JP4309383B2 - ヒト化抗CD11a抗体 - Google Patents
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Description
他に指示されぬ限り、ここで用いた場合、用語「CD11a」は、いずれかの哺乳動物からの、しかし好ましくはヒトからのLFA‐1のαサブユニットに関する。該CD11aは、天然ソースの分子から分離され得るし、又は合成手段により生産され得る(例えば、組換えDNA技術を用い)。ヒトCD11aのためのアミノ酸配列ば、例えば、欧州特許第362 526B1中に記載される。 用語「I‐ドメイン」は、Champeら、J.Biol.Chem.270:1388-1394(1995)及び/又はQuら、Proc.Natl.Acad.Sci.92:10277-10281(1995)中に記載したこの分子のその領域に関する。ヒトCD11a I‐ドメイン(配列番号:7)とアカゲザルCD11a I‐ドメイン(配列番号:8)のアミノ酸配列は、図2の図面中に図示される。
〈A. 抗体調製〉
非ヒトCD11a抗体をヒト化するための方法が以下の実施例中に記載される。抗CD11a抗体をヒト化するために、非ヒト抗体出発材料が調製される。そのような抗体を精製するための典型的な方法が以下のセクション中に記載される。
抗体の調製用に使用されるべきCD11a抗原は、例えばCD11a又はCD11aフラグメントの細胞外ドメインの可溶型(例えばCD11a Iドメインフラグメントのような「MHM24エピトープ」を備えるCD11aフラグメント )とされ得る。代替的に、それの細胞表面でCD11aを発現する細胞が、抗体を生成するために使用され得る。そのような細胞は、CD11a且つ任意に、CD18を発現するために形質転換でき、又は他の天然発生細胞(例えば、ヒトリンパ芽球細胞、Hildrethら、Eur.J.Immunol.13:202-208(1983)参照)又はジャーカット細胞(後述の実施例参照)とされ得る。抗体を生成するために有用なCD11aの他の形態は、当業者にとって明らかであろう。
ポリクローナル抗体は、関連抗原とアジュバントとの複数の皮下(sc)又は腹腔内(ip)注射によって好ましくは生起される。例えばキーホールリムペットヘモシアニン、血清アルブミン、ウシチログロブリン、又は二機能又は誘導化剤、例えばマレイミドベンゾイルスルホスクシンイミドエステル(システイン残基を経て接合)、N‐ヒドロキシスクシンイミド(リジン残基を経て)、グルタルアルデヒド、無水コハク酸、SOCl2、又はR1N=C=NR、式中RとR1は異なるアルキル基、を用いるダイズトリプシンインヒビターのような、免疫化されるべき種において免疫原性であるタンパク質に関連抗原を接合するのに有用とされ得る。
モノクローナル抗体は、Kohlerら、Nature,256:495(1975)によって最初に記載されたハイブリドーマ法を用いて作製でき、又は組換えDNA法(米国特許第4 ,816,567号)によって作製され得る。
下記の実施例は、抗CD11a抗体のヒト化のための手順を記載する。ある実施態様において、ヒト化抗体のアミノ酸配列変異体を生産するため、特にこれらがヒト化抗体の結合親和性又は他の生物学的特性を改善する場合に望ましいものとされ得る。
(1)疎水性:norleucine、met、ala、val、leu、ile;
(2)中性親水性:cys、ser、thr;
(3)酸性:asp、glu;
(4)塩基:asn、gln、his、lys、arg;
(5)鎖配向に影響する残基:gly、pro;及び
(6)芳香族;trp、tyr、phe。
ヒト化抗CD11a抗体中に望ましいとされるようにここに同定した特徴を有する抗体がそのためにスクリーンされる。
ある実施態様において、ヒト化抗CD11a抗体は、抗体フラグメントである。各種の技術が、抗体フラグメントの生産のために発展している。伝統的には、これらのフラグメントは、完全な抗体の蛋白分解性消化を経て誘導される(例えば、Morimotoら、Jornal of Biochemical and Biophysical Methods 24:107‐11 7(1992)及びBrennanら、Science 229:81(1985)参照)。しかしながら、これらのフラグメントは、組換え宿主細胞によって現在は直接生産され得る。例えば、Fab'‐SHフラグメントは、大腸菌から直接回収することができ、且つF(ab ')2フラグメントを形成するため化学的に対化される(Carterら、Bio/Technology 10:163-167(1992))。別なアプローチに従い、F(ab')2フラグメントは、組換え宿主細胞培養から直接分離され得る。抗体フラグメントの生産のための他の方法は、熟練した専門家に明らかとなるであろう。
いずれかの実施態様において、少なくとも2つの異なるエピトープのための結合特異性を有する多特異性(例えば二特異性)ヒト化抗CD11a抗体を生成することが望ましいものとされ得る。二特異性抗体の実例は、CD11aタンパク質の2つの異なるエピトープに結合し得る。代替的に、抗CD11aアームは、T細胞レセプター分子(例えばCD2又はCD3)、又はCD11a発現細胞に細胞防御メカニズムを集中するためのFcγRI(CD64)、FcγRII(CD32) 、及びFcγRIII(CD16)のようなIgG(FcγR)のためのFcレセプター、のような白血球上の誘発化分子に結合するアームを結合させ得る。二特異的抗体は、CD11aを発現する細胞に対する細胞毒因子を局在化するためにも使用され得る。これらの抗体は、CD11a結合アームと、細胞毒因子(例えば、サポリン、抗インターフェロンα、ビンカアルカロイド、リチンA鎖、メトトレキサート又は放射性同位体ハプテン)を結合するアームとを所有する。二特異性抗体は、完全長抗体又は抗体フラグメント(例えば、F(ab')2二特異性抗体)。
ヒト化抗CD11a抗体の他の変形が意図される。例えば、癌の治療におけるような抗体の有効性の増大のために、エフェクター機能に関して本発明の抗体を修正することが希望され得る。例えばシステイン残基は、Fc領域中に導入されて良く、それによってこの領域において鎖間のジスルフィド結合形成を与える。かくして生成したホモダイマーの抗体は、内在化容量を改善して良く及び/又は相補介在殺細胞化及び抗体依存細胞毒性(ADCC)を増加し得る。Caronら、J. Exp Med.176:1191‐1195(1992)とShopes、B.J.Immunol.148:2918-2922(1992 )を参照。増大した抗腫瘍活性を持つホモダイマー抗体は、Wolffら、Callcer Re search 53:2560-2565(1993)中に記載したようなヘテロ二機能性架橋剤を用いても調製され得る。代替的に、抗体は、二つのFc領域を有するように加工することができ且つそれによって増加した相補溶解性及びADCC能力を有し得る。St evensonら、Anti-Cancer Drug Design 3:219-230(1989)を参照。
本発明はまた、ヒト化抗CD11a抗体をコードする単離核酸、該核酸を具備するベクター及び宿主細胞、並びに該抗体を産生するための組換え技術も提供する。
本発明の抗CD11a抗体は、組換え的に直接に産生するのみならず、好ましくはシグナル配列又は他のポリペプチドであって成熟した蛋白質又はポリペプチドのN末端に特異的開裂部位を有する非相同性ポリペプチドとの融合ポリペプチドとして産生してもよい。選択される非相同的シグナル配列は宿主細胞により認識されて処理(即ち、シグナルペプチダーゼにより)されるものである。未変性の抗CD11a抗体シグナル配列について認識も処理も行わない原核性の宿主細胞の場合、このシグナル配列は例えば以下の群よりなる原核細胞のシグナル配列から選択される:アルカリホスファターゼ、ぺニシリナーゼ、lpp、又は熱安定性エンテロトキシンIIリーダー。酵母の分泌の場合、未変性のシグナル配列は、例えば酵母インベルターゼリーダー、α因子リーダー(サッカロマイセス(Saccharomyces)及びクルイベロマイセス(Kluyveromyces)のα因子リーダーを含む)、酸ホスファターゼリーダー、C.アルビカンス(albicans)グルコアミラーゼリーダー、又はWO90/13646に記載のシグナルにより置換されていてもよい。哺乳動物細胞の発現においては、哺乳類シグナル配列はウイルス性分泌リーダー、例えば単純ヘルペスのgDシグナルと同様に入手可能である。
発現用及びクローニング用ベクターのいずれも、一又はそれ以上の選択した宿主内でベクターを複製させることを可能にする核酸配列を含んでいる。一般的に、クローニンダベクターにおいては、この配列は宿主の染色体DNAとは独立に複製することを可能にするものであり、複製起点又は自律性複製配列を含んでいる。このような配列は種々の細菌、酵母、及びウイルスに対して知られている。プラスミドpBR322由来の複製起点は、ほとんどのグラム陰性細菌に適し、2 μプラスミド起点は酵母に適し、そして種々のウイルス起点(SV40、ポリオーマ、アデノウイルス、VSV、又はBPV)は、哺乳動物細胞におけるクローニングベクターに有益である。一般的に、複製起点の構成要素は、哺乳類の発現べクター(SV40の起点を典型的に使用しても良いが、これは初期プロモーターを含むという理由のみのためである)には必要ではない。
発現及びクローニングベクタには、選択遺伝子、又は選択可能マーカーともいう、を含むことができる。典型的な選択遺伝子は、(a)抗生物質やその他の毒素、例えばアンピシリン、ネオマイシン、メトトレキセート、又はテトラサイクリンに対して抵抗性を与え、(b)栄養要求性欠損を補完し、又は(c)例えば桿菌に対するD−アラニンラセマーゼをコードする遺伝子のように、複合培地からは得られない重要な栄養素を供給する、蛋白質をコードする。
発現用及びクローニング用ベクターは通常、宿主生物により認識され、抗CD11a抗体核酸に機能的に連結されるプロモーターを含んでいる。原核性宿主で使用するのに適するプロモーターには、phoAプロモーター、β−ラクタマーゼ及びラクトースプロモーター系、アルカリホスファターゼ、トリプトファン(trp)プロモーター系、及びtacプロモーター等のようなハイブリッドプロモーターが含まれる。しかしながら、他の既知の細菌性プロモーターも適している。細菌系で使用されるプロモーターはまた、抗CD11a抗体をコードするDNAに機能的に連結されたシャイン−ダルガーノ(S.D.)配列を含んでいる。
本発明の抗CD11a抗体をコードするDNAについての、高等真核生物による転写はしばしば、ベクター中にエンハンサー配列を挿入することで増大する。哺乳類の既知の遺伝子(グロビン、エラスターゼ、アルブミン。α−フェトプロテイン、及びインスリン)より、多くのエンハンサー配列が知られている。しかしながら典型的には、真核細胞ウイルス由来のエンハンサーを使用する例としては、複製起点の後ろ側(100−270bp)にあるSV40エンハンサー、サイトメガロウイルス初期プロモーターのエンハンサー、複製起点の後ろ側にあるポリオーマエンハンサー、及びアデノウイルスエンハンサーが含まれる真核性プロモーターを活性化する宜進生配列エレメントについての、Yanivの文献(Nature,297:17−18(1982))も参照されたい。エンハンサーは、ベクター中の抗CD11a抗体をコードする配列の5’又は3’側に接合させても良いが、好ましくはプロモーターより5’側に位置させる。
真核宿主細胞(酵母、菌類、昆虫、植物、動物、ヒト、又は他の多細胞性生物由来の有核細胞)中で使用される発現ベクターにはまた、転写の終止及びmRNAの安定化に必要な配列が含まれるであろう。このような配列は通常は、真核性若しくはウイルス性のDNA、又はcDNAの非翻訳領域の5’、ときには3’ より得ることができる。これらの領域には、抗CD11a抗体をコードするmRNAの非翻訳領域におけるポリアデニル化断片として転写されるヌクレオチド配列が含まれる。有益な転写終止要素の一つは、ウシ成長ホルモンポリアデニレーション領域である。WO94/11026及びその中で開示されている発現ベクターを参照されたい。
本願においては、ベクター中のDNAを発現、又はクローニングするベクターに適する宿主としては、上記したような、原核細胞、酵母、又は高等な真核細胞がある。この目的に適した原核細胞には、グラム陰性又はグラム陽性の生物等のような真正細菌、例えばエシェリシア(Escherichia)(例:大腸菌(E.coli))、エンテロバクター(Enterobacter)、エルウィニア(Erwinia)、クレブシエラ(Klebsiella)、プロテウス(Proteus)、サルモネラ(Salmonella)(例:サルモネラ.ティフィムリウム(Salmonella typhimurium))、セラチア(S erratia)(例:セラチア マルセスカンス(Serratia marcescans))、及び赤痢菌(Shigella)のようなエンテロバクテリア科と同様に、桿菌(Bacilli)(例:B.サブチリス(subtilis)、B.リヒェニフォルミス(licheniformis )(例:1989年4月12日発行のDD266,710に開示されているB.リヒェニフォルミス(licheniformis)41P))、シュードモナス(Pseudomon as)(例:P.アエルギノサ(aeruginosa))及びストレプトミセス(Streptom yces)が含まれる。他の株、例えばE.coli B、E.coli X1776(ATCC31,537)、及びE.coliW3110(ATCC27,325)も適しているが、大腸菌クローニング宿主のうちの好ましいものの一つは、E.coli294(ATCC31,446)である。これらは限定するものではなく、例示するものである。
本発明の抗CD11a抗体を産生するのに使用した宿主細胞は、種々の培地中で培養することができる。商業的に入手可能な培地、例えばハムF10(シグマ)、最小必須培地(MEM)(シグマ)、RPMI−1640(シグマ)、及びダルベッコ改変イーグル培地((DMEM)、シグマ)等が当該宿主細胞を培養するのに適している。更に、Hamら(Meth.Enz.58:44(1979))、Barnesら(Anal.Biochem.102:255(1980))、米国特許番号の4,767704;4,657,866;4,927,762;4,560,655;若しくは5,122,469;WO90/03Z130;WO87/00195;又は米国特許番号のRe 30,985に記載される何れも、当該宿註細胞用の培地として使用することができる。これらの培地の何れも必要であればホルモン、及び/又は他の成長因子(例えばインスリン、トランスフェリン、又は土皮細胞成長因子)、塩(例えば塩化ナトリウム、カルシウム、マグネシウム、及びリン酸塩)、緩衝液(例えばHEPES)、ヌクレオチド(例えばアデノシン及びチミジン)、抗生物質(例えばゲンタマイシン(商標)薬剤)、微量元素(マイクロモルの範囲の最終濃度で通常は存在する無機化合物と定義される)、及びグルコース又は等価なエネルギー源で補充していてもよい。当業者に知られる他の必要な補充物のいかなるものも、適切な濃度で含めることができる。温度、pH等の培養条件は、発現用に選択した宿主細胞で以前に使用したものであり、当業者には明らかである。
組換え技術を使用すると、当該抗体は細胞内で、周辺質の空間で、又は直接培地中へ分泌されるようにして産生することが可能である。抗体を細胞内で産生するならば、第一段階として粒子状の細片、即ち宿主細胞又は溶解断片を、例えば遠心又は超遠心により除去する。Carterらは、大腸菌の周辺質空間に分泌される抗体の単離方法を記載している(Bio/Technology10:163−167(1992))。簡単にいうと、細胞ペーストを酢酸ナトリウム(pH3.5)、EDTA、及びフェニルメチルスホニルフルオリド(PMSF)存在下で約30分間解凍する。細胞細片は遠心で除去できる。抗体が培地中に分泌される場合には、そのような発現系の上清は、一般的にはまず、商業的に入手可能な蛋白質濃縮フィルター、例えばアミコン又はミリポアペリコン限外ろ過ユニットを使用して濃縮する。PMSF等のプロテアーゼ阻害剤を、以後のいかなる工程に含ませて蛋白分解を阻害することができ、また抗生物質を含めて外来性の汚染物質の増殖を防止しても良い。
所望の精製度の抗体と、適宜生理学的に許容されるキャリア、賦形剤、又は安定化剤を混合することにより、凍結乾燥した製剤、又は水溶液の形態で、保存用の治療用抗体製剤を調製する(Remington’s Pharmaceutical Sciences、16版、Osol,A.編集、(1980))。許容可能なキャリア、賦形剤、又は安定化剤は使用する投薬量及び濃度において摂取者に毒性がないものであり、またリン酸塩、クエン酸塩、若しくは他の有機酸などの緩衝液;アスコルビン酸及びメチオニンを含む酸化防止剤;保存料(例えばオクタデシルジメチルベンジル塩化アンモニウム;塩化ヘキサメトニウム;塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウム;フェノール、ブチル若しくはベンジルアルコール:メチル若しくはプロピルパラベン等のアルキルパラベン;カテコール;レゾルシノール(resorcinol);シクロヘキサノール;3−ペンタノール;及びm−クレゾール);低分子量(約10残基未満)のポリペプチド;血清アルブミン、ゲラチン、又は免疫グロブリン等の蛋白質;ポリビニルピロリドン等の親水性ポリマー;グリシン、グルタミン、アスパラギン、ヒスチジン、アルギニン、リジン等のアミノ酸;モノサッカライド、ジサッカライド、並びにグルコース、マンノース、又はデキストリンを含む他の炭水化物;EDTA等のキレート剤;ショ糖、マンニトール、トレハロース又はソルビトール等の糖;ナトリウムなどの塩形成対イオン;金属錯体(例:Zn−蛋白質錯体);及び/又はTWEEN(商標)、PLURONICS(商標)、又はポリエチレングリコール(PEG)等の非イオン性界面活性剤を含む。
本発明の抗体は、アフィニティー精製媒介物として使用することができる。この方法においては、セファデックスレジンやフィルター紙のような固相に当該抗体を当該技術分野でよく知られた方法を使用して固定化する。固定化された抗体をCD11a蛋白質(又はその断片)を含む、精製用試料と接触させ、その後に支持体を、試料中のCD11a蛋白質以外の物質を実質的に全て除去する適切な溶媒で洗浄するが、CD11aは固定化された抗体に結合している。最後に支持体を、CD11aを抗体から放出させる他の適切な溶媒、例えばグリシン緩衝液、pH5.0で洗浄する。
(a)35S、14C、125I、3H、及び131Iのような放射性同位体。例えばCurrent Protocol in Immunology(第1巻、2巻、Coligenら編集、Wiley−Interscience、New York、New York、Pubs.(1991))に記載される技術を使って、抗体を放射性同位体で標識することができ、また放射性はシンチレーションカウンターを使用して測定できる。
(b)希土類キレート(例えばユーロピウムキレート)のような蛍光標識又はフルオレセイン及びその誘導体、ローダミン及びその誘導体、ダンシル、リサミン、フィコエリトリン、及びテキサスレッドが入手可能である。蛍光性の標識は、例えば上記のCurrent Protocol in Immuncologyに開示されている技術を利用して抗体に共役させることができる。蛍光は蛍光定量機を使用して定量することができる。
(c)種々の酵素−基質標識が入手可能であり、米国特許番号4,275,149は、これらのいくつかについてのレビューを提供している。この酵素は一般に、種々の技術で測定することができる色素生産性基質の化学的変化を触媒する。例えば、この酵素は基質中の色の変化を触媒してもよいが、これは分光学的に測定することが可能である。或いは、この酵素は基質の蛍光又は化学発光を変化させてもよい。蛍光の変化を定量する技術は上記に記載してある。化学発光基質は、化学反応により電気的に励起し、次いで(例えば化学発光定量機で)測定可能な光を発するか、又は蛍光受容体へエネルギーを与える。酵素標識の例には、ルシフェラーゼ(例えば、ホタルルシフェラーゼ、細菌性ルシフェラーゼ;米国特許番号4,737,456)、ルシフェリン、2,3−ジヒドロフタラジンジオン、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ、ウレアーゼ、ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRPO)のようなペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、グルコアミラーゼ、リゾチーム、サッカリドオキシダーゼ(例えばグルコースオキシダーゼ、ガラクトースオキシダーゼ、及びグルコース−6−リン酸デヒドロゲナーゼ)、ヘテロサイクリックオキシダーゼ(例えばウリカーゼ及びキサンチンオキシダーゼ)、ラクトペルオキシダーゼ、ミクロペルオキシダーゼ等が含まれる。酵素を抗体に共役する技術は、O’Sullivanらの酵素免疫アッセイで使用するための酵素−抗体共役物の調製方法に記載されている(Methods in Enzym.編集J.Langone&H.Van Vunakis;Academic press、New York、 73 :147−1616(1981))。
(i)ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRPO)と基質としての過酸化水素;ここで過酸化水素は、色素前駆体(例えばオルトフェニレンジアミン(OPD)、又は3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジンヒドロクロリド(TMB))を酸化する;
(ii)アルカリホスファターゼ(AP)と色素産生性基質としてのパラーニトロフェニルホスフェート;及び
(iii):β−D−ガラクトシダーゼ(β−D−Gal)と色素生産性基質(例えばp−ニトロフェニル−β−D−ガラクトシダーゼ)又は蛍光生産性基質の4−メチルウンベルリフェリル−β−D−ガラクトシダーゼ(4-methylumbell iferyl-β−D−galactosidase)。
便宜上の問題として、本発明の抗体はキット、即ち予め決められた量の試薬を、診断アッセイの実施用の指示書とともに組み合わせてパッケージしたものとして提供することが可能である。抗体が酵素で標識されている場合には、キットには当該酵素により要求される基質及び補助因子が含まれるであろう(例えば検出可能な発色団又は蛍光団を提供する基質前駆体)。更に、安定化剤や、緩衝液(例:ブロック緩衝液又は溶解緩衝液)等の他の添加物を含めることが可能である。種々の試薬の相対量を大きく変化させて、アッセイの感受性を実質的に最適化する試薬についての溶液中の濃度を規定する。特に試薬は、溶解すると適切な濃度の試薬溶液を提供する賦形剤を含み、通常は凍結乾燥された乾燥粉末とすることかできる。
本発明の抗CD11a抗体は、、本願に記載する種々のLFA−1媒介性疾患を治療するのに使用することができるように考慮されている。
本発明の別の態様においては、上記した疾患の治療に有益である物質を含んだ製造物が提供される。この製造物は、容器及びラベルを具備している。適切な容器には例えば、ビン、バイアル、シリンジ、及び試験管が含まれる。この容器は、ガラスやプラスチックなどの種々の物質から形成されていてもよい。この容器は、状態を処置するのに効果的な組成物を保持し、また無菌のアクセスポートを有していても良い(例えば容器は、皮下組織注射用の針で突き刺すことが可能なストッパーを有する静脈用溶液バッグやバイアルであってもよい)。組成物中の有効成分は、抗CD11a抗体である。容器の上、又はそれに取付たラベルは、当該組成物が選択する状態の治療に用いられることを表示する。製造物は更に、第二の容器であって薬学的に許容される緩衝液、例えばリン酸塩緩衝生理食塩水、リンゲル(Ringer’s)溶液、及びデキストロース溶液等を含んだものを具備していても良い。更には、商業的若しくは使用者的観点から望ましい他の物質を含んでいても良く、これには他の、緩衝液、希釈液、フィルター、針、シリンジ、及び使用にあたっての指示書を含んだパッケージ挿入物などが含まれる。
本実施例は、マウス抗ヒトCD11aモノクローナル抗体であるMHM24(Hildrethら、Eur.J.Immunol.13:202−208(1983))のヒト化、及びインビトロでの生物学的有効性を記載する。マウスのMHM24についての以前の研究においては、他の抗CD11a抗体のように、T細胞の機能を阻害することを示している(Hildrethら、J.Immunol.134:3272−3280(1985);Doughertyら、Eur.J.Immunol.17:943−947(1987))。マウスの及びヒト化したMAbsの両方は、ヒトT細胞がヒトケラチノサイトに接着するのを効果的に防止し、またMHCクラスII抗原の応答性のモデルである、混合リンパ球応答(MLR)における非自己性リンパ球へ応答したT細胞の増殖も防止する(McCabeら、Cellular Immunol.150:364−375(1993))。しかしながら、マウスの(Reimannら、cytometry、17:102−108(1994))、及びヒト化したMAbsはヒト以外の霊長類のCD11aとは、チンパンジーのCD11aを除いて交差反応しなかった。アカゲザルにおける前臨床的研究に役立つヒト化MAbを得るため、可変重鎖領域における相補性決定領域の一つである、CDR−H2における4つの残基を代えることによりアカゲザルのCD11aに結合するように、ヒト化したMAbを再操作した。アカゲザルのCD11aI−領域のクローニング及び分子モデリングは、ヒトCD11aI−領域中のリジン残基の、アカゲザルCD11aI−領域中のグルタミン残基への変化が、マウスの及びヒト化したMAbsがアカゲザルCD11aへ結合しない理由であることを示唆した。
〈(a)ヒト化したF(ab’)sの構築〉
マウスの抗−ヒトCD11aMAb、MHM24(Hildrethら、Eur.J.Immunol.13:202−208(1983);Hildrethら、J.Immunol.134:3272−3280(1985))をクローン化して配列決定した。突然変異誘発に有益であり、そして同様に大腸菌内でF(ab)を発現させるためのプラスミドを得るためにファージミドpEMX1を構築した。pB0475(Cunninghamら、Science 243:1330−1336(1989))の誘導体であるファージミドpb−0720に基づき、pEMX1は、ヒト化したκ−サブグループI軽鎖及びヒト化したサブグループIII重鎖(VH−CH1)をコードするDNA断片と、アルカリホスファターゼプロモーター及びシャイン−ダルガーノ配列を含んでいるが、これら両者は以前に記載された別のpUC119に基づくプラスミドであるpAK2(Carterら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89:4285(1992))に由来するものである。ユニークなSpel制限部位がまた、F(ab)の軽鎖及び重鎖をコードするDNAの間に挿入されている。
キメラ(chIgG1)のヒトIgG1変異体、及びヒト化した(HuIgG1)MHM24について、適切なマウス又はヒト化した可変軽鎖及び可変重鎖(F(ab)−8、表II)領域をそれぞれ、pRKベクターとして以前記載されているもの(Gormanら、DNA Protein Eng.Tech.2:3(1990))へ別々にサブクローン化した。HuIgG1軽鎖及び重鎖のプラスミドについて部位特異的突然変異導入(Kunkel、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 82:488(1985))を行って、アラニン−スキャン変異体を構築した。それぞれの変異体のDNA配列はジデオキシヌクレオチド配列決定法により確認した。
RT−PCR及びヒトCD11aDNA配列由来のプライマーを使用してアカゲザルのI領域のDNA配列を得た。簡単にいうと、Fast Track mRNA精製キット(Invtorgen)を使用して、mRNAを約107のアカゲザルリンパ球より単離した。MuLV逆転写酵素を利用して、10μgのmRNAを逆転写した。次いで、第一鎖cDNAを以下のプライマーを使用して40サイクルのPCRで増幅させた:
5’−CACTTTGGATACCGCGTCCTGCAGGT−3’(前向き)(配列認識番号:21)、及び
5−CATCCTGCAGGTCTGCCTTCAGGTCA−3’(逆向き)(配列認識番号:22)。
ヒト化した及び対照の抗体について、PBS−0.1%BSA−10mMアジ化ナトリウムで連続的に希釈したもので、106のジャーカツトT−細胞の一定分量を、4℃で45分間インキュベーションした。細胞を洗浄し、次いでフルオレセイン共役ヤギ抗−ヒトF(ab’)2(Organon Teknika、Westchester、PA)中で、4℃で45分間インキュベーションした。細胞を洗浄してFACScan(Becton Dickinson、Mountain View、CA)で分析した。8×103の細胞をリストモードで得て、前光スキャッター 対 側光スキャッターでゲートして、これによって死滅細胞及び細片を除外した。
Iodo−Gen(Pierce,Rockford、IL)を、製造者の指示に従って使用して、放射性標識した抗体を調製した。50μgの抗体及び1mCiの125I(DuPont、Wilmington、DE)をそれぞれのチューブに加えて、25℃で15分間インキュベーションした。放射性標識した蛋白質を、0.2%ゲラチン含有のハンクの均衡塩溶液(HBSS、Life Technologies、Grand Island、NY)で平衡化したPD−10カラム(ファルマシア、Uppsala、Sweden)を使用して、残りのフリー遊離125Iから精製した。
正常なヒト上皮ケラチノサイト(Clonetics、San Diego、CA)を、トリプシン−EDTAで培養フラスコより除去し、遠心し、リンパ球アッセイ培地(RPMI1640(GIBCO)−10%ウシ胎児血清−1%ペニシリン/ストレプトマイシン)中に、5×105生細胞/mlの濃度で再懸濁した。0.1ml/ウェルの一定分量を次いで、底が平面の96穴プレート中で一晩培養した;インターフェロン−ガンマ(Genentech、South San Francisco、CA)を100単位/ウェルで加えて、適当なウェルを刺激した。
Maxisorp(Nunc)96穴のプレートを0.1ml/ウェルの1μg/mlヤギ抗−ヒトIgGFc(Caltag)で、37℃で1時間コートした。プレートをPBSで3回洗浄した後、プレートを1%BSA−PBSで、25℃で1時間ブロックした。次いでプレートをPBSで3回洗浄し、0.1ml/ウェルの50ng/ml組換えヒトICAM−IgGを加えて、一晩インキュベーションした。
ヒト及びアカゲザルのMLRに対し、リンパ球分離培地(Organon Teknika、Durham、NC)を使用して、二つの関連していない提供者に由来する末梢血リンパ球を、ヘパリン処理した全血より単離した。リンパ球は、RPMI1640(GIBCO)−10%ヒトAB血清−1%グルタミン−1%ペニシリン/ストレプトマイシン−1%非必須アミノ酸−1%ピルビン酸塩−5×10-5M 2−β−メルカプトエタノール−50μg/mlゲンタマイシン−5μg/mlポリミキシンB中に3×106細胞/mlの濃度で再葱濁した。セシウム照射装置中で3000ラッドの放射を行って、刺激細胞を非反応性にした。ウェル当たり1.5×105細胞の濃度の応答細胞を、等数の刺激細胞とともに、96ウェルの平底プレート中で一緒に培養した。2倍づつ連続して希釈したそれぞれの抗体を、培養物に加えて全量を200μl/ウェルにした。培養物を、5%CO2中で37℃で5日間培養した後、1μCi/ウェルの[3H]チミジンとともに16時間、パルスした。[3H]チミジンの取り込みを、Beckmanシンチレーションカウンターで測定した。アッセイは3つ一組にして行った。ヒト化抗−ヒトp185HERMAb(Carterら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89:4285(1992))を、HuIgG1及びRhIgG1に対するアイソタイプ対照として使用した。マウス抗−ハムスターtPA MAb(Genentech)を、MHM23 MAbに対するアイソタイプ対照(マウスIgG1)として使用した。MAb25.3は、Immunotech社(Westbrook、ME)より購入した。
VL及び、VH領域の配列(図1A及びB)を使用して、マウスのMHM24VL−VH領域のコンピュータグラフィックスモデルを構築した。このモデルを使って、どのフレームワーク残基をヒト化抗体へ組み込むべきかを決定した。F(ab)−8のモデルもまた構築して、マウスのフレームワーク残基の正しい選択を確認した。モデルの構築は、以前記載されたようにして(Carterら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA89:4285(1992);Eigenbrotら、J.Mol.Biol.229:969(1993))行った。
〈(a)ヒト化〉
ヒト重鎖サブグループIII及び軽鎖サブグループκIのコンセンサス配列をヒト化のフレームワークとして使用した(Kabatら、Sequencesof Proteins of Immunological Interes.5th Ed.Public Health Service、National Institute of Health、Bethesda,MD.(1991))(図1A及びB)。このフレームワークをうまく使用してマウスの他の抗体のヒト化に成功した(Carterら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89:4285(1992);Pretaら、J.Immunol.151:2623−2632(1993);Eigenbrotら、Proteins 18:49−62(1994))。ヒト化変異体の全てをまず作製して大腸菌内で発現したF(ab)sについての結合性によりスクリーニングした。典型的な収量としては、500mlの震盪フラスコ当たり、0.2−0.5mgのF(ab)であった。マススペクトロスコピーによって、それぞれのF(ab)の質量は5質量単位内にあることが確認された。
どのCDR残基がヒトCD11aへの結合に関るのかを決めるため、HuIgG1のCDR残基についてのアラニン−スキャン(Cunninghamら、Science、244:1081(1989))を行った。それぞれの変異体について、ジャーカット細胞上のCD11aへの結合を試験した。軽鎖においては、CDR−L3のみが結合に寄与した。HisL91は、大きな効果があったが(表IV)、この側鎖は一部が埋まっているはずであるから、おそらくはコンホメーション的なものであろう。残基AsnL92及びTyrL94はより適度の効果があり、それぞれ3倍及び12倍の減少があった。しかしながら、これらの二つの残基を(GluL93A1aと同様に)アラニンに同時に変化させると、結合については付加的な影響を与えることがないことに注目されたい(変異体L3、表IV)。
マウスMHM24及びHuIgG1は共に、アカゲザルCD11aへの結合について約1000倍の減少を示した:HuIgG1は、アカゲザルCD11aに対して45.6±40.4nM(N=16)であるEC50を有し、これに対し、ヒトCD11aに対してのEC50は0.042±0.072nMである。MHM24の生物学、毒性及び有効性において、霊長類モデルは重要であるため、HuIgG1のアカゲザルCD11aに対する結合を改善することは、有益であると思われる。初期においては、アカゲザルにとっては重要であるがヒトとってはそうではないものが変化されるようにして、MAbの超可変領域の残基でヒトCD11a及びアカゲザルのCD11aへの結合に重要であるものが決定された。従って、アラニン−スキャン変異体もまた、末梢血リンパ球上のアカゲザルのCD11aに対してアッセイにかけられた。最も重要な発見は、多重アラニン−変異体株の一つであるH2変異体が、HuIgG1よりも18倍よくアカゲザルCD11aに結合したことである(表IV)。しかしながら、H2変異体に含まれる3つの残基における個々の変異は、結合について最小の改善しか示さなかった:HisH52Ala、0.7倍改善、SerH53Ala、0.7倍改善、及びSerH55Ala、 1.3倍悪化(表IV)。これら3つの残基における一連の二重変異は、HisH52Ala−SerH53A1aの組合せが最も良いことを示したが、これによってHuIgG1に比較して77倍の改善が提供される(変異体H2A1,H2A2,及びH2A3を参照、表IV)。更に、HuIgG1におけるAspH54は、ヒトCD11aについて最も重要な結合性残基であるが、AspH54Ala及びGluH56Ala変異体はまた、HuIgGよりも3倍の改善を示した(表IV)。
マウスMHM24、キメラIgG1及びHuIgG1を、ジャーカット細胞(LFA−1を発現するヒトT−細胞)の、ICAM−1を発現する正常なヒト上皮ケラチノサイトへの付着を阻止する能力について比較した。3つの抗体全ては、同様のIC50で同様に振る舞った(図3)(表VII)。
MLRにおいては、HuIgG1はマウスMHM24よりも2倍弱いIC50値を示した(表VIII、図5)。
Claims (4)
- 配列番号:5を有する重鎖可変領域及び配列番号:2を有する軽鎖可変領域を含むヒト化抗−CD11a抗体からなる、患者におけるLFA−1介在性疾患の治療剤であって、
前記疾患が、喘息、リウマチ関節炎、移植における移植片対宿主拒絶、多発性硬化症、乾癬、全身性ループスエリテマトーデス、皮膚炎、クローン病及び潰瘍性大腸炎から選択される治療剤。 - 配列番号:5を有する重鎖可変領域及び配列番号:2を有する軽鎖可変領域を含むヒト化抗−CD11a抗体からなる、T細胞依存免疫機能の阻害剤。
- 患者におけるLFA−1介在性疾患を治療するための医薬の製造における、配列番号:5を有する重鎖可変領域及び配列番号:2を有する軽鎖可変領域を含むヒト化抗−CD11a抗体の使用であって、
前記疾患が、喘息、リウマチ関節炎、移植における移植片対宿主拒絶、多発性硬化症、乾癬、全身性ループスエリテマトーデス、皮膚炎、クローン病及び潰瘍性大腸炎から選択される使用。 - T細胞依存免疫機能を阻害するための医薬の製造における、配列番号:5を有する重鎖可変領域及び配列番号:2を有する軽鎖可変領域を含むヒト化抗−CD11a抗体の使用。
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