく重量比で存在する。上記組成物が添加硝酸塩および無機塩類を含む場合、それらは好ましくはバイオマス由来成分に対して0.01:1〜0.2:1(特に0.05:1〜0.1:1)の重量比で存在する。供給時の組成物がブドウ糖および/または硝酸無機塩類を含まない場合には、増殖培地の調製の際に、上記に特定した重量比で、そのような成分の一方または両方を添加することが好ましい。
メタン栄養細菌および従属栄養細菌(メチロコッカス・カプスラタスMethylococcus capsulatus (Bath) (NCIMB 11132株)、ラルストニアRalstonia sp. DB3 (NCIMB 13287株)、アニュリニバチラスAneurinibacillus sp. DB4 (NCIMB 13288株)およびブレビバチラウス・アグリBrevibacillus agri DB5 (NCIMB 13289株)、それぞれノルウェーのNorferm DA社から入手可能)を、W001/60974に記載のとおりに培養し、その結果生成したバイオマスはWO01/60974に記載のとおりに回収・処理し、スプレードライ・ホモジナイゼート(以後「BPホモジナイゼート」という)を生成し、国際特許出願PCT/GB03/000610に記載のとお
りにスプレードライ加水分解物(以後「BP加水分解物」という)を生成し、国際特許出願PCT/GB03/000640(たとえば実施例1参照)に記載のとおりに自己融解物(以後「BP
抽出物」という)を生成した。
物(Retentate)」という生産物は、ホモジナイズされ、超高温処理されるバイオマスをい
う。「BP透過物(Permeate)」という生産物は、基本的には「BP抽出物」の生産において限外ろ過処理された生産物のことである。
微生物増殖培地は、BPホモジナイゼート、BP自己融解物、BP抽出物、BP残留物およびBP透過物を、1g/Lの濃度で脱塩水に加えることで生産した。これらの培地は、その後直接に、または0.1g/Lのブドウ糖および/または32.4mL/Lの硝酸無機塩培地(Nitrate Mineral Salt medium:NMS)を添加して使用した。
1.0g KNO3
0.2g CaCl2・2H2O
1.0g MgSO4・7H2O
0.1mL 微量元素溶液*
0.1mL モリブデン酸ナトリウム溶液(5g/L NaMoO4・2H2O、脱塩水)
0.1mL EDTA溶液(45g/L FeNaEDTA・2H2O、水)
水で 〜1Lにして、
10mL/L 無菌リン酸緩衝液(35.6g Na2HPO4・2H2O、26.0g K
H2PO4および水で1L)を加えた。
*6.4g ZnSO4・7H2O
150mg H3BO3
600mg CoSO4・7H2O
130mg MnCl2
100mg NiCl2・6H2O
脱塩水で1Lにした。
すべての培地は使用前にオートクレーブ滅菌した。
32.2g/L BP抽出物
20.0g/L ブドウ糖
34mL/L NMS培地
14.0g/L 寒天
脱塩水で1Lにした。
使用前にはオートクレーブ滅菌した。
好気性および嫌気性、グラム陽性およびグラム陰性の細菌を、実施例1の液体培養培地ならびに対照用として細菌菌株用に勧められている増殖培地を用いて、振とうフラスコ内で培養した。培養物の光学濃度を、細菌の得られた増殖の指標(すなわち、細胞数が最大であって、「頭打ち」もしくは定常状態の指標)としてモニターした。結果を表1に示す。
+:BP誘導体の組み合わせのうち、対照用の基質と同等のものがある。
+++:BP誘導体の組み合わせのうち、対照用の基質よりも明らかに優れたものがある
。
寒天ゲル(PCA、MRS寒天、および寒天を含むBP抽出物(実施例1)pH6.0および7.1)に、刻んだ肉のサンプルから採取した未知の微生物を塗布した。培養物は25℃で72時間培養し、総平板計数結果を記録した。BP抽出物では、log(CFU/g)は、5〜約6.6であり、MRSでは1未満であった。PCAではlog(CFU/g)は、約6.7であり、わずかに高かった。
乳酸菌株L. casei ssp. rhamnosus (ATCC 7469株)、L. delbruekii ssp. lactis (ATCC
7830株)、L. fermentum (CCUG 30138株)、L. gasseri (ATCC 19992株)およびL. plantarum (ATCC 8014株)を、MRS寒天上およびBP抽出物寒天(実施例1)上で、好気性条件下で培養した。すべての場合において、log(CFU/mL)として測定された増殖性は、BP抽出物については、同一かより高かった。このことは、L. delbruekiiについて
最も顕著だった。同じ菌株をそれらの培地上で、嫌気性条件下でも培養した。この場合も、増殖能は、BP抽出物についてのすべての場合において同じかより高かった。
Crypthecodinium cohnii (Seligo) Javornicky (ATCC 30772株)を、脱塩水中に9g/
Lのブドウ糖、25g/Lの海塩、および2g/Lの酵母抽出物(yeast extract:YE)
またはBP抽出物を含む培地上で培養した。培養2日後、細菌細胞を回収し、全脂肪酸、細胞乾燥重量(cell dry weight:CDW)および22:6(ドコサヘキサエン酸)含有量を決定した。その結果を表2に示す。
フラスコ内および発酵槽において、複合成分をBP自己融解物(実施例1)で置き換えた培地上での、乳酸菌株、L. plantarumおよびL. acidophilusの増殖と、標準MRS培地を使用した場合の増殖とを比較した。
それぞれの菌株について二つの発酵を行った;一つは標準培地MRSを用いたもので、もう一つはMRS中の複合成分をBP自己融解物と置換したものである(フラスコ実験における培地CA−4)。
嫌気性フラスコ内で行われた実験の方法:
接種材料: L. plantarumおよびL. acidophilusの種割り当て(seed lot)、1mlを80
mlのMRS培養液(Oxoid)に接種し、37℃で20時間培養した。L. acidophilus株
に対しては、MRS培養液をpH5.5に調整した。
培養条件:表4に従って複合培地基質を使用し、その際他の培地成分は一定に保った(表5)。ブドウ糖以外のすべての成分を混合し、pHを6.0および5.5にそれぞれ調整し、121℃で20分間オートクレーブ滅菌した。ブドウ糖は別途にオートクレーブ滅菌した。培養前にフラスコに窒素を流した。二つのフラスコを接種し、一方を対照用とした。フラスコごとに0.5mlの接種材料を使用した。フラスコにそれぞれ20時間および24時間、37℃、100rpmで横側から接種した。サンプルのpHおよびCFU/m
lを分析した。
接種材料:フラスコ実験の場合と同様の条件を使用した。L. plantarumおよびL. acidophilus、種割り当て(seed lot)の1mlを使用して80mlのMRS培養液(Oxoid)
を接種し、37℃で20時間培養した。L. acidophilus株に対しては、MRS培養液をpH5.5に調整した。
エン酸塩(2.00g/l)に変更したこと以外は、フラスコ実験の条件を維持した(表6)。ブドウ糖以外のすべての成分を混合し、pHを6.0およびpH5.5にそれぞれ調整し、121℃で20分オートクレーブ滅菌した。ブドウ糖は別途にオートクレーブ滅菌した。
A(Difco)上の細菌汚染について分析した。
<表7>L. plantarumの生産についてのフラスコ実験。
増殖基質に関する培地の組成(g/L)、L. plantarumの増殖能(CFU/mL)および37℃、20時間後のpH。
増殖基質に関する培地の組成(g/L)、L. acidophilusの増殖能(CFU/mL)お
よび37℃、24時間後のpH。
CFUおよび水酸化ナトリウムの使用から、両菌株に関してBP自己融解物を含む培地における増殖は、MRS中に標準複合成分を含む場合と比べて同等またはより優れていることが示された。発酵時間は、両菌株について、MRSの場合よりもBP自己融解物の場合の方がより短かった。結果を表9および図1にまとめた。細菌汚染は常に観測されなかった。
フラスコ実験および発酵実験の両方から、BP自己融解物を含む培地における増殖は、標準MRSの場合と比べて同等以上またはさらに改善されていることが明らかになった。
本研究の目的は、大腸菌発酵における窒素源として代替性BP自己融解物を試験することである。BP抽出物およびBP自己融解物(実施例1)を試験し、標準の酵母抽出物と
比較した。
満のブドウ糖レベルでは、ブドウ糖を補給した。ブドウ糖は、さらにpHでモニターした:1)pH>6.8ではブドウ糖供給を増やし、2)pH<6.75ではブドウ糖供給を減らしてNaOHを加えた。
供給物:
1.ブドウ糖のような炭素源
2.窒素源
a.酵母抽出物
b.BP抽出物
c.BP自己融解物(酵母抽出物およびBP抽出物の1.5倍の濃度)
4.5時間後、β−ガラクトシダーゼの誘導物質として、ITPG(iso-propyl-beta-D-thiogalactopyranoside)を加えた。
のL−リジン過剰生産菌株のための複合窒素源としてのBP自己融解物の分析>
本研究の目的は、C. glutamicumのリジン過剰生産突然変異株の発酵によるリジンの生
産のための複合窒素源として、BP自己融解物(実施例1)を、大豆加水融解物(Bacto soytone)と比較することである。C. glutamicum NRRL B-11470を含んだ1リットルの培
地を有する3リットルのガラス製発酵槽で行われた発酵において、リジン生産を比較した。培地の組成は、すべての発酵において同じである。ただし、BP自己融解物またはソイトン(soytone)(14、21または28g/リットル)のいずれかである複合窒素源は
除く。
結果:
発酵の主な結果を表10にまとめた。さらに、発酵時間の関数としてのリジン生産を図3に示した。全般的に、リジン生産速度は、複合窒素源の濃度増加とともに増加している。これは恐らく、細胞濃度が、複合窒素源の添加量の増加とともに増加しているからである。しかしながら、生産速度は、BP自己融解物を添加した培地中では、同量のソイトンを添加した培地と比べて、有意に高い。BP自己融解物における粒体濃度が高いため、BP自己融解物を用いた発酵における光学濃度を決定することは不可能だった。したがって、これらの発酵における細胞量を推定することはできない。しかしながら、生産速度が高いのは恐らく、BP自己融解物を用いた発酵においては、ソイトンを用いた同様の発酵よりも細胞濃度が高いからである。
B この計算においては、発酵中の容積増加(5〜15%)を考慮した。
C 発酵の終了時における培地の顕微鏡検査では、培地に汚染生物は見られなかったが、分析結果は汚染生物が存在することを明確に示していた。しかしながら、当該生物はリジン生産にそれほど影響しなかったようである。
E この発酵では、最後のサンプルにおいて測定されたリジン濃度は、最後から2番目のサンプルにおける場合よりも低かった。キナード(Chinard)法がかなり大きな標準偏差を有
していることがその理由である。最終容積収率は、主として最後から2番目のサンプルに基づいて推定した。
結論:
発酵研究からBP自己融解物は、ソイトンの良好な代替物であることが明確に示され、発酵における生産速度の点でソイトンよりも優れているようである。BP自己融解物を用いた発酵において、生産速度の増加は、同量のソイトンを用いた発酵における場合と比べて、恐らく細胞濃度が高いことが原因である。このことの理由は不明である。しかしながら、BP自己融解物は細菌起源のものであるから、ソイトンと比較すると、増殖のための成分(リボ核酸、細胞壁構成成分、脂質など)についての細胞の必要条件に、より適合していることがその理由であろう。
Claims (24)
- 少なくとも一種類以上のメタン栄養細菌と少なくとも一種類以上の従属栄養細菌とを含む細菌の培養物のバイオマスから得られる無菌的栄養組成物の、微生物増殖培地としての使用方法。
- 前記培養物が追加の栄養素も含むことを特徴とする請求項1に記載の方法。
- 微生物と該微生物用の増殖培地とを接触させることからなる微生物培養方法であって、前記増殖培地が、少なくとも一種類以上のメタン栄養細菌と少なくとも一種類以上の従属栄養細菌とを含む細菌の培養物のバイオマスから得られる無菌的栄養組成物であるか、または該組成物から調製されることを特徴とする微生物培養方法。
- 前記培養物が追加の栄養素も添加されたものであることを特徴とする請求項3に記載の方法。
- 前記栄養組成物が、前記バイオマスの加水分解物、ホモジナイゼートまたは自己融解物を含むことを特徴とする請求項1〜4のいずれかに記載の方法。
- 前記栄養組成物が自己融解物を含むことを特徴とする請求項5に記載の方法。
- 前記増殖培地が、ブドウ糖および/または硝酸塩および無機塩類をさらに含むことを特徴とする請求項1〜6のいずれかに記載の方法。
- 硝酸塩および無機塩類が、カリウム、カルシウム、マグネシウム、ナトリウム、モリブデン、鉄、亜鉛、ホウ素、コバルト、マンガンおよびニッケルの化合物から選ばれることを特徴とする請求項7に記載の方法。
- ブドウ糖が、バイオマス由来成分に対して5:1〜1:5の乾燥質量に基づいた重量比で前記増殖培地に存在することを特徴とする請求項7または8に記載の方法。
- ブドウ糖が、バイオマス由来成分に対して2:1〜1:2の乾燥質量に基づいた重量比で前記増殖培地に存在することを特徴とする請求項9に記載の方法。
- 硝酸塩および無機塩類が、バイオマス由来成分に対して0.01:1〜0.2:1の重量比で前記増殖培地に存在することを特徴とする請求項7〜10のいずれかに記載の方法。
- 硝酸塩および無機塩類が、バイオマス由来成分に対して0.05:1〜0.1:1の重量比で前記増殖培地に存在することを特徴とする請求項11に記載の方法。
- バイオマスを生産するために使用する細菌の培養物は、細菌の全重量に対して50重量%以上がメタン栄養細菌であることを特徴とする請求項1〜12のいずれかに記載の方法。
- バイオマスを生産するために使用する細菌の培養物は、細菌の全重量に対して75〜95重量%がメタン栄養細菌であることを特徴とする請求項13に記載の方法。
- 前記培養物が、メチロコッカス・カプスラタス(Methylococcus capsulatus) (Bath) (NCIMB 11132株)、ラルストニア(Ralstonia)sp. DB3 (NCIMB 13287株)およびブレビバチラス・アグリ(Brevibacillus agri)DB5 (NCIMB 13289株)を含むことを特徴とする請求項1〜14のいずれかに記載の方法。
- 前記培養物が、アニュリニバチラス(Aneurinibacillus)sp. DB4 (NCIMB 13288株)も含むことを特徴とする請求項15に記載の方法。
- 前記細菌の培養物が炭化水素留分または天然ガスの発酵によって生産されることを特徴とする請求項1〜16のいずれかに記載の方法。
- さらに少なくとも1種以上の無菌的栄養素を含む、請求項1〜6および13〜17のいずれかに記載の無菌的栄養組成物を含む微生物増殖基質。
- 前記無菌的栄養素が、ブドウ糖、硝酸塩、無機塩類およびそれらを組み合わせたものから選ばれることを特徴とする請求項18に記載の基質。
- 硝酸塩および無機塩類が、カリウム、カルシウム、マグネシウム、ナトリウム、モリブデン、鉄、亜鉛、ホウ素、コバルト、マンガンおよびニッケルの化合物から選ばれることを特徴とする請求項19に記載の基質。
- ブドウ糖が、バイオマス由来成分に対して5:1〜1:5の乾燥質量に基づいた重量比で存在することを特徴とする請求項19または20に記載の基質。
- ブドウ糖が、バイオマス由来成分に対して2:1〜1:2の乾燥質量に基づいた重量比で存在することを特徴とする請求項21に記載の基質。
- 硝酸塩および無機塩類が、バイオマス由来成分に対して0.01:1〜0.2:1の重量比で存在することを特徴とする請求項19〜22のいずれかに記載の基質。
- 硝酸塩および無機塩類が、バイオマス由来成分に対して0.05:1〜0.1:1の重量比で存在することを特徴とする請求項23に記載の基質。
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