JP2022507269A - カプセル化ポリヌクレオチド及び使用方法 - Google Patents

カプセル化ポリヌクレオチド及び使用方法 Download PDF

Info

Publication number
JP2022507269A
JP2022507269A JP2021525757A JP2021525757A JP2022507269A JP 2022507269 A JP2022507269 A JP 2022507269A JP 2021525757 A JP2021525757 A JP 2021525757A JP 2021525757 A JP2021525757 A JP 2021525757A JP 2022507269 A JP2022507269 A JP 2022507269A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
sequence
mir
target sequence
lnp
recombinant dna
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
JP2021525757A
Other languages
English (en)
Other versions
JPWO2020102285A5 (ja
Inventor
ミッチェル エイチ. ファイナー,
エドワード ケネディ,
ロレーナ ラーナー,
Original Assignee
オンコラス, インコーポレイテッド
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by オンコラス, インコーポレイテッド filed Critical オンコラス, インコーポレイテッド
Publication of JP2022507269A publication Critical patent/JP2022507269A/ja
Publication of JPWO2020102285A5 publication Critical patent/JPWO2020102285A5/ja
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/66Microorganisms or materials therefrom
    • A61K35/76Viruses; Subviral particles; Bacteriophages
    • A61K35/768Oncolytic viruses not provided for in groups A61K35/761 - A61K35/766
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/87Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
    • C12N15/88Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation using microencapsulation, e.g. using amphiphile liposome vesicle
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Liposomes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/48Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
    • A61K9/50Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
    • A61K9/51Nanocapsules; Nanoparticles
    • A61K9/5107Excipients; Inactive ingredients
    • A61K9/5123Organic compounds, e.g. fats, sugars
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/52Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • C07K14/54Interleukins [IL]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2803Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily
    • C07K16/2809Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against the immunoglobulin superfamily against the T-cell receptor (TcR)-CD3 complex
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/113Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/66General methods for inserting a gene into a vector to form a recombinant vector using cleavage and ligation; Use of non-functional linkers or adaptors, e.g. linkers containing the sequence for a restriction endonuclease
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/12Type of nucleic acid catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/14Type of nucleic acid interfering N.A.
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10Type of nucleic acid
    • C12N2310/14Type of nucleic acid interfering N.A.
    • C12N2310/141MicroRNAs, miRNAs
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16611Simplexvirus, e.g. human herpesvirus 1, 2
    • C12N2710/16641Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2710/16643Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/32011Picornaviridae
    • C12N2770/32032Use of virus as therapeutic agent, other than vaccine, e.g. as cytolytic agent
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/32011Picornaviridae
    • C12N2770/32034Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/32011Picornaviridae
    • C12N2770/32041Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2770/32043Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2830/00Vector systems having a special element relevant for transcription
    • C12N2830/001Vector systems having a special element relevant for transcription controllable enhancer/promoter combination
    • C12N2830/002Vector systems having a special element relevant for transcription controllable enhancer/promoter combination inducible enhancer/promoter combination, e.g. hypoxia, iron, transcription factor
    • C12N2830/003Vector systems having a special element relevant for transcription controllable enhancer/promoter combination inducible enhancer/promoter combination, e.g. hypoxia, iron, transcription factor tet inducible
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2830/00Vector systems having a special element relevant for transcription
    • C12N2830/50Vector systems having a special element relevant for transcription regulating RNA stability, not being an intron, e.g. poly A signal
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y207/00Transferases transferring phosphorus-containing groups (2.7)
    • C12Y207/07Nucleotidyltransferases (2.7.7)
    • C12Y207/07006DNA-directed RNA polymerase (2.7.7.6)

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Optics & Photonics (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本開示は、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列を含むポリヌクレオチドに関し、ポリヌクレオチドは、非ウイルス送達ビヒクルによって細胞に導入されると、複製可能なウイルスを産生することができる。本開示はさらに、ポリヌクレオチドのカプセル化、ならびにがんの治療及び予防のためのポリヌクレオチド及び/または粒子の使用に関する。本開示は、自己複製ポリヌクレオチドをコードするDNAポリヌクレオチド、ならびに関連する組成物及び方法を提供する。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列を含み、ポリヌクレオチドは、非ウイルス送達ビヒクルによって細胞に導入されると、複製可能なウイルスを産生することができる。

Description

関連出願の相互参照
本出願は、2018年11月13日に出願された米国仮出願第62/760,422号の優先権を主張し、その内容はその全体が参照により本明細書に組み込まれる。
配列表に関する記載
本出願に関連する配列表は、紙のコピーの代わりにテキスト形式で提供され、本明細書への参照により本明細書に組み込まれる。配列表を含むテキストファイルの名称は、ONCR_014_01WO_ST25.txtである。テキストファイルは23KBであり、2019年11月13日に作成され、EFS-Webを介して電子的に提出されている。
技術分野
本開示は概して、免疫学、炎症、及びがん治療の分野に関する。より詳細には、本開示は、複製可能なウイルスゲノムをコードする粒子をカプセル化したポリヌクレオチドに関する。本開示はさらに、がんなどの増殖性障害の治療及び予防に関する。
腫瘍溶解性ウイルスは、腫瘍細胞に感染して溶解することができる溶解性ライフサイクルを備えた複製可能なウイルスである。直接的な腫瘍細胞溶解は、細胞死をもたらすだけでなく、局所的な抗原提示細胞によって取り込まれ提示される腫瘍抗原に指向する適応免疫応答の生成ももたらす。したがって、腫瘍溶解性ウイルスは、直接的な細胞溶解、及びウイルスクリアランス後の抗腫瘍応答を維持できる抗原特異的適応応答の促進の両方を通じて、腫瘍細胞成長に対抗する。
しかしながら、複製可能なウイルスの臨床使用は、いくつかの課題を提示する。一般に、ウイルス曝露は自然免疫経路を活性化し、幅広い非特異的な炎症応答を引き起こす。患者が以前にウイルスに曝露されていない場合、この最初の自然免疫応答は、適応性抗ウイルス応答の発生及び中和抗体の産生につながり得る。患者が以前にウイルスに曝露されている場合、既存の中和抗ウイルス抗体が、所望される溶解効果を妨げ得る。どちらの場合も、中和抗体の存在は、標的細胞のウイルス溶解を妨げるだけでなく、ウイルス治療の再投与を無効にする。これらの要因は、転移性がんの治療におけるウイルス治療の使用を制限し、かかるがんの治療に必要な繰り返し全身投与の有効性が、自然に発生する抗ウイルス応答によって妨げられるためである。かかる障害の非存在下でさえ、非疾患性細胞におけるその後のウイルス複製は、周囲の細胞及び組織への実質的な疾患外の付随的損傷をもたらし得る。
複製可能なウイルスの治療的使用に関連する組成物及び方法について、当技術分野において長い間感じられてきた満たされていない必要性が残存する。本開示は、かかる組成物及び方法などを提供する。
本開示は、自己複製ポリヌクレオチドをコードするDNAポリヌクレオチド、ならびに関連する組成物及び方法を提供する。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列を含み、ポリヌクレオチドは、非ウイルス送達ビヒクルによって細胞に導入されると、複製可能なウイルスを産生することができる。
いくつかの実施形態では、本開示は、脂質ナノ粒子(LNP)であって、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子を含み、ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物のRNAポリメラーゼII(Pol II)と結合できるプロモーター配列と作動可能に連結され、3’接合部切断配列及び5’接合部切断配列と隣接し、3’及び5’接合部切断配列が、異なる種類であり、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドが、非ウイルスの起源である、脂質ナノ粒子(LNP)を提供する。
いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、5’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列である。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列であり、5’接合部切断配列が、リボザイム配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、リボザイム配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、ガイドRNA(gRNA)標的配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、リボザイム配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、pri-miR配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、リボザイム配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、アプタザイム配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びリボザイム配列から選択される。
いくつかの実施形態では、複製可能なウイルスゲノムが、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである。いくつかの実施形態では、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスが、ポジティブセンス((+)センス)またはネガティブセンス((-)センス)ssRNAウイルスである。いくつかの実施形態では、複製可能なウイルスゲノムが、(+)センスssRNAウイルスであり、(+)センスssRNAウイルスが、ピコルナウイルスである。いくつかの実施形態では、ピコルナウイルスが、Seneca Valleyウイルス(SVV)またはCoxsackieウイルスである。
いくつかの実施形態では、LNPを細胞と接触させると、細胞によるウイルス粒子の産生がもたらされ、ウイルス粒子が、感染性及び溶解性である。
いくつかの実施形態では、組換えDNA分子が、外因性ペイロードタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む。いくつかの実施形態では、LNPが、外因性ペイロードタンパク質をコードする第2のポリヌクレオチド配列をさらに含む。
いくつかの実施形態では、外因性ペイロードタンパク質が、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、細胞表面受容体のリガンド、または細胞表面受容体と結合することができる抗原結合分子である。いくつかの実施形態では、サイトカインが、IL-18、IL-36γ、LIGHT、及びIL-2から選択される。いくつかの実施形態では、細胞表面受容体のリガンドが、Flt3リガンドである。いくつかの実施形態では、ケモカインが、CCL21、CCL5、CXCL10、及びCCL4から選択される。
いくつかの実施形態では、抗原結合分子が、免疫チェックポイント受容体と結合して阻害することができる。一実施形態では、免疫チェックポイント受容体が、PD1である。いくつかの実施形態では、抗原結合分子が、DLL3、EpCam、及びCEAから選択される腫瘍関連抗原と結合することができる。いくつかの実施形態では、抗原結合分子が、腫瘍抗原に特異的な第1のドメイン及びT細胞表面分子に特異的な第2のドメインを含む、二重特異性T細胞会合分子である。いくつかの実施形態では、T細胞表面分子が、CD3である。
いくつかの実施形態では、マイクロRNA(miRNA)標的配列(miR-TS)カセットが、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列に挿入され、miR-TSカセットが、1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞内の対応するmiRNAのうちの1つ以上の発現が、細胞内の複製可能なウイルスゲノムの複製を阻害する。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNAが、miR-124、miR-1、miR-143、miR-128、miR-219、miR-219a、miR-122、miR-204、miR-217、miR-137、及びmiR-126から選択される。いくつかの実施形態では、miR-TSカセットが、miR-124標的配列の1つ以上のコピー、miR-1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-143標的配列の1つ以上のコピーを含む。いくつかの実施形態では、miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-122標的配列の1つ以上のコピーを含む。いくつかの実施形態では、miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-219標的配列の1つ以上のコピーを含む。いくつかの実施形態では、miR-TSカセットが、miR-217標的配列の1つ以上のコピー、miR-137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-126標的配列の1つ以上のコピーを含む。
いくつかの実施形態では、組換えDNA分子が、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含むプラスミドである。
いくつかの実施形態では、LNPが、カチオン性脂質、コレステロール、及び中性脂質を含む。いくつかの実施形態では、カチオン性脂質が、1,2-ジオレオイル-3-トリメチルアンモニウム-プロパン(DOTAP)であり、中性脂質が、1,2-ジラウロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DLPE)または1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DOPE)である。
いくつかの実施形態では、LNPは、リン脂質-ポリマー複合体をさらに含み、リン脂質-ポリマー複合体が、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-ポリ(エチレングリコール)(DSPE-PEG)または1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-N-[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE-PEG-アミン)である。
いくつかの実施形態では、カチオン性脂質が、D-Lin-MC3-DMA(MC3)であり、中性脂質が、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(DSPC)である。
いくつかの実施形態では、LNPは、1,2-ジミリストイル-rac-グリセロ-3-メトキシポリエチレングリコール(DMG-PEG)のリン脂質-ポリマー複合体をさらに含む。
いくつかの実施形態では、ヒアルロナンが、LNPの表面と複合される。いくつかの実施形態では、RGDペプチドが、LNPの表面と複合される。
いくつかの実施形態では、本開示は、請求項1~37のいずれか1項に記載の複数の脂質ナノ粒子を含み、複数のLNPが、約50nm~約500nmの平均サイズを有する、治療用組成物を提供する。いくつかの実施形態では、複数のLNPが、約50nm~約200nm、約100nm~約200nm、約150nm~約200nm、約50nm~約150nm、約100nm~約150nm、約200nm~約500nm、約300nm~約500nm、約350nm~約500nm、約400nm~約500nm、約425nm~約500nm、約450nm~約500nm、または約475nm~約500nmの平均サイズを有する。
いくつかの実施形態では、複数のLNPが、約-20mV未満、約-30mV未満、約35mV未満、または約-40mV未満の平均ゼータ電位を有する。いくつかの実施形態では、複数のLNPが、約-50mV~約-20mV、約-40mV~約-20mV、または約-30mV~約-20mVの間の平均ゼータ電位を有する。いくつかの実施形態では、複数のLNPが、約-30mV、約-31mV、約-32mV、約-33mV、約-34mV、約-35mV、約-36mV、約-37mV、約-38mV、約-39mV、または約-40mVの平均ゼータ電位を有する。
いくつかの実施形態では、治療用組成物を対象に投与すると、組換えDNAポリヌクレオチドが対象の標的細胞に送達され、組換えDNAポリヌクレオチドが、対象の標的細胞を溶解することができる感染性ウイルスを産生する。いくつかの実施形態では、組成物が、静脈内または腫瘍内に送達される。いくつかの実施形態では、標的細胞が、がん性細胞である。
いくつかの実施形態では、本開示は、がん性腫瘍の成長を阻害する方法であって、それを必要とする対象において、本明細書に記載の治療用組成物をそれを必要とする対象に投与することを含み、組成物の投与が、腫瘍の成長を阻害する、方法を提供する。いくつかの実施形態では、投与が、腫瘍内または静脈内である。いくつかの実施形態では、がんが、肺癌または肝臓癌である。
いくつかの実施形態では、本開示は、組換えDNA分子であって、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物のRNAポリメラーゼII(Pol II)と結合できるプロモーター配列と作動可能に連結され、3’接合部切断配列及び5’接合部切断配列と隣接し、3’及び5’接合部切断配列が、異なる種類であり、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドが、非ウイルスの起源である、組換えDNA分子を提供する。
いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、5’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列である。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列であり、5’接合部切断配列が、リボザイム配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、リボザイム配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、ガイドRNA(gRNA)標的配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、リボザイム配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、pri-miR配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、リボザイム配列、及びアプタザイム配列から選択される。いくつかの実施形態では、3’接合部切断配列が、アプタザイム配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びリボザイム配列から選択される。
いくつかの実施形態では、コードされたウイルスが、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである。いくつかの実施形態では、ssRNAウイルスが、ポジティブセンス((+)センス)またはネガティブセンス((-)センス)ssRNAウイルスである。いくつかの実施形態では、(+)センスssRNAウイルスが、ピコルナウイルスである。いくつかの実施形態では、ピコルナウイルスが、Seneca Valleyウイルス(SVV)またはCoxsackieウイルスである。
いくつかの実施形態では、組換えDNA分子が、非ウイルス送達ビヒクルによって細胞に導入されると、感染性の溶解性ウイルスを産生することができる。
いくつかの実施形態では、組換えDNA分子が、外因性ペイロードタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む。いくつかの実施形態では、外因性ペイロードタンパク質が、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、細胞表面受容体のリガンド、または細胞表面受容体と結合することができる抗原結合分子である。
いくつかの実施形態では、サイトカインが、IL-18、IL-36γ、LIGHT、及びIL-2である。いくつかの実施形態では、細胞表面受容体のリガンドが、Flt3リガンドである。いくつかの実施形態では、ケモカインが、CCL21、CCL5、CXCL10、及びCCL4から選択される。いくつかの実施形態では、抗原結合分子が、免疫チェックポイント受容体と結合して阻害することができる。一実施形態では、免疫チェックポイント受容体が、PD1である。いくつかの実施形態では、抗原結合分子が、DLL3、EpCam、及びCEAから選択される腫瘍関連抗原と結合することができる。いくつかの実施形態では、抗原結合分子が、腫瘍抗原に特異的な第1のドメイン及びT細胞表面分子に特異的な第2のドメインを含む、二重特異性T細胞会合分子である。いくつかの実施形態では、T細胞表面分子が、CD3である。
いくつかの実施形態では、マイクロRNA(miRNA)標的配列(miR-TS)カセットが、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列に挿入され、miR-TSカセットが、1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞内の対応するmiRNAのうちの1つ以上の発現が、細胞内のコードされたウイルスの複製を阻害する。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNAが、miR-124、miR-1、miR-143、miR-128、miR-219、miR-219a、miR-122、miR-204、miR-217、miR-137、及びmiR-126から選択される。いくつかの実施形態では、miR-TSカセットが、miR-124標的配列の1つ以上のコピー、miR-1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-143標的配列の1つ以上のコピーを含む。いくつかの実施形態では、miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-122標的配列の1つ以上のコピーを含む。いくつかの実施形態では、miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-219標的配列の1つ以上のコピーを含む。いくつかの実施形態では、miR-TSカセットが、miR-217標的配列の1つ以上のコピー、miR-137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-126標的配列の1つ以上のコピーを含む。いくつかの実施形態では、組換えDNA分子が、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含むプラスミドまたはNanoVである。
ポリヌクレオチドゲノムが由来し得る多様な種類のDNAまたはRNAウイルスの例を示す。 自己複製ポリヌクレオチドがカプセル化されたグリコサミノグリカン(CAG)ヒアルロナン(HA)でコーティングされた脂質系ナノ粒子の例を示す。 腫瘍を標的としたナノ粒子にカプセル化された自己複製ポリヌクレオチドによるがんの治療の例を示す。 トランスで発現されるRep52及びRep78を有する5’及び3’ITRを含む自己複製ウイルスゲノム(図4A)、ならびに内部Repカセットを有する5’及び3’ITRを含む自己複製ウイルスゲノム(図4B)の増殖のための複製HSVベクターの例を示す。gB:NT=gB遺伝子におけるウイルス侵入を増強する二重変異;BAC=loxPと隣接するクロラムフェニコール耐性及びlacZ配列;Δ接合=ICP4遺伝子の1つのコピーを含む完全な内部反復領域の欠失;ITR=AAV由来の逆位末端配列;Pol IIp=構成的PolIIプロモーター;Repカセット=ITRと隣接するウイルスゲノムDNAの複製のためのAAV Rep52及びRep78をコードするカセット;任意でmiRNA減衰が斜めに細切れにされたボックスで示される。 トランスで発現されるRep52及びRep78を有する5’及び3’ITRを含む自己複製ポリヌクレオチド(図5A)、ならびに内部Repカセットを有する5’及び3’ITRを含む自己複製ウイルスゲノム(図5B)の増殖のための非複製HSVベクターの例を示す。gB:NT=gB遺伝子におけるウイルス侵入を増強する二重変異;BAC=loxPと隣接するクロラムフェニコール耐性及びlacZ配列;Δ接合=ICP4遺伝子の1つのコピーを含む完全な内部反復領域の欠失;ITR=AAV由来の逆位末端配列;Pol IIp=構成的PolIIプロモーター;Repカセット=ITRと隣接するウイルスゲノムDNAの複製のためのAAV Rep52及びRep78をコードするカセット;任意でmiRNA減衰が斜めに細切れにされたボックスで示される。 ポジティブ鎖RNAポリオウイルスI型ゲノムをコードするポリヌクレオチドの図を示す。ポリヌクレオチドは、任意選択で、AAV由来のITRが5’及び3’末端と隣接し得る(図6A及び図6B)。ポリヌクレオチドは、任意選択で、miRNA減衰のための1つ以上のmiRNA標的配列カセット(miR-TSカセット)を含み得る(図6B)。 ポリオウイルスI型ゲノムをコードする自己複製ポリヌクレオチドの生産のための複製HSVベクターの例を示す。ポリオウイルスのゲノムは、任意選択で、miRNA減衰のためのmiRNA標的部位を含み得る(斜めに細切れにされたボックスで示される)。図7Bは、AAV由来のITRが5’及び3’末端と隣接するポリオウイルスI型ゲノムをコードする自己複製ポリヌクレオチドを産生するための複製HSVベクターを示す。gB:NT=gB遺伝子におけるウイルス侵入を増強する二重変異;BAC=loxPと隣接するクロラムフェニコール耐性及びlacZ配列;ΔUL19=主要なカプシドタンパク質であるVP5をコードするUL19遺伝子の欠失;Δ接合=ICP4遺伝子の1つのコピーを含む完全な内部反復領域の欠失;Pol IIp=構成的RNA Pol IIプロモーター;Repカセット=ITRと隣接するウイルスゲノムDNAの複製のためのAAV Rep52及びRep78をコードするカセット;ポリオウイルスゲノムカセット=HSVゲノムの遺伝子間座位に挿入され、さらに転写によって産生される鎖ゲノム;任意でmiRNA減衰が斜めに細切れにされたボックスで示される。 非小細胞肺癌(図8A)、肝細胞癌腫(図8B)、及び前立腺癌(図8C)などの特定のがんの治療のためのポリオウイルスI型ポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 非小細胞肺癌(図8A)、肝細胞癌腫(図8B)、及び前立腺癌(図8C)などの特定のがんの治療のためのポリオウイルスI型ポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 非小細胞肺癌(図8A)、肝細胞癌腫(図8B)、及び前立腺癌(図8C)などの特定のがんの治療のためのポリオウイルスI型ポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 水疱性口炎ウイルス(VSV)ゲノムをコードする自己複製ポリヌクレオチドの例を示す。ポリヌクレオチドは、任意選択で、AAV由来のITRが5’及び3’末端と隣接し得る(図9B)。ポリヌクレオチドは、任意選択で、miRNA減衰のための1つ以上のmiRNA標的配列を含み得、斜めに細切れにされたボックスで示される(図9B)。 VSVゲノムポリヌクレオチドゲノムの産生のための複製HSVベクターの例を示す。VSVゲノムは、任意選択で、miRNA減衰のためのmiRNA標的部位を含み得る(図10A及び図10B)。図10Bは、AAV由来のITRが5’及び3’末端と隣接するVSVゲノムを産生するための複製HSVベクターを示す。gB:NT=gB遺伝子におけるウイルス侵入を増強する二重変異;BAC=loxPと隣接するクロラムフェニコール耐性及びlacZ配列;Δ接合=ICP4遺伝子の1つのコピーを含む完全な内部反復領域の欠失;ΔUL19=主要なカプシドタンパク質であるVP5をコードするUL19遺伝子の欠失;VSVゲノムカセット=HSVゲノムの遺伝子間座位に挿入されたネガティブ鎖VSVゲノム及び必須VSV遺伝子の転写のための双方向性Pol IIプロモーター(BD Pol IIp)を有する必須VSV遺伝子、N、P、及びLをコードするアンチゲノム(ネガティブ鎖)VSVゲノム及び哺乳類発現カセット;任意でmiRNA減衰が斜めに細切れにされたボックスで示される;Repカセット=ITRと隣接するウイルスゲノムDNAの複製のためのAAV Rep52及びRep78をコードするカセット;Pol IIp=構成的RNA Pol IIプロモーター。 肝細胞癌腫(図11A)、前立腺癌(図11B)、及び非小細胞肺癌(図11C)などの特定のがんの治療のためのVSVポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 肝細胞癌腫(図11A)、前立腺癌(図11B)、及び非小細胞肺癌(図11C)などの特定のがんの治療のためのVSVポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 肝細胞癌腫(図11A)、前立腺癌(図11B)、及び非小細胞肺癌(図11C)などの特定のがんの治療のためのVSVポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 アデノウイルスポリヌクレオチドゲノムの例を示す。AAVゲノムは、任意選択で、miRNA減衰のためのmiRNA標的部位を含み得、斜めに細切れにされたボックスで示される(図12B)。 肝細胞癌腫(図13A)、前立腺癌(図13B)、及び非小細胞肺癌(図13C)などの特定のがんの治療のためのAAVポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 CVB3ウイルスゲノムの概略図を示す。CVB3は、ゲノムサイズが約7.4kbの+センスのssRNAピコルナウイルスである。 CoxsackieウイルスA21構築物の概略図を示す。 Seneca Valleyウイルス(SVV)構築物の概略図を示す。 ITRと隣接する腫瘍溶解性ウイルス(OV)DNAカセット及びRepカセットを含む組換えHSV-1、細菌人工染色体(BAC)ベクターを示す。 Repカセット及びA/Cヘテロ二量体、AP21967によるRep発現の制御を示す。 図17に示したシステムによって産生されたNanoV構築物の単量体及び二量体を示す。NanoV単量体及び二量体の構造ならびにサイズを示す。 図17に示したシステムによって産生されたNanoV構築物の単量体及び二量体を示す。制限酵素消化後の予測される単量体及び二量体のゲル分析を示す。 図17に示したシステムによって産生されたNanoV構築物の単量体及び二量体を示す。内部PCRプライマーの位置を含むNanoV構築物の概略図を示す。 図17に示したシステムによって産生されたNanoV構築物の単量体及び二量体を示す。内部プライマーを使用したNanoVのPCR増幅を示す。 予測される方向でのNanoVコンカテマーの産生を示す。NanoV単量体におけるAflII切断部位の位置を示す。 予測される方向でのNanoVコンカテマーの産生を示す。AflII切断産物の可能なコンカテマー方向及び予測されるサイズを示す。 予測される方向でのNanoVコンカテマーの産生を示す。AflIIで消化されたNanoV DNAのゲル分析を示す。 NanoV DNA構築物からのmCherryの発現を示す。 3’及び5’リボザイム配列を含むピコルナウイルス構築物の概略図を示す。 複製可能なSeneca Valleyウイルス(SVV)をコードするポリヌクレオチドの設計及び培養プロトコルの概略図を示す。図23Aは、哺乳動物の5’及び3’UTR配列、ハンマーヘッド型リボザイム、ならびにデルタ肝炎リボザイムを含む、キャップポリアデニル化転写物を示す。図23Bは、感染性SVVを産生するための培養プロトコルの概略図を示す。 同上。 SVV-リボザイム(WT)及びSVV-mCherry-リボザイムをコードするdsDNAをトランスフェクトした293T細胞から産生されたウイルスからの単層の溶解を示すクリスタルバイオレット染色を示す。 図23に示されるSVV転写物からの3つの異なる外因性ペイロードの発現を示す。図20Aは、mCherryについての明視野及び蛍光顕微鏡観察を示す。図20Bは、ナノルシフェラーゼアッセイの結果を示す。図25Cは、CXCL10発現を示す。 同上。 同上。 SVVをコードするプラスミド構築物のmiRNA減衰を示す。図26Aは、miR-122及びmiR-1減衰化SVV構築物の概略図を示す。図26Bは、miR-122及び/またはmiR-1模倣物でトランスフェクトされ、図26Aに示されるSVV-WTまたはSVV-miRT構築物に感染したH1299細胞の溶解を示すクリスタルバイオレット染色を示す。 腫瘍内に送達されるSVVをコードするDNAプラスミドによるインビボでの感染性ウイルスの産生及び腫瘍成長の阻害を示す。SVVをコードするプラスミドの腫瘍内投与後の腫瘍成長の阻害を示す。 腫瘍内に送達されるSVVをコードするDNAプラスミドによるインビボでの感染性ウイルスの産生及び腫瘍成長の阻害を示す。図27Aに示される実験から採取された微粉砕した腫瘍からの生ウイルスの単離を示す。 腫瘍内に送達されるSVVをコードするDNAプラスミドによるインビボ発現外因性ペイロードを示す。図28Aは、プラスミドDNAの腫瘍内注射後に腫瘍溶解物で検出された平均放射輝度を示す。図28Bは、プラスミドDNAの腫瘍内注射後に腫瘍溶解物で検出されたCXCL10レベルを示す。 静脈内送達後の腫瘍部位へのSVVをコードするプラスミドの送達を示す。 LNPでカプセル化されたSVVをコードするプラスミドDNAの静脈内送達後の腫瘍成長の阻害を示す。 SVVをコードするプラスミドのマップを示す。 CVA21をコードするプラスミドのマップを示す。 別々の3’及び5’天然末端を有する+センスssRNAウイルスゲノムを産生するためのシステムを示す。 別々の3’及び5’天然末端を有する+センスssRNAウイルスゲノムを産生するためのシステムを示す。 別々の3’及び5’天然末端を有する+センスssRNAウイルスゲノムを産生するための非対称末端システムを示す。 5’及び3’リボザイムを有するSVV(SVV WT-R)ならびに3’リボザイム及び5’siRNA標的配列(5siRNA)を有するSVVによるH1299単層の溶解を示すクリスタルバイオレット染色を示す。 同上。 別々の3’及び5’天然末端を有する+センスssRNAウイルスゲノムを産生するための非対称末端システムを示す。5’siRNA標的配列を標的とするAmi-RNAは、3’リボザイムの後、bGHポリAターミネーターの前にコードされる。 5’及び3’リボザイム(SVV-wt)または非対称末端切断システム(3’リボザイム及び5’amiRNA標的配列(ami-SVV))を有するLNPでカプセル化されたSVVをコードするプラスミドDNAの有効性を示す。LNPでカプセル化されたSVV-wtまたはami-SVVの腫瘍内投与後のH446腫瘍成長の阻害を示す。 5’及び3’リボザイム(SVV-wt)または非対称末端切断システム(3’リボザイム及び5’amiRNA標的配列(ami-SVV))を有するLNPでカプセル化されたSVVをコードするプラスミドDNAの有効性を示す。LNPでカプセル化されたSVV-wtまたはami-SVVの腫瘍内投与後のH1299腫瘍成長の阻害を示す。 LNPでカプセル化されたSVVをコードするプラスミドDNA(SVV-陰性、SVV-wt、またはAmi-SVV)の静脈内送達後の腫瘍成長の阻害を示す。
当技術分野では、中和抗体の存在下で有効であり、繰り返し全身投与することができ、その複製が疾患性細胞に限定され、したがって正常な非がん性細胞への副次的な損傷を最小限に抑えながら、治療効果を最大化する自己複製ウイルス療法が必要である。本開示は、これらの障害を克服し、脂質ナノ粒子、高分子ナノ粒子、またはエクソソームなどの非免疫原性粒子にカプセル化できる複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドを提供する。いくつかの実施形態では、本開示は、複製可能なウイルスをコードする組換えDNA分子、ならびに増殖性疾患及び障害(例えば、がん)の治療及び予防のための使用方法を提供する。特定の実施例では、組換えDNA分子は、治療用分子をコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む。本開示は、広範囲の増殖性障害(例えば、がん)を治療するのに好適な安全で有効な組換えポリヌクレオチドベクターの全身送達を可能にする。
本明細書で使用された項の見出しは、組織的な目的のためのものにすぎず、記載された主題を限定するものとして解釈されるものではない。特許、特許出願、記事、本、及び論文を含むがこれらに限定されない、本明細書で引用されるすべての文書または文書の一部は、その全体があらゆる目的のために参照により明示的に本明細書に組み込まれる。組み込まれた文書または文書の一部の1つ以上が、出願でのその用語の定義と矛盾する用語を定義している場合、本出願に表示される定義が制御される。しかしながら、本明細書で引用された任意の参考文献、記事、刊行物、特許、特許公開、及び特許出願の言及は、それらが有効な先行技術を構成するか、または世界の任意の国における一般的知識の一部を形成するという認識、または示唆の任意の形態ではなく、そのように受け取られるべきではない。
I.定義
本明細書では、任意の濃度範囲、割合範囲、比の範囲、または整数範囲は、別段示されない限り、記述された範囲内の任意の整数の値、及び適切な場合には、その分数(整数の10分の1及び100分の1など)を含むものと理解されたい。本明細書で使用される「a」及び「an」という用語は、別段示されない限り、列挙された構成要素の「1つ以上」を指すことを理解されたい。代替手段(例えば、「または」)の使用は、代替手段の一方、両方、またはそれらの任意の組み合わせのいずれかを意味すると理解されるべきである。本明細書で使用される場合、「含む(include)」及び「含む(comprise)」という用語は同義語として使用される。本明細書で使用される場合、「複数」は、1つ以上の構成要素(例えば、1つ以上のmiRNA標的配列)を指し得る。本出願では、「または」の使用は、別段示されない限り、「及び/または」を意味する。
本出願で使用される場合、「約」及び「およそ」という用語は、等価物として使用される。本出願で使用される任意の数字は、約/およその有無にかかわらず、関連技術分野の技術者によって認識される任意の通常の変動をカバーすることを意図する。特定の実施形態では、「およそ」または「約」という用語は、別途記載のない限りまたは別途内容から明らかでない限り(かかる数が可能な値の100%を超え得る場合を除く)、述べられた基準値のいずれかの方向(上回るまたは下回る)において、25%、20%、19%、18%、17%、16%、15%、14%、13%、12%、11%、10%、9%、8%、7%、6%、5%、4%、3%、2%、1%以下に含まれる値の範囲を指す。
「減少する」または「低減する」は、基準値と比較して、少なくとも5%、例えば、5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、99、または100%の特定の値の減少または低減を指す。特定の値の減少または低減はまた、基準値と比較した値の倍数変化として表すことができ、例えば、基準値と比較して少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、200、500、1000倍以上の減少である。
「増加」は、基準値と比較して、少なくとも5%、例えば5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、99、100、200、300、400、500%以上の特定の値の増加を指す。特定の値の増加はまた、基準値と比較した値の倍数変化として表すことができ、例えば、基準値のレベルと比較して、少なくとも1倍、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、200、500、1000倍以上の増加である。
「配列同一性」という用語は、同じであり、同じ相対位置にある2つのポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列間の塩基またはアミノ酸のパーセンテージを指す。かかるものとして、1つのポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列は、別のポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列と比較して、特定のパーセンテージの配列同一性を有する。配列比較の場合、通常、1つの配列が基準配列として機能し、試験配列が比較される。「基準配列」という用語は、試験配列が比較される分子を指す。
「相補的」は、天然または非天然に存在する(例えば、上記のように修飾された)塩基(ヌクレオシド)またはその類似体を含む2つの配列間の、塩基スタッキング及び特異的水素結合を介した対形成の能力を指す。例えば、核酸のある位置の塩基が、標的の対応する位置の塩基と水素結合することができる場合、次に塩基は、その位置で互いに相補的であると見なされる。核酸は、普遍的な塩基、または水素結合に正または負の寄与を提供しない不活性な脱塩基スペーサーを含むことができる。塩基対には、標準的なワトソン-クリック塩基対及び非ワトソン-クリック塩基対(例えば、ゆらぎ塩基対とフーグスティーン塩基対)の両方が含まれ得る。相補的塩基対の場合、アデノシン型塩基(A)はチミジン型塩基(T)またはウラシル型塩基(U)に相補的であり、シトシン型塩基(C)はグアノシン型塩基(G)に相補的であることが理解され、3-ニトロピロールまたは5-ニトロインドールなどの普遍的な塩基は、任意のA、C、U、またはTとハイブリダイズし、相補的であると見なされる。Nichols et al.,Nature,1994;369:492-493、及びLoakes et al.,Nucleic Acids Res.,1994;22:4039-4043。イノシン(I)もまた、当技術分野において普遍的な塩基であると見なされており、任意のA、C、U、またはTを相補的であると見なされている。Watkins and SantaLucia,Nucl.Acids Research,2005;33 (19):6258-6267を参照されたい。
「発現カセット」または「発現構築物」は、プロモーターと作動可能に連結されたDNAポリヌクレオチド配列を指す。「作動可能に連結された」とは、そのように記載された構成要素が、それらが意図された方法で機能することを可能にする関係にある並置を指す。例えば、プロモーターがポリヌクレオチド配列の転写または発現に影響を与える場合、プロモーターはポリヌクレオチド配列に作動可能に連結される。
「対象」という用語は、例えば、哺乳動物などの動物を含む。いくつかの実施形態では、哺乳動物は、霊長類である。いくつかの実施形態では、哺乳動物は、ヒトである。いくつかの実施例では、畜牛、ヒツジ、ヤギ、乳牛、ブタなどの畜産動物、またはイヌ及びネコなどの飼い慣らされた動物である。いくつかの実施形態(例えば、特に研究の文脈において)では、対象は、げっ歯類(例えば、マウス、ラット、ハムスター)、ウサギ、霊長類、または近交系ブタなどのブタである。「対象」及び「患者」という用語は、本明細書で互換的に使用される。
「投与」は、本明細書において、薬剤または組成物を対象に導入することを指す。
本明細書で使用される「治療」は、生理学的結果に影響を与えるために、薬剤または組成物を対象に送達することを指す。いくつかの実施形態では、治療は、細胞の集団を対象に送達することを含む。いくつかの実施形態では、治療は、哺乳動物、例えば、ヒトにおける疾患の治療を指し、(a)疾患を阻害すること、すなわち疾患の発症を阻止すること、または疾患の進行を防止すること、(b)疾患を軽減する、すなわち疾患の状態の退行をもたらすこと、(c)疾患を治癒させることを含む。
「有効量」という用語は、特定の生理学的効果をもたらすのに必要な薬剤または組成物の最小量を指す(例えば、特定の生理学的効果を増加、活性化、及び/または増強するのに必要な量)。特定の薬剤の有効量は、質量/体積、細胞数/体積、粒子/体積、(薬剤の質量)/(対象の質量)、細胞数/(対象の質量)、または粒子/(対象の質量)などの薬剤の性質に基づいて、様々な方法で表され得る。特定の薬剤の有効量は、最大有効濃度の半分(EC50)として表すこともでき、基準レベル及び最大応答レベルの中間にある特定の生理学的応答の程度をもたらす薬剤の濃度を指す。
細胞の「集団」は、1を超える任意の数の細胞を指すが、好ましくは、少なくとも1x10個の細胞、少なくとも1x10個の細胞、少なくとも1x10個の細胞、少なくとも1x10個の細胞、少なくとも1x10個の細胞、少なくとも1×10個の細胞、少なくとも1×10個の細胞、少なくとも1×1010個の細胞、またはそれ以上の細胞である。細胞の集団は、インビトロの集団(例えば、培養中の細胞の集団)またはインビボの集団(例えば、特定の組織に存在する細胞の集団)を指し得る。
「エフェクター機能」は、標的細胞または標的抗原に指向する免疫応答の生成、維持、及び/または増強に関連する免疫細胞の機能を指す。
「マイクロRNA」、「miRNA」、及び「miR」という用語は、本明細書で互換的に使用され、分解または翻訳抑制のためにそれらの標的メッセンジャーRNA(mRNA)を指示することによって遺伝子発現を制御する、約21~25ヌクレオチドの長さの小さなノンコーディング内因性RNAを指す。
本明細書で使用される「組成物」という用語は、対象もしくは細胞に投与または送達することができる、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドまたは粒子カプセル化自己複製ポリヌクレオチドの製剤を指す。
本明細書で利用される「薬学的に許容される」という表現は、過度の毒性、刺激、アレルギー反応、または他の問題もしくは合併症のないヒト及び動物の組織と接触させて使用するのに好適な、安全な医学的判断の範囲内にあり、妥当な利益/リスク比に見合う、化合物、材料、組成物及び/または剤形を指す。
本明細書で使用される場合、「薬学的に許容される担体、希釈剤、または賦形剤」には、これらに限定されないが、任意のアジュバント、担体、賦形剤、流動促進剤、甘味剤、希釈剤、防腐剤、染料/着色剤、風味増強剤、界面活性剤、湿潤剤、分散剤、懸濁剤、安定剤、等張剤、溶媒、界面活性剤、及び/または乳化剤が含まれ、これは、米国食品医薬品局によって、ヒト及び/または家畜動物での使用が許容されるものとして承認されている。
「自己複製ポリヌクレオチド」という用語は、追加の外因性ポリヌクレオチドまたは外因性ベクターの非存在下で宿主細胞内で複製することができる外因性ポリヌクレオチドを指す。
「複製可能なウイルスゲノム」という用語は、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドによってコードされるウイルスゲノムを指し、ウイルス複製及び感染性ウイルス粒子の産生に必要なすべてのウイルス遺伝子をコードする。
「腫瘍溶解性ウイルス」という用語は、がん細胞に優先的に感染するように修飾されているか、または自然に優先的に感染するウイルスを指す。
「ベクター」という用語は、別の核酸分子を輸送または運搬することができる核酸分子を指すために本明細書で使用される。
分子及び細胞生化学の一般的な方法は、Molecular Cloning:A Laboratory Manual,3rd Ed.(Sambrook et al.,HaRBor Laboratory Press 2001)、Short Protocols in Molecular Biology,4th Ed.(Ausubel et al.eds.,John Wiley & Sons 1999)、Protein Methods(Bollag et al.,John Wiley & Sons 1996)、Nonviral Vectors for Gene Therapy(Wagner et al.eds.,Academic Press 1999)、Viral Vectors(Kaplift & Loewy eds.,Academic Press 1995)、Immunology Methods Manual (I.Lefkovits ed.,Academic Press 1997)、及びCell and Tissue Culture:Laboratory Procedures in Biotechnology(Doyle & Griffiths,John Wiley & Sons 1998)などの標準的な教科書内で見つけることができ、その開示は、参照により本明細書に組み込まれる。
II.自己複製ポリヌクレオチド
いくつかの実施形態では、本開示は、非ウイルス送達ビヒクルによって細胞に導入されると、感染性の溶解性ウイルスを産生することができる複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドを含む組換え核酸分子を提供する。本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、感染性ウイルスを複製及び産生するために、細胞内に存在する追加の外因性遺伝子またはタンパク質を必要としない。むしろ、宿主細胞内の内因性転写メカニズムは、自己複製ポリヌクレオチドの最初の第1の転写または翻訳を媒介して、複製可能なウイルスゲノムを産生する。自己複製ポリヌクレオチドによってコードされるウイルスゲノムは、ウイルスゲノムの継続的な複製、及び複製可能なウイルスゲノムを含む感染性ウイルス粒子(カプシドタンパク質、エンベロープタンパク質、及び/または膜タンパク質を含み得る)への組み立てに必要なウイルスタンパク質を発現することができる。したがって、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドによってコードされる複製可能なウイルスゲノムは、宿主細胞に感染することができるウイルスを産生することができる。
いくつかの実施形態では、組換え核酸分子は、複製可能なウイルスゲノムをコードするDNAポリヌクレオチドを含む組換えDNA分子である。いくつかの実施形態では、組換えDNA分子は、レプリコン、プラスミド、コスミド、ファージミド、トランスポゾン、細菌人工染色体、または酵母人工染色体である。いくつかの実施形態では、組換えDNA分子は、自己複製ポリヌクレオチドを含むプラスミドである。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製ポリヌクレオチドの転写を駆動または調節するプロモーターなどの転写制御要素と作動可能に連結される自己複製ポリヌクレオチド(例えば、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド)を含む。いくつかの実施形態では、転写制御要素は、哺乳動物プロモーター配列である。いくつかの実施形態では、哺乳動物プロモーター配列は、哺乳動物RNAポリメラーゼと結合することができる。例えば、いくつかの実施形態では、哺乳動物プロモーター配列は、RNAポリメラーゼII(Pol II)プロモーターである。いくつかの実施形態では、哺乳動物プロモーターは、CAG、UbC、EF1a、またはPGKプロモーターなどの構成的プロモーターである。いくつかの実施形態では、転写制御要素は、T7プロモーターなどのファージ由来のプロモーター配列である。かかる実施形態では、T7プロモーターの制御下にあるポリヌクレオチドは、細胞のサイトゾルで転写される。
いくつかの実施形態では、プロモーターは、テトラサイクリン誘導性プロモーター(例えば、TRE-Tight)、ドキシクリン誘導性プロモーター、温度誘導性プロモーター(例えば、Hsp70またはHsp90由来プロモーター)、ラクトース誘導性プロモーター(例えば、pLacプロモーター)などの誘導性プロモーターである。いくつかの実施形態では、プロモーター配列は、転写を調節する1つ以上の転写エンハンサー要素を含む。例えば、いくつかの実施形態では、プロモーターは、1つ以上の低酸素応答要素または1つ以上の放射線応答要素を含む。いくつかの実施形態では、プロモーターは、主にがん細胞において自己複製ポリヌクレオチドの転写を駆動する。例えば、いくつかの実施形態では、転写制御要素は、hTERT、HE4、CEA、OC、ARF、CgA、GRP78、CXCR4、HMGB2、INSM1、メソセリン、OPN、RAD51、TETP、H19、uPAR、ERBB2、MUC1、Frz1、IGF2-P4、Myc、またはE2Fなどのがん細胞で発現が増加する遺伝子に由来するプロモーターである。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドを含み、ポリヌクレオチドは、逆位末端(ITR)配列によって5’及び3’末端と隣接する。本明細書において、「逆位末端配列」または「ITR」という用語は、異種ポリヌクレオチド配列(例えば、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列)の3’及び/または5’末端に位置し、非パリンドローム配列の1つ以上のストレッチによって分離されたパリンドローム配列を含むポリヌクレオチド配列を指す。「パリンドローム」配列は、両方が5’から3’方向に読み取られたときにその相補鎖と同一である核酸配列を指す。ITRのポリヌクレオチド配列は、パリンドローム配列間の相補的塩基対形成によってステムループ構造(例えば、ヘアピンループ)を形成する。ITRポリヌクレオチド配列は、その配列がステムループ構造を形成できる限り、任意の長さにすることができる。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、以下の構造を含む:
(a)5’-ITR-センスウイルスゲノム-ITR-3’、または
(b)3’-ITR-アンチセンスウイルスゲノム-ITR-5’。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のITR配列は、ステムループ構造、Rep結合部位、及び末端分解部位を形成することができるパリンドローム配列を最小限に含む。いくつかの実施形態では、本明細書に記載のITRは、アデノ随伴ウイルス(AAV)に由来する。かかる実施形態では、ITRは、AAVの任意の既知の血清型(例えば、AAV1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、または11)に由来し得る(例えば、米国特許第9,598,703号を参照のされたい)。いくつかの実施形態では、本明細書に記載のITRは、パルボウイルスに由来し得る(例えば、米国特許第5,585,254号を参照されたい)。本開示での使用に好適な追加の逆位末端配列は、国際PCT公開第WO2017/152149号及び同第WO2016/172008号、ならびに米国特許出願公開第US2017-0362608号に記載される。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、2つのITRと隣接するポリヌクレオチド分子を含み、第1の分子の5’ITRは、第2の分子の3’ITRと共有結合し、第1の分子の3’ITRは、第2の分子の5’ITRと共有結合する。かかる実施形態では、共有結合したITR隣接ポリヌクレオチドは、末端閉鎖した、線状の二本鎖腫瘍溶解性ウイルス核酸分子を形成する。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、(i)ウイルスゲノムのセンス配列をコードするポリヌクレオチドを含む第1の一本鎖DNA(ssDNA)分子と、(ii)ウイルスゲノムのアンチセンス配列をコードするポリヌクレオチドを含む第2のssDNA分子と、を含み、第1及び第2のssDNA分子の各々が、3’ITR及び5’ITRを含み、第1のssDNA分子の3’末端が、第2のssDNA分子の5’末端と共有結合し、第1のssDNA分子の5’末端が、第2のssDNA分子の3’末端と共有結合し、本明細書で「NanoV分子」と称される末端閉鎖線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス(Ov)DNA分子を形成する。
いくつかの実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、複製可能なDNAまたはRNAウイルスゲノムをコードする。いくつかの実施形態では、複製可能なウイルスゲノムは、一本鎖ゲノムである(例えば、ssRNAゲノムまたはssDNAゲノム)。かかる実施形態では、一本鎖ゲノムは、ポジティブセンスまたはネガティブセンスゲノムであり得る。いくつかの実施形態では、複製可能なウイルスゲノムは、二本鎖ゲノムである(例えば、dsRNAゲノムまたはdsDNAゲノム)。いくつかの実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、複製可能な腫瘍溶解性ウイルスをコードする。本明細書で使用される場合、「腫瘍溶解性ウイルス」という用語は、がん細胞に優先的に感染するように修飾されているか、または自然に優先的に感染するウイルスを指す。当技術分野で即知である腫瘍溶解性ウイルスの例は、これらに限定されないが、単純ヘルペスウイルス、アデノウイルス、ポリオウイルス、ワクシニアウイルス、麻疹ウイルス、水疱性口炎ウイルス、オルトミクソウイルス、パルボウイルス、marabaウイルス、またはCoxsackieウイルスを含む。
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドによって産生される複製可能なウイルスは、アデノウイルスなどのアデノウイルス科の任意のウイルス、Coxsackieウイルス、ポリオウイルス、もしくはSeneca Valleyウイルスなどのピコルナウイルス科の任意のウイルス、ウマヘルペスウイルスもしくは単純ヘルペスウイルス1型(HSV-1)などのヘルペスウイルス科の任意のウイルス、lassaウイルスなどのアレナウイルス科の任意のウイルス、マウス白血病ウイルスなどのレトロウイルス科の任意のウイルス、A型インフルエンザウイルスなどのオルトミクソウイルス科の任意のウイルス、ニューカッスル病ウイルスもしくは麻疹ウイルスなどのパラミクソウイルス科の任意のウイルス、パルボウイルス科の任意のウイルス、哺乳動物オルトレオウイルスなどのレオウイルス科の任意のウイルス、Sindbisウイルスなどのトガウイルス科の任意のウイルス、ワクシニアウイルスもしくは粘液腫ウイルスなどのポックスウイルス科の任意のウイルス、または水疱性口炎ウイルス(VSV)もしくはmarabaウイルスなどのラブドウイルス科の任意のウイルスであり、その例を図1に示す。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドによって産生される複製可能なウイルスは、修飾ポリオウイルス(例えば、PVS-RIPO)などのキメラウイルスである。
いくつかの実施形態では、組換え核酸分子が細胞に導入される場合に、本明細書に開示される組換え核酸分子は、細胞の内因性ポリメラーゼ(複数可)によって転写されて、感染性ウイルスに組み立てることができるウイルスゲノムを産生する。産生された感染性ウイルスの量は、標的細胞もしくは標的細胞の集団、培養で増殖した細胞の上清、または対象の組織に存在するウイルスRNAまたはウイルスDNAの量を定量化することを含むが、これらに限定されない、当技術分野で即知である方法によって測定することができる。かかる実施形態では、全DNAまたはRNAは、標的細胞から単離され得、qPCRは、ウイルスゲノムに存在するRNAまたはDNA配列に特異的なプライマーを使用して実行され得る。いくつかの実施形態では、組換え核酸の細胞の集団から産生されたウイルス粒子の数は、標的細胞の集団に導入されたものは(例えば、インビトロ試料またはインビボ腫瘍から単離された試料)、当技術分野で即知である方法によって定量化することができる。いくつかの実施形態では、本開示の製剤は、少なくとも約10-10 TCID50/mL、例えば少なくとも約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、または約10TCID50/mLの50%組織培養感染用量(TCID50)を含む。いくつかの実施形態では、本開示の製剤は、インビボでの腫瘍成長を有意に阻害する。
いくつかの実施形態では、本明細書に開示の組換え核酸分子は、配列番号1~2と少なくとも約75%、約76%、約77%、約78%、約79%、約80%、約81%、約82%、約83%、約84%、約85%、約86%、約87%、約88%、約89%、約90%、約91%、約92%、約93%、約94%、約95%、約96%、約97%、約98%、約99%、または約100%同一のポリヌクレオチド配列を含む。
A.一本鎖RNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスゲノムをコードする。いくつかの実施形態では、ssRNAウイルスは、ポジティブセンスのssRNA(+センスssRNA)ウイルス、またはネガティブセンスのssRNA(-センスssRNA)ウイルスである。
1.ポジティブセンスの一本鎖RNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、ポジティブセンスの一本鎖RNA(+センスssRNA)ウイルスゲノムをコードする。例示的な+センスssRNAウイルスには、ピコルナウイルス科(例えば、Coxsackieウイルス、ポリオウイルス、及びSeneca Valleyウイルス(SVV)、SVV-Aを含む)、コロナウイルス科(例えば、HCoV-229E及びHCoV-NL63などのアルファコロナウイルス、HCoV-HKU1、HCoV-OC3、及びMERS-CoVなどのベータコロナウイルス)、レトロウイルス科(例えば、マウス白血病ウイルス)、及びトガウイルス科(例えば、Sindbisウイルス)のメンバーが含まれる。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、Coxsackieウイルスをコードする。いくつかの実施形態では、Coxsackieウイルスは、CVB3、CVA21、及びCA9から選択される。ポジティブセンスのssRNAウイルスの追加の例示的な属及び種を以下の表4に示す。
Figure 2022507269000002
+センスssRNAウイルスのゲノムは、5’-3’方向のssRNA分子を含み、宿主細胞によってウイルスタンパク質に直接的に翻訳され得る。したがって、+センスssRNAウイルスをコードする自己複製ポリヌクレオチドは、感染性ウイルスを産生するための任意の追加のウイルス複製タンパク質の存在を必要としない。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドによってコードされる+センスssRNAの複製可能なウイルスゲノムは、ウイルスに天然の別々の5’及び3’末端を必要とする。哺乳動物のRNA Pol IIによって産生されるmRNA転写産物には、哺乳動物の5’及び3’UTRが含まれ、したがって感染性ssRNAウイルスの産生に必要な別々の天然末端は含まれない。したがって、いくつかの実施形態では、感染性+センスssRNAウイルス(例えば、表5に示すウイルス)の産生は、ウイルスの内因性5’及び3’の別々の末端を維持するために、非ウイルスRNAが転写産物から除去されるように、ウイルスssRNA及び哺乳動物mRNA配列の接合部でPol IIにコードされたウイルスゲノム転写産物の切断を可能にする追加の5’及び3’配列が必要とされる。かかる配列は、本明細書では接合部切断配列(JCS)と称される。例えば、いくつかの実施形態では、自己ポリヌクレオチドは、以下の構造を含む:
(a)5’-Pol II-JCS-センスウイルスゲノム-JCS-3’、
(b)5’-Pol II-JCS-アンチセンスウイルスゲノム-JCS-3’。
いくつかの実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、ウイルス転写物の天然の別々の末端を産生するための5’及び3’接合部切断配列を含み、5’及び3’ITRと隣接する。例えば、いくつかの実施形態では、自己ポリヌクレオチドは、以下の構造を含む:
(a)5’-ITR-Pol II-JCS-センスウイルスゲノム-JCS-ITR-3’、または
(b)5’-ITR-Pol II-JCS-アンチセンスウイルスゲノム-JCS-ITR-3’。
接合部切断配列及びウイルスゲノム転写物からの非ウイルスRNAの除去は、様々な方法によって達成することができる。例えば、いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、RNA干渉(RNAi)分子の標的である。本明細書で使用される「RNA干渉分子」は、内因性遺伝子サイレンシング経路(例えば、ダイサー及びRNA誘導サイレンシング複合体(RISC))を介して標的mRNA配列の分解を媒介するRNAポリヌクレオチドを指す。例示的なRNA干渉剤には、マイクロRNA(miRNA)、人工miRNA(AmiR)、ショートヘアピンRNA(shRNA)、及び低分子干渉RNA(siRNA)が含まれる。例示的な構築物の設計は、図32A、図32B、及び図33に示される。さらに、現在当技術分野で即知である、または将来定義される特定の部位でRNA転写物を切断するための任意の系を使用して、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドによってコードされるウイルスに天然の別々の末端を産生することができる。
いくつかの実施形態では、RNAi分子は、miRNAである。miRNAは、標的mRNA配列と少なくとも部分的に相補的である、約18~25ヌクレオチドの長さの天然に存在する小さなノンコーディングRNA分子を指す。動物では、miRNAの遺伝子は、二本鎖であり、ステムループ構造を形成する、一次miRNA(pri-miRNA)に転写される。次に、Pri-miRNAは、クラス2 RNase III、ドローシャ及びマイクロプロセッササブユニット、DCGR8を含むマイクロプロセッサ複合体によって核内で切断され、70~100ヌクレオチドの前駆体miRNA(pre-miRNA)を形成する。pre-miRNAはヘアピン構造を形成し、細胞質に輸送され、そこでRNase III酵素、ダイサーによってプロセシングされて約18~25ヌクレオチドのmiRNA二本鎖となる。二本鎖のどちらの鎖も機能的なmiRNAとして機能し得るが、通常、miRNAの1つの鎖が分解され、1つの鎖のみがアルゴノート(AGO)ヌクレアーゼに負荷されて、miRNA及びそのmRNA標的が相互作用するエフェクターRNA誘導サイレンシング複合体(RISC)が産生される(Wahid et al.,1803:11,2010,1231-1243)。いくつかの実施形態では、5’及び/または3’接合部切断配列は、miRNA標的配列である。
いくつかの実施形態では、RNAi分子は、miRNAが埋め込まれたshRNA(shmiRNA)構築物に由来する人工miRNA(AmiR)である(例えば、Liu et al.,Nucleic Acids Res(2008)36:9;2811-2834、Zeng et al.,Molecular Cell(2002),9;1327-1333、Fellman et al.,Cell Reports(2013)5;1704-1713を参照されたい)。いくつかの実施形態では、5’及び/または3’接合部切断配列は、AmiR標的配列である。
いくつかの実施形態では、RNAi分子は、siRNA分子である。siRNAは、通常、約21~23ヌクレオチドの長さの二本鎖RNA分子を指す。二本鎖siRNA分子は、RNA誘導サイレンシング複合体(RISC)と称される多タンパク質複合体と会合することにより細胞質でプロセシングされ、その間に「パッセンジャー」センス鎖が二本鎖から酵素的に切断される。次に、活性化RISCに含まれるアンチセンス「ガイド」鎖が、配列相補性によってRISCを対応するmRNAに誘導し、AGOヌクレアーゼが、標的mRNAを切断して、特定の遺伝子サイレンシングを引き起こす。いくつかの実施形態では、siRNA分子は、shRNA分子に由来する。shRNAは、ステムループ構造を形成する約50~70ヌクレオチドの長さの一本鎖人工RNA分子である。細胞内でのshRNAの発現は、プラスミドまたはウイルスベクターによってshRNAをコードするDNAポリヌクレオチドを導入することによって達成される。次に、shRNAは、pri-miRNAのステムループ構造を模倣する産物に転写され、ドローシャによって核内で同様にプロセシングされて、ヘアピンループ構造を有する一本鎖RNAを形成する。ヘアピンRNAを細胞質に搬出した後、ヘアピンは、ダイサーによってプロセシングされて二本鎖siRNA分子を形成し、次いでRISCによってプロセシングされて標的遺伝子のサイレンシングをさらに仲介する。いくつかの実施形態では、5’及び/または3’接合部切断配列は、siRNA標的配列である。
いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、ガイドRNA(gRNA)標的配列である。かかる実施形態では、gRNAは、RNase活性を有するCasエンドヌクレアーゼ(例えば、Cas13)を使用して設計及び導入され、正確な接合部位でのウイルスゲノム転写産物の切断を仲介することができる。いくつかの実施形態では、5’及び/または3’接合部切断配列は、gRNA標的配列である。
いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、pri-miRNAをコードする配列である。二次ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドが転写されると、これらの配列は、pri-miRNAステムループ構造を形成し、これがドローシャによって核内で切断され、正確な接合部位で転写物が切断される。いくつかの実施形態では、5’及び/または3’接合部切断配列は、pri-mRNA標的配列である。
いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、リボザイムをコードする配列であり、ウイルス転写物の自己切断を媒介して、二次腫瘍溶解性ウイルスの天然の別々の末端を産生する。例示的なリボザイムには、ハンマーヘッドリボザイム、Varkudサテライト(VS)リボザイム、ヘアピンリボザイム、GIR1分岐リボザイム、glmSリボザイム、ツイスターリボザイム、ツイスターシスターリボザイム、ピストルリボザイム、ハチェットリボザイム、及びデルタ肝炎ウイルスリボザイムが含まれる。いくつかの実施形態では、5’及び/または3’接合部切断配列は、リボザイムをコードする配列である。
いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、「アプタザイム」と称される、リガンド誘導性の自己切断リボザイムをコードする配列である。アプタザイムは、リガンドに特異的な組み込まれたアプタマードメインを含むリボザイム配列である。アプタマードメインと結合するリガンドは、リボザイムの酵素活性の活性化を誘発し、それによってRNA転写物の切断をもたらす。例示的なアプタザイムには、テオフィリン依存性アプタザイム(例えば、Auslander et al.,Mol BioSyst.(2010)6,807-814に記載されるテオフィリン依存性アプタマーと連結したハンマーヘッド型リボザイム)、テトラサイクリン依存性アプタザイム(例えば、(例えば、Zhong et al.,eLife 2016;5:e18858DOI:10.7554/eLife.18858、Win and Smolke,PNAS(2007)104;14283-14288、Whittmann and Suess,Mol Biosyt(2011)7;2419-2427、Xiao et al.,Chem & Biol(2008)15;125-1137、及びBeilstein et al.,ACS Syn Biol(2015)4;526-534に記載されるTet依存性アプタマーと連結したハンマーヘッド型リボザイム)、グアニン依存性アプタザイム(例えば、Nomura et al.,Chem Commun.,(2012)48(57);7215-7217に記載されるグアニン依存性アプタマーと連結したハンマーヘッド型リボザイム)が含まれる。いくつかの実施形態では、5’及び/または3’接合部切断配列は、アプタザイムをコードする配列である。
いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、siRNA分子、miRNA分子、AmiR分子、またはgRNA分子の標的配列である。かかる実施形態では、標的RNA分子は、RNAiまたはgRNA分子のガイド配列と少なくとも部分的に相補的である。パーセント配列同一性及びパーセント相補性の比較ならびに決定のための配列アラインメントの方法は、当技術分野で周知である。比較のための配列の最適なアラインメントは、例えば、Needleman and Wunsch,(1970)J.Mol.Biol.48:443の相同性アラインメントアルゴリズムによって、Pearson and Lipman,(1988)Proc.Nat’l.Acad.Sci.USA 85:2444の類似法の検索によって、これらのアルゴリズムのコンピューター化された実装(Wisconsin Genetics Software Package、Genetics Computer Group、575 Science Dr.,Madison、WIのGAP、BESTFIT、FASTA、及びTFASTA)によって、手動調整及び目視検査(例えば、Brent et al.,(2003)Current Protocols in Molecular Biologyを参照されたい)によって、Altschul et al.,(1977)Nuc.Acids Res.25:3389-3402、及びAltschul et al.,(1990)J.Mol.Biol.215:403-410に記載のBLAST及びBLAST2.0アルゴリズムを含む当技術分野で即知のアルゴリズムを使用することによってのそれぞれで行うことができる。BLAST分析を実行するためのソフトウェアは、米国国立生物工学情報センターを通じて公開されている。
いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列及び3’接合部切断配列は、同じ群に由来する(例えば、両方ともRNAi標的配列、両方ともリボザイムをコードする配列などである)。例えば、いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、RNAi標的配列(例えば、siRNA、AmiR、またはmiRNA標的配列)であり、二次腫瘍溶解性ウイルスをコードするポリヌクレオチドの5’及び3’末端に組み込まれる。かかる実施形態では、5’及び3’RNAi標的配列は、同じ(すなわち、同じsiRNA、AmiR、またはmiRNAの標的)であるか、または異なり得る(すなわち、5’配列が1つのsiRNA、shmiRNA、またはmiRNAの標的であり、3’配列が別のsiRNA、AmiR、またはmiRNAの標的である)。いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、ガイドRNA標的配列であり、二次腫瘍溶解性ウイルスをコードするポリヌクレオチドの5’及び3’末端に組み込まれる。かかる実施形態では、5’及び3’gRNA標的配列は、同じ(すなわち、同じgRNAの標的)であるか、または異なり得る(すなわち、5’配列が1つのgRNAの標的であり、3’配列が別のgRNAの標的である)。いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、pri-mRNAをコードする配列であり、二次腫瘍溶解性ウイルスをコードするポリヌクレオチドの5’及び3’末端に組み込まれる。いくつかの実施形態では、接合部切断配列は、リボザイムをコードする配列であり、ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列の5’及び3’側のすぐに二次腫瘍溶解性ウイルスをコードするポリヌクレオチドに組み込まれる。
いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列及び3’接合部切断配列は、同じ群に由来するが、異なるバリアントまたは種類である。例えば、いくつかの実施形態では、5’及び3’接合部切断配列は、RNAi分子の標的配列であり得、5’接合部切断配列は、siRNA標的配列であり、3’接合部切断配列は、miRNA標的配列である(またはその逆である)。いくつかの実施形態では、5’及び3’接合部切断配列は、リボザイムをコードする配列であり得、5’接合部切断配列は、ハンマーヘッド型リボザイムをコードする配列であり、3’接合部切断配列は、デルタ肝炎ウイルスリボザイムをコードする配列である。
いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列及び3’接合部切断配列は異なる種類である。例えば、いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列は、RNAi標的配列であり(例えば、siRNA、AmiR、またはmiRNA標的配列)、3’接合部切断配列は、リボザイム配列、アプタザイム配列、pri-miRNA配列、またはgRNA標的配列である。いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列は、リボザイム配列であり、3’接合部切断配列は、RNAi標的配列(例えば、siRNA、AmiR、またはmiRNA標的配列)、アプタザイム配列、pri-miRNAをコードする配列、またはgRNA標的配列である。いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列は、アプタザイム配列であり、3’接合部切断配列は、RNAi標的配列(例えば、siRNA、AmiR、またはmiRNA標的配列)、リボザイム配列、pri-miRNA配列、またはgRNA標的配列である。いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列は、pri-miRNA配列であり、3’接合部切断配列は、RNAi標的配列(例えば、siRNA、AmiR、またはmiRNA標的配列)、リボザイム配列、アプタザイム配列、またはgRNA標的配列である。いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列は、gRNA標的配列であり、3’接合部切断配列は、RNAi標的配列(例えば、siRNA、AmiR、またはmiRNA標的配列)、リボザイム配列、pri-miRNA配列、またはアプタザイム配列である。
いくつかの実施形態では、5’接合部切断配列は、AmiR標的配列であり、3’接合部切断配列は、リボザイム配列である。
自己複製ポリヌクレオチドと比較した接合部切断配列の例示的な配置を、以下の表A及びBに示す。
Figure 2022507269000003
Figure 2022507269000004
Figure 2022507269000005
2.ネガティブセンスssRNAウイルス
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、ネガティブセンスの一本鎖RNA(-センスssRNA)ウイルスゲノムをコードする。-センスssRNAウイルスのゲノムは、3’-5’方向のssRNA分子を含み、タンパク質に直接的に翻訳することができない。むしろ、-センスssRNAウイルスのゲノムは、最初にRNAポリメラーゼによって+センスmRNA分子に転写される必要がある。例示的な-センスssRNAウイルスには、パラミクソウイルス科(例えば、麻疹ウイルス及びニューカッスル病ウイルス)、ラブドウイルス科(例えば、水疱性口炎ウイルス(VSV)及びmarbaウイルス)、アレナウイルス科(例えば、Lassaウイルス)、及びオルトミクソウイルス科(例えば、A型インフルエンザ、B型インフルエンザ、C型インフルエンザ、D型インフルエンザなどのインフルエンザウイルス)を含む。
いくつかの実施形態では、-センスssRNAウイルスゲノムをコードする自己複製ポリヌクレオチドは、-センスssRNAゲノムの複製に必要なウイルスタンパク質に直接的に翻訳できるmRNA転写物をコードする第1のポリヌクレオチド配列、及びウイルスゲノムのアンチゲノム配列を含む第2のポリヌクレオチド配列を含む。いくつかの実施形態では、第1及び第2のポリヌクレオチド配列は、真核細胞で発現することができるプロモーター、例えば、哺乳動物プロモーターに作動可能に連結される。いくつかの実施形態では、第1及び第2のポリヌクレオチド配列は、双方向性Pol IIプロモーターなどの双方向性プロモーターに作動可能に連結される(例えば、図9、10、及び11を参照されたい)。
いくつかの実施形態では、-センスssRNAゲノムの複製に必要なウイルス遺伝子は、同じ発現カセットから発現される。いくつかの実施形態では、-センスssRNAゲノムの複製に必要なウイルス遺伝子は、異なる発現カセット、例えば、2つまたは3つの発現カセット、例えば、各遺伝子の発現カセット、または3つの遺伝子のうち2つを有する1つの発現カセット、及び第3の遺伝子を有する別の発現カセットから発現される。-センスssRNAゲノムの複製に必要なウイルス遺伝子は、同じオープンリーディングフレームから、または2つもしくは3つの異なるオープンリーディングフレームから翻訳され得る。一実施形態では、-センスssRNAゲノムの複製に必要なウイルス遺伝子は、単一のオープンリーディングフレームから共翻訳的に発現され、翻訳後に成熟ポリペプチドにプロセシングされる。一実施形態では、-センスssRNAゲノムの複製に必要なウイルス遺伝子は、2Aペプチド配列によって連結され、オープンリーディングフレームから個々のポリペプチドに翻訳されたポリペプチドの自己切断をもたらす。-センスssRNAゲノム遺伝子の複製に必要なウイルス遺伝子は、任意の順序で配置され得る。いくつかの実施形態では、発現カセットは、-センスssRNAゲノムの複製に必要な1つ以上のウイルス遺伝子の機能的バリアントを含む。当業者は、特定の-センスssRNAウイルスに必要な遺伝的要素に従って、前述のシステムの適切なバリアントを操作する方法を認識するであろう。この操作は、複製に必須の追加の遺伝子を追加するという形態を取り得る。
いくつかの実施形態では、複製に必要なウイルスタンパク質に直接的に翻訳できるmRNA転写物をコードする第1のポリヌクレオチド配列は、真核細胞で発現できるプロモーター、例えば、哺乳動物のPol IIプロモーターに作動可能に連結されており、さらにT7ポリメラーゼをコードする。かかる実施形態では、第2のポリヌクレオチド配列は、T7プロモーターに作動可能に連結される。例えば、いくつかの実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、以下の構造を含む:
(a)5’-[複製に必要なウイルス遺伝子]-双方向性プロモーター-[アンチゲノムウイルスゲノム]-3’、
(b)5’-Pol II-[複製に必要なウイルス遺伝子+T7 pol]-T7プロモーター-[アンチゲノムウイルスゲノム]-3’、
(c)いくつかの実施形態では、-センスssRNAウイルスゲノムをコードする自己複製ポリヌクレオチドは、例えば、以下のようなAAV由来のITRによって5’及び3’末端に隣接される:
(d)5’-ITR-[複製に必要なウイルス遺伝子]-双方向性プロモーター-[アンチゲノムウイルスゲノム]-ITR-3’、
(e)5’-ITR-Pol II-[複製に必要なウイルス遺伝子+T7 pol]-T7プロモーター-[アンチゲノムウイルスゲノム]-ITR-3’、
B.二本鎖RNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、二本鎖RNA(dsRNA)ウイルスゲノムをコードする。例示的なdsRNAウイルスには、アマルガウイルス(Amalgaviridae)科、ビルナウイルス科、クリソウイルス(Chrysoviridae)科、シストウイルス科、エンドルナウイルス(Endornaviridae)科、ハイポウイルス(Hypoviridae)科、メガビルナウイルス(Megabirnaviridae)科、パルチチウイルス(Partitiviridae)科、ピコビルナウイルス(Picobirnaviridae)科、クアドリウイルス(Quadriviridae)科、レオウイルス科、トティウイルス科のメンバーが含まれる。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、dsRNAウイルスゲノムをコードする。いくつかの実施形態では、dsRNAウイルスゲノムは、ネガティブセンス(相補的)鎖の5’のポジティブセンス鎖としてコードされる。したがって、いくつかの実施形態では、dsRNAウイルスゲノムは、DNAポリヌクレオチドの同じ鎖からの別のものに相補的である2つのRNA分子として転写される。いくつかの実施形態では、dsRNAウイルスゲノムの2つのRNA分子は、単一のRNAとして転写され、これは、例えば、リボザイム、エンドヌクレアーゼ、CRISPR系システムなどによって、ポジティブ及びネガティブセンス分子に切断される。
一実施形態では、dsRNAウイルスゲノムは、共有dsDNA鋳型に隣接するプロモーターに作動可能に連結された共有dsDNA鋳型から転写される。一方のプロモーターが、DNAポリヌクレオチドのワトソン鎖からの転写を引き起こし、それによってdsRNAゲノムのプラス鎖を生成する。他方のプロモーターが、DNAポリヌクレオチドのクリック鎖からの転写を引き起こし、それによってdsRNAゲノムのネガティブ鎖を生成する。いくつかのdsRNAウイルス、例えば、レオウイルスは、セグメント化ウイルスであり、それらのゲノムが複数のRNA分子、いくつかの事例ではdsRNA及びssRNAの混合物で構成されることを意味する。本開示は、DNAポリヌクレオチドが各セグメントの転写ユニットを含む実施形態を提供する。いくつかの実施形態では、セグメントは、DNAポリヌクレオチドのワトソン及び/またはクリック鎖上のいくつかのプロモーターから転写される。いくつかの実施形態では、RNAセグメントは、1つ以上のRNAセグメントの転写後切断によって、例えば、リボザイム、エンドヌクレアーゼ、CRISPR系システムなどによって生成される。いくつかの実施形態では、システムのプロモーターの1つ以上は、T7プロモーターであり、システムは、T7 RNAポリメラーゼをコードするポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、T7システムの使用は、dsRNAウイルスゲノムの1つ以上のセグメントに天然の5’末端を生成する。いくつかの実施形態では、システムのプロモーターの1つ以上は、真核生物的に活性なプロモーター、例えば、哺乳動物プロモーターである。
C.一本鎖DNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、一本鎖DNA(ssDNA)ウイルスゲノムをコードする。例示的なssDNAウイルスには、パルボウイルス科(例えば、アデノ随伴ウイルス)、アネロウイルス科、ビドナウイルス(Bidnaviridae)科、サーコウイルス科、ジェミニウイルス科、ジェノモウイルス(Genomoviridae)科、イノウイルス科、ミクロウイルス科、ナノウイルス科、スマコウイルス(Smacoviridae)科、及びスピラウイルス(Spiraviridae)科のメンバーが含まれる。一実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、パルボウイルスをコードする。一実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、アデノ随伴ウイルス(AAV)をコードする。
D.二本鎖DNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、二本鎖DNA(dsDNA)ウイルスゲノムをコードする。例示的なdsDNAウイルスには、ミオウイルス科、ポドウイルス科、シホウイルス科、アロヘルペスウイルス科、ヘルペスウイルス科(例えば、HSV-1、HSV-1、ウマヘルペスウイルス)、ポックスウイルス科(例えば、ワクシニアウイルス及び粘液腫ウイルス)のメンバーが含まれる。一実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、アデノウイルスをコードする。
E.miRNA減衰
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、1つ以上の必須ウイルス遺伝子に挿入される1つ以上のマイクロRNA(miRNA)標的配列を含む複製可能なウイルスゲノムをコードする。miRは、細胞増殖及びアポトーシスの制御に関与するものを含む、多数のタンパク質をコードする多くの転写産物を制御する。miRによって制御される例示的なタンパク質には、従来のプロト腫瘍性タンパク質、ならびにRas、Myc、Bcl2、PTEN、及びp53などの腫瘍抑制因子が含まれる。
miRNAは、正常な細胞プロセスと密接に関連しており、それらの調節不全は、がんを含む広範囲の疾患の一因となる。重要なことに、miRNAは、正常な組織と比較してがん組織で差次的に発現し、広範な様々ながんの標的メカニズムとして機能することができる。発がん、悪性形質転換、または転移に関連するmiRNA(正または負のいずれかで)は、「腫瘍miR」として知られている。表2は、特定のがんにおける腫瘍miR及びそれらの相対的発現のリストを示す。
いくつかの態様では、特定のmiRNAの発現は、特定のがん及び/または転移の発生または維持と正に関連する。かかるmiRは、本明細書では「発がん性miRNA」または「腫瘍miR」と称される。いくつかの実施形態では、発がん性miRNAの発現は、非がん性対照細胞(すなわち、正常または健康な対照)で観察される発現レベルと比較してがん性細胞もしくは組織で増加するか、または異なるがん種に由来するがん性細胞で観察される発現レベルと比較して増加する。例えば、がん性細胞における発がん性miRNAの発現は、非がん性対照細胞または異なるがん種に由来するがん性細胞における発がん性miRNAの発現と比較して、少なくとも5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、60%、70%、80%、90%、100%、150%、200%、300%、400%、500%、1000%以上増加し得る。いくつかの態様では、がん性細胞は、非がん性対照細胞では発現されない発がん性miRNAを発現し得る。
いくつかの態様では、特定の腫瘍miRの発現は、特定のがん及び/または転移の発生または維持と負に関連する。かかる腫瘍miRは、その発現ががんの発生を予防または抑制することから、本明細書において、「腫瘍抑制miRNA」または「腫瘍抑制性miRNA」と称される。いくつかの実施形態では、腫瘍抑制miRNAの発現は、非がん性対照細胞(すなわち、正常または健康な対照)で観察される発現レベルと比較してがん性細胞もしくは組織で減少するか、または異なるがん種に由来するがん性細胞で観察される腫瘍抑制miRNAの発現レベルと比較して減少する。例えば、がん性細胞における腫瘍抑制miRNAの発現は、非がん性対照細胞または異なるがん種に由来するがん性細胞における腫瘍抑制miRNAの発現と比較して、少なくとも5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、60%、70%、80%、90%、または100%減少し得る。いくつかの態様では、非がん性対照細胞は、がん性細胞では発現されない腫瘍抑制miRNAを発現し得る。
通常、特定のmiRNAの発がん性対腫瘍抑制性miRNAの指定は、がんの種類によって異なる。例えば、1つのmiRNAの発現が特定のがんで増加し、そのがんの発生に関連し得、一方で同じmiRNAの発現が別のがんで減少し、そのがんの発生の予防に関連し得る。しかしながら、いくつかのmiRNAは、がんの種類に関係なく発がん性miRNAとして機能し得る。例えば、いくつかのmiRNAは、腫瘍抑制遺伝子のmRNA転写産物を分解の標的とし、それによって腫瘍抑制タンパク質の発現を低減させる。表2は、いくつかのがん及び各がん種で観察された対応する「上方制御された」miRNA及び「下方制御された」miRNAのリストを示す。表2では、上方制御されたmiRNAは、その特定のがんで発がん性である可能性が高いmiRNAであり、下方制御されたmiRNAは、その特定のがんで腫瘍抑制性である可能性が高い。追加の腫瘍抑制miRNAのリストを表3に示す。表1は、12個の選択した腫瘍miR(9個の腫瘍抑制因子及び3個の発がん性miRNA)及び多数のがんの関係を示す。
いくつかの態様では、本明細書に記載のポリヌクレオチドによって産生されるウイルスの複製は、ウイルスゲノムの1つ以上の位置に1つ以上のmiRNA標的配列を組み込むことによって腫瘍細胞に制限される。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、複製可能なウイルスゲノムの5’UTR及び/または3’UTRに組み込まれる。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、必須ウイルス遺伝子の1つ以上の遺伝子座に組み込まれる。本明細書で使用される場合、「必須ウイルス遺伝子」は、ウイルス複製、ウイルス遺伝子産物の感染性粒子への組み立てに必要な、または組み立てられた感染性粒子の構造的完全性を維持するために必要とされるウイルス遺伝子を指す。いくつかの実施形態では、必須ウイルス遺伝子は、UL1、UL5、UL6、UL7、UL8、UL9、UL11、UL12、UL14、UL15、UL17、UL18、UL19、UL20、UL22、UL25、UL26、UL26.5、UL27、UL28、UL29、UL30、UL31、UL32、UL33、UL34、UL35、UL36、UL37、UL38、UL39、UL40、UL42、UL48、UL49、UL50、UL52、UL53、UL54、US1、US3、US4、US5、US6、US7、US8、US12、ICP0、ICP4、ICP22、ICP27、ICP47、PB、F、B5R、SERO-1、Cap、Rev、VP1-4、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)、ポリメラーゼ(L)、E1、E2、E3、E4、VP1、VP2、VP3、VP4、2A、2B、2C、3A、3B、3C、及び3Dを含む。
いくつかの実施形態では、必須ウイルス遺伝子の1つ以上の遺伝子座に挿入されたmiRNA標的配列は、正常な非がん性細胞によって発現され、がん性細胞において発現されないか、または低減した発現を示すmiRNAに対応する。正常な(非がん性)細胞で発現するmiRNAは、ポリヌクレオチドの対応する標的配列と結合し、miRNA標的配列を含むウイルス遺伝子の発現を抑制し、それによってウイルス複製及び/または感染性粒子への構造的組み立てを防ぐであろう。したがって、miRNA標的配列の挿入は、コードされたウイルスの溶解効果から正常細胞を保護する。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、腫瘍抑制miRNA(例えば、表3に列挙されるmiRNA)の標的配列である。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、少なくとも1つ、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、少なくとも5つ、少なくとも6つ、少なくとも7つ、少なくとも8つ、少なくとも9つ、または少なくとも10個の必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入されたmiRNA標的配列を含み得る。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の5’非翻訳領域(UTR)及び/または3’UTRに組み込まれる。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、ウイルスゲノムの非必須遺伝子の3’または5’UTRに組み込まれる(例えば、ガンマ34.5)。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に組み込まれるmiRNA標的配列を含む。いくつかの態様では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、1つ以上の必須ウイルス遺伝子に組み込まれる複数のmiRNA標的配列を含む。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、複数(例えば、2つ以上)の必須ウイルス遺伝子に組み込まれるmiRNA標的配列を含む。例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上の必須ウイルス遺伝子に挿入されるmiRNA標的配列を含み得る。かかる実施形態では、各必須ウイルス遺伝子は、1つのmiRNA標的配列を含み、一方でポリヌクレオチドは全体として複数のmiRNA標的配列を含むであろう。かかる実施形態では、複数のmiRNA標的配列は、同じmiRNAに対応し得る。例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上の必須ウイルス遺伝子に挿入される同じmiRNA標的配列を含み得る。かかる実施形態では、複数のmiRNA標的配列は、2つ以上の異なるmiRNAに対応し得る。例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、第1の必須ウイルス遺伝子に挿入される第1のmiRNAに対応するmiRNA標的配列、第2の必須ウイルス遺伝子に挿入される第2のmiRNAに対応するmiRNA標的配列、第3の必須ウイルス遺伝子に挿入される第3のmiRNAに対応するmiRNA標的配列などを含み得る。
いくつかの実施形態では、miRNA標的配列の複数のコピーは、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に組み込まれる。例えば、いくつかの実施形態では、miRNA標的配列の2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上のコピーが、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入され得る。いくつかの実施形態では、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入される複数のmiRNA標的配列の各々は、同じmiRNAに対応する。いくつかの実施形態では、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入される複数のmiRNA標的配列の各々は、異なるmiRNAに対応する。例えば、2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上の異なるmiRNAに対応するmiRNA標的配列が、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入され得る。
いくつかの実施形態では、miRNA標的配列の複数のコピーが、複数の必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に組み込まれる。例えば、いくつかの実施形態では、miRNA標的配列の2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上のコピーが、2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上の必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入され得る。いくつかの実施形態では、特定の必須ウイルス遺伝子に挿入される複数のmiRNA標的配列は、すべて同じmiRNAに対応し得る。例えば、いくつかの実施形態では、第1の必須ウイルス遺伝子は、各々が第1のmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を含み得、第2の必須ウイルス遺伝子は、各々が第2のmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を含み得る。いくつかの実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、各々がそれぞれ第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9、または第10のmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を含む第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9、または第10の必須ウイルス遺伝子をさらに含み得る。
いくつかの実施形態では、異なるmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列は、複数の必須ウイルス遺伝子座に挿入される。例えば、いくつかの実施形態では、第1の必須ウイルス遺伝子は、2つ以上の異なるmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を含み得、第2の必須ウイルス遺伝子は、2つ以上の異なるmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を含み得る。かかる実施形態では、第1の必須ウイルス遺伝子のmiRNA標的配列は、第2の必須ウイルス遺伝子のmiRNA標的配列と同じであっても異なっていてもよい。いくつかの実施形態では、自己複製ポリヌクレオチドは、各々が異なるmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を含む第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9、または第10の必須ウイルス遺伝子をさらに含み得る。いくつかの実施形態では、第1、第2、第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9、または第10の必須ウイルス遺伝子のいずれか1つのmiRNA標的配列は、他の必須ウイルス遺伝子のいずれかのmiRNA標的配列と同じであり得る。いくつかの実施形態では、第1、第2、第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9、または第10の必須ウイルス遺伝子のいずれか1つのmiRNA標的配列は、他の必須ウイルス遺伝子のいずれかのmiRNA標的配列と異なり得る。
いくつかの実施形態では、複数のmiRNA標的配列は、1つ以上の必須のウイルス遺伝子の遺伝子座にタンデムに挿入され、リンカー配列またはスペーサー配列によって互いに分離される。いくつかの実施形態では、リンカーまたはスペーサー空間配列は、4つ以上のヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、リンカーまたはスペーサー空間配列は、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上のヌクレオチドを含む。一実施形態では、リンカー配列またはスペーサー配列は、少なくとも4つ~少なくとも6つのヌクレオチドを含む。
いくつかの実施形態では、以下のサブユニットの少なくとも1つ、2つ、3つ、4つ、5つ、6つ、7つ、8つ、9つ、10個以上が、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の遺伝子座にタンデムに挿入される:(a)第1のmiRNAの標的配列-リンカーもしくはスペーサー配列-第1のmiRNAの標的配列、または(b)第1のmiRNAの標的配列-リンカーもしくはスペーサー配列-第2のmiRNAのターゲット配列。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、表3に列挙されるmiRNAのうちの1つ以上のいずれかの標的配列である。
F.ペイロード分子
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、ペイロード分子をコードする核酸配列を含む。いくつかの実施形態では、ペイロード分子をコードする核酸は、複製可能なウイルスゲノムをコードする組換え核酸分子とは別の第2のポリヌクレオチドとして存在する。本明細書で使用される場合、「ペイロード分子」(「治療分子」とも称される)は、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドまたはその感染性粒子によってコードされるウイルスの治療効果をさらに高めることができる任意の分子を指す。本開示での使用に好適なペイロード分子には、細胞傷害性ペプチド、免疫調節ペプチドなどのタンパク質またはペプチドが含まれる(例えば、抗体またはその抗原結合断片などの抗原結合分子、サイトカイン、ケモカイン、可溶性受容体、細胞表面受容体リガンド、二分ペプチド、及び酵素。かかるペイロード分子は、核酸(例えば、shRNA、siRNA、アンチセンスRNA、アンタゴミル、リボザイム、及びアパタマー)をさらに含み得る。ペイロード分子の性質は、疾患の種類及び所望される治療結果によって異なり得る。
いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、ペイロード分子をコードするポリヌクレオチド配列の3’または5’UTRに組み込まれる。かかる実施形態では、ペイロードの翻訳及びその後の発現は、対応するmiRNAが発現される細胞では起こらないか、または実質的に減少する。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、治療用ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列の3’及び/または5’UTRに挿入される。
いくつかの実施形態では、治療用分子の発現は、非がん性細胞と比較してがん細胞における治療用分子の発現の増加を駆動する転写制御要素によってさらに制御され得る(例えば、hTERT、HE4、CEA、OC、ARF、CgA、GRP78、CXCR4、HMGB2、INSM1、メソセリン、OPN、RAD51、TETP、H19、uPAR、ERBB2、MUC1、Frz1、IGF2-P4、または低酸素(HRE)に由来するプロモスター及び放射線応答要素)。いくつかの実施形態では、ペイロード分子の発現は、自己複製ポリヌクレオチドと同じ転写制御要素の制御下にある。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製ポリヌクレオチドを含み、細胞傷害性ペプチドをコードするポリヌクレオチドをさらに含む。本明細書で使用される場合、「細胞傷害性ペプチド」は、宿主細胞で発現された場合に細胞死を、及び/または宿主細胞によって分泌された場合に隣接細胞の細胞死を誘導することができるタンパク質を指す。いくつかの実施形態では、細胞傷害性ペプチドは、カスパーゼ、p53、ジフテリア毒素(DT)、Pseudomonas体外毒素A(PEA)、I型リボソーム不活性化タンパク質(RIP)(例えば、サポリン及びジェロニン)、II型RIP(例えば、リシン)、志賀様毒素1(Slt1)、感光性活性酸素種(例えば、キラーレッド)である。特定の実施形態では、細胞傷害性ペプチドは、カスパーゼ遺伝子などのアポトーシスを介して細胞死をもたらす自殺遺伝子によってコードされる。
いくつかの実施形態では、ペイロードは、免疫調節ペプチドである。本明細書で使用される場合、「免疫調節ペプチド」は、特定の免疫受容体及び/または経路を調節する(例えば、活性化または阻害する)ことができるペプチドである。いくつかの実施形態では、免疫調節ペプチドは、免疫細胞、組織細胞、及び間質細胞を含む任意の哺乳動物細胞に作用することができる。好ましい実施形態では、免疫調節ペプチドは、T細胞、NK細胞、NKT T細胞、B細胞、樹状細胞、マクロファージ、好塩基球、肥満細胞、または好酸球などの免疫細胞に作用する。例示的な免疫調節ペプチドには、抗体またはその抗原結合断片などの抗原結合分子、サイトカイン、ケモカイン、可溶性受容体、細胞表面受容体リガンド、二分ペプチド、及び酵素が含まれる。
いくつかの実施形態では、ペイロードは、IL-1、IL-2、IL-12、IL-15、IL-18、IL-36、IL-36γ、LIGHT(TNFSF14/CD258)、TNFα、IFNα、IFNβ、またはIFNγなどのサイトカインである。いくつかの実施形態では、ペイロードは、IL-2、IL-18、LIGHT、及びIL-36γから選択されるサイトカインである。いくつかの実施形態では、ペイロードは、CXCL10、CXCL9、CCL21、CCL4、またはCCL5などのケモカインをコードするポリヌクレオチドである。いくつかの実施形態では、ペイロードは、CCL21、CCL4、及びCCL5から選択されるケモカインである。いくつかの実施形態では、ペイロードは、NKG2Dリガンド、ニューロピリンリガンド、Flt3リガンド、CD47リガンド(例えば、SIRP1α)などの細胞表面受容体のリガンドである。いくつかの実施形態では、ペイロードは、可溶性サイトカイン受容体(例えば、IL-13R、TGFβR1、TGFβR2、IL-35R、IL-15R、IL-2R、IL-12R、及びインターフェロン受容体)または可溶性自然免疫受容体(例えば、toll様受容体、補体受容体など)などの可溶性受容体である。いくつかの実施形態では、ペイロードは、細胞内RNA及び/またはDNAセンシングに関与するタンパク質の優性アゴニスト変異体である(例えば、STING、RIG-1、またはMDA-5の優性アゴニスト変異体)。
いくつかの実施形態では、ペイロードは、抗体またはその抗原結合断片などの抗原結合分子である(例えば、一本鎖可変断片(scFv)、F(ab)など)。いくつかの実施形態では、抗原結合分子は、免疫チェックポイント受容体(例えば、PD1、PDL1、CTLA4、及びCD47)または細胞成長及び活性化に関与する追加の細胞表面受容体(例えば、OX40、CD200R、CSF1R、41BB、CD40、及びNKG2D)などの細胞表面受容と特異的に結合する。
いくつかの実施形態では、ペイロード分子は、クロロトキシン、BmKn-2、ネオプラジン1、ネオプラジン2、及びマウリポリン(mauriporin)などのサソリポリペプチドである。いくつかの実施形態では、治療用分子は、コントルトロスタチン、アポキシンI、ボトロプストキシンI、BJcuL、OHAP-1、ロドストミン(rhodostomin)、drCT-I、CTX-III、B1L、及びACTX-6などのヘビポリペプチドである。いくつかの実施形態では、ペイロード分子は、ラタルシン及びヒアルロニダーゼなどのクモポリペプチドである。いくつかの実施形態では、ペイロード分子は、メリチン及びアパミンなどのハチポリペプチドである。いくつかの実施形態では、ペイロード分子は、PsT-1、PdT-1、及びPdT-2などのカエルポリペプチドである。
いくつかの実施形態では、ペイロードは、酵素である。いくつかの実施形態では、酵素は、細胞外マトリックスを改変することによって腫瘍微小環境を調節することができる。かかる実施形態では、酵素は、これらに限定されないが、マトリックスメタロプロテイナーゼ(例えば、MMP9)、コラゲナーゼ、ヒアルロニダーゼ、ゼラチナーゼ、またはエラスターゼを含み得る。いくつかの実施形態では、酵素は、単純ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼ、シトシンデアミナーゼ、ニトロレダクターゼ、カルボキシペプチダーゼG2、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ、またはチトクロームP450などの遺伝子指向性酵素プロドラッグ療法(GDEPT)システムの一部である。いくつかの実施形態では、酵素は、標的細胞において細胞死経路を誘導または活性化することができる(例えば、カスパーゼ)。
いくつかの実施形態では、ペイロード分子は、二分ペプチドである。本明細書で使用される場合、「二分ペプチド」は、非がん性エフェクター細胞上で発現される細胞表面抗原と結合することができる第1のドメインと、標的細胞によって発現される細胞表面抗原と結合することができる第2のドメインとからなる多量体タンパク質を指す(例えば、がん性細胞、腫瘍細胞、または異なる種類のエフェクター細胞)。いくつかの実施形態では、二分ポリペプチドの個々のポリペプチドドメインは、抗体またはその結合断片(例えば、一本鎖可変断片(scFv)またはF(ab))、サソリポリペプチド、ダイアボディ、フレキシボディ、DOCK-AND-LOCK(商標)抗体、またはモノクローナル抗イディオタイプ抗体(mAb2)を含み得る。いくつかの実施形態では、二分ポリペプチドの構造は、二重可変ドメイン抗体(DVD-Ig(商標))、Tandab(登録商標)、二重特異性T細胞会合(BiTE(商標))、DuoBody(登録商標)、または二重親和性再標的化(DART)ポリペプチドであり得る。いくつかの実施形態では、二分ポリペプチドは、BiTEであり、表6及び/または表7に示す抗原と特異的に結合するドメインを含む。例示的なBiTEを以下の表5に示す。
Figure 2022507269000006
いくつかの実施形態では、エフェクター細胞に発現される細胞表面抗原は、以下の表6から選択される。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞またはエフェクター細胞に発現する細胞表面抗原は、以下の表7から選択される。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞に発現する細胞表面抗原は、腫瘍抗原である。いくつかの実施形態では、腫瘍抗原は、CD19、EpCAM、CEA、PSMA、CD33、EGFR、Her2、EphA2、MCSP、ADAM17、PSCA、17-A1、NKGD2リガンド、CSF1R、FAP、GD2、DLL3、またはニューロピリンから選択される。いくつかの実施形態では、腫瘍抗原は、EpCam、DLL3、及びCEAから選択される。いくつかの実施形態では、腫瘍抗原は、表7に列挙されるものから選択される。
Figure 2022507269000007
Figure 2022507269000008
Figure 2022507269000009
III.自己複製ポリヌクレオチドを含む組換え核酸分子を産生する方法
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、1つ以上のベクターを使用してインビトロで産生される。「ベクター」という用語は、別の核酸分子を輸送または運搬することができる核酸分子を指すために本明細書で使用される。輸送される核酸は、通常、ベクター核酸分子に挿入される。ベクターは、細胞内で自律複製を誘導する配列を含み得、及び/または宿主細胞DNAへの組み込みを可能にするのに十分な配列を含み得る。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドをプラスミド骨格に挿入することによって産生される。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、1つ以上のウイルスベクターを使用して産生される。ウイルスベクターは、時に、「組み換えウイルス」または「ウイルス」と称され得る。いくつかの実施形態では、2つのベクターシステムが使用される。例えば、いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドは、AAV由来のITRと隣接する。次に、ITR隣接ポリヌクレオチドを第1の発現ベクターに挿入し、ITRを媒介した複製に必要なAAVタンパク質をコードするポリヌクレオチド(例えば、Rep78及びRep52)を第2の発現ベクターに挿入する。かかる実施形態では、第1及び第2のベクターは、細胞内で好適な宿主細胞(例えば、昆虫細胞株)に送達され(例えば、トランスフェクション、形質導入、エレクトロポレーションなどによる)、ITR隣接ポリヌクレオチドが宿主細胞のゲノムに安定して組み込まれる細胞を産生する。いくつかの実施形態では、第1及び第2のベクターは、ヘルペスウイルス発現ベクターである。いくつかの実施形態では、第1及び第2のベクターは、バキュロウイルス発現ベクターである。かかる発現系は、例えば、Li et al.,Plos One,8:8,2013に記載される。いくつかの実施形態では、宿主細胞は、ITRの非存在下で産生される量よりも多い量でITR隣接自己複製ポリヌクレオチドを産生する。いくつかの実施形態では、ITR隣接導入遺伝子でトランスフェクトされた宿主細胞からのITR隣接ウイルスゲノムDNAは、ITRを含まない同様にトランスフェクトされた導入遺伝子よりも4~60倍多くのDNAを産生し得る(例えば、組換えバキュロウイルス感染を介して)(Li et al,PLoS One,2013を参照されたい)。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、単一のベクター発現システムを使用してインビトロで産生される。例えば、いくつかの実施形態では、AAV ITRが隣接する本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドを含む発現カセットは、UL3及びUL4遺伝子の間に(例えば、遺伝子間遺伝子座に)または組換えHSVゲノム骨格のICP4遺伝子座(例えば、図4B及び図5Bを参照されたい)の間に挿入される。ITRを媒介した複製に必要なAAVタンパク質をコードするポリヌクレオチド(例えば、Rep78及びRep52)を含む第2の発現カセットが、組換えHSV骨格のICP0またはICP4遺伝子座に挿入される。Repタンパク質の発現により、単一のベクターからITR隣接ポリヌクレオチドを効率的に複製できる。いくつかの実施形態では、Repタンパク質をコードするポリヌクレオチドは、制御可能または誘導性プロモーターに作動可能に連結される。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、好適な宿主細胞に対して細胞内で(例えば、トランスフェクション、形質導入、エレクトロポレーションなどによる)、ITR隣接自己複製ポリヌクレオチドを含む発現カセット及びITRを媒介した複製に必要なAAVタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含む発現カセットを含むHSVベクターによって産生される。好適な宿主細胞には、昆虫及び哺乳動物細胞株が含まれる。HSVベクターを含む宿主細胞を適切な時間で培養すると、挿入された発現カセットの発現及び組換えDNA分子の産生が可能となる。次に、組換えDNA分子は、宿主細胞DNAから単離され、治療的使用のために製剤化される(例えば、粒子にカプセル化される)。
いくつかの実施形態では、上記のAAV-ITRシステムによって産生された組換えDNA分子は、各末端で一緒に共有結合した2つの一本鎖DNA分子の産生をもたらす。例えば、第1の分子の5’ITRは、第2のDNA分子の3’ITRと共有結合し、第1の分子の3’ITRは、第2のDNA分子の5’ITRと共有結合する。かかる実施形態では、共有結合したITR隣接ポリヌクレオチドは、本明細書ではNanoV分子と称される、末端閉鎖した、線状の二本鎖腫瘍溶解性ウイルス核酸分子を形成する。いくつかの実施形態では、一本鎖DNA分子の各々は、単一のITR隣接ポリヌクレオチドを含む。例えば、いくつかの実施形態では、NanoV分子は2つのssDNA分子を含み、1つのssDNA分子は、5’-ITR-[自己複製ポリヌクレオチドのセンス配列]-ITR-3’の構造を含み、1つのssDNA分子は、3’-ITR-[自己複製ポリヌクレオチドのアンチセンス配列]-ITR-3’の構造を含む。いくつかの実施形態では、一本鎖DNA分子の各々は、2つ以上のITR隣接ポリヌクレオチド(すなわち、ITR隣接ポリヌクレオチドのコンカンタマー)を含む。ITR隣接ポリヌクレオチドのコンカンタマーは、様々な方向を有することができる。例えば、いくつかの実施形態では、コンカンタマーは、ヘッドトゥーヘッド方向またはテイルトゥーテイル方向で形成される。
IV.自己複製ポリヌクレオチドを含む粒子
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、「粒子」にカプセル化される。本明細書で使用される場合、粒子は、リポソーム、リポプレックス、ナノ粒子、ナノカプセル、微粒子、ミクロスフェア、脂質粒子、エクソソーム、小胞などの物質の非組織由来組成物を指す。特定の実施形態では、粒子は、非タンパク質性及び非免疫原性である。かかる実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドのカプセル化は、全身性の抗ウイルス免疫応答を誘導することなくウイルスペイロードの送達を可能にし、抗ウイルス抗体を中和する効果を軽減する。さらに、本明細書に記載のポリヌクレオチドのカプセル化は、ポリヌクレオチドを分解から保護し、標的宿主細胞へのポリヌクレオチドの導入を容易にする。
いくつかの実施形態では、粒子は、対象において生分解性である。かかる実施形態では、粒子の複数の用量は、対象に粒子を蓄積することなく対象に投与することができる。好適な粒子の例には、ポリスチレン粒子、ポリ(乳酸-コ-グリコール酸)PLGA粒子、ポリペプチ系カチオン性ポリマー粒子、シクロデキストリン粒子、キトサン粒子、脂質系粒子、ポリ(β-アミノエステル)粒子、低分子-重量ポリエチレンイミン粒子、ポリホスホエステル粒子、ジスルフィド架橋ポリマー粒子、ポリアミドアミン粒子、ポリエチレンイミン(PEI)粒子、及びPLURIONICS安定化ポリプロピレンスルフィド粒子が含まれる。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、無機粒子にカプセル化される。いくつかの実施形態では、無機粒子は、金ナノ粒子(GNP)、金ナノロッド(GNR)、磁性ナノ粒子(MNP)、磁性ナノチューブ(MNT)、カーボンナノホーン(CNH)、カーボンフラーレン、カーボンナノチューブ(CNT)、リン酸カルシウムナノ粒子(CPNP)、メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)、シリカナノチューブ(SNT)、または星状中空シリカナノ粒子(SHNP)である。
A.エクソソーム
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、エクソソームにカプセル化される。エクソソームは、エンドサイトーシス起源の小さな膜小胞であり、多小胞体が親細胞(例えば、エクソソームが放出される細胞、本明細書ではドナー細胞とも称される)との融合に続いて細胞外環境に放出される。エクソソームの表面は、親細胞の細胞膜に由来する脂質二重層を含み、親細胞表面に発現される膜タンパク質をさらに含むことができる。いくつかの実施形態では、エクソソームは、親細胞からのサイトゾルをさらに含み得る。エクソソームは、上皮細胞、B及びTリンパ球、肥満細胞(MC)、樹状細胞(DC)を含む多くの異なる細胞種によって産生され、血漿、尿、気管支肺胞洗浄液、腸上皮細胞、及び腫瘍組織で同定されている。エクソソームの組成は、それらが由来する親細胞種に依存するため、「エクソソーム特異的」タンパク質は存在しない。しかしながら、多くのエクソソームは、エクソソームが親細胞に由来する細胞内小胞に関連するタンパク質を含む(例えば、エンドソーム及びリソソームに関連する及び/またはそれらによって発現されるタンパク質)例えば、エクソソームは、主要組織適合遺伝子複合体I及びII(MHC-I及びMHC-II)などの抗原提示分子、テトラスパニン(例えば、CD63)、いくつかの熱ショックタンパク質、アクチン及びチューブリンなどの細胞骨格成分、細胞内膜融合に関与するタンパク質、細胞間相互作用分子(例えば、CD54)、シグナル伝達タンパク質、及び細胞質ゾル酵素に濃縮され得る。
エクソソームは、エクソソーム膜を標的細胞の原形質膜と融合させることにより、1つの細胞(例えば、親細胞)から標的またはレシピエント細胞への細胞タンパク質の移動を媒介し得る。したがって、エクソソームによってカプセル化される物質を修飾することにより、本明細書に記載のポリヌクレオチドなどの外因性薬剤を標的細胞に導入することができるメカニズムが提供される。1つ以上の外因性薬剤(例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチド)を含むように修飾されているエクソソームは、本明細書では「修飾エクソソーム」と称される。いくつかの実施形態では、修飾エクソソームは、外因性薬剤(例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチド)の導入によって産生され、親細胞に導入される。かかる実施形態では、外因性核酸は、外因性核酸自体、または外因性核酸の転写物が親細胞から産生される修飾エクソソームに組み込まれるように、親のエクソソーム産生細胞に導入される。外因性核酸は、当技術分野で即知である手段、例えば、外因性核酸の形質導入、トランスフェクション、形質転換、及び/またはマイクロインジェクションによって親細胞に導入することができる。
いくつかの実施形態では、修飾エクソソームは、本明細書に記載のポリヌクレオチドをエクソソームに直接的に導入することによって産生される。いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、無傷エクソソームに導入される。「無傷エクソソーム」とは、それらが産生される親細胞に由来するタンパク質及び/または遺伝物質を含むエクソソームを指す。無傷エクソソームを得るための方法は当技術分野で即知である(例えば、Alvarez-Erviti L.et al.,Nat Biotechnol.2011 Apr;29(4):34-5、Ohno S,et al.,Mol Ther 2013 Jan;21(l):185-91、及びEP特許公開第2010663号を参照されたい)。
特定の実施形態では、外因性薬剤(例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチド)は、空のエクソソームに導入される。「空のエクソソーム」とは、親細胞に由来するタンパク質及び/または遺伝物質(例えば、DNAまたはRNA)を欠くエクソソームを指す。空のエクソソーム(例えば、親細胞由来の遺伝物質を欠く)を産生する方法は、当技術分野で即知であり、UV曝露、エクソソームへの核酸の負荷を媒介する内因性タンパク質の変異/欠失、ならびに内因性遺伝物質が開いた細孔を通ってエクソソームから出て行くように、エクソソーム膜の細孔を開くためのエレクトロポレーション及び化学的処理を含む。いくつかの実施形態では、空のエクソソームは、エクソソーム膜を得るために約9~約14のpHを有する水溶液で処理することによってエクソソームを開き、小胞内成分を除去し(例えば、小胞内タンパク質及び/または核酸)、エクソソーム膜を再組み立てして空のエクソソームを形成することによって産生される。いくつかの実施形態では、小胞内成分(例えば、小胞内タンパク質及び/または核酸)は、超遠心分離または密度勾配超遠心分離によって除去される。いくつかの実施形態では、膜は、超音波処理、機械的振動、多孔質膜からの押し出し、電流、またはこれらの技術のうちの1つ以上の組み合わせによって再組み立てされる。特定の実施形態では、膜は、超音波処理によって再組み立てされる。
いくつかの実施形態では、修飾エクソソームを産生するための外因性薬剤(例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチド)による無傷または空のエクソソームの負荷は、インビトロでの形質転換、トランスフェクション、及び/またはマイクロインジェクションなどの従来の分子生物学技術を使用して達成することができる。いくつかの実施形態では、外因性薬剤(例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチド)は、エレクトロポレーションによって無傷または空のエクソソームに直接的に導入される。いくつかの実施形態では、外因性薬剤(例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチド)は、リポフェクション(例えば、トランスフェクション)によって無傷または空のエクソソームに直接的に導入される。本開示によるエクソソームの産生に使用するのに好適なリポフェクションキットは当技術分野で知られており、市販されている(例えば、RocheからのFuGENE(登録商標)HDトランスフェクション試薬、及びInvitrogenからのLIPOFECTAMINE(商標)2000)。いくつかの実施形態では、外因性薬剤(例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチド)は、熱ショックを使用した形質転換によって無傷または空のエクソソームに直接的に導入される。かかる実施形態では、親細胞から単離したエクソソームは、エクソソーム膜を透過性にするために、Ca2+(CaCl中)などの二価カチオンの存在下で冷却される。次に、エクソソームを外因性核酸とインキュベートし、短時間熱ショックを与えることができる(例えば、42℃で30~120秒間インキュベート)。特定の実施形態では、外因性核酸が環状DNAプラスミドである場合、熱ショック法を使用する無傷または空のエクソソームの形質転換が使用される。特定の実施形態では、外因性薬剤(例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチド)を有する空のエクソソームの負荷は、小胞内成分の除去後に薬剤をエクソソーム膜と混合または同時注入することによって達成することができる。したがって、エクソソーム膜から再組み立てされた修飾エクソソームは、外因性薬剤を小胞内空間に組み込むであろう。エクソソームカプセル化核酸を産生するための追加の方法は、当技術分野で即知である(例えば、米国特許第9,889,210号、同第9,629,929号、及び同第9,085,778号、国際PCT公開第WO2017/161010号及び同第WO2018/039119号を参照されたい)。
エクソソームは、細胞株、骨髄由来細胞、及び初代患者試料に由来する細胞を含む、多数の異なる親細胞から得ることができる。親細胞から放出されたエクソソームは、当技術分野で即知である手段によって親細胞培養物の上清から単離することができる。例えば、エクソソームの物理的特性を利用して、電荷(例えば、電気泳動分離)、サイズ(例えば、ろ過、分子ふるいなど)、密度(例えば、通常または勾配遠心分離)、及びスベドベルグ定数(例えば、外力の有無による沈降など)に基づく分離を含む、培地または他の源からエクソソームを分離することができる。代替的または追加的に、単離は、1つ以上の生物学的特性に基づくことができ、表面マーカーを使用できる方法を含む(例えば、沈殿、固相への可逆的結合、FACS分離、特異的リガンド結合、非特異的リガンド結合など)。エクソソーム表面タンパク質の分析は、CD63などのエクソソーム関連タンパク質に対する蛍光標識抗体を使用したフローサイトメトリーによって決定できる。エクソソームを特徴付けするための追加のマーカーは、国際PCT公開第WO2017/161010に記載される。さらにさらに企図された方法では、エクソソームは、PEG誘導融合及び/または超音波融合を含む化学的及び/または物理的方法を使用して融合することもできる。
いくつかの実施形態では、サイズ排除クロマトグラフィーを利用して、エクソソームを単離することができる。いくつかの実施形態では、エクソソームは、当技術分野で一般的に知られているように、遠心分離技術(1つ以上のクロマトグラフィー画分の)によるクロマトグラフィー分離後にさらに単離することができる。いくつかの実施形態では、エクソソームの単離は、前述のような分画遠心分離(例えば、Raposo,G.et al.,J.Exp.Med.183,1161-1172(1996))、超遠心分離、サイズ系膜濾過、濃縮、及び/または比率ゾーン遠心分離を含むがこれに限定されない方法の組み合わせを伴い得る。
いくつかの実施形態では、エクソソーム膜は、リン脂質、糖脂質、脂肪酸、スフィンゴ脂質、ホスホグリセリド、ステロール、コレステロール、及びホスファチジルセリンのうちの1つ以上を含む。さらに、膜は、1つ以上のポリペプチド及び1つ以上の多糖、例えばグリカンを含むことができる。例示的なエクソソーム膜組成物及び1つ以上の膜成分の相対量を修飾するための方法は、国際PCT公開第WO2018/039119号に記載される。
好ましくは、本明細書に記載の粒子は、溶解性を高め、インビボでの凝集によって引き起こされる可能性のある合併症を回避し、飲作用を促進するために、サイズがナノスコピックである。いくつかの実施形態では、粒子は、約1000nm未満の平均直径を有する。いくつかの実施形態では、粒子は、約500nm未満の平均直径を有する。いくつかの実施形態では、粒子は、約30~約100nm、約50~約100nm、または約75~約100nmの平均直径を有する。いくつかの実施形態では、粒子は、約30~約75nm、または約30~約50nmの平均直径を有する。いくつかの実施形態では、粒子は、約100~約500nmの平均直径を有する。いくつかの実施形態では、粒子は、約200~400nmの平均直径を有する。いくつかの実施形態では、粒子は、約350nmの平均サイズを有する。
いくつかの実施形態では、粒子はエクソソームであり、約30~約100nm、約30~約200nm、または約30~約500nmの直径を有する。いくつかの実施形態では、粒子はエクソソームであり、約10nm~約100nm、約20nm~約100nm、約30nm~約100nm、約40nm~約100nm、約50nm~約100nm、約60nm~約100nm、約70nm~約100nm、約80nm~約100nm、約90nm~約100nm、約100nm~約200nm、約100nm~約150nm、約150nm~約200nm、約100nm~約250nm、約250nm~約500nm、または約10nm~約1000nmの直径を有する。いくつかの実施形態では、粒子はエクソソームであり、約20nm~300nm、約40nm~200nm、約20nm~250nm、約30nm~150nm、または約30nm~100nmの直径を有する。
B.脂質ナノ粒子
特定の実施形態では、本明細書に記載の組換えDNA分子は、脂質ナノ粒子(LNP)にカプセル化される。特定の実施形態では、LNPは、トリグリセリド(例えば、トリステアリン)、ジグリセリド(例えば、グリセロールバヘネート)、モノグリセリド(例えば、グリセロールモノステアレート)、脂肪酸(例えば、ステアリン酸)、ステロイド(例えば、コレステロール)、及びワックス(例えば、パルミチン酸セチル)などの1つ以上の脂質を含む。いくつかの実施形態では、LNPは、1つ以上のカチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含む。いくつかの実施形態では、LNPは、1つ以上のカチオン性脂質、コレステロール、及び1つ以上の中性脂質を含む。
カチオン性脂質は、生理学的pHなどの選択されたpHで正味の正電荷を帯びる多くの脂質種のいずれかを指す。かかる脂質には、これらに限定されないが、1,2-ジリノレイルオキシ-N,N-ジメチルアミノプロパン(DLinDMA)、1,2-ジリノレニルオキシ-N,N-ジメチルアミノプロパン(DLenDMA)、ジオクタデシルジメチルアンモニウム(DODMA)、ジステアリールジメチルアンモニウム(DSDMA)、N,N-ジオレイル-N,N-ジメチルアンモニウムクロリド(DODAC);N-(2,3-ジオレイルオキシ)プロピル)-N,N,N-トリメチルアンモニウムクロリド(DOTMA);N,N-ジステアリル-N,N-臭化ジメチルアンモニウム(DDAB);N-(2,3-ジオレオイルオキシ)プロピル)-N,N,N-トリメチルアンモニウムクロリド(DOTAP);3-(N-(N’,N’-ジメチルアミノエタン)-カルバモイル)コレステロール(DC-Chol)、及びN-(1,2-ジミリスチルオキシプロプ-3-イル)-N,N-ジメチル-N-ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド(DMRIE)が含まれる。例えば、生理学的pHを下回る正電荷を有するカチオン性脂質には、これらに限定されないが、DODAP、DODMA、及びDMDMAが含まれる。いくつかの実施形態では、カチオン性脂質は、C18アルキル鎖、頭部とアルキル鎖との間のエーテル結合、及び0~3の二重結合を含む。かかる脂質には、例えば、DSDMA、DLinDMA、DLenDMA、及びDODMAが含まれる。カチオン性脂質は、エーテル結合及びpH滴定可能な頭部を含み得る。かかる脂質には、例えば、DODMAが含まれる。追加のカチオン性脂質は、参照により本明細書に組み込まれる米国特許第7,745,651号、同第5,264,618号、同第5,279,833号、同第5,283,185号、同第5,753,613号、同第5,785,992号に記載される。
いくつかの実施形態では、カチオン性脂質は、プロトン化可能な第三級アミン頭部を含む。かかる脂質は、本明細書ではイオン化可能な脂質と称される。イオン化可能な脂質は、イオン化可能なアミン頭部を含み、通常、約7未満のpKaを含む脂質種を指す。したがって、酸性pHの環境では、イオン化可能なアミン頭部は、イオン化可能な脂質が負に帯電した分子(例えば、本明細書に記載の組換えポリヌクレオチドなどの核酸)と優先的に相互作用するようにプロトン化され、したがってナノ粒子の組み立て及びカプセル化を促進する。したがって、いくつかの実施形態では、イオン化可能な脂質は、脂質ナノ粒子への核酸の負荷を増加させることができる。pHが約7よりも大きい環境(例えば、生理学的pHが約7.4)では、イオン化可能な脂質は中性電荷を含む。イオン化可能な脂質を含む粒子がエンドソームの低pH環境(例えば、pH<7)に取り込まれると、イオン化可能な脂質は再びプロトン化され、陰イオン性エンドソーム膜と結合して、粒子によってカプセル化された内容物の放出を促進する。いくつかの実施形態では、カチオン性脂質は、DLinDMA、DLin-KC2-DMA、及びDLin-MC3-DMAから選択されるイオン化可能な脂質である。いくつかの実施形態では、カチオン性イオン化可能脂質は、DLin-MC3-DMA(MC3)である。
いくつかの実施形態では、LNPは、1つ以上の非カチオン性ヘルパー脂質(中性脂質)を含む。例示的な中性ヘルパー脂質には、(1,2-ジラウロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン)(DLPE)、1,2-ジフィタノイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DiPPE)、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(DSPC)、1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(DPPC)、1,2-ジオレイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DOPE)、1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DPPE)、1,2-ジミリストイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DMPE)、(1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホ-(l’-rac-グリセロール)(DOPG)、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DSPE)、セラミド、スフィンゴミエリン、及びコレステロールが含まれる。
本明細書に記載のリポソーム及び薬学的組成物におけるN-オクタノイル-スフィンゴシン-l-[スクシニル(メトキシポリエチレングリコール)-2000](C8 PEG-2000)を含む、ポリエチレングリコール(PEG)修飾リン脂質及び誘導体化セラミド(PEG-CER)などの誘導体化脂質の使用ならびに包含は、好ましくは、本明細書に開示される化合物及び脂質のうちの1つ以上と組み合わせてさらに企図される。
いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子は、1つ以上のC6-C20アルキルを含む脂質と共有結合した最大5kDaの長さのポリ(エチレング)グリコール鎖を含む1つ以上のPEG修飾脂質をさらに含み得る。いくつかの実施形態では、LNPは、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-ポリ(エチレングリコール)(DSPE-PEG)または1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-N-[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE-PEG-アミン)をさらに含む。いくつかの実施形態では、PEG修飾脂質は、脂質ナノ粒子の総脂質含有量の約0.1%~約1%で含まれる。いくつかの実施形態では、PEG修飾脂質は、脂質ナノ粒子の総脂質含有量の約0.1%、約0.2%、約0.3%、約0.4%、約0.5%、約0.6%、約0.7%、約0.8%、約0.9%、または約1.0%で含まれる。
いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はDOTAPである。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はDLin-MC3-DMA(MC3)である。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、1つ以上のヘルパー脂質はコレステロールを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、1つ以上のヘルパー脂質はDLPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、1つ以上のヘルパー脂質はDSPCを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、1つ以上のヘルパー脂質はDOPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び少なくとも2つのヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はDOTAPであり、少なくとも2つのヘルパー脂質は、コレステロール及びDLPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び少なくとも2つのヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はMC3であり、少なくとも2つのヘルパー脂質は、コレステロール及びDSPCを含む。いくつかの実施形態では、少なくとも2つのヘルパー脂質は、コレステロール及びDOPEを含む。いくつかの実施形態では、少なくとも2つのヘルパー脂質は、コレステロール及びDSPCを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び少なくとも3つのヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はDOTAPであり、少なくとも3つのヘルパー脂質は、コレステロール、DLPE、及びDSPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、カチオン性脂質及び少なくとも3つのヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はMC3であり、少なくとも3つのヘルパー脂質は、コレステロール、DSPC、及びDMGを含む。いくつかの実施形態では、少なくとも3つのヘルパー脂質は、コレステロール、DOPE、及びDSPEを含む。いくつかの実施形態では、少なくとも3つのヘルパー脂質は、コレステロール、DSPC、及びDMGを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール、及びDLPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、MC3、コレステロール、及びDSPCを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール、及びDOPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール、DLPE、及びDSPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、MC3、コレステロール、DSPC、及びDMGを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール、DLPE、及びDSPE-PEGを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、MC3、コレステロール、DSPC、及びDMG-PEGを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール、DOPE、及びDSPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール、DOPE、及びDSPE-PEGを含む。
いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール(Chol)、及びDLPEを含み、DOTAP:Chol:DLPEの比率(総脂質含有量のパーセンテージとして)が、約50:35:15である。いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール(Chol)、及びDLPEを含み、DOTAP:Chol:DOPEの比率(総脂質含有量のパーセンテージとして)が、約50:35:15である。いくつかの実施形態では、LNPは、DOTAP、コレステロール(Chol)、DLPE、DSPE-PEGを含み、DOTP:Chol:DLPEの比率(総脂質含有量のパーセンテージとして)が、約50:35:15であり、粒子は、約0.2%のDSPE-PEGを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、MC3、コレステロール(Chol)、DSPC、及びDMG-PEGを含み、MC3:Chol:DSPC:DMG-PEGの比率(総脂質含有量のパーセンテージとして)が、約49:38.5:11:1.5である。
いくつかの実施形態では、LNPは、イオン化可能な脂質、例えば、7.SS-切断可能であり、pH応答性の脂質様物質(COATSOME(登録商標)SSシリーズなど)を含む。本開示の製剤化及び方法に好適なカチオン性またはイオン化可能な脂質の追加の例は、例えば、WO2018089540A1、WO2017049245A2、US20150174261、US2014308304、US2015376115、WO201/199952、及びWO2016/176330に記載される。
いくつかの実施形態では、ナノ粒子は、標的細胞によるナノ粒子の取り込みを調節または促進するために、グリコサミノグリカン(GAG)でコーティングされる(図2)。GAGは、ヘパリン/ヘパリン硫酸、コンドロイチン硫酸/デルマタン硫酸、ケラタン硫酸、またはヒアルロン酸(HA)であり得る。特定の実施形態では、ナノ粒子の表面は、HAでコーティングされ、腫瘍細胞による取り込みのための粒子を標的とする。いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子は、アルギニン-グリシン-アスパラギン酸トリペプチド(RGDペプチド)でコーティングされる(Ruoslahti,Advanced Materials,24,2012,3747-3756、及びBellis et al.,Biomaterials,32(18),2011,4205-4210を参照されたい)。
いくつかの実施形態では、LNPが、約50nm~約500nmの平均サイズを有する。例えば、いくつかの実施形態では、LNPが、約50nm~約200nm、約100nm~約200nm、約150nm~約200nm、約50nm~約150nm、約100nm~約150nm、約150nm~約500nm、約200nm~約500nm、約300nm~約500nm、約350nm~約500nm、約400nm~約500nm、約425nm~約500nm、約450nm~約500nm、または約475nm~約500nmの平均サイズを有する。
いくつかの実施形態では、LNPが、約-20mV未満の平均ゼータ電位を有する。例えば、いくつかの実施形態では、LNPが、約-30mV未満、約35mV未満、または約-40mV未満の平均ゼータ電位を有する。いくつかの実施形態では、LNPが、約-50mV~約-20mV、約-40mV~約-20mV、または約-30mV~約-20mVの間の平均ゼータ電位を有する。いくつかの実施形態では、LNPが、約-30mV、約-31mV、約-32mV、約-33mV、約-34mV、約-35mV、約-36mV、約-37mV、約-38mV、約-39mV、または約-40mVの平均ゼータ電位を有する。
いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子は、本明細書に記載の組換え核酸分子を含み、約3:1(L:N)の脂質(L)対核酸(N)の比率を含む。いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子は、本明細書に記載の組換え核酸分子を含み、約4:1、約5:1、約6:1、または約7:1のL:N比率を含む。いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子は、本明細書に記載の組換え核酸分子を含み、約4.5:1、約4.6:1、約4.7:1、約4.8:1、約4.9:1、約5:1、約5.1:1、約5.2:1、約5.3:1、約5.4:1、または約5.5:1のL:N比率を含む。
V.治療用組成物及び使用方法
本開示の一態様は、本明細書に記載の組換え核酸分子を含む治療用組成物、または本明細書に記載の組換え核酸分子を含む粒子、及びがんの治療方法に関する。本明細書に記載の組成物は、所望の送達経路に適した任意の方法で製剤化することができる。典型的には、製剤には、誘導体またはプロドラッグ、溶媒和物、立体異性体、ラセミ体、またはそれらの互変異性体を含むすべての生理学的に許容される組成物と、任意の薬学的に許容される担体、希釈剤、及び/または賦形剤が含まれる。
本明細書で使用される場合、「薬学的に許容される担体、希釈剤、または賦形剤」には、これらに限定されないが、任意のアジュバント、担体、賦形剤、流動促進剤、甘味剤、希釈剤、防腐剤、染料/着色剤、風味増強剤、界面活性剤、湿潤剤、分散剤、懸濁剤、安定剤、等張剤、溶媒、界面活性剤、または乳化剤が含まれ、これは、米国食品医薬品局によって、ヒトまたは家畜動物での使用が許容されるものとして承認されている。例示的な薬学的に許容される担体には、これらに限定されないが、乳糖、ブドウ糖、ショ糖などの糖;コーンスターチ及びジャガイモデンプンなどの澱粉;カルボキシメチルセルロースナトリウム、エチルセルロース、及び酢酸セルロースなどのセルロースならびにその誘導体;トラガカント;麦芽;ゼラチン;タルク;カカオバター、ワックス、動植物性脂肪、パラフィン、シリコーン、ベントナイト、ケイ酸、酸化亜鉛;ピーナッツ油、綿実油、サフラワー油、ゴマ油、オリーブ油、コーン油、大豆油などの油;プロピレングリコールなどのグリコール;グリセリン、ソルビトール、マンニトール、ポリエチレングリコールなどのポリオール;オレイン酸エチル及びラウリン酸エチルなどのエステル;カンテン;水酸化マグネシウムや水酸化アルミニウムなどの緩衝剤;アルギン酸;パイロジェンフリー水;等張食塩水;リンゲル液;エチルアルコール;リン酸緩衝液;ならびに薬学的製剤に利用される任意の他の適合性物質が含まれる。
「薬学的に許容される塩」には、酸及び塩基付加塩の両方が含まれる。薬学的に許容される塩には、酸付加塩(タンパク質の遊離アミノ基で形成される)が含まれ、これらは、例えば、塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸などの無機酸、ならびにこれらに限定されないが酢酸、2,2-ジクロロ酢酸、アジピン酸、アルギン酸、アスコルビン酸、アスパラギン酸、ベンゼンスルホン酸、安息香酸、4-アセトアミド安息香酸、樟脳酸、樟脳-10-スルホン酸、カプリン酸、カプロン酸、カプリル酸、炭酸、桂皮酸、クエン酸、シクラミン酸、ドデシル硫酸、エタン-1,2-ジスルホン酸、エタンスルホン酸、2-ヒドロキシエタンスルホン酸、ギ酸、フマル酸、ガラクタル酸、ゲンチシン酸、グルコヘプトン酸、グルコン酸、グルクロン酸、グルタミン酸、グルタル酸、2-オキソ-グルタル酸、グリセロリン酸、グリコール酸、馬尿酸、イソ酪酸、乳酸、ラクトビオン酸、ラウリン酸、マレイン酸、リンゴ酸、マロン酸、マンデル酸、メタンスルホン酸、粘液酸、ナフタレン-1,5-ジスルホン酸、ナフタレン-2-スルホン酸、1-ヒドロキシ-2-ナフトエ酸、ニコチン酸、オレイン酸、オロト酸、シュウ酸、パルミチン酸、パモ酸、プロピオン酸、ピログルタミン酸、ピルビン酸、サリチル酸、4-アミノサリチル酸、セバシン酸、ステアリン酸、コハク酸、酒石酸、チオシアン酸、pトルエンスルホン酸、トリフルオロ酢酸、ウンデシレン酸などの有機酸で形成される。遊離カルボキシル基で形成される塩はまた、例えば、ナトリウム、カリウム、リチウム、アンモニウム、カルシウム、マグネシウム、鉄、亜鉛、銅、マンガン、アルミニウム塩などの無機塩基から誘導することができる。有機塩基に由来する塩には、これらに限定されないが、一級、二級、及び三級アミンの塩、アンモニア、イソプロピルアミン、トリメチルアミン、ジエチルアミン、トリエチルアミン、トリプロピルアミン、ジエタノールアミン、エタノールアミン、デアノール、2-ジメチルアミノエタノール、2-ジエチルアミノエタノール、ジシクロヘキシルアミン、リジン、アルギニン、ヒスチジン、カフェイン、プロカイン、ヒドラバミン、コリン、ベタイン、ベネタミン、ベンザチン、エチレンジアミン、グルコサミン、メチルグルカミン、テオブロミン、トリエタノールアミン、トロメタミン、プリン、ピペラジン、ピペリジン、N-エチルピペリジン、ポリアミン樹脂などの天然に存在する置換アミン、環状アミン、及び塩基性イオン交換樹脂を含む置換アミンが含まれる。特に好ましい有機塩基は、イソプロピルアミン、ジエチルアミン、エタノールアミン、トリメチルアミン、ジシクロヘキシルアミン、コリン、及びカフェインである。
本開示は、がん性細胞への組成物の細胞内送達に十分な条件下で、本明細書に記載のポリヌクレオチドもしくは粒子、またはその組成物に細胞を曝露することを含む、がん性細胞または標的細胞を殺傷する方法を提供する。本明細書で使用される場合、「がん性細胞」または「標的細胞」は、本明細書に記載のポリヌクレオチドもしくは粒子、または本明細書に記載のその組成物による治療または投与のために選択される哺乳動物細胞を指す。本明細書で使用される場合、「がん性細胞を殺傷する」とは、特に、アポトーシスまたはネクローシスによるがん性細胞の死を指す。がん性細胞の殺傷は、腫瘍サイズ測定、細胞数、ならびにアネキシンVなどの細胞死マーカーの検出及びヨウ化プロピジウムの取り込みについてのフローサイトメトリーを含むがこれらに限定されない、当技術分野で即知である方法によって決定され得る。
本開示は、がんを治療または予防するための方法をそれを必要とする対象においてさらに提供し、有効量の本明細書に記載の治療用組成物が対象に投与される。投与経路は、当然、治療される疾患の位置及び性質によって異なり得、例えば、皮内、経皮(transdermal)、真皮下、非経口、経鼻、静脈内、筋肉内、鼻腔内、皮下、経皮(percutaneous)、気管内、腹腔内、腫瘍内、灌流、洗浄、直接的注入、及び経口投与を含み得る。本明細書に記載のカプセル化ポリヌクレオチド組成物は、転移性がんの治療において特に有用であり、全身投与は、組成物を複数の器官及び/または細胞種に送達するために必要であり得る。したがって、特定の実施形態では、本明細書に記載の組成物は、全身的に投与される。
本明細書で互換的に使用される「有効量」または「有効用量」は、疾患または状態の症状の改善または向上をもたらす、本明細書に記載の組成物の量及び/または用量を指す。改善とは、疾患もしくは状態、または疾患もしくは状態の症状の任意の改善または向上である。改善は、観察可能または測定可能な改善であるか、または対象が一般的に良好であると感じるような改善であり得る。したがって、当業者は、治療が疾患状態を改善する可能性があるが、疾患の完全な治癒ではない可能性があることを認識する。対象における改善には、これらに限定されないが、減少した腫瘍量、減少した腫瘍細胞増殖、増加した腫瘍細胞死、免疫経路の活性化、増加した腫瘍進行までの時間、減少したがん性疼痛、増加した生存、または生活の質の改善が含まれる。
いくつかの実施形態では、有効用量の投与は、本明細書に記載の組成物の単回用量の投与で達成され得る。本明細書で使用される場合、「用量」は、一度に送達される組成物の量を指す。いくつかの実施形態では、用量は、所与の体積中の粒子の数によって測定され得る(例えば、粒子/mL)。いくつかの実施形態では、用量は、各粒子に存在する本明細書に記載のポリヌクレオチドのゲノムコピー数によってさらに洗練され得る(例えば、各粒子が、ポリヌクレオチドの少なくとも1つのゲノムコピーを含む、粒子数/mL)。いくつかの実施形態では、有効量の送達は、本明細書に記載の組成物の複数回の投与を必要とし得る。したがって、有効用量の投与は、本明細書に記載の組成物の少なくとも2、3、4、5、6、7、8、9、10、20、30、40、50、またはそれ以上の用量の投与を必要とし得る。
本明細書に記載の組成物の複数の用量が投与される実施形態では、各用量は、同じ人物によって及び/または同じ地理的位置で投与される必要はない。さらに、投薬は、所定のスケジュールに従って投与され得る。例えば、所定の投薬スケジュールは、本明細書に記載の組成物の用量を、毎日、隔日、毎週、隔週、毎月、隔月、毎年、半年ごとなどに投与することを含み得る。所定の投薬スケジュールは、所与の患者に対して必要に応じて調整することができる(例えば、投与される組成物の量は増加または減少させることができ、及び/または用量の頻度は増加または減少させることができ、及び/または投与される用量の総数は増加または減少させることができる)。
本明細書で使用される場合、「予防」または「予防法」は、疾患の症状の完全な予防、疾患の症状の発症の遅延、またはその後に発症する疾患の症状の重症度の軽減を意味し得る。
本明細書で使用される「対象」または「患者」という用語は、本明細書に記載の組成物が本明細書に記載の方法に従って投与される任意の哺乳動物対象を意味すると解釈される。特定の実施形態では、本開示の方法は、ヒト対象を治療するために利用される。本開示の方法は、非ヒト霊長類(例えば、サル、ヒヒ、及びチンパンジー)、マウス、ラット、ウシ、ウマ、ネコ、イヌ、ブタ、ウサギ、ヤギ、シカ、ヒツジ、フェレット、スナネズミ、モルモット、ハムスター、コウモリ、トリ(例えば、ニワトリ、シチメンチョウ、アヒル)、サカナ、及び爬虫類を治療するためにさらに利用され得る。
本明細書における「がん」は、典型的には、無秩序な細胞増殖を特徴とする哺乳動物の生理学的状態を指すか、または説明する。がんの例には、これらに限定されないが、癌腫、リンパ腫、芽細胞腫、肉腫(脂肪肉腫、骨肉腫、血管肉腫、内皮肉腫、平滑筋肉腫、脊索腫、リンパ管肉腫、リンパ管内皮肉腫、横紋筋肉腫、線維肉腫、粘液肉腫、軟骨肉腫を含む)、神経内分泌腫瘍、中皮腫、滑膜肉腫、神経鞘腫、髄膜腫、腺癌、メラノーマ、及び白血病またはリンパ性悪性腫瘍が含まれる。かかるがんのより詳細な例には、扁平上皮癌(例えば、上皮扁平上皮癌)、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、肺腺癌腫、及び肺扁平上皮癌腫を含む肺癌、小細胞肺癌、腹膜癌、肝細胞癌、消化器癌を含む胃癌(gastric)または胃癌(stomach)、膵臓癌、神経膠芽細胞腫、子宮頸癌、卵巣癌、肝臓癌、膀胱癌、肝細胞腫、乳癌、結腸癌、直腸癌、大腸癌、子宮内膜癌または子宮癌、唾液腺癌、腎臓癌または腎癌、前立腺癌、外陰癌、甲状腺癌、肝癌、肛門癌、陰茎癌、精巣癌、食道癌、胆道腫瘍、ユーイング腫瘍、基底細胞癌腫、腺癌腫、汗腺癌腫、皮脂腺癌腫、乳頭癌腫、乳頭腺癌腫、嚢胞腺癌腫、髄様癌腫、気管支原性癌腫、腎細胞癌腫、肝細胞癌腫、胆管癌腫、絨毛癌腫、セミノーマ、胚性癌腫、ウィルムス腫瘍、精巣腫瘍、肺癌腫、膀胱癌腫、上皮癌腫、神経膠腫、星状細胞腫、髄芽腫、頭蓋咽頭腫、上衣腫、松果体腫瘍、血管芽腫、聴神経腫、乏突起膠腫、髄膜腫、メラノーマ、神経芽細胞腫、網膜芽細胞腫、白血病、リンパ腫、多発性骨髄腫、ワルデンストレームマクログロブリン血症、骨髄異形成症候群、重鎖疾患、神経内分泌腫瘍、神経鞘腫、及び他の癌腫、ならびに頭頸部癌が含まれる。さらに、良性(すなわち、非癌性)の過剰増殖性疾患、良性前立腺肥大症(BPH)、髄膜腫、神経鞘腫、神経線維腫症、ケロイド、筋腫及び子宮筋腫などを含む障害ならびに状態もまた、本明細書に開示される開示を使用して治療され得る。
VI.例示的な自己複製ポリヌクレオチド
当業者は、コードされたウイルスの性質が様々であり、治療される疾患の適応症に依存することを理解するであろう。例えば、いくつかの実施形態では、ポリオウイルスは、特定のがんの治療に使用され得る。ポリオウイルスのゲノムは、単一のポリタンパク質をコードする一本鎖、ポジティブセンス極性RNA分子を含む。5’非翻訳領域(UTR)には、クローバー型及び内部リボソーム侵入部位(IRES)の2つの機能ドメインを保有し、ウイルスタンパク質VPgと共有結合する。3’UTRは、ポリアデニル化される(例えば、図6Aを参照されたい)。いくつかの実施形態では、ポリオウイルスゲノムは、AAV由来のITRによって5’及び3’末端に隣接される(例えば、図6Aを参照されたい)。
いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、ウイルス遺伝子、例えば、必須ウイルス遺伝子と作動可能に連結される。例えば、ポリオウイルスゲノムは、これらに限定されないが、3Dpol、その機能はウイルスRNAゲノムの複数のコピーを作製することであるRNA依存性RNAポリメラーゼ;2Apro及び3Cpro/3CDpro、ウイルスポリペプチドVPg(3B)を切断するプロテアーゼ、ウイルスRNAと結合し、ウイルスのポジティブ及びネガティブ鎖RNAの合成に必要なタンパク質;ウイルス複製に必要なタンパク質複合体を含む2BC、2B、2C(ATPase)、3AB、3A、3Bタンパク質、さらにVP2及びVP4、VP1及びVP3に切断されるVP0、ウイルスカプシドのタンパク質を含む、この目的に好適ないくつかの遺伝子を含む。いくつかの実施形態では、miRNA減衰化ポリオウイルスゲノムは、ポリヌクレオチド複製及び核侵入を助けるために、AAV由来のITR配列によって隣接される(例えば、図6Bを参照されたい)。必要に応じて他の遺伝子を選択することもできる。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、遺伝子座内の位置にmiRNA標的配列を挿入することにより、ウイルス遺伝子、例えば必須ウイルス遺伝子と機能的に連結され、機能的なポリペプチドをコードする遺伝子の能力を維持しながら、miRNA標的配列の転写をもたらす。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、ウイルス遺伝子の5’UTRまたは3’UTRに挿入される。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、miRNA標的配列がインフレームであり、ポリペプチドの2つ以上の機能的タンパク質への翻訳及び翻訳後切断を可能にするように、例えば、2つのポリペプチドのコード配列の間などのオープンリーディングフレームに挿入される。例えば、miRNA標的配列は、2つの2Aペプチド配列と、miRNA標的配列の挿入部位の下流(3’)のポリペプチド配列のリーディングフレームを保存するために必要に応じて追加される追加のヌクレオチドとの間に挿入され得る。
いくつかの実施形態では、野生型ポリオウイルスゲノムは、1つ以上の必須ポリオウイルス遺伝子を減衰するために、四量体miR-124、miR-145、miR-34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを3’UTRに挿入することにより修飾される(図8A)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化ポリオウイルスは、非小細胞肺癌の治療における使用に好適である(図8A)。いくつかの実施形態では、野生型PVゲノムは、四量体miR-122、miR-124、miR-34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須ポリオウイルス遺伝子の3’UTRに挿入することにより修飾される(図8B)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化ポリオウイルスは、肝細胞癌腫の治療における使用に好適である(図8B)。いくつかの実施形態では、野生型ポリオウイルスゲノムは、1つ以上の必須ポリオウイルス遺伝子を減衰するために、四量体miR-124、miR-143、miR-145、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを3’UTRに挿入することにより修飾される(図8C)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化ポリオウイルスは、前立腺癌の治療における使用に好適である(図8C)。
いくつかの実施形態では、VSVは、特定のがんの治療に使用され得る。VSVゲノムは、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)、及びポリメラーゼ(L)の5つの主要なタンパク質をコードする一本鎖、ネガティブセンス極性RNA分子を含む。5つのウイルスコードされたタンパク質の各々に1つのモノシストロン性mRNAが存在する。mRNAはキャップされ、メチル化され、ポリアデニル化される。VSVは細胞質のネガティブセンスRNAウイルスであるため、mRNAの合成及び修飾のための酵素は、ビリオンに封入される(図9A)。いくつかの実施形態では、VSVゲノムは、ポリヌクレオチド複製及び核侵入を助けるために、AAV由来のITR配列によって隣接される(図9A)。
いくつかの実施形態では、野生型VSVゲノムは、VSVゲノムの1つ以上の必須ウイルス遺伝子(例えば、N、P、M、G、またはL遺伝子のうちの1つ以上)の遺伝子座に挿入された1つ以上のmiRNA標的配列を含むmiRNA標的配列カセットの挿入によって修飾される(図9B)。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、遺伝子の5’UTRまたは3’UTRに挿入される。いくつかの実施形態では、野生型VSVゲノムは、減衰するために、四量体miR-122、miR-124、miR-34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを5つのウイルスコード転写物のうち4つ(例えば、N、P、M、G、またはL遺伝子のうちの4つ)の3’UTRに挿入することにより修飾される(図11A)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化VSVは、肝細胞癌腫の治療における使用に好適である(図11A)。いくつかの実施形態では、野生型VSVゲノムは、減衰するために、四量体miR-124、miR-143、miR-145、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを5つのウイルスコード転写物のうち4つ(例えば、N、P、M、G、またはL遺伝子のうちの4つ)の3’UTRに挿入することにより修飾される(図11B)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化VSVは、前立腺癌の治療における使用に好適である(図11B)。いくつかの実施形態では、野生型VSVゲノムは、減衰するために、四量体miR-124、miR-145、miR-34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを5つのウイルスコード転写物のうち4つ(例えば、N、P、M、G、またはL遺伝子のうちの4つ)の3’UTRに挿入することにより修飾される(図11C)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化VSVは、非小細胞肺癌の治療における使用に好適である(図11C)。
いくつかの実施形態では、アデノウイルスは、特定のがんの治療に使用され得る。AAVゲノムは、24~36個のタンパク質コーディング遺伝子をコードする二本鎖DNA分子を含む。E1A、E1B、E2A、E2B、E3、及びE4転写ユニットは、ウイルスの増殖周期の初期に転写される(図12A)。これらの転写ユニット内の遺伝子によってコードされるタンパク質は、主にウイルス転写の制御、ウイルスDNAの複製、及び感染に対する宿主の応答の抑制に関与する。いくつかの実施形態では、アデノウイルスゲノムは、ポリヌクレオチド複製及び核侵入を助けるために、AAV由来のITR配列によって隣接される(図12A)。
いくつかの実施形態では、野生型AAVゲノムは、AAVゲノムの1つ以上の必須ウイルス遺伝子(例えば、E1A、E1B、E2A、E2B、E3、またはE4のうちの1つ以上)に挿入された1つ以上のmiRNA標的配列を含むmiRNA標的配列カセットの挿入によって修飾される(図12B)。いくつかの実施形態では、野生型AAVゲノムは、四量体miR-122、miR-124、miR-34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須遺伝子(例えば、E1A、E1B、E2A、E2B、E3、またはE4のうちの1つ以上)の3’UTRに挿入することにより修飾される(図13A)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化アデノウイルスは、肝細胞癌腫の治療における使用に好適である(図13A)。いくつかの実施形態では、野生型AAVゲノムは、四量体miR-124、miR-143、miR-145、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須遺伝子(例えば、E1A、E1B、E2A、E2B、E3、またはE4のうちの1つ以上)の3’UTRに挿入することにより修飾される(図13B)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化アデノウイルスは、前立腺癌の治療における使用に好適である(図13B)。いくつかの実施形態では、野生型AAVゲノムは、四量体miR-124、miR-145、miR-34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須遺伝子(例えば、E1A、E1B、E2A、E2B、E3、またはE4のうちの1つ以上)の3’UTRに挿入することにより修飾される(図13C)。いくつかの実施形態では、このmiRNA減衰化アデノウイルスは、非小細胞肺癌の治療における使用に好適である(図13C)。
以下の実施例は、本開示の様々な実施形態を説明する目的で与えられており、いかなる方法でも本開示を限定することを意味するものではない。提示の実施例は、本明細書に記載の方法ともに、提示の好ましい実施形態を代表し、例示的であり、開示の範囲を制限することを意図したものではない。特許請求の範囲によって定義される開示の精神に包括されるその中の変更及び他の使用が、当業者に生じるであろう。
実施例1:複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド構築物の操作
本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチド構築物は、標準的な分子生物学及び遺伝学技術を使用して操作ならびに製造した。特定のウイルスをコードする例示的な構築物及びこれらの構築物による治療に対応するがんを、以下の表13、14、及び15に記載した。しかしながら、適切なウイルスは、ウイルスの所望の特徴及び治療されるがんの特徴に基づいて選択することができる。同様に、miRNA標的配列カセット(miR TS)をウイルスゲノム中の1つ以上の位置に挿入して、正常な非がん細胞でコード化ウイルスゲノムの複製を制御しながら、がん性細胞での複製を可能にすることができる。例示的な構築物は、本開示を通して記載した。作製した構成を、以下の表8に要約した。
Figure 2022507269000010
自己複製ポリヌクレオチドの設計後、構築物は、プラスミド骨格への挿入によって、またはアデノ随伴ウイルス(AAV)に由来する末端逆方向反復(ITR)を追加することにより、送達されるように操作した。プロトコル及び方法を、これら2つの特定の種類の送達メカニズム、すなわちプラスミドゲノム構築物及びITR隣接Nanoウイルス(NanoV)構築物の設計のために開発し、以下に記載した。
実施例2:複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド構築物を含むプラスミドの設計及び生産
SVVウイルスDNAをGenscriptで合成し、ポリ(A)、5’ハンマーヘッド型リボザイム、及び3’デルタ型肝炎リボザイムを、融合PCRでギブソンアセンブリを用いてベースベクターに挿入して追加した。このベースベクターは2.4kbの長さであり、最小限の複製起点、及び哺乳類細胞での使用に最適化されたカナマイシン耐性カセットが含まれる(図31A)。発現カセットは、配列番号1として開示した。Coxsackieウイルス(CVA21)について類似のベクターを構築し、図31Bに示した。CVA21発現カセットは、配列番号2として開示した。
実施例3:ITR隣接NanoV構築物の設計及び産生
ITR隣接NanoV構築物の産生について、自己複製ポリヌクレオチド構築物を、テトラサイクリン(Tet)応答性プロモーターの制御下でAAV由来のITRに隣接する発現カセットに挿入した。図17は、モデルNanoV構築物の概略図を示す。テトラサイクリン応答性プロモーターであるTRE-tightは、mCherryの発現を駆動し、これは、代替物として使用され、適切なウイルスゲノム構築物に置き換えることができる(図17にOVとして示した)。テトラサイクリン制御トランス活性化因子(tTA)の発現は、構成的プロモーターによって制御され、図17にUbCPとして示した。このNanoV構築物を、Gatewayクローニングシステム(Thermo Fisher)を使用してHSV-1のUL3/4遺伝子間領域に挿入し、これにより、様々なNanoVカセットを迅速に挿入できる。培養培地にテトラサイクリンを追加すると、TetがtTAと結合し、mCherry構築物の発現が妨げられる。したがって、培養培地からTetを除去すると、誘導可能なmCherry発現が可能になる。さらに、第2の構成的プロモーター(例えば、CMV)の制御下にあるiDimerizeカセット(Takara)を、HSV-1 BAC内のUL50/51遺伝子間遺伝子座に挿入した。iDimerizeカセットは、ヘテロ二量体誘導性Rep78/52発現を制御する2つの異種二量体化ドメイン(DmrA及びDmrC)を含む。A/Cヘテロ二量体AP21967を培養培地に追加すると、iDimerizeカセットが活性化され、Rep78/52発現がもたらされ、ITR隣接NanoV構築物の複製が駆動される。
iDimerizeカセットによるRep78/52発現の制御を実証するために、ベロ細胞を、AP21967の存在下で0.5nm、5nm、50nm、または500nmでiDimerize-Repカセットでトランスフェクトした。Repタンパク質をコードするプラスミド(pCDNA-Rep)を陽性対照として使用した。タンパク質をトランスフェクションの24時間後に細胞から抽出し、α-Repまたはα-アクチン抗体を使用してSDS-PAGE/ウエスタンブロット分析を行った。図18に示すように、50nM以上のヘテロ二量体濃度は、iDimerizeカセットからのRep78/52発現を誘導した一方で、ヘテロ二量体の追加は、pCDNA-Repトランスフェクト細胞のRep発現レベルに影響を与えなかった。
NanoV構築物の産生を実証するために、U2OS細胞を図17に示す組換えHSV-1ベクターに感染させた。感染後3日後、感染細胞を回収し、Miniprep DNA精製キット(Qiagen)を使用してDNAを精製した。このシステムによって産生されると予想されるNanoV単量体及び二量体を図19Aに示す。抽出したDNAを、HSV DNAの遊離末端を露出するために、NheI及びExoIIIで消化したが、NanoV DNAは露出せず、閉鎖末端を有しないDNAを分解した。次に、消化したDNA断片をアガロースゲルで分析し、NanoV単量体及び二量体の存在を確認した。図19Bに示すように、バンドは、単量体及び二量体断片の両方について予想したサイズで現れた(それぞれ、3.7kb及び7.4kb)。DNAを3.7kb及び7.4kbの両方のバンドから抽出し、内部mCherryカセットに特異的な内部を使用したその後のPCR分析を実行した(図19Cの概略図を参照されたい)。図19Dに示すように、これらのPCR反応物は、3.7kb及び7.4kbの両方のバンドから抽出したDNAから1.9kbのアンプリコンを産生し、ITRの内部のポリヌクレオチド配列が複製されたことを示す。
NanoVコンカテマーの方向を決定するために、3.7kb単量体及び7.4kb二量体の両方から抽出したDNAをAflIIで消化し、非還元アガロースゲル電気泳動で分析した。図20Aに示すように、AflIIの予想される切断部位はUbCプロモーターにあり、それにより、単量体において1.2kb及び2.5kbの予想されるサイズを有する切断産物を産生する。コンカテマーからの予想される生成物サイズは、二量体の方向によって異なる(例えば、図20Bに示すように、ヘッドトゥーヘッド、テイルトゥーテイル、またはヘッドトゥーテイル)。図18Bの3.7kbフラグメントから抽出したDNAのAflII切断は、予想した1.2kb及び2.5kb断片を生成した(図20C、白いバーによって示されるバンドの存在)。図19Bの7.4kb断片から抽出したDNAのAflII切断は、コンカンタマーのテイルトゥーテイル方向を示す1.2kb及び5kb、及びコンカンタマーのヘッドトゥーヘッド方向を示す2.5kb及び2.4kbのサイズの断片を生成した。
実施例4:3’及び5’リボザイムを必要とするプラスミドゲノムからの感染性ピコルナウイルスウイルスの産生
哺乳動物のPol IIプロモーターの制御下にあるSVVをコードするポリヌクレオチドを含む、実施例2で生成したプラスミドから感染性SVVウイルスを産生する能力を評価するために実験を実施した。SVV及びCoxsackieウイルスなどのポジティブセンス一本鎖RNAウイルスは、適切に複製するために、ウイルスに天然の別々の5’及び3’末端を必要とし、これらは、哺乳動物の5’及び3’UTRを含む哺乳動物のRNA Pol II転写産物によって産生されない。したがって、感染性+センスssRNAウイルスの産生は、Pol IIコード化SVV転写産物からの非ウイルス性RNAの除去を触媒し、複製可能な感染性SVVの発現を可能にする5’及び3’リボザイム配列を含める必要があった(図22及び23Aの全般的な概略図を参照されたい)。
簡単に説明すると、SVVウイルスゲノムをコードするDNAポリヌクレオチドは、5’及び3’リボザイムをコードする配列の挿入を含む(SVV w/R)及び含まずに(SVV w/o R)生成した(図23A)。これらの構築物を、実施例2に記載したようにDNAプラスミドに挿入した。末端リボザイム配列を含む及び含まないSVVをコードするプラスミドが、感染性ウイルスを産生する能力を試験するために、293T細胞を1x10細胞/ウェルで6ウェルプレートに播種した。播種の24時間後、293T細胞に1μgの上記のSVVプラスミド構築物をLipofectamine 3000で4時間トランスフェクトし、その時点で完全培地を各ウェルに追加した。トランスフェクトした293Tからの上清を72時間後に収集し、0.45μMフィルターでシリンジ濾過し、H1299細胞に対して段階的に希釈した(図23Bのプロトコル概略図を参照されたい)。48時間後、上清をH1299培養物から除去し、細胞をクリスタルバイオレットで染色してウイルス感染力を評価した。図24に示すように、活性溶解SVVは、クリスタルバイオレット染色における不透明度の減少によって示される、末端リボザイムを含む構築物からのみ産生された。したがって、これらのデータは、本明細書に記載のポリヌクレオチドへのリボザイムをコードする配列の組み込みが、感染性SVVウイルスの産生に必要であることを示す。
実施例5:インビトロでペイロードタンパク質を発現することができるSVVをコードするポリヌクレオチドを含むDNAプラスミド
SVVをコードするポリヌクレオチドに組み込まれたペイロードをコードする配列からペイロードタンパク質を発現する、実施例2に記載のSVVプラスミドの能力を評価するために実験を実施した。mCherryレポーター、ナノルシフェラーゼタンパク質、及びCXCL10の3つのペイロードを試験した。末端リボザイム配列を含むSVVをコードするプラスミドはmCherryタンパク質を発現することができたが、末端リボザイム配列を含まないSVVをコードするプラスミドは発現しなかった(図25A)。さらに、SVVをコードするプラスミドは、ナノルシフェラーゼを発現することができた(図25B)。なおさらに、SVVをコードするプラスミドは、CXCL10を発現することができた(図25C)。これらのデータは、感染性SVVの産生に加えて、これらのプラスミド構築物が、蛍光タンパク質(mCherryで例示した)、酵素タンパク質(ナノルシフェラーゼで例示した)、組換えケモカイン(CXCL10で例示した)を含む、複数の異なる種類のペイロードタンパク質を発現できることを示す。
実施例6:SVVをコードする自己複製ポリヌクレオチドのmiRNA減衰
実施例2に記載のSVVをコードするポリヌクレオチドがmiRNA減衰できるかを決定するために実験を実施した。miR-1及びmiR-122標的配列を含むmiRNA標的カセット(miR-T)は、図26に示すように、内在性ウイルス2A及び合成T2A配列の間にSVVウイルスポリタンパク質を含んでインフレームに挿入した(図16も参照されたい)。miR-1標的配列は、筋細胞におけるウイルス複製を制御すると予想され、miR-122標的配列は、肝臓細胞におけるウイルス複製を制御すると予想される。miRNA減衰化SVV及びWT(対照)SVVウイルスは、実施例4に記載されるように、SVVをコードするプラスミドでトランスフェクトした293T細胞の上清からウイルスを単離することによって産生した。このウイルスは、miR-1及びmiR-122模倣物を発現する許容H1299細胞に感染するために使用した。48時間後、感染細胞の上清を回収し、細胞をクリスタルバイオレットで染色した。SVV-miRT複製はSVV WTと同等であり、miRNA減衰はクリスタルバイオレット染色で見られるように有効であった(図26B)。WT SVVと比較したSVV miR-T構築物のmiRNA減衰は、Cell Titer Gloアッセイを用いたH446細胞に対する感染H1299細胞の上清のウイルス力価を評価することによって決定した。以下の表9の左の列に示すように、陰性対照模倣物、miR-1、及びmiR-122のTCID50/mLは同等であるため、同族のmiRNAは、WTウイルスの事例においてウイルス複製に影響を与えなかった。しかしながら、SVV miR-T(右の列)のIC50は、miR-1またはmiR-122発現細胞のいずれかがSVV miR-T構築物に感染した場合、感染力価の複数の対数減少が観察されたため、標的細胞にmiR-1またはmiR-122模倣体をトランスフェクトした場合、SVV WTウイルス(左の列)と比較して大幅に低減した。これらのデータは、本明細書に記載の自己複製ポリヌクレオチドから産生されたウイルスが、複数の組織特異的miRNAの挿入によって減衰化され得ることを示す。
Figure 2022507269000011
実施例7:インビトロで感染性ウイルスを産生するSVVをコードするポリヌクレオチドを含むプラスミド
H1299異種移植モデルを使用して、インビトロで感染性ウイルスを産生するSVVをコードするポリヌクレオチドを含むプラスミドの能力を決定するための実験を実施した。簡単に説明すると、5x10個のH1299細胞を、8週齢の雌の胸腺欠損ヌードマウス(Charles River Laboratories)の右側腹部に皮下接種した。腫瘍体積がおよそ100mmの体積に達したときに、マウスを無作為に2つの実験群に割り当て、以下に記載するように治療した。
図22に例示したSVVをコードするリボザイム対応発現カセット(SVV w/R)及び非リボザイム対応(SVV w/o R)カセットを含むプラスミドを、Lipofectamine 3000を用いて製剤化した。簡単に説明すると、14μgの各構築物をLipofectamine 3000と1:1の比率で調整し、ボルテックスし、次に注入前に10分間インキュベートした。14μg/用量でのプラスミドDNAの2用量を、接種後18日目及び20日目に腫瘍内投与した。腫瘍体積を、電子ノギスを使用して週に3回測定した。20、22、及び23日目に、腫瘍を感染性ウイルスの評価のために採取した。
図27Aに示すように、リボザイム対応のSVVをコードするプラスミドで治療したマウスは、非リボザイム対応のSVVをコードするプラスミドで治療したマウスと比較して、腫瘍成長の有意な阻害を示した。各群から採取した腫瘍からウイルスを単離し、H1299細胞に滴定し、ウイルス溶解をクリスタルバイオレット染色によって評価した。図27Bに示すように、SVV w/Rプラスミドで治療したマウスに由来する腫瘍からの単離株は、活性な溶解性ウイルスを含み、SVV w/o R群(左パネル、図27B)から単離したウイルスと比較してクリスタルバイオレット染色(右パネル、図27B)における減少した不透明度を示した。これらのデータは、SVVをコードするリボザイム対応ポリヌクレオチドを含むプラスミドが、インビボで感染性の溶解性ウイルスを産生し、腫瘍内に送達されると腫瘍の増殖を阻害することを示す。
実施例8:インビボでペイロードを発現するSVVをコードするポリヌクレオチドを含むプラスミド
インビボで投与した場合に様々なペイロードを発現するSVVをコードするポリヌクレオチドを含むプラスミドの能力を評価するための追加の実験を実施した。リボザイム対応プラスミドDNA構築物を製剤化し、実施例7に記載したようにH1299異種移植モデルに腫瘍内注入した。SVVをコードするポリヌクレオチド配列に加えて、ナンルシフェラーゼ(図28A)またはCXCL10(図28B)をコードする配列をプラスミド挿入物に組み込んだ。2日目(ナンルシフェラーゼ)または6日目(CXCL10)に腫瘍を採取し、それぞれのペイロードタンパク質の発現を評価した。図28A~図28Bに示すように、ルシフェラーゼをコードするポリヌクレオチドを含むSVVプラスミド、またはCXCL10をコードするポリヌクレオチドを含むSVVプラスミドの腫瘍内投与は、単離した腫瘍において各ペイロードの検出をもたらした(図28Aは増強した発光を示し、図28BはCXCL10の上昇したレベルを示す)。これらのデータは、感染性ウイルスの産生に加えて、SVVをコードするプラスミドがインビボで外因性の酵素及びサイトカインのペイロードを発現できることを示す。
実施例9:SVVをコードするプラスミドの静脈内送達のための脂質ナノ粒子の製剤
SVVをコードするプラスミドを、プラスミドの静脈内送達のために脂質ナノ粒子に製剤化した。
脂質ナノ粒子の産生:以下の脂質を脂質ナノ粒子の製剤において使用した:
(a)N-[1-(2,3-ジオレオイルオキシ)プロピル]-N,N,N-トリメチルアンモニウム(DOTAP);
(b)コレステロール;
(c)1,2-ジラウロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DLPE);
(d)1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-N-[アミノ(ポリエチレングリコール)(PEG-DSPEアミン)
(e)1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-(ポリエチレングリコール)(PEG-DSPE)。
製剤:脂質をエタノール中で50:35:15の比率(DOTAP:コレステロール:DLPE)で調製した。いくつかの事例では、脂質ナノ粒子を0.2%PEG-DSPEまたはPEG-DSPEアミンでさらに製剤化した。粒子は、マイクロ流体マイクロ混合物(Precision NanoSystems,Vancouver,BC)を使用して、2 mL/分の合計流量で調製した(エタノール、脂質混合物の場合は0.5 mL/分、水性緩衝液、プラスミドDNAの場合は1.5mL/分)。得られた粒子を、Ca及びMgを含むPBSを用いたタンジェント流濾過(TFF)によって洗浄した。
HA複合手順:高分子量ヒアルロナン(HA)(700 KDa(Lifecore Biomedical))を0.2M MES緩衝液(pH 5.5)に溶解し、最終濃度を5mg/mLとした。HA混合物を、1:1:6のモル比率(HA:EDC:スルホ-NHS)で1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩(EDC)及びN-ヒドロキシスルホスクシンイミド(スルホ-NHS)で活性化した。活性化の30分後、脂質粒子を追加し、pHを7.4に調整した。溶液を室温で2時間インキュベートした。各カプセル化製剤について得られたパラメーターを以下の表10に示した。
Figure 2022507269000012
粒子製剤の物理的特性の分析:表10に記載した得られた粒子製剤の各々について、粒子サイズ分布及びゼータ電位の測定値を、Malvern Nano-ZS Zetasizer(Malvern Instruments Ltd,Worcestershire,UK)を使用した光散乱によって決定した。サイズ測定をpH7.4のHBSで実行し、ゼータ電位測定をpH7.4の0.01M HBSで実施した。製剤の特性は、HA複合の前ならびにTFFの前及び後に評価した。これらの評価の結果を以下の表11に示した。
Figure 2022507269000013
結果:プラスミドDNAを細胞に正常に送達し、感染性ウイルスを産生する各製剤の能力を評価するために、H1299細胞に各製剤をトランスフェクトした。Lipofectamineを用いて製剤化したプラスミドDNAを陽性対照として使用し、Lipofectamineのみを陰性対照として使用した。トランスフェクションの3日後、上清を回収し、H466細胞への上清の滴定及びCell Titer Glo生存アッセイにより、SVV TCID50/mLを計算した。
Figure 2022507269000014
表12に示すように、プラスミドDNAの脂質粒子製剤は、プラスミドDNAを細胞に送達することができ、様々な製剤のTCID50/mL値が感染性ウイルスの産生を示しているため、感染性ウイルスの産生をもたらした。
実施例10:腫瘍部位への送達及び腫瘍成長の阻害をもたらすプラスミドDNAの静脈内注入
SVVをコードするプラスミドDNAの脂質粒子製剤を全身投与した場合に、pDNAを腫瘍に送達できるかを決定するための実験を実施した。実施例9及び表10に記載の製剤52021-4Dを選択し、粒子を、約95%の活性DNA回収及び脂質カプシド形成効率を有するPBS中で製剤化した。腫瘍体積がおよそ150mmの体積に達したときに、100μL(およそ27μgのDNA)のLNPを静脈内投与した。PBSをビヒクル対照として使用した。LNPまたはビヒクル対照の2回の追加用量を1日おきに合計3用量静脈内投与した。最終用量の48時間後にマウスを犠牲にし、腫瘍組織を収集した。図29に示すように、SVVプラスミドDNAをLNPで処理したマウスから採取した腫瘍で検出した。したがって、LNPは、プラスミドDNAを腫瘍部位に送達することができる。
肺癌異種移植モデル:SVVをコードするプラスミドDNAの脂質粒子製剤が、実施例7に記載のH1299異種移植モデルにおいて静脈内投与した場合に、腫瘍成長に影響を及ぼし得るかを決定するための追加の実験を実施した。標的部分であるヒアルロン酸が存在し、インビトロで機能するため、実施例9及び表10に記載の脂質ナノ粒子(LNP)製剤52021-2Dをさらなる分析のために選択し、粒子を、約95%の活性DNA回収及び脂質カプシド形成効率を有するPBSで製剤化した。腫瘍体積がおよそ150mmの体積に達したときに、100μL(およそ27μgのDNA)のLNPを静脈内投与した。PBSをビヒクル対照として使用した。LNPまたはビヒクル対照の3回の追加用量を1日おきに合計4用量静脈内投与した。腫瘍体積を、電子ノギスを使用して少なくとも週に2回測定した。
図30に示すように、LNPで製剤化されたプラスミドDNAの静脈内送達は、PBS対照で観察した成長と比較して、経時的な腫瘍成長を有意に阻害した(図30、****p<0.0001、ボンフェローニ補正を用いた2元配置分散分析)。これらの結果は、感染性ウイルスをコードするプラスミドDNAを非ウイルス性ビヒクルで静脈内送達することができ、インビボで腫瘍成長を有意に阻害できることを示す。
肝細胞癌腫異種移植モデル:同様の実験を実施して、肝細胞癌腫のネズミ異種移植モデルにおける静脈内LNP送達の有効性を評価する。簡単に説明すると、マウスに3x10個のHepG2細胞を接種し、上記のように製剤化したLNPを静脈内投与した。腫瘍成長を経時的に測定し、さらなる分析のために実験の最後に腫瘍を採取した。これらの実験は、肝細胞癌腫のモデルにおいて腫瘍成長を阻害する腫瘍溶解性ウイルスをコードするLNPカプセル化構築物の静脈内での能力を実証することを期待する。追加の実験を実施して、H446異種移植モデル及びN1E-115同系神経芽細胞腫モデルを使用した小細胞肺癌のネズミモデルにおける静脈内LNP送達の有効性を評価することができる。
実施例11:ウイルスゲノムをコードするLNPカプセル化自己複製ポリヌクレオチドを用いたがんに罹患する患者の治療
実験を実施して、がんに罹患する患者を治療するための本明細書に記載の自己複製ウイルスゲノムの能力を評価することができる。かかる実験では、ウイルスゲノムをコードする自己複製ポリヌクレオチドは、実施例1に概して記載したように操作される。
これらの自己複製ポリヌクレオチドは、プラスミド骨格に組み込むためにさらに操作することができる。代替的に、自己複製ポリヌクレオチドの大規模なインビトロ増殖のために、AAV-ITR配列を組み込んでウイルスゲノム全体に隣接させて、ポリヌクレオチド複製及び核侵入を助けるためのNanoV構築物を生成することができる。ITR隣接ゲノム全体が、組換えHSVゲノム骨格の遺伝子間遺伝子座(図4B、図7B)に挿入されるか、または代替的にICP4遺伝子座に挿入される(図5B、図10B、ICP4補完細胞株に転じて提供されるICP4)。AAV rep遺伝子をICP0に挿入し、ITR隣接ウイルスゲノムDNAの効率的な複製を可能にする(実施例3を参照されたい)。
プラスミドゲノムまたはNanoVゲノムを、標準的な分子生物学技術を使用して培養物から精製し(例えば、マキシプレップ)、次いで凍結乾燥したヒアルロナン(HA)表面修飾脂質ナノ粒子(LNP)にカプセル化した(実施例9を参照されたい)。非カプセル化ウイルスゲノムDNAを超遠心分離によって除去し、ナノ粒子カプセル化ウイルスゲノムをqPCRによって定量化した。がんに罹患する患者へのインビボ投与のために、LNPを、薬学的に許容される安定剤と共にリン酸緩衝液(PBS)で調製した。患者は、静脈内注入を介して、10mL容量の薬学的に許容される担体中の1010ベクターゲノムで1日目に治療した。患者は、がんの存在について標準的な管理手順を使用してモニタリングした。これらの実験の潜在的な結果には、標準治療と比較した腫瘍成長の部分的または完全な阻害、腫瘍転移の阻害、延長した寛解期間、及び/または低減した再発率が含まれる。
実施例12:ウイルスゲノムをコードするLNPカプセル化自己複製ポリヌクレオチドを用いた肺癌に罹患する患者の治療
実施例11に従って実験を実施して、非小細胞肺癌(NSCLC)に罹患する患者または小細胞肺癌(SCLC)に罹患する患者を治療するための本明細書に記載の自己複製ウイルスゲノムの能力を評価することができる。LNPにカプセル化され、NSCLC及びSCLCの治療に使用することができる例示的な自己複製ポリヌクレオチドを、以下の表13に概説した。
Figure 2022507269000015
実施例13:肝細胞癌腫に罹患する患者の治療。
実施例11に従って実験を実施して、肝細胞癌腫に罹患する患者を治療するための本明細書に記載の自己複製ウイルスゲノムの能力を評価することができる。LNPにカプセル化され、肝細胞癌腫の治療に使用することができる例示的な自己複製ポリヌクレオチドを、以下の表14に概説した。
Figure 2022507269000016
実施例14:前立腺癌に罹患する患者の治療。
実施例11に従って実験を実施して、前立腺癌に罹患する患者を治療するための本明細書に記載の自己複製ウイルスゲノムの能力を評価することができる。LNPにカプセル化され、前立腺癌の治療に使用することができる例示的な自己複製ポリヌクレオチドを、以下の表15に概説した。
Figure 2022507269000017
実施例15:3’リボザイム及び5’siRNA標的配列を有するプラスミドゲノムからの感染性ピコルナウイルスウイルスの産生
哺乳動物のPol IIプロモーターの制御下にあり、3’リボザイム配列及び5’siRNA標的配列を有し、ウイルスゲノムの天然3’及び5’末端を生成するSVVをコードするポリヌクレオチドを含む、プラスミドから感染性SVVウイルスを産生する能力を評価するために実験を実施した。(図33の全般的な概略図を参照されたい)。
簡単に説明すると、SVVウイルスゲノムをコードするDNAポリヌクレオチドは、5’及び3’リボザイム(SVV WT-R、実施例2及び4に記載される)ならびに3’リボザイム及び5’siRNA標的配列(5p siRNA)を用いて生成した。これらの構築物を、実施例2に記載したようにDNAプラスミドに挿入した。対称末端(3’及び5’リボザイム)及び非対称末端(3’リボザイム及び5’siRNA標的配列)を有するこれらのSVVをコードするプラスミドが、感染性ウイルスを産生する能力を試験するために、293T細胞を1x10細胞/ウェルで6ウェルプレートに播種した。播種の24時間後、293T細胞に1μgの上記のSVVプラスミド構築物をLipofectamine 3000で4時間トランスフェクトし、その時点で完全培地を各ウェルに追加した。トランスフェクトした293Tからの上清を72時間後に収集し、0.45μMフィルターでシリンジ濾過し、H1299細胞に対して段階的に希釈した(図23Bのプロトコル概略図を参照されたい)。48時間後、上清をH1299培養物から除去し、細胞をクリスタルバイオレットで染色してウイルス感染力を評価した。図33に示すように、クリスタルバイオレット染色における不透明度の減少によって示される、非対称末端を含む構築物からの活性溶解SVVの産生の増加を観察した。同様の構築物を、5’末端に人工miRNA/siRNA標的配列を使用して作製した。
実施例16:3’及び5’AmiR標的配列を有するプラスミドゲノムからの感染性ピコルナウイルスウイルスの産生
哺乳動物のPol IIプロモーターの制御下にあり、5’amiRNA標的配列を有し、ウイルスゲノムの5’末端及び3’HDVリボザイムを生成するSVVをコードするポリヌクレオチドを含む、プラスミドから感染性SVVウイルスを産生する能力を評価するために実験を実施した。
簡単に説明すると、SVVウイルスゲノムをコードするDNAポリヌクレオチドは、5’及び3’リボザイム(WT-R、実施例2及び4に記載される)ならびに5’及び3’AmiR標的配列(5p3p Ami)を用いて生成した。これらの構築物を、実施例2に記載したようにDNAプラスミドに挿入した。これらのSVVをコードするプラスミドが、感染性ウイルスを産生する能力を試験するために、293T細胞を1x10細胞/ウェルで6ウェルプレートに播種した。播種の24時間後、293T細胞に1μgの上記のSVVプラスミド構築物をLipofectamine 3000で4時間トランスフェクトし、その時点で完全培地を各ウェルに追加した。トランスフェクトした293Tからの上清を72時間後に収集し、0.45μMフィルターでシリンジ濾過し、H1299細胞に対して段階的に希釈した(図23Bのプロトコル概略図を参照されたい)。48時間後、上清をH1299培養物から除去し、細胞をクリスタルバイオレットで染色してウイルス感染力を評価した。
以下の表16に示すように、5’及び3’リボザイムで観察した産生と比較して、5’amiRNA標的配列を含む構築物からの活性溶解性SVVの産生の増加を観察した。
Figure 2022507269000018
実施例17:腫瘍成長の増強した阻害をもたらすプラスミドAmiR-SVV DNAの腫瘍内注入
図35に記載の5’AmiR標的配列及び3’リボザイムを含むSVVをコードするプラスミドDNAの脂質粒子製剤を、H446異種移植モデルで腫瘍内投与した場合に、腫瘍成長に影響を与えるかを決定するために追加の実験を実施した。5’及び3’リボザイム配列を含むSVVをコードするプラスミドDNAをさらに投与し、PBSをビヒクル対照として使用した。pDNA構築物を図27に記載されるようにLipofectamine 3000を用いて製剤化した。腫瘍体積がおよそ150mmの体積に達したときに、25μL(1μgのDNA)のLNP-pDNAを1日目及び4日目に腫瘍内投与した。腫瘍体積を、電子ノギスを使用して少なくとも週に2回測定した。図36Aに示すように、ami-SVVプラスミドは、リボザイム構築物(SVV-WT)及び陰性対照(PBS)と比較して、腫瘍成長の増加した阻害を示した。同様の結果をH1299異種移植モデルで示した(図36B)。
実施例18:SVVをコードするプラスミドの静脈内送達のための脂質ナノ粒子の製剤
SVV-陰性、SVV-WT、及びAmi-SVVをコードするプラスミドを、静脈内送達のために脂質ナノ粒子に製剤化した。
脂質ナノ粒子の産生:以下の脂質を脂質ナノ粒子の製剤において使用した:
(a)D-Lin-MC3-DMA(MC3);
(b)コレステロール;
(c)1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(DSPC);
(d)1,2-ジミリストイル-rac-グリセロ-3-メトキシポリエチレングリコール-2000(DMG-PEG2000)。
製剤:脂質をエタノール中で49:38.5:11:1.5の比率(MC3:コレステロール:DSPC:DMG-PEG2000)で調製した。粒子は、マイクロ流体マイクロ混合物(Precision NanoSystems,Vancouver,BC)を使用して、2 mL/分の合計流量で調製した(エタノール、脂質混合物の場合は0.5 mL/分、水性緩衝液、プラスミドDNAの場合は1.5mL/分)。得られた粒子を、Ca及びMgを含むPBSに対して4℃で18時間分離した。
粒子製剤の物理的特性の分析:得られた粒子製剤の各々について、粒子サイズ分布及びゼータ電位の測定値を、Malvern Nano-ZS Zetasizer(Malvern Instruments Ltd,Worcestershire,UK)を使用した光散乱によって決定した。サイズ測定をpH7.4のHBSで実行し、ゼータ電位測定をpH7.4の0.01M HBSで実施した。製剤の特性は、分離の前及び後に評価した。これらの評価の結果を以下の表17に示した。
Figure 2022507269000019
腫瘍部位への送達及び腫瘍成長の阻害をもたらすプラスミドDNAの静脈内注入:SVVをコードするプラスミドDNA(SVV-陰性、SVV-wt、またはAmi-SVV)の脂質粒子製剤を全身投与した場合に、pDNAを腫瘍に送達できるかを決定するための実験を実施した。表17に記載の製剤70009を、約95%の活性DNA回収及び脂質カプシド形成効率を有するPBS中で製剤化した。H1299腫瘍体積がおよそ125mmの体積に達したときに、100μL(およそ15μgのDNA)のLNPを静脈内投与した。PBSをビヒクル対照として使用した。LNPまたはビヒクル対照の3回の追加用量を6日ごとに合計4用量静脈内投与した。腫瘍体積を最大30日目まで測定した。腫瘍成長阻害をSVV-wt-LNP-70009-1Cで治療したマウス(SVV-陰性(70009-2C)と比較したTGI%57、p=0.0059、二元配置分散分析、Turkey検定)及びAmi-SVV-LNP-70009-3C(SVV-陰性(70009-2C)と比較したTGI%57、p=0.0056、二元配置分散分析、Turkey検定)で治療したマウスで観察した。SVV-陰性-LNP-70009-3Cで治療したマウスは、PBS対照群と比較して腫瘍成長を改変せず、観察した有効性がSVV活性構築物の産物であることを示す(SVV-wt及びAmi-SVV)。
さらに付番した実施形態
本開示のさらに付番した実施形態は以下の通りである:
実施形態1.脂質ナノ粒子(LNP)であって、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子を含み、ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物のRNAポリメラーゼII(Pol II)と結合できるプロモーター配列と作動可能に連結され、3’接合部切断配列及び5’接合部切断配列と隣接し、3’及び5’接合部切断配列が、異なる種類であり、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドが、非ウイルスの起源である、脂質ナノ粒子(LNP)。
実施形態2.3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態1に記載のLNP。
実施形態3.3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、5’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列である、実施形態2に記載のLNP。
実施形態4.3’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列であり、5’接合部切断配列が、リボザイム配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態1に記載のLNP。
実施形態5.3’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、リボザイム配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態1に記載のLNP。
実施形態6.3’接合部切断配列が、ガイドRNA(gRNA)標的配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、リボザイム配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態1に記載のLNP。
実施形態7.3’接合部切断配列が、pri-miR配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、リボザイム配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態1に記載のLNP。
実施形態8.3’接合部切断配列が、アプタザイム配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びリボザイム配列から選択される、実施形態1に記載のLNP。
実施形態9.複製可能なウイルスゲノムが、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである、実施形態1~8のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態10.一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスが、ポジティブセンス((+)センス)またはネガティブセンス((-)センス)ssRNAウイルスである、実施形態9に記載のLNP。
実施形態11.複製可能なウイルスゲノムが、(+)センスssRNAウイルスであり、(+)センスssRNAウイルスが、ピコルナウイルスである、実施形態10に記載のLNP。
実施形態12.ピコルナウイルスが、Seneca Valleyウイルス(SVV)またはCoxsackieウイルスである、実施形態11に記載のLNP。
実施形態13.LNPを細胞と接触させると、細胞によるウイルス粒子の産生がもたらされ、ウイルス粒子が、感染性及び溶解性である、実施形態1~12のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態14.組換えDNA分子が、外因性ペイロードタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む、実施形態1~13のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態15.LNPが、外因性ペイロードタンパク質をコードする第2のポリヌクレオチド配列をさらに含む、実施形態1~13のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態16.外因性ペイロードタンパク質が、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、細胞表面受容体のリガンド、または細胞表面受容体と結合することができる抗原結合分子である、実施形態14または15に記載のLNP。
実施形態17.サイトカインが、Flt3リガンド、及びIL-18、IL-18γ、及びIL-2から選択される、実施形態16に記載のLNP。
実施形態17A.細胞表面受容体のリガンドが、Flt3リガンドである、実施形態16に記載のLNP。
実施形態18.ケモカインが、CCL21、CCL5、CXCL10、及びCCL4から選択される、実施形態16に記載のLNP。
実施形態19.抗原結合分子が、免疫チェックポイント受容体と結合して阻害することができる、実施形態16に記載のLNP。
実施形態20.免疫チェックポイント受容体が、PD1である、実施形態19に記載のLNP。
実施形態21.抗原結合分子が、DLL3、EpCam、及びCEAから選択される腫瘍関連抗原と結合することができる、実施形態16に記載のLNP。
実施形態21A.抗原結合分子が、腫瘍抗原に特異的な第1のドメイン及びT細胞表面分子に特異的な第2のドメインを含む、二重特異性T細胞会合分子である、実施形態16~21のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態21B.T細胞表面分子が、CD3である、実施形態21Aに記載のLNP。
実施形態22.マイクロRNA(miRNA)標的配列(miR-TS)カセットが、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列に挿入され、miR-TSカセットが、1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞内の対応するmiRNAのうちの1つ以上の発現が、細胞内の複製可能なウイルスゲノムの複製を阻害する、実施形態1~21のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態23.1つ以上のmiRNAが、miR-124、miR-1、miR-143、miR-128、miR-219、miR-219a、miR-122、miR-204、miR-217、miR-137、及びmiR-126から選択される、実施形態22に記載のLNP。
実施形態24.miR-TSカセットが、miR-124標的配列の1つ以上のコピー、miR-1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-143標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態23に記載のLNP。
実施形態25.miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-122標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態23に記載のLNP。
実施形態26.miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-219標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態23に記載のLNP。
実施形態27.miR-TSカセットが、miR-217標的配列の1つ以上のコピー、miR-137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-126標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態23に記載のLNP。
実施形態28.組換えDNA分子が、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含むプラスミドである、実施形態1~27のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態29.LNPが、カチオン性脂質、コレステロール、及び中性脂質を含む、実施形態1~28のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態30.カチオン性脂質が、1,2-ジオレオイル-3-トリメチルアンモニウム-プロパン(DOTAP)であり、中性脂質が、1,2-ジラウロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DLPE)または1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DOPE)である、実施形態29に記載のLNP。
実施形態31.リン脂質-ポリマー複合体をさらに含み、リン脂質-ポリマー複合体が、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-ポリ(エチレングリコール)(DSPE-PEG)または1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-N-[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE-PEG-アミン)である、実施形態29または30に記載のLNP。
実施形態31A.カチオン性脂質が、D-Lin-MC3-DMA(MC3)であり、中性脂質が、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(DSPC)である、実施形態29に記載のLNP。
実施形態31B.1,2-ジミリストイル-rac-グリセロ-3-メトキシポリエチレングリコール(DMG-PEG)のリン脂質-ポリマー複合体をさらに含む、実施形態31Aに記載のLNP。
実施形態32.ヒアルロナンが、LNPの表面と複合される、実施形態1~31Bのいずれか1つに記載のLNP。
実施形態32A.RGDペプチドが、LNPの表面と複合される、実施形態1~31Bのいずれか1つに記載のLNP。
実施形態33.実施形態1~32のいずれか1つに記載の複数の脂質ナノ粒子を含み、複数のLNPが、約150nm~約500nmの平均サイズを有する、治療用組成物。
実施形態34.複数のLNPが、約50nm~約200nm、約100nm~約200nm、約150nm~約200nm、約50nm~約150nm、約100nm~約150nm、約200nm~約500nm、約300nm~約500nm、約350nm~約500nm、約400nm~約500nm、約425nm~約500nm、約450nm~約500nm、または約475nm~約500nmの平均サイズを有する、実施形態33に記載の治療用組成物。
実施形態35.複数のLNPが、約-20mV未満、約-30mV未満、約35mV未満、または約-40mV未満の平均ゼータ電位を有する、実施形態33または34に記載の治療用組成物。
実施形態36.複数のLNPが、約-50mV~約-20mV、約-40mV~約-20mV、または約-30mV~約-20mVの間の平均ゼータ電位を有する、実施形態35に記載の治療用組成物。
実施形態37.複数のLNPが、約-30mV、約-31mV、約-32mV、約-33mV、約-34mV、約-35mV、約-36mV、約-37mV、約-38mV、約-39mV、または約-40mVの平均ゼータ電位を有する、実施形態35または36に記載の治療用組成物。
実施形態38.治療用組成物を対象に投与すると、組換えDNAポリヌクレオチドが対象の標的細胞に送達され、組換えDNAポリヌクレオチドが、対象の標的細胞を溶解することができる感染性ウイルスを産生する、実施形態33~37のいずれか1つに記載の治療用組成物。
実施形態39.組成物が、静脈内または腫瘍内に送達される、実施形態38に記載の治療用組成物。
実施形態40.標的細胞が、がん性細胞である、実施形態38に記載の治療用組成物。
実施形態41.がん性腫瘍の成長を阻害する方法であって、それを必要とする対象において、実施形態33~40のいずれか1つに記載の治療用組成物をそれを必要とする対象に投与することを含み、組成物の投与が、腫瘍の成長を阻害する、方法。
実施形態42.投与が、腫瘍内または静脈内である、実施形態41に記載の方法。
実施形態43.がんが、肺癌または肝臓癌である、実施形態41または42に記載の方法。
実施形態44.組換えDNA分子であって、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物のRNAポリメラーゼII(Pol II)と結合できるプロモーター配列と作動可能に連結され、3’接合部切断配列及び5’接合部切断配列と隣接し、3’及び5’接合部切断配列が、異なる種類であり、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドが、非ウイルスの起源である、組換えDNA分子。
実施形態45.3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態44に記載の組換えDNA分子。
実施形態46.3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、5’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列である、実施形態45に記載の組換えDNA分子。
実施形態47.3’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列であり、5’接合部切断配列が、リボザイム配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態44に記載の組換えDNA分子。
実施形態48.3’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、リボザイム配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態44に記載の組換えDNA分子。
実施形態49.3’接合部切断配列が、ガイドRNA(gRNA)標的配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、リボザイム配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態44に記載の組換えDNA分子。
実施形態50.3’接合部切断配列が、pri-miR配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、リボザイム配列、及びアプタザイム配列から選択される、実施形態44に記載の組換えDNA分子。
実施形態51.3’接合部切断配列が、アプタザイム配列であり、5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びリボザイム配列から選択される、実施形態44に記載の組換えDNA分子。
実施形態52.コードされたウイルスが、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである、実施形態44~51のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態53.ssRNAウイルスが、ポジティブセンス((+)センス)またはネガティブセンス((-)センス)ssRNAウイルスである、実施形態52に記載の組換えDNA分子。
実施形態54.(+)センスssRNAウイルスが、ピコルナウイルスである、実施形態53に記載の組換えDNA分子。
実施形態55.ピコルナウイルスが、Seneca Valleyウイルス(SVV)またはCoxsackieウイルスである、実施形態54に記載の組換えDNA分子。
実施形態56.組換えDNA分子が、非ウイルス送達ビヒクルによって細胞に導入されると、感染性の溶解性ウイルスを産生することができる、実施形態44~55のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態57.組換えDNA分子が、外因性ペイロードタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む、実施形態44~56のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態58.外因性ペイロードタンパク質が、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、または細胞表面受容体と結合することができる抗原結合分子である、実施形態57に記載の組換えDNA分子。
実施形態59.サイトカインが、Flt3リガンド、IL-18、IL-18γ、及びIL-2である、実施形態58に記載の組換えDNA分子。
実施形態60.ケモカインが、CCL21、CCL5、CXCL10、及びCCL4から選択される、実施形態58に記載の組換えDNA分子。
実施形態61.抗原結合分子が、免疫チェックポイント受容体と結合して阻害することができる、実施形態58に記載の組換えDNA分子。
実施形態62.免疫チェックポイント受容体が、PD1である、実施形態62に記載の組換えDNA分子。
実施形態63.抗原結合分子が、DLL3、EpCam、及びCEAから選択される腫瘍関連抗原と結合することができる、実施形態58に記載の組換えDNA分子。
実施形態63A.抗原結合分子が、腫瘍抗原に特異的な第1のドメイン及びT細胞表面分子に特異的な第2のドメインを含む、二重特異性T細胞会合分子である、実施形態58または請求項63に記載の組換えDNA分子。
実施形態63B.T細胞表面分子が、CD3である、実施形態63Aに記載の組換えDNA分子。
実施形態64.マイクロRNA(miRNA)標的配列(miR-TS)カセットが、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列に挿入され、miR-TSカセットが、1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞内の対応するmiRNAのうちの1つ以上の発現が、細胞内のコードされたウイルスの複製を阻害する、実施形態44~63のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態65.1つ以上のmiRNAが、miR-124、miR-1、miR-143、miR-128、miR-219、miR-219a、miR-122、miR-204、miR-217、miR-137、及びmiR-126から選択される、実施形態64に記載の組換えDNA分子。
実施形態66.miR-TSカセットが、miR-124標的配列の1つ以上のコピー、miR-1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-143標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態64に記載の組換えDNA分子。
実施形態67.miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-122標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態64に記載の組換えDNA分子。
実施形態68.miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-219標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態64に記載の組換えDNA分子。
実施形態69.miR-TSカセットが、miR-217標的配列の1つ以上のコピー、miR-137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-126標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態64に記載の組換えDNA分子。
実施形態70.組換えDNA分子が、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含むプラスミドまたはNanoVである、実施形態44~69のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態71.組換えDNA分子であって、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含み、複製可能なウイルスをコードするポリヌクレオチド配列が、非ウイルスの起源であり、組換えDNA分子が、非ウイルス送達ビヒクルによって細胞に導入されると、複製可能なウイルスを産生することができる、組換えDNA分子。
実施形態72.複製可能なウイルスゲノムが、DNAウイルスのゲノムまたはRNAウイルスのゲノムである、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態73.DNAゲノムまたはRNAゲノムが、二本鎖または一本鎖ウイルスである、実施形態5672の組換えDNA分子。
実施形態74.一本鎖ゲノムが、ポジティブセンス((+)センス)またはネガティブセンス((-)センス)ゲノムである、実施形態73に記載の組換えDNA分子。
実施形態75.細胞が、哺乳動物細胞である、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態76.細胞が、哺乳動物対象に存在する哺乳動物細胞である、実施形態75に記載の組換えDNA分子。
実施形態77.複製可能なウイルスが、アデノウイルス、Coxsackieウイルス、ポリオウイルス、Seneca Valleyウイルス、ウマヘルペスウイルス、単純ヘルペスウイルス1型(HSV-1)、lassaウイルス、マウス白血病ウイルス、A型インフルエンザウイルス、B型インフルエンザウイルス、ニューカッスル病ウイルス、麻疹ウイルス、パルボウイルス、レオウイルス、Sindbisウイルス、ワクシニアウイルス、粘液腫ウイルス、水疱性口炎ウイルス(VSV)、marabaウイルス、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態78.複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドに挿入される1つ以上のマイクロRNA(miRNA)標的配列(miR-TS)カセットをさらに含み、miR-TSカセットが、1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞内の対応するmiRNAのうちの1つ以上の発現が、細胞内のコードされたウイルスの複製を阻害する、実施形態71~77のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態79.1つ以上のmiR-TSカセットが、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTRに組み込まれる、実施形態78に記載の組換えDNA分子。
実施形態80.1つ以上の必須ウイルス遺伝子が、UL1、UL5、UL6、UL7、UL8、UL9、UL11、UL12、UL14、UL15、UL17、UL18、UL19、UL20、UL22、UL25、UL26、UL26.5、UL27、UL28、UL29、UL30、UL31、UL32、UL33、UL34、UL35、UL36、UL37、UL38、UL39、UL40、UL42、UL48、UL49、UL50、UL52、UL53、UL54、US1、US3、US4、US5、US6、US7、US8、US12、ICP0、ICP4、ICP22、ICP27、ICP47、PB、F、B5R、SERO-1、Cap、Rev、VP1-4、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)、ポリメラーゼ(L)、E1、E2、E3、E3、VP1、VP2、VP3、VP4、2A、2B、2C、3A、3B、3C、及び3Dからなる群から選択される、実施形態79に記載の組換えDNA分子。
実施形態81.1つ以上のmiR-TSカセットが、1つ以上の非必須ウイルス遺伝子の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTRに組み込まれる、実施形態78に記載の組換えDNA分子。
実施形態82.ポリヌクレオチドが、レプリコン、プラスミド、コスミド、ファージミド、トランスポゾン、細菌人工染色体、酵母人工染色体、または末端閉鎖線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス(Ov)DNA分子から選択される核酸ベクターに挿入される、実施形態71~81のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態83.ポリヌクレオチドが、DNAポリヌクレオチドであり、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列の5’末端での第1のAAV由来の逆位末端配列(ITR)、及び複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列の3’末端での第2のAAV由来のITRをさらに含む、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態84.ポリヌクレオチドが、DNAポリヌクレオチドであり、複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列の3’側すぐの第1のリボザイムコード配列、及び複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列の5’側すぐの第2のリボザイムコード配列をさらに含む、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態85.配列をコードする第1及び第2のリボザイムが、ハンマーヘッド型リボザイムまたはデルタ肝炎ウイルスリボザイムをコードする、実施形態84に記載の組換えDNA分子。
実施形態86.プロモーター配列が、真核生物のRNAポリメラーゼと結合することができる、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態87.プロモーター配列が、哺乳動物のRNAポリメラーゼと結合することができる、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態88.ポリヌクレオチドがDNAポリヌクレオチドであり、哺乳動物ポリメラーゼが、感染性の複製可能なRNAウイルスの転写を駆動する、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態89.ポリヌクレオチドがDNAポリヌクレオチドであり、哺乳動物ポリメラーゼが、感染性の複製可能なDNAウイルスの転写を駆動する、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態90.プロモーター配列が、がん細胞においてポリヌクレオチドの転写を選択的に駆動する、実施形態71に記載の組換えDNA分子。
実施形態91.プロモーター配列が、hTERT、HE4、CEA、OC、ARF、CgA、GRP78、CXCR4、HMGB2、INSM1、メソセリン、OPN、RAD51、TETP、H19、uPAR、ERBB2、MUC1、Frz1、またはIGF2-P4からなる群から選択される遺伝子に由来する、実施形態71~90のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態92.細胞傷害性ポリペプチド、サイトカイン、ケモカイン、抗原結合分子、細胞表面受容体のリガンド、可溶性受容体、酵素、サソリポリペプチド、ヘビポリペプチド、クモポリペプチド、ハチポリペプチド、カエルポリペプチド、及び治療用核酸からなる群から選択されるペイロード分子をコードする核酸配列をさらに含む、実施形態71~91のいずれかに記載の組換えDNA分子。
実施形態93.1つ以上のmiR-TSカセットが、ペイロード分子をコードする核酸配列の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTR配列に組み込まれる、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態94.細胞傷害性ポリペプチドが、p53、ジフテリア毒素(DT)、Pseudomonas体外毒素A(PEA)、I型リボソーム不活性化タンパク質(RIP)、II型RIP、または志賀様毒素1(Slt1)から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態95.酵素が、メタロプロテイナーゼ、コラゲナーゼ、エラスターゼ、ヒアルロニダーゼ、カスパーゼ、ゼラチナーゼ、または単純ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼ、シトシンデアミナーゼ、ニトロレダクターゼ、カルボキシペプチダーゼG2、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ、またはチトクロームP450から選択される遺伝子指向性酵素プロドラッグ療法(GDEPT)システムの一部である酵素から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態96.ゼラチナーゼが、線維芽細胞活性化タンパク質(FAP)である、実施形態95に記載の組換えDNA分子。
実施形態97.メタロプロテイナーゼが、マトリックスメタロプロテイナーゼ(例えば、MMP9)またはADAM17である、実施形態95に記載の組換えDNA分子。
実施形態98.サイトカインが、オステオポンチン、IL-13、TGFβ、IL-35、IL-18、IL-15、IL-2、IL-12、IFNα、IFNβ、IFNγからなる群から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態99.ケモカインが、CXCL10、CCL4、CCL5、CXCL9、及びCCL21から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態100.細胞表面受容体のリガンドが、NKG2Dリガンド、ニューロピリンリガンド、Flt3リガンド、またはCD47リガンドである、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態101.抗原結合分子が、PD-1、PDL-1、CTLA4、CCR4、OX40、CD200R、CD47、CSF1R、EphA2、CD19、EpCAM、CEA、PSMA、CD33、EGFR、CD200、CD40、HER2、DLL3、4-1BB、17-1A、GD2、及び表7に列挙される腫瘍抗原のうちのいずれか1つ以上からなる群から選択される細胞表面抗原と結合する、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態102.サソリポリペプチドが、クロロトキシン、BmKn-2、ネオプラジン1、ネオプラジン2、及びマウリポリン(mauriporin)からなる群から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態103.ヘビポリペプチドが、コントルトロスタチン、アポキシンI、ボトロプストキシンI、BJcuL、OHAP-1、ロドストミン(rhodostomin)、drCT-I、CTX-III、B1L、及びACTX-6からなる群から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態104.クモポリペプチドが、ラタルシン及びヒアルロニダーゼからなる群から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態105.ハチポリペプチドが、メリチン及びアパミンからなる群から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態106.カエルポリペプチドが、PsT-1、PdT-1、及びPdT-2からなる群から選択される、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態107.ペイロードタンパク質が、免疫細胞に対して作用する、請求項92~106のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態108.免疫細胞が、T細胞、B細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞、NKT細胞、マクロファージ、及び/または樹状細胞からなる群から選択される、実施形態107に記載の組換えDNA分子。
実施形態109.ペイロードポリペプチドが、ヒト細胞表面抗原と結合することができる第1ドメインと、ヒト腫瘍細胞抗原と結合することができる第2ドメインと、を含む二分ポリペプチドである、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態110.二分ポリペプチドの一方または両方のドメインが、抗体、一本鎖可変断片(scFv)、F(ab)、免疫グロブリン重鎖可変ドメイン、ダイアボディ、フレキシボディ、DOCK-AND-LOCK(商標)抗体、及びモノクローナル抗イディオタイプ抗体(mAb2)からなる群から選択される抗原結合分子である、実施形態109に記載の組換えDNA分子。
実施形態111.二分ポリペプチドが、二重可変ドメイン抗体(DVD-Ig(商標))、二重特異性T細胞会合(BiTE(商標))、DuoBody(登録商標)、二重親和性再標的化(DART)ポリペプチド、またはTandab(登録商標)である、実施形態110に記載の組換えDNA分子。
実施形態112.抗体が、操作されたFcドメインを有するIgG抗体である、実施形態110に記載の組換えDNA分子。
実施形態113.治療用核酸が、アンタゴミル、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、リボザイム、またはアプタマーである、実施形態92に記載の組換えDNA分子。
実施形態114.ポリヌクレオチドが、miR-TSカセットに含まれるmiRNA標的配列と結合するmiRNAを発現する細胞で複製されないか、または最小限に複製される、実施形態72~113のいずれかに記載の組換えDNA分子。
実施形態115.miRNAが、表3から選択される、実施形態114に記載の組換えDNA分子。
実施形態116.1つ以上のmiRNAが、miR-124、miR-1、miR-143、miR-128、miR-219、miR-219a、miR-122、miR-204、miR-217、miR-137、及びmiR-126から選択される、実施形態114に記載の組換えDNA分子。
実施形態117.miR-TSカセットが、miR-124標的配列の1つ以上のコピー、miR-1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-143標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態116に記載の組換えDNA分子。
実施形態118.miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-122標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態116に記載の組換えDNA分子。
実施形態119.miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-219標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態116に記載の組換えDNA分子。
実施形態120.miR-TSカセットが、miR-217標的配列の1つ以上のコピー、miR-137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-126標的配列の1つ以上のコピーを含む、実施形態116に記載の組換えDNA分子。
実施形態121.組換えDNA分子が、自己複製ポリヌクレオチドを含むプラスミドである、実施形態71~120のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態122.組換えDNA分子であって、(i)ウイルスゲノムのセンス配列を含む第1の一本鎖DNA(ssDNA)分子と、(ii)ウイルスゲノムのアンチセンス配列を含む第2のssDNA分子と、を含み、第1及び第2のssDNA分子の各々が、3’逆位末端配列及び5’逆位末端配列を含み、センスssDNA分子の3’末端が、アンチセンスssDNA分子の5’末端と共有結合され、センスssDNA分子の5’末端が、アンチセンスssDNA分子の3’末端と共有結合されて、末端閉鎖線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス(Ov)DNA分子を形成する、組換えDNA分子。
実施形態123.コードされたウイルスが、ネガティブセンスまたはポジティブセンス一本鎖(ss)RNAウイルスである、実施形態122に記載の組換えDNA分子。
実施形態124.ポジティブセンスssRNAウイルスが、ポリオウイルス(PV)である、実施形態123に記載の組換えDNA分子。
実施形態125.ネガティブセンスssRNAウイルスが、水疱性口炎ウイルス(VSV)ゲノムである、実施形態123に記載の組換えDNA分子。
実施形態126.第1及び第2のssDNA分子の各々が、ウイルスゲノム配列の5’側すぐのリボザイムをコードする配列、及びウイルスゲノム配列の3’側すぐのリボザイムをコードする配列をさらに含む、実施形態122に記載の組換えDNA分子。
実施形態127.ウイルスゲノムが、1つ以上の必須ウイルス遺伝子に挿入された1つ以上のマイクロRNA(miRNA)標的配列を含む、実施形態122~126のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態128.1つ以上のmiRNA標的配列が、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の3’非翻訳領域(UTR)及び/または5’UTRに挿入される、実施形態127に記載の組換えDNA分子。
実施形態129.1つ以上のmiRNA標的配列が、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、またはそれ以上の必須ウイルス遺伝子に挿入される、実施形態127または128に記載の組換えDNA分子。
実施形態130.少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つのmiRNA標的配列が、1つ以上の必須ウイルス遺伝子に挿入される、請求項127~129のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態131.少なくとも2つ、少なくとも3つ、または少なくとも4つのmiRNA標的配列が、1つのmiRNAの標的配列を含む、実施形態130に記載の組換えDNA分子。
実施形態132.少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つのmiRNA標的配列が、少なくとも2つ、少なくとも3つ、または少なくとも4つの異なるmiRNAの標的配列を含む、実施形態130に記載の組換えDNA分子。
実施形態133.ウイルスゲノムが、VSVゲノムであり、1つ以上のmiRNA標的配列が、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)、及び/またはポリメラーゼ(L)タンパク質をコードする遺伝子のうちの1つ以上に挿入される、実施形態122に記載の組換えDNA分子。
実施形態134.ウイルスゲノムが、PVゲノムであり、1つ以上のmiRNA標的配列が、VP1、VP2、VP3、VP4、2A、2B、2C、3A、3B(VPg)、3C、または3Dタンパク質をコードする遺伝子のうちの1つ以上に挿入される、実施形態122に記載の組換えDNA分子。
実施形態135.3’及び5’ITRが、AAVに由来する、実施形態122~134のいずれか1つに記載の組換えDNA分子。
実施形態136.AAVが、AAV2である、実施形態135に記載の組換えDNA分子。
実施形態137.有効量の実施形態44~136のいずれか1つに記載の組換えDNA分子、及び哺乳動物対象への投与に好適な担体を含む、組成物。
実施形態138.実施形態44~136のいずれか1つに記載の組換えDNA分子を含む、粒子。
実施形態139.粒子が、生分解性である、実施形態138に記載の粒子。
実施形態140.粒子が、ナノ粒子、エクソソーム、リポソーム、及びリポプレックスからなる群から選択される、実施形態139に記載の粒子。
実施形態141.エクソソームが、無傷のエクソソームまたは空のエクソソームに由来する修飾されたエクソソームである、実施形態140に記載の粒子。
実施形態142.ナノ粒子が、カチオン性脂質、コレステロール、及び中性脂質を含む、脂質ナノ粒子(LNP)である、実施形態140に記載の粒子。
実施形態143.カチオン性脂質が、1,2-ジオレオイル-3-トリメチルアンモニウム-プロパン(DOTAP)であり、中性脂質が、1,2-ジラウロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DLPE)または1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DOPE)である、実施形態142に記載のLNP。
実施形態144.リン脂質-ポリマー複合体をさらに含み、リン脂質-ポリマー複合体が、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-ポリ(エチレングリコール)(DSPE-PEG)または1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-N-[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE-PEG-アミン)である、実施形態142または143に記載のLNP。
実施形態145.ヒアルロナンが、LNPの表面と複合される、実施形態142~144のいずれか1つに記載のLNP。
実施形態146.実施形態142~145のいずれか1つに記載の複数の脂質ナノ粒子を含み、複数のLNPが、約150nm~約500nmの平均サイズを有する、治療用組成物。
実施形態147.複数のLNPの平均粒径が、約200nm~約500nm、約300nm~約500nm、約350nm~約500nm、約400nm~約500nm、約425nm~約500nm、約450nm~約500nm、または約475nm~約500nmである、実施形態146に記載の治療用組成物。
実施形態148.複数のLNPが、約-20mV未満、約-30mV未満、約35mV未満、または約-40mV未満の平均ゼータ電位を有する、実施形態146または147に記載の治療用組成物。
実施形態149.複数のLNPが、約-50mV~約-20mV、約-40mV~約-20mV、または約-30mV~約-20mVの間の平均ゼータ電位を有する、実施形態148に記載の治療用組成物。
実施形態150.複数のLNPが、約-30mV、約-31mV、約-32mV、約-33mV、約-34mV、約-35mV、約-36mV、約-37mV、約-38mV、約-39mV、または約-40mVの平均ゼータ電位を有する、実施形態147または148に記載の治療用組成物。
実施形態151.対象への組成物の送達が、カプセル化DNA発現カセットを標的細胞に送達し、カプセル化DNA発現カセットが、標的細胞を溶解することができる感染性ウイルスを産生する、実施形態146~150のいずれか1つに記載の治療組成物。
実施形態152.組成物が、静脈内または腫瘍内に送達される、実施形態151に記載の治療用組成物。
実施形態153.標的細胞が、がん性細胞である、実施形態152に記載の治療用組成物。
実施形態154.実施形態44~136のいずれか1つに記載のポリヌクレオチドを含む、無機粒子。
実施形態155.無機粒子が、金ナノ粒子(GNP)、金ナノロッド(GNR)、磁性ナノ粒子(MNP)、磁性ナノチューブ(MNT)、カーボンナノホーン(CNH)、カーボンフラーレン、カーボンナノチューブ(CNT)、リン酸カルシウムナノ粒子(CPNP)、メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)、シリカナノチューブ(SNT)、または星状中空シリカナノ粒子(SHSN)からなる群から選択される、実施形態154に記載の粒子。
実施形態156.実施形態154または155に記載の粒子を含み、粒子の平均直径が、約500nm未満である、約250nm~約500nmである、または約350nmである、組成物。
実施形態157.がん性細胞を殺傷する方法であって、がん性細胞を、実施形態137~156のいずれか1つに記載の粒子もしくは組成物、またはその組成物に、粒子を該がん性細胞に細胞内送達するのに十分な条件下で曝露することを含み、カプセル化ポリヌクレオチドによって産生される複製可能ウイルスが、がん性細胞の殺傷をもたらす、方法。
実施形態158.複製可能なウイルスが、非がん性細胞で産生されない、実施形態157に記載の方法。
実施形態159.方法が、インビボ、インビトロ、またはエクスビボで実施される、実施形態157または158に記載の方法。
実施形態160.対象におけるがんを治療する方法であって、がんに罹患している対象に有効量の実施形態137~156のいずれか1つに記載の粒子もしくは組成物、またはその組成物を投与することを含む、方法。
実施形態161.粒子またはその組成物が、静脈内、鼻腔内、吸入剤として投与されるか、または腫瘍に直接的に注入される、実施形態160に記載の方法。
実施形態162.粒子またはその組成物が、対象に繰り返し投与される、実施形態160または161に記載の方法。
実施形態163.対象が、マウス、ラット、ウサギ、ネコ、イヌ、ウマ、非ヒト霊長類、またはヒトである、実施形態160~162のいずれかに記載の方法。
実施形態164.がんが、肺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌、前立腺癌、精巣癌、大腸癌、結腸癌、膵臓癌、肝臓癌、胃癌、頭頸部癌、甲状腺癌、悪性神経膠腫、神経膠芽腫、メラノーマ、B細胞慢性リンパ球性白血病、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、及び辺縁帯リンパ腫(MZL)から選択される、実施形態160~163のいずれかに記載の方法。
実施形態165.肺癌が、小細胞肺癌または非小細胞肺癌である、実施形態164に記載の方法。
実施形態166.肝臓癌が、肝細胞癌腫(HCC)である、実施形態164に記載の方法。
実施形態167.先行する実施形態のいずれかに記載の組換えDNA分子を製造する方法であって、a.組換えDNA分子を第1のウイルス発現ベクターに挿入することであって、組換えDNA分子が、ポリヌクレオチドの5’アデノ随伴ウイルス(AAV)由来の逆位末端配列(ITR)及び3’AAV由来のITR末端を含む、挿入することと、b.ITRを媒介した複製に必要とされるAAVタンパク質をコードするポリヌクレオチドを第2のウイルス発現ベクターに挿入することと、c.第1及び第2のウイルス発現ベクターを細胞に細胞内送達することと、を含み、組換えDNA分子が、ゲノムに安定的に組み込まれ、細胞が、ITRの非存在下で産生されるよりも多い量のITR隣接ポリヌクレオチドを産生する、方法。
実施形態168.ウイルス発現ベクターが、ヘルペスウイルスまたはバキュロウイルスである、実施形態167に記載の方法。
参照による組み込み
本明細書で引用されるすべての参考文献、論文、刊行物、特許、特許公開、及び特許出願は、すべての目的のためにその全体が参照により組み込まれる。しかしながら、本明細書で引用された任意の参考文献、論文、刊行物、特許、特許公開、及び特許出願の言及は、それらが有効な先行技術を構成するか、または世界の任意の国における一般的知識の一部を形成するという認識、または示唆の任意の形態ではなく、そのように受け取られるべきではない。
本開示の好適な実施形態が本明細書に示され記載されたが、そのような実施形態は、ほんの一例として提供されることが当業者に自明であろう。当業者は、多数の変化形、変更、及び置換を本開示から逸脱することなく想定するであろう。本明細書に記載される本開示の実施形態に対する種々の代替手段が、本開示の実施において採用され得ることを理解されたい。以下の特許請求の範囲が本開示の範囲を定義し、これらの特許請求の範囲に含まれる方法及び構造、ならびにそれらの等価物が、それにより包含されることが意図される。
Figure 2022507269000020
Figure 2022507269000021
Figure 2022507269000022
Figure 2022507269000023
Figure 2022507269000024
Figure 2022507269000025
Figure 2022507269000026
Figure 2022507269000027
Figure 2022507269000028
Figure 2022507269000029
Figure 2022507269000030
Figure 2022507269000031
Figure 2022507269000032
Figure 2022507269000033
Figure 2022507269000034
Figure 2022507269000035
Figure 2022507269000036
Figure 2022507269000037
Figure 2022507269000038
Figure 2022507269000039
Figure 2022507269000040
Figure 2022507269000041
Figure 2022507269000042
Figure 2022507269000043
Figure 2022507269000044
Figure 2022507269000045
Figure 2022507269000046
Figure 2022507269000047
Figure 2022507269000048
Figure 2022507269000049
Figure 2022507269000050
Figure 2022507269000051
Figure 2022507269000052
Figure 2022507269000053

Claims (79)

  1. 脂質ナノ粒子(LNP)であって、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子を含み、前記ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物のRNAポリメラーゼII(Pol II)と結合できるプロモーター配列と作動可能に連結され、3’接合部切断配列及び5’接合部切断配列と隣接し、前記3’接合部切断配列及び前記5’接合部切断配列が、異なる種類であり、前記複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドが、非ウイルスの起源である、前記脂質ナノ粒子(LNP)。
  2. 前記3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項1に記載のLNP。
  3. 前記3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、前記5’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列である、請求項2に記載のLNP。
  4. 前記3’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列であり、前記5’接合部切断配列が、リボザイム配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項1に記載のLNP。
  5. 前記3’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、リボザイム配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項1に記載のLNP。
  6. 前記3’接合部切断配列が、ガイドRNA(gRNA)標的配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、リボザイム配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項1に記載のLNP。
  7. 前記3’接合部切断配列が、pri-miR配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、リボザイム配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項1に記載のLNP。
  8. 前記3’接合部切断配列が、アプタザイム配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びリボザイム配列から選択される、請求項1に記載のLNP。
  9. 前記複製可能なウイルスゲノムが、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである、請求項1~8のいずれか1項に記載のLNP。
  10. 前記一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスが、ポジティブセンス((+)センス)またはネガティブセンス((-)センス)ssRNAウイルスである、請求項9に記載のLNP。
  11. 前記複製可能なウイルスゲノムが、(+)センスssRNAウイルスであり、前記(+)センスssRNAウイルスが、ピコルナウイルスである、請求項10に記載のLNP。
  12. 前記ピコルナウイルスが、Seneca Valleyウイルス(SVV)またはCoxsackieウイルスである、請求項11に記載のLNP。
  13. 前記LNPを細胞と接触させると、前記細胞によるウイルス粒子の産生がもたらされ、前記ウイルス粒子が、感染性及び溶解性である、請求項1~12のいずれか1項に記載のLNP。
  14. 前記組換えDNA分子が、外因性ペイロードタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む、請求項1~13のいずれか1項に記載のLNP。
  15. 前記LNPが、外因性ペイロードタンパク質をコードする第2のポリヌクレオチド配列をさらに含む、請求項1~13のいずれか1項に記載のLNP。
  16. 前記外因性ペイロードタンパク質が、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、細胞表面受容体のリガンド、または細胞表面受容体と結合することができる抗原結合分子である、請求項14または15に記載のLNP。
  17. 前記サイトカインが、IL-18、IL-36γ、LIGHT、及びIL-2から選択される、請求項16に記載のLNP。
  18. 前記細胞表面受容体のリガンドが、Flt3リガンドである、請求項16に記載のLNP。
  19. 前記ケモカインが、CCL21、CCL5、CXCL10、及びCCL4から選択される、請求項16に記載のLNP。
  20. 前記抗原結合分子が、免疫チェックポイント受容体と結合して阻害することができる、請求項16に記載のLNP。
  21. 前記免疫チェックポイント受容体が、PD1である、請求項20に記載のLNP。
  22. 前記抗原結合分子が、DLL3、EpCam、及びCEAから選択される腫瘍関連抗原と結合することができる、請求項16に記載のLNP。
  23. 前記抗原結合分子が、腫瘍抗原に特異的な第1のドメイン及びT細胞表面分子に特異的な第2のドメインを含む、二重特異性T細胞会合分子である、請求項16~22のいずれか1項に記載のLNP。
  24. 前記T細胞表面分子が、CD3である、請求項23に記載のLNP。
  25. マイクロRNA(miRNA)標的配列(miR-TS)カセットが、前記複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列に挿入され、前記miR-TSカセットが、1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞内の対応するmiRNAのうちの1つ以上の発現が、前記細胞内の前記複製可能なウイルスゲノムの複製を阻害する、請求項1~22のいずれか1項に記載のLNP。
  26. 前記1つ以上のmiRNAが、miR-124、miR-1、miR-143、miR-128、miR-219、miR-219a、miR-122、miR-204、miR-217、miR-137、及びmiR-126から選択される、請求項25に記載のLNP。
  27. 前記miR-TSカセットが、miR-124標的配列の1つ以上のコピー、miR-1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-143標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項26に記載のLNP。
  28. 前記miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-122標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項26に記載のLNP。
  29. 前記miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-219標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項26に記載のLNP。
  30. 前記miR-TSカセットが、miR-217標的配列の1つ以上のコピー、miR-137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-126標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項26に記載のLNP。
  31. 前記組換えDNA分子が、複製可能なウイルスゲノムをコードする前記ポリヌクレオチド配列を含むプラスミドである、請求項1~30のいずれか1項に記載のLNP。
  32. 前記LNPが、カチオン性脂質、コレステロール、及び中性脂質を含む、請求項1~31のいずれか1項に記載のLNP。
  33. 前記カチオン性脂質が、1,2-ジオレオイル-3-トリメチルアンモニウム-プロパン(DOTAP)であり、前記中性脂質が、1,2-ジラウロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DLPE)または1,2-ジオレオイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン(DOPE)である、請求項32に記載のLNP。
  34. リン脂質-ポリマー複合体をさらに含み、前記リン脂質-ポリマー複合体が、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-ポリ(エチレングリコール)(DSPE-PEG)または1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホエタノールアミン-N-[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE-PEG-アミン)である、請求項32または33に記載のLNP。
  35. 前記カチオン性脂質が、D-Lin-MC3-DMA(MC3)であり、前記中性脂質が、1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスホコリン(DSPC)である、請求項32に記載のLNP。
  36. 1,2-ジミリストイル-rac-グリセロ-3-メトキシポリエチレングリコール(DMG-PEG)のリン脂質-ポリマー複合体をさらに含む、請求項34に記載のLNP。
  37. ヒアルロナンが、前記LNPの表面と複合される、請求項1~36のいずれか1項に記載のLNP。
  38. RGDペプチドが、前記LNPの表面と複合される、請求項1~36のいずれか1項に記載のLNP。
  39. 請求項1~37のいずれか1項に記載の複数の脂質ナノ粒子を含み、前記複数のLNPが、約50nm~約500nmの平均サイズを有する、治療用組成物。
  40. 前記複数のLNPが、約50nm~約200nm、約100nm~約200nm、約150nm~約200nm、約50nm~約150nm、約100nm~約150nm、約200nm~約500nm、約300nm~約500nm、約350nm~約500nm、約400nm~約500nm、約425nm~約500nm、約450nm~約500nm、または約475nm~約500nmの平均サイズを有する、請求項39に記載の治療用組成物。
  41. 前記複数のLNPが、約-20mV未満、約-30mV未満、約35mV未満、または約-40mV未満の平均ゼータ電位を有する、請求項39または40に記載の治療用組成物。
  42. 前記複数のLNPが、約-50mV~約-20mV、約-40mV~約-20mV、または約-30mV~約-20mVの間の平均ゼータ電位を有する、請求項41に記載の治療用組成物。
  43. 前記複数のLNPが、約-30mV、約-31mV、約-32mV、約-33mV、約-34mV、約-35mV、約-36mV、約-37mV、約-38mV、約-39mV、または約-40mVの平均ゼータ電位を有する、請求項41または42に記載の治療用組成物。
  44. 前記治療用組成物を対象に投与すると、組換えDNAポリヌクレオチドが前記対象の標的細胞に送達され、前記組換えDNAポリヌクレオチドが、前記対象の前記標的細胞を溶解することができる感染性ウイルスを産生する、請求項39~43のいずれか1項に記載の治療用組成物。
  45. 前記組成物が、静脈内または腫瘍内に送達される、請求項44に記載の治療用組成物。
  46. 前記標的細胞が、がん性細胞である、請求項44に記載の治療用組成物。
  47. がん性腫瘍の成長を阻害する方法であって、それを必要とする対象において、請求項39~46のいずれか1項に記載の治療用組成物を前記それを必要とする対象に投与することを含み、前記組成物の投与が、前記腫瘍の成長を阻害する、前記方法。
  48. 前記投与が、腫瘍内または静脈内である、請求項47に記載の方法。
  49. 前記がんが、肺癌または肝臓癌である、請求項47または48に記載の方法。
  50. 組換えDNA分子であって、複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含み、前記ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物のRNAポリメラーゼII(Pol II)と結合できるプロモーター配列と作動可能に連結され、3’接合部切断配列及び5’接合部切断配列と隣接し、前記3’接合部切断配列及び前記5’接合部切断配列が、異なる種類であり、前記複製可能なウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドが、非ウイルスの起源である、前記組換えDNA分子。
  51. 前記3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項50に記載の組換えDNA分子。
  52. 前記3’接合部切断配列が、リボザイム配列であり、前記5’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列である、請求項51に記載の組換えDNA分子。
  53. 前記3’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列であり、前記5’接合部切断配列が、リボザイム配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項50に記載の組換えDNA分子。
  54. 前記3’接合部切断配列が、人工miR(AmiR)標的配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、リボザイム配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項50に記載の組換えDNA分子。
  55. 前記3’接合部切断配列が、ガイドRNA(gRNA)標的配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、リボザイム配列、pri-miR配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項50に記載の組換えDNA分子。
  56. 前記3’接合部切断配列が、pri-miR配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、リボザイム配列、及びアプタザイム配列から選択される、請求項50に記載の組換えDNA分子。
  57. 前記3’接合部切断配列が、アプタザイム配列であり、前記5’接合部切断配列が、マイクロRNA(miR)標的配列、人工miR(AmiR)標的配列、ガイドRNA(gRNA)標的配列、pri-miR配列、及びリボザイム配列から選択される、請求項50に記載の組換えDNA分子。
  58. 前記コードされたウイルスが、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである、請求項50~57のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  59. 前記ssRNAウイルスが、ポジティブセンス((+)センス)またはネガティブセンス((-)センス)ssRNAウイルスである、請求項58に記載の組換えDNA分子。
  60. 前記(+)センスssRNAウイルスが、ピコルナウイルスである、請求項59に記載の組換えDNA分子。
  61. 前記ピコルナウイルスが、Seneca Valleyウイルス(SVV)またはCoxsackieウイルスである、請求項60に記載の組換えDNA分子。
  62. 前記組換えDNA分子が、非ウイルス送達ビヒクルによって細胞に導入されると、感染性の溶解性ウイルスを産生することができる、請求項50~61のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  63. 前記組換えDNA分子が、外因性ペイロードタンパク質をコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む、請求項50~62のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  64. 前記外因性ペイロードタンパク質が、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、細胞表面受容体のリガンド、または細胞表面受容体と結合することができる抗原結合分子である、請求項63に記載の組換えDNA分子。
  65. 前記サイトカインが、IL-18、IL-36γ、LIGHT、及びIL-2である、請求項64に記載の組換えDNA分子。
  66. 前記細胞表面受容体のリガンドが、Flt3リガンドである、請求項64に記載の組換えDNA分子。
  67. 前記ケモカインが、CCL21、CCL5、CXCL10、及びCCL4から選択される、請求項64に記載の組換えDNA分子。
  68. 前記抗原結合分子が、免疫チェックポイント受容体と結合して阻害することができる、請求項64に記載の組換えDNA分子。
  69. 前記免疫チェックポイント受容体が、PD1である、請求項68に記載の組換えDNA分子。
  70. 前記抗原結合分子が、DLL3、EpCam、及びCEAから選択される腫瘍関連抗原と結合することができる、請求項64に記載の組換えDNA分子。
  71. 前記抗原結合分子が、腫瘍抗原に特異的な第1のドメイン及びT細胞表面分子に特異的な第2のドメインを含む、二重特異性T細胞会合分子である、請求項64または請求項70に記載の組換えDNA分子。
  72. 前記T細胞表面分子が、CD3である、請求項71に記載の組換えDNA分子。
  73. マイクロRNA(miRNA)標的配列(miR-TS)カセットが、前記複製可能なウイルスゲノムをコードする核酸配列に挿入され、前記miR-TSカセットが、1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞内の対応するmiRNAのうちの1つ以上の発現が、前記細胞内の前記コードされたウイルスの複製を阻害する、請求項50~72のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  74. 前記1つ以上のmiRNAが、miR-124、miR-1、miR-143、miR-128、miR-219、miR-219a、miR-122、miR-204、miR-217、miR-137、及びmiR-126から選択される、請求項73に記載の組換えDNA分子。
  75. 前記miR-TSカセットが、miR-124標的配列の1つ以上のコピー、miR-1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-143標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項73に記載の組換えDNA分子。
  76. 前記miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-122標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項73に記載の組換えDNA分子。
  77. 前記miR-TSカセットが、miR-128標的配列の1つ以上のコピー、miR-204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-219標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項73に記載の組換えDNA分子。
  78. 前記miR-TSカセットが、miR-217標的配列の1つ以上のコピー、miR-137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR-126標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項73に記載の組換えDNA分子。
  79. 前記組換えDNA分子が、複製可能なウイルスゲノムをコードする前記ポリヌクレオチド配列を含むプラスミドまたはNanoVである、請求項50~78のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
JP2021525757A 2018-11-13 2019-11-13 カプセル化ポリヌクレオチド及び使用方法 Pending JP2022507269A (ja)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201862760422P 2018-11-13 2018-11-13
US62/760,422 2018-11-13
PCT/US2019/061093 WO2020102285A1 (en) 2018-11-13 2019-11-13 Encapsulated polynucleotides and methods of use

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2022507269A true JP2022507269A (ja) 2022-01-18
JPWO2020102285A5 JPWO2020102285A5 (ja) 2022-11-07

Family

ID=70731661

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2021525757A Pending JP2022507269A (ja) 2018-11-13 2019-11-13 カプセル化ポリヌクレオチド及び使用方法

Country Status (12)

Country Link
US (1) US20210403950A1 (ja)
EP (1) EP3880812A4 (ja)
JP (1) JP2022507269A (ja)
KR (1) KR20210093285A (ja)
CN (1) CN113348246A (ja)
AU (1) AU2019381698A1 (ja)
BR (1) BR112021009226A2 (ja)
CA (1) CA3117924A1 (ja)
IL (1) IL282992A (ja)
MX (1) MX2021005448A (ja)
SG (1) SG11202104887UA (ja)
WO (1) WO2020102285A1 (ja)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US11130787B2 (en) * 2020-06-11 2021-09-28 MBF Therapeutics, Inc. Alphaherpesvirus glycoprotein d-encoding nucleic acid constructs and methods
MX2023009345A (es) * 2021-02-10 2023-10-24 Oncorus Inc Compuestos, composiciones y metodos de uso de estos.
WO2024028785A1 (en) * 2022-08-02 2024-02-08 Università Degli Studi Di Roma - La Sapienza Multicomponent lipid nanoparticles with high cellular fusogenicity for the delivery of nucleic acids and related preparation process

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006525815A (ja) * 2003-05-28 2006-11-16 ウィスコンシン・アラムナイ・リサーチ・ファウンデイション Poliiプロモーターおよびリボザイムを有する組換えインフルエンザベクター
JP2009501699A (ja) * 2005-06-15 2009-01-22 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー アミン含有脂質およびその使用
WO2018087753A1 (en) * 2016-11-08 2018-05-17 Technology Innovation Momentum Fund (Israel) Limited Partnership Cationic lipids for nucleic acid delivery and preparation thereof

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1092777A1 (en) * 1999-10-15 2001-04-18 Aventis Pharma S.A. Self-cleaving RNA sequences and their use for the control of protein synthesis.
AU2002953436A0 (en) * 2002-12-18 2003-01-09 The University Of Newcastle Research Associates Limited A method of treating a malignancy in a subject via direct picornaviral-mediated oncolysis
KR20060103890A (ko) * 2003-09-26 2006-10-04 노바르티스아게 세네카 밸리 바이러스에 기초한 조성물 및 질병의 치료방법
EP1843773A4 (en) * 2005-01-17 2008-07-30 Viralytics Ltd PROCESS AND COMPOSITION FOR THE TREATMENT OF NEOPLASMS
US20180148711A1 (en) * 2015-05-28 2018-05-31 Coda Biotherapeutics, Inc. Genome editing vectors
WO2016198531A2 (en) * 2015-06-10 2016-12-15 Hookipa Biotech Ag Hpv vaccines
RU2749050C2 (ru) * 2016-01-27 2021-06-03 Онкорус, Инк. Онколитические вирусные векторы и их применение
RU2758007C2 (ru) * 2016-06-30 2021-10-25 Онкорус, Инк. Доставка терапевтических полипептидов посредством псевдотипированных онколитических вирусов
CN109563507B (zh) * 2016-07-08 2024-03-05 埃克苏马生物技术公司 用于转导淋巴细胞及调节其活性的方法及组合物
KR20200036873A (ko) * 2017-07-14 2020-04-07 온코루스, 인크. 캡슐화된 폴리뉴클레오티드 및 사용 방법
KR20220078650A (ko) * 2019-10-10 2022-06-10 온코루스, 인크. 이중 바이러스 및 이중 종양용해 바이러스 및 치료 방법

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006525815A (ja) * 2003-05-28 2006-11-16 ウィスコンシン・アラムナイ・リサーチ・ファウンデイション Poliiプロモーターおよびリボザイムを有する組換えインフルエンザベクター
JP2009501699A (ja) * 2005-06-15 2009-01-22 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー アミン含有脂質およびその使用
WO2018087753A1 (en) * 2016-11-08 2018-05-17 Technology Innovation Momentum Fund (Israel) Limited Partnership Cationic lipids for nucleic acid delivery and preparation thereof

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
J. VIROL., vol. 89, JPN6023049144, 2015, pages 908 - 916, ISSN: 0005208464 *
J. VIROL., vol. 89, JPN6023049147, 2015, pages 1242 - 1253, ISSN: 0005208466 *
J. VIROL., vol. 90, JPN6023049143, 2016, pages 4078 - 4092, ISSN: 0005208463 *
NAT. MED., vol. 14, JPN6023049139, 2008, pages 1278 - 1283, ISSN: 0005208462 *
PLOS ONE, vol. Vol. 8: e55228, JPN6023049145, 2013, pages 1 - 9, ISSN: 0005208465 *

Also Published As

Publication number Publication date
SG11202104887UA (en) 2021-06-29
BR112021009226A2 (pt) 2021-10-26
MX2021005448A (es) 2021-08-11
WO2020102285A1 (en) 2020-05-22
CN113348246A (zh) 2021-09-03
EP3880812A4 (en) 2022-09-07
EP3880812A1 (en) 2021-09-22
US20210403950A1 (en) 2021-12-30
IL282992A (en) 2021-06-30
KR20210093285A (ko) 2021-07-27
AU2019381698A1 (en) 2021-05-27
CA3117924A1 (en) 2020-05-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2023165916A (ja) カプセル封入ポリヌクレオチド及び使用方法
BR112020013319A2 (pt) vetores de dna de extremidade fechada obteníveis a partir de síntese livre de células e processo para obter vetores de cedna
JP2022516318A (ja) カプセル化ポリヌクレオチド及び使用方法
Shahryari et al. Engineering gene therapy: advances and barriers
JP2022507269A (ja) カプセル化ポリヌクレオチド及び使用方法
US11969479B2 (en) MeCP2 expression cassettes
CN113454232A (zh) 封闭端dna(cedna)产生中对rep蛋白活性的调节
CN113874508A (zh) 非病毒dna载体及其用于表达苯丙氨酸羟化酶(pah)治疗剂的用途
KR20220078650A (ko) 이중 바이러스 및 이중 종양용해 바이러스 및 치료 방법
Ali et al. Glioblastoma therapy: rationale for a mesenchymal stem cell-based vehicle to carry recombinant viruses
CN117295530A (zh) 非病毒dna载体及其用于表达pfic治疗剂的用途
CN115667531A (zh) 非病毒DNA载体和其用于表达戈谢(Gaucher)治疗剂的用途
CN113874513A (zh) 非病毒dna载体及其用于表达fviii治疗剂的用途
JP2022523806A (ja) 閉端dna(cedna)および免疫調節化合物
CN110337494B (zh) 表达靶向CDK9的RNAi效应子的H-1 PV
Idrees et al. Sodium Channelopathies and Novel Viral/non-viral Vectors for their Gene Therapy
JP2023542131A (ja) フェニルアラニンヒドロキシラーゼ(pah)を発現させるための閉端dnaベクター及びその使用
Jolly10 et al. Late Breaking Abstracts: Presented at the American Society of Gene & Cell Therapy’s 16th Annual Meeting, May 15–18, 2013, Salt Lake City, Utah

Legal Events

Date Code Title Description
A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20221027

A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20221027

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20231130

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20240621