JP2023510232A - ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格の再生医学における用途 - Google Patents

Abstract

ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格の、幹細胞の増殖の促進、幹細胞の成長の促進、幹細胞の分化の促進、幹細胞の遊走の促進、幹細胞の生存率の向上における用途を提供し、幹細胞は、成体幹細胞、ｉＰＳＣ、間葉系幹細胞から選択される。

Description

本願は、２０２０年１月２１日に提出した中国特許出願（出願番号ＣＮ２０２０１００６８２４９．１）の優先権の利益を主張するものである。

本願は、再生医学に関する。具体的には、ロドコッカス・ルーバー（特に細胞壁骨格）の、幹細胞の増殖及び分化の促進における用途に関する。

幹細胞は、自己複製能及び多系列分化能を有する始原細胞である。特定の条件下で、増殖し、かつ異なる機能細胞に指向性分化することができる。したがって、幹細胞の研究は、生命体の各組織及び器官の更新及び損傷修復に対して、非常に重要な役割を果たし、多くの治癒できない疾患、特に細胞及び組織の欠失又は損傷による疾患の治療の希望となる。

幹細胞は、胚性幹細胞及び成体幹細胞を含む。胚性幹細胞は、倫理的問題のため、その応用が大幅に限定され、成体幹細胞は、機能細胞及び組織に分化できるため、幹細胞の広い応用に基礎を提供し、多くの疾患の細胞置換療法に新たな細胞供給源を提供する。したがって、成体幹細胞は、研究の重点となっている。

しかしながら、正常な成体哺乳動物の幹細胞は、数が少なく、分化が様々な固有メカニズム及び微環境要因による影響を受け、インビトロでの長期間の大量培養、特に無血清増殖培養が困難であり、実際の治療に応用することができない。

多くの疾患は、機能細胞の欠失又は損傷に起因することができ、細胞置換療法は、これらの疾患を治療する効果的な方法である。幹細胞医薬は、生体内の幹細胞の増殖及び分化を調節することにより、細胞の欠失又は損傷による疾患を予防治療することができる。幹細胞医薬を用いて幹細胞の増殖及び指向性分化能を調節することにより、損傷した機能細胞を再生し、その生物学的機能を回復させる。

脂肪間葉系幹細胞（Ａｄ－ＭＳＣ）は、脂肪組織マトリックスから派生された成体幹細胞であり、非常に高い自己複製能を有し、様々なタイプの機能細胞に分化することができる。Ａｄ－ＭＳＣが幹細胞に基づく慢性創傷治療において大きな潜在力を有することが証明された証拠は存在する。しかしながら、潜在細胞療法におけるＡｄ－ＭＳＣの成功的な応用に対する１つの重大な障害は、移植後の細胞の生存率である。細胞を損傷された皮膚組織に移植する場合、それらが酸素欠乏、炎症、酸化ストレス又は他の不利な条件を経験するため、移植後の種細胞の生存率が不可避に低下し、Ａｄ－ＭＳＣの治療効果が妨害される。

ロドコッカス・ルーバー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｒｕｂｅｒ）は、グラム陽性菌である。一般的にコロニーが円形で、黄みの橙色又は赤みの橙色を呈し、コロニーのサイズは、約１ｍｍ～２ｍｍであり、細胞の形態は、球状又は短桿状であり、一次分枝した菌糸体を形成することができ、鞭毛はない。ロドコッカス・ルーバーは、好気性であり、従属栄養性である。

現在、研究者によりロドコッカス・ルーバーの全ゲノム配列決定が行われている。例えば、樊欣らによりロドコッカス・ルーバーＳＤ３株の全ゲノムの配列決定が行われ、生物情報学的分析が行われた。ＳＤ３株は、全ゲノムの長さが約５．３７Ｍｂであり、ＧＣ含有量が約７０．６３％であり、ＧｅｎＢａｎｋ登録番号がＣＰ０２９１４６である（樊欣、ロドコッカス・ルーバーＳＤ３の全ゲノム配列決定及びその熱ショックタンパク質ＤｎａＫの発現の分析、ゲノム学と応用生物学、２０１９年１月）。

ロドコッカス属（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）は、自体が非常に強い有機物耐性及び広い分解スペクトルを有するため、様々な生存環境に適応することができる。したがって、ロドコッカス属は、汚染の修復、有機化合物の分解、汚水の処理などの分野に広く応用される。現在、ロドコッカス・ルーバーは、主に環境整備の分野に応用され、ＣＮ１０８８６２５９０Ａ、ＣＮ１０７１５１６３５Ａ、ＣＮ１０２２５０７９６Ａ、ＣＮ１５１９３１２Ａ、ＣＮ１０３６２７６５３Ａ、ＣＮ１０１０３３４５４Ａ、ＣＮ１０８１３０２８８Ａ、ＣＮ１０４８３０７３８Ａ、ＣＮ１０１６１９２９９Ａ、ＣＮ１０３５０９８３３Ａ、ＣＮ１０６４３４４６６Ａ、ＣＮ１０１５８０８０８Ａ、ＣＮ１０２６０４８７５Ａ、ＣＮ１０３１６０４９１Ａ、ＣＮ１０６５９１１６８Ａ、ＣＮ１０６５９１１７２Ａ、ＣＮ１０５８２０９８２Ａを参照されたい。

ＣＮ１０９５７６１８０Ａには広州市番禺区付近の郊外の赤土からスクリーニングした菌ＲＤＣ－０１が開示されており、１６Ｓ ｒＲＮＡ遺伝子配列分析及び培養特性同定により、該菌株がロドコッカス・ルーバーであると同定された。該菌を不活化した後に、免疫アジュバントとして動物用の不活化ワクチンに添加すると、動物の抗体の産生を促進できることが示された。しかしながら、ロドコッカス・ルーバーをヒトの医学分野に応用するという報告はまだない。

したがって、成体幹細胞の増殖及び分化を特異的に調節する活性成分を見つけることは、幹細胞医薬の研究ホットスポットである。

中国特許出願公開第１０８８６２５９０号明細書 中国特許出願公開第１０７１５１６３５号明細書 中国特許出願公開第１０２２５０７９６号明細書 中国特許出願公開第１５１９３１２号明細書 中国特許出願公開第１０３６２７６５３号明細書 中国特許出願公開第１０１０３３４５４号明細書 中国特許出願公開第１０８１３０２８８号明細書 中国特許出願公開第１０４８３０７３８号明細書 中国特許出願公開第１０１６１９２９９号明細書 中国特許出願公開第１０３５０９８３３号明細書 中国特許出願公開第１０６４３４４６６号明細書 中国特許出願公開第１０１５８０８０８号明細書 中国特許出願公開第１０２６０４８７５号明細書 中国特許出願公開第１０３１６０４９１号明細書 中国特許出願公開第１０６５９１１６８号明細書 中国特許出願公開第１０６５９１１７２号明細書 中国特許出願公開第１０５８２０９８２号明細書 中国特許出願公開第１０９５７６１８０号明細書 中国特許出願公開第１０１２５０４９０号明細書 中国特許出願公開第１０１３２３８６５号明細書

Ｒａｔｈｕｒ ＨＭら著、「Ｔｈｅ ｄｉａｂｅｔｉｃ ｆｏｏｔ」．ＣｌｉｎＤｅｒｍａｔｏｌ．２００７、２５（１）：１０９－１２０ Ｇｕｏ ＷＹら著、「Ａｃｃｅｌｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｄｉａｂｅｔｉｃ ｗｏｏｄ ｈｅａｌｉｎｇ ｂｙ ｌｏｗ－ｄｏｓｅ ｒａｄｉａｔｉｏｎ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ」．Ｒａｄｉａｔ Ｒｅｓ．２０１０、１７４（４）：４６７－４７９ Ｆｉｏｒｉｎａ Ｐら著、「Ｔｈｅ ｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌｓ ｄｉａｂｅｔｉｃ ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ」．Ｃｅｌｌ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ．２０１０、１９（１１）：１３６９－１３８１ Ｋａｔｏ Ｙら著、「Ｃｒｅａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ｏｆ ａｎ ａｄｉｐｏｓｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ（ＡＳＣ）ｓｈｅｅｔｉｎ ａ ｄｉａｂｅｔｉｃ ｗｏｕｎｄ－ｈｅａｌｉｎｇ ｍｏｄｅｌ」．Ｊｏｖｅ－Ｊ Ｖｉｓ Ｅｘｐ．２０１７、１２（６）：１－１０ Ｒｅｈｍａｎ Ｊら著、「Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ ｏｆ ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ ａｎｄ ａｎｔｉ－ａｐｏｐｔｏｔｉｃ ｆａｃｔｏｒｓ ｂｙ ｈｕｍａｎ ａｄｉｐｏｓｅ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌｓ」．Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ．２００４、１０９：１２９２－８ Ｅｂｒａｈｉｍｉａｎ ＴＧら著、「Ｃｅｌｌ ｔｈｅｒａｐｙ ｂａｓｅｄ ｏｎ ａｄｉｐｏｓｅ ｔｉｓｓｕｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌｓ ｐｒｏｍｏｔｅｓ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ」．Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒ Ｔｈｒｏｍｂ Ｖａｓｃ Ｂｉｏｌ．２００９、２９（４）：５０３－５１０ Ｋｉｍ ＷＳら著、「Ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ａｄｉｐｏｓｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ：ａ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｒｏｌｅ ｏｆ ｓｅｃｒｅｔｏｒｙ ｆａｃｔｏｒｓ ｏｎ ｈｕｍａｎ ｄｅｒｍａｌ ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ」．Ｊ Ｄｅｒｍａｔｏｌ Ｓｃｉ．２００７、４８：１５－２４ Ｕｎｎｉｋｒｉｓｈｎａｎ Ｓら著、「Ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ ｏｆ ｆｉｂｒｉｎ－ｂａｓｅｄ ｎｉｃｈｅ ｆｏｒ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｏｆ ａｄｉｐｏｓｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ ｔｏ ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅｓ」．Ｂｉｏｒｅｓ Ｏｐｅｎ Ａｃｃｅｓｓ．２０１４、３（６）：３３９－３４７ Ｌｉ Ｑら著、「Ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ－１ｐｒｏｍｏｔｅｓ ｈｕｍａｎ ａｄｉｐｏｓｅ ｔｉｓｓｕｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ ｓｕｒｖｉｖａｌ ａｎｄ ｃｈｒｏｎｉｃ ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ」．Ｅｘｐ Ｔｈｅｒ Ｍｅｄ．２０１６、１２：４５－５０

本願は、幹細胞を調節するための活性成分及びその応用を提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、単離されたロドコッカス・ルーバー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｒｕｂｅｒ）を提供する。

本開示のいくつかの具体的な実施形態において、２０１９年３月２２日に中国微生物菌種保存管理委員会普通微生物センター（Ｃｈｉｎａ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ Ｃｅｎｔｅｒ、北京市朝陽区北辰西路１号院３号、中国科学院微生物研究所、郵便番号：１００１０１）に寄託した、寄託番号ＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１７４３１のロドコッカス・ルーバーを提供する。該寄託は、「特許手続上の微生物の寄託の国際承認に関するブダペスト条約（Ｂｕｄａｐｅｓｔ Ｔｒｅａｔｙ ｏｎ ｔｈｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｄｅｐｏｓｉｔ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｐｕｒｐｏｓｅｓ ｏｆ Ｐａｔｅｎｔ Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ）」の規定を満たす。

本開示のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバー及びその派生製品を提供する。前記派生製品は、ロドコッカス・ルーバー由来で、ロドコッカス・ルーバーの組成成分（例えば、タンパク質、核酸、脂質、細胞壁及びその組成成分、炭水化物、代謝物）を含む。

具体的な実施形態において、単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁を提供する。

具体的な実施形態において、単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁を提供し、前記ロドコッカス・ルーバーは、寄託番号がＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１７４３１の株のことを指す。

具体的な実施形態において、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を提供する。

具体的な実施形態において、単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を提供する。

具体的な実施形態において、単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を提供し、前記ロドコッカス・ルーバーは、寄託番号がＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１７４３１の株のことを指す。

本開示のいくつかの実施形態において、本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁又はロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を含む医薬組成物を提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバーを粉砕して得られた生成物を含む、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を提供する。

本開示の別のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバーを粉砕してから精製（脂質除去、核酸除去、タンパク質除去）して得られた生成物を含む、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を提供する。

本開示の別のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁を含む、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を提供する。

本開示の別のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を含む、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を含む医薬組成物又は医療装置を提供する。

本開示の別のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバーを粉砕してから精製（脂質除去、及び／又は核酸除去、及び／又はタンパク質除去）して得られた生成物を含む医薬組成物又は医療装置を提供する。

本開示の別のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁を含む医薬組成物又は医療装置を提供する。

本開示の別のいくつかの実施形態において、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を含む医薬組成物又は医療装置を提供する。

本開示の別のいくつかの実施形態において、上記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を含む医薬組成物又は医療装置を提供する。

具体的な実施形態において、医薬組成物は、薬学的に許容される賦形剤をさらに含む。

いくつかの実施形態において、医薬組成物中の前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物は、１重量部であり、薬学的に許容される賦形剤は、５０～５０００重量部（例えば、５０、１００、２００、２１０、２２０、２３０、２４０、２５０、２６０、２７０、２８０、２９０、３００、５００、６００、７００、１０００、１５００、２０００、２５００、３０００、３５００、４０００、４５００、５０００及び任意の２つの数値の間の任意の値）である。

別のいくつかの実施形態において、医薬組成物中のロドコッカス・ルーバーの細胞壁は、１重量部であり、前記薬学的に許容される賦形剤は、５０～５０００重量部（例えば、５０、１００、２００、２１０、２２０、２３０、２４０、２５０、２６０、２７０、２８０、２９０、３００、５００、６００、７００、１０００、１５００、２０００、２５００、３０００、３５００、４０００、４５００、５０００及び任意の２つの数値の間の任意の値）である。

さらにいくつかの実施形態において、医薬組成物中のロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格は、１重量部であり、前記薬学的に許容される賦形剤は、５０～５０００重量部（例えば、５０、１００、２００、２１０、２２０、２３０、２４０、２５０、２６０、２７０、２８０、２９０、３００、５００、６００、７００、１０００、１５００、２０００、２５００、３０００、３５００、４０００、４５００、５０００及び任意の２つの数値の間の任意の値）である。

いくつかの実施形態において、医薬組成物は、液体（液体製剤）として製造されてもよい。

別のいくつかの実施形態において、医薬組成物は、固体（乾燥粉末製剤又は凍結乾燥粉末製剤）として製造されてもよい。

当業者は、本開示の医薬組成物について、液体製剤及び乾燥粉末製剤（又は凍結乾燥粉末製剤）のどちらも相互に変換でき、含水量のみで相違するということを理解することができる。液体製剤中のほとんど又は全ての水を除去して、乾燥粉末製剤（又は凍結乾燥粉末製剤）を得る。乾燥粉末製剤（又は凍結乾燥粉末製剤）を溶解（又は再溶解）させた後に、液体製剤を得る。

いくつかの実施形態において、医薬又は医薬組成物は、膏剤、クリーム剤、乳液、懸濁剤、ペースト剤、ゲル剤、洗浄剤、チンキ剤、オイル剤、錠剤、エアロゾル剤、噴霧剤、リニメント剤、粉剤から選択される剤形として製造され、前記膏剤は、軟膏剤、硬膏剤、クリーム剤から選択される。

いくつかの実施形態において、薬学的に許容される賦形剤は、充填剤、安定剤、矯味剤、崩壊剤、接着剤、潤滑剤であるが、これらに限定されない。

いくつかの実施形態において、前記薬学的に許容される賦形剤には、例えば、デキストラン、ラクトース、微結晶性セルロース、トレハロース、グリシン、キシリトール、カルボキシメチルセルロースナトリウム、エリスリトール、ゼラチン、ステアリン酸マグネシウム、噴射剤、保湿剤、溶媒、可溶化剤、乳化剤、酸化防止剤、ｐＨ調整剤、防腐剤であるが、これらに限定されない。具体的には、非限定的な例は、白色ワセリン、カルボマー、ヒプロメロース、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、キトサン、スクラルファートキトサン、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ヒアルロン酸ナトリウム、ジメチルエーテル、テトラフルオロエタン、ヒドロフルオロアルカン、グリセロール、プロピレングリコール、脱イオン水、注射用水、蒸留水、エタノール、セタノール、ステアリルアルコール、ｐ－アミノ安息香酸、アセトアミド、イソプロパノール、トゥイーン、ポリオキシエチレン水素化ヒマシ油、ステアリン酸、モノステアリン酸グリセリル、モノステアリン酸トリグリセロール、ショ糖脂肪酸エステル、ショ糖エステル、ショ糖酢酸イソ酪酸エステル、ソルビタントリステアレート、ミリスチン酸イソプロピル、コレステロール、スクアレン、スクアラン、ｎ－ブタノール、エチレングリコール、エタノール、プロピレングリコール、ポリグリセロールエステル、亜硫酸塩、システイン酸、ジ－ｔｅｒｔ－ブチルヒドロキシトルエン、ソルビン酸カリウム、リン酸緩衝液、トリエタノールアミン、水酸化ナトリウム、エチレンジアミン、ラウリルアミン、重炭酸ナトリウム、塩酸、パラベン類、チメロサール、クロロクレゾール、クロロブタノール、安息香酸及びそのナトリウム塩をさらに含む。

本開示のいくつかの実施形態において、
１）ロドコッカス・ルーバーを用意するステップと、
２）必要に応じて、前記ロドコッカス・ルーバーを培養するステップと、
３）必要に応じて、培養したロドコッカス・ルーバーを収集するステップと、
４）培養した前記ロドコッカス・ルーバーを粉砕して、粉砕生成物を得るステップと、
５．１）必要に応じて、前記粉砕生成物に対して脂質除去操作を行うステップと、
５．２）必要に応じて、前記粉砕生成物に対して核酸除去操作を行うステップと、
５．３）必要に応じて、前記粉砕生成物に対してタンパク質除去操作を行うステップと、
５．４）精製生成物を得るステップと、
６）必要に応じて、前記精製生成物中の水を除去し、好ましくは凍結乾燥により前記精製生成物中の水を除去するステップと、
７）必要に応じて、個包装するステップと、
８）前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を得るステップと、を含むか又はそれらのステップで構成される、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の製造方法を提供する。

ステップ５．１）、５．２）、５．３）は、順序を入れ替えてもよく、同時に行ってもよく、ステップ６）とステップ７）は順序を入れ替えてもよい。

必要に応じて、ステップ５）は、（例えば非イオン性界面活性剤で）細胞膜を除去するステップを含んでもよい。

ロドコッカス・ルーバーの培養は、具体的な培地及び培養パラメータに限定されなく、当業者は、公知の適切な方式で培養を行うことができ、製造規模に応じてシャーレ、培養フラスコ、発酵タンクを用いることができる。

ロドコッカス・ルーバーの粉砕の目的は、細胞内の物質を除去することであるため、超音波破砕、リゾチームなどの技術を用いることができる。当業者は、グラム陽性菌を破砕することに適用される任意の既知又は将来的な方法のどれを用いても、本開示の技術的解決手段に適用するということを理解できる。

当業者は、活性成分（細胞壁及びその組成成分）の後続の投与（例えば内服、注射、外用など）に応じて、培養、破砕、単離、収集、不純物除去、個包装の具体的なパラメータ及び機器を調整することで、後続の投与に影響を与える要因が製造ステップに導入されないようにする能力がある。

いくつかの実施形態において、破砕した生成物中の脂質を有機溶媒で除去する。いくつかの実施形態において、破砕した生成物中のＤＮＡ及びＲＮＡをヌクレアーゼで除去する。いくつかの実施形態において、破砕した生成物中のタンパク質をヒドロラーゼで分解する。いくつかの実施形態において、破砕した生成物中の細胞膜を界面活性剤で除去する。

いくつかの実施形態において、粉砕後の平均粒径は、１０ｎｍ～１０００ｎｍであり、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１１０、１２０、１３０、１４０、１５０、１６０、１７０、１８０、１９０ｎｍ±１０ｎｍ及び上記任意の２つの数値の間の範囲であってもよい。粒径の測定方法は多数ある（胡松青ら、現代の粒径測定技術、現代化工、２００２年２２：１）。

いくつかの具体的な実施形態において、粉砕後の平均粒径は、１０ｎｍ～８００ｎｍである。

別のいくつかの具体的な実施形態において、粉砕後の平均粒径は、１０ｎｍ～５００ｎｍである。

いくつかの実施形態において、前記個包装とは、容器又は固体支持体に個包装することを指す。前記容器は、ボトル、チューブ、パック、袋、プレート、アンプル、注射装置、アルミ箔包装、ドレッシング材、カプセルから選択される。

例えば、具体的な実施形態において、前記個包装とは、ボトル／アンプルに個包装することを指す。投与前に、ボトル／アンプルに溶媒を添加する。

本開示のいくつかの具体的な実施形態において、本開示における方法で製造される、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、本開示における方法で製造されるロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を含む医薬組成物又は医療装置を提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、成体幹細胞を調節するための、単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁を提供する。前記調節とは、幹細胞の増殖の促進、幹細胞の成長の促進、幹細胞の分化の促進、幹細胞の遊走の促進、幹細胞の生存率の向上から選択される１つ又はそれらの組み合わせを指し、前記幹細胞は、成体幹細胞、ｉＰＳＣ、間葉系幹細胞から選択される。

いくつかの実施形態において、前記間葉系幹細胞は、骨髄間葉系幹細胞、脂肪間葉系幹細胞、滑膜間葉系幹細胞、臍帯間葉系幹細胞、臍帯血間葉系幹細胞、胎盤間葉系幹細胞、羊膜間葉系幹細胞、肝臓間葉系幹細胞、筋肉間葉系幹細胞、肺間葉系幹細胞、膵臓間葉系幹細胞、歯髄間葉系幹細胞から選択される。

本開示のいくつかの実施形態において、成体幹細胞を調節するための、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、成体幹細胞を調節するための医薬組成物又は医療装置を提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁の、成体幹細胞の調節における用途を提供する。

本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁の、成体幹細胞を調節するための医薬／医療装置の製造における用途をさらに提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の、成体幹細胞の調節における用途を提供し、本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の、成体幹細胞を調節するための医薬／医療装置の製造における用途をさらに提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、本開示における医薬組成物の、成体幹細胞の調節における用途を提供し、本開示における医薬組成物の、成体幹細胞を調節するための医薬／医療装置の製造における用途をさらに提供する。

本開示のいくつかの実施形態において、
－本開示におけるロドコッカス・ルーバー、
－本開示における単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁、
－本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物、
－本開示における医薬組成物、から選択されるいずれか１つの、医薬（又は医療装置）の製造における用途を提供する。

いくつかの具体的な実施形態において、前記医薬は、成体幹細胞を調節するために用いられる。

いくつかの具体的な実施形態において、前記医療装置（例えば、ドレッシング材、貼付剤、包帯、フィルム、貼付剤など）は、成体幹細胞を調節するために用いられる。

本開示のいくつかの実施形態において、被験対象を、
－本開示における単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁、
－本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物、
－本開示における医薬組成物、
－本開示における医療装置から選択される治療有効量（又は予防有効量）、のいずれか１つに接触させること、を含む、成体幹細胞を調節する方法をさらに提供する。

いくつかの具体的な実施形態において、幹細胞をロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物に接触させるステップを含む、幹細胞を調節する方法を提供する。

いくつかの具体的な実施形態において、幹細胞の数／ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の比率は、１～１０００個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、好ましくは５～５０個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物である。例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、２５０、３００、３５０、４００、４５０、５００、５５０、６００、６５０、７００、７５０、８００、８５０、９００、９５０、１０００個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物、及びその間の任意の範囲であるが、これらに限定されない。

いくつかの実施形態において、被験対象の創傷を治療有効量の間葉系幹細胞及びロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物に接触させるステップを含む、創傷治癒を促進する方法を提供する。

いくつかの実施形態において、間葉系幹細胞の数／ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の比率は、１～１００個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、好ましくは５～５０個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物である。いくつかの具体的な実施形態において、前記創傷は、糖尿病に関連する創傷である。

いくつかの具体的な実施形態において、病巣の面積及び深さの違いに応じて、医薬（又は医療装置）を用いて病巣に投与する。例えば、
－ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を含む医薬を塗り、或いは
－ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を浸漬した貼付剤（フィルム又はガーゼ）で病巣を被覆し、或いは
－ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を含む凍結乾燥粉末を病巣に直接的に投与し、或いは
－ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を含む膏体／クリームを病巣に投与するが、これらに限定されない。

いくつかの具体的な実施形態において、接触させるサイクルは、２日間～２ヶ月間又はそれ以上である。具体的には、例えば、２、４、６、８、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０日間であり、また例えば、１週間、２週間、３週間、４週間、５週間、６週間、７週間、８週間、９週間、１０週間、１１週間、１２週間、１３週間、１４週間、１５週間、１６週間、１７週間、１８週間であってもよい。具体的な実施形態において、被験対象に３～４週間にわたって活性成分を投与する。

いくつかの実施形態において、１日に１～３回、２日に１～６回、３日に１～９回、１週間に１～１４回、１ヶ月に１～６０回の頻度で投与する。いくつかの実施形態において、１日に２回、又は１日に１回、又は２日に１回投与する。

１回あたりの投与量は、被験対象の具体的な状況に応じて異なる投与量を採用し、一般的に１μｇ～１０００μｇ／単位投与量／１回で投与し、具体的には、例えば、１、５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０、６５、７０、７５、８０、８５、９０、９５、１００、１１０、１２０、１３０、１４０、１５０、１６０、１７０、１８０、１９０、２００μｇ／単位投与量／１回及び前述の任意の２つの数値の間の範囲で投与する。

いくつかの具体的な実施形態において、接触は、例えば、内服、粘膜投与、経皮投与、腹腔内投与、穿刺、点鼻、点眼、坐剤、舌下投与の方式で実現されるが、これらに限定されない。

いくつかの具体的な実施形態において、被験対象は、ヒト以外の動物であり、例えば、農場の動物、愛玩動物、使役動物、観賞動物、産業動物である。

具体的な実施形態において、被験対象は、ヒトである。

いくつかの具体的な実施形態において、被験対象は、目標疾患又はその症状を有すると疑われるか、有すると診断されるか、すでに有しているか、又は罹患しやすい対象である。

いくつかの実施形態において、
－本開示におけるロドコッカス・ルーバー、
－本開示における単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁、
－本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物、
－本開示における医薬組成物、から選択される１つ又はそれらの組み合わせを含む細胞培養媒体を提供する。

いくつかの具体的な実施形態において、幹細胞（特に間葉系幹細胞）を培養することに適用される本分野の公知の他の成分をさらに含む細胞培養媒体を提供する。ヒトに応用される場合、より安全な細胞を提供するために、培養過程において異種動物成分を含まないもの、例えば、無血清培養媒体が推奨される。

いくつかの具体的な実施形態において、当業者は、必要（例えば、乾燥性の維持又は分化の促進）に応じて、細胞培養媒体にサイトカイン、例えば、ＦＧＦ、ＰＤＧＦ、ＴＧＦ－β、ＨＧＦ、ＥＧＦ、ＣＴＧＦ、ＶＥＧＦ、インスリン、インスリン様成長因子のうちの１種又はそれらの組み合わせを添加することができる。

いくつかの具体的な実施形態において、ＦＧＦの含有量（最終濃度で計算する）は、好ましくは０．１～１００ｎｇ／ｍｌである。ＦＧＦとは、線維芽細胞成長因子ファミリーに属する成長因子を指し、好ましくはＦＧＦ－１、ＦＧＦ－２（ｂＦＧＦ）である。

いくつかの具体的な実施形態において、ＰＤＧＦの含有量（最終濃度で計算する）は、好ましくは０．５～１００ｎｇ／ｍｌである。ＰＤＧＦとは、血小板由来成長因子ファミリーに属する成長因子を指し、好ましくはＰＤＧＦ－ＢＢ又はＰＤＧＦ－ＡＢである。

いくつかの具体的な実施形態において、ＴＧＦ－βの含有量（最終濃度で計算する）は、好ましくは０．５～１００ｎｇ／ｍｌである。ＴＧＦ－βとは、形質転換成長因子－βファミリーに属する成長因子を指し、好ましくはＴＧＦ－β３である。

いくつかの具体的な実施形態において、ＨＧＦの含有量（最終濃度で計算する）は、好ましくは０．１～５０ｎｇ／ｍｌである。

いくつかの具体的な実施形態において、ＥＧＦの含有量（最終濃度で計算する）は、好ましくは０．５～２００ｎｇ／ｍｌである。

いくつかの具体的な実施形態において、少なくとも１種のリン脂質及び／又は少なくとも１種の脂肪酸をさらに含む細胞培養媒体を提供する。

リン脂質としては、例えば、ホスファチジン酸、リゾホスファチジン酸、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルセリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルコリン及びホスファチジルグリセロールが挙げられる。リン脂質の総含有量（最終濃度で計算する）は、好ましくは０．１～３０μｇ／ｍｌである。

脂肪酸としては、例えば、リノール酸、オレイン酸、リノレン酸、アラキドン酸、テトラデカン酸、パルミトレイン酸、パルミチン酸及びステアリン酸などが挙げられる。脂肪酸の総含有量は、好ましくは培地の１／１０００～１／１０である。

いくつかの具体的な実施形態において、コレステロールをさらに含む細胞培養媒体を提供する。

いくつかの具体的な実施形態において、アスコルビン酸をさらに含む細胞培養媒体を提供する。

いくつかの具体的な実施形態において、酸化防止剤をさらに含む細胞培養媒体を提供する。酸化防止剤としては、例えば、ＤＬ－α－トコフェロール酢酸エステル（ビタミンＥ）が挙げられる。

いくつかの具体的な実施形態において、トランスフェリンをさらに含む細胞培養媒体を提供する。

いくつかの具体的な実施形態において、セレン酸塩をさらに含む細胞培養媒体を提供する。

いくつかの具体的な実施形態において、細胞を維持するために必要なアミノ酸、ヌクレオチド及び微量元素をさらに含む細胞培養媒体を提供する。

具体的な実施例において、既知の市販されている間葉系幹細胞培養媒体に本願の組成物を添加し、市販されている間葉系幹細胞培養媒体は、例えば、ＭｅｓｅｎＰＲＯ ＲＳ^ＴＭ、ＳｔｅｍＰｒｏ（登録商標）ＭＳＣ ＳＦＭ、ＳｔｅｍＰｒｏ（登録商標）ＭＳＣ ＳＦＭ ＸｅｎｏＦｅｅ、ＳｔｅｍＰｒｏ（登録商標）ヒト脂肪由来幹細胞培地から選択される。

いくつかの実施形態において、
－間葉系幹細胞と、
－ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物と、を含む治療組成物を提供する。

いくつかの治療組成物の実施形態において、間葉系幹細胞の数／ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の比率は、１～１００個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、好ましくは５～５０個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物である。

いくつかの治療組成物の実施形態において、間葉系幹細胞は、骨髄間葉系幹細胞、脂肪間葉系幹細胞、滑膜間葉系幹細胞、臍帯間葉系幹細胞、臍帯血間葉系幹細胞、胎盤間葉系幹細胞、羊膜間葉系幹細胞、肝臓間葉系幹細胞、筋肉間葉系幹細胞、肺間葉系幹細胞、膵臓間葉系幹細胞、歯髄間葉系幹細胞から選択される。

いくつかの実施形態において、幹細胞を有効量の上記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物に接触させるステップを含む、幹細胞のアポトーシスを改善する方法を提供する。

いくつかの実施形態において、幹細胞を有効量の上記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物に接触させるステップを含む、幹細胞の生存率を向上させる方法を提供する。

本願の文脈では、医薬又は医療装置における唯一の治療性（又は予防性）活性成分は、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、特にロドコッカス・ルーバーの組成成分（例えば、タンパク質、核酸、脂質、細胞壁及びその組成成分、炭水化物、代謝物）を含む製品であり、具体的には、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁（さらに好ましくはロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格又はその組成）を含む製品である。

１０μｇ／ｍｌの本願の組成物１をＡｄ－ＭＳＣに作用し、２４ｈ、４８ｈ、７２ｈ、９６ｈ後にＣＣＫ－８を用いてＡｄ－ＭＳＣを検出し、４５０ｎｍの波長下で酵素結合免疫検出装置を用いて吸光度値（ＯＤ）を測定する。 １０μｇ／ｍｌ、５０μｌの本願の組成物１をＡｄ－ＭＳＣｓに作用し、７２ｈ、９６ｈ後にＥＤＵキットを用いてＥｄＵ取り込み分析を行い、各群の細胞の増値率を統計し分析し、実験を３回繰り返し、データについてエラーバーグラフ平均値±ＳＤを示す（^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、ｖｓ．対照）。 フローサイトメーターを用いて４８ｈ、７２ｈのブランク対照群、高グルコース群、本願の組成物で処理された群の幹細胞のアポトーシス率を検出する。実験を３回繰り返し、データについてエラーバーグラフで平均値±ＳＤを示す（^＊＊Ｐ＜０．０１、ｖｓ．高グルコース）。 フローサイトメーターを用いて４８ｈ、７２ｈのブランク対照群、高グルコース群、本願の組成物で処理された群の幹細胞のアポトーシス率を検出する。実験を３回繰り返し、データについてエラーバーグラフで平均値±ＳＤを示す（^＊＊Ｐ＜０．０１、ｖｓ．高グルコース）。 細胞に高グルコースを添加して細胞アポトーシスを誘導し、Ｗｅｓｔｅｒｎブロット実験を行い、ｃ－カスパーゼ－３、Ｂａｘのタンパク質発現レベルを検出する。実験を３回繰り返し、データについてエラーバーグラフで平均値±ＳＤを示す（^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、ｖｓ高グルコース）。 細胞に高グルコースを添加して細胞アポトーシスを誘導し、Ｗｅｓｔｅｒｎブロット実験を行い、ｃ－カスパーゼ－３、Ｂａｘのタンパク質発現レベルを検出する。実験を３回繰り返し、データについてエラーバーグラフで平均値±ＳＤを示す（^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊Ｐ＜０．０１、ｖｓ高グルコース）。 細胞を糖尿病マウスの創傷に接種した後、０、２、７日目に蛍光色素ＣＭ－Ｄｉｌで標識された細胞に基づいてＡｄ－ＭＳＣの各群における生存率を観察する。ＣＭ－Ｄｉｌで標識された細胞の蛍光束結果を統計し分析する。 各群の創傷治癒率を測定し計算する（^＊Ｐ＜０．０５、^＊＊＜０．０１、ｖｓブランク）。

「単離」とは、本開示のロドコッカス・ルーバーを当初の成長環境から脱離させることを指す。

当業者にとって、グラム陽性菌とグラム陰性菌の細胞壁の構造が異なることは既知である。具体的には、グラム陽性菌の方が細胞壁が厚く（一般的に２０ｎｍ～８０ｎｍである）、約９０％のペプチドグリカン及び約１０％のタイコ酸（アルコール分子とリン酸分子で形成されるポリマーであり、一般的に糖エステル又はアミノ酸エステルの形態で存在する）を含む。ペプチドグリカン層は、緻密で、多い場合は２０層に達する。しかしながら、グラム陰性菌の細胞壁は、グラム陽性菌の細胞壁よりはるかに薄く、構造が複雑で、外膜（ｏｕｔｅｒ ｍｅｍｂｒａｎｅ）とペプチドグリカン層（一般的に２ｎｍ～３ｎｍである）に分けられる。

ペプチドグリカン層は、細菌の細胞壁中の特有の成分であり、ヘテロ多糖の誘導体である。各ペプチドグリカンのモノマーは、糖ユニット（例えば、少なくとも２種の糖分子がグリコシド結合で接続されて、ペプチドグリカンの骨組み構造を構成するもの）、ペプチド末端（複数のアミノ酸が接続されて構成された短ペプチド鎖であり、Ｎ－アセチルムラミン酸分子に接続されるもの）、及びペプチドブリッジ（隣接する「ペプチド末端」を架橋して高強度のネットワーク構造を形成するもの）という３つの部分を含む。細菌が異なれば、ペプチドブリッジ、ペプチド末端、架橋方式も異なる。

単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁
本開示において、「単離されたロドコッカス・ルーバーの細胞壁」とは、完全な細胞壁として理解されてもよく、不完全な細胞壁（例えば、破砕されたもの、又は部分的に分解されたもの）として理解されてもよい。本開示の教示に基づき、当業者は、所望の活性を示す成分がロドコッカス・ルーバーの細胞壁（例えば、細胞壁自体又はその組成）由来のものであると理解することができる。したがって、臨床での応用において完全な細胞壁、破砕された細胞壁、細胞壁の不完全な分解生成物、細胞壁の組成成分、細胞壁の抽出物などの様々な形態を用いることができ、これらは、いずれも本開示の範囲に含まれる。

細胞壁骨格
細胞壁の主な構造を構成する組成成分であるが、細胞壁の中の実体的な架橋ネットワークのみを表すとは理解すべきではなく、当業者は、実体的な架橋ネットワークに吸着、結合、保持される他の細胞壁成分が排除されないと理解することができる。

ロドコッカス・ルーバー
本開示の実施形態において用いられるロドコッカス・ルーバーとは、ロドコッカス属（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）のロドコッカス・ルーバー種（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｒｕｂｅｒ）を指し、特定の細胞株に限定されない。

非限定的な例は、ＴＯＹ７株（南京農業大学農業環境微生物菌種保存センター）、ＣＧＭＣＣ Ｎｏ．４７９５、ＤＳＭ４３３３８、ＣＣＴＣＣ Ｎｏ．２０１２０３５、ＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１６６４０、ＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１７４３１を含む。

ロドコッカス・ルーバーの同定
既知又は未知の微生物同定技術により、当業者は、細菌株に分類学的同定を行うことができ、例えば、利用可能な同定技術は、形態学的特徴、生理生化学的特徴、１６Ｓ ｒＲＮＡなどを含む。当業者は、科学技術の発展に伴い、同定技術が様々な手段に関連し、早い段階で主に形態学的同定方式及び生化学的同定方式を用いていたが、これらの方法の信頼性が低いことを理解することができる。配列決定技術が出現した後、当業者は、信頼性がより高い方式で菌株を同定することができる。例えば、１６Ｓ ｒＲＮＡのＤＮＡ配列が９７％以上の相同性を有を有すると同定された場合、２つの菌が同じ種に属すると判定される（華苟根ら、ロドコッカス属の分類及び応用研究の進展、微生物学通報、２００３：３０（４））。ロドコッカス・ルーバーについて、国際（又は国立）菌種保存センターに寄託された既知の菌株をモデル菌株として、比較する。

剤形
本開示の医薬又は医薬組成物又は活性成分又は製品は、軟膏剤、クリーム剤、硬膏剤、ゲル剤、洗浄剤、チンキ剤、リニメント剤、オイル剤、ペースト剤、凍結乾燥粉末、エアロゾル剤、坐剤、貼付剤、懸濁液、内服液、トローチ剤、スキンケア用品（洗顔料、化粧水、美容液、乳液、フェイスクリーム、フェイスマスク）の形態であってもよいが、これらに限定されない。

製剤ユニット
本開示の医薬又は医薬組成物又は活性成分又は製品は、単位製剤（ユニット製剤）の形態で製造されてもよい。

いくつかの実施形態において、上記医薬（又は製剤、又は治療薬、又は医療装置）中の単位投与量は、
－１μｇ～１０００μｇの上記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物、又は
－１μｇ～１０００μｇの上記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁、又は
－１μｇ～１０００μｇの上記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁骨格を含む。

単位投与量の具体例は、１、２、５、１０、１５、２０、２５、３０、４０、５０、５５、５６、５７、５８、５９、６０、６１、６２、６３、６５、６６、６７、６８、６９、７０、８０、９０、１００、１５０、２００、２５０、３００、３５０、４００、４５０、５００ｍｇ±１０％及び上記任意の２つの数値の間の範囲である。

「投与」、「与え」、「提供」、「処理」という語は、動物、ヒト、細胞、組織、器官又は生物サンプルに用いられる場合、医薬又は医療装置が動物、ヒト、細胞、組織、器官又は生物サンプルに接触することを指す。

「治療」とは、被験対象に医薬（治療薬、活性成分又は組成物）（例えば、本開示におけるロドコッカス・ルーバーの細胞壁又はその医薬組成物）又は医療装置を内服又は外用するように与え、治療する被験対象（又は集団）の１つ以上の疾患症状を、臨床で測定可能な程度まで緩和（軽減、遅延、改善、治癒）することを指し、上記被験対象は、１つ以上の疾患又はその症状をすでに有しているか、有すると疑われるか、又は罹患しやすい対象である。

任意の疾患の症状を効果的に緩和する医薬（治療薬、活性成分又は組成物）の量は、治療有効量という。それは、様々な要因、例えば、被験対象の疾患の状態、年齢及び体重に応じて変化することができる。単一の被験対象の目標疾患又はその症状を緩和させる際に、医薬（治療薬、活性成分又は組成物）が効果を発揮しない可能性があるが、本分野の既知の任意の統計学的検定方法（例えば、Ｓｔｕｄｅｎｔ Ｔ検定、カイ二乗検定、マン・ホイットニーのＵ検定）により、医薬（治療薬、活性成分又は組成物）が目標疾患又はその症状に対して統計学的に有効であると確定できると理解すべきである。

「必要に応じて」とは、後文に記載の事項が発生する可能性があるが、必ずしも発生するとは限らず、状況に応じて設定する必要があるということを意味する。例えば、「必要に応じて、個包装する」とは、製品を個包装することが許容されるが、必ずしも個包装する必要がなく、個包装するか否かは、技術的効果の達成に影響しないということを意味する。

「１つ」、「一」、「単一」、「該」は、明確な説明がなければ、複数の形態を含む。

以下の実施例、製造例及び試験例を組み合わせて、本開示をさらに説明する。しかしながら、これらの実施例、製造例及び試験例は、本開示の範囲を限定するものではない。具体的な条件が明記されない場合、一般的な条件、及び原料供給業者が提案する条件に従って操作する。具体的な供給源が明記されない試薬は、市場で購入した一般的な試薬である。

実施例
実施例１．菌株の由来
以下の実施例に用いられるロドコッカス・ルーバーは、ＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１７４３１であり、２０１９年３月２２日に北京市朝陽区北辰西路１号院３号（Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｎｏ．１ Ｗｅｓｔ Ｂｅｉｃｈｅｎ Ｒｏａｄ、Ｃｈａｏｙａｎｇ Ｄｉｓｔｒｉｃｔ、Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｃｈｉｎａ）、中国微生物菌種保存管理委員会普通微生物センター（Ｃｈｉｎａ Ｇｅｎｅｒａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ Ｃｅｎｔｅｒ、ＣＧＭＣＣ）に寄託された。

当業者であれば特に理解されるように、以下の具体的な例は、特定の細胞株を用いるが、技術的効果の実現は、該特定の細胞株に限定されなく、ロドコッカス・ルーバー種（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｒｕｂｅｒ）に属する任意の種は、いずれも適用される。

実施例２．菌株の同定
１．コロニー形態の特徴の肉眼での観察
グリセロール寒天培地で、３０～３７℃（具体的には３２～３５℃）で１２～７２（具体的には３６～６０、例えば４０～５０）時間培養すると、以下が分かった。

－コロニーが隆起し、
－赤みの橙色を呈し（光線、培地の色などの影響で、僅かな違いもある）、
－表面が乾燥してひび割れ、僅かに光沢を有し（培養条件の違いにより、僅かな違いもある）、
－軽く触れると砕けやすく、
－コロニーのサイズが約１ｍｍ～２ｍｍである（培養条件の違いにより、僅かな違いもある）。

２．顕微鏡での観察
－菌体が分枝状を呈し、横隔膜を有し、菌糸体を形成している（培養条件の違いにより、僅かな違いもある）、
－菌糸が分裂して、短くて太い規則的な細胞を形成している（培養条件の違いにより、僅かな違いもある）、
－４～５日間培養すると、菌体が短桿状又は球状になった（培養条件の違いにより、僅かな違いもある）。

３．染色性
グラム染色法によれば、陽性であった。

４．生化学的反応
グリセロール寒天傾斜培地を用意し、３０～３７℃（具体的には３２～３５℃）で１２～７２（具体的には、３６～６０、例えば、４０～５０）時間培養した。次に、培養物に対して以下の各試験を行った。

４．１炭水化物の酸産生
表１．酸産生試験

４．２酵素活性の測定（ＡＰＩ ＺＹＭ）
表２．酵素活性の測定

４．３硝酸塩還元反応で陽性、カタラーゼで陽性、チロシナーゼで陽性、アミラーゼで陰性、オキシダーゼで陰性、ゼラチン液化で陰性を呈した。

４．４唯一の炭素源
表３．炭素源

４．５．１６Ｓ ｒＲＮＡ同定
作業用シードチューブ内の単離された１５株の菌及び当初のシードチューブ内の単離された１０株の異なる菌株に対して、ゲノム抽出、１６Ｓｒ ＲＮＡ増幅及び配列決定を行った。合計２５株の菌の１６Ｓｒ ＲＮＡ遺伝子相同性は、１００％であった。

また、Ｋｉｍｕｒａ２－パラメータアルゴリズムで構築されたｎｅｉｇｈｂｏｒ－ｊｏｉｎｉｎｇ菌株の系統樹によれば、菌株がＲｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｒｕｂｅｒに属するという結果が示された。

製造例
製造例１．培養方法
１．一般的な微生物生産方法でロドコッカス・ルーバーを培養することができる。

２．培養方法は、固体培養であってもよく、液体培養であってもよい。

３．培地中の栄養源に対して特に規定はなく、微生物培養に一般的に用いられる炭素源、窒素源及び他の栄養源を培地中に含んでもよい。

－炭素源は、ロドコッカス・ルーバーが利用できる任意の炭素源であり、例えば、フルクトース、グルコースなどである。

－窒素源は、ブイヨン、ペプトン、アンモニウム塩、硝酸塩及び他の有機又は無機窒素含有化合物であってもよい。

－他の栄養源として、いくつかの無機塩類、例えば、ＮａＣｌ、リン酸塩類を適切に添加することができる。

４．培養条件（温度、時間など）に対して厳格な限定はなく、当業者は、初歩的な小規模のパイロット試験データに基づいて、生産量を最も多くする条件を自ら選択することができる。

５．一例として、以下の培養条件でロドコッカス・ルーバーを発酵させた。

（１）培地組成は、
ペプトン、ビーフブイヨン、塩化ナトリウム、リン酸塩、グリセロール（及び固体培養の場合、必要に応じて寒天）を含む。

（２）培養の方法パラメータ：
作業用菌種を再生した後、固体培養媒体に移して３～５日間維持し、次に液体に移して培養し（３０～３７℃で、３～５日間維持する）、補助材料半連続バッチ供給モードを用いてもよく、バッチ供給モードを用いてもよい。培養期間にｐＨ、細菌密度、溶存酸素、炭素源の消費をモニタリングした。

製造例２．菌体の破砕
製造例１で得られた菌を収集し、細胞を粉砕した（例えば、超音波により破砕するが、それに限定されない）。本分野で任意の適切な公知の方法、例えば、ＣＮ１０１２５０４９０Ａ又はＣＮ１０１３２３８６５Ａにおける方法で菌体を破砕することができる。

顕微鏡下で粉砕の状況をチェックし、視野ごとの形状を保った菌の数が５個を超えてはならず、複数（１０～３０個）の視野をチェックしていずれもこの基準を満たしていれば、合格とする。

製造例３．核酸除去、脂質除去、夾雑タンパク質除去、細胞膜除去
１．核酸除去：
破砕後の上澄液を遠心分離し、得られた沈殿物にＤＮＡ分解酵素及びＲＮＡ分解酵素を添加し、酵素の供給業者が提案する操作に従って核酸を除去した。

２．タンパク質除去：
沈殿物に一般的なプロテアーゼ（例えば、トリプシン）を添加し、酵素の供給業者が提案する操作に従ってタンパク質を除去した。

３．脂質除去：
沈殿物に有機試薬（例えば、アセトン、エーテル、エタノールのうちの１つ又はそれらの組み合わせであるが、それらに限定されない）を添加し、本分野の一般的な操作に従って脂質を除去した。

４．細胞膜除去：
沈殿物にＴｒｉｔｏｎＸ－１００を添加し、本分野の一般的な操作に従って、遠心分離して沈殿物を収集し、ＰＢＳで洗浄した。

不純物を除去する上記ステップの間で、当業者は、ステップの間に互換性を持たせるように、順序を調整することができると理解すべきである。

細胞壁以外の成分を除去した後に、沈殿物を注射用水に再溶解し、使用に備えた。必要に応じて、１１５℃で２０～３０分間滅菌し、細胞壁骨格の原液（主に細胞壁骨格及びその組成成分を含む）とすることができる。

製造例４．医薬組成物の製造方法
１．液体組成物
製造例３で得られた生成物に賦形剤（例えば、デキストラン４０、マンニトール又はトレハロース）を添加した。容器に充填した後、医薬組成物を得た。

表４．医薬組成物の製造可能な複数の形態

２．凍結乾燥粉末組成物
第１項の医薬組成物を凍結乾燥させることで、凍結乾燥粉末（番号がそれぞれ凍結乾燥粉末組成物１～７である）を得た。

３．品質検定（凍結乾燥粉末組成物１を例とする）
表５．品質検定項目

試験例
材料及び方法
１．ヒトＡｄ－ＭＳＣの単離培養及び継代
被験対象の脂肪吸引物（年齢範囲２５～３５歳）から脂肪組織サンプルを取得し、かつＡｄ－ＭＳＣを単離培養した。被験対象は、徐州医科大学付属病院の整形外科手術を受けた患者であり、倫理委員会により承認され、患者インフォームドコンセントを得た。

得られた新鮮な脂肪組織抽出液を０．２５％のパンクレアチン－ＥＤＴＡで消化し、濾過し、遠心分離して細胞沈殿層を保留し、１０％のＦＢＳウシ胎児血清（Ｇｉｂｃｏ）及び１％のペニシリン／ストレプトマイシンを含むＤＭＥＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）培地に添加し、細胞培養シャーレを３７℃で、５％ＣＯ_２を含むインキュベーターに入れて培養した。その後に、細胞が８０％に成長して継代するまで、２～３日ごとにＰＢＳで洗浄した後に培地を交換した。

２．細胞活性の測定
対数増殖期のＡｄ－ＭＳＣを４×１０^３／ウェルで９６ウェルプレートに接種し、ＤＭＥＭ＋１０％のウシ胎児血清＋１％のペニシリン／ストレプトマイシンで共培養し、本願の組成物（組成物１）をＰＢＳ液で溶解し、１０μｇ／ｍｌに希釈した。Ａｄ－ＭＳＣが接着した後、各測定対象物を、対照、２５μｌ、５０μｌ、７５μｌの４つの実験群に分けた。それぞれ２４ｈ、４８ｈ、７２ｈ、９６ｈ後に各ウェルに１０μＬのＣＣＫ－８試薬を添加し、続いて２ｈインキュベートした後に４５０ｎｍの波長下で、酵素結合免疫検出装置を用いて各ウェルの吸光度を測定した。培養時間を横軸とし、細胞数（吸光度）を縦軸として、細胞成長曲線を描画した。

３．ＥｄＵ取り込み実験
Ｃｅｌｌ－Ｌｉｇｈｔ ＥｄＵ ５６７インビトロイメージングキット（ＲｉｂｏＢｉｏ）を用いてＥｄＵ取り込み分析を行った。対数増殖期のＡｄ－ＭＳＣを４×１０^３／ウェルで９６ウェルプレートに接種し、１０μｇ／ｍｌ、５０μｌの本願の組成物をＡｄ－ＭＳＣに作用し、７２ｈ、９６ｈ後に各ウェルに１００μｌのＥＤＵ培地を添加し、２時間インキュベートし、ＰＢＳで１～２回洗浄した。各ウェルに４％のパラホルムアルデヒド固定液を添加し、室温で３０ｍｉｎインキュベートした。次に２ｍｇ／ｍｌのグリシン溶液を添加し、５分間振とうした。ＰＢＳで洗浄した後、浸透剤を添加し、１０ｍｉｎ振とうし、ＰＢＳで洗浄した。Ａｐｏｌｌｏ染色反応液を添加し、暗所で室温で３０分間インキュベートした。染色反応溶液を除去し、浸透剤（０．５％のＴｒｉｔｏｎＸ－１００のＰＢＳ）を添加し、２～３回振とうし、毎回１０分間であり、浸透剤を除去した。ＰＢＳで再び洗浄し、Ｈｏｅｃｈｅｓｔ ３３３４２反応液を添加し、暗所で室温で３０分間インキュベートし、反応液を除去した。ＰＢＳで１～３回洗浄した後、蛍光顕微鏡で陽性細胞を観察した。

４．細胞アポトーシス検出
４．１ フローサイトメトリー：
Ａｄ－ＭＳＣが８０％成長し融合した場合、１×１０^４／ウェルの密度で６ウェルプレートに接種した。実験を４群に分け、細胞が接着した後、各実験群に１００μｌの５０％ショ糖を添加してＡｄ－ＭＳＣの細胞アポトーシスを誘導し、そのうちの２つの実験群にそれぞれ１００μｌ、２５０μｌの１０μｇ／ｍｌの本願の組成物を添加し、４８ｈ、７２ｈ後に各群の細胞の上澄液をフローサイトメトリーチューブに収集し、接着細胞をＥＤＴＡを含まないパンクレアチンで消化して同じ群のフローサイトメトリーチューブに収集し、２０００ｒｐｍで５ｍｉｎ遠心分離し、ＰＢＳ緩衝液で２回洗浄し、振動して均一に混合し、各チューブに５００μｌの結合緩衝液（Ａｎｎｅｘｉｎ Ｖ－ＦＩＴＣ細胞アポトーシス検出キット、上海碧雲天生物技術有限公司）、５μｌのＦＩＴＣ、５μｌのＰＩを順に添加し、振動して均一にし、暗所で４℃で５～１５ｍｉｎインキュベートし、フローサイトメーターで検出し（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）、結果を分析した。

４．２ ＴＵＮＥＬ法：
数枚の１８ｍｍ×１８ｍｍのカバーガラスを７５％エタノールで浸漬して消毒し、使用時にカバーガラスを６ウェルプレート内に置き、エタノール残留液が完全に除去されるまでＰＢＳ緩衝液で数回繰り返して洗浄し、Ａｄ－ＭＳＣを６ウェルプレートに培養し、各ウェルの細胞密度が１×１０^４個であり、フローサイトメトリーと同様に実験の群分けを行い、細胞をＰＢＳ緩衝液で３回洗浄し、４％パラホルムアルデヒドで室温で３０ｍｉｎ固定し、細胞をＰＢＳ緩衝液で３回洗浄し、０．１％ＴｒｉｔｉｏｎＸ－１００で２℃～８℃の条件下で１０ｍｉｎインキュベートし、細胞をＰＢＳ緩衝液で３回洗浄し、５００μｌのＴＵＮＥＬ反応液（ＴＵＮＥＬアポトーシスキット、ロシュ社）を調製し、５０μｌの酵素溶液及び４５０μｌの標識溶液を混合して試薬Ａとし、陰性対照群に５０μｌの試薬Ａを添加し、３７℃のインキュベーターに置いて暗所で６０ｍｉｎインキュベートし、陽性対照群にＤＮＡ分解酵素Ｉを添加し、室温で１０ｍｉｎインキュベートし、細胞をＰＢＳ緩衝液で３回洗浄し、ＴＵＮＥＬ反応混合液を５０μｌ／ウェルで添加し、インキュベーターにおいて暗所で３７℃で６０ｍｉｎインキュベートし、細胞をＰＢＳ緩衝液で３回洗浄し、ＤＡＰＩ染色液を５０μｌ／ウェルで添加し、室温で３ｍｉｎインキュベートし、試料を蛍光顕微鏡下に置いて撮影して分析し、検出用光波長の範囲は５７０～６２０ｎｍ（最大波長５８０ｎｍ）にする。

５．Ｗｅｓｔｅｒｎブロット分析
処理済みの細胞を取り出し、各シャーレに３００μｌの細胞溶解混合液（氷上でＰＩＰＡ細胞溶解バッファーを溶解し、１００：１の比率でＰＭＳＦを添加する）を添加し、次に氷上に置いて十分に溶解した後、接着細胞を掻き取り、Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ－５８１０Ｒ凍結高速遠心機を用いて４℃の条件下で、１２０００ｒｐｍで２０ｍｉｎ遠心分離し、上澄液を収集した。

ＳＤＳ－ポリアクリルアミドゲルで細胞抽出物を分離し、次にタンパク質をニトロセルロースフィルムに移し、かつウサギ抗ヒトカスパーゼ－３モノクローナル抗体（１：４００、米国ＣＳＴ社）、ウサギ抗ヒトＢａｘモノクローナル抗体（１：４００、米国ＣＳＴ社）一次抗体と共にインキュベートし、インキュベートが終了した後、５ｍｉｎ×３回洗浄し、次に希釈された二次抗体（１：１００００）を添加し、暗所で室温で２ｈインキュベートし、二次抗体を除去して、５ｍｉｎ×３回洗浄し、それぞれＥＣＬ発光液のＡ液とＢ液を等量で均一に混合して、ＥＣＬ作業液として調製した。フィルムにＥＣＬ作業液を均一に滴下し、ＴＡＮＯＮゲルイメージング装置に入れて露光現像を行い、撮影し、ＩｍａｇｅＪソフトウェアで分析した。

６．糖尿病性創傷を有する動物モデルの確立
実験動物は、４週齢のＢＡＬＢ／ｃ無胸腺ヌードマウスであり、ＳＰＦレベルである。全ての動物研究は、いずれも動物保護及び使用委員会により承認された。実験マウスは、ＳＰＦレベルの動物飼育室で飼育する。モデル作成前に、マウスを１２ｈ絶食させ、体重を称量し、かつ記録し、２％のＳＴＺ（Ｓｉｇｍａ）を１５０ｍｇ／ｋｇの投与量で腹腔内注射して、糖尿病マウスを誘導した。

注射した後の７日目に血糖を測定し、尾静脈から採血し、血糖計でマウスの血糖濃度を測定し、かつ記録した。７日目からマウスの血糖濃度が１６．７ｍｍｏｌ／Ｌより大きく、かつ「多飲、多食、多尿、体重減少」という糖尿病の典型的な症状が現れ、モデル作成が成功したと見なされた。

実験動物を、
－ブランク対照群と、
－Ａｄ－ＭＳＣ群と、
－本願の組成物＋Ａｄ－ＭＳＣ群と、の３群（各群に５匹ある）に分けた。

糖尿病マウスのモデルの確立が成功した後、マウスを麻酔し、直径が１．５ｃｍの創傷を作り、前処理されたＡｄ－ＭＳＣを複数の部位で皮内注射方式で各群のマウスの皮膚に注入し、各創傷に６つの部位を選択し、各部位に０．１ｍｌの細胞を注射した。表面を無菌ガーゼで覆い、飼育し続けて観察し、ＬＢ９８３生体イメージングシステムを用いて、創傷細胞の生存状況及びマウス皮膚の治癒状況を観察した。

７．ＣＭ－Ｄｉｌ活細胞染色剤による染色
注射前にＣＭ－ＤｉｌでＡｄ－ＭＳＣを標識した。供給業者が提案する方法に従って、ＣＭ－Ｄｉｌ活細胞染色剤を添加し、３０分間インキュベートし、遠心分離した後に上澄液を除去して、ＰＢＳ緩衝液で３回洗浄し、最後に適量のＰＢＳを添加し、均一に混合し、標識されたＡｄ－ＭＳＣをアイスボックスに置いて使用に備えた。

８．組織に対する免疫蛍光染色
組織パラフィン切片に対して脱パラフィンを行い、３％Ｈ_２Ｏ_２で室温で５～１０ｍｉｎインキュベートして、内因性ペルオキシダーゼの活性を除去した。切片を蒸留水で洗浄し、ＰＢＳで５ｍｉｎ／回で２回浸漬し、１０％の正常なヤギ血清（ＰＢＳで希釈される）で室温で１０ｍｉｎ密封し、密封液を除去し、洗浄しない。ＣＤ３１一次抗体（希釈比率１：３００）作業液を滴下し、一晩越した。切片をＰＢＳで５ｍｉｎ／回で３回洗浄した。ビオチンで標識された蛍光二次抗体作業液（希釈比率１：４００）（暗所）を適量滴下し、暗所で３７で１ｈインキュベートした後、ＰＢＳで５ｍｉｎ／回で３回洗浄し、適量のＤＡＰＩ染色液を滴下し、暗所で室温で３ｍｉｎインキュベートし、ＰＢＳで５ｍｉｎ／回で３回洗浄した。最後に各切片に褪色防止封入液を滴下し、カバーガラスをカバーした後、固定し、暗所で保存した。

９．統計分析
ＳＰＳＳソフトウェア（ＳＰＳＳ１６．０）を用いて統計分析を行い、実験結果を平均値±ＳＤで示し、２群の間の比較は、独立サンプルｔ検定を用い、複数群の平均値の比較は、一元配置分散分析（Ｏｎｅ－ｗａｙ ＡＮＯＶＡ）を用いた。α＝０．０５を有意水準とし、Ｐ＜０．０５を、統計的有意差があったと見なす。

試験例１．ヒトＡｄ－ＭＳＣの形態学、表面標識及び分化誘導能力の同定
コラゲナーゼ消化法を用いて、脂肪組織抽出液から抽出して得られた初代Ａｄ－ＭＳＣを細胞シャーレに接種し、細胞が８０％に成長し融合して継代し、継代後の細胞は、増殖速度が明らかに速くなり、細胞形態が均一で一致し、紡錘状を呈した。Ｐ３世代のよく成長したＡｄ－ＭＳＣをそれぞれ脂肪生成誘導分化及び骨形成誘導分化に用いた。２週間後、オイルレッドで染色し、顕微鏡で観察し、細胞内にサイズが明らかに一致しない赤色脂肪滴が存在することを示し、アリザリンレッドＳ染色液で染色すると、明らかな赤色カルシウム結節堆積物を見ることができた。これは、単離して抽出された細胞が幹細胞分化能の特性を有することを示した。

フローサイトメーターを用いて６種類の異なる細胞表面標識物を検出した。結果は、ＣＤ１０５、ＣＤ９０及びＣＤ４４が陽性を呈し、ＣＤ３１、ＣＤ３４、ＣＤ１０６が陰性を呈することを示した。Ａｄ－ＭＳＣ免疫表現型の特徴に合致した。

試験例２．本願の組成物のＡｄ－ＭＳＣ活性及び増殖に対する影響
本願の組成物のＡｄ－ＭＳＣ活性に対する影響を検出するために、それぞれ本願の組成物１がＡｄ－ＭＳＣに作用した後の２４ｈ、４８ｈ、７２ｈ、９６ｈに、ＣＣＫ－８試薬を用いて幹細胞を検出し、４５０ｎｍの波長下で、酵素結合免疫検出装置を用いて吸光度値を測定した。結果は、濃度が１０μｇ／ｍｌで、体積が５０μｌである本願の組成物が幹細胞に作用する場合、７２ｈ及び９６ｈにＡｄ－ＭＳＣの活力が顕著に増強されることを示した（図１）。

本願の組成物のＡｄ－ＭＳＣの増殖に対する影響を検証するために、１０μｇ／ｍｌ、５０μｌの本願の組成物を幹細胞に作用させた。それぞれ７２ｈ、９６ｈ後にＥＤＵキットを用いてＥｄＵ取り込み分析を行い、蛍光顕微鏡で陽性細胞を観察し、結果は、本願の組成物がＡｄ－ＭＳＣの増殖率を向上させることができることを示した（図２）。

試験例３．本願の組成物の、高グルコースで誘導されるＡｄ－ＭＳＣ細胞のアポトーシスに対する抑制
Ａｄ－ＭＳＣ細胞に高グルコースを添加して細胞アポトーシスを誘導し、それぞれ異なる濃度の本願の組成物１で処理し、４８ｈ、７２ｈ後にＦＩＴＣ－ＰＩフローサイトメトリーアポトーシス検出キットを用いて細胞アポトーシス状況を検出した。

結果は、本願の組成物が高グルコースで誘導される幹細胞のアポトーシスを抑制することができることを示した（図３Ａ、図３Ｂ）。

試験例４．アポトーシス標識物のタンパク質発現レベルの検出
細胞に高グルコースを添加して細胞アポトーシスを誘導し、異なる濃度の本願の組成物でそれぞれ４８ｈ、７２ｈ処理し、細胞タンパク質を抽出し、Ｗｅｓｔｅｒｎブロット実験を行うことにより、ｃ－カスパーゼ－３、Ｂａｘ（２種の主なアポトーシス標識物）のタンパク質発現レベルを検出し、β－ａｃｔｉｎを内部標準とした。結果は、本願の組成物で処理された後のｃ－カスパーゼ－３、Ｂａｘのタンパク質発現レベルが低下することを示した（図４Ａ、図４Ｂ）。

試験例５．本願の組成物による、ヌードマウス体内におけるＡｄ－ＭＳＣの生存率の向上、創傷治癒の加速
Ａｄ－ＭＳＣが糖尿病性創傷を修復し治癒することに対する本願の組成物の影響をさらに研究するために、糖尿病ヌードマウスの体にヒト皮膚の創傷修復メカニズムを模擬する創傷モデルを確立した。

糖尿病マウスモデルの確立が成功した後、マウスを麻酔し、直径が１．５ｃｍの創傷を作り、蛍光色素ＣＭ－Ｄｉｌで標識された前処理された細胞を皮内注射方式で処理群のマウスの創傷皮膚に注入し、ＬＢ９８３生体イメージングシステムを用いて、細胞の生存率を検出した。

結果は、本願の組成物で処理された処理群のＡｄ－ＭＳＣは、単にＡｄ－ＭＳＣを用いたＡｄ－ＭＳＣ群よりも高い生存率を有することを示した（図５Ａ）。また、糖尿病マウスの創傷をＡｄ－ＭＳＣで治療する１４日間の治癒過程を評価した。ブランク群と比較すると、Ａｄ－ＭＳＣで処理されたマウスの創傷の治癒状況が良好であり、本願の組成物で処理された処理群の治癒状況がさらに良好であり、創傷の治癒が加速し（図５Ｂ）、創傷の治癒率が向上した（表６）。

表６．術後の１４日目の創傷治癒状況（平均値±ＳＤ、ｎ＝３）

糖尿病性創傷の治癒しにくい原因は多くある。例えば、正常な創傷の治癒過程に必要な細胞及び分子信号が欠失する。また、末梢神経障害、末梢循環損傷、プロテアーゼバランスの乱れは、いずれも糖尿病性創傷が治癒しにくい要因である（Ｒａｔｈｕｒ ＨＭら、Ｔｈｅ ｄｉａｂｅｔｉｃ ｆｏｏｔ．ＣｌｉｎＤｅｒｍａｔｏｌ．２００７、２５（１）：１０９－１２０）。更に、高血糖環境下で血管の微環境が異常であり、細胞の成長環境の異常を引き起こし、最終的に創傷の局所的な血管の再構成を妨害する可能性がある（Ｇｕｏ ＷＹら、Ａｃｃｅｌｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｄｉａｂｅｔｉｃ ｗｏｏｄ ｈｅａｌｉｎｇ ｂｙ ｌｏｗ－ｄｏｓｅ ｒａｄｉａｔｉｏｎ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ．Ｒａｄｉａｔ Ｒｅｓ．２０１０、１７４（４）：４６７－４７９）。また、糖尿病の高血糖状態で創傷組織中の線維芽細胞の数の減少、糖化タンパク質の増加、異常成長因子の発現、炎症過程の遅延及び終末糖化産物の堆積は、いずれも骨髄由来細胞の遊走及び機能に影響を与える（Ｆｉｏｒｉｎａ Ｐら、Ｔｈｅ ｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌｓ ｄｉａｂｅｔｉｃ ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ．Ｃｅｌｌ Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ．２０１０、１９（１１）：１３６９－１３８１）。

Ａｄ－ＭＳＣは、脂肪組織から抽出された多系列分化能を有する幹細胞である（Ｋａｔｏ Ｙら、Ｃｒｅａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ｏｆ ａｎ ａｄｉｐｏｓｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ（ＡＳＣ）ｓｈｅｅｔｉｎ ａ ｄｉａｂｅｔｉｃ ｗｏｕｎｄ－ｈｅａｌｉｎｇ ｍｏｄｅｌ．Ｊｏｖｅ－Ｊ Ｖｉｓ Ｅｘｐ．２０１７、１２（６）：１－１０）。Ａｄ－ＭＳＣは、分化能により損傷部位に遊走し、分化された細胞で損傷皮膚を修復し、様々な成長因子を分泌し（Ｒｅｈｍａｎ Ｊら、Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ ｏｆ ａｎｇｉｏｇｅｎｉｃ ａｎｄ ａｎｔｉ－ａｐｏｐｔｏｔｉｃ ｆａｃｔｏｒｓ ｂｙ ｈｕｍａｎ ａｄｉｐｏｓｅ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌｓ．Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ．２００４、１０９：１２９２－８）、創傷血管の生成を加速し、創傷の治癒を促進することができる（Ｅｂｒａｈｉｍｉａｎ ＴＧら、Ｃｅｌｌ ｔｈｅｒａｐｙ ｂａｓｅｄ ｏｎ ａｄｉｐｏｓｅ ｔｉｓｓｕｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌｓ ｐｒｏｍｏｔｅｓ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ．Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒ Ｔｈｒｏｍｂ Ｖａｓｃ Ｂｉｏｌ．２００９、２９（４）：５０３－５１０）。

また、Ａｄ－ＭＳＣが線維芽細胞に分化することができ、形態類似性を表現するだけでなく、線維芽細胞表面タンパク質（ビメンチン及びフィブロネクチンを含む）を発現できる能力を有することを発見した研究者がいる（Ｋｉｍ ＷＳら、Ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ａｄｉｐｏｓｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ：ａ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｒｏｌｅ ｏｆ ｓｅｃｒｅｔｏｒｙ ｆａｃｔｏｒｓ ｏｎ ｈｕｍａｎ ｄｅｒｍａｌ ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ．Ｊ Ｄｅｒｍａｔｏｌ Ｓｃｉ．２００７、４８：１５－２４）。また、Ａｄ－ＭＳＣは、線維芽細胞及びケラチノサイトに直接的に変換して創傷を修復することができる（Ｕｎｎｉｋｒｉｓｈｎａｎ Ｓら、Ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ ｏｆ ｆｉｂｒｉｎ－ｂａｓｅｄ ｎｉｃｈｅ ｆｏｒ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｏｆ ａｄｉｐｏｓｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ ｔｏ ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅｓ．Ｂｉｏｒｅｓ Ｏｐｅｎ Ａｃｃｅｓｓ．２０１４、３（６）：３３９－３４７）。しかしながら、前の研究によると、多くのＡｄ－ＭＳＣが糖尿病マウスの創傷に注射された後にアポトーシスが発生し、創傷治癒の遅延をもたらすことを発見した。高グルコース環境下で培養されたＡｄ－ＭＳＣ細胞は、アポトーシスが発生し、かつ時間依存性を有する（Ｌｉ Ｑら、Ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｆａｃｔｏｒ－１ｐｒｏｍｏｔｅｓ ｈｕｍａｎ ａｄｉｐｏｓｅ ｔｉｓｓｕｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ ｓｕｒｖｉｖａｌ ａｎｄ ｃｈｒｏｎｉｃ ｗｏｕｎｄ ｈｅａｌｉｎｇ．Ｅｘｐ Ｔｈｅｒ Ｍｅｄ．２０１６、１２：４５－５０）を有する。

本試験例において、ＣＣＫ－８、ＥｄＵにより、本願の組成物のＡｄ－ＭＳＣのインビトロ活性、増殖能力に対する影響を検出した。結果は、本願の組成物がＡｄ－ＭＳＣの活性及び増殖能力を向上させることができることを示した。フローサイトメトリーで細胞のアポトーシス状況を検出し、本願の組成物が高グルコースで誘導されたＡｄ－ＭＳＣのアポトーシスを抑制し、かつ時間及び濃度依存性を有することを発見した。

動物体内で本願の組成物のＡｄ－ＭＳＣの生存率に対する影響を検出し、結果は、本願の組成物で処理された後のＡｄ－ＭＳＣを用いると、単にＡｄ－ＭＳＣを応用する場合より生存率が高く、創傷の治癒速度がより速いことを示した。

Claims (13)

1. 幹細胞を調節する方法であって、
   幹細胞をロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物に接触させるステップを含み、
   幹細胞の数／ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の比率は、１～１００個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、好ましくは５～５０個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、
   前記調節とは、幹細胞の増殖の促進、幹細胞の成長の促進、幹細胞の分化の促進、幹細胞の遊走の促進、幹細胞の生存率の向上から選択される１つ又はそれらの組み合わせを指し、
   前記幹細胞は、成体幹細胞、ｉＰＳＣ、間葉系幹細胞から選択され、
   好ましくは、前記成体幹細胞は、間葉系幹細胞であり、
   前記間葉系幹細胞は、骨髄間葉系幹細胞、脂肪間葉系幹細胞、滑膜間葉系幹細胞、臍帯間葉系幹細胞、臍帯血間葉系幹細胞、胎盤間葉系幹細胞、羊膜間葉系幹細胞、肝臓間葉系幹細胞、筋肉間葉系幹細胞、肺間葉系幹細胞、膵臓間葉系幹細胞、歯髄間葉系幹細胞から選択され、
   好ましくは、前記間葉系幹細胞は、脂肪間葉系幹細胞であり、
   好ましくは、前記成体幹細胞は、上皮成体幹細胞である、方法。
2. 前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物は、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁又はその組成である、請求項１に記載の方法。
3. 前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物は、
   １）ロドコッカス・ルーバーを用意するステップと、
   ２）前記ロドコッカス・ルーバーを粉砕して、粉砕生成物を得るステップと、
   ３．１）必要に応じて、前記粉砕生成物に対して脂質除去操作を行うステップと、
   ３．２）必要に応じて、前記粉砕生成物に対して核酸除去操作を行うステップと、
   ３．３）必要に応じて、前記粉砕生成物に対してタンパク質除去操作を行うステップと、
   ３．４）ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を得るステップと、
   ４）必要に応じて、前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物中の水を除去し、好ましくは前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を凍結乾燥させるステップと、
   ５）必要に応じて、個包装するステップと、を含む方法で得られ、
   ステップ３．１）、３．２）、３．３）は、順序を入れ替えてもよく、同時に行ってもよく、ステップ４）とステップ５）は順序を入れ替えてもよい、請求項１又は２に記載の方法。
4. 前記ロドコッカス・ルーバーは、２０１９年３月２２日に番号ＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１７４３１でＣＧＭＣＣに寄託された、請求項１又は２に記載の方法。
5. ロドコッカス・ルーバー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｒｕｂｅｒ）の細胞壁由来の生成物の、試薬の製造における用途であって、
   前記試薬は、幹細胞の増殖の促進、幹細胞の成長の促進、幹細胞の分化の促進、幹細胞の遊走の促進、幹細胞の生存率の向上から選択される１つ又はそれらの組み合わせに用いられ、
   前記幹細胞は、成体幹細胞、ｉＰＳＣ、間葉系幹細胞から選択され、
   好ましくは、前記成体幹細胞は、間葉系幹細胞であり、
   前記間葉系幹細胞は、骨髄間葉系幹細胞、脂肪間葉系幹細胞、滑膜間葉系幹細胞、臍帯間葉系幹細胞、臍帯血間葉系幹細胞、胎盤間葉系幹細胞、羊膜間葉系幹細胞、肝臓間葉系幹細胞、筋肉間葉系幹細胞、肺間葉系幹細胞、膵臓間葉系幹細胞、歯髄間葉系幹細胞から選択され、
   好ましくは、前記間葉系幹細胞は、脂肪間葉系幹細胞であり、
   好ましくは、前記成体幹細胞は、上皮成体幹細胞である、用途。
6. 前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物は、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁又はその組成である、請求項５に記載の用途。
7. 前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物は、
   １）ロドコッカス・ルーバーを用意するステップと、
   ２）前記ロドコッカス・ルーバーを粉砕して、粉砕生成物を得るステップと、
   ３．１）必要に応じて、前記粉砕生成物に対して脂質除去操作を行うステップと、
   ３．２）必要に応じて、前記粉砕生成物に対して核酸除去操作を行うステップと、
   ３．３）必要に応じて、前記粉砕生成物に対してタンパク質除去操作を行うステップと、
   ３．４）ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を得るステップと、
   ４）必要に応じて、前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物中の水を除去し、好ましくは前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を凍結乾燥させるステップと、
   ５）必要に応じて、個包装するステップと、を含む方法で得られ、
   ステップ３．１）、３．２）、３．３）は、順序を入れ替えてもよく、同時に行ってもよく、ステップ４）とステップ５）は順序を入れ替えてもよい、請求項５又は６に記載の用途。
8. 前記ロドコッカス・ルーバーは、２０１９年３月２２日に番号ＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１７４３１でＣＧＭＣＣに寄託された、請求項５又は６に記載の用途。
9. ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を含み、
   好ましくは、前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物は、ロドコッカス・ルーバーの細胞壁又はその組成である、細胞培養媒体。
10. 前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物は、
    １）ロドコッカス・ルーバーを用意するステップと、
    ２）前記ロドコッカス・ルーバーを粉砕して、粉砕生成物を得るステップと、
    ３．１）必要に応じて、前記粉砕生成物に対して脂質除去操作を行うステップと、
    ３．２）必要に応じて、前記粉砕生成物に対して核酸除去操作を行うステップと、
    ３．３）必要に応じて、前記粉砕生成物に対してタンパク質除去操作を行うステップと、
    ３．４）ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を得るステップと、
    ４）必要に応じて、前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物中の水を除去し、好ましくは前記ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物を凍結乾燥させるステップと、
    ５）必要に応じて、個包装するステップと、を含む方法で得られ、
    ステップ３．１）、３．２）、３．３）は、順序を入れ替えてもよく、同時に行ってもよく、ステップ４）とステップ５）は順序を入れ替えてもよい、請求項９に記載の細胞培養媒体。
11. 前記ロドコッカス・ルーバーは、２０１９年３月２２日に番号ＣＧＭＣＣ Ｎｏ．１７４３１でＣＧＭＣＣに寄託された、請求項９に記載の細胞培養媒体。
12. 創傷治癒を促進する方法であって、
    被験対象の創傷を治療有効量の幹細胞及びロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物に接触させるステップを含み、
    前記幹細胞は、成体幹細胞、間葉系幹細胞、ｉＰＳＣから選択され、
    幹細胞の数／ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の比率は、１～１００個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、好ましくは５～５０個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、
    前記間葉系幹細胞は、骨髄間葉系幹細胞、脂肪間葉系幹細胞、滑膜間葉系幹細胞、臍帯間葉系幹細胞、臍帯血間葉系幹細胞、胎盤間葉系幹細胞、羊膜間葉系幹細胞、肝臓間葉系幹細胞、筋肉間葉系幹細胞、肺間葉系幹細胞、膵臓間葉系幹細胞、歯髄間葉系幹細胞から選択され、好ましくは、前記間葉系幹細胞は、脂肪間葉系幹細胞であり、
    好ましくは、前記成体幹細胞は、上皮成体幹細胞であり、
    好ましくは、前記創傷は、糖尿病に関連する創傷である、方法。
13. －幹細胞と、
    －ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物とを含み、
    前記幹細胞は、成体幹細胞、間葉系幹細胞、ｉＰＳＣから選択され、
    幹細胞の数／ロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物の比率は、１～１００個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、好ましくは５～５０個の幹細胞／１ｎｇのロドコッカス・ルーバーの細胞壁由来の生成物であり、
    前記間葉系幹細胞は、骨髄間葉系幹細胞、脂肪間葉系幹細胞、滑膜間葉系幹細胞、臍帯間葉系幹細胞、臍帯血間葉系幹細胞、胎盤間葉系幹細胞、羊膜間葉系幹細胞、肝臓間葉系幹細胞、筋肉間葉系幹細胞、肺間葉系幹細胞、膵臓間葉系幹細胞、歯髄間葉系幹細胞から選択され、
    好ましくは、前記間葉系幹細胞は、脂肪間葉系幹細胞であり、
    好ましくは、前記成体幹細胞は、上皮成体幹細胞である、医薬組成物。

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