JP3081749B2

JP3081749B2 - 修飾プロテアーゼの製造方法

Info

Publication number: JP3081749B2
Application number: JP05339971A
Authority: JP
Inventors: 博中山; 真一福永; 睦美水野; 和男荻野; 昌勝太田
Original assignee: 鐘紡株式会社
Priority date: 1993-12-06
Filing date: 1993-12-06
Publication date: 2000-08-28
Anticipated expiration: 2015-08-28
Also published as: JPH07155182A

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【産業上の利用分野】本発明は、高度に安定かつ安全化
されており、化粧料、洗浄剤、医薬品用途に好適に利用
される修飾プロテアーゼの製造方法に関する。

【０００２】

【従来の技術】酵素は、洗剤、繊維製品の精練、油脂や
澱粉等の分解、食品加工、医薬品、臨床検査、バイオセ
ンサー、化粧品、更に有用物質の転換・製造など各種の
産業分野に広く用いられている。こうした利用を計る上
での一つの問題点は、酵素の安定性が一般的に低く、そ
の要求に対し満足でない場合が多いことである。即ち、
熱を加えられたり、極端に高いｐＨ条件や逆に低いｐＨ
条件下、界面活性剤や有機溶媒等の混合物の共存下、更
に長期保存によって殆どの酵素は容易に変性して失活す
る。特にプロテアーゼの場合、水分率の高い媒体や水溶
液等の剤形中では変性の他に自己消化分解が起こり、室
温で保存する間に速やかに失活するため安定な商品を供
給することが難しいという問題がある。また、利用され
る酵素は、人体にとって異種起源のものであるため、医
薬品、化粧品、洗剤等に応用する場合、その抗原性や皮
膚感作性、刺激性が問題となる。

【０００３】こうした問題に対処する方法として、酵素
の化学修飾が試みられている。例えば、治療用酵素とし
て用いられるウリカーゼ、アスパラギナーゼ、ストレプ
トキナーゼ等をポリエチレングリコールで修飾し、血中
でのクリアランスや抗原性を改善する方法（特公昭６１
−４２５５８号公報，特開昭５７−１１８７８９号公
報）、スーパーオキシドジスムターゼを多糖類，ポリエ
チレングリコールで修飾し、抗原性抑制や熱安定性向上
を計る方法（特開昭５８−１６６８５号公報）、あるい
はキモトリプシンに分子内架橋を与えるような修飾を施
し、安定化を計る方法（Biochimica et Biophysica Act
a 522 ,277〜283 (1978)，ibd 485, 1〜12(1977)）等が
提案されている。

【０００４】特にプロテアーゼに関しては、基質となる
ものがタンパク質という高分子であり修飾により一般に
活性が大幅に損なわれることに加え、皮膚感作性の抑制
と共に高度の安定化を付与し実用化を図った例は知られ
ていなかったことから、本発明者らは高活性を維持しつ
つ皮膚感作性抑制と水系安定化の双方の目的を同時に達
成する方法を検討した結果、トリアジン環を介して多糖
類で修飾したプロテアーゼ及びその製造法（特開平２−
２１９５７２号公報，特開平４−２７３８８号公報，特
開平４−８８９８２号公報等）を提案し、適切な条件で
プロテアーゼに化学修飾を施すと活性、安定性、安全性
及び水溶性等の物性面で優れた修飾酵素が得られること
を報告している。

【０００５】この修飾プロテアーゼは、デキストラン等
の多糖類の水溶液にアセトン等に溶解した塩化シアヌル
溶液を添加する方法で多糖類の活性化体を調製し、次い
で該活性化多糖類と酵素とを反応させて得られる。修飾
プロテアーゼの熱安定性は、活性化多糖類に対する活性
基導入密度、活性化多糖類と酵素との反応比等により影
響を受けるが、酵素との修飾反応系中に多糖類に未結合
の塩化シアヌル誘導体が多量に共存すると、該塩化シア
ヌル誘導体も活性残基を有するため酵素に結合し、これ
が活性化多糖類による修飾率を低下せしめ酵素の安定性
を損なう。本発明者らが提案した上述の修飾プロテアー
ゼは元来高い安定性をもっているため、安定性がやや低
いものでも用途によっては全く支障なく用いられるもの
であるが、流通上の保管形態が厳密に保証されない化粧
品やトイレタリー、洗剤等への利用については修飾プロ
テアーゼ自体の極めて高い安定性の確保が要求される。
この対策として、従来は、活性化多糖類を酸性化し反応
性を抑えた状態でアセトン等の貧溶媒から粉末状に析出
させ、次いでこれを洗浄して混在する塩化シアヌル誘導
体を除去した後、酵素と反応させる方法が採られてい
る。しかしながら、この方法では大量の溶媒を必要とす
ることから、実生産スケールでの実施に際しては作業が
煩雑であると共にコスト及び危険性等の問題があった。

【０００６】

【発明が解決しようとする課題】本発明者らは上述の事
情を踏まえ、鋭意研究を行った結果、本発明に到達した
ものであって、本発明の目的は、活性化多糖類を固体状
に分離し精製する工程を省略して、全工程の簡素化を計
ると共に、工業生産のためのスケールアップに対しても
対応できる、低コストで安全でかつ安定な、修飾プロテ
アーゼの製造方法を提供するにある。

【０００７】

【課題を解決するための手段】本発明は、多糖類を塩化
シアヌルにより活性化した後、該活性化多糖類とプロテ
アーゼとを反応させて修飾プロテアーゼを製造するに際
し、多糖類に導入されたトリアジン環量を、溶液中に存
在するトリアジン環総量の５０モル％以上として、活性
化多糖類とプロテアーゼとを反応させることを特徴とす
る修飾プロテアーゼの製造方法であり、前述の目的を達
成するものである。

【０００８】本発明に係るプロテアーゼとしては、トリ
プシン、キモトリプシン等の動物由来のプロテアーゼ、
微生物由来のプロテアーゼ等が挙げられる。中でも、バ
チルス族由来のプロテアーゼを用いることが安定性の点
で好ましい。

【０００９】本発明の修飾プロテアーゼ製造方法は、基
本的には本発明者らの提案した上述の特許（特開平２−
２１９５７２号公報，特開平４−２７３８８号公報，特
開平４−８８９８２号公報等）に述べた方法に準じて行
う。すなわち、例えば、まず、多糖類水溶液に塩化シア
ヌルのアセトン溶液を混合し、室温、ｐＨ８〜９で反応
させることにより反応性塩素を０．４〜１．２ｍｍｏｌ
ｅ／ｇ含有する活性化多糖類を合成する。

【００１０】本発明に用いる多糖類としては、アガロー
ス、グアーガム、イヌリン、デンプン、デキストラン、
プルラン、ザンタンガム、カラギーナン、ペクチン、ア
ルギン酸等の天然多糖類及びその誘導体や、ヒドロキシ
プロピルセルロース、メチルセルロース、エチルセルロ
ース、カルボキシメチルセルロース等が挙げられる。中
でも、デキストラン、プルランは、反応操作が容易であ
り、また、得られる修飾プロテアーゼの性能も均一、安
定である点で優れている。また、多糖類の分子量は、安
定性確保に加え、特に皮膚感作性抑制の点から好ましく
は１０，０００以上、より好ましくは４０，０００以上
である。

【００１１】本発明の製造方法においては、上記活性化
多糖類合成後の、下記の方法で算出した多糖類導入トリ
アジン環の、反応溶液中に存在するトリアジン環総量に
対する比率（以下「多糖類への導入率」と記す）を、５
０モル％以上、好ましくは７０モル％以上とすることが
肝要である。これにより、次工程において、反応溶液か
ら活性化多糖類を一旦固体状に分離精製することなしに
活性化多糖類とプロテアーゼとを反応させても、良好な
性能の修飾プロテアーゼを安定して得ることができる。
多糖類に導入されたトリアジン環量が５０モル％未満で
あると、遊離の塩化シアヌル誘導体の酵素に対する反応
率が増大し、活性化多糖類による酵素修飾率の低下を招
くため結果的に酵素安定性が低下する。

【００１２】多糖類への導入率を５０モル％以上とする
方法としては、活性化多糖類製造時の多糖類濃度を上げ
多糖類に対するトリアジン環導入率を高める方法、活性
化多糖類製造後に遊離の塩化シアヌル誘導体を除去する
方法等が挙げられる。

【００１３】多糖類への導入率を５０モル％以上とする
方法としては、活性化多糖類製造時の多糖類濃度を上げ
多糖類に対するトリアジン環導入率を高める方法、活性
化多０類製造後に遊離の塩化シアヌル誘導体を除去する
方法等が挙げられる。

【００１４】まず、前者の方法による場合、多糖類濃度
を４．５重量％以上とすると多糖類への導入率を５０モ
ル％以上とすることができ、合成溶液に直接酵素溶液を
添加して修飾反応を進めることができる。但し、多糖類
濃度を高めた場合、微小ゲル化体が生成し易くなる傾向
にあるが、この除去が必要な用途に対しては該ゲル化体
を濾別して用いることができる。

【００１５】また、活性化多糖類含有反応溶液から遊離
の塩化シアヌル誘導体を除去する方法としては、活性化
反応終了後、直ちに塩酸等を加えてｐＨを２〜４程度と
し活性化多糖類を比較的安定な状態として、限外濾過ま
たは透析により精製を行い、多糖類への導入率を５０モ
ル％以上とする方法が挙げられる。この方法によれば、
該多糖類への導入率を７０％以上とすることも容易であ
る。この実施に当たっては、酸性溶液中であっても室温
下では活性化多糖類の安定性は十分ではないため、精製
操作はできるだけ速やかに行い、酵素との結合反応まで
の時間を短縮することが好ましい。従って、処理量が小
さい場合は限外濾過や透析バッグによる透析等の方法を
採用できるが、処理量が大きい場合はホローファイバー
型の透析チューブを用いる方法が好ましい。

【００１６】本発明で用いられるホローファイバー型の
透析チューブは、材質としてクプロファン、セルロース
アセテート、ポリメチルメタクリレート、ポリアクリロ
ニトリル、ポリスルホン、エチレン−ポリビニルアルコ
ール及びこれらの系列化合物から成るものが挙げられ
る。活性化多糖類は酸性条件下では比較的安定である
が、スケールアップによる処理時間の延長によって若干
失活の起こる場合もあることを考慮すると、こうしたト
ラブルを避けるため、収率面では不利になる場合もある
が精製効果、処理能力には優れる透析チューブを用いる
ことが好ましく、処理効率及び精製効果の点から後述の
方法で評価した場合の透水性が、好ましくは２０ｍｌ／
（ｍｍＨｇ・ｍ²・ｈ）以上、更に好ましくは５０ｍｌ
／（ｍｍＨｇ・ｍ²・ｈ）以上であり、かつ収率の点か
ら血清アルブミンの透過性が好ましくは２％以下、更に
好ましくは１％以下の透析性能をもつものが好適に用い
られる。

【００１７】透水性の評価法：排出口を閉じた透析チュ
ーブ（中空糸内部）に、生理食塩水を３７℃で通液し、
ホローファイバーを透過して透析液側（中空糸外側）に
出てくる液量を計測する。膜間圧を替えて透過液量を求
め、１００ｍｍＨｇ付近の膜間圧に対する透過液量の関
係より、圧力１ｍｍＨｇ、膜面積１ｍ²、１時間当りの
透過液量を算出する。

【００１８】血清アルブミン透過性の評価法：透析チュ
ーブ（中空糸内部）に１％の血清アルブミンを含む生理
食塩水、透析液側（中空糸外側）に生理食塩水を各々充
填する。３７℃で１時間放置後、透析液側に透過したア
ルブミン量を求め、最初に中空糸内側に存在したアルブ
ミン量に対する比率を算出する。

【００１９】また、透析性能は透析チューブ自体の仕様
のほか通液流量、透析液流量、膜間圧、温度等の条件に
影響されるので、各々最適に設定ればよい。例えば、透
析処理による液量増加を抑制し修飾酵素の回収を容易に
すると共に必要な精製効果を得るため、通液流量を１５
０ｍｌ／（ｍｉｎ・ｍ²）以下とし、かつ膜間圧を与え
ることにより透析チューブへの通液量に対する流出量の
比を０．５〜１．２とすることが好ましい。この比が
０．５未満では収率面で不利となる場合があり、逆に、
１．２を超えると精製効果が低下する傾向にある。

【００２０】修飾プロテアーゼの合成は、上述のように
して調製された活性化多糖類含有反応溶液に、直接、プ
ロテアーゼを含む緩衝液を加え、反応させることにより
実施する。但し、この修飾反応に際し、プロテアーゼの
アミノ基量に対する反応性塩素量を２倍以上、かつ酵素
に対し活性化多糖類を重量比で３倍以上とすることが好
ましい。

【００２１】プロテアーゼのアミノ基量の測定法：ハイ
ンズらの方法（Ｈａｙｎｅｓ．Ｒ．ｅｔａｌ．，Ｂｉｏ
ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，６，５４１（１９６７））により
トリニトロベンゼンスルホン酸（ＴＮＢＳ）の反応によ
る発色を用いて測定する。但し、これには用いたプロテ
アーゼに混在する蛋白質等に由来するアミノ基も含む。

【００２２】活性化多糖類中の反応性塩素量の測定：試
料１００ｍｇを水４ｍｌに溶解し、０．５Ｍ−ＮａＨＣ
Ｏ₃を１ｍｌ加えて１００℃，３０分間加熱処理を行
う。７％クロム酸水溶液０．５ｍｌを加え、更に水希釈
した後、０．１Ｎ硝酸銀水溶液で滴定する（Ｖ₁ｍ
ｌ）。対照としてアルカリ分解処理を行わない場合につ
いても滴定を行う（Ｖ₀ｍｌ）。（Ｖ₁−Ｖ₀）の値か
ら相当する塩素量を算出し、反応性塩素量として求め
る。

【００２３】また、活性化多糖類含有反応溶液は透析や
限外濾過により精製した場合でも酸性であるため、ｐＨ
を修飾反応に適した領域に再調整することも有効であ
る。修飾反応終了後はグリシン等を加えて加熱し残存活
性基を失活させて修飾プロテアーゼ溶液を得る。修飾プ
ロテアーゼの精製は、限外濾過や透析により実施する。
特に、上述のホロファイバー型の透析チューブを用いて
精製を行うと、不純物として共存する結合剤及びその誘
導体、分解物、緩衝塩、その他の添加物等を容易に効率
良く除去でき、好適である。

【００２４】

【実施例】（実施例１）６重量％デキストラン水溶液（平均分子量４×１０⁴）
２５ lに、室温下、ｐＨを７．５〜９．５に保ちながら
塩化シアヌルを４．５％含有するアセトン溶液７．５ l
を添加し、活性化デキストランを合成した。この溶液に
ついてデキストランに導入されたトリアジン環の、溶液
中に存在するトリアジン環総量に対する比率を測定した
ところ５７モル％であった。この溶液にほう酸２００ｇ
を加え、次いで好アルカリ性のバチルス属菌由来のプロ
テアーゼ（ノボ・ノルディスク社製，エスペラーゼ^TM）
１５０ｇを加えた後１Ｎ−ＮａＯＨによりｐＨを９．０
に調整した。２５℃で２０時間反応させた後、グリシン
２５０ｇを添加し、ｐＨを８〜９に保ちながら更に６０
℃で３５時間加熱処理を施し、デキストランによるプロ
テアーゼ修飾を行った。該修飾酵素溶液５００ｍｌにつ
いて分画分子量１万の限外濾過膜を用いて限外濾過精製
した後、溶媒を減圧溜去し粉末状として採取した。得ら
れた修飾プロテアーゼは皮膚感作性が全く認められず、
また保存安定性についても、０．１Ｍ−りん酸緩衝液
（ｐＨ７．０）中、４０℃、６カ月経過後も残存活性９
４％と良好な結果を示した。

【００２５】（実施例２）４．５重量％デキストラン水溶液（平均分子量４×１０
⁴）２５ｍｌに、室温下、ｐＨを７．５〜９．５に保ち
ながら塩化シアヌルを４．５％含有するアセトン溶液５
ｍｌを添加し、活性化デキストランを合成した。この溶
液についてデキストランに導入されたトリアジン環の、
溶液中に存在するトリアジン環総量に対する比率を測定
したところ５３モル％であった。この溶液をクプロファ
ン製の透析チューブに入れ、５ l蒸留水に対して１．５
時間ずつ２回透析した結果、同トリアジン環比は７３モ
ル％となった。該溶液に好アルカリ性のバチルス属菌由
来のプロテアーゼ（ノボ・ノルディスク社製，エスペラ
ーゼ^TM）０．１ｇを含む０．４Ｍ−ほう酸緩衝液（ｐＨ
９．１）５ｍｌを加え、２３℃で２０時間反応させた
後、グリシン０．２ｇを添加し、ｐＨを８．５に調整し
て更に６０℃で３５時間加熱処理を施し、デキストラン
によるプロテアーゼ修飾を行った。該修飾酵素溶液を分
画分子量１万の限外濾過膜を用いて限外濾過精製した
後、溶媒を減圧溜去し粉末状として採取した。得られた
修飾プロテアーゼは皮膚感作性が全く認められず、また
保存安定性についても０．１Ｍ−りん酸緩衝液（ｐＨ
７．０）中、４０℃、６カ月経過後も残存活性９５％と
良好な結果を示した。

【００２６】（実施例３）４重量％デキストラン水溶液（平均分子量４×１０⁴）
５０ lに、室温下、ｐＨを８〜９．５に保ちながら塩化
シアヌルを４％含有するアセトン溶液５ lを添加し、活
性化デキストランを合成した。この溶液についてデキス
トランに導入されたトリアジン環の、溶液中に存在する
トリアジン環総量に対する比率を測定したところ４８モ
ル％であった。反応終了後の活性化デキストラン水溶液
をポリスルホン製のダイアライザー（（株）クラレ製，
ＰＳ−１．６ＵＷ，膜面積１．６ｍ²）により透析精製
した。処理条件として、透析液（イオン交換水を使用）
流量１．５ l／ｍｉｎ，反応液の通液流量１５０ｍｌ／
ｍｉｎ，排出流量（流出量）１００ｍｌ／ｍｉｎで実施
した。該処理溶液の同比率を測定したところ８５モル％
であった。該溶液（約３４ l）に好アルカリ性のバチル
ス属菌由来のプロテアーゼ（ノボ・ノルディスク社製，
エスペラーゼ^TM）１７０ｇを含む０．５Ｍ−ほう酸緩衝
液（ｐＨ９．１）８．５ lを加え、２５℃で１８時間反
応させた後、グリシン３００ｇを添加し、ｐＨを８．５
に調整して更に６０℃で３０時間加熱処理を施し、デキ
ストランによるプロテアーゼ修飾を行った。該修飾酵素
溶液を上述のダイアライザーを用いて再度精製した。こ
の処理条件は、透析液（イオン交換水を使用）流量１ l
／ｍｉｎ，反応液の通液流量８５ｍｌ／ｍｉｎ，排出流
量５３ｍｌ／ｍｉｎで実施した。なお、本実施例で使用
したダイアライザーの透水性は１０５ｍｌ／（ｍｍＨｇ
・ｍ²・ｈ）、血清アルブミンの透過性は０．６％であ
った。得られた修飾プロテアーゼは皮膚感作性が全く認
められず、また保存安定性についても０．１Ｍ−りん酸
緩衝液（ｐＨ７．０）中、４０℃、６カ月経過後も残存
活性９６％と良好な結果を示した。また、本実施例は、
修飾酵素の精製をホローファイバー型の透析チューブを
用いて行なったので、実施例１、２に比して不純物の除
去をより良好にかつ効率よく行うことができた。

【００２７】

【実施例３】４重量％デキストラン水溶液（平均分子量
４×１０4 ）５０ lに、室温下、ｐＨを８〜９．５に保
ちながら塩化シアヌルを４％含有するアセトン溶液５ l
を添加し、活性化デキストランを合成した。この溶液に
ついてデキストランに導入されたトリアジン環の、溶液
中に存在するトリアジン環総量に対する比率を測定した
ところ４８モル％であった。反応終了後の活性化デキス
トラン水溶液をポリスルホン製のダイアライザー
（（株）クラレ製，ＰＳ−１．６ＵＷ，膜面積１．６ｍ
²）により透析精製した。処理条件として、透析液（イ
オン交換水を使用）流量１．５ l／ｍｉｎ，反応液の通
液流量１５０ｍｌ／ｍｉｎ，排出流量（流出量）１００
ｍｌ／ｍｉｎで実施した。該処理溶液の同比率を測定し
たところ８５モル％であった。該溶液（約３４ l）に好
アルカリ性のバチルス属菌由来のプロテアーゼ（ノボ・
ノルディスク社製，エスペラーゼ^TM）１７０ｇを含む
０．５Ｍ−ほう酸緩衝液（ｐＨ９．１）８．５ lを加
え、２５℃で１８時間反応させた後、グリシン３００ｇ
を添加し、ｐＨを８．５に調整して更に６０℃で３０時
間加熱処理を施し、デキストランによるプロテアーゼ修
飾を行った。該修飾酵素溶液を上述のダイアライザーを
用いて再度精製した。この処理条件は、透析液（イオン
交換水を使用）流量１ l／ｍｉｎ，反応液の通液流量８
５ｍｌ／ｍｉｎ，排出流量５３ｍｌ／ｍｉｎで実施し
た。なお、本実施例で使用したダイアライザーの透水性
は１０５ｍｌ／（ｍｍＨｇ・ｍ²・ｈ）、血清アルブミ
ンの透過性は０．６％であった。得られた修飾プロテア
ーゼは皮膚感作性が全く認められず、また保存安定性に
ついても０．１Ｍ−りん酸緩衝液（ｐＨ７．０）中、４
０℃、６カ月経過後も残存活性９６％と良好な結果を示
した。また、本実施例は、修飾酵素の精製をホローファ
イバー型の透析チューブを用いて行なったので、実施例
１、２に比して不純物の除去をより良好にかつ効率よく
行うことができた。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献特開平２−219572（ＪＰ，Ａ) 特開平４−88982（ＪＰ，Ａ) 特開平１−250304（ＪＰ，Ａ) (58)調査した分野(Int.Cl.⁷，ＤＢ名) C12N 9/00 - 9/99 A61K 7/00 - 48/00 C11D 3/00 - 3/60 ＢＩＯＳＩＳ（ＤＩＡＬＯＧ) ＷＰＩ（ＤＩＡＬＯＧ)

Claims

(57)【特許請求の範囲】

【請求項１】多糖類を塩化シアヌルにより活性化した
後、該活性化多糖類とプロテアーゼとを反応させて修飾
プロテアーゼを製造するに際し、多糖類に導入されたト
リアジン環量を、反応溶液中に存在するトリアジン環総
量の５０モル％以上として、活性化多糖類とプロテアー
ゼとを反応させることを特徴とする修飾プロテアーゼの
製造方法。
【請求項２】活性化多糖類を合成した後、反応溶液を
酸性化し、限外濾過または透析により未反応の塩化シア
ヌルを除去して、多糖類に導入されたトリアジン環量
を、反応溶液中に存在するトリアジン環総量の５０モル
％以上とする請求項１の修飾プロテアーゼの製造方法。