JP4091026B2 - 複数種オリゴ糖の糖接合体型の細菌性髄膜炎ワクチン - Google Patents

Description

本発明は、ワクチン分野に関するもので、特に多数オリゴ糖が同じキャリア蛋白質に共有結合した複合糖質の調製に使用することができる新規の糖質抱合技術の開発に関するものである。

Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ菌ｂ型（Ｈｉｂ）、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ菌およびＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅは、５歳未満の子供における細菌性髄膜炎の主要な病因である。これらの細菌は全て、多糖類の莢膜によって食菌作用から守られている。多くの場合、生物の莢膜多糖類（ＣＰ）に対して誘導された抗体が、保護作用をする。Ｈｉｂ ＣＰ、ＰＲＰを、ジフテリアトキソイド（ＰＲＰ−Ｄ）、破傷風トキソイド（ＰＲＰ−Ｔ）、ＣＲＭ１９７（ＨｂＯＣ）およびＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓの外膜蛋白質（ＰＲＰ−ＯＭＰ）などの異なるキャリアタンパク質に結合させた効果的なＨｉｂ抱合ワクチンが開発された。現在４種のＨｉｂ抱合ワクチンが市販されている。Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓおよびＳ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅに対する新たな複合糖質ワクチンが、米国医師会によって強く勧められている。

幼児、高齢者および免疫欠陥患者における全身性の非侵襲肺炎球菌疾患を予防する多価肺炎球菌ワクチンの開発の重要性が、この１０年間で高まっている。肺炎球菌疾患、疫学、または多糖類ワクチンのより詳細な概説としては、数多くの概説文献が有用である（参考文献１、本発明に関係する技術状況をより完全に記述するために種々の参考文献は括弧内に引用する。それぞれに引用した文献の完全な情報は、明細書の最後でクレームの直前にある。これらの参考文献の開示は、本開示に参考として援用している。）
Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅは莢膜を有しており、ヒト上気道の正常フローラに存在するグラム陰性細菌である。これは肺炎、髄膜炎、菌血症および非侵襲性の細菌性中耳炎の主因となることが多い。発病率は幼児および高齢者において最も高い。米国だけでも、全身性肺炎球菌感染症の全体発病率は、高齢者層では５０／１０００００であり、２歳未満の子供では１６０／１０００００である（参考文献、２、３）。死亡例は特に高齢者層で４００００人／年もの多数に及ぶことがある。Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅの多数の血清型は、従来の抗生物質治療に対して耐性になっている。子供の中耳炎の発病率は、５歳まででは９０％近くあり、発病率のピークは６から１５ヶ月である。中耳炎は毎年１２０万例以上が発病している。近年の肺炎球菌疾患の疫学的研究（参考文献４）によって、既知の血清型８５種のうち５種の血清型（６Ｂ、１４、１９Ｆ、２３Ｆおよび１８Ｃ）が幼児の肺炎球菌疾患の７０から８０％を占め、米国では、９Ｖ型および４型が６番目および７番目に位置することが示された。欧州および開発途上国では、１型および５型の方が４型および９Ｖ型よりもよく見られる。したがって、米国向けの肺炎球菌抱合ワクチンは、７５から８５％のカバー率を実現するためには、少なくとも７種の血清型（４、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆ、および２３Ｆ）を含むべきである。欧州およびその他の地域向けの抱合ワクチン製剤には、１、５、６Ｂ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆの血清型を含むべきである。次に広域スペクトルの多価肺炎球菌抱合ワクチンは、９種の血清型、１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆ、および２３Ｆ由来のＣＰを含むべきである。

Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓは、血清学的にＡ、Ｂ、Ｃ、２９ｅ、Ｗ１３５、Ｘ、ＹおよびＺの群に分類されたグラム陰性細菌である。中国ではさらに（Ｈ、ＩおよびＫの）群が単離され、Ｌ群がカナダで単離された。グループ分けシステムは、生物の莢膜多糖類に基づいている。肺炎球菌ワクチンとは対照的に、髄膜炎菌多糖類ワクチンの組成物は、必要な多糖類が少数であるという事実から非常に簡単であった。実際に、髄膜炎菌性髄膜炎の例の約９０％はＡ、Ｂ、およびＣ群が原因である。Ａ群およびＣ群の予防は、２価の多糖類ワクチンで予防接種することによって実現することができる。この市販のワクチンは、この１０年間成人に使用され、世界の多くの地域における髄膜炎の大流行の予防に成果を挙げてきた。しかし、髄膜炎菌性髄膜炎例のかなりの部分はＡおよびＣ以外の血清型によるので、このワクチンを改善する必要性がある。Ｂ群のＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓは特に疫学的に重要であるが、Ｙ群およびＷ１３５群も重要である。Ａ、Ｃ、Ｗ１３５、およびＹ群の多糖類を含む４価のワクチンが現行の髄膜炎菌性髄膜炎ワクチンであるが、ほとんどの莢膜多糖類に対する免疫応答が成熟するのは２歳前後なので、若年の幼児ではあまり効果的ではない。

Ｂ群の髄膜炎菌多糖類は、ヒトでは免疫原性が不十分である。この現象を説明するために２つの主な理由が考えられる。１つには、α−（２→８）−結合シアル酸ホモポリマーがヒト組織ではノイラミニダーゼによって素早く単量体に分解するからである。もう一つには、Ｂ群の莢膜多糖類はＮ−アセチルノイラミン酸（α２→８ＮｅｕＮＡｃ）のポリマーであり、このα２→８ＮｅｕＮＡｃ部分は、成人では数種の糖蛋白質およびガングリオシドで２量体および単量体として、ラット胎児および新生児の組織では少なくとも８個の繰り返しユニットのポリマーとして見られる。したがって、この構造はヒト免疫系では「自己」抗原として認識される。結果として、抗体の産生は抑制されるか、またはこの分子的類似のため、天然のＢ群ＣＰをベースとしたワクチンはα２→８ＮｅｕＮＡｃ部分に対する自己抗体を誘導する可能性があり、そのため自己免疫疾患の原因となる。

Ｂ群の髄膜炎菌ＣＰはヒトにおいて免疫原性がないので、その免疫原性を増大させるための試みが追求されてきた。１つの試みは、Ｂ群および外側の膜タンパク質（ＯＭＰ）の非共有結合的複合体の使用である。このような複合体は、ＯＭＰの疎水性領域とＣＰの還元末端のジアシルグリセロール基との間の疎水性相互作用によって形成される。ヒトボランティアに、この複合体を０週目および５週目に２種の用量で投与した。ほとんどの個体では、Ｂ群のＣＰに対する抗体の増加という応答があった。しかし、第２の用量では、少しまたは全く抗体力価の増加は得られず、その後１４週間経る間に減少した。Ｂ群の多糖類に特異的な抗体は、ＩｇＭ型に限定され、高分子量の多糖類のみに存在する決定因子に反応した。

Ｂ群のＣＰの免疫原性を高めるために、Ｊｅｎｎｉｎｇｓ（参考文献５）は、過ヨウ素酸酸化したＣＰを使用して、ＣＰを破傷風トキソイド（ＴＴ）に共有結合させたＢ群髄膜炎菌−破傷風トキソイド抱合体（ＧＢＭＰ−ＴＴ）を調製した。しかし、この方法ではＣＰの免疫原性の顕著な増大は得られなかった。動物に誘導される抗体応答は、主にＣＰとこの蛋白質との間（ＧＢＭＰ−ＴＴ）の結合部分に対して反応することがわかった。Ｂ群のＣＰの免疫原性をさらに高めるためには、化学修飾が必要である。Ｊｅｎｎｉｎｇｓ（参考文献６）は、Ｂ群のＣＰのＮ−アセチル基が高温で強塩基の作用によって選択的に除去されることを報告した。その後このアセチル基を無水プロピオン酸処理によってＮ−プロピオニル基で置き換え、Ｎ−プロピオニルノイラミン酸（α−（２→８）ＮｅｕＰｒｏ）ポリマーを生成する。このＮ−プロピオニル化ＣＰを最初に過ヨウ素酸ナトリウムで過ヨウ素酸酸化し、次いでシアノボロヒドリドナトリウムの存在下でＴＴに結合して、化学的に修飾したＧＢＭＰ−ＴＴ抱合体を得た。フロインド完全アジュバント（ＦＣＡ）に調合したこの抱合体でマウスを免疫して、天然のＢ群ＣＰに対して交差反応するＩｇＧ抗体を高濃度に産生させた。マウス抗血清は、Ｂ群全株に対する殺菌性が認められた。しかし、さらに研究を行ったところ、異なる特異性を有する２つの抗体群の存在が明らかになった。１つの群は、精製したＢ群のＣＰに反応したが、もう１つの群は反応しなかった。天然のＢ群ＣＰと反応しない抗体は、殺菌活性を有することが明らかである。これらの抗体は、精製したＣＰには存在しない細胞関連ＣＰによって発現するエピトープを認識することが可能である。ワクチンを含む免疫原性組成物として、キャリア蛋白質に抱合されたＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓＢ群ＣＰの莢膜多糖類を含む別の抱合体、および診断薬としておよび診断薬の作成のためのそれらの使用は、Ｋａｎｄｉｌ等（本明細書の譲受人に譲渡され、その開示が本明細書に参考として援用された米国特許第５７８０６０６号、欧州特許第０７４７０６３号）に記載されている。特に、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓの莢膜多糖類は、修飾して、キャリア分子に接着して使用することができる複数のシアル酸誘導体を含む。

Ｈｉｂ ＣＰ−蛋白質抱合ワクチンを許可され使用している国々において、Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ ｂ型疾患の劇的な減少が観察されたことによって、ＣＰ−蛋白質抱合体によって全身性細菌性疾患を予防することができることが示唆された。髄膜炎菌および肺炎球菌のＣＰ−蛋白質抱合体にも効果を期待することは道理にかなっている。中耳炎などの非侵襲性疾患を抱合体ワクチンによる全身性免疫で予防できる可能性については、研究する必要がある。高力価の血清型特異的抗体が、鼻咽頭定着および／または中耳炎のいずれかを十分予防するかどうかは、まだ未解決の問題である。中耳炎ワクチンの開発には、まだ若いうちに高力価の抗ＣＰ抗体を存在させるために、複数の肺炎球菌ＣＰ−蛋白質抱合体が必要である。

全身性の非侵襲性疾患の予防のための多価肺炎球菌および髄膜炎菌ＣＰ−蛋白質抱合体ワクチンの開発には、炭水化物化学者、免疫学者、臨床医およびワクチン製造者にとって多くの課題が待ち受けている。炭水化物の量、キャリアの選択、ワクチン送達の方法、および免疫増強薬およびアジュバントの使用は、宿主の免疫応答に影響を及ぼすことが知られている。免疫原性複合多糖類は、条件を慎重に制御すれば、多機能化ＣＰおよび蛋白質の間で形成することができる。現在では抱合体のほとんどは、活性化したＣＰまたはオリゴ糖のいずれかを還元末端を介して、リンカー基によってまたはなしで、蛋白質またはペプチドに結合することによって合成している。

一般的な複合多糖生成法は、過ヨウ素酸処理によって莢膜多糖類または多糖類のフラグメントをランダムに活性化することを含む。この反応によって、炭水化物の隣接する水酸基の任意の酸化的切断が引き起こされ、反応性に富んだアルデヒド基が形成する。蛋白質キャリアへの結合は、リシル基への直接アミノ化による。アミノカプロン酸などのスペーサ基は、還元的アミノ化によってアルデヒド基と反応し、その後水溶性カルボジイミド縮合によって蛋白質リシル基に結合することができる（参考文献７）。Ｐａｒａｄｉｓｏによって報告されたオリゴ糖−ペプチド抱合体（参考文献８）は、天然蛋白質の代わりにＣＲＭ₁₉₇のＴ細胞エピトープが存在しているペプチドを使用する以外は同様に調製された。Ｃｏｎｎａｕｇｈｔ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．に譲渡されたＧｏｒｄｏｎによる米国特許第４４９６５３８号で開示された他の抱合法、およびＳｃｈｎｅｅｒｓｏｎ等による抱合手法（参考文献９）は、直接ＣＰをアジピン酸ジヒドラジド（ＡＤＨ）で誘導体とし、次いでＣＮＢｒ活性化して、次にカルボジイミド縮合によって誘導体にしたＣＰを直接キャリア蛋白質（ＤまたはＴ）に抱合することを含んでいる。ＭａｒｂｕｒｇおよびＴｏｌｍａｎ（欧州特許公開公報第５３４７６４Ａ１）は、第１のＣＰを蛋白質キャリアに結合して、次いで２機能性交差リンカーによって第２のＣＰを第１のＣＰに結合することによって、蛋白質−２量体ＣＰ抱合体免疫原を生成することができることを示した。

疾患に対する免疫を誘導する方法は、常に改善されている。研究の焦点は、免疫原性の改善されたワクチンを作成し、アジュバントおよび送達系の開発を促進することができる抱合体とＢ細胞およびＴ細胞との相互反応の機構を発見することを期待して、炭水化物蛋白質抱合体の構造−機能の関係に絞られてきた。Ｃｈｏｎｇ等（米国特許第５６７９３５２号、本明細書の譲受人に譲渡され、その開示は本明細書に参考として援用した）は、数種の因子が炭水化物の免疫原性に影響を及ぼすことを示した。免疫原性糖蛋白質抱合体の合成に最小限必要なのは、ＣＰのＢ細胞エピトープおよびキャリアのＴ細胞エピトープが共有結合後に機能しなければならないことである。抗ＣＰ抗体応答の強さは、Ｔ細胞エピトープに対するＣＰの空間配置に著しく依存する。抗ＣＰ抗体応答は、複数抗原型ペプチド（ＭＡＰ）をキャリアとして使用すると増強される。

１回投与多価ワクチンは、ＷＨＯワクチン開発プログラムで第１の優先事項として挙げられている。細菌性髄膜炎に対する１回投与多価ＣＰ−蛋白質抱合ワクチン（１５種の異なるＣＰ−蛋白質抱合体：１種のＨｉｂ抱合体、５種のＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ抱合体および９種のＳ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ抱合体）には、ジフテリアおよび破傷風トキソイドなどの典型的なキャリアタンパク質に対する過剰免疫の起こる潜在的危険性が存在する。Ｈｉｂ抱合ワクチンに対するエピトープ非特異的抗体応答は、キャリアタンパク質で予備免疫することによって抑制されることが報告されている（参考文献１１）。したがって、このワクチン調合の問題を解決するためには、適切な方法が必要である。これらの問題の中には、Ｈｉｂ、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓおよびＳ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ由来の保存された、交差反応の起こらない、非莢膜抗原を取り入れることによって回避することができるものもある。数種の外膜蛋白質が、ワクチンの候補として考えられてきたが、いずれも治験で試験されたことはない。したがって複数のＣＰ−キャリア抱合体送達系は、新規の一般的手法であり、複合糖質ワクチン開発に重要となろう。したがって、本発明は、同じキャリアタンパク質またはキャリアポリペプチドに共有結合した異なる細菌由来の複数のオリゴ糖を含むワクチンを調製するために使用することのできる新規の複合糖質作成技術を目指している。

本発明の一態様に従って、少なくとも１つの機能性Ｔ細胞エピトープを含むキャリア分子、およびそれぞれがキャリア分子に結合し、それぞれが少なくとも１つの機能性Ｂ細胞エピトープを含む複数の異なる炭水化物フラグメントを含む多価免疫原性分子が提供され、前記キャリア分子は前記炭水化物フラグメントの免疫原性を増強する。

本発明の一形態では、この炭水化物フラグメントは細菌莢膜オリゴ糖フラグメントである。このような莢膜多糖類フラグメントは、Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ血清型１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆ由来の少なくとも２種の莢膜多糖類を含むＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅのオリゴ糖フラグメントであることが可能である。キャリア分子は、Ｔ細胞エピトープを含むＳ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅの蛋白質または蛋白質フラグメントであることが可能である。

莢膜多糖類フラグメントは、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓのＡ、Ｂ、Ｃ、Ｗ−１３５およびＹ群の少なくとも２種の莢膜多糖類由来のフラグメントを含む、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓのオリゴ糖フラグメントであることが可能である。キャリア分子は、Ｔ細胞エピトープを含むＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓの蛋白質または蛋白質フラグメントであることが可能である。

本発明のこの態様において使用した莢膜多糖類は、約１から約５ｋＤａの大きさのオリゴ糖フラグメントであることが可能である。このようなフラグメントは、それぞれの莢膜多糖類を酸加水分解することによって得ることが可能である。このオリゴ糖フラグメントは、キャリア分子に結合させるため化学的に修飾することが可能である。

キャリア分子は、少なくとも１つの機能性Ｔ細胞エピトープを含むオリゴ糖、または破傷風トキソイドなどのキャリア蛋白質であることが可能である。

本発明の他の実施形態では、炭水化物フラグメントは腫瘍抗原に基づく炭水化物のフラグメントである。このような腫瘍抗原に基づく炭水化物は、Ｇｌｏｂｏ Ｈ、Ｌｅ^YまたはＳＴｎであることが可能である。

本発明の他の態様では、少なくとも２種の異なる炭水化物分子を処理してそれらの炭水化物フラグメントを得、それぞれの炭水化物フラグメントをキャリア分子に抱合することを含む、多価免疫原性分子の形成法が提供される。

一実施形態では、炭水化物分子は細菌の莢膜多糖類であり、莢膜多糖類のオリゴ糖フラグメントは２から５ｋＤａの大きさから選択される。このようなオリゴ糖フラグメントは、通常Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅおよび、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓを含む同一の細菌の少なくとも２種の異なる血清型から得られる。

本発明のこの実施形態では、このような多価免疫原性分子は、３種以上の化学的活性化莢膜多糖類またはそれらの誘導体を同時に単一のキャリア分子に任意に抱合させて、複合糖質を形成することによって実現することが可能である。この操作を図１に例示する。

本発明のこの実施形態では、合理的なリジン枝分かれペプチド系を考案して部位指向的複合糖質形成に使用することが可能である。ペプチド合成中にリジン残基およびシステイン残基用の異なった側鎖保護基を使用して、活性化したオリゴ糖をこのような残基を介して選択的かつ逐次的に同一のキャリア分子に結合することが可能である。この操作を図２に例示する。

部位指向的抱合の方法には、キャリア分子として複数抗原ペプチドをまず形成して、少なくとも２種のキャリアペプチドセグメントが異なる末端保護基を有するポリマーアンカーに固定することを含むことができる。その後保護基の１つを選択的に除去して、第１の１つのオリゴ糖フラグメントを保護していないキャリアペプチド部分に結合させる。他の保護基を選択的に除去して、第２の１つのオリゴ糖フラグメントを保護していないキャリアペプチド部分に結合させる。結合が所望される提供された数のキャリアペプチドおよびオリゴ糖フラグメントについて、この操作を繰り返すことが可能である。得られた分子をポリマーアンカーから切断する。

本発明のさらに他の態様に従って、（１）請求項３に記載の複数の肺炎球菌複合糖質、（２）請求項６に記載の複数の髄膜炎菌複合糖質、および（３）免疫原生を有する合成ＰＲＰ−ペプチド抱合体を含む、髄膜炎の予防のための免疫原生組成物を提供する。

この複数の肺炎球菌複合糖質は、Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅの血清型１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆの少なくとも２種の莢膜多糖類から得ることが可能である。複数の髄膜炎菌複合糖質はＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓのＡ、Ｂ、Ｃ、Ｗ−１３５、およびＹ群の少なくとも２種の莢膜多糖類から得ることが可能である。

このような全般的な髄膜炎免疫原生組成物は、ＤＴＰ−ポリオなどの少なくとも１つの他の抗原と一緒にして、多価ワクチンを提供することが可能である。

本発明はさらに、免疫有効量の本発明の免疫原性組成物を宿主に投与して免疫応答を起こす方法を含む。本発明は、髄膜炎に対する薬剤として使用する時の本明細書でクレームした免疫原性組成物、ならびに髄膜炎に対する薬剤製造における免疫原生組成物の個々の成分の使用にまで及ぶ。

本発明はさらに、本明細書で提供した多価免疫原性分子を使用した診断操作および診断キットも含む。したがって、本発明の他の態様では、本明細書で提供した多価免疫原性分子と特異的に反応する抗体の存在の測定方法を提供し、この測定方法は
（ａ）試料を前記多価免疫原生分子と接触させ、この分子および分子と特異的に反応する試料に存在する前記抗体を含む複合体を生成することと、
（ｂ）複合体の生成を測定することを含む。

本発明のさらに他の態様では、本明細書で提供した多価免疫原性分子の存在を測定するＡ診断用キットを提供し、このキットは
（ａ）多価免疫原性分子と、
（ｂ）多価分子を試料と接触させて多価分子および試料中に存在する前記抗体を含む複合体を生成する手段と、
（ｃ）複合体の生成を測定する手段とを含む。

したがって、本発明は、抗肺炎球菌由来の蛋白質ならびにＣＰ抗体、たとえば、抗ＣＰ １、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆと抗肺炎球菌表面蛋白質Ａ抗体、または抗髄膜炎菌由来の蛋白質ならびにＣＰ抗体、たとえば抗ＣＰ Ａ、Ｂ、Ｃ、ＹおよびＷ−１３５および抗髄膜炎菌ＯＭＰ １型抗体を検出するための診断イムノアッセイ操作またはキットへの肺炎球菌グリコペプチド抱合体の利用を可能とする。

本発明のさらに他の態様では、試料中の多価免疫原性分子の存在を測定する方法が提供され、この方法は、
（ａ）対象体を本明細書中に提供される免疫原性抱合体分子で免疫して、炭水化物フラグメントに特異的な抗体を産生する段階と、
（ｂ）炭水化物フラグメントに特異的な抗体を単離する段階と、
（ｃ）試料を単離した抗体と接触させて試料中に存在する前記多価免疫原性分子および前記単離した炭水化物フラグメント特異的抗体を含む複合体を生成する段階と、
（ｄ）この複合体の生成を測定する段階を含む。

本発明のさらに他の態様では、試料中における、本明細書中に提供される多価免疫原性分子に対する抗体の存在を測定する診断キットを提供し、このキットは、
（ａ）多価免疫原性分子と、
（ｂ）多価分子と試料とを接触させて、多価分子と試料中に存在する前記抗体を含む複合体を形成する手段と、
（ｃ）この複合体の生成を測定する手段を含む。

本発明のさらに他の態様では、試料中の多価免疫原性分子の存在を測定する診断キットを提供し、このキットは、
（ａ）多価免疫原性分子の炭水化物フラグメントに特異的な抗体と、
（ｂ）抗体を試料と接触させて、多価免疫原生分子およびこの抗体を含む複合体を生成する手段と、
（ｃ）複合体の生成を測定する手段を含む。

本発明は、血清試料などの生物的試料中のＨｉｂ、Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅおよびＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓの存在を検出する診断用イムノアッセイキットの成分として、抗ＰＲＰ、抗肺炎球菌ＣＰおよび抗髄膜炎菌ＣＰ抗体の混合物を使用することにも及ぶ。

なお、本願の原出願において、その請求の範囲には、下記の発明が記載されている。
（請求項１）
少なくとも１つの機能性Ｔ細胞エピトープを含むキャリア分子、および
各々がそのキャリア分子に結合していると共に、各々が少なくとも１つの機能性Ｂ細胞エピトープを含んでいる複数種の異種炭水化物フラグメント
を含んでなり、
前記キャリア分子が前記複数種の炭水化物フラグメントに高められた免疫原性を付与することを特徴とする多価免疫原性分子。
（請求項２）
前記炭水化物フラグメントが細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントであることを特徴とする請求項１に記載の多価免疫原性分子。
（請求項３）
前記莢膜オリゴ糖フラグメントが、Streptococcus pneumoniaeの莢膜オリゴ糖フラグメントであることを特徴とする請求項２に記載の多価免疫原性分子。
（請求項４）
前記莢膜オリゴ糖フラグメントが、S. pneumoniaeの血清型１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆのうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導されていることを特徴とする請求項３に記載の多価免疫原性分子。
（請求項５）
前記キャリア分子が、Ｔ細胞エピトープ含有蛋白質またはS. pneumoniaeの蛋白質フラグメントであることを特徴とする請求項４に記載の多価免疫原性分子。
（請求項６）
前記莢膜オリゴ糖フラグメントが、Neisseria meningitidisの莢膜オリゴ糖フラグメントであることを特徴とする請求項２に記載の多価免疫原性分子。
（請求項７）
前記オリゴ糖フラグメントが、N. meningitidisの群Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｗ−１３５およびＹのうちの少なくとも２つの莢膜オリゴ糖から誘導されていることを特徴とする請求項６に記載の多価免疫原性分子。
（請求項８）
前記キャリア分子が、Ｔ細胞エピトープ含有蛋白質またはN. meningitidisの蛋白質フラグメントであることを特徴とする請求項７に記載の多価免疫原性分子。
（請求項９）
前記オリゴ糖フラグメントが、約２ｋＤａ〜約５ｋＤａの大きさであることを特徴とする請求項２に記載の多価免疫原性分子。
（請求項１０）
前記キャリア分子が、少なくとも１つの機能性Ｔ細胞エピトープを含むオリゴペプチドであることを特徴とする請求項１に記載の多価免疫原性分子。
（請求項１１）
前記キャリア分子が、キャリア蛋白質であることを特徴とする請求項１に記載の多価免疫原性分子。
（請求項１２）
前記キャリア蛋白質が、破傷風トキソイドであることを特徴とする請求項１１に記載の多価免疫原性分子。
（請求項１３）
前記炭水化物フラグメントが、炭水化物系の腫瘍抗原のフラグメントであることを特徴とする請求項１に記載の多価免疫原性分子。
（請求項１４）
腫瘍抗原が、Ｇｌｏｂｏ Ｈ、Ｌｅ^YまたはＳＴｎであることを特徴とする請求項１３に記載の多価免疫原性分子。
（請求項１５）
部位特異的な糖接合により作製されることを特徴とする請求項１に記載の多価免疫原性分子。
（請求項１６）
多価免疫原性分子を形成する方法であって、
少なくとも２つの異なる炭水化物分子を処理してその炭水化物フラグメントを取得し、
その炭水化物フラグメントの各々をキャリア分子に接合させる
ことを含んでなる方法。
（請求項１７）
前記炭水化物分子が、細菌の莢膜多糖類であり、前記莢膜多糖のオリゴ糖フラグメントが、約２ｋＤａ〜約５ｋＤａの大きさに選択されることを特徴とする請求項１６に記載の方法。
（請求項１８）
前記接合工程が、前記多糖フラグメントの前記キャリア分子へのランダム接合により行われることを特徴とする請求項１７に記載の方法。
（請求項１９）
前記接合工程が、部位特異的な糖接合により行われることを特徴とする請求項１７に記載の方法。
（請求項２０）
前記部位特異的な糖接合が、
まず、キャリア分子として、少なくとも２つのキャリア・ペプチド・セグメントが異なる末端保護基を有する、ポリマーアンカーに固定された複合抗原ペプチドを形成し、
保護基の１つを選択的に除去し、オリゴ糖フラグメントの最初の１つを非保護キャリア・ペプチド・セグメントに結合させ、
保護基のもう１つを選択的に除去し、オリゴ糖フラグメントの次の１つを非保護キャリアペプチドセグメントに結合させ、ならびに、
得られる分子をポリマーアンカーから分離することにより行われることを特徴とする請求項１７に記載の方法。
（請求項２１）
髄膜炎に対して保護するための免疫原性組成物であって、
（１）請求項３に記載の多種肺炎球菌糖接合体、
（２）請求項６に記載の多種髄膜炎菌糖接合体、および
（３）免疫原性合成ＰＲＰペプチド接合体
を含んでなる免疫原性組成物。
（請求項２２）
さらに、少なくとも１つのさらなる抗原を含むことを特徴とする請求項２１に記載の免疫原性組成物。
（請求項２３）
請求項３に記載の前記多種肺炎球菌糖接合体が、S. pneumoniae 血清型１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆのうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導され、請求項６に記載の前記多種髄膜炎菌糖接合体が、Neisseria meningitidis 血清型Ａ、Ｂ、Ｃ、ＹおよびＷ−１３５のうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導されることを特徴とする請求項２１に記載の免疫原性組成物。
（請求項２４）
請求項２１に記載の免疫原性組成物の免疫有効量を宿主に投与することを含んでなる、免疫応答を発生させる方法。
（請求項２５）
請求項１に記載の多価免疫原性分子に特異的な反応性を示す抗体の存在を検出する方法であって、
（ａ）サンプルを前記多価免疫原性分子に接触させて、その分子および、サンプル中に存在する、それに特異的な反応性を示す抗体を含んでなる複合体を形成し、
（ｂ）その複合体の形成を検出する
ことを含んでなる方法。
（請求項２６）
前記多価免疫原性分子が、請求項３に記載の多種肺炎球菌糖接合体であることを特徴とする請求項２５に記載の方法。
（請求項２７）
前記多種肺炎球菌糖接合体が、S. pneumoniae 血清型１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆのうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導されていることを特徴とする請求項２６に記載の方法。
（請求項２８）
前記多種肺炎球菌糖接合体が、請求項６に記載の髄膜炎菌糖接合体から誘導されることを特徴とする請求項２５に記載の方法。
（請求項２９）
前記多種髄膜炎菌糖接合体が、N. meningitidis 血清型Ａ、Ｂ、Ｃ、ＹおよびＷ−１３５のうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導されていることを特徴とする請求項２８に記載の方法。
（請求項３０）
サンプル中における請求項１に記載の多価免疫原性接合体分子の存在を検出する方法であって、
（ａ）対象体を免疫原性接合体分子で免疫して、炭水化物フラグメントに特異的な抗体を産生する工程、
（ｂ）炭水化物フラグメントに特異的な抗体を単離する工程、
（ｃ）サンプルを単離された抗体に接触させて、サンプル中に存在する前記多価免疫原性分子、および前記単離された炭水化物フラグメントに特異的な抗体を含んでなる複合体を形成する工程、および
（ｄ）複合体の形成を検出する工程
を含んでなる方法。
（請求項３１）
前記多価免疫原性分子が、請求項３に記載の多種肺炎球菌糖接合体であることを特徴とする請求項３０に記載の方法。
（請求項３２）
前記多種肺炎球菌糖接合体が、S. pneumoniae 血清型１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆのうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導されていることを特徴とする請求項３１に記載の方法。
（請求項３３）
前記多種肺炎球菌糖接合体が、請求項６に記載の髄膜炎菌糖接合体から誘導されていることを特徴とする請求項３０に記載の方法。
（請求項３４）
前記多種髄膜炎菌糖接合体が、N. meningitidis 血清型Ａ、Ｂ、Ｃ、ＹおよびＷのうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導されていることを特徴とする請求項３３に記載の方法。
（請求項３５）
サンプル中における請求項１に記載の多価免疫原性分子に対する抗体の存在を検出する診断キットであって、
（ａ）多価免疫原性分子、
（ｂ）この多価分子をサンプルに接触させて、この多価分子および、サンプル中に存在する、何れかの前記抗体を含んでなる複合体を形成する手段、および
（ｃ）複合体の形成を検出する手段
を含んでなる診断キット。
（請求項３６）
請求項１に記載の前記免疫原性接合体分子が、請求項２１に記載の免疫原性組成物の形態として存在することを特徴とする請求項３５に記載のキット。
（請求項３７）
サンプル中における多価免疫原性分子の存在を検出する診断キットであって、
（ａ）請求項１に記載の多価免疫原性分子の炭水化物フラグメントに特異的な抗体、
（ｂ）この抗体をサンプルに接触させて、前記多価免疫原性分子の何れかおよびこの抗体を含んでなる複合体を形成する手段、および
（ｃ）複合体の形成を検出する手段
を含んでなる診断キット。
（請求項３８）
前記抗体が、請求項２１に記載の免疫原性組成物の構成要素に対する抗体であることを特徴とする請求項３７に記載のキット。
（請求項３９）
髄膜炎に対する薬剤としての用途を有することを特徴とする請求項２１に記載の免疫原性組成物。
（請求項４０）
髄膜炎に対する保護のための薬剤の製造における、請求項２１に記載の免疫原性組成物の個々の構成要素の使用。

本発明は、特定の新規多価免疫原性オリゴ糖、およびその調製における新規接合手順、ワクチンとしてのその用途、および診断用途のための抗体を提供する際におけるその利用を提供する。

本発明は、添付した図面を参照して、以下の説明および特定の実施例によってさらに理解されるであろう。

（発明の一般的な説明）
前述したように、本発明はＨ．ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ、Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ、Ｅ．ｃｏｌｉ、およびＢ群Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓなどの細菌の複数のオリゴ糖、または炭水化物をベースとした腫瘍抗原のいずれかを同じキャリアタンパク質またはポリペプチドに共有結合するために使用することのできる、新規の糖抱合技術およびそれらによって生成した多価分子に関するものである。

強力で長時間続く液性免疫を引き起こすためには、リンパ球の少なくとも２種の異なるサブセットによって異種抗原を認識する必要がある。Ｂリンパ球（Ｂ細胞、骨髄由来のリンパ球）は抗体形成細胞の前駆体であり、Ｔリンパ球（Ｔ細胞、胸腺由来のリンパ球）はＢ細胞の機能を調節する。

ほとんどのＣＰはＴ細胞非依存性抗原であり、Ｂ細胞を直接刺激して抗体を産生させることができる。一般に、ＣＰはＢ細胞を誘導して、最終的に抗体分泌細胞（形質細胞）に分化するが、抗体反応は短命で、応答するＢ細胞の数によって限定される。

蛋白質およびペプチドは、Ｔ細胞依存抗原で、Ｂ細胞および引き金となるヘルパーＴ細胞上にペプチド：ＭＨＣクラスＩＩ複合体を形成することができるエピトープを含み、Ｂ細胞活性化およびクローンの拡大を助ける細胞結合性サイトカインおよび分泌性サイトカイン（エフェクター分子）の両者を合成する。

ＣＰはキャリア蛋白質またはＴ細胞エピトープに結合することによってＴ依存性抗原に変換することができる（参考文献９、米国特許第４４９６５３８号）。ＣＰ−蛋白質抱合体で繰り返し免疫することによって、ワクチン接種を受けた人のＢ細胞集団は抗体産生をするだけでなく、複製し成熟する。結果的に、抗ＣＰ抗体を生成するＢ細胞が多くなり、ブースターに応答して抗体力価が高くなる。

オリゴ糖を抗原として使用する理論的根拠
免疫原性のある糖タンパク質抱合体を作製する最低限の必要条件は、ＣＰのＢ細胞エピトープとキャリアのＴ細胞エピトープが共有結合した後も機能的であるということである。２つ以上のＣＰを同一のキャリアタンパク質又はＴ細胞エピトープに無作為に接合させるためには、炭水化物のサイズを約２ｋＤａ〜約５ｋＤａに減らして、立体障害効果が起きないようにする。少なくとも２つの異なったアプローチを用いて複数のオリゴ糖をキャリアタンパク質に共有結合することができる。第１のアプローチは、同一の化学反応を用いてオリゴ糖を活性化又は誘導してそのキャリアへの接合を同時に達成することである（図１）。第２のアプローチでは、部位特定の糖共役のためにリジンが分枝したペプチドシステムを使用する。ペプチド合成の間、リジン残基とシステイン残基に対して別々の側鎖保護基を用いて、このような残基を介して活性化されたオリゴ糖を選択的に順次、同一のキャリアタンパク質に結合することができる（図２）。

オリゴ糖の調製
以下の実施例に詳細を説明するように、様々な血清型の肺炎連鎖球菌（Streptocuccus pneumoniae）莢膜多糖類（＞５０ｋＤａ）の酸性加水分解を行って、分子量が約２〜約５ｋＤａの範囲のオリゴ糖を形成してもよい。この工程には３つのステップ：（１）アルゴン又はその他の適当な不活性ガスのもとでの密閉したバイアル内におけるＣＰの酸加水分解、（２）凍結乾燥及び（３）ゲル濾過クロマトグラフィーによるオリゴ糖の精製、を含んでもよい。肺炎連鎖球菌の血清型１、４、５、９Ｖ及び１４由来のＣＰの酸加水分解の条件はすでに最適化されている。

典型的には、０．５Ｍのトリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）中で、約５０℃〜約９５℃にて約５〜約１０時間ＣＰ（２ｍｇ／ｍＬ）をインキュベートする。血清型６Ｂ及び１９Ｆ由来のＣＰは不安定なホスホジエステル結合を含んでいるので、加水分解は、穏やかな酸性条件（約１０〜約５０ｍＭの酢酸）で約５０℃〜約１００℃にて約３０〜約４８時間行う。血清型２３ＦのＣＰは、約０．１〜約０．５Ｍのトリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）中で約７０℃にて約２〜約４時間、又は約１〜約５０ｍＭの酢酸中で約８０℃〜約１１０℃にて約４０〜約６０時間インキュベートすることによって部分的に加水分解することができる。

各加水分解終了時に反応溶液を水で５倍に希釈し、次いで凍結乾燥する。未精製のオリゴ糖の精製は、Ｓｅｐｈａｄｅｘ（登録商標）Ｇ−１００ゲル濾過クロマトグラフィー（約２×約２１０ｃｍのカラム）又はその他の適するゲル濾過カラムを用いて行う。クロマトグラフィーの典型的な結果を図３に例示する。レゾルシノール／硫酸アッセイ（参考文献１２）を用いて、炭水化物の存在について各分画を調べる。溶出パターンをプロットし、平均分子量約２〜約５ｋＤａのクロマトグラフィーで精製されたオリゴ糖をプールする。カラムの校正に用いた分子量マーカーは、デキストラン標品（３９，１００及び８，８００Ｄａ）、合成ＰＲＰヘキサマー（２，３４０Ｄａ）、スクロース（３４２Ｄａ）及びグルコース（１８０Ｄａ）である。約２〜約５ｋＤａのサイズにしたオリゴ糖は、一般に約４〜約８の反復単位を含有しており、少なくとも１つのＢ細胞エピトープを含有することが予想される。そのようなオリゴ糖の収率は約７０〜約９０％である。このようにクロマトグラフィーで精製したオリゴ糖は、肺炎連鎖球菌由来のタンパク質中のＴ細胞エピトープを含有する複数抗原ペプチドシステム（ＭＡＰ）、あるいはキャリアタンパク質に共有結合させた複数のオリゴ糖から成る糖抱合体を調製するために利用される。

以下の実施例で詳細に説明するように、種々の血清型の髄膜炎菌（N. meningtidis)莢膜多糖類(>10kDa)の酸加水分解を行って平均分子量約２〜約５ｋＤａのオリゴ糖を形成してもよい。肺炎球菌のCP酸加水分解には共通して、工程には、凍結乾燥及びゲル濾過クロマトグラフィーを用いた精製が含まれる。

髄膜炎菌の群Ｃ、Ｗ−１３５とＹ由来のＣＰの酸加水分解の条件は、最適化されている。典型的には、アルゴン又はその他の適する不活性ガスのもとで密閉したバイアル中で、約６５℃〜約１００℃にて、約８〜約１２時間、ｐＨ約４．５〜５．５、約２０〜８０ｍＭの酢酸ナトリウムとＣＰ（１０ｍｇ／ｍＬ）を混合する。Ｂ群のＣＰは酸性条件下では分子内エステル化を受ける可能性があるので、Ｃ群ＣＰの加水分解で用いた条件を採用するが、インキュベートする時間は約１時間に制限され、反応のｐＨは約０．１ＭのＮａＯＨにより直ちにｐＨ７に調整し、エステル化工程を反転させる。Ａ群のＣＰは不安定ホスホジエステル結合を含有するので、穏やかな酸性条件（たとえば約１０〜約２０ｍＭの酢酸）のもとで加水分解し、約５０℃〜約１００℃にて約３０〜約４８時間インキュベートする。各加水分解終了時に、５倍の水で反応溶液を希釈し、凍結乾燥する。未精製のオリゴ糖はＳｅｐｈａｄｅｘ（登録商標）Ｇ−１００ゲル濾過クロマトグラフィー（約２×約２１０ｃｍのカラム、上を参照）により分画する。典型的なクロマトグラフィーの結果を図４に例示する。

レゾルシノール／硫酸アッセイ（参考文献１２）を用いて、シアル酸の存在について分画を調べる。溶出パターンをプロットし、クロマトグラフィーで精製された約２〜約５ｋＤａのオリゴ糖をプールする。約２〜約５ｋＤａのサイズのオリゴ糖は、典型的には約６〜約１５の反復単位を含有しており、少なくとも１つのＢ細胞エピトープを含有すると予想される。そのようなオリゴ糖の収率は約４０〜約８０％である。このようにクロマトグラフィーで精製したオリゴ糖は、髄膜炎菌由来のタンパク質のＴ細胞エピトープを含有する複数抗原ペプチドシステム（ＭＡＰ）またはキャリアタンパク質に共有結合された複数のオリゴ糖から成る糖抱合体を調製するために利用される。

その他の細菌の莢膜多糖類についても、同様の方法を用いてもよい。

キャリアの選択
たとえば、ニューモリシン（参考文献１３）、肺炎球菌由来表面タンパク質Ａ（ＰｓｐＡ）（参考文献１４）、肺炎連鎖球菌３７ｋＤａタンパク質（ＳＰ３７）（参考文献１５）、髄膜炎菌由来トランスフェリン結合タンパク２（Ｔｂｐ２）（参考文献１６）、髄膜炎菌由来ピリン（参考文献１７）、及びクラス１タンパク質（参考文献１８）のような肺炎球菌及び髄膜炎菌由来の膜タンパク質が、有力な防御抗原として同定されているが、今のところ、その何れも臨床試験で検証されてはいない。このようなタンパク質は、従来のアルゴリズムを用いて同定された有望なＴ細胞エピトープを含有している。従って、ここでの多価の免疫原性分子を形成するため、髄膜炎菌及び肺炎球菌由来のオリゴ糖との接合に対して、有望なペプチド・キャリアの一団を選択してもよい。

本発明では、オリゴ糖と結合すべきペプチド（表１；ＳＥＱ ＩＤ ＮＯＳ：１〜８）は、そのヘルパーＴ細胞の潜在的な刺激能、又は潜在的な防御能力、又はＴ細胞のメモリを呼び覚ますのに重要な配列の保存のいずれかに基づいて選択される。ＮＭＴＢＰ２（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）は、髄膜炎菌Ｔｂｐ２タンパク質のペプチド断片であり、機能的なＴ細胞エピトープ及びＴｂｐ２特異的ＭＡｂにより認識される株特異的防御Ｂ細胞エピトープの両方を含有することが以前同定されている（この文書の譲受人に譲渡され、その開示は本明細書に参考として組み入れられる米国特許第５，７０８，１４９号；ＷＯ９５／１３３７０）。ペプチドＮＭＣ−１及び−２（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯＳ：２及び３）は髄膜炎菌クラス１タンパク質（参考文献１９）の免疫優性ヒトＴ細胞エピトープを含有することが同定された。ＮＭＰｉ−１（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４）は髄膜炎菌ピリンタンパク質に由来し、接着に関与する配列を含有することが示された（参考文献１７）。ペプチドＰＮ（１２３〜１４０；ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）及びＰＮ（２６３〜２８１；ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）は肺炎球菌ニューモリシンに由来し、両者は機能的Ｔ細胞エピトープを含有している（参考文献２０）。ＳＰ３７（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７）は、肺炎連鎖球菌３７ｋＤａタンパク質のＮ末端断片であり、ウサギにおける免疫原性試験において高い免疫原性を示している。 ＰＳＰ−ＡＡ（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：８）は、肺炎連鎖球菌ＰｓｐＡタンパク質のＮ末端断片であり、マウスにおける肺炎球菌の生菌チャレンジに対して防御免疫反応を引き出す能力があることが示されている（参考文献１４）。

動物モデルにおける多種オリゴ糖−キャリア抱合体の免疫原性
Ａ．無作為共役法（図１）
本発明では、細菌の莢膜多糖類を加水分解して低分子量のオリゴ糖にするのに酸が用いられている。オリゴ糖は精製することができ、アンモニア又はジアミノエタンと反応させてその還元末端で遊離の末端アミノ基を作製することができる。 次いでアミノ基を過剰のアジピン酸のスクシニミジルエステルと反応させ、活性のあるスクシニミジルエステル基をオリゴ糖に導入する。活性化されたオリゴ糖は次いでキャリアタンパク質又はペプチドのアミノ基と反応させて共有アミド結合を形成する。糖抱合体はタンパク質／ペプチド分子当たり少なくとも２つの結合したオリゴ糖を含む。

抗リンカー抗体反応を回避するために、Ｊｅｎｎｉｎｇｓ及びＬｕｇｏｗｓｋｙ（参考文献６）により記載された還元アミノ化法を用いてオリゴ糖をキャリアに直接結合することができる。この後者の方法の有利な点は、リンカー分子が不必要なので、新抗原基形成の可能性が除外され、極めて安定な第二級アミン、又は場合によっては第三級アミン結合がオリゴ糖とタンパク質との間に形成されることである。さらに、酸化は分枝側鎖又は主鎖の環状糖残基上で起きるので、過ヨウ素酸塩によるほとんどの髄膜炎菌及び肺炎球菌の莢膜多糖類の処理では、多糖類又は断片の分子量の減少は起きない。どちらの場合も、主鎖は切断されず、分子量は元のままである。

本発明の多価分子を利用する可能性を評価するために、肺炎連鎖球菌血清型６Ｂ、１４、１９Ｆ及び２３Ｆ由来のオリゴ糖を図１に示すように無作為にＴＴに共有結合させた。出来上がった多抗原性糖抱合体（ＭＡＧ）をゲル濾過クロマトグラフィーで精製した（図５）。タンパク質と炭水化物の分析は、炭水化物対タンパク質のモル比が７．１：１であることを示した。比較試験のために同じ方法によって４つの各血清型の断片からそれぞれ４つの抱合体（６−ＴＴ、１４−ＴＴ、 １９Ｒ−ＴＴ及び２３Ｆ−ＴＴ）を調製した。複数の抗原を持つ糖抱合体（ＭＡＧ）をフロインド完全アジュバント（ＦＣＡ）又はアルムのどちらかで処方した。ウサギ及びマウス（ＢＡＬＢ／ｃ）における免疫原性試験の結果は以下のようであった：
ａ． ＦＣＡをアジュバントとして用いた場合、４つの血清型ＣＰすべてに対する強い抗体反応がウサギで観察された（図６）。力価は個々の抱合体で得られたものについて同等であった。
ｂ． ウサギにおいてアルムをアジュバントとして用いた場合、抗−１４、−１９Ｆ及び−２３Ｆ抗体反応は認められたが、抗−６Ｂ反応は見られなかった（図７）。
ｃ． ＢＡＬＢ／ｃマウスでは、抗−１４及び抗−１９Ｆ抗体だけが導き出された（図８）。

抗−肺炎球菌抗体の生物活性は２つの異なった方法によって測定することができる：ｉｎ ｖｉｔｒｏでは、オプソニン貪食アッセイを用い、ｉｎ ｖｉｖｏでは能動免疫又は受動免疫を用いた動物防御試験による。以前の研究（参考文献２１及び２２）で抗−肺炎連鎖球菌ＣＰ抗体は生物活性を持ち、防御能を持つことが示されている。ＥＬＩＳＡの全Ｉｇ抗体力価とオプソニン作用の力価との間には直接的な相関があった。従って、動物モデルにおいて抗−肺炎連鎖球菌ＣＰ抗体反応を引き出すことができる肺炎球菌ＭＡＧのワクチンの候補は、ヒトの免疫に有用であろう。

図１に概略的に示した方法に従い、上で説明したようにＣ、ＷおよびＹ群オリゴ糖を含有する髄膜炎菌由来の糖抱合体を調製した。複数の抗原性を持つ糖抱合体をゲル濾過クロマトグラフィーで精製した。 炭水化物対タンパク質のモル比は６．６：１であった。ウサギにおける免疫原性試験では、髄膜炎菌ＭＡＧは、炭水化物特異的なＥＬＩＳＡにおいて３つの多糖類（Ｃ、Ｗ及びＹ群）全てに対して抗体反応を引き出すことができ（図９）、抗血清は陰性対照として用いた肺炎球菌６ＢのＰＣに反応性を持たないことが示された。Ｗ及びＣ群に対する抗体の反応性は似ていた（相乗平均力価（ＧＭＴ）は約３０００）。この多価糖抱合体ではＣ群の免疫原性は弱く、ＧＭＴは約５００であった。
Ｂ．複数の抗原性を持つペプチド（ＭＡＰ）による方法（図２）
本発明で我々は、いくつかの異なったオリゴ糖が選択的に、順次結合することができる、異なったヘルパーＴ細胞エピトープを含有する、新規のリジン分枝ペプチド（複数の抗原性を持つペプチド、ＭＡＰ）を設計し、合成する方法を提供する。この概念を試すために、以下に示すように樹脂に結合したＭＡＰを合成し、性状分析を行った。

置換レベルが１８０μｍｏｌ／ｇのＦｍｏｃ−Ｌｙｓ（ｔ−Ｂｏｃ）−ＴＧＡ（５００ｍｇ、ＢＡＣＨＥＭより購入）を用いてＭＡＰを調製した。標準Ｆｍｏｃ化学反応結合プロトコールを用いた（４倍過剰のＦ−ｍｏｃ保護アミノ酸、Ｏ−ベンゾトリアゾイル−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチルウロニウム ヘキサフルオロリン酸（ＨＢＴＵ）及びＮ−ヒドロキシベンゾトリアゾール（ＨＯＢＴ）／ジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＥＡ）で１時間（実施例６））。オリゴ糖の共役を促進するために、最初のＦｍｏｃ−Ｇｌｙ残基が結合すると置換レベルを５０μｍｏｌ／ｇに落した。合成が完了すると、ＭＡＰ−樹脂のごく一部をエタンジチオール（ＥＤＴ）及びチオアニソールの存在下にて９５％トリフルオロ酢酸で切断した。アミノ酸分析は、切断されたＭＡＰが正しいアミノ酸組成を有することを示した。

ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）中のジチオアニソール（ＤＴＴ）でＭＡＰ（１５０ｍｇ）を処理し、たとえばｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシスクシニミド（ＭＢＳ）のようなＳＨに向けられた官能基で誘導された、オリゴ糖に共役すべきシステイン残基から トリチル基を除いた。還元後、次いでアミノ基及びスルフヒドリル基について出来上がったＭＡＰ樹脂を調べた。エラム（Ｅｌｌａｍ’ｓ）のアッセイ法から、ＳＨの置換レベルはＭＡＰ樹脂のグラム当たり６４μｍｏｌであることが判明し、アミノ基の置換の程度は、ニンヒドリン反応より７１μｍｏｌ／ｇであることが判明した。このような結果は、トリチル及びＦｍｏｃ保護基を量的に除くことができることを示した。

ＭＢＳ（参考文献２３）で誘導された３−β−Ｄ−リボース−（１−１）−Ｄ−リビトール−５−リン酸の合成ヘキサマーから調製された（ＰＲＰ）₆−ＭＢＳをＤＭＦ／ＯＢＳ溶液に溶解し、次いで、脱ガス条件下で完全に保護を外し、還元したＭＡＰに結合した。結合後、スルフヒドリル基を測定するためにＭＡＰ−（ＰＲＰ）₆−をエルマン（Ｅｌｌｍａｎ’ｓ）試験にかけた。ＳＨ置換のレベルは、樹脂のグラム当たり６．８５mｍｏｌに低下した。ＰＲＰの結合は、リボース反応で独立に確認し、樹脂のｍｇ当たり１８μｇの（ＰＲＰ）₆であることが判明した。

出来上がったＭＡＰ−（ＰＲＰ）₆を、ＮａＣＮＢＨ₃の存在下３８℃にて６日間、メタノール／リン酸緩衝液（ｐＨ７．８）中で、過ヨウ素酸で酸化した肺炎連鎖球菌の血清型１９Ｆ（１ｅｑ．）と混合した。結合後、ニンヒドリン反応によって測定されたアミノ基の置換は、樹脂のグラム当たり１６μｍｏｌであることが判った。糖の総含量は再び樹脂のグラム当たり１６．１ｍｇであることが判明した。エタンジチオール（ＥＤＴ）とチオアニソールの存在下、ごくわずかな１９Ｆ−（ＰＲＰ）₆−ＭＡＰ糖抱合体−樹脂を９５％のＴＦＡで切断した。精査の後、ＭＡＰ−糖抱合体は正しいアミノ酸組成と炭水化物含有量を有していることが判明した。このような結果は、異なったオリゴ糖を選択的に順次ＭＡＰ樹脂に結合することができることを強く示唆している。

異なったＴ細胞エピトープを含有するＭＡＰ樹脂を合成する前に、肺炎連鎖球菌膜タンパク質、ニューモリシンに由来するＴ細胞エピトープである、ＰＮ（１２３〜１４０）（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）又はＰＮ（２６３〜２８１）（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）のどちらかに相当する樹脂結合線状ペプチドへの結合効率について、過ヨウ素酸で酸化した、血清型６Ｂ、１４及び２３Ｆの肺炎球菌由来のオリゴ糖を調べた。還元アミノ化を用いて、線状糖ペプチド、６Ｂ−ＰＮ（１２３〜１４０）、１４−ＰＮ（２６３〜２８１）及び２３Ｆ−ＰＮ（１２３〜１４０）を調製した。ニンヒドリン反応を用いて遊離アミノ基を測定することにより判定すると、オリゴ糖の樹脂結合ペプチドへの結合効率は１０％〜３０％であることが判明した。９５％ＴＦＡを用いて糖ペプチドを樹脂から切断し、次いでＲＰ−ＨＰＬＣによって半精製した。ウサギにおける免疫原性試験は、ＦＣＡ／ＩＦＡ中で処方したこのような線状糖ペプチドの「等モル」混合物を用いて行った。結果は、糖ペプチド抱合体は免疫原性があり、抗−６Ｂ、抗−１４、及び抗−２３Ｆ多糖類抗体反応を引き出す（図１０）ことを示した。さらに、ペプチド特異的ＥＬＩＳＡで判定されるように、ウサギの抗血清はペプチドと反応した（表２）。

図２に示すように、５０μｍｏｌ／ｇの置換レベルを持ったＦｍｏｃ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ−ＴＧＡ樹脂を用いて、異なった肺炎連鎖球菌の膜タンパク質に由来する３つのＴ細胞エピトープを含有するＭＡＰ樹脂を合成した。上で説明した最適化されたＦｍｏｃ化学反応結合プロトコールを用いて、合成全体は手動で行った。反応が完了した時点で、ごくわずかのＭＡＰ−樹脂をＥＤＴとチオアニソールの存在下にて９５％のＴＦＡで切断し、切断されたＭＡＰはアミノ酸分析により正しいアミノ酸組成を有することが判明した。ＤＴＴによりＭＡＰ樹脂を還元し、システイン残基からｔ−ブチルチオ保護基を除いた。過剰に洗浄した後、ＭＡＰ樹脂をＤＭＦ／ＰＢＳ溶液に再浮遊し、４倍過剰の肺炎連鎖球菌血清型１４（Ｏｓ１４）由来のスルホスクシニミジル（４−ヨードアセチルアミノ安息香酸（スルホＳＩＡＢ）活性化オリゴ糖と混合した。室温にて一晩混合した後、濾過によりＭＡＰ樹脂を回収し、ＰＢＳ、ＤＭＦ、次いでメタノールにて洗浄した。

ＭＡＰ−Ｏｓ１４をエルマン試験にかけ、スルフヒドリル基を測定した。ＳＨ置換のレベルは出発値の半分であることが判明した。再結合はＭＡＰ樹脂に結合するＯｓ１４の量を増やさなかった。Ｏｓ１４に見い出される炭水化物である、Ｎ−アセチルガラクトサミン（ＧｌｃＮＡｃ）の存在は、独立に炭水化物分析によって確認した。

ＭＡＰ−Ｏｓ１４をまず１％のＴＦＡで処理し、Ｍｔｔ−リジン残基からＭｔｔ（リジン保護基）を除き、次いで、弱塩基、１％のジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＥＡ）／ＤＭＦで中和した。遊離アミノ基の存在は、ニンヒドリン試験により測定し、９０％以上のＭｔｔ基が除かれたことが示された。

ＰＢＳにＭＡＰ−Ｏｓ１４樹脂を再浮遊し、次いでＮａＣＮＢＨ₃の存在下３８℃にて６日間、ＤＭＦ／リン酸緩衝液（ｐＨ７．８）中で過ヨウ素酸で酸化した肺炎連鎖球菌血清型６Ｂオリゴ糖（Ｏｓ６Ｂ）の４つの同等物と混合した。ニンヒドリン反応で測定したアミノ基の置換は、最初の値の８０〜９０％であることが判明した。２回目及び３回目の結合は、Ｏｓ６ＢのＭＡＰ−Ｏｓ１４樹脂への結合を改善しなかった。結合効率は乏しかったが（約１５％）Ｏｓ６Ｂに見い出される炭水化物であるリビトールの存在は、炭水化物分析で確認した。

ＭＡＰ−Ｏｓ１４−Ｏｓ６Ｂ抱合体をＤＭＦ中２０％のピペリジンで処理して、Ｆｍｏｃ−リジン残基からＦｍｏｃ保護基を取り除いた。洗浄した後、ＭＡＰ−Ｏｓ１４−Ｏｓ６Ｂ樹脂を、次いでＮａＣＮＢＨ₃の存在下３８℃にて６日間、ＤＭＦ／リン酸緩衝液（ｐＨ７．８）中で、４倍過剰の、過ヨウ素酸で酸化した肺炎連鎖球菌血清型１９Ｆオリゴ糖（Ｏｓ１９Ｆ）と混合した。結合後、ニンヒドリン反応により測定したアミノ基の置換の程度は、約９０％であることが判明した。結合反応を繰り返し、その効率は約１５％であった。しかしながら、Ｏｓ１９Ｆに見い出される糖である、Ｎ−アセチルマンノースの存在は、炭水化物分析で検出された。ＥＤＴとチオアニソールの存在下でごく少量のＭＡＰ糖抱合体樹脂を９５％ＴＦＡで切断した。精査の後、アミノ酸組成及び炭水化物含有量についてＭＡＰ−糖抱合体を測定し、正しいアミノ酸組成及び炭水化物含有量を有することが判明した。

全体的な収率は極めて低いが、にもかかわらず、このような結果は、異なったオリゴ糖を選択的に順次ＭＡＰ樹脂に結合できることを明らかにしている。さらにその上、ウサギにおける免疫原性試験によって、このＭＡＰ糖抱合体は免疫原性があり、多糖類１９Ｆ及び１４に対して強い抗体反応を（ＧＭＴは約３０００）引出し、しかし抗６ＢＩｇＧ反応は極めて弱いことが示された（図１１）。１９Ｆ及び１４多糖類に対する抗体価は、ＴＴに結合した多価オリゴ糖をウサギに免疫して得られる抗体価よりも有意に低かったが（図７）、我々は依然として肺炎球菌の多価ＭＡＰ抱合体の候補ワクチンはヒトの免疫に有用であると期待している。さらに、ペプチド特異的ＥＬＩＳＡにおいてウサギの抗血清は、Ｔ細胞ペプチドと強く反応した（表３）。

合成グリコペプチド接合技術の利用
本発明の好適な態様において、複合糖質技術は一般に病原被胞性細菌に対する接合体ワクチンの調製に利用することができる。このように、本発明の複合糖質技術は予防接種に応用して、潜在的な保護多糖抗原を発現する細菌、例えば、ヘモフィルス・インフルエンザ（Haemophilus influenza）、肺炎連鎖球菌(Strepto coccus pneumoniae)、大腸菌(Escherichia coli)、髄膜炎菌(Neisseria meningi tidis)、サルモネラ・ティフィ(Salmonella typhi)、ストレプトコッカス・ミュータンス(Streptococcus mutans)、クリプトコッカス・ネオフォルマンス(Crypto coccus neoformans)、クレブシエラ(Klebsiella)、黄色ブドウ球菌(Staphylo coccus aureus)、および緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa)などの感染に対し防御力を付与する。

特定の態様においては、合成複合糖質技術を応用し、グロボ（Globo）Ｈ、Ｌe^YおよびＳＴｎなど炭水化物ベース腫瘍抗原のフラグメントを含むタンパク質およびオリゴ糖に対する抗体を引き出すワクチンを製造することができる。かかるワクチンは、例えば、腫瘍細胞に対する免疫の誘導、または化学療法剤もしくは生物活性剤に接合し得る抗腫瘍抗体の産生に使用することができる。

本発明の範囲内には上記特異ペプチドのいずれかの変異体または機能的に等価の変異体をも含むことが理解される。上記使用の用語「変異体」または「機能的に等価の変異体」は、もし該ペプチドが１以上のアミノ酸残基の付加、欠失または誘導化によっていずれかの点で修飾されているものであり、かつ、本明細書記載の特異ペプチドと同様の様式で作用するならば、本発明の範囲内に包含される。これらのペプチド（表１）および同様ペプチドの配列が判明すれば、これらは市販のペプチド合成機、例えば、アプライド・バイオシステムズ・モデル４３０Ａなどにより容易に合成されるか、または組換えＤＮＡ技術により生産し得る。

当業者には明瞭なことであるが、本発明の多様な態様は、感染のワクチン、診断と治療の分野、および免疫学的試薬の生成において多くの応用性を有する。さらなる非制限的なかかる用途の検討が以下にさらに提示される。
ワクチンの調製および用途
上に述べたように、本発明はその一態様において、例えば、ワクチンとして使用するのに適した免疫原性組成物製剤用の多価免疫原性接合体を提供する。該免疫原性組成物はそれを投与した宿主による免疫応答、例えば、宿主による抗体の産生を引き出す。

該免疫原性組成物は注射剤として、または溶液もしくはエマルジョンとして調製し得る。抗原および免疫原性組成物はそれと両立し得る生理学的に許容し得るキャリアと混合してもよい。これらは水、食塩水、デキストロース、グリセロール、エタノール、およびその併用を包含する。該ワクチンはさらにその有効性を高めるために、湿潤剤または乳化剤またはｐＨ緩衝剤などの補助物質をさらに含んでもよい。ワクチンは皮下または筋肉内注射により投与することができる。

別法として、本発明により形成される免疫原性組成物は、粘膜表面に免疫応答を引き出すように製剤化し、送達する。かくして、免疫原性組成物は、例えば、鼻腔または経口（胃内）経路により粘膜表面に投与することができる。別法として、他の投与形態、例えば、坐剤が望ましい。坐剤用の結合剤および担体としては、例えば、ポリアルキレングリコールおよびトリグリセリドを包含する。経口製剤は通常使用される賦形剤、例えば、医薬基準のサッカリン、セルロースおよび炭酸マグネシウムなどを含んでもよい。

これらの組成物は溶液、懸濁液、錠剤、ピル、カプセル、持続放出製剤または粉末の形状をとることが可能であり、本発明の免疫原性組成物を１ないし９５％含有する。

該免疫原性組成物は投与用量製剤と両立し得る様式で、かつ、治療的に有効で、防御的および免疫原的となる量で投与する。投与すべき量は免疫すべき被験者、例えば、抗体を合成し、要すれば、細胞介在免疫応答を生じる被験者の免疫系許容能力に依存する。投与すべき抗原および免疫原性組成物の正確な量は医師の判断による。しかし、適切な容量範囲は当業者が容易に決定し得るものであり、マイクログラムからミリグラムの次数である。適切な最初の投与およびブースター用量の処方は変動可能であるが、最初の投与とそれに引続く投与からなる。ワクチンの投与量も投与経路に依存し、宿主の大きさによって変化する。

本発明による免疫原組成物中の抗原濃度は一般に約１〜９５％である。病原1種のみの抗原性物質を含むワクチンは単価ワクチンである。数種の病原抗原性物質を含むワクチンは混合ワクチンであり、やはり本発明に属する。かかる混合ワクチンは、例えば、種々の病原からの、または同じ病原の種々の株からの物質、または種々病原の組合わせからの物質を含む。

免疫原性は、もし抗原をアジュバントとともに同時に投与するならば有意に改善されるが、アジュバントは一般にリン酸バッファー塩溶液中０．００５ないし０．５％溶液として使用される。アジュバントは抗原の免疫原性を上げるが、必ずしもそれ自体が免疫原性ではない。アジュバントは投与部位の近くに局所的に抗原を維持するように作用し、貯蔵効果を生じて免疫系の細胞にゆっくりと持続的に抗原を放出するのを容易にする。アジュバントはまた免疫系の細胞を抗原貯蔵部位に引き寄せ、かかる細胞を刺激して免疫応答を引き出す。

免疫刺激剤またはアジュバントは、例えば、ワクチンに対する宿主の免疫応答を改善するために何年もの間使用されてきた。内的アジュバント、例えば、リポ多糖類は、通常、ワクチンとして使用される死菌または弱毒化細菌の成分である。外因性アジュバントは一般に抗原に非共有結合的に連鎖した免疫修飾物質であり、宿主の免疫応答を高めるように製剤化される。このようにアジュバントは非経口的に送達された抗原に対し免疫応答を高めることで確認される。しかし、これらアジュバントの一部は毒性であり、望ましくない副作用の原因となって、ヒトおよび多くの動物において使用することを不適とする。実際に、水酸化アルミニウムおよびリン酸アルミニウム（まとめて一般にはアルムという）のみがヒトと家畜のワクチンにおけるアジュバントとして常套的に使用される。ジフテリアおよび破傷風毒素への抗体応答を増強する上でのミョウバンの有効性は十分に確立されており、極く最近ではＨＢｓＡｇワクチンがアルムをアジュバントとしている。アルムの有用性は幾つかの応用について十分に確立されているが、制限もある。例えば、アルムはインフルエンザの予防接種には無効であり、矛盾することではあるが細胞介在免疫応答を引き出す。アルムアジュバントの抗原により引き出された抗体は、マウスにおいては主にＩｇＧ１のイソタイプであるが、ある種ワクチン剤による防御にとっては最適ではない。

広範な外因性アジュバントは抗原に対し強い免疫応答を刺激する。これらは膜タンパク質抗原に複合体形成したサポニン（免疫刺激複合体）、鉱油とのプルロニックポリマー、鉱油中の死菌マイコバクテリウム、フロインド完全アジュバント、細菌産物、例えば、ムラミルジペプチド（ＭＤＰ）およびリポ多糖（ＬＰＳ）、並びに脂質Ａ，およびリポソームなどを包含する。

液性免疫応答（ＭＩＲ）と細胞介在免疫（ＣＭＩ）を効率的に誘導するために、多くの場合、免疫原をアジュバントに乳化する。多くのアジュバントは毒性であり、肉芽、急性および慢性の炎症（フロインド完全アジュバント、ＦＣＡ）、細胞溶解反応（サポニンおよびプルロニックポリマー）および発熱原性、関節炎と前部ブドウ膜炎（ＬＰＳおよびＭＤＰ）を誘発する。ＦＣＡはすぐれたアジュバントであり、広く研究に使用されてはいるが、その毒性の故に、ヒトおよび家畜用ワクチンに使用することは許可されていない。

理想的なアジュバントの望ましい特性は以下のとおりである：
（１）毒性のないこと；
（２）長期間持続する免疫応答を刺激する能力；
（３）製造が簡単であることと長期間の貯蔵に安定であること；
（４）様々な経路で投与された抗原に対しＣＭＩとＨＩＲ両方を引き出す能力；
（５）他のアジュバントとの相乗性；
（６）抗原提示細胞（ＡＰＣ）の個々集団と選択的に相互作用する許容能力；
（７）適切なＴ．１またはＴＨ２細胞特異免疫応答を特異的に引き出す能力；および
（８）抗原に対し適切なイソタイプレベル（例えば、ＩｇＡ）を選択的に増加させる能力。

ロックホフ（Lockhoff）らに１９８９年８月８日付与された米国特許第４，８５５，２８３号（参照により本明細書に取込む）は免疫モジュレーターまたはアジュバントとしての糖脂質類似体、例えば、Ｎ−グリコシルアミド、Ｎ−グリコシル尿素およびＮ−グリコシルカルバミン酸エステルを開示し、そのそれぞれの糖残基がアミノ酸により置換されていることを教示している。このように、ロックホフ（Lockhoff）ら（米国特許第４，８５５，２８３号および文献２９）は、天年産糖脂質、例えば、グリコスフィンゴリピドおよびグリコグリセロリピドなどに構造的類似性を示すＮ−糖脂質が、単純ヘルペスウイルスワクチンおよび仮性狂犬病ウイルス両方に強い免疫応答を引き出し得ることを報告した。ある種の糖脂質は長鎖アルキルアミンと脂肪酸から合成されており、その脂肪酸がアノマー炭素原子を介して糖と直接連鎖して天年産脂質残基の機能を模している。

モロニー（Moloney）に付与され、その譲受人に譲渡された米国特許４，２５８，０２９（参照により本明細書に取込む）は、オクタデシルチロシン塩酸塩（ＯＴＨ）が破傷風毒素とホルマリン不活化Ｉ、IIおよびIII型ポリオウイルスワクチンと複合体形成したとき、アジュバントとして機能することを教示している。また、ニクソン−ジョージ（Nixon-George）ら（文献３０）は、組換えＢ型肝炎表面抗原と複合体形成した芳香族アミノ酸のオクタデシルエステルが、Ｂ型肝炎ウイルスに対する宿主免疫応答性を上昇させると報告した。
イムノアッセイ
一態様において、本発明の接合体は、診断態様によるイムノアッセイにおいて抗原の特異的同定に有用な抗原特異抗体の生成に使用し得る免疫原性組成物の生産に有用である。かかるイムノアッセイは酵素結合抗体免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、ＲＩＡ、およびその他の非酵素結合抗体結合アッセイまたは技術上既知の手法を包含する。ＥＬＩＳＡアッセイにおいては、抗原特異抗体を選択した表面に固定化する; 例えば、ポリスチレンマイクロタイタープレートのウエルなどである。不完全に吸着した抗体を除去するために洗浄した後、試験サンプルに関し抗原的に中性であることの知られているウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）またはカゼイン溶液など非特異タンパク質を選択した表面に結合させるとよい。これは固相表面上の非特異吸着部位の阻止を可能とし、かくして、抗原の表面への非特異的結合に起因するバックグランドを低下させる。次いで、固相化表面をサンプル、例えば、臨床材料または生物材料などと接触させ、免疫複合体（抗原／抗体）形成に導く方法で試験する。この方法はサンプルを希釈剤、例えば、ＢＳＡ、ウシガンマグロブリン（ＢＧＧ）および／またはリン酸緩衝塩溶液（ＰＢＳ）／トゥイーンなどにより希釈することを含む。次いで、サンプルは約２５℃ないし３７℃程度の温度で、約２ないし４時間培養させる。培養に続いて、サンプル接触表面を洗浄し、非免疫複合体形成物質を除去する。洗浄手法は溶液での洗浄、例えば、ＰＢＳ／トゥイーンまたはホウ酸緩衝液などでの洗浄を包含する。

試験サンプル中の抗原と、結合した抗原特異抗体との間の特異免疫複合体形成およびその後の洗浄に続いて、免疫複合体形成の存在およびその量さえも、抗原に特異性を有する第二抗体に免疫複合体を接触させることにより確定することができる。検出手段を備えるためには、第二抗体が酵素活性などと会合した活性、例えば、適切な色原体基質との培養により発色する活性を有してもよい。定量は発色の度合いを、例えば、可視スペクトル分光光度計を用い、測定することにより実施し得る。さらなる態様において、本発明は診断用キットを包含し、該キットは、本発明により製造した免疫原組成物で宿主を免疫し、それによって生成した抗原特異抗体を含んでなる。

本発明の方法論を応用することは、当業者の能力範囲内にあるこが理解される。本発明の産物とその調製および使用方法の例を以下の実施例に開示する。

実施例
上記の開示内容は、本発明を概説したものであり、より詳細については、以下の具体的な実施例を参照することで理解することができる。これらの実施例は、専ら説明を目的として記載されているものであり、本発明の範囲を限定するものではない。状況により臨機応変な措置が示唆または示される場合には、形態の変更や等価物の置き換えが想到される。本明細書では具体的な用語を用いているが、そのような用語は説明のためのものであって、本発明を制限するものではない。本開示内容では、免疫学的方法が明瞭に記載されていない場合があるが、それは当業者であれば理解の及ぶ範囲の内容である。

実施例１
本実施例は、酸加水分解Ｂ群髄膜炎菌（ＧＢＭ）オリゴ糖類の製造を示すものである。

本実施例では、市販のＧＢＭ多糖類（分子量＞１０ｋＤａ）からＧＢＭオリゴ糖類（分子量３０００〜４５００Ｄａ）を製造する方法について説明する。

必要な試薬は、
１−ＧＢＭ多糖類（Sigma、カタログ番号：Ｃ−５７６２）、
２−０．５Ｍ酢酸ナトリウム１容量部と０．２３Ｍ酢酸１容量部とを混合することで製造された酢酸ナトリウム（５０ｍＭ）緩衝液（ｐＨ５．００）、
３−反応管および磁気攪拌子、
４−セファデックス（Sephadex）Ｇ−２５ゲルカラム、
５−重炭酸アンモニウム（２０ｍＭ）
である。

手順：
ＧＢＭ多糖類（２００ｍｇ）を、ｐＨ５．０の脱気５０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液１５ｍＬに溶かし、混合物を８０℃で１時間撹拌した。反応混合物を氷で冷却し、０．１Ｍ ＮａＯＨを滴下することで中和してｐＨ７．０とした。次に、全混合物を凍結乾燥して、粗生成物を得た（４６０ｍｇ、酢酸ナトリウムを含む）。酸処理ＧＢＭ １００ｍｇを最初に２０ｍＭ重炭酸アンモニウム３ｍＬに溶かし、次に、
カラム：（１０×１０００ｍｍ）、デキストラン８８００、β−シクロデキストランおよびショ糖の標準品で較正したもの、
流量：０．６ｍＬ／分、
緩衝液：２０ｍＭ重炭酸アンモニウム、
分画回収：４．５分／試験管
という条件を用いて２０ｍＭ重炭酸アンモニウム溶液で平衡としたセファデックスＧ−２５ゲルカラムに負荷した。

得られた分画について、レゾルシン／硫酸アッセイ（参考文献１２）を用いて、シアル酸の有無を分析した。次に、溶離プロファイルをプロットし、平均分子量４ｋＤａでシアル酸を含有する分画を集め、凍結乾燥した。酸加水分解ＧＢＭの最終生成物を得た。

実施例２
本実施例は、酸加水分解ＧＢＭオリゴ糖類の化学修飾を示すものである。

ジェニングスらの報告に記載された方法（Jennings et al；参考文献６）にいくつか変更を加えた方法に従って、Ｎ−プロピオニル化酸加水分解ＧＢＭオリゴ糖類を製造した。Ｎ−プロピオニル化ＧＢＭオリゴ糖類を最終的に、以下に記載の方法に従って、他のオリゴ糖を有するＭＡＰ骨格に結合させて、多価の複合炭水化物ワクチンを製造した。

必要な試薬は、
１−酸加水分解ＧＢＭオリゴ糖、
２−水酸化ナトリウム（２Ｍ溶液）、
３−無水プロピオン酸（Aldrich）、
４−重炭酸アンモニウム（１０ｍＭ）、
５−シュウ酸水溶液（５０％）、
６−水素化ホウ素ナトリウム（Sigma）であった。

手順：
以下の３点の変更を加え、ジェニングら記載の方法に従って、Ｎ−脱アセチル化酸加水分解Ｂ群髄膜炎菌多糖類を製造した。

１−反応を約１１０〜１２０℃で実施；
２−透析を分子多孔膜（カットオフ分子量１０００）を用いて実施；
３−水酸化ナトリウムの中和を、冷却下に５０％シュウ酸水溶液を用いて行い、１時間にわたって継続。

前記多糖（１００ｍｇ）を、水素化ホウ素ナトリウム（１０ｍｇ）を含む脱気２Ｍ水酸化ナトリウム５ｍＬに溶かした。得られた混合物を約１００〜１２０℃で６〜８時間加熱し、５０％シュウ酸を用いる氷浴でのｐＨ中和とそれに続く透析（１０ｍＭ重炭酸アンモニウムを４回交換、４℃）および凍結乾燥を組み合わせることで生成物を単離して、生成物を得た（６５．２ｍｇ）。この脱アセチル化によって、¹Ｈ ＮＭＲスペクトラムにおけるアセチルのシグナルが完全に消失することで確認される通り、１００％脱アセチル化が達成された。

前段階で調製されたＮ−脱アセチル化ＧＢＭオリゴ糖（５５ｍｇ）を飽和重炭酸ナトリウム（１２ｍＬ）に溶かし、無水プロピオン酸（０．２５０ｍＬ）を３０分間かけて３回に分けて加えた。混合物全体を室温で終夜撹拌した。ニンヒドリン試験を行ったところ、陰性であることが認められ、遊離アミノ基のプロピオンアミド基への完全な変換がなされたことが示された。次に、混合物を蒸留水で透析し（４リットルで３回）、凍結乾燥して、酸加水分解プロピオニル化ＧＢＭオリゴ糖（４３．２ｍｇ）を得た。

実施例３
本実施例は、肺炎連鎖球菌由来のオリゴ糖類の調製を示すものである。

本実施例は、肺炎連鎖球菌の莢膜多糖類（ＣＰ）（分子量約５０ｋＤａ）の酸加水分解を用いて、２．５〜５．０ｋＤａの範囲の分子量を有するオリゴ糖類を製造する一般法について記述する。得られるオリゴ糖類については、キャリア蛋白または多重抗原ペプチド系（ＭＡＰ）に共有結合的に連結した複数のオリゴ糖類を含む糖複合体を調製するため、新規な糖複合体化（glycoconjugation）法を施すことができる。

必要な試薬は、
１−血清型６Ｂ、１４、１９Ｆおよび２３Ｆ由来のＣＰ各種 （ＡＴＴＣ）、
２−酢酸、
３−トリフルオロ酢酸、
４−ゲル・クロマトグラフィー・カラム（セファデックスＧ−１００、１０×１０００ｍｍ）、
５−丸底フラスコ（２５０ｍＬ）、
６−磁気攪拌子、
７−油浴
であった。

手順：
丸底フラスコで、ＣＰ（以下の表４参照）を脱気済温水（６２．５ｍＬ）に溶かし、次に必要量の脱気済酸（以下の表４参照）を加えた。混合物全体をさらに１０分間脱気してから、油浴を用いて必要な期間加熱した（以下の表４参照）。加水分解期間終了後、混合物全体を水で５倍に希釈し、凍結乾燥して、粗生成物を得た。

分子量標準として、次のデキストラン標品（分子量８８００、３９１００、７３５００、５０３０００）、グルコース（１８０）、ショ糖（３４２）および合成ＰＲＰ６量体（２３４０）を用いて、ゲル透過カラム（１０×１０００ｍｍ、セファデックス（登録商標）−Ｇ１００）の較正を行った。セファデックス（登録商標）Ｇ−１００ゲルカラムを用いてオリゴ糖の精製を行い、オリゴ糖を流量０．９ｍＬ／分でミリキュー（Milli-Q）水で溶出した。３分ごとに分画を回収し、フェノール／硫酸を用いて、炭水化物の有無を調べた。分子量２．５〜５ｋＤａのオリゴ糖を含む分画を集め、凍結乾燥した。

実施例４
本実施例は、N. meningiditisのオリゴ糖製造を説明するものである。

肺炎球菌ＣＰの酸加水分解の場合と同様に、N. meningitidisに適用される方法では、酸加水分解、凍結乾燥およびゲル濾過クロマトグラフィーを用いる精製を行う。N. meningococcalのＣ、Ｗ−１３５およびＹ群由来のＣＰの酸加水分解条件も至適化した。

代表的には、アルゴン下、６５〜１００℃の温度で８〜１２時間にわたり、封入管中でＣＰ（１０ｍｇ／ｍＬ）を２０〜８０ｍＭの酢酸ナトリウム（ｐＨ４．５〜５．５）と混合する。Ｂ群のＣＰは酸性条件下では分子内エステル化を起こす場合があることから、加水分解はＣ群のＣＰ加水分解で用いられる条件下で行ったが、インキュベーション時間は１時間に制限し、反応のｐＨを０．１Ｍ ＮａＯＨを用いてただちにｐＨ７に調節して、エステル化プロセスを逆転させた（詳細については、実施例１参照）。Ａ群のＣＰには不安定なホスホジエステル結合があることから、それは温和な酸性条件下（１０〜２０ｍＭ酢酸など）で加水分解し、５０〜１００℃で３０〜４８時間インキュベートした。各加水分解終了後、反応溶液を水で５倍に希釈し、凍結乾燥した。粗オリゴ糖をセファデックス（登録商標）Ｇ−１００ゲル濾過クロマトグラフィー（２×２１０ｃｍ、上記参照）によって分別した。代表的なクロマトグラフィー結果を図４に示してある。得られた分画について、レゾルシン／硫酸アッセイ（参考文献１２）を用いて、シアル酸の有無を分析した。溶離プロファイルをプロットし、２〜５ｋＤａのクロマトグラフィー精製オリゴ糖を集めた。サイズ分離オリゴ糖は代表的には６〜１５個の反復単位を有していた。収率は４０〜８０％であった。

実施例５
本実施例は、キャリア蛋白にランダムに接合した多価オリゴ糖の製造について説明するものである。

本発明の可能な用途を示すため、肺炎連鎖球菌の血清型６Ｂ、１４、１９Ｆおよび２３Ｆのオリゴ糖を、図１に示したように、ランダムかつ共有結合的にＴＴに連結させた。ＴＴ溶液（８ｍｇ／ＰＢＳ １．２ｍＬ）に、４モル過剰の過ヨウ素酸酸化６Ｂ（０．５ｍｇ／ＰＢＳ ０．１ｍＬ）、１４（１．４ｍｇ／０．２ｍＬ）、１９Ｆ（０．６５ｍｇ／０．１２ｍＬ）および２３Ｆ（１ｍｇ／０．２ｍＬ）オリゴ糖を加えた。０．１Ｍ ＮａＯＨ数滴で混合物のｐＨを７．４に調節し、反応液を３７℃で４日間撹拌した。５日目に、１０倍過剰（１００μＬ）のＮａＣＮＢＨ₃（５ｍｇ／ｍＬ）を混合物に加え、３７℃でさらに３日間撹拌した。次に、反応混合物を過剰のＰＢＳで透析して、４℃で３日間にわたって、未反応のオリゴ糖とＮａＣＮ・ＢＨ₃を除去した。得られた糖複合体を、セファデックスＧ１００カラム（１．６×１００ｃｍ）でのゲル濾過クロマトグラフィーによって精製した。溶離プロファイルを図５に示してある。糖複合体を回収した。蛋白および炭水化物の分析を行ったところ、炭水化物の蛋白に対するモル比が７．１：１であることが認められた。多重抗原糖複合体（ＭＡＧ）を、完全フロイントアジュバントまたはアルム（アルミニウム塩類）と製剤した免疫原として用いた。ウサギおよびマウスの免疫原性試験を行った。結果については後述する。

実施例６
本実施例は、ペプチド合成について説明する。

ペプチド（表１）を、ＡＢＩ ４３０Ａペプチド合成装置を用いて合成し、製造業者の説明に従ってｔ−Ｂｏｃ化学を至適化し、フッ酸（ＨＦ）によって樹脂から開裂させた。得られたペプチドを、流量２ｍＬ／分で４０分間かけて１５％から５５％アセトニトリルの０．１％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）溶液で勾配溶離するＶｙｄａｃ Ｃ４半分取カラム（１×３０ｃｍ）での逆相高速液体クロマトグラフィー（ＲＰ−ＨＰＬＣ）によって精製した。生化学試験および免疫試験で使用した合成ペプチドはいずれも、分析ＨＰＬＣで＞９５％の純度のものと判定されたものであった。ウォーターズ（Waters）Ｐｉｃｏ−Ｔａｇシステムで行ったアミノ酸組成分析は、理論組成と良好な一致を示した。

タム（Tam）報告の方法（参考文献２４）の変法に従ってＦｍｏｃ固相ペプチド合成化学を用いて、合成ＭＡＰを手動で製造した。通常は、置換レベル１８０μｍｏｌ／ｇのＦｍｏｃ−Ｌｙｓ（ｔ−Ｂｏｃ）−ＴＧＡ樹脂（５００ｍｇ、BACHEMから購入）を用いてＭＡＰを得た。一般的カップリングプロトコールとして、等量のＨＢＴＵおよびＨＯＢＴ／ＤＩＥＡで１時間にわたって活性化した４倍過剰のＦｍｏｃ保護アミノ酸を用いた。第１のＦｍｏｃ−Ｇｌｙ残基をカップリングさせる際には、オリゴ糖との接合を促進するため、ＭＡＰの置換レベルを約５０μｍｏｌ／ｇまで低下させた。図２に従って合成を行った場合には、エタンジチオール（ＥＤＴ）およびチオアニソール存在下に９５％ＴＦＡによって少量のＭＡＰ樹脂を開裂させ、開裂ＭＡＰのアミノ酸分析を行って、アミノ酸組成を確認した。

実施例７
本実施例は、架橋二官能基を有するオリゴ糖の製造について説明するものである。

過ヨウ素酸酸化オリゴ糖溶液（３ｍｇ／ＰＢＳ１ｍＬ）に、２０モル過剰の１，４−ジアミノブタン（１０．５ｍｇ）を加えた。混合物のｐＨを７．４に調節し、反応液を３７℃で４日間撹拌した。５日目に、過剰の（５００μＬ）ＮａＣＮＢＨ₃（２０ｍｇ／ｍＬ）を混合物に加え、それを３７℃でさらに３日間撹拌した。官能アミノ基で誘導体化したオリゴ糖について、セファデックス（登録商標）Ｇ−５０カラム（１．６×１００ｃｍ）でのゲル濾過クロマトグラフィー精製を行った。

アミノ誘導体化オリゴ糖（４．３ｍｍｏｌ）の０．１Ｍリン酸緩衝液（１ｍＬ）（ｐＨ７．５）溶液に、ｍ−マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシコハク酸イミド（ＭＢＳ、Pierde）（２０ｍｇ、６３．６ｍｍｏｌ）のテトラヒドロフラン（１ｍＬ）溶液を加えた。反応混合物をアルゴン下に室温で３０分間撹拌し、エーテルで抽出して（５ｍＬで４回）、過剰のＭＢＳを除去した。得られた水層を、２０ｍＭ重炭酸アンモニウム緩衝液（ｐＨ７．２）で平衡としたセファデックスＧ−２５カラム（２０×３００ｍｍ）に負荷し、同じ緩衝液で溶出した。溶離を２８０ｎｍでの吸光度によってモニタリングし、溶出ピークのあるものを集め、凍結乾燥して、所望のＭＢＳ活性化オリゴ糖を得た。活性化オリゴ糖−ＭＢＳに過剰の２−メルカプトエタノールを加え、エルマン法（参考文献２５）の変法を用いて過剰量を逆滴定することで、オリゴマーに組み込まれたマレイミド基の数を測定した。

実施例８
本実施例は、直鎖糖蛋白複合体の製造について説明するものである。

置換レベル５０μｍｏｌ／ｇのＦｍｏｃ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ（ｔ−Ｂｏｃ）−ＴＧＡ樹脂（５００ｍｇ）を用いて、表１に示した肺炎連鎖球菌およびN.meningiditis蛋白から誘導したＴ細胞エピトープを有する直鎖ペプチドを得た。標準的なＦｍｏｃ化学カップリング・プロトコールを用いた（実施例６参照）。合成が完了したら、ＥＤＴおよびチオアニソール存在下に９５％ＴＦＡによって少量のペプチド−樹脂を開裂させて、合成の信頼性を明らかにした。ペプチド−樹脂の残りの部分について、最初にピペリジンを用いてＮ−末端で脱保護し、次に塩化メチレン、メタノール、水およびＰＢＳで洗浄した。ＰＮ（１２３−１４０）ペプチド−樹脂を、ＮａＣＮＢＨ₃存在下、メタノール／リン酸緩衝液（ｐＨ７．８）中で、過ヨウ素酸酸化肺炎連鎖球菌血清型１４オリゴ糖（１当量）と３８℃で６日間混合した。接合後、アミノ基置換の程度をニンヒドリンアッセイによって測定し、総糖含有量をオルシノール試験を用いて定量した。ＥＤＴおよびチオアニソール存在下に９５％ＴＦＡで直鎖糖ペプチド−樹脂を開裂させた。後処理後、得られた糖ペプチドについて、アミノ酸組成および炭水化物含有量についてのアッセイを行った。

実施例９
本実施例は、多価ＭＡＰ糖ペプチド複合体の製造について説明するものである。

肺炎連鎖球菌膜蛋白から誘導した３種類の異なるＴ細胞エピトープ［ＰＮ（１２３−１４０）、ＰＮ（２６３−２８１）およびＳＰ３７、表１］を含むＭＡＰ樹脂を、図２に示した置換レベル５０ｍｍｏｌ／ｇのＦｍｏｃ−ＧＬｙ−Ｌｙｓ−ＴＧＡ樹脂を用いて合成した。合成は全て、前述の（実施例６）至適Ｆｍｏｃ化学カップリング・プロトコールを用いて手動で行った。合成が完了した時点で、少量のＭＡＰ−樹脂を、ＥＤＴおよびチオアニソール存在下に、９５％ＴＦＡで開裂させた。開裂ＭＡＰは、アミノ酸分析によって、正しいアミノ酸組成を有することが認められた。ＭＡＰ樹脂をＤＴＴによって還元して、システイン残基からｔ−ブチルチオ保護基を脱離させた。

過剰に洗浄を行った後、ＭＡＰ樹脂をＤＭＦ／ＰＢＳ溶液に再懸濁させ、４倍過剰の肺炎連鎖球菌血清型１４（Ｏｓ１４）からのスルホ−ＳＩＡＢ活性化オリゴ糖と混合した。室温で終夜混合した後、ＭＡＰ樹脂を濾取し、ＰＢＳ、ＤＭＦおよび次にメタノールによって洗浄した。ＭＡＰ−Ｏｓ１４樹脂について、エルマン試験とスルフヒドリル基測定を行った。ＳＨ置換のレベルは、開始時値の１／２であることが認められた。再度のカップリングによっても、ＭＡＰ樹脂に接合したＯｓ１４の量は増加しなかった。Ｏｓ１４で認められる炭水化物である、糖−ＭＡＰ樹脂におけるＮ−アセチルガラクトサミン（ＧｌｃＮＡｃ）の存在を、炭水化物分析によって独立に確認した。

最初にＭＡＰ−Ｏｓ１４を１％ＴＦＡで処理して、Ｍｔｔ−リジン樹脂からＭｔｔ（リジン保護基）を除去し、温和な塩基である１％ジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＥＡ）／ＤＭＦで中和した。ニンヒドリン試験によって遊離アミノ基の存在を定量したところ、Ｍｔｔ基の＞９０％が除去されていることが明らかになった。ＭＡＰ−Ｏｓ１４樹脂をＰＢＳに再懸濁させ、ＮａＣＮＢＨ₃存在下に、ＤＭＦ／リン酸緩衝液（pH７．８）中、４当量の過ヨウ素酸酸化肺炎連鎖球菌血清型６Ｂオリゴ糖（Ｏｓ６Ｂ）と３８℃で６日間混合した。

接合後、アミノ基の置換をニンヒドリン・アッセイによって測定したところ、元の値の８０〜９０％であることが認められた。やはり、２回・３回のカップリングによって、Ｏｓ６ＢのＭＡＰ−Ｏｓ１４樹脂への接合は改善されなかった。カップリング効率は低かったが（約１５％）、Ｏｓ６Ｂで認められる炭水化物であるＭＡＰ複合体中のリビトールの存在が、炭水化物分析によって確認された。

ＭＡＰ−Ｏｓ１４−Ｏｓ６Ｂ複合体を２０％ピペリジンのＤＭＦ溶液で処理して、Ｆｍｏｃ−リジン残基からＦｍｏｃ保護基を除去した。洗浄後、ＭＡＰ−Ｏｓ１４−Ｏｓ６Ｂ樹脂を、ＮａＣＮＢＨ₃存在下、ＤＭＦ／リン酸緩衝液（ｐＨ７．８）中で、４倍過剰の過ヨウ素酸酸化肺炎連鎖球菌血清型１９Ｆオリゴ糖（Ｏｓ１９Ｆ）と３８℃で６日間混合した。接合後、アミノ基置換の程度をニンヒドリンアッセイによって測定したところ、約９０％であることが認められた。そのカップリング反応を繰り返し、それの効率を求めたところ、約１５％であった。しかし、Ｏｓ１９Ｆで認められる糖であるＮ−アセチルマンノース（ＭａｎＮＡｃ）の存在が、炭水化物分析によって検出された。

ＥＤＴおよびチオアニソール存在下に、９５％ＴＦＡで少量のＭＡＰ糖複合体−樹脂を開裂させた。後処理後、ＭＡＰ−糖複合体について、アミノ酸組成と炭水化物含有量を定量し、正しいアミノ酸組成と正しい炭水化物含有量を有することが認められた。全体の収率は非常に低いものではあったが（約５％）、以上の結果は、各種オリゴ糖類を選択的かつ順次にＭＡＰ樹脂に接合させることができることを示している。

実施例１０
この実施例は、天然多糖−ポリリシン接合体の調製を説明する。

過ヨウ素酸ナトリウム水溶液で処理した天然Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅまたはＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｄｉｔｉｓ多糖類から調製された過ヨウ素酸塩酸化多糖類（０．１Ｍリン酸ナトリウム緩衝液１ｍＬ中に２５ｍｇ、ｐＨ６．０）０．５ｍＬを、０．２Ｍリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ８．０）２ｍＬ中のポリリシン（５ｍｇ）に添加し、続いて、シアノホウ水素化ナトリウム（ポリリシンに１０当量）を添加した。３７℃で５日間インキュベーションした後、反応混合物を、０．１Ｍリン酸塩緩衝液（ｐＨ７．５）（４×１Ｌ）で透析し、得られた溶液を、０．２Ｍリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．２）で平衡させた分析用Ｓｕｐｅｒｏｓｅ１２カラム（１５×３００ｍｍ、Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）に適用し、同じ緩衝液で溶離した。２３０ｎｍでの吸収についてフラクションをモニターした。主用ピークを記録した。蛋白質の量を、Ｂｉｏ Ｒａｄ蛋白質アッセイを用いて決めた。多糖類の存在を、オルシノール試験で確認した。

実施例１１
この実施例は、多価オリゴ糖−ＴＴ接合体のマウス免疫原性研究を説明する。

５匹のマウス（ＢＡＬＢ／ｃ）を、フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）中で乳化させた多価オリゴ糖−ＴＴ接合体（オリゴ糖２０μｇ）で筋肉内（ｉｍ）免疫し、続いて、２週間間隔で２回追加投与（不完全フロイントアジュバント中に半分量の同じ免疫原）した。抗血清を集め、５６℃で不活性化し、次に、−２０℃で貯蔵した。結果を図８に示す。

実施例１２
この実施例は、アルム中で調合した多価オリゴ糖−ＴＴ接合体のウサギ免疫原性研究を説明する。

１ｍＬ当たり３ｍｇのＡｌＰＯ₄と混合した多価オリゴ糖−ＴＴ接合体０．５ｍＬ（オリゴ糖当量２０μｇ）で、ウサギを筋肉内免疫し、続いて、２週間間隔で２回追加投与（半分量の同じ免疫原）した。最初の注射から２週間毎に抗血清を集め、５６℃で３０分間不活性化し、−２０℃で貯蔵した。

実施例１３
この実施例は、ＦＣＡ中に調合した多価オリゴ糖−キャリア接合体のウサギ免疫原性研究を説明する。

多価オリゴ糖−ＴＴまたはオリゴ糖−ＭＡＰ接合体（ＦＣＡ１ｍＬと混合したオリゴ糖当量１２μｇを含む接合体）０．５ｍＬで、ウサギを筋肉内免疫し、続いて、２週間間隔で２回追加投与（フロイント不完全アジュバント（ＩＦＡ）を用いて調合した同じ免疫原の半分量）した。最初の注射から２週間毎に抗血清を集め、５６℃で３０分間、熱不活性化し、−２０℃で貯蔵した。

実施例１４
この実施例は、ペプチド特異的ＥＬＩＳＡを説明する。

マイクロタイター・プレートウエル（Ｎｕｎｃ−Ｉｍｍｕｎｏｐｌａｔｅ、ヌンク、デンマーク）に、被覆緩衝液（１５ｍＭ Ｎａ₂ＣＯ₃、３５ｍＭ ＮａＨＣＯ₃、ｐＨ９．６）５０μＬ中の個々のペプチド５００ｎｇで、室温にて１６時間被覆した。次に、プレートを、リン酸塩緩衝塩水（ＰＢＳ）中の０．１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡで、室温にて３０分間ブロックした。系列的に希釈した抗血清をウエルに添加し、室温で１時間インキュベーションした。抗血清の除去後、プレートを、０．１％（ｗ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ−２０と０．１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡを含むＰＢＳで５回洗った。ホースラディッシュペルオキシダーゼ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｓ Ｉｎｃ．，ペンシルベニア州）に接合されたヤギ抗−ウサギＩｇＧ抗体からのＦ（ａｂ’）₂を、洗浄緩衝液で希釈（１／８０００）し、微量滴定プレートに加えた。室温で１時間インキュベーションした後、プレートを、洗浄緩衝液で５回洗った。次に、プレートを、基質としてのＨ₂Ｏ₂中テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）（ＡＤＩ、トロント）を用いて現像した。反応を、１Ｎ Ｈ₂ＳＯ₄で停止し、光学濃度を、Ｔｉｔｒｅｔｅｋ Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ ＩＩ（Ｆｌｏｗ Ｌａｂｓ、バージニア州）を用いて４５０ｎｍで測定した。２つの無関係な百日咳毒素ペプチドＮＡＤ−Ｓ１（残基１９）およびＳ３（１２３〜１５４）（残基３２）を、ペプチド特異的ＥＬＩＳＡ中に陰性対照として含めた。アッセイを３回繰返し、抗血清の反応力価を、免疫前血清を用いて得られたものの２倍の吸収値増加を一貫して示す希釈率により定めた。

実施例１５
この実施例は、抗−多糖抗体測定を説明する。

マイクロタイター・プレートウエル（Ｎｕｎｃ−Ｉｍｍｕｎｏｐｌａｔｅ、ヌンク、デンマーク）に、被覆緩衝液（１５ｍＭ Ｎａ₂ＣＯ₃、３５ｍＭ ＮａＨＣＯ₃、ｐＨ９．６）２００μＬ中のＳ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅまたはＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｄｉｔｉｓ多糖−ポリリシン接合体２００ｎｇで、室温にて１６時間被覆した。次に、プレートを、リン酸塩緩衝塩水（ＰＢＳ）中の０．１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡで、室温にて３０分間ブロックした。ＰＲＰ−キャリア接合体に対して誘起された系列的に希釈した抗血清をウエルに添加し、室温で１時間インキュベーションした。抗血清の除去後、プレートを、０．１％（ｗ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ−２０と０．１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡを含むＰＢＳで５回洗った。ホースラディッシュペルオキシダーゼ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ Ｌａｂｓ Ｉｎｃ．，ペンシルベニア州）に接合されたヤギ抗−ウサギＩｇＧまたは抗−ウサギＩｇＧ抗体からのＦ（ａｂ’）₂を、洗浄緩衝液で希釈（１／８０００）し、マイクロタイター・プレートに加えた。室温で１時間インキュベーションした後、プレートを、洗浄緩衝液で５回洗った。次に、プレートを、Ｈ₂Ｏ₂中の基質テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）（ＡＤＩ、トロント）を用いて現像し、反応を、１Ｎ Ｈ₂ＳＯ₄で停止し、光学濃度を、Ｔｉｔｒｅｔｅｋ Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ ＩＩ（Ｆｌｏｗ Ｌａｂｓ、バージニア州）を用いて４５０ｎｍで測定した。アッセイを３回繰返し、抗血清の反応力価は、免疫前血清を用いて得られたものの２倍の光学濃度値増加を一貫して示す希釈率として定めた。

実施例１６
この実施例は、合成Ｔ細胞エピトープについての増殖アッセイを説明する。

個々のキャリア蛋白質５μｇでＢＡＬＢ／ｃマウスに初回抗原刺激を与えることによりＴ細胞エピトープマッピングを行った。３週間後、膵臓を取り出し、１０％熱不活性化ウシ胎児血清（Ｇｉｂｃｏ）、２ｍＭ Ｌ−グルタミン（Ｆｌｏｗ ｌａｂ）、１００Ｕ／ｍＬペニシリン（Ｆｌｏｗ Ｌａｂ）、１００μｇ／ｍＬストレプトマイシン（Ｆｌｏｗ Ｌａｂ）、１０単位／ｍＬ ｒＩＬ−２および５０μＭ ２−メルカプトエタノール（ｓｉｇｍａ）を加えたＲＰＭＩ１６４０（Ｆｌｏｗ Ｌａｂ）中で膵臓細胞を培養した。一団のペプチドに対する、初回抗原刺激を受けた膵臓細胞の増殖応答を、標準的な生体外アッセイによった検出した（ｒｅｆ．２６）。簡単に説明すると、９６ウエルマイクロタイター・プレートにおいて、１０⁶個の膵臓細胞を、モル濃度を増加させつつ（ＩＬ−２無しの培地中に溶解したペプチド０．０３〜３μＭ）、抗原発現細胞（ＡＰＣ）の供給源としての照射（１７００Ｒａｄ）新鮮同系膵臓細胞５×１０⁵個と共培養した。培地を、３７℃に維持された加湿した５％ＣＯ₂／空気インキュベーターにおいて４０時間維持した。培養の最初の１６時間中、各ウエルに、０．５μＣｉの［³Ｈ］−Ｔｄｒ（５Ｃｉ／ｍｍｏｌ、ＮＥＮ）を添加した。次に、細胞を、ガラス繊維フィルター上に捕獲し、細胞ＤＮＡへの³Ｈチミジンの取り込みを、シンチレーションβカウンター（Ｂｅｃｋｍａｎ）において測定した。結果を、各ペプチド濃度において行った３回の測定の平均として表す。標準偏差は、常に１５％未満であった。³Ｈチミジンの取り込みが、無関係なペプチドまたは培地を用いて得られたものより３倍高い場合に増殖応答は陽性と見なした。

参照文献

開示の要約
本開示の要約として、本発明は、特定の新規多価免疫原性オリゴ糖、およびその調製における新規接合手順、ワクチンとしてのその用途、および診断用途のための抗体を提供する際におけるその利用を提供する。本発明の技術範囲内において、修正は可能である。

ＴＴなどのキャリア蛋白質に任意に抱合した数種の肺炎球菌ＣＰおよび使用した操作の概略図である。 化学的に活性化した肺炎球菌のオリゴ糖を肺炎球菌蛋白質からの数種の機能的Ｔ細胞エピトープを含むリジン枝分かれペプチドに順次架橋結合する概略図である。 化学的に活性化した肺炎球菌のオリゴ糖を肺炎球菌蛋白質からの数種の機能的Ｔ細胞エピトープを含むリジン枝分かれペプチドに順次架橋結合する概略図である。 Ｓｅｐｈａｄｅｘ（登録商標）−Ｇ１００カラムでゲル濾過クロマトグラフィーを使用して、Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ１４の酸加水分解オリゴ糖を精製する間に得られた溶出図である。 Ｓｅｐｈａｄｅｘ（登録商標）−Ｇ１００カラムでゲル濾過クロマトグラフィーを使用して、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓＢ群の酸加水分解オリゴ糖を精製する間に得られた溶出図である。 多価Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅオリゴ糖−ＴＴ抱合体の精製の間に得られた溶出図である。 ＦＣＡ中に調合した多価Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅオリゴ糖−ＴＴ抱合体に対するウサギの抗体応答を示す図である。 明礬中に調合した多価Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅオリゴ糖−ＴＴ抱合体に対するウサギの抗体応答を示す図である。 ＦＣＡ中に調合した多価Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅオリゴ糖−ＴＴ抱合体に対するマウスの抗体応答を示す図である。 ＦＣＡ中に調合した多価Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓオリゴ糖−ＴＴ抱合体に対するウサギの抗体応答を示す図である。 ＦＣＡ中に調合した多価Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅグリコペプチド抱合体に対するウサギの抗体応答を示す図である。 ＦＣＡ中に調合した多価Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅオリゴ糖−ＭＡＰ抱合体に対するウサギの抗体応答を示す図である。

Claims (24)

1. 少なくとも１つのＴ細胞エピトープを含むキャリア分子、および
   各々がそのキャリア分子に結合していると共に、各々が特定の細菌の血清学的に異なる型に由来する、少なくとも二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメント
   を含んでなり、
   前記少なくとも１つのＴ細胞エピトープを含むキャリア分子は、リシン残基を介して分岐状に相互に連結された、複数のキャリア・ペプチド・セグメントを有する、複数の抗原性を具えるペプチドを含んでなり、
   前記複数のキャリア・ペプチド・セグメント中に、前記特定の細菌に由来する、少なくとも１つのＴ細胞エピトープを含有するペプチド断片が含まれ、
   前記少なくとも二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントの各々は、少なくとも１つの機能性Ｂ細胞エピトープを含んでおり、
   該少なくとも二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントの各々は、前記複数のキャリア・ペプチド・セグメント中の異なる一つに対して、部位特異的な糖結合によって連結されており、
   前記キャリア分子が前記少なくとも二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントに高められた免疫原性を付与する
   ことを特徴とする多価免疫原性分子。
2. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、Streptococcus pneumoniaeの血清学的に異なる型に由来する莢膜オリゴ糖フラグメントである
   ことを特徴とする請求項１に記載の多価免疫原性分子。
3. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、S. pneumoniaeの血清型１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆのうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導されている
   ことを特徴とする請求項２に記載の多価免疫原性分子。
4. 前記キャリア分子の複数のキャリア・ペプチド・セグメントの各々は、S. pneumoniae由来のＴ細胞エピトープ含有蛋白質フラグメントを含んでいる
   ことを特徴とする請求項２または３に記載の多価免疫原性分子。
5. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、Neisseria meningitidisの血清学的に異なる型に由来する莢膜オリゴ糖フラグメントである
   ことを特徴とする請求項１に記載の多価免疫原性分子。
6. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、N. meningitidisの群Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｗ−１３５およびＹのうちの少なくとも２つの莢膜オリゴ糖から誘導されている
   ことを特徴とする請求項５に記載の多価免疫原性分子。
7. 前記キャリア分子複数のキャリア・ペプチド・セグメントの各々は、N. meningitidis由来のＴ細胞エピトープ含有蛋白質フラグメントを含んでいる
   ことを特徴とする請求項５または６に記載の多価免疫原性分子。
8. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、２ｋＤａ〜５ｋＤａの大きさである
   ことを特徴とする請求項１−７のいずれか１項に記載の多価免疫原性分子。
9. 髄膜炎に対する保護のための免疫原性組成物であって、
   （１）請求項２、３または４に記載の多種肺炎球菌糖接合体、
   （２）請求項５、６または７に記載の多種髄膜炎菌糖接合体、および
   （３）免疫原性合成ＰＲＰペプチド接合体
   を含んでなり、
   該免疫原性合成ＰＲＰペプチド接合体は、Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ菌ｂ型（Ｈｉｂ）に対する免疫原性を有する
   ことを特徴とする免疫原性組成物。
10. さらに、少なくとも１つのさらなる抗原を含む
    ことを特徴とする請求項９に記載の免疫原性組成物。
11. 前記多種肺炎球菌糖接合体は、請求項３または４に記載の多種肺炎球菌糖接合体であり、
    前記多種髄膜炎菌糖接合体は、請求項６または７に記載の多種髄膜炎菌糖接合体ある
    ことを特徴とする請求項９に記載の免疫原性組成物。
12. サンプル中における請求項１−８のいずれか１項に記載の多価免疫原性分子に対する抗体の存在を検出する診断キットであって、
    （ａ）前記多価免疫原性分子、
    （ｂ）この多価免疫原性分子をサンプルに接触させて、この多価免疫原性分子および、サンプル中に存在する、何れかの前記抗体を含んでなる複合体を形成する手段、および
    （ｃ）複合体の形成を検出する手段
    を含んでなる診断キット。
13. 請求項１−８のいずれか１項に記載の前記免疫原性接合体分子が、請求項９または１１に記載の免疫原性組成物の形態として存在する
    ことを特徴とする請求項１２に記載のキット。
14. サンプル中における多価免疫原性分子の存在を検出する診断キットであって、
    （ａ）請求項１−８のいずれか１項に記載の多価免疫原性分子の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントに特異的な抗体、
    （ｂ）この抗体をサンプルに接触させて、前記多価免疫原性分子の何れかおよびこの抗体を含んでなる複合体を形成する手段、および
    （ｃ）複合体の形成を検出する手段
    を含んでなる診断キット。
15. 前記抗体が、請求項９に記載の免疫原性組成物の要素（１）または（２）に対する抗体である
    ことを特徴とする請求項１４に記載のキット。
16. 請求項１に記載の多価免疫原性分子を形成する方法であって、
    前記少なくとも二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントの各々を、前記複数のキャリア・ペプチド・セグメント中の異なる一つに対して、部位特異的な糖結合によって連結する工程を具え、
    前記部位特異的な糖結合の工程は、
    前記特定の細菌の血清学的に異なる型に由来する、少なくとも二種類の細菌莢膜多糖類を処理して、少なくとも二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントを取得し、
    異なる末端保護基を有する、少なくとも２つのキャリア・ペプチド・セグメントを含む、前記複数のキャリア・ペプチド・セグメントを、リシン残基を介して分岐状に相互に連結して、ポリマーアンカーに固定されている、複数の抗原性を具えるペプチドを形成し、
    前記末端保護基の１つを選択的に除去し、二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントの最初の１つを非保護キャリア・ペプチド・セグメントに結合させ、
    前記末端保護基のもう１つを選択的に除去し、二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントの次の１つを非保護キャリア・ペプチド・セグメントに結合させ、ならびに、
    得られる分子をポリマーアンカーから分離することにより行われ、
    前記複数のキャリア・ペプチド・セグメント中に、前記特定の細菌に由来する、少なくとも１つのＴ細胞エピトープを含有するペプチド断片が含まれ、
    前記少なくとも二種類の細菌莢膜のオリゴ糖フラグメントの各々は、少なくとも１つの機能性Ｂ細胞エピトープを含んでいる
    ことを特徴とする方法。
17. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、２ｋＤａ〜５ｋＤａの大きさに選択される
    ことを特徴とする請求項１６に記載の方法。
18. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、Streptococcus pneumoniaeの血清学的に異なる型に由来する莢膜オリゴ糖フラグメントである
    ことを特徴とする請求項１７に記載の方法。
19. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、S. pneumoniaeの血清型１、４、５、６Ｂ、９Ｖ、１４、１８Ｃ、１９Ｆおよび２３Ｆのうちの少なくとも２つの莢膜多糖類から誘導されている
    ことを特徴とする請求項１８に記載の方法。
20. 前記キャリア分子の複数のペプチド断片の各々は、S. pneumoniae由来のＴ細胞エピトープ含有蛋白質フラグメントを含む
    ことを特徴とする請求項１８または１９に記載の方法。
21. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、Neisseria meningitidisの血清学的に異なる型に由来する莢膜オリゴ糖フラグメントである
    ことを特徴とする請求項１７に記載の方法。
22. 前記少なくとも二種類の細菌莢膜オリゴ糖フラグメントが、N. meningitidisの群Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｗ−１３５およびＹのうちの少なくとも２つの莢膜オリゴ糖から誘導されている
    ことを特徴とする請求項２１に記載の方法。
23. 前記キャリア分子複数のペプチド断片の各々は、N. meningitidis由来のＴ細胞エピトープ含有蛋白質フラグメントを含む
    ことを特徴とする請求項２１または２２に記載の方法。
24. 前記複数の抗原性を具えるペプチドは、少なくとも３つのキャリア・ペプチド・セグメントを有し、
    該少なくとも３つのキャリア・ペプチド・セグメントは、それぞれ、異なるＴ細胞エピトープを含有するペプチド断片を含んでなる
    ことを特徴とする請求項１６に記載の方法。
    

Images