JP2022537695A - アスコルビン酸を含有する注入可能な水性インプラント製剤 - Google Patents
アスコルビン酸を含有する注入可能な水性インプラント製剤 Download PDFInfo
- Publication number
- JP2022537695A JP2022537695A JP2021573815A JP2021573815A JP2022537695A JP 2022537695 A JP2022537695 A JP 2022537695A JP 2021573815 A JP2021573815 A JP 2021573815A JP 2021573815 A JP2021573815 A JP 2021573815A JP 2022537695 A JP2022537695 A JP 2022537695A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- collagen
- injectable aqueous
- nanocrystalline hydroxyapatite
- natural
- implant formulation
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 239000000203 mixture Substances 0.000 title claims abstract description 197
- 239000007943 implant Substances 0.000 title claims abstract description 145
- 238000009472 formulation Methods 0.000 title claims abstract description 100
- CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N Ascorbic acid Chemical compound OC[C@H](O)[C@H]1OC(=O)C(O)=C1O CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N 0.000 title claims abstract description 29
- 239000011668 ascorbic acid Substances 0.000 title claims abstract description 23
- 235000010323 ascorbic acid Nutrition 0.000 title claims abstract description 23
- 229960005070 ascorbic acid Drugs 0.000 title claims abstract description 23
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 claims abstract description 224
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 claims abstract description 215
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 claims abstract description 215
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 claims abstract description 130
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical compound [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 claims abstract description 130
- 239000002245 particle Substances 0.000 claims abstract description 88
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 claims abstract description 73
- 239000000463 material Substances 0.000 claims abstract description 67
- 238000007873 sieving Methods 0.000 claims abstract description 55
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 43
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims abstract description 15
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 54
- 239000002002 slurry Substances 0.000 claims description 42
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims description 32
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 claims description 26
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 24
- 210000004303 peritoneum Anatomy 0.000 claims description 11
- 210000004207 dermis Anatomy 0.000 claims description 9
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 claims description 8
- 210000003516 pericardium Anatomy 0.000 claims description 7
- 230000005251 gamma ray Effects 0.000 claims description 6
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 claims description 2
- 239000000644 isotonic solution Substances 0.000 claims description 2
- 229910052586 apatite Inorganic materials 0.000 claims 1
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 claims 1
- VSIIXMUUUJUKCM-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;fluoride;triphosphate Chemical compound [F-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O VSIIXMUUUJUKCM-UHFFFAOYSA-D 0.000 claims 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 24
- 238000001125 extrusion Methods 0.000 description 22
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 21
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 18
- 239000000919 ceramic Substances 0.000 description 17
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 17
- TYQCGQRIZGCHNB-JLAZNSOCSA-N l-ascorbic acid Chemical compound OC[C@H](O)[C@H]1OC(O)=C(O)C1=O TYQCGQRIZGCHNB-JLAZNSOCSA-N 0.000 description 17
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 16
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 16
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 15
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 15
- 239000000047 product Substances 0.000 description 15
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 12
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 12
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 12
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- 238000007605 air drying Methods 0.000 description 11
- 239000011859 microparticle Substances 0.000 description 11
- VLKZOEOYAKHREP-UHFFFAOYSA-N n-Hexane Chemical compound CCCCCC VLKZOEOYAKHREP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 11
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 11
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 description 11
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 10
- 102000016942 Elastin Human genes 0.000 description 10
- 108010014258 Elastin Proteins 0.000 description 10
- 229920002549 elastin Polymers 0.000 description 10
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 9
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 9
- 241000283073 Equus caballus Species 0.000 description 8
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 8
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 8
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 8
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 7
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 7
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 description 7
- YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N Dichloromethane Chemical compound ClCCl YMWUJEATGCHHMB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 150000008280 chlorinated hydrocarbons Chemical class 0.000 description 6
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 6
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 6
- 208000028169 periodontal disease Diseases 0.000 description 6
- 238000001878 scanning electron micrograph Methods 0.000 description 6
- 238000010306 acid treatment Methods 0.000 description 5
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 5
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 5
- 150000002576 ketones Chemical class 0.000 description 5
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 5
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 5
- 208000005888 Periodontal Pocket Diseases 0.000 description 4
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 4
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 description 4
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 4
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 4
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 4
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 4
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 4
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 4
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 4
- 230000000278 osteoconductive effect Effects 0.000 description 4
- 230000003239 periodontal effect Effects 0.000 description 4
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 4
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 4
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 4
- 108010009565 Bio-Gide Proteins 0.000 description 3
- 241001631457 Cannula Species 0.000 description 3
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 3
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 3
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 3
- 239000008135 aqueous vehicle Substances 0.000 description 3
- 238000000354 decomposition reaction Methods 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 238000009778 extrusion testing Methods 0.000 description 3
- 108060002894 fibrillar collagen Proteins 0.000 description 3
- 102000013373 fibrillar collagen Human genes 0.000 description 3
- -1 hydroxyapatite Chemical compound 0.000 description 3
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 229910001220 stainless steel Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000010935 stainless steel Substances 0.000 description 3
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 3
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 3
- 229910000391 tricalcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 3
- 235000019731 tricalcium phosphate Nutrition 0.000 description 3
- 229940078499 tricalcium phosphate Drugs 0.000 description 3
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 3
- VEVRNHHLCPGNDU-MUGJNUQGSA-N (2s)-2-amino-5-[1-[(5s)-5-amino-5-carboxypentyl]-3,5-bis[(3s)-3-amino-3-carboxypropyl]pyridin-1-ium-4-yl]pentanoate Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCCC[N+]1=CC(CC[C@H](N)C(O)=O)=C(CCC[C@H](N)C([O-])=O)C(CC[C@H](N)C(O)=O)=C1 VEVRNHHLCPGNDU-MUGJNUQGSA-N 0.000 description 2
- SCYULBFZEHDVBN-UHFFFAOYSA-N 1,1-Dichloroethane Chemical compound CC(Cl)Cl SCYULBFZEHDVBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920000089 Cyclic olefin copolymer Polymers 0.000 description 2
- 239000004713 Cyclic olefin copolymer Substances 0.000 description 2
- 241000283086 Equidae Species 0.000 description 2
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229940121710 HMGCoA reductase inhibitor Drugs 0.000 description 2
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 description 2
- 238000003109 Karl Fischer titration Methods 0.000 description 2
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 2
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 2
- 241000251539 Vertebrata <Metazoa> Species 0.000 description 2
- 239000003125 aqueous solvent Substances 0.000 description 2
- 230000006399 behavior Effects 0.000 description 2
- MSWZFWKMSRAUBD-UHFFFAOYSA-N beta-D-galactosamine Natural products NC1C(O)OC(CO)C(O)C1O MSWZFWKMSRAUBD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000004068 calcium phosphate ceramic Substances 0.000 description 2
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 2
- 239000000515 collagen sponge Substances 0.000 description 2
- 239000013256 coordination polymer Substances 0.000 description 2
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 2
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 2
- 238000001804 debridement Methods 0.000 description 2
- 125000000798 desmosine group Chemical group 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 2
- 150000002170 ethers Chemical class 0.000 description 2
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 2
- 230000009969 flowable effect Effects 0.000 description 2
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 2
- 238000000265 homogenisation Methods 0.000 description 2
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 2
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 2
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 description 2
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 2
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 2
- 150000007529 inorganic bases Chemical class 0.000 description 2
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 description 2
- RGXCTRIQQODGIZ-UHFFFAOYSA-O isodesmosine Chemical compound OC(=O)C(N)CCCC[N+]1=CC(CCC(N)C(O)=O)=CC(CCC(N)C(O)=O)=C1CCCC(N)C(O)=O RGXCTRIQQODGIZ-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 2
- 210000004072 lung Anatomy 0.000 description 2
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 2
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 2
- 238000003801 milling Methods 0.000 description 2
- 150000007522 mineralic acids Chemical class 0.000 description 2
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 2
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 2
- 210000002379 periodontal ligament Anatomy 0.000 description 2
- 210000005152 placental membrane Anatomy 0.000 description 2
- 230000009237 prenatal development Effects 0.000 description 2
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 2
- 230000000241 respiratory effect Effects 0.000 description 2
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 2
- 238000004007 reversed phase HPLC Methods 0.000 description 2
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- 239000012064 sodium phosphate buffer Substances 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 2
- 230000008961 swelling Effects 0.000 description 2
- 239000003760 tallow Substances 0.000 description 2
- 210000004876 tela submucosa Anatomy 0.000 description 2
- 238000009281 ultraviolet germicidal irradiation Methods 0.000 description 2
- 238000010200 validation analysis Methods 0.000 description 2
- MSWZFWKMSRAUBD-GASJEMHNSA-N 2-amino-2-deoxy-D-galactopyranose Chemical compound N[C@H]1C(O)O[C@H](CO)[C@H](O)[C@@H]1O MSWZFWKMSRAUBD-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- MSWZFWKMSRAUBD-IVMDWMLBSA-N 2-amino-2-deoxy-D-glucopyranose Chemical compound N[C@H]1C(O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O MSWZFWKMSRAUBD-IVMDWMLBSA-N 0.000 description 1
- 102000012422 Collagen Type I Human genes 0.000 description 1
- 108010022452 Collagen Type I Proteins 0.000 description 1
- 102000001187 Collagen Type III Human genes 0.000 description 1
- 108010069502 Collagen Type III Proteins 0.000 description 1
- 102000004237 Decorin Human genes 0.000 description 1
- 108090000738 Decorin Proteins 0.000 description 1
- 208000034826 Genetic Predisposition to Disease Diseases 0.000 description 1
- 208000034619 Gingival inflammation Diseases 0.000 description 1
- 102000011681 Lumican Human genes 0.000 description 1
- 108010076371 Lumican Proteins 0.000 description 1
- 208000008589 Obesity Diseases 0.000 description 1
- 240000007594 Oryza sativa Species 0.000 description 1
- 235000007164 Oryza sativa Nutrition 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 208000002193 Pain Diseases 0.000 description 1
- 102100037765 Periostin Human genes 0.000 description 1
- 101710199268 Periostin Proteins 0.000 description 1
- 229920003171 Poly (ethylene oxide) Polymers 0.000 description 1
- 208000035415 Reinfection Diseases 0.000 description 1
- 206010041290 Soft tissue inflammation Diseases 0.000 description 1
- 208000033809 Suppuration Diseases 0.000 description 1
- 206010042674 Swelling Diseases 0.000 description 1
- 208000012886 Vertigo Diseases 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 239000003513 alkali Substances 0.000 description 1
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000000149 argon plasma sintering Methods 0.000 description 1
- 230000003416 augmentation Effects 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 description 1
- 230000032770 biofilm formation Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 230000000740 bleeding effect Effects 0.000 description 1
- 230000008468 bone growth Effects 0.000 description 1
- 239000000316 bone substitute Substances 0.000 description 1
- 238000000978 circular dichroism spectroscopy Methods 0.000 description 1
- 230000001054 cortical effect Effects 0.000 description 1
- 239000011243 crosslinked material Substances 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 201000002170 dentin sensitivity Diseases 0.000 description 1
- 230000000994 depressogenic effect Effects 0.000 description 1
- 206010012601 diabetes mellitus Diseases 0.000 description 1
- 210000002256 epithelial attachment Anatomy 0.000 description 1
- PSLIMVZEAPALCD-UHFFFAOYSA-N ethanol;ethoxyethane Chemical compound CCO.CCOCC PSLIMVZEAPALCD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000005284 excitation Effects 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 239000012467 final product Substances 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 210000004195 gingiva Anatomy 0.000 description 1
- 201000005562 gingival recession Diseases 0.000 description 1
- 208000007565 gingivitis Diseases 0.000 description 1
- 229960002442 glucosamine Drugs 0.000 description 1
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 229930195733 hydrocarbon Natural products 0.000 description 1
- 150000002430 hydrocarbons Chemical class 0.000 description 1
- 239000002471 hydroxymethylglutaryl coenzyme A reductase inhibitor Substances 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000010348 incorporation Methods 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 239000007972 injectable composition Substances 0.000 description 1
- 229910017053 inorganic salt Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000001788 irregular Effects 0.000 description 1
- 230000007794 irritation Effects 0.000 description 1
- 239000000314 lubricant Substances 0.000 description 1
- 239000003607 modifier Substances 0.000 description 1
- 235000019799 monosodium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 210000004165 myocardium Anatomy 0.000 description 1
- 239000002159 nanocrystal Substances 0.000 description 1
- 229930014626 natural product Natural products 0.000 description 1
- 235000020824 obesity Nutrition 0.000 description 1
- 238000011022 operating instruction Methods 0.000 description 1
- 239000005416 organic matter Substances 0.000 description 1
- 210000005009 osteogenic cell Anatomy 0.000 description 1
- 201000001245 periodontitis Diseases 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 229920001451 polypropylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 238000001953 recrystallisation Methods 0.000 description 1
- 235000009566 rice Nutrition 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 1
- 230000000391 smoking effect Effects 0.000 description 1
- AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M sodium dihydrogen phosphate Chemical compound [Na+].OP(O)([O-])=O AJPJDKMHJJGVTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 229910000162 sodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000009987 spinning Methods 0.000 description 1
- 229920002994 synthetic fiber Polymers 0.000 description 1
- 229920001059 synthetic polymer Polymers 0.000 description 1
- 229940124597 therapeutic agent Drugs 0.000 description 1
- 239000002562 thickening agent Substances 0.000 description 1
- 230000036347 tooth sensitivity Effects 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 description 1
- 239000003981 vehicle Substances 0.000 description 1
- 239000003021 water soluble solvent Substances 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61C—DENTISTRY; APPARATUS OR METHODS FOR ORAL OR DENTAL HYGIENE
- A61C19/00—Dental auxiliary appliances
- A61C19/06—Implements for therapeutic treatment
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/33—Heterocyclic compounds
- A61K31/335—Heterocyclic compounds having oxygen as the only ring hetero atom, e.g. fungichromin
- A61K31/365—Lactones
- A61K31/375—Ascorbic acid, i.e. vitamin C; Salts thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
- A61K33/06—Aluminium, calcium or magnesium; Compounds thereof, e.g. clay
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
- A61K35/32—Bones; Osteocytes; Osteoblasts; Tendons; Tenocytes; Teeth; Odontoblasts; Cartilage; Chondrocytes; Synovial membrane
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
- A61K38/01—Hydrolysed proteins; Derivatives thereof
- A61K38/012—Hydrolysed proteins; Derivatives thereof from animals
- A61K38/014—Hydrolysed proteins; Derivatives thereof from animals from connective tissue peptides, e.g. gelatin, collagen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
- A61K47/30—Macromolecular organic or inorganic compounds, e.g. inorganic polyphosphates
- A61K47/42—Proteins; Polypeptides; Degradation products thereof; Derivatives thereof, e.g. albumin, gelatin or zein
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2/00—Methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects other than foodstuffs or contact lenses; Accessories therefor
- A61L2/0005—Methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects other than foodstuffs or contact lenses; Accessories therefor for pharmaceuticals, biologicals or living parts
- A61L2/0011—Methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects other than foodstuffs or contact lenses; Accessories therefor for pharmaceuticals, biologicals or living parts using physical methods
- A61L2/0029—Radiation
- A61L2/0035—Gamma radiation
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2/00—Methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects other than foodstuffs or contact lenses; Accessories therefor
- A61L2/0005—Methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects other than foodstuffs or contact lenses; Accessories therefor for pharmaceuticals, biologicals or living parts
- A61L2/0011—Methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects other than foodstuffs or contact lenses; Accessories therefor for pharmaceuticals, biologicals or living parts using physical methods
- A61L2/0029—Radiation
- A61L2/0041—X-rays
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/02—Inorganic materials
- A61L27/12—Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/14—Macromolecular materials
- A61L27/22—Polypeptides or derivatives thereof, e.g. degradation products
- A61L27/24—Collagen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/40—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material
- A61L27/44—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix
- A61L27/46—Composite materials, i.e. containing one material dispersed in a matrix of the same or different material having a macromolecular matrix with phosphorus-containing inorganic fillers
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/50—Materials characterised by their function or physical properties, e.g. injectable or lubricating compositions, shape-memory materials, surface modified materials
- A61L27/54—Biologically active materials, e.g. therapeutic substances
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M5/00—Devices for bringing media into the body in a subcutaneous, intra-vascular or intramuscular way; Accessories therefor, e.g. filling or cleaning devices, arm-rests
- A61M5/178—Syringes
- A61M5/20—Automatic syringes, e.g. with automatically actuated piston rod, with automatic needle injection, filling automatically
- A61M5/2066—Automatic syringes, e.g. with automatically actuated piston rod, with automatic needle injection, filling automatically comprising means for injection of two or more media, e.g. by mixing
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M5/00—Devices for bringing media into the body in a subcutaneous, intra-vascular or intramuscular way; Accessories therefor, e.g. filling or cleaning devices, arm-rests
- A61M5/178—Syringes
- A61M5/28—Syringe ampoules or carpules, i.e. ampoules or carpules provided with a needle
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/0012—Galenical forms characterised by the site of application
- A61K9/0019—Injectable compositions; Intramuscular, intravenous, arterial, subcutaneous administration; Compositions to be administered through the skin in an invasive manner
- A61K9/0024—Solid, semi-solid or solidifying implants, which are implanted or injected in body tissue
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2202/00—Aspects relating to methods or apparatus for disinfecting or sterilising materials or objects
- A61L2202/20—Targets to be treated
- A61L2202/21—Pharmaceuticals, e.g. medicaments, artificial body parts
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
- A61L2300/20—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices containing or releasing organic materials
- A61L2300/21—Acids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2300/00—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices
- A61L2300/40—Biologically active materials used in bandages, wound dressings, absorbent pads or medical devices characterised by a specific therapeutic activity or mode of action
- A61L2300/428—Vitamins, e.g. tocopherol, riboflavin
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2400/00—Materials characterised by their function or physical properties
- A61L2400/06—Flowable or injectable implant compositions
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2400/00—Materials characterised by their function or physical properties
- A61L2400/12—Nanosized materials, e.g. nanofibres, nanoparticles, nanowires, nanotubes; Nanostructured surfaces
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
- A61L2430/02—Materials or treatment for tissue regeneration for reconstruction of bones; weight-bearing implants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2430/00—Materials or treatment for tissue regeneration
- A61L2430/12—Materials or treatment for tissue regeneration for dental implants or prostheses
Abstract
本発明は、少なくとも０．０５％（w/w）アスコルビン酸を含有する、ガンマ線又はＸ線照射によって滅菌され、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して６０Ｎを超えない力で押し出すことができ、ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片との２５～４５w/w％の混合物（ここで、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は１．８～４．５である）を含む、口腔組織再生に使用するための注入可能な水性インプラント製剤、及び上記の注入可能な水性インプラント製剤を調製するための方法に関する。
Description
本発明は、アスコルビン酸を含有する新しい注入可能な水性インプラント製剤、及びその新しい注入可能な水性インプラント製剤を調製するための方法に関する。
歯周病には、口腔衛生状態の悪さ、喫煙、糖尿病、肥満、遺伝的素因、年齢及び社会経済的地位などの、細菌の蓄積、バイオフィルムの形成及び歯肉溝の感染、ひいては歯肉の炎症又は歯肉炎の形成を促進する、多数の危険因子が存在する。処置せずに放置すると、炎症は歯根に沿って進行し、ＰＤＬ及び周囲の歯槽骨の破壊を引き起こす、これは歯周炎と呼ばれる。歯周病が進行すると、歯と軟部組織の間にポケットが生じ、歯の安定性が失われて脱落するまで増大し続ける。歯周病の臨床的兆候は、軟部組織の炎症、化膿を伴う可能性がある（組織）プロービングでの出血、及び歯槽骨のＸ線写真上の喪失である。歯科医は、歯周ポケットの深さ、即ち、軟組織又は骨と歯の間の深さを測定するためのプローブを使用して歯周病の存在と程度を判断することができ、これは、臨床上（歯の）付着の喪失と呼ばれる。
組織再生誘導法（ＧＴＲ）は、歯周構造の喪失を処置するために広く使用されている外科的手法である。この手法において、歯周病専門医は、皮弁を挙上するために軟組織を切開することにより、病変歯根及び周囲の骨にアクセスできるようになる。次の段階は、適切な手動器具、超音波又はレーザー装置による病変骨、軟組織及び歯根の表面の創面切除であり、そこで病変組織が除去され、歯根表面がスケーリングされ、平らにされる。創面切除後、より大きな骨欠損には骨再生材料が充填される。EP-B1-1676592に記載され、Geistlich Pharma AGから市販されているGeistlich Bio-Gide（登録商標）などの組織再生誘導バリアは、より深い骨欠損部の骨再生材料の上に配置される。歯周病専門医は適切な縫合によって皮弁を閉じる。次に、歯肉、上皮付着、骨及び骨と歯の間の歯周付着が再形成される。この手法は効果的であるが、歯肉の切開は、患者の不快感、痛み、腫れ、歯肉退縮、歯の知覚過敏、長い治癒時間をもたらし、再感染の可能性を高める。
骨欠損部位の骨再生材料として、数多くの天然及び合成の材料及び組成物が使用されてきた。
歯周骨欠損部の骨成長を促進する周知の天然骨伝導性骨代替材料は、Geistlich Pharma AGから市販されているGeistlich Bio-Oss（登録商標）である。その材料は、米国特許第5,167,961号及び第5,417,975号に記載されている方法によって天然骨から製造され、天然骨の骨小柱構造及びナノ結晶構造の保存を可能にし、吸収されないか又は非常にゆっくりと吸収される優れた骨伝導性マトリックスが得られる。
歯肉の切開に関連する上記の欠点を軽減するために、注入可能なインプラント製剤が必要である。
歯周ポケットに注入したときに患者が容易に受け入れるため、及びシリンジを使用して便利な用手注入を行うために、その注入可能な水性インプラント製剤は、ゲージ１８（内径０．８３８mm）のカニューレ又は針よりも直径が大きくないカニューレを介して、好ましくは６０Ｎを超えない力で押し出し可能であるべきである。
最適な口腔組織再生のために、歯槽骨、歯根セメント質又は歯根膜の再生のために、注入されたインプラント製剤は、そのような再生が行われる自然のインビボ環境に近いヒドロキシアパタイトとコラーゲンとのマトリックスを提供することが望ましい。
天然骨由来のヒドロキシアパタイトは、合成（非生物学的）ヒドロキシアパタイト又はセラミックよりも、再生が行われる自然のインビボ環境に近い。
天然骨由来のヒドロキシアパタイトを粉砕することによって得られる粒子は、合成ヒドロキシアパタイト又はセラミックを粉砕することによって得られる丸い粒子よりも不規則で縦方向の形状を有する。よって、それらはゲージ１８カニューレを詰まらせるリスクが高い。左側に天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子の走査型電子顕微鏡写真（ＳＥＭ）を表し、右側に合成β－ＴＣＰ粒子のＳＥＭを表す図５を参照のこと。よって、合成ヒドロキシアパタイト又はセラミック粒子を含有する製剤のカニューレを介した押し出しの結果は、天然骨由来のヒドロキシアパタイト粒子を含有する同様の製剤の押し出しを部分的にしか予測しない。
ヒトの天然骨の重要な特徴の１つは、ヒドロキシアパタイト結晶の形態及び非常に小さいサイズ（ナノサイズ）であり、これは、ヒトの骨塩では長さ約３０～５０nm（ｃ軸：［０，０，１］）及び長さ１４～２５nm（ａ軸及びｂ軸：［１，０，０］及び［０，１，０］）の六方晶系空間群Ｐ６３／ｍである。Weiner, S. et al., 1992, FASEB, 6:879-885を参照のこと。よって再生が行われる自然環境により近づけるためには、天然骨由来の、好ましくはヒト天然骨のものに近い結晶の形態及びサイズを有する、天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子を使用することが望ましい。
US 2012/0107401は、合成ヒドロキシアパタイト及びβ－ＴＣＰなどのセラミック又は天然骨由来のヒドロキシアパタイトのいずれかの０．１～２mmのミネラル粒子、ヒト又は動物由来の可溶性コラーゲン又は不溶性コラーゲンのいずれかであってよいコラーゲン、及びスタチンを包含する治療剤の混合物を含む、流動性の移植可能な骨伝導性マトリックスを記載している。これらの流動性の移植可能な骨伝導性マトリックスは、パテとして、又は標的組織部位に注入、噴霧又は滴下注入することができるゲルとして適切であると教示されている。コラーゲンに対するセラミックのｗ／ｗ比は、０．１５～２２．５（請求項４）又は１．５～１１．５（請求項５）であると教示されているが、開示されたコラーゲンに対するセラミックの具体的な比は５及び４．８３（請求項２及び［００８９］、［００９０］）のみである。
米国特許第7,322,825号は、５０～４００μmのサイズを有する微結晶性ヒドロキシアパタイトの微粉砕骨粒子と直径１mm未満の「遊離コラーゲン」粒子との混合物である組成物を歯周ポケットに注入することによって歯周病を処置する方法を開示しており、これらの「遊離コラーゲン」粒子は、非架橋コラーゲンの小繊維であるか、又は小繊維状コラーゲン及び必要に応じて生理学的に適合性の増粘剤を含有するゲルであると教示されている。その混合物は、例えば、マイクロ波放射を介しての熱の適用による追加のエネルギー注入後にのみ、１８ゲージ（内径０．８３８mm）の針を通過するのに十分に低い粘度を有する。その特許によると、Avitene又はCollastatなどの架橋コラーゲンは、１８ゲージの針を通過するのに十分なほど小さく切ることはできない。具体的に記載されている組成物の場合、ヒドロキシアパタイト対コラーゲンのｗ／ｗ比は０．５～１．５である。
米国特許第7,322,825号の歯周病を処置する方法は、広範な使用に至っていない。「遊離コラーゲン」などの非架橋コラーゲンは、口腔組織の再生、歯槽骨、歯根セメント質又は歯根膜の再生に望ましい自然のインビボ環境からはほど遠い。
米国特許第5,352,715号は、薬学的に許容し得る流体担体中にコラーゲン及びリン酸カルシウムセラミック粒子を含む軟組織及び硬組織の修復及び増強のための注入可能なセラミック製剤を開示しており、ここで、リン酸カルシウムセラミック粒子は、５０～２５０μmのサイズを有しており、コラーゲンに対するリン酸セラミック粒子のｗ／ｗ比は、１／１９～１／１、好ましくは１／４～１／２である。その特許の教示によれば、リン酸カルシウムセラミック粒子は、好ましくは非生物学的（合成）起源の焼結セラミック粒子であり、コラーゲンは実質的に架橋を含まない、即ち、テロペプチドを失っており、好ましいコラーゲンは精製されたアテロペプチド再構成コラーゲンである。その注入可能なセラミック製剤は、２０ゲージ（内径０．６０３mm）の針を通過することができる。
テロペプチドを失ったコラーゲンと合成リン酸カルシウム粒子の組合せは、再生が行われる自然のインビボ環境からはほど遠い。
EP-0270254-A2は、水分を除いた重量で、実質的に架橋を含まない２～４０％の再構成小繊維状アテロペプチドコラーゲンと、６０～９８％のヒドロキシアパタイトなどのリン酸三カルシウムを含有する混合物とを含む、サイズ範囲１００～２０００μmの乾燥インプラント組成物を開示しており、アテロペプチドコラーゲンに対するリン酸三カルシウムの質量比は１．５～４９である。この乾燥インプラント組成物は、生物学的特性と取り扱い特性の両方を改善するためにガンマ線で処理される。
テロペプチドを失ったコラーゲンと合成リン酸三カルシウム粒子の組合せは、再生が行われる自然のインビボ環境からはほど遠い。
国際ＰＣＴ特許出願WO-2019/115795の発明の課題又は目的は、口腔組織再生、特に歯槽骨、歯根セメント質又はＰＤＬの再生に使用するための注入可能な水性インプラント製剤を調製するために使用できる乾燥インプラント組成物を見い出すことであり、その注入可能な水性インプラント製剤とは、テーパーシステム及びゲージ１８のカニューレを介して押し出すことができ、先行技術のインプラント製剤の欠点を有していないものである。
天然骨に由来するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子及び天然架橋繊維状コラーゲンを含む乾燥インプラント組成物の３００以上のプロトタイプの調製方法、成分及び成分の割合を変化させ、乾燥インプラント組成物の再水和及び均一混合によって得られた製剤をゲージ１８カニューレ（実施例９に記載）を使用する押し出し試験に付すことによって、その発明者らは、再水和され均一混合された水性インプラント製剤のテーパーシステム及びゲージ１８のカニューレを介しての押し出し適性を予想外に提供する、これらの乾燥インプラント組成物の特徴を発見し、そして、後者の製剤は、再生が行われる自然環境に近いマトリックスを提供する。
上記の目的は、国際ＰＣＴ特許出願WO-2019/115795の特許請求の範囲に定義される発明によって達成される。
その特許出願の発明は以下に関する：
－ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片との混合物から本質的になる乾燥インプラント組成物であって、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が１．８～４．５である、組成物、
－２５～４５w/w％の上記の乾燥インプラント組成物を薬学的に許容し得る水性ビヒクルと再水和及び均一混合することによって、テーパーシステム及びゲージ１８（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して押し出し可能な口腔組織再生に使用するための注入可能な水性インプラント製剤を調製するための、その乾燥インプラント組成物の使用、並びに
－口腔組織再生に使用するための注入可能な水性インプラント製剤であって、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して６０Ｎを超えない力で押し出すことができ、そして滅菌水又は滅菌等張食塩水と再水和及び均一混合された２５～４５w/w％の上記の乾燥インプラント組成物を含む製剤。
－ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片との混合物から本質的になる乾燥インプラント組成物であって、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が１．８～４．５である、組成物、
－２５～４５w/w％の上記の乾燥インプラント組成物を薬学的に許容し得る水性ビヒクルと再水和及び均一混合することによって、テーパーシステム及びゲージ１８（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して押し出し可能な口腔組織再生に使用するための注入可能な水性インプラント製剤を調製するための、その乾燥インプラント組成物の使用、並びに
－口腔組織再生に使用するための注入可能な水性インプラント製剤であって、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して６０Ｎを超えない力で押し出すことができ、そして滅菌水又は滅菌等張食塩水と再水和及び均一混合された２５～４５w/w％の上記の乾燥インプラント組成物を含む製剤。
「本質的に…の混合物からなる」という用語は、非常に高い割合、通常、乾燥インプラントの少なくとも９９重量％が、記載された混合物及び最大６％の無機塩（例えば、塩化ナトリウムなど）からなることを意味し、通常、乾燥インプラントの最大１重量％である他の成分は、天然物に由来し、注入可能な水性インプラント製剤の押し出し挙動に大きな影響を与えない。そのような成分は、脂肪、硫酸塩灰分、グルコサミン、ガラクトサミン、並びにペリオスチン、デコリン及びルミカンなどの非常に少量の残留タンパク質の一部、又は同様のタンパク質であろう。他の成分は、合成ポリマー、ポリエチレンオキシド、ポリプロピレンオキシド、又は合成潤滑剤のいずれも包含しない。他の成分は、スタチン又は人工ヒドロキシアパタイト、即ち、非生物学的起源のヒドロキシアパタイトのいずれも包含しない。
「天然骨由来のナノ結晶ハイドロキシアパタイト粒子」は、天然骨のナノ結晶構造の保存を可能にする方法によって天然骨から誘導された粒子である。このような方法は、天然骨のミネラル部分の再結晶が起こらないように十分に低い温度、通常は７００℃を超えない温度で実行しなければならない。
適切なそのような方法は、米国特許第5,167,961号又は第5,417,975号に開示されている。それは、アンモニアと共に加熱することによる脱脂骨中の有機物の分解、６０℃未満の温度で流水で洗浄することによる可溶化分解生成物の抽出、及び２５０℃～６００℃の間の温度で空気中での骨ミネラルの処理を伴うが、これらは天然骨の骨小柱構造及びナノ結晶構造の保存を可能にするためであり、これにより有機不純物又はタンパク質含量が非常に低いナノ結晶ヒドロキシアパタイトを与える。天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子は、上記のナノ結晶ヒドロキシアパタイトを粉砕及びふるい分けすることによって得ることができる。
天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子は、Geistlich Bio-Oss（登録商標）Small Granules（Geistlich Pharma AG, CH-6110, Switzerlandから入手可能）を粉砕及びふるい分けすることによっても便利に得ることができる。
その発明の組成物に組み込むのに適した「天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子」は、ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する。
実際、天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子のサイズが２００μmを超える場合、再水和及び均一混合によって得られるインプラント製剤は、ゲージ１８（内径０．８３８mm）のシリンジカニューレを詰まらせる傾向があり、そして天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子のサイズが５０μm未満である場合、これらの小粒子に起因して炎症のリスクが高くなる。
よって５０～２００μmのサイズ範囲（ふるい分けによって決定、実施例１を参照のこと）が極めて重要である。
好ましくは、それらの天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子は、１００～１８０μmのサイズを有する（ふるい分けによって決定、実施例１を参照のこと）。すると炎症又は目詰まりのリスクが最小限に抑えられる。
「天然架橋繊維状コラーゲン材料」という用語は、そのテロペプチド構造及びその天然の架橋の大部分を保持することを可能にする方法によって天然の組織材料から誘導された繊維状コラーゲン材料を意味する。このような天然架橋繊維状コラーゲン材料は、酵素処理、化学架橋又は物理架橋（例えば、DeHydroThermal処理ＤＨＴ、ＵＶ照射など）をいずれも受けていない不溶性コラーゲン材料である。実際、後者の処理のいずれかは、天然組織材料に存在するテロペプチド構造及び／又は天然架橋を著しく変化させるかもしれない。
天然架橋繊維状コラーゲン材料は、加水分解及びＲＰ－ＨＰＬＣを含む既知の方法の修正によるデスモシン／イソデスモシン測定によって測定されるとき、５０～１００w/w％コラーゲン及び０～５０w/w％エラスチン、好ましくは７０～９５w/w％コラーゲン及び５～３０w/w％エラスチンを含有する、天然由来の組織から適切に誘導される（例えば、Guida E. et al. 1990 Development and validation of a high performance chromatography method for the determination of desmosines in tissues in Journal of Chromatography 又は Rodriguqe P 2008 Quantification of Mouse Lung Elastin During Prenatal Development in The Open Respiratory Medicine Journalを参照のこと）。そのような組織の例は、脊椎動物、特に哺乳動物（例えば、ブタ、ウシ、ウマ、ヒツジ、ヤギ、ウサギ）の腹膜又は心膜、胎盤膜、小腸粘膜下組織（ＳＩＳ）及び真皮を包含する。そのような組織は、好ましくは、ブタ、ウシ又はウマである。興味深い組織は、ブタ、ウシ又はウマの腹膜及び真皮である。
好ましくは、天然架橋繊維状コラーゲン材料は、ブタの真皮及びブタの腹膜又は心膜からなる群より選択される。
通常、コラーゲンは主にＩ型コラーゲン、III型コラーゲン又はそれらの混合物である。コラーゲンはまた、特にII型、IV型、VI型又はVIII型コラーゲンの一部、あるいはそれらの任意の組合せ又は任意のコラーゲン型の任意の組合せを包含してもよい。
通常、天然架橋繊維状コラーゲン材料は、５０～１００w/w％コラーゲン及び０～５０w/w％エラスチン、好ましくは７０～９５w/w％コラーゲン及び５～３０w/w％エラスチンを含有する。
天然組織に由来する適切な天然架橋繊維状コラーゲン材料は、アルカリ処理、酸処理及び有機溶媒による処理を含み、次に０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻む、EP-B1-1676592の「実施例」に記載されたものと同様の方法によって調製された、ブタ、ウシ又はウマの腹膜又は心膜からのコラーゲン膜である。
天然組織に由来する別の適切な天然架橋繊維状コラーゲン材料は、０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻まれたGeistlich Bio-Gide（登録商標）（Geistlich Pharma AGから市販されている）である。
天然組織に由来する別の適切な天然架橋繊維状コラーゲン材料は、アルカリ処理、酸処理、凍結乾燥及び有機溶媒による洗浄を含み、次に０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻む、EP-B1-2654816の実施例７に記載されたものと同様の方法によって調製されたブタ真皮である。
天然架橋繊維状コラーゲン材料が、円二色性分光法によって示されるとき、三重らせん構造を示す成熟コラーゲン繊維を包含することは興味深い。そのような繊維は確かに、口腔組織再生細胞、特に骨の再生のための細胞及びＰＤＬの再生のための細胞によるコロニー形成に有利な足場を形成する。
天然架橋繊維状コラーゲン材料は、０．５mmのふるいを通過する断片に存在する必要がある。そのような断片は、一般に、遠心ミルを含む手順によって天然架橋繊維状コラーゲンを粉砕し、コラーゲン断片をふるい分けすることによって得られる。
０．５mmのふるいを通過する断片に存在するという天然架橋繊維状コラーゲン材料の特徴は、テーパーシステム及びゲージ１８（内径０．８３８mm）のカニューレを介した押し出しにとって重要である。実際、多数のプロトタイプで実行された実験によって示されるように、天然架橋材料のより大きな断片、例えば、０．６又は０．７mmのふるいを通過する断片が乾燥インプラント組成物に使用される場合、乾燥インプラント組成物の再水和及び均一混合によって得られるインプラント製剤にはゲージ１８カニューレを詰まらせる実質的なリスクが存在する。
コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は、テーパーシステム及びゲージ１８（内径０．８３８mm）のカニューレを介した押し出しの別の重要なパラメーターである。
実際、多数のプロトタイプで実行された実験によって示されるように、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が１．８未満であるか、又は４．５を超える場合、再水和及び均一混合によって得られるインプラント製剤は容易に注入できず、テーパーシステム及びゲージ１８（内径０．８３８mm）のカニューレを介した押し出しに必要な力が大きすぎる。これは予想外の結果であり、明快な説明はないようである。押し出しに必要な力は、１．８から１．５では急激に増加するが、４．５から６では適度に増加する。ただし、多数のプロトタイプで実行された実験によって示されるように、比が４．５を超える場合（例えば、５）、インプラント製剤を押し出すために必要な力の再現性は十分ではない。市販のインプラント製品に必要とされる高い再現性は、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの比が１．８～４．５の場合にのみ達成される。
よって１．８～４．５のコラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比の範囲が重要である。
好ましくは、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は、２．５～４．２である。その範囲内では、押し出しに必要な力は通常はより小さい。
最も好ましくは、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は、２．５～４．０である。小さな力での押し出し結果の最高の再現性は、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのそのｗ／ｗ比を有する注入可能な水性インプラント製剤で実際に見い出された。
注入可能な水性インプラント製剤の押し出し適性を高めるために、乾燥インプラント組成物は、滅菌のための通常の放射線量、典型的には２７～３３kGyを使用して、ガンマ線又はＸ線照射によって滅菌されていることが適切である。このような処理は、天然架橋繊維状コラーゲンの特定の結合を実際に壊し、ひいてはそれの流動性及び押し出し適性に有利に働く。
「注入可能な水性インプラント製剤」という用語は、２５～４５w/w％の乾燥インプラント組成物を薬学的に許容し得る水性ビヒクルと再水和及び均一混合することによって調製されるインプラント製剤であって、特に歯周ポケット内の口腔組織再生のためにヒト又は動物体に便利に注入することができ、テーパーシステム及びゲージ１８（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して押し出すことができるインプラント製剤のことをいう。
通常、注入可能な水性インプラント製剤は、テーパーシステム及びゲージ１８（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して６０Ｎを超えない力で押し出すことができる。
一般に、その薬学的に許容し得る水性ビヒクルは、滅菌水、滅菌等張食塩水、血液又はその画分、通常は患者自身の血液である。
注入可能な水性インプラント製剤は、好ましくは、２５～４５w/w％の乾燥インプラント組成物、より好ましくは３０～４０w/w％の乾燥インプラント組成物を、滅菌水、滅菌等張食塩水又は血液と再水和及び均一混合することによって得られる。その量の乾燥インプラント組成物を使用する場合、注入可能な水性インプラント製剤は、シリンジからテーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して６０Ｎを超えない力で押し出すことができる新しい製剤である。
注入可能な水性インプラント製剤が、３０～４０w/w％の上記の乾燥インプラント組成物を滅菌水又は滅菌等張食塩水と再水和及び均一混合することによって得られる場合、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して注入可能な水性インプラント製剤を押し出すのに必要な力は、４０Ｎ未満、好ましくは２０Ｎ未満である。
注入可能な水性インプラント製剤が、３０～４０w/w％の上記の乾燥インプラント組成物を血液と再水和及び均一混合することによって得られる場合、薬学的に許容し得るビヒクル中に３０～４０w/w％の乾燥インプラント組成物を含有する注入可能な水性インプラント製剤を押し出すのに必要な力は、４５Ｎ未満、好ましくは２５Ｎ未満である。
国際ＰＣＴ特許出願WO-2019/115795の発明で使用される乾燥インプラント組成物は、以下の工程を含む方法によって調製することができる：
（ａ）ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子を提供すること、
（ｂ）アルカリ処理、酸処理及び有機溶媒による処理を含み、０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻む方法によって、粉砕された天然架橋繊維状コラーゲン材料を調製すること、
（ｃ）（ｂ）で得られた粉砕された天然架橋繊維状コラーゲン混合物を水溶液に加え、コラーゲンスラリーが得られるように激しく混合し、（ａ）で調製されたふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子を加えて激しく混合すること（ｐＨを４．２～７．５に維持して）、
（ｄ）（ｃ）で得られたナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子及びコラーゲンを含有する混合組成物を乾燥すること、並びに
（ｅ）（ｄ）で得られた乾燥インプラント組成物をガンマ線又はＸ線照射により滅菌すること。
（ａ）ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子を提供すること、
（ｂ）アルカリ処理、酸処理及び有機溶媒による処理を含み、０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻む方法によって、粉砕された天然架橋繊維状コラーゲン材料を調製すること、
（ｃ）（ｂ）で得られた粉砕された天然架橋繊維状コラーゲン混合物を水溶液に加え、コラーゲンスラリーが得られるように激しく混合し、（ａ）で調製されたふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子を加えて激しく混合すること（ｐＨを４．２～７．５に維持して）、
（ｄ）（ｃ）で得られたナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子及びコラーゲンを含有する混合組成物を乾燥すること、並びに
（ｅ）（ｄ）で得られた乾燥インプラント組成物をガンマ線又はＸ線照射により滅菌すること。
天然骨由来のセラミックのナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子は、上記のとおり、天然骨のナノ結晶構造の保存を可能にする方法によって天然骨から誘導された粒子である。
上記の方法で得られた高純度の骨ミネラルは、必要なサイズになるように粉砕及びふるい分けすることができる。
あるいは、必要なサイズを有する天然骨由来のセラミックの粒子は、粉砕及びふるい分け工程を用いて、Geistlich Bio-Oss（登録商標）（Geistlich Pharma AGから市販されている）から製造することができる。
工程（ｂ）の粉砕された天然架橋繊維状コラーゲンは、EP-B1-2654815の実施例７に記載されたものと同様の方法であって、水中でブタ、ウシ、ウマ、ヤギ又はウサギの皮を０．５～３０mmの欠片に粉砕し、アルコール又はケトンなどの水溶性溶媒を使用して水を除去し、ジクロロエタン若しくは塩化メチレンなどの塩素化炭化水素又はヘキサン若しくはトルエンなどの非塩素化炭化水素を使用して脱脂し、コラーゲンを１２．０を超えるｐＨの強力な無機塩基及び０～１のｐＨの強力な無機酸で処理し、アルコール、エーテル、ケトン及び塩素化炭化水素などの有機溶媒によって得られたスポンジの乾燥コラーゲン繊維を凍結乾燥及び洗浄し、真空下で溶媒を除去し、そして更に遠心ミル及びコラーゲン断片のふるい分けを伴う手順により洗浄されたコラーゲンスポンジを０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻むことを含む方法によって調製することができる。
工程（ｂ）の粉砕された天然架橋繊維状コラーゲンはまた、EP-B1-1676592に記載されたものと同様の方法であって、ブタ、ウシ、ウマの腹膜又は心筋膜を機械的処理により肉及び獣脂から離し、水で洗浄し、１～５％水酸化ナトリウム溶液で処理し、水で洗浄し、０．２～０．８％塩酸で酸性化し、ｐＨ ３．５まで水で洗浄し、ＮａＨＣＯ３溶液で中和し、水で洗浄し、アルコール又はケトンなどの水溶性溶媒で脱水し、ヘキサンなどの炭化水素で脱脂し、そして更に遠心ミル及びコラーゲン断片のふるい分けを伴う手順により洗浄されたコラーゲン膜を０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻むことを含む方法によって調製することができる。
工程（ｃ）において、工程（ｂ）で調製された粉砕された天然架橋繊維状コラーゲンが水溶液に加えられ、コラーゲンスラリーが得られるように激しく混合され、次に工程（ａ）で調製された、ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子がコラーゲンスラリーに加えられ、スラリーと激しく混合される。
通常、工程（ｃ）で測定されるｐＨは、４．２～７．５、好ましくは４．５～７．５である。
工程（ｄ）は一般に、ナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、（ｃ）で得られたコラーゲンとを含有する混合組成物を、凍結乾燥又は好ましくは減圧下で風乾することによって乾燥させることを含む。
工程（ｂ）で得られた乾燥インプラント組成物の含水量は、カールフィッシャー滴定によって測定されるとき、一般に３～７％である。
工程（ｄ）の後には、一般には滅菌用の通常の放射線量、典型的には２７～３３kGyを使用するガンマ線又はＸ線照射による滅菌の工程（ｅ）が、必要に応じて続く。
その発明の国際ＰＣＴ特許出願WO-2019/115795は更に、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して６０Ｎを超えない力で押し出すことができ、滅菌水又は滅菌等張食塩水と再水和及び均一混合された２５～４５w/w％の上記の乾燥インプラント組成物を含む、口腔組織再生に使用するための新しい注入可能な水性インプラント製剤に関する。
注入可能な水性インプラント製剤が、滅菌水又は滅菌等張食塩水と再水和及び均一混合された３０～４０w/w％の上記の乾燥インプラント組成物を含む場合、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して注入可能な水性インプラント製剤を押し出すのに必要な力は、４０Ｎ未満、多くの場合２０Ｎ未満である。
骨形成細胞は、その発明の注入可能な水性インプラント製剤においてインビトロで増殖できることが観察されている。これは、移植時に、再生が行われる自然のインビボ環境に非常に近いマトリックスを提供する、その注入可能な水性インプラント製剤の高い生体適合性を示している。
上記の注入可能な水性インプラント製剤は、その押し出し特性を維持しながら、ガンマ線又はＸ線照射によって滅菌することはできない。実際、その製剤がガンマ線又はＸ線照射を受けると、フリーラジカルが放出され、これがコラーゲンの制御されない架橋を引き起こし、そのため、製剤は１８ゲージ（内径０．８３８mm）のカニューレを介して押し出せないか、又は手作業で加えるには大きすぎる力を用いる場合のみ、そのようなカニューレを介して押し出せるかである。
コラーゲンを含有する上記の注入可能な水性インプラント製剤に十分な量のアスコルビン酸を添加すると、その押し出し特性を維持しながら、ガンマ線又はＸ線照射によって滅菌できることがわかった。アスコルビン酸は、ガンマ線又はＸ線照射による滅菌中に放出されたラジカルを捕捉するために消費され、そしてコラーゲンの制御されない架橋を回避する。アスコルビン酸は、そのような滅菌中に消費されると予想される量と比較して過剰に追加する必要がある。
よって残留アスコルビン酸をいくらか（一般に少なくとも０．０５％（w/w））含有する滅菌された注入可能な水性インプラント製剤は、滅菌前の注入可能な水性インプラント製剤と同じ力でテーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して押し出すことができる。滅菌された注入可能な水性インプラント製剤は、室温で少なくとも９か月間保存された場合、それらの押し出し特性を保持する。
よって本発明は、少なくとも０．０５％（w/w）アスコルビン酸を含有することを特徴とする、ガンマ線又はＸ線照射によって滅菌され、ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片との２５～４５w/w％の混合物（ここで、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は１．８～４．５である）を含む、注入可能な水性インプラント製剤に関する。
上記の滅菌された注入可能な水性インプラント製剤は、室温で少なくとも９か月間保存された場合、それらの押し出し特性を保持する。
その注入可能な水性インプラント製剤は、室温で少なくとも９か月間保存した後、特にその押し出し挙動に関しては安定したままである。
注入可能な水性インプラント製剤は、０．１～１％（w/w）のアスコルビン酸を含有し得る。１つの実施態様によれば、それは０．２～０．５％（w/w）のアスコルビン酸を含有する。
コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は１．８～４．５である。２．５～４．２の場合もある。１つの実施態様によれば、２．５～４．０である。１つの実施態様によれば、３．９～４．１である。
「ふるい分けによって決定されるときｘ～ｙμmのサイズを有する粒子」という表現は、「ｙμm」のふるいを通過するが、「ｘμm」のふるいによって保持される粒子を意味する。「天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子は、ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmである」という表現は、「２００μmのふるいを通過するが、５０μmのふるいによって保持される天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子」を意味する。ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μmのサイズ及び１２５～１８０μmのサイズを有するそのような粒子の選択は、実施例１の１）に示されている。
天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子のサイズを決定するために、M. Konert et al., 1997, Sedimentology 44: 523-535に記載されているような光散乱に基づくレーザー法を使用する場合、球形から遠く離れた、そのような粒子の楕円形／縦長形状に起因して、実質的により大きなサイズが測定される（図５、左側を参照のこと）。例えば、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するそのような粒子のサイズを決定するためにその方法を使用する場合、結果は、粒子の１０％が２８１．８７μmを超える１８９．９４μmの平均値を示した。
天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子のサイズは、ふるい分けによって決定されるとき好ましくは１００～１８０μmである。
１つの実施態様によれば、天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子のサイズは、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmである。
「天然架橋繊維状コラーゲン材料」という用語は、そのテロペプチド構造及びその天然の架橋の大部分を保持することを可能にする方法によって天然の組織材料から誘導された繊維状コラーゲン材料を意味する。このような天然架橋繊維状コラーゲン材料は、酵素処理、化学架橋又は物理架橋（例えば、DeHydroThermal処理ＤＨＴ、ＵＶ照射など）をいずれも受けていない不溶性コラーゲン材料である。実際、後者の処理のいずれかは、天然組織材料に存在するテロペプチド構造及び／又は天然架橋を著しく変化させるかもしれない。
天然架橋繊維状コラーゲン材料は、加水分解及びＲＰ－ＨＰＬＣを含む既知の方法の修正によるデスモシン／イソデスモシン測定によって測定されるとき、５０～１００w/w％コラーゲン及び０～５０w/w％エラスチン、好ましくは７０～９５w/w％コラーゲン及び５～３０w/w％エラスチンを含有する天然由来の組織から適切に誘導される（例えば、Guida E. et al. 1990 Development and validation of a high performance chromatography method for the determination of desmosines in tissues in Journal of Chromatography 又は Rodriguqe P 2008 Quantification of Mouse Lung Elastin During Prenatal Development in The Open Respiratory Medicine Journalを参照のこと）。そのような組織の例は、脊椎動物、特に哺乳動物（例えば、ブタ、ウシ、ウマ、ヒツジ、ヤギ、ウサギ）の腹膜又は心膜、胎盤膜、小腸粘膜下組織（ＳＩＳ）及び真皮を包含する。そのような組織は、好ましくは、ブタ、ウシ又はウマである。興味深い組織は、ブタ、ウシ又はウマの腹膜及び真皮である。
好ましくは、天然架橋繊維状コラーゲン材料は、ブタの真皮及びブタの腹膜又は心膜からなる群より選択される。
通常、天然架橋繊維状コラーゲン材料は、５０～１００w/w％コラーゲン及び０～５０w/w％エラスチン、好ましくは７０～９５w/w％コラーゲン及び５～３０w/w％エラスチンを含有する。
天然組織に由来する適切な天然架橋繊維状コラーゲン材料は、アルカリ処理、酸処理及び有機溶媒による処理を含み、次に０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻む、EP-B1-1676592の「実施例」に記載されたものと同様の方法によって調製された、ブタ、ウシ又はウマの腹膜又は心膜からのコラーゲン膜である。
天然組織に由来する別の適切な天然架橋繊維状コラーゲン材料は、０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻まれたGeistlich Bio-Gide（登録商標）（Geistlich Pharma AGから市販されている）である。
天然組織に由来する別の適切な天然架橋繊維状コラーゲン材料は、アルカリ処理、酸処理、凍結乾燥及び有機溶媒による洗浄を含み、次に０．５mmのふるいを通過する断片に細かく刻む、EP-B1-2654816の実施例７に記載されたものと同様の方法によって調製されたブタ真皮である。
ガンマ線又はＸ線照射によって滅菌された上記の注入可能な水性インプラント製剤は、例えば、実施例９の３）に詳細に記載されている押し出し試験を使用して、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して６０Ｎを超えない力で押し出すことができる。このような力は、シリンジに手作業で加えることができる。同じ押し出し特性が、滅菌前の注入可能な水性インプラント製剤で見られた。
好ましくは、注入可能な水性インプラント製剤は、ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片との３０～４０w/w％の混合物（ここで、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は１．８～４．５である）を含む。
注入可能な水性インプラント製剤は次に、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して３０Ｎを超えない力で押し出すことができる。そのような力は、シリンジに手作業で容易に加えることができる。
１つの実施態様によれば、注入可能な水性インプラント製剤は、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維性コラーゲン材料の断片との２９．５～３０．５w/w％の混合物（ここで、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は１．８～４．５である）を含む。
注入可能な水性インプラント製剤は次に、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して１０Ｎを超えない力で押し出すことができる。このような力は、シリンジ（小さいサイズのものであっても）に手作業で加えるのに便利である。
本発明はまた、注入可能な水性インプラント製剤を含有する、すぐに使えるシリンジに関する。このようなシリンジは、口腔組織再生に使用するための上記の注入可能な水性インプラント製剤を１８ゲージのカニューレを介して注入するために顎顔面手術で使用するのに便利である。
本発明はまた、上記の注入可能な水性インプラント製剤を調製するための方法であって、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片を滅菌水又は等張液に加え、コラーゲンスラリーを生成するように、６０℃を超える温度で酸性ｐＨで均一混合し、コラーゲンスラリーに天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子を、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が１．８～４．５になるように加えて、均一混合し、０．１５～０．５％w/wのアスコルビン酸を加えて均一混合し、そしてガンマ線又はＸ線照射により滅菌することを含む方法に関する。
上記の注入可能な水性インプラント製剤はまた、国際ＰＣＴ特許出願WO-2019/115795に記載されている方法であって、滅菌水又は滅菌等張食塩水中で、ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片との混合物（ここで、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は１．８～４．５である）から本質的になる２５～４５w/w％の乾燥インプラント組成物を再水和及び均一混合し、次に０．１５～０．５w/w％のアスコルビン酸を加えて均一混合し、そしてガンマ線又はＸ線照射で滅菌することを含む方法によって得ることができる。
一般に、ガンマ線又はＸ線照射による滅菌は２５～３３Gyで行われる。
注入可能な水性インプラント製剤を含有する上記のすぐに使えるシリンジは、一般にシリンジに上記の注入可能な水性製剤を導入し、充填されたシリンジへのガンマ線又はＸ線照射により滅菌を行うことによって調製される。すぐに使えるシリンジは、少なくとも９か月間使用できる。
本発明は、本発明の好ましい実施態様の説明例及び添付の図面を参照して更に詳細に説明される：
図１は、Medmixシリンジ混合システム（MEDMIX、SP 003-00M-02 /B、カタログ番号507211）を表し、（１）は乾燥生体材料を含有するシリンジであり、（２）は開口ルアー出口を備えたシリンジキャップであって、任意のルアーカニューレと適合性があるキャップであり、（３）は混合プロセス中にシリンジを閉じるための開口キャップであり、（４）は、プランジャーが取り外されると柔軟なミキサーである混合装置であり、（５）はプランジャーであって、取り外されてシリンジ内の材料を混合することができ、後でリセットされて材料を押し出すことができるプランジャーである。
図２は、Medmixシリンジ混合システムに添付されている操作説明書に提示されているMedmix混合手順のコピーである。
図３Ａは、実施例における乾燥インプラント組成物２を、等張食塩水（曲線（１））又は新鮮ヒト血液（曲線（２））と再水和及び均一混合することによって得られた注入可能な水性インプラント製剤の押し出し曲線を表す。
図３Ｂは、実施例における乾燥インプラント組成物４を、等張食塩水（曲線（３））又は新鮮ヒト血液（曲線（４））と再水和及び均一混合することによって得られた注入可能な水性インプラント製剤の押し出し曲線を表す。
図４は、乾燥インプラント組成物４（実施例６で調製）をヒト血液と再水和及び均一混合することによって得られた注入可能な水性インプラント製剤４の、５６１nmレーザー照射による励起を伴うＣＶ１０００共焦点スピニングディスク顕微鏡を使用する顕微鏡画像であり、増殖したＭＣ３Ｔ３ CytoLightRed細胞は明るく可視化される。
図５は、左側に天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子の走査型電子顕微鏡写真（ＳＥＭ）を、そして右側に合成β－ＴＣＰ粒子のＳＥＭを表す。
以下の実施例は、発明の範囲を限定することなく本発明を説明している。
原材料の調製
１）ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト微粒子の調製
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子は、US-A-5417975の実施例１～４に記載されているように、それぞれ１００～１５０μm又は１２５～１８０μmの追加のふるい分け工程を使用して、即ち、それぞれ１５０μmのふるいを通過するが１００μmのふるいを通過しない粒子、又は１８０μmのふるいを通過するが１２５μmのふるいを通過しない粒子を選択して、皮質骨又は海綿骨から生成された。
あるいは、ナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子は、Geistlich Bio-Oss（登録商標）Small Granules（Geistlich Pharma AG, CH-6110, Switzerlandから入手可能）を粉砕し、ピストルを使用して注意深く衝突させ、それぞれ１００～１５０μm（１５０μmのふるいを通過するが１００μmのふるいを通過しない粒子）又は１２５～１８０μm（１８０μmのふるいを通過するが１２５μmのふるいを通過しない粒子）の追加のふるい分け工程によって生成された。
上で調製された、ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子を、使用するまでガラス瓶に保存した。
２）コラーゲンＡの調製
ブタの皮を肉挽き器で１～２０mmの小片に砕いた。アルコール又はケトンなどの水溶性溶媒を使用して水を除去した。コラーゲン繊維は、ジクロロエタン若しくは塩化メチレンなどの塩素化炭化水素、又はヘキサン若しくはトルエンなどの非塩素化炭化水素を使用して脱脂した。溶媒を除去した後、コラーゲンを、１２を超えるｐＨの強力な無機塩基で６～２４時間処理し、ｐＨ ０～１の強力な無機酸で１～１２時間処理した。水で濯ぐことにより過剰の酸を除去し、懸濁液を、無機塩などの膨潤調節剤の存在下でコラーゲン繊維の０．５～２％の均質な懸濁液にホモジナイズした。懸濁液を凍結乾燥により乾燥させ、得られたスポンジの乾燥コラーゲン繊維を、アルコール、エーテル、ケトン及び塩素化炭化水素などの異なる有機溶媒で連続的に洗浄し、次に溶媒を真空下で蒸発させて１％未満の溶媒残留物にした。
洗浄したコラーゲンスポンジ１×１cmを、はさみを使って手で切った。切断片は、最初に０．５～４．０mmのふるいを包含するカッティングミルを使用し、次に台形の穴を包含する０．５mmのふるいを備えた遠心ミル（Retsch、ZM200）を使用することによって更に細かく刻まれた。あるいは、はさみで切った小片は遠心ミルで直接砕かれた。
こうして０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン断片からなるコラーゲンＡが得られた。
３）コラーゲンＢの調製
若いブタの腹膜は、機械的手段によって肉及び獣脂を完全に取り除き、流水下で洗浄し、２％ ＮａＯＨ溶液で１２時間処理した。次に膜を流水下で洗浄し、０．５％ ＨＣｌで酸性化した。材料がその厚さ全体にわたって酸性化された後（約１５分）、ｐＨ ３．５が得られるまで材料を洗浄した。次に材料を７％食塩水で縮め、１％ ＮａＨＣＯ３溶液で中和し、流水下で洗浄した。次に材料をアセトンで脱水し、ｎ－ヘキサンで脱脂した。
材料をエタノールエーテルを使用して乾燥させ、カッティングミル（例えば、Fritsch製のPulverisette 25：www.fritsch.de./produkte/mahlen/schneidmuehlen/pulverisette-25又はRetsch製のSM300：www.retsch.de/de/produkte/zerkleinern/schneidmuehlen.htlmを参照のこと）であって、０．５～１．０mmの台形ふるいを包含するミルで粉砕した。
台形の穴を含有する０．５mmのふるいを備えた遠心ミル（Retsch、ZM200）を使用することにより、切断されたコラーゲン繊維セグメントを更に細かく刻んだ。
こうして０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン断片からなるコラーゲンＢが得られた。
１）ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト微粒子の調製
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子は、US-A-5417975の実施例１～４に記載されているように、それぞれ１００～１５０μm又は１２５～１８０μmの追加のふるい分け工程を使用して、即ち、それぞれ１５０μmのふるいを通過するが１００μmのふるいを通過しない粒子、又は１８０μmのふるいを通過するが１２５μmのふるいを通過しない粒子を選択して、皮質骨又は海綿骨から生成された。
あるいは、ナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子は、Geistlich Bio-Oss（登録商標）Small Granules（Geistlich Pharma AG, CH-6110, Switzerlandから入手可能）を粉砕し、ピストルを使用して注意深く衝突させ、それぞれ１００～１５０μm（１５０μmのふるいを通過するが１００μmのふるいを通過しない粒子）又は１２５～１８０μm（１８０μmのふるいを通過するが１２５μmのふるいを通過しない粒子）の追加のふるい分け工程によって生成された。
上で調製された、ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子を、使用するまでガラス瓶に保存した。
２）コラーゲンＡの調製
ブタの皮を肉挽き器で１～２０mmの小片に砕いた。アルコール又はケトンなどの水溶性溶媒を使用して水を除去した。コラーゲン繊維は、ジクロロエタン若しくは塩化メチレンなどの塩素化炭化水素、又はヘキサン若しくはトルエンなどの非塩素化炭化水素を使用して脱脂した。溶媒を除去した後、コラーゲンを、１２を超えるｐＨの強力な無機塩基で６～２４時間処理し、ｐＨ ０～１の強力な無機酸で１～１２時間処理した。水で濯ぐことにより過剰の酸を除去し、懸濁液を、無機塩などの膨潤調節剤の存在下でコラーゲン繊維の０．５～２％の均質な懸濁液にホモジナイズした。懸濁液を凍結乾燥により乾燥させ、得られたスポンジの乾燥コラーゲン繊維を、アルコール、エーテル、ケトン及び塩素化炭化水素などの異なる有機溶媒で連続的に洗浄し、次に溶媒を真空下で蒸発させて１％未満の溶媒残留物にした。
洗浄したコラーゲンスポンジ１×１cmを、はさみを使って手で切った。切断片は、最初に０．５～４．０mmのふるいを包含するカッティングミルを使用し、次に台形の穴を包含する０．５mmのふるいを備えた遠心ミル（Retsch、ZM200）を使用することによって更に細かく刻まれた。あるいは、はさみで切った小片は遠心ミルで直接砕かれた。
こうして０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン断片からなるコラーゲンＡが得られた。
３）コラーゲンＢの調製
若いブタの腹膜は、機械的手段によって肉及び獣脂を完全に取り除き、流水下で洗浄し、２％ ＮａＯＨ溶液で１２時間処理した。次に膜を流水下で洗浄し、０．５％ ＨＣｌで酸性化した。材料がその厚さ全体にわたって酸性化された後（約１５分）、ｐＨ ３．５が得られるまで材料を洗浄した。次に材料を７％食塩水で縮め、１％ ＮａＨＣＯ３溶液で中和し、流水下で洗浄した。次に材料をアセトンで脱水し、ｎ－ヘキサンで脱脂した。
材料をエタノールエーテルを使用して乾燥させ、カッティングミル（例えば、Fritsch製のPulverisette 25：www.fritsch.de./produkte/mahlen/schneidmuehlen/pulverisette-25又はRetsch製のSM300：www.retsch.de/de/produkte/zerkleinern/schneidmuehlen.htlmを参照のこと）であって、０．５～１．０mmの台形ふるいを包含するミルで粉砕した。
台形の穴を含有する０．５mmのふるいを備えた遠心ミル（Retsch、ZM200）を使用することにより、切断されたコラーゲン繊維セグメントを更に細かく刻んだ。
こうして０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン断片からなるコラーゲンＢが得られた。
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子とコラーゲンとを含有する混合組成物の乾燥及び滅菌
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子とコラーゲン（下記の実施例３～８に記載されるとおり得られる）とを含有する混合組成物を、凍結乾燥又は減圧下で風乾することにより乾燥させ、ガンマ線又はＸ線照射により滅菌した。
１）凍結乾燥
５０mlシリンジから、裏側から１ml環状オレフィンコポリマー（Cyclic Olefin Copolymer）（ＣＯＣ）シリンジにその塊を充填した。１mlシリンジあたり約０．５mlの容量が充填された。シリンジは、４℃の冷蔵庫で５時間、両側から閉じて保存した。次にシリンジは両側を開いて、凍結乾燥機の金属板に、各シリンジが金属板との大きな接触面がとれるように横になる位置に置いた。次に以下の凍結乾燥プログラムが開始された。
１．７時間で－４０℃まで凍結
２．－４０℃で４時間保持
３．－１０℃、８５０μbarで２０時間の一次乾燥
４．＋２０℃、１００μbarで６時間の二次乾燥
あるいは、粘性コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトの塊は、シリンジ内ではなく、ステンレス鋼板上又は直径２５mm未満及び深さ１０mm未満の小さなステンレス鋼の形状内で凍結乾燥された。凍結乾燥後に得られた乾燥材料を、１．５mm～１０mmのふるいを備えた遠心ミル（Retsch、ZM200）を使用することにより、０．１～２mmのサイズの粒子に粉砕した。ミルでの粉砕によって、再構成された最終生成物に更に小さなナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子が得られた。
あるいは、粉砕するために粘性コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトの塊を、シリンジの標準的なルアー出口から押し出し、ステンレス鋼板上に直線として形成した。次に材料をそのまま凍結乾燥した。
２）風乾
粘性コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトの塊、例えば、直線として形成されたものを、別法として、３０℃及び１０mbarの真空オーブン内で２４時間風乾した。
乾燥した直線を手で５～１０mmの長さの棒に分けた。
次に造粒された材料又は小さな棒を、開口ルアーを備えたシリンジキャップ及び開口キャップ（MEDMIX, CP 000-76M/D、カタログ番号506964）を有する３mlシリンジ混合システム（MEDMIX、SP 003-00M-02 /B、カタログ番号507211）に充填した。
３）滅菌
凍結乾燥又は減圧下での風乾によって得られた乾燥インプラント組成物を、２７～３３kGyのガンマ線又はＸ線照射によってシリンジ内で滅菌した。
カールフィッシャー滴定により測定したとき、滅菌直後の乾燥製品の含水量は３～７％であった。
凍結乾燥、風乾及び乾燥インプラント溶液へのガンマ線又はＸ線照射による滅菌の上記の工程は、実施例３～８に記載されるとおり調製された乾燥インプラント組成物１～６に対して実施された。
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子とコラーゲン（下記の実施例３～８に記載されるとおり得られる）とを含有する混合組成物を、凍結乾燥又は減圧下で風乾することにより乾燥させ、ガンマ線又はＸ線照射により滅菌した。
１）凍結乾燥
５０mlシリンジから、裏側から１ml環状オレフィンコポリマー（Cyclic Olefin Copolymer）（ＣＯＣ）シリンジにその塊を充填した。１mlシリンジあたり約０．５mlの容量が充填された。シリンジは、４℃の冷蔵庫で５時間、両側から閉じて保存した。次にシリンジは両側を開いて、凍結乾燥機の金属板に、各シリンジが金属板との大きな接触面がとれるように横になる位置に置いた。次に以下の凍結乾燥プログラムが開始された。
１．７時間で－４０℃まで凍結
２．－４０℃で４時間保持
３．－１０℃、８５０μbarで２０時間の一次乾燥
４．＋２０℃、１００μbarで６時間の二次乾燥
あるいは、粘性コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトの塊は、シリンジ内ではなく、ステンレス鋼板上又は直径２５mm未満及び深さ１０mm未満の小さなステンレス鋼の形状内で凍結乾燥された。凍結乾燥後に得られた乾燥材料を、１．５mm～１０mmのふるいを備えた遠心ミル（Retsch、ZM200）を使用することにより、０．１～２mmのサイズの粒子に粉砕した。ミルでの粉砕によって、再構成された最終生成物に更に小さなナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子が得られた。
あるいは、粉砕するために粘性コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトの塊を、シリンジの標準的なルアー出口から押し出し、ステンレス鋼板上に直線として形成した。次に材料をそのまま凍結乾燥した。
２）風乾
粘性コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトの塊、例えば、直線として形成されたものを、別法として、３０℃及び１０mbarの真空オーブン内で２４時間風乾した。
乾燥した直線を手で５～１０mmの長さの棒に分けた。
次に造粒された材料又は小さな棒を、開口ルアーを備えたシリンジキャップ及び開口キャップ（MEDMIX, CP 000-76M/D、カタログ番号506964）を有する３mlシリンジ混合システム（MEDMIX、SP 003-00M-02 /B、カタログ番号507211）に充填した。
３）滅菌
凍結乾燥又は減圧下での風乾によって得られた乾燥インプラント組成物を、２７～３３kGyのガンマ線又はＸ線照射によってシリンジ内で滅菌した。
カールフィッシャー滴定により測定したとき、滅菌直後の乾燥製品の含水量は３～７％であった。
凍結乾燥、風乾及び乾燥インプラント溶液へのガンマ線又はＸ線照射による滅菌の上記の工程は、実施例３～８に記載されるとおり調製された乾燥インプラント組成物１～６に対して実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＡとを含有する乾燥インプラント組成物１の調製
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
水及び塩酸（２M）をスパチュラを用いてビーカー内で混合した。実施例１で得られた粉砕コラーゲンＡを加え、注意深く液体に押し込んで、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixer（CosSearch GmbH、Speedmixer DAC400.1FVZ）により２５００rpmで４分間均一混合した。コラーゲンスラリーを、混合手順中にわずかに加熱した。次にコラーゲンスラリーを４℃の冷蔵庫で３０分間冷却した。
コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間再度混合した。次に実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm、又は１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子を、コラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで２分間混合した。得られたｐＨは約４．５であった。
上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
水及び塩酸（２M）をスパチュラを用いてビーカー内で混合した。実施例１で得られた粉砕コラーゲンＡを加え、注意深く液体に押し込んで、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixer（CosSearch GmbH、Speedmixer DAC400.1FVZ）により２５００rpmで４分間均一混合した。コラーゲンスラリーを、混合手順中にわずかに加熱した。次にコラーゲンスラリーを４℃の冷蔵庫で３０分間冷却した。
コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間再度混合した。次に実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm、又は１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子を、コラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで２分間混合した。得られたｐＨは約４．５であった。
上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の乾燥
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＡとを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ４．５を与える、乾燥インプラント組成物１は、こうして得られた。
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＡとを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ４．５を与える、乾燥インプラント組成物１は、こうして得られた。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとを含有する乾燥インプラント組成物２の調製。
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで１分間均一混合した。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで４時間加熱した。次にコラーゲンスラリーを周囲温度で又は冷蔵庫内又は水浴中で３０分間冷却した。
コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間再度混合した。次に実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで２分間混合した。得られたｐＨは６．２であった。
上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで１分間均一混合した。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで４時間加熱した。次にコラーゲンスラリーを周囲温度で又は冷蔵庫内又は水浴中で３０分間冷却した。
コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間再度混合した。次に実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで２分間混合した。得られたｐＨは６．２であった。
上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の乾燥
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ６．２を与える、乾燥インプラント組成物２は、こうして得られた。
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ６．２を与える、乾燥インプラント組成物２は、こうして得られた。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの（w/w）比が２．６７である、コラーゲンＢ １部に対してコラーゲンＡ ２部の混合物とを含有する、乾燥インプラント組成物３の調製
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
水及び塩酸（２M）をスパチュラを用いてビーカー内で混合した。実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く液体に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間均一混合し、得られるｐＨを０．９～１とした。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで２０分間加熱した。次にコラーゲンスラリーを２５℃の水浴中で３０分間冷却した。
実施例１で得られた粉砕コラーゲンＡを加え、コラーゲンスラリーに注意深く押し込んで、全てのコラーゲンを湿らせた。次にスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで４分間混合した。
最後に、実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで２分間混合した。得られたｐＨは約４．５であった。
上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
水及び塩酸（２M）をスパチュラを用いてビーカー内で混合した。実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く液体に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間均一混合し、得られるｐＨを０．９～１とした。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで２０分間加熱した。次にコラーゲンスラリーを２５℃の水浴中で３０分間冷却した。
実施例１で得られた粉砕コラーゲンＡを加え、コラーゲンスラリーに注意深く押し込んで、全てのコラーゲンを湿らせた。次にスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで４分間混合した。
最後に、実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで２分間混合した。得られたｐＨは約４．５であった。
上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト－コラーゲン組成物の乾燥
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの（w/w）比が２．６７である、コラーゲンＢ １部に対してコラーゲンＡ ２部の混合物とを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ４．５を与える、乾燥インプラント組成物３は、こうして得られた。
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの（w/w）比が２．６７である、コラーゲンＢ １部に対してコラーゲンＡ ２部の混合物とを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ４．５を与える、乾燥インプラント組成物３は、こうして得られた。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの（w/w）比が２．６７である、コラーゲンＢ １部に対してコラーゲンＡ ２部の混合物とを含有する乾燥インプラント組成物４の調製。
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで１分間均一混合した。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで２０分間加熱した。次にコラーゲンスラリーを２５℃の水浴中で３０分間冷却した。
実施例１で得られた粉砕コラーゲンＡを加え、コラーゲンスラリーに注意深く押し込んで、全てのコラーゲンを湿らせた。次にスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで４分間混合した。
最後に、実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで２分間混合した。得られたｐＨは６．０であった。
上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで１分間均一混合した。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで２０分間加熱した。次にコラーゲンスラリーを２５℃の水浴中で３０分間冷却した。
実施例１で得られた粉砕コラーゲンＡを加え、コラーゲンスラリーに注意深く押し込んで、全てのコラーゲンを湿らせた。次にスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで４分間混合した。
最後に、実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで２分間混合した。得られたｐＨは６．０であった。
上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト－コラーゲン組成物の乾燥
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が２．６７である、コラーゲンＢ １部に対してコラーゲンＡ ２部の混合物とを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ６．０を与える、乾燥インプラント組成物４は、こうして得られた。
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が２．６７である、コラーゲンＢ １部に対してコラーゲンＡ ２部の混合物とを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ６．０を与える、乾燥インプラント組成物４は、こうして得られた。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＡとを含有する乾燥インプラント組成物５の調製。
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
粉砕コラーゲンＡを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子を加え、ビーカーをねじ蓋で閉じた。水－コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトスラリーを、ボルテックスミキサーにより１分間、スクープにより１分間均一混合した。
得られたｐＨは６．１であった。
使用された材料の量は、次の表に記載される：
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
粉砕コラーゲンＡを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子を加え、ビーカーをねじ蓋で閉じた。水－コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトスラリーを、ボルテックスミキサーにより１分間、スクープにより１分間均一混合した。
得られたｐＨは６．１であった。
使用された材料の量は、次の表に記載される：
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト－コラーゲン組成物の乾燥
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＡとを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ６．１を与える、乾燥インプラント組成物５は、こうして得られた。
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＡとを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ６．１を与える、乾燥インプラント組成物５は、こうして得られた。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトＡの（w/w）比が２．０であるコラーゲンＡとを含有する乾燥インプラント組成物６の調製。
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
粉砕コラーゲンＡを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子を加え、ビーカーをねじ蓋で閉じた。水－コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトスラリーを、ボルテックスミキサーにより１分間、スクープにより１分間均一混合した。
得られたｐＨは５．８であった。
使用された材料の量は、次の表に記載される：
コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイト組成物の調製
粉砕コラーゲンＡを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。実施例１で調製されたふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト骨ミネラル微粒子を加え、ビーカーをねじ蓋で閉じた。水－コラーゲン－ナノ結晶ヒドロキシアパタイトスラリーを、ボルテックスミキサーにより１分間、スクープにより１分間均一混合した。
得られたｐＨは５．８であった。
使用された材料の量は、次の表に記載される：
ナノ結晶ヒドロキシアパタイト－コラーゲン組成物の乾燥
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの（w/w）比が２．０であるコラーゲンＡとを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ５．８を与える、乾燥インプラント組成物６は、こうして得られた。
凍結乾燥又は減圧下での風乾による乾燥及び滅菌は、実施例２に記載されたとおり実施された。
ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの（w/w）比が２．０であるコラーゲンＡとを含有し、実施例９に記載されたとおり実施された脱塩水での再水和後にｐＨ ５．８を与える、乾燥インプラント組成物６は、こうして得られた。
シリンジ内の乾燥インプラント組成物の再水和による注入可能な水性インプラント製剤を含有する、すぐに使えるシリンジの調製。
１）乾燥インプラント組成物の再水和及び均一混合によって得られた注入可能な水性インプラント製剤を含有する、すぐに使えるシリンジの調製
ａ）三方活栓バルブLuer-Lokアダプター及び１mlシリンジを使用
２）１mlシリンジ製品内の乾燥した滅菌ナノ結晶ヒドロキシアパタイト－コラーゲン組成物を、三方活栓バルブLuer（Luer-Lok）アダプター（BD Connecta、三方活栓、カタログ番号394600）、Vaclokシリンジ（Qosina、Vaclokシリンジ、カタログ番号C1097）及び通常の単回使用補助シリンジ１ml（Luer-Lok）を使用して再水和した。
コラーゲンを再水和するための液体は、脱塩水、等張食塩水、１５０mMリン酸ナトリウム緩衝液（ＮａＨ２ＰＯ４を脱塩水に溶解し、水酸化ナトリウムでｐＨを調整することによって調製）を含有するｐＨ ７．４のＰＢＳ溶液、又は血液であった。
シリンジ内の乾燥生体材料（実施例３～８の１つで得られた乾燥インプラント組成物）の重量は、既知であるか、又は測定された。ある量の再水和用液体を、３８重量％の乾燥生体材料を含有する注入可能なペーストを得るためなどに、補助シリンジに充填した。
次に製品シリンジを三方活栓バルブに接続し、三方活栓バルブの１８０°側バルブを閉鎖キャップで閉じた。三方活栓バルブの３番目の位置（製品シリンジから９０°）で、６０ml Vaclokシリンジをシステムに接続した。Vaclokシリンジのプランジャーを引き、５０mlの容量でロックすることにより、製品シリンジから空気を抜いた。次に三方バルブを１８０°回転させて製品シリンジ内の真空を保持し、一方液体を満たした補助シリンジによりVaclokシリンジを交換した。次に三方バルブを１８０°回転させた。真空のせいで、液体は自動的に製品シリンジに流れ込み、製品を湿らせた。製品シリンジへの完全な液体移動を保証するために、製品シリンジのプランジャーを引き戻した。材料を製品シリンジから補助シリンジに押し込んで戻す前に、材料を３０秒間静置して再水和を可能にし、この一連の操作を４０回繰り返して、均一混合された材料を得た。混合手順の後、三方活栓バルブは、テーパーシステム及び長さ２５．４mmの鈍端１８ゲージ（内径０．８３８mm）のカニューレであるアプリケーターにより置き換えられた。
乾燥インプラント組成物１～６のそれぞれと脱塩水との再水和及び均一混合によって得られた再構成された注入可能な水性インプラント製剤は、凍結乾燥前に測定されたｐＨに近いｐＨ、即ちそれぞれ約４．５、６．２、４．５、６．０、６．１及び５．８を有していた。
ｂ）３ml Medmixシリンジ混合システムを使用する
あるいは、乾燥材料の粒子を、Medmixシリンジ混合システム（MEDMIX、SP 003-00M-02/B、カタログ番号507211）（開口ルアーを備えたシリンジキャップ及び開口キャップ（MEDMIX, CP 000-76M/D、カタログ番号506964）を有する）で、脱塩水、等張食塩水、１５０mMリン酸ナトリウム緩衝液を含有するｐＨ７．４のＰＢＳ溶液又は血液で再水和し、これは、図１に表されており、ここで（１）は乾燥生体材料を含有するシリンジであり、（２）は開口ルアー出口を備えたシリンジキャップであって、任意のルアーカニューレと適合性があるキャップであり、（３）は混合プロセス中にシリンジを閉じるための開口キャップであり、（４）は、プランジャーが取り外されると柔軟なミキサーである混合装置であり、（５）はプランジャーであって、取り外されてシリンジ内の材料を混合することができ、後でリセットされて材料を押し出すことができるプランジャーである。
図２に提示されたMedmixの混合手順に従った。最適な結果を得るために、工程４の後、プランジャーを３回押して液体を材料に押し込み、材料を湿らせて、混合工程（工程６）を６０秒間実行する。工程８で全ての空気が除去される。
３）押し出し試験
得られた再構成された注入可能な水性インプラント製剤の押し出し適性を、張力及び圧力試験装置（Zwick&Roell、BT1-FR2.5TS.D14）で試験した。上で調製されたすぐに使えるシリンジをシリンジ保持器に垂直に置き、プランジャーを機械から押し下げると同時に、テーパーシステム及び鈍端１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレ（Nordson EFD、Precision Tip 18GA 1”、カタログ番号7018110）を含むアプリケーターを介して製品をシリンジから押し出す力を、以下のプログラムで測定した：
ｏ抵抗までの力：０．１Ｎ
ｏ抵抗までの速度：１００mm/分
ｏ試験速度：１mm/s、位置制御
ｏ試験の終了：力の限度、１５０Ｎ
ｏ力センサー：２００Ｎ
脱塩水、等張食塩水又はＰＢＳ溶液との再水和及び均一混合によって得られた全ての試験された注入可能なインプラント製剤、特に乾燥インプラント組成物１～６から調製された注入可能なインプラント製剤について、測定された力は４０Ｎを超えなかった。
血液との再水和及び均一混合によって得られた全ての試験された注入可能なインプラント製剤、特に乾燥インプラント組成物１～６から調製された注入可能なインプラント製剤について、測定された力は４５Ｎを超えなかった。
乾燥インプラント組成物１、２、３、４、５及び６から調製された、脱塩水、等張食塩水又はＰＢＳ溶液との再水和及び均一混合によって得られた注入可能なインプラント製剤について、測定された力は２０Ｎを超えなかった。
乾燥インプラント組成物１（ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＡとを含有する）及び乾燥インプラント組成物２（ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとを含有する）から調製された、血液との再水和及び均一混合によって得られた注入可能なインプラント製剤について、測定された力は２５Ｎを超えなかった。
図３Ａ及び３Ｂを参照のこと（これらは、乾燥インプラント組成物２及び４をそれぞれ等張食塩水又は新鮮ヒト血液と再水和及び均一混合することによって得られた注入可能なインプラント製剤の押し出し曲線を表す）。
－図３Ａにおいて、（１）及び（２）は、それぞれ等張食塩水及び新鮮ヒト血液で再水和された、乾燥インプラント組成物２（ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとを含有する）の押し出し曲線である。
－図３Ｂにおいて、（３）及び（４）は、それぞれ等張食塩水及び新鮮ヒト血液で再水和された、乾燥インプラント組成物４（ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの（w/w）比が２．６７である、コラーゲンＢ １部に対してコラーゲンＡ ２部の混合物とを含有する）の押し出し曲線である。
１）乾燥インプラント組成物の再水和及び均一混合によって得られた注入可能な水性インプラント製剤を含有する、すぐに使えるシリンジの調製
ａ）三方活栓バルブLuer-Lokアダプター及び１mlシリンジを使用
２）１mlシリンジ製品内の乾燥した滅菌ナノ結晶ヒドロキシアパタイト－コラーゲン組成物を、三方活栓バルブLuer（Luer-Lok）アダプター（BD Connecta、三方活栓、カタログ番号394600）、Vaclokシリンジ（Qosina、Vaclokシリンジ、カタログ番号C1097）及び通常の単回使用補助シリンジ１ml（Luer-Lok）を使用して再水和した。
コラーゲンを再水和するための液体は、脱塩水、等張食塩水、１５０mMリン酸ナトリウム緩衝液（ＮａＨ２ＰＯ４を脱塩水に溶解し、水酸化ナトリウムでｐＨを調整することによって調製）を含有するｐＨ ７．４のＰＢＳ溶液、又は血液であった。
シリンジ内の乾燥生体材料（実施例３～８の１つで得られた乾燥インプラント組成物）の重量は、既知であるか、又は測定された。ある量の再水和用液体を、３８重量％の乾燥生体材料を含有する注入可能なペーストを得るためなどに、補助シリンジに充填した。
次に製品シリンジを三方活栓バルブに接続し、三方活栓バルブの１８０°側バルブを閉鎖キャップで閉じた。三方活栓バルブの３番目の位置（製品シリンジから９０°）で、６０ml Vaclokシリンジをシステムに接続した。Vaclokシリンジのプランジャーを引き、５０mlの容量でロックすることにより、製品シリンジから空気を抜いた。次に三方バルブを１８０°回転させて製品シリンジ内の真空を保持し、一方液体を満たした補助シリンジによりVaclokシリンジを交換した。次に三方バルブを１８０°回転させた。真空のせいで、液体は自動的に製品シリンジに流れ込み、製品を湿らせた。製品シリンジへの完全な液体移動を保証するために、製品シリンジのプランジャーを引き戻した。材料を製品シリンジから補助シリンジに押し込んで戻す前に、材料を３０秒間静置して再水和を可能にし、この一連の操作を４０回繰り返して、均一混合された材料を得た。混合手順の後、三方活栓バルブは、テーパーシステム及び長さ２５．４mmの鈍端１８ゲージ（内径０．８３８mm）のカニューレであるアプリケーターにより置き換えられた。
乾燥インプラント組成物１～６のそれぞれと脱塩水との再水和及び均一混合によって得られた再構成された注入可能な水性インプラント製剤は、凍結乾燥前に測定されたｐＨに近いｐＨ、即ちそれぞれ約４．５、６．２、４．５、６．０、６．１及び５．８を有していた。
ｂ）３ml Medmixシリンジ混合システムを使用する
あるいは、乾燥材料の粒子を、Medmixシリンジ混合システム（MEDMIX、SP 003-00M-02/B、カタログ番号507211）（開口ルアーを備えたシリンジキャップ及び開口キャップ（MEDMIX, CP 000-76M/D、カタログ番号506964）を有する）で、脱塩水、等張食塩水、１５０mMリン酸ナトリウム緩衝液を含有するｐＨ７．４のＰＢＳ溶液又は血液で再水和し、これは、図１に表されており、ここで（１）は乾燥生体材料を含有するシリンジであり、（２）は開口ルアー出口を備えたシリンジキャップであって、任意のルアーカニューレと適合性があるキャップであり、（３）は混合プロセス中にシリンジを閉じるための開口キャップであり、（４）は、プランジャーが取り外されると柔軟なミキサーである混合装置であり、（５）はプランジャーであって、取り外されてシリンジ内の材料を混合することができ、後でリセットされて材料を押し出すことができるプランジャーである。
図２に提示されたMedmixの混合手順に従った。最適な結果を得るために、工程４の後、プランジャーを３回押して液体を材料に押し込み、材料を湿らせて、混合工程（工程６）を６０秒間実行する。工程８で全ての空気が除去される。
３）押し出し試験
得られた再構成された注入可能な水性インプラント製剤の押し出し適性を、張力及び圧力試験装置（Zwick&Roell、BT1-FR2.5TS.D14）で試験した。上で調製されたすぐに使えるシリンジをシリンジ保持器に垂直に置き、プランジャーを機械から押し下げると同時に、テーパーシステム及び鈍端１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレ（Nordson EFD、Precision Tip 18GA 1”、カタログ番号7018110）を含むアプリケーターを介して製品をシリンジから押し出す力を、以下のプログラムで測定した：
ｏ抵抗までの力：０．１Ｎ
ｏ抵抗までの速度：１００mm/分
ｏ試験速度：１mm/s、位置制御
ｏ試験の終了：力の限度、１５０Ｎ
ｏ力センサー：２００Ｎ
脱塩水、等張食塩水又はＰＢＳ溶液との再水和及び均一混合によって得られた全ての試験された注入可能なインプラント製剤、特に乾燥インプラント組成物１～６から調製された注入可能なインプラント製剤について、測定された力は４０Ｎを超えなかった。
血液との再水和及び均一混合によって得られた全ての試験された注入可能なインプラント製剤、特に乾燥インプラント組成物１～６から調製された注入可能なインプラント製剤について、測定された力は４５Ｎを超えなかった。
乾燥インプラント組成物１、２、３、４、５及び６から調製された、脱塩水、等張食塩水又はＰＢＳ溶液との再水和及び均一混合によって得られた注入可能なインプラント製剤について、測定された力は２０Ｎを超えなかった。
乾燥インプラント組成物１（ふるい分けによって決定されるとき１００～１５０μm又は１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＡとを含有する）及び乾燥インプラント組成物２（ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとを含有する）から調製された、血液との再水和及び均一混合によって得られた注入可能なインプラント製剤について、測定された力は２５Ｎを超えなかった。
図３Ａ及び３Ｂを参照のこと（これらは、乾燥インプラント組成物２及び４をそれぞれ等張食塩水又は新鮮ヒト血液と再水和及び均一混合することによって得られた注入可能なインプラント製剤の押し出し曲線を表す）。
－図３Ａにおいて、（１）及び（２）は、それぞれ等張食塩水及び新鮮ヒト血液で再水和された、乾燥インプラント組成物２（ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとを含有する）の押し出し曲線である。
－図３Ｂにおいて、（３）及び（４）は、それぞれ等張食塩水及び新鮮ヒト血液で再水和された、乾燥インプラント組成物４（ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有するナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトの（w/w）比が２．６７である、コラーゲンＢ １部に対してコラーゲンＡ ２部の混合物とを含有する）の押し出し曲線である。
アスコルビン酸を含有する、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するセラミックのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとの３８％の混合物を含有する、注入可能な水性インプラント製剤の調製
－実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixer（FlackTech Inc., USA）によって２５００rpmで２分間均一混合した。２M 塩酸 ５滴を使用してｐＨを下げた。Speedmixerによる２５００rpmで２分間の追加の混合工程の後、ｐＨを３．５に調整する目的でｐＨを測定した。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで４時間加熱した。次にコラーゲンスラリーを２５℃の水浴に入れた。
－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間再度混合した。次に実施例１で調製された、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するセラミック骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで３分間混合した。
塊１ｇあたり２．７６mgのアスコルビン酸（実験１）、塊１ｇあたり１．７６mgのアスコルビン酸（実験２）又は塊１ｇあたり１．３３mgのアスコルビン酸（実験３）を０．１mlの水に溶解し、塊に加えて、Speedmixerにより２０００rpmで１分間混合すると、ｐＨ ６．０を有する注入可能な水性インプラント製剤を与えた。
－上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
－実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixer（FlackTech Inc., USA）によって２５００rpmで２分間均一混合した。２M 塩酸 ５滴を使用してｐＨを下げた。Speedmixerによる２５００rpmで２分間の追加の混合工程の後、ｐＨを３．５に調整する目的でｐＨを測定した。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで４時間加熱した。次にコラーゲンスラリーを２５℃の水浴に入れた。
－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間再度混合した。次に実施例１で調製された、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するセラミック骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで３分間混合した。
塊１ｇあたり２．７６mgのアスコルビン酸（実験１）、塊１ｇあたり１．７６mgのアスコルビン酸（実験２）又は塊１ｇあたり１．３３mgのアスコルビン酸（実験３）を０．１mlの水に溶解し、塊に加えて、Speedmixerにより２０００rpmで１分間混合すると、ｐＨ ６．０を有する注入可能な水性インプラント製剤を与えた。
－上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
－上記の３種の注入可能な水性インプラント製剤のそれぞれ（上記の実施例９、３）に記載された試験において）は、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して３０Ｎを超えない力で押し出すことができた。このような小さな力は、小さなシリンジに手作業で簡単に加えることができる。
－得られた塊は、スパチュラを使用して裏側から５０mlシリンジに詰め込まれ、更に小さな０．５ml及び１．０mlシリンジに充填された。次に充填されたシリンジを冷蔵庫で４℃で一晩保存し、次に３日以内に２５～３３GyのＸ線照射により周囲温度で保存及び滅菌した。
－滅菌後すぐに、実験１又は実験２の注入可能な水溶液を、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して２５Ｎを超えない力で押し出すことができた。ただし、実験３の注入可能な水溶液は、４０～４５Ｎの力でしか押し出すことができなかった。
－実験１の滅菌した注入可能な水溶液中の残留アスコルビン酸は、約１．２０mg/gであると測定され、滅菌中に最初の２．６４mg/gの約１．４４mg/gの量が消費されたことが示された。よって実験３の注入可能な水溶液の初期量１．３３mg/gは、滅菌中に放出されたフリーラジカルを除去するのに十分ではなかった可能性があり、コラーゲンのわずかな架橋につながり、そしてこれが、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介した押し出しに必要とされる、より大きな力を説明する。
－室温でシリンジに９か月間保存後、上記の滅菌した注入可能な水性インプラント製剤のそれぞれの押し出し特性は、滅菌直後に報告されたものと同じ、即ち、実験１又は２の滅菌した注入可能な水性インプラント製剤では２５Ｎを超えない力での押し出し適性であるが、実験３の滅菌した注入可能な水性インプラント製剤では４０～４５Ｎの力でのそれであった。
－得られた塊は、スパチュラを使用して裏側から５０mlシリンジに詰め込まれ、更に小さな０．５ml及び１．０mlシリンジに充填された。次に充填されたシリンジを冷蔵庫で４℃で一晩保存し、次に３日以内に２５～３３GyのＸ線照射により周囲温度で保存及び滅菌した。
－滅菌後すぐに、実験１又は実験２の注入可能な水溶液を、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して２５Ｎを超えない力で押し出すことができた。ただし、実験３の注入可能な水溶液は、４０～４５Ｎの力でしか押し出すことができなかった。
－実験１の滅菌した注入可能な水溶液中の残留アスコルビン酸は、約１．２０mg/gであると測定され、滅菌中に最初の２．６４mg/gの約１．４４mg/gの量が消費されたことが示された。よって実験３の注入可能な水溶液の初期量１．３３mg/gは、滅菌中に放出されたフリーラジカルを除去するのに十分ではなかった可能性があり、コラーゲンのわずかな架橋につながり、そしてこれが、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介した押し出しに必要とされる、より大きな力を説明する。
－室温でシリンジに９か月間保存後、上記の滅菌した注入可能な水性インプラント製剤のそれぞれの押し出し特性は、滅菌直後に報告されたものと同じ、即ち、実験１又は２の滅菌した注入可能な水性インプラント製剤では２５Ｎを超えない力での押し出し適性であるが、実験３の滅菌した注入可能な水性インプラント製剤では４０～４５Ｎの力でのそれであった。
アスコルビン酸を含有する、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、コラーゲンに対するセラミックのｗ／ｗ比が４．０であるコラーゲンＢとの３０％の混合物を含有する、注入可能な水性インプラント製剤の調製
－実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixer（FlackTech Inc., USA）によって２５００rpmで２分間均一混合した。２M 塩酸 ５滴を使用してｐＨを下げた。Speedmixerによる２５００rpmで２分間の追加の混合工程の後、ｐＨを３．５に調整する目的でｐＨを測定した。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで３時間加熱した。次にコラーゲンスラリーを２５℃の水浴に入れた。
－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間再度混合した。次に実施例１で調製された、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するセラミック骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで３分間混合した。塊１ｇあたり１．７６mgのアスコルビン酸を０．１mlの水に溶解し、塊に加えて、Speedmixerにより２０００rpmで１分間混合すると、ｐＨ ６．０を有する注入可能な水性インプラント製剤を与えた。
－上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
－実施例１で得られた粉砕コラーゲンＢを注意深く脱塩水に押し込み、全てのコラーゲンを湿らせた。ビーカーをねじ蓋で閉じ、水－コラーゲンスラリーをSpeedmixer（FlackTech Inc., USA）によって２５００rpmで２分間均一混合した。２M 塩酸 ５滴を使用してｐＨを下げた。Speedmixerによる２５００rpmで２分間の追加の混合工程の後、ｐＨを３．５に調整する目的でｐＨを測定した。次にコラーゲンスラリーを水浴中で７０℃まで３時間加熱した。次にコラーゲンスラリーを２５℃の水浴に入れた。
－コラーゲンスラリーをSpeedmixerにより２５００rpmで２分間再度混合した。次に実施例１で調製された、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmの間のサイズを有するセラミック骨ミネラル微粒子をコラーゲンスラリーと共にビーカーに加え、塊をSpeedmixerにより２０００rpmで３分間混合した。塊１ｇあたり１．７６mgのアスコルビン酸を０．１mlの水に溶解し、塊に加えて、Speedmixerにより２０００rpmで１分間混合すると、ｐＨ ６．０を有する注入可能な水性インプラント製剤を与えた。
－上記の実験で使用された材料の量は、次の表に明記される：
注入可能な水性インプラント製剤（上記の実施例９、３）に記載された試験において）は、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して１０Ｎを超えない力で押し出すことができた。このような小さな力は、小さなシリンジに手作業で簡単に加えることができる。
－得られた塊は、スパチュラを使用して裏側から５０mlシリンジに詰め込まれ、更に小さな０．５ml及び１．０mlシリンジに充填された。次に充填されたシリンジを冷蔵庫で４℃で一晩保存し、次に３日以内に２５～３３GyのＸ線照射により周囲温度で保存及び滅菌した。
－滅菌後すぐに、注入可能な水溶液を、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して１０Ｎを超えない力で押し出すことができた。
－室温でシリンジに９か月間保存後、上記の滅菌した注入可能な水性インプラント製剤の押し出し特性は、上に報告されたもの、即ち、滅菌直後に報告されたものと同じであった。
－得られた塊は、スパチュラを使用して裏側から５０mlシリンジに詰め込まれ、更に小さな０．５ml及び１．０mlシリンジに充填された。次に充填されたシリンジを冷蔵庫で４℃で一晩保存し、次に３日以内に２５～３３GyのＸ線照射により周囲温度で保存及び滅菌した。
－滅菌後すぐに、注入可能な水溶液を、テーパーシステム及び１８ゲージ（内径０．８３８mm）の長さ２５．４mmのカニューレを介して１０Ｎを超えない力で押し出すことができた。
－室温でシリンジに９か月間保存後、上記の滅菌した注入可能な水性インプラント製剤の押し出し特性は、上に報告されたもの、即ち、滅菌直後に報告されたものと同じであった。
Claims (14)
- 少なくとも０．０５％（w/w）アスコルビン酸を含有することを特徴とする、ガンマ線又はＸ線照射によって滅菌され、ふるい分けによって決定されるとき５０～２００μmのサイズを有する天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子と、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片との２５～４５w/w％の混合物（ここで、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比は１．８～４．５である）を含む、注入可能な水性インプラント製剤。
- ナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子の３０～４０w/w％の混合物を含む、請求項１に記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- ナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子の２９．５０～３０．５０w/w％の混合物を含む、請求項１に記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- ０．１～１％（w/w）アスコルビン酸を含有する、請求項１～４のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- ０．２～０．５％（w/w）アスコルビン酸を含有する、請求項１～４のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が、２．５～４．２である、請求項１～６のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が、２．５～４．０である、請求項１～６のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が、３．９～４．１である、請求項１～６のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- ナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子が、ふるい分けによって決定されるとき１００～１８０μmのサイズを有する、請求項１～９のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- ナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子が、ふるい分けによって決定されるとき１２５～１８０μmのサイズを有する、請求項１～９のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- 天然架橋繊維状コラーゲン材料が、ブタの真皮及びブタの腹膜又は心膜からなる群より選択される、前請求項のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤。
- 請求項１～１１のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤を含有する、すぐに使えるシリンジ。
- 請求項１～１２のいずれかに記載の注入可能な水性インプラント製剤を調製するための方法であって、０．５mmのふるいを通過する天然架橋繊維状コラーゲン材料の断片を滅菌水又は等張液に加え、コラーゲンスラリーを生成するように、６０℃を超える温度で酸性ｐＨで均一混合し、コラーゲンスラリーに天然骨由来のナノ結晶ヒドロキシアパタイト粒子を、コラーゲンに対するナノ結晶ヒドロキシアパタイトのｗ／ｗ比が１．８～４．５になるように加えて、均一混合し、０．１５～０．５％w/wのアスコルビン酸を加えて均一混合し、そしてガンマ線又はＸ線照射により滅菌することを含む方法。
- ガンマ線又はＸ線照射による滅菌が、２５～３３Gyで行われる、請求項１３又は１４に記載の方法。
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| EP19180283.4 | 2019-06-14 | ||
| EP19180283 | 2019-06-14 | ||
| PCT/EP2020/066267 WO2020249711A1 (en) | 2019-06-14 | 2020-06-12 | Injectable aqueous implant formulation containing ascorbic acid |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2022537695A true JP2022537695A (ja) | 2022-08-29 |
| JP7467509B2 JP7467509B2 (ja) | 2024-04-15 |
Family
ID=66867029
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2021573815A Active JP7467509B2 (ja) | 2019-06-14 | 2020-06-12 | アスコルビン酸を含有する注入可能な水性インプラント製剤 |
Country Status (10)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US10918592B2 (ja) |
| EP (1) | EP3941542B1 (ja) |
| JP (1) | JP7467509B2 (ja) |
| KR (1) | KR102618676B1 (ja) |
| CN (1) | CN114173835B (ja) |
| AU (1) | AU2020292778B2 (ja) |
| BR (1) | BR112021021682A2 (ja) |
| CA (1) | CA3141985C (ja) |
| ES (1) | ES2939083T3 (ja) |
| WO (1) | WO2020249711A1 (ja) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE102021202061A1 (de) * | 2021-03-03 | 2022-09-08 | B. Braun Melsungen Aktiengesellschaft | Medizinprodukt, Funktionsteil für ein Medizinprodukt und Verfahren zum Sterilisieren und/oder zum Herstellen von Sterilisationsbeständigkeit eines Medizinprodukts oder Funktionsteils |
| AU2022341988A1 (en) * | 2021-09-07 | 2024-03-14 | University Of Cincinnati | Shelf-stable sterilization of aptamer-sensors for in-vivo measurement in humans |
Citations (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0788174A (ja) * | 1993-09-28 | 1995-04-04 | Yamanouchi Pharmaceut Co Ltd | 骨形成用移植体 |
| JPH11199209A (ja) * | 1998-01-19 | 1999-07-27 | Natl Inst For Res In Inorganic Materials | 有機無機配向性複合材料の製造方法 |
| JP2002248119A (ja) * | 2001-02-23 | 2002-09-03 | Japan Science & Technology Corp | 人工椎体 |
| JP2012515035A (ja) * | 2009-01-16 | 2012-07-05 | ガイストリヒ・ファーマ・アクチェンゲゼルシャフト | 組織再生のための方法および膜 |
| US20140193477A1 (en) * | 2012-10-11 | 2014-07-10 | Emory University | Collagen based materials and uses related thereto |
| JP2018114267A (ja) * | 2016-11-21 | 2018-07-26 | ウォーソー・オーソペディック・インコーポレーテッド | オキシステロールを含有する成形可能な凍結乾燥インプラント |
| JP2018537193A (ja) * | 2015-12-04 | 2018-12-20 | ガイストリッヒ ファーマ アーゲー | 再吸収可能な架橋された形状安定膜 |
Family Cites Families (17)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4246457A (en) * | 1979-01-16 | 1981-01-20 | Robertshaw Controls Company | Electrical switch construction, parts therefor and methods of making the same |
| US4865602A (en) | 1986-11-06 | 1989-09-12 | Collagen Corporation | Gamma irradiation of collagen/mineral mixtures |
| GB8813033D0 (en) | 1988-06-02 | 1988-07-06 | Geistlich Soehne Ag | Chemical compound |
| DE69331096T2 (de) | 1992-02-28 | 2002-08-14 | Cohesion Tech Inc | Injektierbare, keramische verbindungen sowie verfahren zur deren herstellung und anwendung |
| GB9400163D0 (en) | 1994-01-06 | 1994-03-02 | Geistlich Soehne Ag | Membrane |
| US20030026770A1 (en) | 2001-07-25 | 2003-02-06 | Szymaitis Dennis W. | Periodontal regeneration composition and method of using same |
| US20110091353A1 (en) * | 2001-09-24 | 2011-04-21 | Wilson Burgess | Methods for Sterilizing Tissue |
| US20070026030A1 (en) | 2005-07-27 | 2007-02-01 | Berkeley Advanced Biomaterials, Inc. | Method of preparing rheological materials for bone and cartilage repair |
| KR100713619B1 (ko) | 2005-11-14 | 2007-05-02 | 재단법인서울대학교산학협력재단 | 유도 골재생을 위한 콜라겐/아파타이트 복합체 멤브레인의제조방법 |
| KR101177997B1 (ko) * | 2010-10-08 | 2012-08-28 | 단국대학교 산학협력단 | 인산칼슘 시멘트와 콜라겐의 마이크로입자형 전달체의 제조방법 |
| US9107983B2 (en) | 2010-10-27 | 2015-08-18 | Warsaw Orthopedic, Inc. | Osteoconductive matrices comprising statins |
| WO2012084214A1 (en) * | 2010-12-22 | 2012-06-28 | Geistlich Pharma Ag | Bone substitute material |
| DE102011008604A1 (de) | 2011-01-14 | 2012-07-19 | Tutogen Medical Gmbh | Herstellung eines Transplantats aus tierischer Dermis mit Natriumsulfidlösung |
| ES2709324T3 (es) | 2013-05-15 | 2019-04-16 | Euroresearch Srl | Polvo de colágeno, composición y uso |
| CN105311681B (zh) * | 2015-12-07 | 2018-12-25 | 杭州华迈医疗器械有限公司 | 一种可注射的骨修复用复合材料及其制备方法 |
| CN105816919B (zh) * | 2016-05-23 | 2019-06-11 | 烟台正海生物科技股份有限公司 | 一种含有天然纳米羟基磷灰石的复合材料及其制备方法 |
| IL275206B2 (en) | 2017-12-14 | 2023-04-01 | Geistlich Pharma Ag | Dry implant composition and aqueous injection formulation of the implant |
-
2020
- 2020-06-12 CA CA3141985A patent/CA3141985C/en active Active
- 2020-06-12 JP JP2021573815A patent/JP7467509B2/ja active Active
- 2020-06-12 AU AU2020292778A patent/AU2020292778B2/en active Active
- 2020-06-12 US US16/899,997 patent/US10918592B2/en active Active
- 2020-06-12 ES ES20731868T patent/ES2939083T3/es active Active
- 2020-06-12 CN CN202080042925.6A patent/CN114173835B/zh active Active
- 2020-06-12 EP EP20731868.4A patent/EP3941542B1/en active Active
- 2020-06-12 BR BR112021021682A patent/BR112021021682A2/pt unknown
- 2020-06-12 KR KR1020217039972A patent/KR102618676B1/ko active IP Right Grant
- 2020-06-12 WO PCT/EP2020/066267 patent/WO2020249711A1/en active Search and Examination
Patent Citations (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0788174A (ja) * | 1993-09-28 | 1995-04-04 | Yamanouchi Pharmaceut Co Ltd | 骨形成用移植体 |
| JPH11199209A (ja) * | 1998-01-19 | 1999-07-27 | Natl Inst For Res In Inorganic Materials | 有機無機配向性複合材料の製造方法 |
| JP2002248119A (ja) * | 2001-02-23 | 2002-09-03 | Japan Science & Technology Corp | 人工椎体 |
| JP2012515035A (ja) * | 2009-01-16 | 2012-07-05 | ガイストリヒ・ファーマ・アクチェンゲゼルシャフト | 組織再生のための方法および膜 |
| US20140193477A1 (en) * | 2012-10-11 | 2014-07-10 | Emory University | Collagen based materials and uses related thereto |
| JP2018537193A (ja) * | 2015-12-04 | 2018-12-20 | ガイストリッヒ ファーマ アーゲー | 再吸収可能な架橋された形状安定膜 |
| JP2018114267A (ja) * | 2016-11-21 | 2018-07-26 | ウォーソー・オーソペディック・インコーポレーテッド | オキシステロールを含有する成形可能な凍結乾燥インプラント |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN114173835B (zh) | 2023-01-06 |
| ES2939083T3 (es) | 2023-04-18 |
| EP3941542B1 (en) | 2022-12-28 |
| JP7467509B2 (ja) | 2024-04-15 |
| KR20220022057A (ko) | 2022-02-23 |
| WO2020249711A1 (en) | 2020-12-17 |
| US20200390690A1 (en) | 2020-12-17 |
| AU2020292778A1 (en) | 2021-12-16 |
| AU2020292778B2 (en) | 2022-08-11 |
| EP3941542A1 (en) | 2022-01-26 |
| KR102618676B1 (ko) | 2023-12-27 |
| CN114173835A (zh) | 2022-03-11 |
| BR112021021682A2 (pt) | 2022-03-15 |
| CA3141985A1 (en) | 2020-12-17 |
| TW202112384A (zh) | 2021-04-01 |
| CA3141985C (en) | 2023-12-05 |
| US10918592B2 (en) | 2021-02-16 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP3713614B1 (en) | Use of a dried implant composition for the preparation of an injectable aqueous implant formulation | |
| JP7467509B2 (ja) | アスコルビン酸を含有する注入可能な水性インプラント製剤 | |
| TWI837382B (zh) | 含抗壞血酸的可注射水性植入調配物 | |
| RU2793772C2 (ru) | Высушенная композиция импланта и инъектируемый водный состав импланта для инъекции | |
| EP2841114B1 (en) | Self-hardening bioactive cement compositions with partially deacetylated chitin as bone graft substitutes |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20220202 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20220803 |
|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20230324 |
|
| A871 | Explanation of circumstances concerning accelerated examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A871 Effective date: 20230324 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20230523 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20230823 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20231031 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20240319 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20240403 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 7467509 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |