JP2022188204A - 網膜組織を含む細胞凝集体及びその製造方法 - Google Patents

Abstract

【課題】移植に適した網膜組織、特に神経網膜及び網膜色素上皮細胞を含む細胞凝集体、並びにその製造方法を提供する。【解決手段】本発明の一実施形態のスフェア状細胞凝集体は、神経網膜を含むコア部と、前記コア部の表面の少なくとも一部を連続的に又は断続的に覆う被覆部とを備える、スフェア状細胞凝集体であって、（１）前記神経網膜において、少なくとも視細胞層を含む神経網膜層が形成されており、前記視細胞層は少なくとも視細胞、視細胞前駆細胞及び網膜前駆細胞からなる群から選択される１以上の細胞を含み、前記視細胞層に含まれる細胞が前記コア部の表面の接線方向に連続して存在しており、（２）前記被覆部は、互いに接触する網膜色素上皮細胞を含み、（３）前記細胞凝集体は、水晶体、硝子体、角膜及び血管を含まず、かつ（４）前記網膜色素上皮細胞は、前記神経網膜層とともに連続する上皮構造を構成していないことを特徴とする。【選択図】なし

Description

本発明は、神経網膜を含むスフェア状細胞凝集体及びその製造方法、特に神経網膜を含むコア部と、該コア部の表面の少なくとも一部を連続的に又は断続的に覆い、網膜色素上皮細胞を含む被覆部とを備えるスフェア状細胞凝集体及びその製造方法に関する。

進行した加齢黄斑変性症等の視細胞と網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞が同時に障害される場合には、神経網膜（ＮＲ）と網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞の同時移植が望ましいとされている。

一方、網膜色素変性等網膜組織の障害に基づく疾患に対する網膜の移植治療に関連し、多能性幹細胞から神経網膜や、網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞を製造する方法の研究が活発に行われている。多能性幹細胞から神経網膜を製造する方法として、例えば、多能性幹細胞の凝集体を、ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質を含む培地中で浮遊培養することにより、神経網膜を得る方法（特許文献１、２及び非特許文献１）が知られている。また、多能性幹細胞からＲＰＥ細胞を製造する方法として、例えば、レチノイン酸受容体アンタゴニストを含む培地中で誘導した網膜前駆細胞からＲＰＥ細胞を得る方法（特許文献３）が知られている。しかし、ＮＲとＲＰＥ細胞の両者が生体網膜における網膜組織と同じ様に方向性をもって正しく局在している状態で、両者を含む網膜組織を製造する方法は知られていない。

これまで、網膜前駆細胞とＲＰＥ細胞の細胞混合物の移植（非特許文献２）、及び、ＲＰＥ細胞シートに網膜前駆細胞を接着させたＲＰＥ細胞－網膜前駆細胞接着体の移植は報告されていた（特許文献４）。

しかしながら、非特許文献２では互いに接着していない細胞の混合物が使われており、特許文献４ではＲＰＥ細胞シートに接着されている網膜前駆細胞同士は密に接着しておらず、網膜組織として機能し得る状態ではない。従って、いずれの場合も、移植後の長期生着性がよくないと予想される。

国際公開第２０１５／０２５９６７号 国際公開第２０１６／０６３９８６号 国際公開第２０１２／１７３２０７号 米国特許出願公開第２０１６／０３３１８６７号明細書

Ａｔｓｕｓｈｉ Ｋｕｗａｈａｒａら、Ｎａｔｕｒｅ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ， ６， ６２８６ （２０１５） Ｓｅｉｌｅｒら、Ｃｕｒｒ Ｅｙｅ Ｒｅｓ．１９９５ Ｍａｒ；１４（３）：１９９－２０７

本発明は、移植に適した網膜組織、特に神経網膜及び網膜色素上皮細胞を含む細胞凝集体及びその製造方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、神経網膜を含むスフェア状細胞凝集体にＲＰＥ細胞を接触させることによって、当該細胞凝集体にＲＰＥ細胞を接着させた本発明にかかるスフェア状細胞凝集体を得ることができ、該凝集体から物理的に切り出した細胞シートを網膜変性ヌードラットに移植したところ良好な生着が認められることを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は以下に関する。
［１］神経網膜を含むコア部と、上記コア部の表面の少なくとも一部を連続的に又は断続的に覆う被覆部とを備える、スフェア状細胞凝集体であって、
（１）上記神経網膜において、少なくとも視細胞層を含む神経網膜層が形成されており、上記視細胞層は少なくとも視細胞、視細胞前駆細胞及び網膜前駆細胞からなる群から選択される１以上の細胞を含み、上記視細胞層に含まれる細胞が上記コア部の表面の接線方向に連続して存在しており、
（２）上記被覆部は、互いに接触する網膜色素上皮細胞を含み、
（３）上記細胞凝集体は、水晶体、硝子体、角膜及び血管を含まず、かつ
（４）上記網膜色素上皮細胞は、上記神経網膜層とともに連続する上皮構造を構成していない
ことを特徴とするスフェア状細胞凝集体。
［２］（１）における視細胞層と、該視細胞層の少なくとも一部を覆う網膜色素上皮細胞との間に、さらに細胞外マトリクスが存在する、［１］のスフェア状細胞凝集体。
［３］細胞外マトリクスが、ヒアルロン酸、ラミニン、ＩＶ型コラーゲン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン及びエンタクチンからなる群から選択される１又は複数の細胞外マトリクスである、［２］のスフェア状細胞凝集体。
［４］神経網膜を含むスフェア状の細胞凝集体（神経網膜の細胞凝集体）であって、
（Ｉ）上記神経網膜の細胞凝集体において、上記神経網膜は上記細胞凝集体の表面に存在しており、かつ
（ＩＩ）上記神経網膜において少なくとも視細胞層を含む神経網膜層が形成されており、上記視細胞層には網膜前駆細胞、視細胞前駆細胞及び視細胞からなる群から選択される１以上の細胞が存在している、神経網膜の細胞凝集体を調製する工程と、
網膜色素上皮細胞を調製する工程と、
上記神経網膜の細胞凝集体及び上記網膜色素上皮細胞を接触させる工程とを含む、
［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体の製造方法。
［５］上記神経網膜の細胞凝集体における上記神経網膜におけるＣｈｘ１０陽性細胞の存在割合が２０％以上である、［４］の製造方法。
［６］接触工程において、接着因子の存在下で接触させる、［４］又は［５］の製造方法。
［７］接着因子が細胞外マトリクスである、［６］の製造方法。
［８］細胞外マトリクスが、ヒアルロン酸、ラミニン、ＩＶ型コラーゲン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン及びエンタクチンからなる群から選択される１又は複数の細胞外マトリクスである、［７］の製造方法。
［９］神経網膜の細胞凝集体及び網膜色素上皮細胞の少なくとも一方が、多能性幹細胞由来である、［４］～［７］のいずれかの製造方法。
［１０］網膜色素上皮細胞を調製する工程において、網膜色素上皮細胞が、細胞シート又は細胞懸濁液として調製される、［４］～［８］のいずれかの製造方法。
［１１］接触工程の後に、網膜色素上皮細胞が多角形又は敷石状の細胞形態を有するまでさらに培養する、［４］～［１０］のいずれかの製造方法。
［１２］［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体を含有してなる、被験物質の毒性又は薬効評価用試薬。
［１３］［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部に被験物質を接触させ、被験物質が該スフェア状細胞凝集体又は該スフェア状細胞凝集体に含まれる細胞に及ぼす影響を検定することを含む、被験物質の毒性又は薬効評価方法。
［１４］［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部を含有してなる、網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患の治療薬。
［１５］［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部の有効量を、移植を必要とする対象に移植することを含む、網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患の治療方法。
［１６］網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患の治療における使用のための［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部。
［１７］［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部を有効成分として含有する、医薬組成物。
［１８］［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体から物理的に切り出されてなる、スフェア状細胞凝集体の一部。
［１９］網膜色素上皮細胞及び神経網膜を含む細胞シートである、［１８］のスフェア状細胞凝集体の一部。
［２０］［１］～［３］のいずれかのスフェア状細胞凝集体の一部を物理的に切り出す工程を含む、スフェア状細胞凝集体の一部の製造方法。
［２１］上記スフェア状細胞凝集体の一部が、網膜色素上皮細胞及び神経網膜を含む細胞シートである、［２０］の製造方法。

本発明によれば、生体内において各網膜系細胞が存在すべき適切な位置に、長期間に渡って生着できる、移植に適した網膜組織、特に神経網膜及び網膜色素上皮細胞を含む細胞凝集体及びその製造方法を提供することができる。

ヒトＥＳ細胞から分化誘導し、網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞と神経網膜（ＮＲ）を作り分けた顕微鏡観察結果（Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ）及び蛍光顕微鏡観察結果（Ａ′、Ｂ′、Ｃ′、Ｄ′）を示す図である。 実施例２のＮＲとＲＰＥ細胞とを接着させる方法（Ａ）、並びに接着１時間後及び接着の翌日の顕微鏡観察結果（Ｂ、Ｃ、Ｄ）及び蛍光顕微鏡観察結果（Ｂ′、Ｃ′、Ｄ′）を示す図である。 実施例２でＮＲとＲＰＥ細胞とを接着させた後１日目、６日目、及び４５日目の経時変化を顕微鏡で観察した結果（Ｅ、Ｆ、Ｇ）、並びに、４５日目におけるＮＲ表面に接着しているＲＰＥ細胞の形態を顕微鏡で観察した結果（Ｈ）及び蛍光顕微鏡で観察した結果（Ｈ′）を示す図である。 実施例２でＮＲとＲＰＥ細胞とを接着させた後５０日目のＮＲ－ＲＰＥ細胞の凝集塊を免疫染色し、共焦点蛍光顕微鏡で観察した結果（Ｉ、Ｊ）を示す図である。 実施例３のＮＲとＲＰＥ細胞とを接着させる方法（Ａ）、並びに接着直後及び１０分後の顕微鏡観察結果（Ｂ）を示す図である。 実施例３でＮＲとＲＰＥ細胞とを接着させた直後及び１３日目の経時変化を顕微鏡で観察した結果（Ｃ、Ｄ）及び蛍光顕微鏡で観察した結果（Ｃ′、Ｄ′）を示す図である。 実施例４で作製したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートを接着させてから５日間及び５０日間培養し蛍光顕微鏡で観察した結果（Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ、Ｆ）、並びに、培養したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートを切り出し、蛍光顕微鏡で観察した結果（Ａ′、Ｂ′、Ｃ′、Ｄ′、Ｅ′、Ｆ′）を示す図である。 実施例４で作製したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートを移植して５か月以上後の眼組織切片を顕微鏡下で観察した結果（Ｇ）及び蛍光顕微鏡で観察した結果（Ｇ′）を示す図である。 実施例４で作製したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートを移植した５か月以上後のグラフトを免疫染色して、共焦点蛍光顕微鏡で観察した結果（Ｈ）を示す図である。 実施例４で作製したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートを移植した５か月以上後のグラフトを免疫染色して、共焦点蛍光顕微鏡で観察した結果（Ｉ）を示す図である。

〔スフェア状細胞凝集体〕
本発明の一実施形態のスフェア状細胞凝集体は、神経網膜を含むコア部と、上記コア部の表面の少なくとも一部を連続的に又は断続的に覆う被覆部とを備えるものであり、以下の（１）～（４）の特徴を有する：
（１）上記神経網膜において、少なくとも視細胞層を含む神経網膜層が形成されており、上記視細胞層は少なくとも視細胞、視細胞前駆細胞及び網膜前駆細胞からなる群から選択される１以上の細胞を含み、上記視細胞層に含まれる細胞が上記コア部の表面の接線方向に連続して存在しており、
（２）上記被覆部は、互いに接触する網膜色素上皮細胞を含み、
（３）上記細胞凝集体は、水晶体、硝子体、角膜及び血管を含まず、かつ
（４）上記網膜色素上皮細胞は、上記神経網膜層とともに連続する上皮構造を構成していない。

「スフェア（ｓｐｈｅｒｅ）状細胞凝集体」は、球状に近い立体的な形を有する細胞凝集体を意味する。球状に近い立体的な形とは、三次元構造を有する形であって、二次元面に投影したときに、例えば、円形又は楕円形を示す球状形、及び球状形が複数融合して形成される形状（例えば二次元に投影した場合に２～４個の円形若しくは楕円形が重なりあって形成する形を示す）が挙げられる。一態様において、凝集体のコア部は、小胞性層状構造を有し、明視野顕微鏡の下では、中央部が暗く外縁部分が明るく観察されるという特徴を有する。

「細胞凝集体」（Ｃｅｌｌ Ａｇｇｒｅｇａｔｅ）とは、複数の細胞同士が接着して立体構造を形成しているものであれば特に限定はなく、例えば、培地等の媒体中に分散していた細胞が集合して形成する塊、又は細胞分裂を経て形成される細胞の塊等をいう。細胞凝集体には、特定の組織を形成している場合も含まれる。

上記細胞凝集体のコア部は神経網膜を含む。「網膜組織（Ｒｅｔｉｎａｌ ｔｉｓｓｕｅ又はＲｅｔｉｎａｌ ｏｒｇａｎｏｉｄ）」とは、生体網膜において各網膜層を構成する網膜系細胞が一種類又は複数種類、層状で立体的に含まれる組織を意味し、「神経網膜（Ｎｅｕｒａｌ Ｒｅｔｉｎａ）」は、網膜組織であって、後述する網膜層のうち網膜色素上皮層を含まない、網膜色素上皮層の内側の神経網膜層を含む組織を意味する。それぞれの細胞がいずれの網膜層を構成する細胞であるかは、公知の方法、例えば細胞マーカーの発現の有無又は発現の程度等によって確認できる。

上記「細胞凝集体のコア部」の一部の領域には、網膜色素上皮細胞及び／又は毛様体周縁部様構造体を含んでいてもよい。一態様として、細胞凝集体の外環境に対して形成している連続的な境界面（神経網膜により構成される）の一部が網膜色素上皮細胞により構成され、さらに神経網膜と網膜色素上皮細胞の境界領域に毛様体周縁部用構造体が存在する。このような「細胞凝集体のコア部」として、具体的には、ＷＯ２０１３／１８３７７４に開示される細胞凝集体が挙げられる（図１２Ａ）。

「網膜系細胞（Ｒｅｔｉｎａｌ ｃｅｌｌ）」とは、生体網膜において各網膜層を構成する細胞又はその前駆細胞を意味する。具体的には、視細胞（桿体視細胞、錐体視細胞）、水平細胞、アマクリン細胞、介在神経細胞、網膜神経節細胞（神経節細胞）、双極細胞（桿体双極細胞、錐体双極細胞）、ミュラーグリア細胞、網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞、毛様体周縁部細胞、これらの前駆細胞（例：視細胞前駆細胞、双極細胞前駆細胞等）、網膜前駆細胞等の細胞が含まれるがこれらに限定されない。上記網膜系細胞のうち、神経網膜層を構成する細胞として、具体的には、視細胞（桿体視細胞、錐体視細胞）、水平細胞、アマクリン細胞、介在神経細胞、網膜神経節細胞（神経節細胞）、双極細胞（桿体双極細胞、錐体双極細胞）、ミュラーグリア細胞、及びこれらの前駆細胞（例：視細胞前駆細胞、双極細胞前駆細胞等）等の細胞が挙げられる。

「成熟した網膜系細胞」とは、ヒト成人の網膜組織に含まれ得る細胞を意味し、具体的には、視細胞（桿体視細胞、錐体視細胞）、水平細胞、アマクリン細胞、介在神経細胞、網膜神経節細胞（神経節細胞）、双極細胞（桿体双極細胞、錐体双極細胞）、ミュラーグリア細胞、網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞、毛様体周縁部細胞等の分化した細胞を意味する。「未成熟な網膜系細胞」とは、成熟した網膜系細胞への分化が決定づけられている前駆細胞（例：視細胞前駆細胞、双極細胞前駆細胞、網膜前駆細胞等）を意味する。

視細胞前駆細胞、水平細胞前駆細胞、双極細胞前駆細胞、アマクリン細胞前駆細胞、網膜神経節細胞前駆細胞、ミュラーグリア前駆細胞、網膜色素上皮前駆細胞とは、それぞれ、視細胞、水平細胞、双極細胞、アマクリン細胞、網膜神経節細胞、ミュラーグリア細胞、網膜色素上皮細胞への分化が決定付けられている前駆細胞をいう。

「網膜前駆細胞」とは、視細胞前駆細胞、水平細胞前駆細胞、双極細胞前駆細胞、アマクリン細胞前駆細胞、網膜神経節細胞前駆細胞、ミュラーグリア細胞、網膜色素上皮前駆細胞等のいずれの未成熟な網膜系細胞にも分化しうる前駆細胞であって、最終的に、視細胞、桿体視細胞、錐体視細胞、水平細胞、双極細胞、アマクリン細胞、網膜神経節細胞、網膜色素上皮細胞等のいずれの成熟した網膜系細胞にも分化しうる前駆細胞をいう。

「視細胞（ｐｈｏｔｏｒｅｃｅｐｔｏｒ ｃｅｌｌ）」とは、網膜の視細胞層に存在し、光刺激を吸収し電気信号へと変換する役割を持つ。視細胞には、明所で機能する錐体（ｃｏｎｅ）と暗所で機能する杆体（又は桿体、ｒｏｄ）の２種類がある。視細胞は視細胞前駆細胞から分化し、成熟する。細胞が視細胞若しくは視細胞前駆細胞であるか否かは、当業者であれば、例えば後述する細胞マーカー（視細胞前駆細胞で発現するＣｒｘ及びＢｌｉｍｐ１、視細胞で発現するリカバリン、成熟視細胞で発現するロドプシン、Ｓ－Ｏｐｓｉｎ及びＭ／Ｌ－Ｏｐｓｉｎ等）の発現、外節構造の形成等により容易に確認できる。一態様において、視細胞前駆細胞はＣｒｘ陽性細胞であり、視細胞はロドプシン、Ｓ－Ｏｐｓｉｎ及びＭ／Ｌ－Ｏｐｓｉｎ陽性細胞である。

「網膜色素上皮細胞」とは、生体網膜において神経網膜の外側に存在する上皮細胞を意味する。細胞が網膜色素上皮細胞であるか否かは、当業者であれば、例えば後述する細胞マーカー（ＲＰＥ６５、Ｍｉｔｆ、ＣＲＡＬＢＰ、ＭＥＲＴＫ、ＢＥＳＴ１等）の発現や、メラニン顆粒の存在（黒褐色）、細胞間のタイトジャンクション、多角形・敷石状の特徴的な細胞形態等により容易に確認できる。細胞が網膜色素上皮細胞の機能を有するか否かは、ＶＥＧＦ及びＰＥＤＦ等のサイトカインの分泌能等により容易に確認できる。一態様において、網膜色素上皮細胞はＲＰＥ６５陽性細胞、Ｍｉｔｆ陽性細胞、又は、ＲＰＥ６５陽性かつＭｉｔｆ陽性細胞である。

網膜系細胞の存在は、網膜系細胞のマーカー（以下、「網膜系細胞マーカー」という場合がある。）の発現の有無によって確認することができる。網膜系細胞マーカーの発現の有無、又は細胞集団若しくは組織における網膜系細胞マーカー陽性細胞の割合は、当業者であれば容易に確認することができる。例えば、市販の抗体を用いたフローサイトメトリー、免疫染色等の手法によって、特定の網膜系細胞マーカー陽性細胞の数を全細胞数で除することにより確認することができる。

網膜系細胞マーカーとしては、網膜前駆細胞で発現するＲｘ（「Ｒａｘ」ともいう。）、ＰＡＸ６及びＣｈｘ１０、視細胞前駆細胞で発現するＣｒｘ及びＢｌｉｍｐ１、視細胞で発現するリカバリン、双極細胞で発現するＣｈｘ１０、ＰＫＣα及びＬ７、網膜神経節細胞で発現するＴｕＪ１及びＢｒｎ３、アマクリン細胞で発現するカルレチニン、水平細胞で発現するカルビンジン、成熟視細胞で発現するロドプシン、桿体視細胞で発現するＮｒｌ及びロドプシン、錐体視細胞で発現するＲｘｒ－ｇａｍｍａ、Ｓ－Ｏｐｓｉｎ及びＭ／Ｌ－Ｏｐｓｉｎ、ミュラーグリア細胞で発現するＧＳ及びＧＦＡＰ、網膜色素上皮細胞で発現するＲＰＥ６５及びＭｉｔｆ、毛様体周縁部細胞で発現するＲｄｈ１０及びＳＳＥＡ１等が挙げられる。

「陽性細胞」とは、特定のマーカーを細胞表面上又は細胞内に発現している細胞を意味する。例えば、「Ｃｈｘ１０陽性細胞」とは、Ｃｈｘ１０タンパク質を核内に発現している細胞を意味する。

（１）スフェア状細胞凝集体のコア部の神経網膜において、少なくとも視細胞層を含む神経網膜層が形成されている。「網膜層」とは、網膜を構成する各層を意味し、具体的には、網膜色素上皮層、視細胞層、外境界膜、外顆粒層、外網状層、内顆粒層、内網状層、神経節細胞層、神経線維層及び内境界膜を挙げることができる。「神経網膜層」とは、神経網膜を構成する各層を意味し、具体的には、視細胞層、外境界膜、外顆粒層、外網状層、内顆粒層、内網状層、神経節細胞層、神経線維層及び内境界膜を挙げることができる。「視細胞層」とは、網膜層又は神経網膜層の１種であり、神経網膜の最も外側に形成され、視細胞（桿体視細胞、錐体視細胞）、視細胞前駆細胞及び網膜前駆細胞を多く含む網膜層を意味する。

コア部の神経網膜における視細胞層は少なくとも視細胞、視細胞前駆細胞及び網膜前駆細胞からなる群から選択される１以上の細胞（以下、「視細胞等」という場合がある）を含み、ここで、視細胞は、桿体視細胞及び錐体視細胞を含み、視細胞層に存在する全細胞に対して、視細胞等は核の数を基準に７０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上を占める。コア部の神経網膜における視細胞層は、少なくとも凝集体コア部の最も外側に形成されており、また、内側にも視細胞層が形成されていてもよい。上記視細胞等はコア部表面の接線方向に連続して、すなわち互いに接着して存在しており、視細胞等がコア部表面の接線方向に連続して存在することで、視細胞等を含む視細胞層を形成している。なお、接線方向とは、スフェア状細胞凝集体のコア部（神経網膜）表面に対する接線方向、すなわち視細胞層における視細胞等が並んでいる方向のことをいい、当該神経網膜に対して平行方向又は横方向のことである。

コア部の神経網膜の一態様として、さらに網膜色素上皮細胞の塊を同一凝集体内に有し、上述した神経網膜と網膜色素上皮細胞の境界領域に毛様体周縁部様構造体を有する、いわゆるカブラ型の凝集体（非特許文献１）であることもあり得る。

毛様体周縁部様構造体とは、毛様体周縁部と類似した構造体のことである。「毛様体周縁部（ｃｉｌｉａｒｙ ｍａｒｇｉｎａｌ ｚｏｎｅ；ＣＭＺ）」としては、例えば、生体網膜において神経網膜と網膜色素上皮との境界領域に存在する組織であり、且つ、網膜の組織幹細胞（網膜幹細胞）を含む領域を挙げることができる。毛様体周縁部は、毛様体縁（ｃｉｌｉａｒｙ ｍａｒｇｉｎ）又は網膜縁（ｒｅｔｉｎａｌ ｍａｒｇｉｎ）とも呼ばれ、毛様体周縁部、毛様体縁及び網膜縁は同等の組織である。毛様体周縁部は、網膜組織への網膜前駆細胞、分化細胞の供給、網膜組織構造の維持等に重要な役割を果たしていることが知られている。毛様体周縁部のマーカー遺伝子としては、例えば、Ｒｄｈ１０遺伝子（陽性）、Ｏｔｘ１遺伝子（陽性）及びＺｉｃ１（陽性）を挙げることができる。

（２）スフェア状細胞凝集体の被覆部は、細胞凝集体のコア部の表面の少なくとも一部を連続的に又は断続的に覆っており、ここでは、スフェア状細胞凝集体のコア部の表面とは、コア部の神経網膜の表面に存在する最も外側の視細胞層の表面を意味する。被覆部は、好ましくはコア部の表面積の３０％以上、より好ましくは５０％以上を覆っている。コア部の表面を連続的に覆っていることとは、被覆部はコア部の表面において連続的な１つの塊として存在していることをいい、コア部の表面を断続的に覆うこととは、被覆部はコア部の表面において２以上の連続的な塊又は層として存在し、それぞれの連続的な塊は互いに接続していないことをいう。被覆部がコア部の表面を断続的に覆っている場合において、それぞれの連続的な塊はコア部の表面積の１０％以上、又は２０％以上を連続的に覆っていることが好ましい。

被覆部は、互いに接触する網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞を含み、ここでＲＰＥ細胞は、網膜色素上皮前駆細胞も含む。ＲＰＥ細胞が「互いに接触する」とは、被覆部において１のＲＰＥ細胞が他のＲＰＥ細胞と接触している状態を意味し、他のＲＰＥ細胞と接触しない独立した単一のＲＰＥ細胞は被覆部を構成しない。

上記コア部の表面に存在する視細胞層と、該視細胞層の少なくとも一部を覆う網膜色素上皮細胞との間に、被覆部の一部として、さらに１又は複数の細胞外マトリクスが存在してもよい。細胞外マトリクスとは、細胞の外側の空間を構成する生体高分子を意味し、フィブロネクチン、ビトロネクチン、ラミニン等の細胞接着性タンパク質、コラーゲン、エラスチン等の線維性タンパク質、これらのタンパク質のフラグメント、ヒアルロン酸、コンドロイチン硫酸等のグルコサミノグリカン又はプロテオグリカン等が挙げられる。好ましくは、ヒアルロン酸、ラミニン、ＩＶ型コラーゲン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン及びエンタクチンからなる群から選択される１又は複数の細胞外マトリクスである。好適な細胞外マトリクスとして、ラミニンのフラグメントを挙げることができる（例：ラミニン５１１－Ｅ８フラグメント、ラミニン５２１－Ｅ８フラグメント）。

（３）胎児網膜を含む生体網膜は、水晶体、硝子体、角膜及び血管を含むのに対して、本発明のスフェア状細胞凝集体は、水晶体、硝子体、角膜及び血管を含まないという特徴を有する。

「水晶体」とは、外から眼球に入ってきた光を屈折させて、網膜にピントをあわせるレンズの役割を果たす組織である。水晶体の部分構造としては、水晶体上皮、水晶体核、水晶体嚢、等が挙げられる。水晶体の前駆組織としては、水晶体プラコード、水晶体胞等が挙げられる。水晶体プラコードとは、肥厚した表皮外胚葉細胞層からなる水晶体前駆組織である。胚発生においては、眼胞の表皮外胚葉への接触により、当該接触領域が肥厚することにより形成される。水晶体胞とは、水晶体プラコードの陥入により形成される小胞である。水晶体、その部分構造、又はその前駆組織が存在することは、マーカーの発現により確認することができる。水晶体、その部分構造、又はその前駆組織のマーカーとしては、Ｌ－Ｍａｆ（水晶体前駆組織）、α、β及びγクリスタリン（水晶体）等が挙げられるが、これらに限定されない。

「硝子体」とは、水晶体の後方にあり、内腔を埋める透明なゼリー状の組織であり、眼球の形を保つと同時に、外力を分散させる作用を持つ。硝子体は、水分及びタンパク質（コラーゲン）からできている。硝子体が存在することは、そのゼリー状の形状により確認することができる。

「角膜」とは、眼球壁の外層の前方約１／６を占める透明な時計皿状の組織である。角膜の部分構造としては、角膜上皮、ボーマン膜、角膜実質、デスメ膜、角膜内皮等が挙げられる。角膜は、通常、体表側から順に、角膜上皮、ボーマン膜、角膜実質、デスメ膜、及び角膜内皮からなる５つの層から構成される。角膜、その部分構造、又はその前駆組織が存在することは、マーカーの発現により確認することができる。角膜、その部分構造、又はその前駆組織のマーカーとしては、パン－サイトケラチン（角膜上皮前駆組織）、Ｅ－カドヘリン（角膜上皮前駆組織）、サイトケラチン３（角膜上皮）、サイトケラチン１２（角膜上皮）、サイトケラチン１４（角膜上皮）、ｐ６３（角膜上皮）、ＺＯ－１（角膜上皮）、ＰＤＧＦＲ－α（角膜実質、角膜内皮、又はその前駆組織）、Ｐｉｔｘ２（角膜実質及び角膜内皮の前駆組織）、ＡＢＣＧ２（角膜実質及び角膜内皮の前駆組織）等が挙げられる。

胎児網膜から水晶体等を取り除くと、その部分に穴が開いてしまい、組織が空隙によって分断される。また、生体網膜に比べて、スフェア状細胞凝集体のコア部の神経網膜層を構成する内層（最も外側の視細胞層を除いた部分）に存在する細胞（例：水平細胞、アマクリン細胞、双極細胞）、及び神経節細胞の数が少ない。具体的には、例えばヒト胎児網膜の内層に存在する細胞数と比べて８０％以下、７０％以下、６０％以下、５０％以下である。また、胎児網膜の一部を切り取り培養した場合は、二次元の厚みを持ったシート構造となるが、立体的なスフェア状細胞凝集体とはなり得ない。

一方、多能性幹細胞を分化誘導することにより人工的に作られたＯｐｔｉｃ ｃｕｐ（例：Ｎａｔｕｒｅ． ２０１１ Ａｐｒ ７；４７２（７３４１）：５１－６）が知られているが、このＯｐｔｉｃ ｃｕｐは細胞凝集体の一部に穴が開いており、組織が空隙により分断されている。

（４）被覆部における網膜色素上皮細胞は、神経網膜層とともに連続する上皮構造を構成していない。「上皮構造」とは、上皮組織が形成している層構造を意味し、上皮構造が連続するとは、上皮構造が１つの連続する上皮組織から形成されていることを意味する。すなわち、スフェア状細胞凝集体の被覆部における網膜色素上皮細胞と、コア部における神経網膜を構成する神経網膜層は、上皮組織としての連続性を有していない。連続する上皮構造であるか否かは、当業者であれば顕微鏡下において組織の状態や細胞の配列の状態を観察することにより確認することができる。

生体網膜は、内側が神経網膜、外側が網膜色素上皮細胞からなる、大きく内外２つの上皮組織が重なっている上皮構造を有する。この上皮構造は、１つの連続する上皮組織が折り重なることによって形成されている。具体例として、胎児網膜は一枚の上皮シートとして神経網膜－毛様体－ＲＰＥが連続した上皮である。また、人工的に製造したＯｐｔｉｃ ｃｕｐも一枚の上皮シートとして神経網膜とＲＰＥが連続している。

一態様において、本発明のスフェア状細胞凝集体は、哺乳動物の細胞を含む。本発明スフェア状細胞凝集体は、好ましくはげっ歯類（例、マウス、ラット）又は霊長類（例、ヒト、サル）の細胞を含み、より好ましくはヒトの細胞を含む。

一態様において、本発明のスフェア状細胞凝集体は、網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患（特に視細胞及び網膜色素上皮細胞が同時に障害又は損傷されている重症例）の治療における使用のためのスフェア状細胞凝集体である。

一態様において、本発明のスフェア状細胞凝集体は、移植を必要とする対象（例：哺乳動物）に移植することができ、当該移植によって視機能を改善することができる。対象となる哺乳動物としては、例えば、ヒト、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ウサギ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ウマ、ヤギ、サル等が挙げられる。

移植に際して、スフェア状細胞凝集体を該スフェア状細胞凝集体の生存能力を維持するために必要な媒体において保存してもよい。「生存能力を維持するために必要な媒体」としては、培地、生理学的緩衝溶液等が挙げられるが、網膜前駆細胞等の網膜系細胞を含む細胞集団が生存する限りにおいて特に限定されず、当業者であれば適宜選択することができる。一例として、動物細胞の培養に通常用いられる培地を基礎培地として調製した培地が挙げられる。基礎培地としては、例えば、ＢＭＥ培地、ＢＧＪｂ培地、ＣＭＲＬ １０６６培地、Ｇｌａｓｇｏｗ ＭＥＭ （ＧＭＥＭ）培地、Ｉｍｐｒｏｖｅｄ ＭＥＭ Ｚｉｎｃ Ｏｐｔｉｏｎ培地、Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地、ＩＭＤＭ培地、Ｍｅｄｉｕｍ １９９培地、Ｅａｇｌｅ ＭＥＭ培地、αＭＥＭ培地、ＤＭＥＭ培地、Ｆ－１２培地、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地、ＩＭＤＭ／Ｆ１２培地、ハム培地、ＲＰＭＩ １６４０培地、Ｆｉｓｃｈｅｒ’ｓ培地又はこれらの混合培地等、動物細胞の培養に用いることのできる培地を挙げることができる。

一態様において、本発明のスフェア状細胞凝集体を、ピンセット、ナイフ、ハサミ等を用いて適切な大きさに細切した後に移植することもできる。切り出した後の形状は問わないが、神経網膜及び網膜色素上皮細胞を含むシート剤（細胞シート、ＮＲ－ＲＰＥ細胞シートともいう）が挙げられる。例えば、一つの細胞凝集塊から切り出した細胞シート１枚（例えば直径３００μｍ高さ５０μｍ）を視細胞や網膜色素上皮細胞が変性している領域の面積に応じて、１枚から複数枚で移植することが挙げられる。当業者であれば、その変性死している領域に応じて細胞シートの枚数を選択することができる。

移植は、例えば、注射針を用いて網膜下に移植する方法や、眼球の一部を切開し、切開部位から損傷部位又は病変部位に移植することで実施される。

移植後生着した未成熟な網膜系細胞の少なくとも一部は、対象の生体内（眼内）の環境下において成熟した網膜系細胞に分化誘導される。ここで、「移植後に誘導される視細胞」とは、対象の眼内において、移植後生着した網膜前駆細胞又は視細胞前駆細胞から分化誘導される視細胞を意味する。

ここで、本明細書における「生着」とは、移植された細胞が生体内に長期間（例：３０日以上、６０日以上、９０日以上）生存し、臓器内に接着して留まることを意味する。

本明細書における「接触率」とは、移植した網膜組織の長径に対する、移植した網膜組織の視細胞層がホスト側の双極細胞を含む網膜層と接触している長さの割合を指す。

本明細書における「機能的生着」とは、移植された細胞が生着し、生体内で本来の機能を果たしている状態を意味する。

本明細書における「機能的生着率」とは、移植した細胞のうち、機能的生着を果たした細胞の割合を意味する。移植された視細胞の機能的生着率は、例えば上記接触率から求めることができる。

上記スフェア状細胞凝集体を移植することによって、移植された視細胞（移植後に誘導される視細胞を含む）の機能的生着率は１０％以上、好ましくは２０％以上、さらに好ましくは４０％以上、さらに好ましくは５０％以上、さらに好ましくは６０％以上である。

生体網膜は、非常に複雑な層構造を有しており、網膜層に存在する細胞が秩序だって整然と存在していることによってはじめて機能が発揮される。上記スフェア状細胞凝集体は、少なくとも視細胞層を含む神経網膜層を有し、当該網膜層では視細胞等は接着し連続的に存在しており、さらにその被覆部に網膜色素上皮細胞が存在しているため、生体網膜の構造に非常に類似した構造を有している。従って、本スフェア状細胞凝集体を移植することにより、生体において障害を受けた網膜や網膜色素上皮細胞の代替として、視細胞による光受容機能と網膜色素上皮細胞の視細胞保護機能等の両方を発揮することで、長期間生体に生着することが期待される。従って、スフェア状細胞凝集体は移植に適した細胞凝集体である。また、本スフェア状細胞凝集体は、後述する製造方法により製造することが可能であり、移植が必要な患者に適時に必要量を提供可能な点で生体網膜より優れているといえる。

〔スフェア状細胞凝集体の製造方法〕
本発明の一実施形態のスフェア状細胞凝集体の製造方法は、神経網膜を含むスフェア状の細胞凝集体（神経網膜の細胞凝集体）を調製する工程と、網膜色素上皮細胞を調製する工程と、神経網膜の細胞凝集体及び網膜色素上皮細胞を接触させる工程とを含む。

（神経網膜の細胞凝集体）
以下、神経網膜の細胞凝集体およびその製造方法について説明する。なお、「神経網膜の細胞凝集体」とは、神経網膜を含むスフェア状の細胞凝集体を意味する。
（Ｉ）神経網膜を含むスフェア状の細胞凝集体（神経網膜の細胞凝集体）において、神経網膜は細胞凝集体の表面に存在している。例えば、神経網膜は神経網膜の細胞凝集体の表面に厚みを持って存在しており、外環境に対して連続的な面で境界を形成している。外環境に面している境界面は視細胞が多数を占めており、その内側に内層の細胞や網膜前駆細胞が存在している。これら網膜層を構成する細胞は互いに接着し連続的に存在している。その内部には空洞、若しくは整然と並んだ層構造が形成されていない空間があるため、その境目に明瞭な影が観察され、上皮構造を形成していることが確認される。神経網膜を含むスフェア状の細胞凝集体は、上述したコア部と被覆部とを備えるスフェア状細胞凝集体のコア部に相当する。

（ＩＩ）神経網膜において少なくとも視細胞層を含む神経網膜層が形成されており、視細胞層には視細胞、視細胞前駆細胞及び網膜前駆細胞からなる群から選択される１以上の細胞が存在している。神経網膜におけるＣｈｘ１０陽性細胞の存在割合が２０％以上、好ましくは３０％以上、さらに好ましくは４０％以上である。Ｃｈｘ１０陽性細胞としては、網膜前駆細胞及び視細胞前駆細胞が挙げられる。

神経網膜の細胞凝集体は、多能性幹細胞由来であることが好ましい。「多能性幹細胞」とは、試験管内において培養することが可能で、かつ、胎盤を除く生体を構成するすべての細胞（三胚葉（外胚葉、中胚葉、内胚葉）由来の組織）に分化しうる能力（多分化能性（ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｃｙ））を有する幹細胞をいい、胚性幹細胞もこれに含まれる。

多能性幹細胞は、受精卵、クローン胚、生殖幹細胞、組織内幹細胞、体細胞等から誘導することができる。多能性幹細胞としては、胚性幹細胞（ＥＳ細胞：Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）、ＥＧ細胞（Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｇｅｒｍ ｃｅｌｌ）、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞：ｉｎｄｕｃｅｄ ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）等を挙げることができる。間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ；ＭＳＣ）から得られるＭｕｓｅ細胞（Ｍｕｌｔｉ－ｌｉｎｅａｇｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｎｇ ｓｔｒｅｓｓ ｅｎｄｕｒｉｎｇ ｃｅｌｌ）及び生殖細胞（例えば精巣）から作製されたＧＳ細胞も多能性幹細胞に包含される。胚性幹細胞は、１９８１年に初めて樹立され、１９８９年以降ノックアウトマウス作製にも応用されている。１９９８年にはヒト胚性幹細胞が樹立されており、再生医学にも利用されつつある。胚性幹細胞は、内部細胞塊をフィーダー細胞上又はＬＩＦ（白血病抑制因子）を含む培地中で培養することによって製造することができる。胚性幹細胞の製造方法は、例えば、ＷＯ９６／２２３６２、ＷＯ０２／１０１０５７、ＵＳ５，８４３，７８０、ＵＳ６，２００，８０６、ＵＳ６，２８０，７１８等に記載されている。胚性幹細胞は、所定の機関から入手でき、また、市販品を購入することもできる。例えば、ヒト胚性幹細胞であるＫｈＥＳ－１、ＫｈＥＳ－２及びＫｈＥＳ－３は、京都大学再生医科学研究所から入手可能である。ヒト胚性幹細胞であるＲｘ：：ＧＦＰ株（ＫｈＥＳ－１株由来）は、国立研究開発法人理化学研究所から入手可能である。マウス胚性幹細胞であるＥＢ５細胞株及びＤ３細胞株は、それぞれ国立研究開発法人理化学研究所及びＡＴＣＣから、入手可能である。

胚性幹細胞の一つである核移植胚性幹細胞（ｎｔＥＳ細胞）は、核を取り除いた卵子に体細胞の核を移植して作ったクローン胚から樹立することができる。

ＥＧ細胞は、始原生殖細胞をｍＳＣＦ、ＬＩＦ及びｂＦＧＦを含む培地中で培養することによって製造することができる（Ｃｅｌｌ，７０：８４１－８４７，１９９２）。

本発明における「人工多能性幹細胞」とは、体細胞を、公知の方法等によって初期化（ｒｅｐｒｏｇｒａｍｍｉｎｇ）することで、多能性を誘導した細胞である。具体的には、線維芽細胞、又は末梢血単核球等の分化した体細胞をＯｃｔ３／４、Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４、Ｍｙｃ（ｃ－Ｍｙｃ、Ｎ－Ｍｙｃ、Ｌ－Ｍｙｃ）、Ｇｌｉｓ１、Ｎａｎｏｇ、Ｓａｌｌ４、ｌｉｎ２８、Ｅｓｒｒｂ等を含む初期化遺伝子群から選ばれる複数の遺伝子の組合せのいずれかの発現によって初期化して多分化能を誘導した細胞が挙げられる。好ましい初期化因子の組み合わせとしては、（１）Ｏｃｔ３／４、Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４、及びＭｙｃ（ｃ－Ｍｙｃ又はＬ－Ｍｙｃ）、（２）Ｏｃｔ３／４、Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４、Ｌｉｎ２８及びＬ－Ｍｙｃ（Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ，２０１３；３１：４５８－４６６）を挙げることが出来る。

人工多能性幹細胞は、２００６年、山中らによってマウス細胞で樹立された（Ｃｅｌｌ，２００６，１２６（４），ｐｐ．６６３－６７６）。人工多能性幹細胞は、２００７年にヒト線維芽細胞でも樹立され、胚性幹細胞と同様に多能性と自己複製能を有する（Ｃｅｌｌ，２００７，１３１（５），ｐｐ．８６１－８７２；Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００７，３１８（５８５８），ｐｐ．１９１７－１９２０；Ｎａｔ． Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，２００８，２６（１），ｐｐ．１０１－１０６）。

人工多能性幹細胞として、遺伝子発現による直接初期化で製造する方法以外に、化合物の添加等によって体細胞から人工多能性幹細胞を誘導することもできる（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１３，３４１，ｐｐ．６５１－６５４）。

また、株化された人工多能性幹細胞を入手することも可能であり、例えば、京都大学で樹立された２０１Ｂ７細胞、２０１Ｂ７－Ｆｆ細胞、２５３Ｇ１細胞、２５３Ｇ４細胞、１２０１Ｃ１細胞、１２０５Ｄ１細胞、１２１０Ｂ２細胞、１２３１Ａ３細胞等のヒト人工多能性細胞株が、京都大学から入手可能である。株化された人工多能性幹細胞として、例えば、京都大学で樹立されたＦｆ－Ｉ０１細胞及びＦｆ－Ｉ１４細胞が、京都大学から入手可能である。

人工多能性幹細胞を製造する際に用いられる体細胞としては、特に限定は無いが、組織由来の線維芽細胞、血球系細胞（例えば、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）、Ｔ細胞）、肝細胞、膵臓細胞、腸上皮細胞、平滑筋細胞等が挙げられる。

人工多能性幹細胞を製造する際に、数種類の遺伝子の発現によって初期化する場合、遺伝子を発現させるための手段は特に限定されない。上記手段としては、ウイルスベクター（例えば、レトロウイルスベクター、レンチウイルスベクター、センダイウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター）を用いた感染法、プラスミドベクター（例えば、プラスミドベクター、エピソーマルベクター）を用いた遺伝子導入法（例えば、リン酸カルシウム法、リポフェクション法、レトロネクチン法、エレクトロポレーション法）、ＲＮＡベクターを用いた遺伝子導入法（例えば、リン酸カルシウム法、リポフェクション法、エレクトロポレーション法）、タンパク質の直接注入法（例えば、針を用いた方法、リポフェクション法、エレクトロポレーション法）等が挙げられる。

人工多能性幹細胞を製造する際には、フィーダー細胞存在下又はフィーダー細胞非存在下（フィーダーフリー）で製造できる。フィーダー細胞存在下で人工多能性幹細胞を製造する際には、公知の方法で、未分化維持因子存在下で人工多能性幹細胞を製造できる。フィーダー細胞非存在下で人工多能性幹細胞を製造する際に用いられる培地としては、特に限定は無いが、公知の胚性幹細胞及び／又は人工多能性幹細胞の維持培地、又はフィーダーフリーで人工多能性幹細胞を樹立するための培地を用いることができる。フィーダーフリーで人工多能性幹細胞を樹立するための培地としては、例えばＥｓｓｅｎｔｉａｌ ８培地（Ｅ８培地）、Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ６培地、ＴｅＳＲ培地、ｍＴｅＳＲ培地、ｍＴｅＳＲ－Ｅ８培地、Ｓｔａｂｉｌｉｚｅｄ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ８培地、ＳｔｅｍＦｉｔ培地等のフィーダーフリー培地を挙げることができる。人工多能性幹細胞を製造する際、例えば、フィーダーフリーで体細胞に、センダイウイルスベクターを用いて、Ｏｃｔ３／４、Ｓｏｘ２、Ｋｌｆ４、及びＭｙｃの４因子を遺伝子導入することで、人工多能性幹細胞を作製することができる。

本発明に用いられる多能性幹細胞は、好ましくは胚性幹細胞又は人工多能性幹細胞であり、より好ましくは人工多能性幹細胞である。

本発明に用いる多能性幹細胞は、哺乳動物の多能性幹細胞であり、好ましくはげっ歯類（例、マウス、ラット）又は霊長類（例、ヒト、サル）の多能性幹細胞であり、より好ましくはヒト又はマウス多能性幹細胞、さらに好ましくはヒト人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）又はヒト胚性幹細胞（ＥＳ細胞）である。

複能性幹細胞としては、造血幹細胞、神経幹細胞、網膜幹細胞、間葉系幹細胞等の組織幹細胞（組織性幹細胞、組織特異的幹細胞又は体性幹細胞とも呼ばれる）を挙げることができる。

神経網膜の細胞凝集体は、多能性幹細胞を分化誘導することによって得ることができる。分化誘導はＷＯ２０１１／０５５８５５、ＷＯ２０１３／０７７４２５、ＷＯ２０１５／０２５９６７、ＷＯ２０１６／０６３９８５、ＷＯ２０１６／０６３９８６、ＷＯ２０１７／１８３７３２、ＰＬｏＳ Ｏｎｅ． ２０１０ Ｊａｎ ２０；５（１）：ｅ８７６３．、Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ． ２０１１ Ａｕｇ；２９（８）：１２０６－１８．、Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ． ２０１４ Ｊｕｎ １０；１１１（２３）：８５１８－２３、Ｎａｔ Ｃｏｍｍｕｎ． ２０１４ Ｊｕｎ １０；５：４０４７に開示されている方法が挙げられるが、特に限定されない。

具体的な一態様として、下記工程（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）を含む方法によって神経網膜の細胞凝集体を調製することができる。
（Ａ）多能性幹細胞を、フィーダー細胞非存在下で、１）ＴＧＦβファミリーシグナル伝達経路阻害物質及び／又はソニック・ヘッジホッグシグナル伝達経路作用物質、並びに２）未分化維持因子を含む培地で培養する工程、
（Ｂ）無血清培地中で浮遊培養することによって細胞凝集体を形成させる工程、
（Ｃ）工程（Ｂ）で得られた細胞凝集体を、ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質を含む培地中でさらに浮遊培養する工程。

本方法は、例えばＷＯ２０１６／０６３９８５、ＷＯ２０１７／１８３７３２にも開示されており、より詳細にはＷＯ２０１６／０６３９８５、ＷＯ２０１７／１８３７３２を参照することが可能である。

ＴＧＦβファミリーシグナル伝達経路阻害物質とは、ＴＧＦβファミリーシグナル伝達経路、すなわちＳｍａｄファミリーによって伝達される、シグナル伝達経路を阻害する物質を表し、具体的にはＴＧＦβシグナル伝達経路阻害物質（例：ＳＢ４３１５４２、ＬＹ－３６４９４７、ＳＢ－５０５１２４、Ａ－８３－０１等）、Ｎｏｄａｌ／Ａｃｔｉｖｉｎシグナル伝達経路阻害物質（例：ＳＢ４３１５４２、Ａ－８３－０１等）及びＢＭＰシグナル伝達経路阻害物質（例：ＬＤＮ１９３１８９、Ｄｏｒｓｏｍｏｒｐｈｉｎ等）を挙げることができる。これらの物質は市販されており入手可能である。

ソニック・ヘッジホッグ（以下、「Ｓｈｈ」と記すことがある。）シグナル伝達経路作用物質とは、Ｓｈｈによって媒介されるシグナル伝達を増強し得る物質である。Ｓｈｈシグナル伝達経路作用物質としては、例えば、ＰＭＡ（Ｐｕｒｍｏｒｐｈａｍｉｎｅ）、ＳＡＧ（Ｓｍｏｏｔｈｅｎｅｄ Ａｇｏｎｉｓｔ）等が挙げられる。

ＴＧＦβファミリーシグナル伝達経路阻害物質及びソニック・ヘッジホッグシグナル伝達経路作用物質の濃度は、網膜系細胞への分化を誘導可能な濃度であればよい。例えば、ＳＢ４３１５４２は、通常０．１～２００μＭ、好ましくは２～５０μＭの濃度で使用される。Ａ－８３－０１は、通常０．０５～５０μＭ、好ましくは０．５～５μＭの濃度で使用される。ＬＤＮ１９３１８９は、通常１～２０００ｎＭ、好ましくは１０～３００ｎＭの濃度で使用される。ＳＡＧは、通常、１～２０００ｎＭ、好ましくは１０～７００ｎＭの濃度で使用される。ＰＭＡは、通常０．００２～２０μＭ、好ましくは０．０２～２μＭの濃度で使用される。

工程（Ａ）におけるフィーダーフリー条件での多能性幹細胞の培養においては、培地として未分化維持因子を含む上記フィーダーフリー培地を用いるとよい。

工程（Ａ）におけるフィーダーフリー条件での多能性幹細胞の培養においては、フィーダー細胞に代わる足場を多能性幹細胞に提供するため、適切なマトリクスを足場として用いてもよい。足場として用いることのできるマトリクスとしては、ラミニン（Ｎａｔ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ ２８，６１１－６１５，（２０１０））、ラミニン断片（Ｎａｔ Ｃｏｍｍｕｎ ３，１２３６，（２０１２））、基底膜標品（Ｎａｔ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ １９，９７１－９７４，（２００１））、ゼラチン、コラーゲン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、エンタクチン、ビトロネクチン（Ｖｉｔｒｏｎｅｃｔｉｎ）等が挙げられる。

工程（Ａ）における多能性幹細胞の培養時間は、工程（Ｂ）において形成される細胞凝集体の質を向上させる効果が達成可能な範囲で特に限定されないが、通常０．５～１４４時間である。一態様において、好ましくは２～９６時間、より好ましくは６～４８時間、さらに好ましくは１２～４８時間、よりさらに好ましくは１８～２８時間（例、２４時間）である。

無血清培地の準備及び細胞凝集体の形成は、上述と同様に実施することができる。

一態様において、工程（Ｂ）において用いられる培地は、ソニック・ヘッジホッグシグナル伝達経路作用物質を含む。ソニック・ヘッジホッグシグナル伝達経路作用物質としては、上述したものを上述の濃度で用いることができる。ソニック・ヘッジホッグシグナル伝達経路作用物質は、好ましくは、浮遊培養開始時から培地に含まれる。培地には、ＲＯＣＫ阻害剤（例、Ｙ－２７６３２）を添加してもよい。培養時間は例えば、１２時間～６日間である。

ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質とは、ＢＭＰによって媒介されるシグナル伝達経路を増強し得る物質である。ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質としては、例えばＢＭＰ２、ＢＭＰ４若しくはＢＭＰ７等のＢＭＰタンパク質、ＧＤＦ７等のＧＤＦタンパク質、抗ＢＭＰ受容体抗体、又は、ＢＭＰ部分ペプチド等が挙げられる。ＢＭＰ２タンパク質、ＢＭＰ４タンパク質及びＢＭＰ７タンパク質は例えばＲ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ社から、ＧＤＦ７タンパク質は例えば和光純薬から入手可能である。

用いられる培地は、例えば、ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質が添加された無血清培地又は血清培地（好ましくは、無血清培地）が挙げられる。無血清培地、血清培地は上述の通り準備することができる。

ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質の濃度は、網膜系細胞への分化を誘導可能な濃度であればよい。例えばヒトＢＭＰ４タンパク質の場合は、約０．０１ｎＭ～約１μＭ、好ましくは約０．１ｎＭ～約１００ｎＭ、より好ましくは約１ｎＭ～約１０ｎＭ、さらに好ましくは約１．５ｎＭ（５５ｎｇ／ｍＬ）の濃度となるように培地に添加する。

ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質は、工程（Ａ）の浮遊培養開始から約２４時間後以降に添加されていればよく、浮遊培養開始後数日以内（例えば、１５日以内）に培地に添加してもよい。好ましくは、ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質は、浮遊培養開始後１日目～１５日目までの間、より好ましくは１日目～９日目までの間、最も好ましくは３日目に培地に添加する。

具体的な態様として、例えば、工程（Ｂ）の浮遊培養開始後１～９日目、好ましくは１～３日目に、培地の一部又は全部をＢＭＰ４を含む培地に交換し、ＢＭＰ４の終濃度を約１～１０ ｎＭに調製し、ＢＭＰ４の存在下で例えば１～１２日、好ましくは２～９日、さらに好ましくは２～５日間培養することができる。ここにおいて、ＢＭＰ４の濃度を、同一濃度を維持すべく、１回若しくは２回程度培地の一部又は全部をＢＭＰ４を含む培地に交換することができる。又はＢＭＰ４の濃度を段階的に減じることもできる。

上記工程（Ａ）～工程（Ｃ）における培養温度、ＣＯ_２濃度等の培養条件は適宜設定できる。培養温度は、例えば約３０℃～約４０℃、好ましくは約３７℃である。またＣＯ_２濃度は、例えば約１％～約１０％、好ましくは約５％である。

上記工程（Ｃ）における培養期間を変動させることによって、神経網膜の細胞凝集体に含まれる網膜系細胞として、様々な分化段階の網膜系細胞を製造することができる。すなわち、未成熟な網膜系細胞（例：網膜前駆細胞、視細胞前駆細胞）と成熟した網膜系細胞（例：視細胞）とを様々な割合で含む、神経網膜の細胞凝集体中の網膜系細胞を製造することができる。工程（Ｃ）の培養期間を延ばすことによって、成熟した網膜系細胞の割合を増やすことができる。

上記工程（Ｂ）及び／又は工程（Ｃ）は、ＷＯ２０１７／１８３７３２に開示された方法を使用することもできる。すなわち、工程（Ｂ）及び／又は工程（Ｃ）において、Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質をさらに含む培地で浮遊培養し、神経網膜の細胞凝集体を形成することができる。

工程（Ｂ）及び／又は工程（Ｃ）に用いる、Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質としては、Ｗｎｔにより媒介されるシグナル伝達を抑制し得るものである限り特に限定されず、タンパク質、核酸、低分子化合物等のいずれであってもよい。Ｗｎｔにより媒介されるシグナルは、Ｆｒｉｚｚｌｅｄ（Ｆｚ）及びＬＲＰ５／６（ｌｏｗ－ｄｅｎｓｉｔｙ ｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎ ｒｅｃｅｐｔｏｒ－ｒｅｌａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ５／６）のヘテロ二量体として存在するＷｎｔ受容体を介して伝達される。Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質としては、例えば、Ｗｎｔ又はＷｎｔ受容体に直接作用する物質（抗Ｗｎｔ中和抗体、抗Ｗｎｔ受容体中和抗体等）、Ｗｎｔ又はＷｎｔ受容体をコードする遺伝子の発現を抑制する物質（例えばアンチセンスオリゴヌクレオチド、ｓｉＲＮＡ等）、Ｗｎｔ受容体とＷｎｔの結合を阻害する物質（可溶型Ｗｎｔ受容体、ドミナントネガティブＷｎｔ受容体等、Ｗｎｔアンタゴニスト、Ｄｋｋ１、Ｃｅｒｂｅｒｕｓタンパク質等）、Ｗｎｔ受容体によるシグナル伝達に起因する生理活性を阻害する物質［ＣＫＩ－７（Ｎ－（２－アミノエチル）－５－クロロイソキノリン－８－スルホンアミド）、Ｄ４４７６（４－［４－（２，３－ジヒドロ－１，４－ベンゾジオキシン－６－イル）－５－（２－ピリジニル）－１Ｈ－イミダゾール－２－イル］ベンズアミド）、ＩＷＲ－１－ｅｎｄｏ （ＩＷＲ１ｅ） （４－［（３ａＲ，４Ｓ，７Ｒ，７ａＳ）－１，３，３ａ，４，７，７ａ－ヘキサヒドロ－１，３－ジオキソ－４，７－メタノ－２Ｈ－イソインドール－２－イル］－Ｎ－８－キノリニル－ベンズアミド）、並びに、ＩＷＰ－２（Ｎ－（６－メチル－２－ベンゾチアゾリル）－２－［（３，４，６，７－テトラヒドロ－４－オキソ－３－フェニルチエノ［３，２－ｄ］ピリミジン－２－イル）チオ］アセタミド）等の低分子化合物等］等が挙げられるが、これらに限定されない。Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質として、これらを一種又は二種以上含んでいてもよい。ＣＫＩ－７、Ｄ４４７６、ＩＷＲ－１－ｅｎｄｏ （ＩＷＲ１ｅ）、ＩＷＰ－２等は公知のＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質であり、市販品等を適宜入手可能である。Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質として好ましくはＩＷＲ１ｅが用いられる。

工程（Ｂ）におけるＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質の濃度は、良好な細胞凝集体の形成を誘導可能な濃度であればよい。例えばＩＷＲ－１－ｅｎｄｏの場合は、約０．１μＭから約１００μＭ、好ましくは約０．３μＭから約３０μＭ、より好ましくは約１μＭから約１０μＭ、更に好ましくは約３μＭの濃度となるように培地に添加する。ＩＷＲ－１－ｅｎｄｏ以外のＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質を用いる場合には、上記ＩＷＲ－１－ｅｎｄｏの濃度と同等のＷｎｔシグナル伝達経路阻害活性を示す濃度で用いられることが望ましい。

工程（Ｂ）において、Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質を培地に添加するタイミングは、早い方が好ましい。Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質は、工程（Ｂ）における浮遊培養開始から、通常６日以内、好ましくは３日以内、より好ましくは１日以内、より好ましくは１２時間以内、更に好ましくは工程（Ｂ）における浮遊培養開始時に、培地に添加される。具体的には、例えば、Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質を添加した基礎培地の添加や、該基礎培地への一部若しくは全部の培地交換を行う事ができる。工程（Ａ）で得られた細胞を、工程（Ｂ）においてＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質に作用させる期間は特に限定されないが、好ましくは、工程（Ｂ）における浮遊培養開始時に培地へ添加した後、工程（Ｂ）終了時（ＢＭＰシグナル伝達経路作用物質添加直前）まで作用させる。更に好ましくは、後述する通り、工程（Ｂ）終了後（すなわち工程（Ｃ）の期間中）も、継続してＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質に曝露させる。一態様としては、後述する通り、工程（Ｂ）終了後（すなわち工程（Ｃ）の期間中）も、継続してＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質に作用させ、網膜組織が形成されるまで作用させてもよい。

工程（Ｃ）において、Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質としては、前述のＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質のいずれかを用いる事ができるが、好ましくは、工程（Ｂ）で用いたＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質と同一の種類のものを工程（Ｃ）において使用する。

工程（Ｃ）におけるＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質の濃度は、網膜前駆細胞及び網膜組織を誘導可能な濃度であればよい。例えばＩＷＲ－１－ｅｎｄｏの場合は、約０．１μＭから約１００μＭ、好ましくは約０．３μＭから約３０μＭ、より好ましくは約１μＭから約１０μＭ、更に好ましくは約３μＭの濃度となるように培地に添加する。ＩＷＲ－１－ｅｎｄｏ以外のＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質を用いる場合には、上記ＩＷＲ－１－ｅｎｄｏの濃度と同等のＷｎｔシグナル伝達経路阻害活性を示す濃度で用いられることが望ましい。工程（Ｃ）の培地中のＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質の濃度は、工程（Ｂ）の培地中のＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質の濃度を１００としたとき、好ましくは５０～１５０、より好ましくは８０～１２０、更に好ましくは９０～１１０であり、工程（Ｂ）の培地中のＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質の濃度と同等であることが、より好ましい。

Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質の培地への添加時期は、網膜系細胞若しくは網膜組織を含む凝集体形成を達成できる範囲で特に限定されないが、早ければ早い方が好ましい。好ましくは、工程（Ｃ）開始時にＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質が培地に添加される。より好ましくは、工程（Ｂ）においてＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質が添加された後、工程（Ｃ）においても継続して（即ち、工程（Ｂ）の開始時から）培地中に含まれる。更に好ましくは、工程（Ｂ）の浮遊培養開始時にＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質が添加された後、工程（Ｃ）においても継続して培地中に含まれる。例えば、工程（Ｂ）で得られた培養物（Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質を含む培地中の凝集体の懸濁液）にＢＭＰシグナル伝達作用物質（例、ＢＭＰ４）を添加すればよい。

Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質に作用させる期間は、特に限定されないが、好ましくは、工程（Ｂ）における浮遊培養開始時にＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質が添加される場合において、工程（Ｂ）における浮遊培養開始時を起算点として、２日間から３０日間、より好ましくは６日間から２０日間、８日間から１８日間、１０日間から１８日間、又は１０日間から１７日間（例えば、１０日間）である。別の態様において、Ｗｎｔシグナル伝達経路阻害物質に作用させる期間は、工程（Ｂ）における浮遊培養開始時にＷｎｔシグナル伝達経路阻害物質が添加される場合において、工程（Ｂ）における浮遊培養開始時を起算点として、好ましくは３日間から１５日間（例えば、５日間、６日間、７日間）であり、より好ましくは６日間から１０日間（例えば、６日間）である。

上述した方法で得た神経網膜の細胞凝集体をＷｎｔシグナル伝達経路作用物質、及び／又は、ＦＧＦシグナル伝達経路阻害物質を含む無血清培地又は血清培地中で３日間から６日間程度の期間培養（工程（Ｄ））後、Ｗｎｔシグナル伝達経路作用物質及びＦＧＦシグナル伝達経路阻害物質を含まない無血清培地又は血清培地中で３０日間～６０日間程度培養する（工程（Ｅ））ことによって、毛様体周縁部様構造体を含む神経網膜を製造することもできる。

一態様として、工程（Ａ）～（Ｃ）で得られた神経網膜の細胞凝集体であって、工程（Ｂ）の浮遊培養開始後６～３０日目、１０～２０日目（１０日目、１１日目、１２日目、１３日目、１４日目、１５日目、１６日目、１７日目、１８日目、１９日目又は２０日目）の神経網膜の細胞凝集体から、上記工程（Ｄ）及び工程（Ｅ）により、毛様体周縁部様構造体を含む神経網膜を製造できる。

Ｗｎｔシグナル伝達経路作用物質としては、Ｗｎｔによって媒介されるシグナル伝達を増強し得るものである限り特に限定されない。具体的なＷｎｔシグナル伝達経路作用物質としては、例えば、ＧＳＫ３β阻害剤（例えば、６－Ｂｒｏｍｏｉｎｄｉｒｕｂｉｎ－３’－ｏｘｉｍｅ（ＢＩＯ）、ＣＨＩＲ９９０２１、Ｋｅｎｐａｕｌｌｏｎｅ）を挙げることができる。例えばＣＨＩＲ９９０２１の場合には、約０．１μＭ～約１００μＭ、好ましくは約１μＭ～約３０μＭの範囲を挙げることができる。

ＦＧＦシグナル伝達経路阻害物質としては、ＦＧＦによって媒介されるシグナル伝達を阻害できるものである限り特に限定されない。ＦＧＦシグナル伝達経路阻害物質としては、例えば、ＳＵ－５４０２、ＡＺＤ４５４７、ＢＧＪ３９８等が挙げられる。例えばＳＵ－５４０２の場合、約０．１μＭ～約１００μＭ、好ましくは約１μＭ～約３０μＭ、より好ましくは約５μＭの濃度で添加する。

上述の方法によって、神経網膜の細胞凝集体を製造することができるが、これらに限定されない。

（網膜色素上皮細胞）
網膜色素上皮細胞は、多能性幹細胞由来であることが好ましい。多能性幹細胞から網膜色素上皮細胞を調製する方法はＷＯ２０１２／１７３２０７号、ＷＯ２０１５／０５３３７５号、ＷＯ２０１５／０５３３７６号、ＷＯ２０１５／０６８５０５号、ＷＯ２０１７／０４３６０５、Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｒｅｐｏｒｔｓ， ２（２）， ２０５－２１８ （２０１４）及びＣｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ， １０（６）， ７７１－７８５ （２０１２）に開示されている方法が挙げられるが、特に限定されない。また、上述したＷＯ２０１６／０６３９８５に記載の方法を改良することで網膜色素上皮細胞の凝集体を調製することも可能である。網膜色素上皮細胞は、細胞シート又は細胞懸濁液として調製されてもよい。

ＷＯ２０１６／０６３９８５に記載の方法の改良法としては、上述した方法のうち、多能性幹細胞を、フィーダー細胞非存在下で、１）分化誘導一日前にＴＧＦβファミリーシグナル伝達経路阻害物質及びソニック・ヘッジホッグシグナル伝達経路作用物質で処理し、２）分化誘導開始時にソニック・ヘッジホッグシグナル伝達経路作用物質を処理しない条件で培養する。その後、上述した工程（Ｂ）及び（Ｃ）を行う。さらに、上記工程（Ｄ）の開始時期を早める方が好ましい。具体的には、工程（Ｂ）の浮遊培養開始９日前後（例：７日、８日、９日、１０日、１１日後）に工程（Ｄ）を開始する。その後、上述した工程（Ｅ）を実施すればよい。

網膜色素上皮細胞は、神経網膜の細胞凝集体と接触させる前に、多角形又は敷石状の細胞形態を有するまでさらに培養してもよい。この場合の培地は、特に限定されないが、網膜色素上皮細胞の維持培地（以下、ＲＰＥ維持培地と記載することもある。）に交換し、さらに培養することもできる。それにより、さらにはっきりとメラニン色素沈着細胞群や基底膜に接着する多角扁平状の形態を有する細胞群を観察することができる。ＲＰＥ維持培地による培養は、網膜色素上皮細胞のコロニーが形成される限り限定されないが、例えば３日に１回以上の頻度で全量培地交換を行いながら５～２０日間程度培養を行う。当業者であれば、当該形態を確認しながら、培養期間を容易に設定することができる。網膜色素上皮細胞の維持培地は、例えばＩＯＶＳ， Ｍａｒｃｈ ２００４， Ｖｏｌ． ４５， Ｎｏ．３、ＭａｓａｔｏｓｈｉＨａｒｕｔａら、ＩＯＶＳ， Ｎｏｖｅｍｂｅｒ ２０１１， Ｖｏｌ． ５２， Ｎｏ． １２、Ｏｋａｍｏｔｏら、Ｃｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ １２２ （１７）、Ｆｕｍｉｔａｋａ Ｏｓａｋａｄａｒら、Ｆｅｂｒｕａｒｙ ２００８， Ｖｏｌ． ４９， Ｎｏ． ２、Ｇａｍｍらに記載のものを使用することができる。

当業者であれば、上述の方法により得られた網膜色素上皮細胞の凝集体又は細胞シートから、ピペッティング等の常法により網膜色素上皮細胞の細胞懸濁液を調製する事もできる。例えば、ＰＢＳ（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）等で凝集体又は細胞シートを洗浄した後、Ｔｒｙｐｌｅ ｓｅｌｅｃｔ（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）等の細胞解離酵素により１５～３０分間程度処理し、ピペッティングすることで細胞懸濁液を調製することができる。セルストレーナー（Ｃｅｌｌ ｓｔｒａｉｎｅｒ）等のメッシュを通してもよい。

「細胞シート」とは、少なくとも二次元の方向に生物学的結合を有する単一又は複数の細胞から構成される単層又は重層の構造体をいう。細胞シートは、接着培養した細胞又は細胞凝集体から、ピンセット、ナイフ、ハサミ等を用いて切り出して作製することができる。

「細胞懸濁液」とは、同一種類の又は異なる種類の複数の細胞を浮遊状態で含む溶液を意味する。好ましくは、媒体中に存在する細胞の大多数（例えば、５０％以上、６０％以上、７０％以上、８０％以上、９０％以上又は９５％以上）が、相互に解離し、持続的な物理的接触をすることなく存在している状態をいう。その他の一部の細胞は、細胞凝集体等として存在していてもよい。

網膜色素上皮細胞の細胞懸濁液は、例えば、細胞シートや細胞凝集体として製造された網膜色素上皮細胞を、単一細胞に分散させることにより調製することができる。分散方法は特に限定されないが、当業者に周知の方法、例えば、細胞解離酵素（例：Ｔｒｙｐｌｅ（商標）ｓｅｌｅｃｔ、サーモフィッシャー社）等による化学的処理や、セルスクレイパー等を用いた物理的処理によって分散することができる。

（接触工程）
神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞とを接触させる方法は、神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞が接着可能な限り特に限定されないが、例えば、神経網膜の細胞凝集体を網膜色素上皮細胞の懸濁液と共に培養し、プレートの底に沈んだ神経網膜の細胞凝集体に網膜色素上皮細胞を接着させる方法、又は、網膜色素上皮細胞シートに神経網膜の細胞凝集体を接触させる方法、さらに、浸透圧差を利用する方法等が挙げられる。

神経網膜の細胞凝集体を網膜色素上皮細胞の細胞懸濁液と共に培養し、プレート等の培養容器の底に沈んだ神経網膜の細胞凝集体に網膜色素上皮細胞を接着させる方法としては、網膜色素上皮細胞が前記培養容器に接着して、それによって細胞凝集体との接着が阻害されないように、低接着性の容器中で行うことが好ましい。使用する容器としては、ウェルの小さなプレート（例えば、ウェルの底面積が平底換算で０．１～２．０ｃｍ^２程度のプレート）やマイクロポア等を用いて小さいスペースに細胞を閉じ込める方法、小さな遠心チューブ等が挙げられる。ウェルの小さなプレートとして、例えば２４ウェルプレート（面積が平底換算で１．８８ｃｍ^２程度）、４８ウェルプレート（面積が平底換算で１．０ｃｍ^２程度）、９６ウェルプレート（面積が平底換算で０．３５ｃｍ^２程度）、３８４ウェルプレートが挙げられる。ウェルの小さなプレートの形状として、ウェルを横から見た時の底面の形状としては、平底構造でも外周部が高く、内凸部がくぼんだ構造でもよい。底面の形状としては、例えば、Ｕ底、Ｖ底、Ｍ底、平底が挙げられる。ウェルの小さなプレートの底面は細胞非接着面の底面、好ましくはＰｒｉｍｅ ｓｕｒｆａｃｅ（住友ベークライト社製）等が好ましい。細胞非接着性の培養容器としては、培養器の表面が、細胞との接着性を低下させる目的で人工的に処理（例えば、ＭＰＣポリマー等の超親水性処理、タンパク質低吸着処理等）されたもの等を使用できる。

また、バイオリアクター等を用いて撹拌培養で接着させる方法も挙げられる。

また、神経網膜の細胞凝集体表面の全体に網膜色素上皮細胞が接着するように、神経網膜の細胞凝集体をウェルの底に沈殿させて接着させる方法で培養することが好ましい。

網膜色素上皮細胞の細胞懸濁液の濃度及び接着させるための培養の期間は、ＲＰＥ細胞の接着、増殖を確認することにより当業者であれば容易に設定することができる。網膜色素上皮細胞が神経網膜の細胞凝集体の表面に接着していることは、例えば、顕微鏡観察や免疫染色により確認できる。また、神経網膜の細胞凝集体の表面に接着した網膜色素上皮細胞が増殖していることは、例えば、顕微鏡観察や免疫染色により確認できる。網膜色素上皮細胞の細胞懸濁液の濃度は、具体的には、１ウェルあたり１×１０⁴細胞以上、好ましくは１×１０^５細胞以上である。接着させるための培養の期間は、１日間～６０日間、好ましくは３日間～３０日間である。

神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞とを接触させる前に、神経網膜の細胞凝集体を後述する接着因子（例：細胞外マトリクス）でコーティングしておくことが好ましい。神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞の培養を、接着因子の存在下で行ってもよい。

網膜色素上皮細胞シートに神経網膜の細胞凝集体又はその一部である細胞シートを接触させる方法としては、接着培養している網膜色素上皮細胞シート上に神経網膜の細胞凝集体又は神経網膜の細胞凝集体を切り出して得られた神経網膜の細胞シートを自重で又はメッシュを重ねること等を用いて沈ませて張り付ける方法が挙げられる。

神経網膜の細胞シートを接触させる前に、網膜色素上皮細胞シート上に後述する接着因子（例：細胞外マトリクス）をコーティングすることが好ましい。

浸透圧差を利用する方法は、例えば、メチルセルロースを含む媒体中において、神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞を接触させ培養することにより接着させる。具体的には、０．１％～２０％（例：３％）のメチルセルロースを含む培地中に神経網膜を含む神経網膜の細胞凝集体を浮かべ、１０００ｃｅｌｌｓ／μＬから１００００００ｃｅｌｌｓ／μＬになる様に培地に懸濁させた網膜色素上皮細胞を少量（１μＬ～１０μＬ、例：３μＬ）、メチルセルロースを含む培地中の神経網膜の細胞凝集体に向かってゆっくり吐き出す。本操作により、神経網膜の細胞凝集体の周囲に網膜色素上皮細胞を含む培地の液滴が形成され、一定時間（例：１時間程度）培養することにより、メチルセルロースを含む培地との浸透圧の違いにより、液滴中の培地のみが外部の液体に拡散し、網膜色素上皮細胞が神経網膜の細胞凝集体の周りに凝集することにより接着が促進される。メチルセルロースの代わりに、ハイドロゲル等を使用することもできる。

また、上述した３つの接触させる方法において使用する媒体としては、特に限定されないが、例えば、網膜系細胞、網膜色素上皮細胞又は神経網膜の培養に用いられる培地（例：ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地、Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地、これらの混合培地、ＲＰＥ維持培地等）が挙げられる。また、後述する接着因子を含む方が好ましい。

接触工程において、接着因子の存在下で接触させることが好ましい。接着因子とは、細胞同士を接着させる作用を有している物質を意味し、特に限定はないが、例えば、上述した細胞外マトリクスや人工的なハイドロゲル等が挙げられる。接着因子は、単離された単一の物質である必要はなく、例えばマトリゲル、視細胞間マトリクス、血清等の生体や細胞からの調製物も含まれる。マトリゲルは、Ｅｎｇｅｌｂｒｅｔｈ Ｈｏｌｍ Ｓｗａｒｎ（ＥＨＳ）マウス肉腫由来の基底膜調製物である。マトリゲルは、例えばＵＳ ｐａｔｅｎｔ Ｎｏ．４８２９０００に開示された方法により調製することができ、市販のものを購入することもできる。マトリゲルの主成分はラミニン、ＩＶ型コラーゲン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン及びエンタクチンである。視細胞間マトリクスは、生体網膜における視細胞等の網膜系細胞の間に存在する細胞外マトリクスの総称であり、例えばヒアルロン酸が含まれる。視細胞間マトリクスは、当業者であれば、例えば網膜を蒸留水中に置き、膨張させて分離するという方法により、生体網膜から採取することが可能であり、市販のものを購入することもできる。接着因子としては、細胞外マトリクスであることが好ましく、さらに、細胞外マトリクスが、ヒアルロン酸、ラミニン、ＩＶ型コラーゲン、ヘパラン硫酸プロテオグリカン、エンタクチンからなる群から選択される１又は複数の細胞外マトリクスであることが好ましい。また、細胞外マトリクスと共に、ＥＧＦ等の成長因子等の他の成分の存在下で接触させてもよい。市販の細胞外マトリクスとしては、マトリゲル（登録商標）、ｉＭａｔｒｉｘ５１１（登録商標）等が挙げられる。

接触工程における細胞外マトリクスの濃度は、神経網膜の細胞凝集体の大きさや網膜色素上皮細胞の細胞数により異なるが、当業者であればＲＰＥ細胞の接着や増殖を確認することにより容易に設定可能である。例えば、Ｍａｔｒｉｇｅｌであれば、既製品（ベクトンディッキンソン（ＢＤ）社）を２００～１００００倍希釈した濃度、ｉＭａｔｒｉｘ５１１であれば、０．１～５ｕｇ／ｍｌの濃度で添加するのが好ましい。

具体的には、接着因子を含む上記媒体中で、神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞とを接着させるための培養を行えばよい。上述した神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞とを接着させるための培養期間中、継続して接着因子を含む上記媒体中で培養してもよいし、接着因子を含む上記媒体中で一定期間（例：１日～１０日間）培養後、接着因子を含まない媒体に交換して培養を継続してもよい。

神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞を接着させるための培養を行う前に、神経網膜の細胞凝集体又は網膜色素上皮細胞シートを接着因子でコーティングしてもよい。具体的には、接着因子を含む上記媒体中で、神経網膜の細胞凝集体又は網膜色素上皮細胞シートを培養すればよい。当業者であれば培養時間は適宜設定可能であるが、１０分～５時間（例えば、１０分～６０分）程度培養すればよい。培養後、ＰＢＳ等の媒体により洗浄してもよい。

接触させる神経網膜を含む神経網膜の細胞凝集体及び網膜色素上皮細胞について、上述の製造方法における異なる培養日数の神経網膜の細胞凝集体及び網膜色素上皮細胞を用いる場合、製造を開始する日をずらせばよい。網膜色素上皮細胞が凝集体又は細胞シートである場合、神経網膜の細胞凝集体と接触させる前に、該凝集体又は細胞シートに対して細胞解離酵素処理及び／又はピペッティング操作を行い、細胞を解離させて、網膜色素上皮細胞の細胞懸濁液にしてから接触させればよい。

神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞とを接触させることによって、両者が接着して、コア部と被覆部とを備えるスフェア状細胞凝集体を形成する。神経網膜の細胞凝集体と網膜色素上皮細胞とを接触させた後に、両者がより接着するように、網膜色素上皮細胞が神経網膜の細胞凝集体の表面全体を覆うように、及び／又は、網膜色素上皮細胞が多角形又は敷石状の細胞形態を有するように、さらに培養することが好ましい。使用する培地は、上記目的を達成できる範囲において特に限定されないが、網膜系細胞、網膜色素上皮細胞又は神経網膜の培養に用いられる培地（例：ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地、Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地、これらの混合培地、ＲＰＥ維持培地等）が挙げられる。また、当業者であれば、顕微鏡下で細胞の接着の状態及び神経網膜の細胞凝集体表面における網膜色素上皮細胞の存在割合を確認し、また、網膜色素上皮細胞が多角形又は敷石状の細胞形態を示していることを確認することができ、当該形状を確認することで培養日数を設定することができる。上述した接触工程を実施後、例えば、１日～１００日（５日～５０日）程度の範囲で培養すればよい。

〔毒性又は薬効評価用試薬及び被験物質の毒性又は薬効評価方法〕
本発明の一実施形態の被験物質の毒性又は薬効評価用試薬は、本発明の一実施形態のスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部を含有してなり、本発明の一実施形態の被験物質の毒性又は薬効評価方法は、本発明の一実施形態のスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部に被験物質を接触させ、被験物質が該スフェア状細胞凝集体又は該スフェア状細胞凝集体に含まれる細胞に及ぼす影響を検定することを含む。

例えば、網膜組織の障害に基づく疾患、特に遺伝性の障害に基づく疾患の人患者から、ｉＰＳ細胞を作製し、このｉＰＳ細胞を用いて本発明の方法により、スフェア状細胞凝集体を製造する。スフェア状細胞凝集体は、その患者が患っている疾患の原因となる網膜組織の障害をインビトロで再現し得る。そこで、本発明は、本発明の製造方法により製造されるスフェア状細胞凝集体に被験物質を接触させ、被験物質が該スフェア状細胞凝集体又は該スフェア状細胞凝集体に含まれる細胞に及ぼす影響を検討することを含む、該物質の毒性又は薬効評価方法を提供する。

〔治療薬、治療方法及び医薬組成物〕
本発明の一実施形態の治療薬は、スフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部を含有してなる、網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患（特に視細胞及び網膜色素上皮細胞が同時に障害又は損傷されている重症例）の治療薬である。本発明の一実施形態の治療方法は、スフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部の有効量を、移植を必要とする対象に移植することを含む、網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患（特に視細胞及び網膜色素上皮細胞が同時に障害又は損傷されている重症例）の治療方法である。本発明の一実施形態の医薬組成物は、本発明に係るスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部を有効成分として含有する。本発明の一実施形態の医薬組成物は、網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患（特に視細胞及び網膜色素上皮細胞が同時に障害又は損傷されている重症例）の治療薬として有用である。

網膜組織の障害に基づく疾患としては、例えば、眼科疾患である黄斑変性症、加齢黄斑変性、網膜色素変性、緑内障、角膜疾患、網膜剥離、中心性漿液性網脈絡膜症、錐体ジストロフィー、錐体桿体ジストロフィー等が挙げられる。網膜組織の損傷状態としては、例えは、視細胞が変性死している状態等が挙げられる。

本発明の一実施形態の治療薬又は医薬組成物は、スフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部の有効量、及び医薬として許容される担体を含み得る。移植用スフェア状細胞凝集体の有効量は、投与の目的、投与方法、投与対象の状況（性別、年齢、体重、病状等）によって異なるが、例えば、細胞数として、１×１０^５個、１×１０^６個又は１×１０^７個とすることができる。

医薬として許容される担体としては、生理的な水性溶媒（生理食塩水、緩衝液、無血清培地等）を用いることができる。必要に応じて、移植医療において、移植する組織又は細胞を含む医薬に、通常使用される保存剤、安定剤、還元剤、等張化剤等を配合させてもよい。

本発明の一実施形態の治療薬又は医薬組成物は、本発明に係るスフェア状細胞凝集体又は当該細胞凝集体の一部を、適切な生理的な水性溶媒で懸濁することによって、細胞懸濁液として製造することができる。必要であれば、凍結保存剤を添加して、凍結保存し、使用時に解凍し、緩衝液で洗浄し、移植医療に用いてもよい。

一態様において、本発明のスフェア状細胞凝集体を、ピンセット、ナイフ、ハサミ等を用いて適切な大きさに細切し、凝集体の一部を移植するために切り出して利用できる。切り出し後の形状は特に限定はないが、細胞シートが挙げられる。

〔スフェア状細胞凝集体の一部及びその製造方法〕
本発明の一実施形態のスフェア状細胞凝集体の一部は、本発明のスフェア状細胞凝集体の一部であり、例えば本発明のスフェア状細胞凝集体から物理的に切り出すことによって得ることができる。スフェア状細胞凝集体の一部の形状は問わず、スフェア状でなくてもよい。スフェア状細胞凝集体の一部は、神経網膜とその表面の少なくとも一部を連続的に又は断続的に覆う、互いに接触する網膜色素上皮細胞を含む被覆とを備える細胞凝集体であり、例えば網膜色素上皮細胞及び神経網膜を含む細胞シートであってよい。

本発明の一実施形態のスフェア状細胞凝集体の一部の製造方法は、本発明のスフェア状細胞凝集体の一部を物理的に切り出す工程を含む。切り出す工程は、通常の方法、例えば、ピンセット、ナイフ、ハサミ等を用いて適切な大きさに細切する方法により実行することができる。

以下に実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明は何らこれらに限定されるものではない。

＜実施例１ 網膜色素上皮（ＲＰＥ）細胞と神経網膜（ＮＲ）の作り分け＞
Ｃｒｘ：：Ｖｅｎｕｓレポーター遺伝子を持つように遺伝子改変したヒトＥＳ細胞（Ｋｈ－ＥＳ１株、Ｃｅｌｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ，１０（６），７７１－７８５，（２０１２）を、「Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｒｅｐｏｒｔｓ，４，３５９４（２０１４）」に記載の方法に準じてフィーダーフリー条件下で培養した。フィーダーフリー培地としてはＳｔｅｍＦｉｔ培地（商品名：ＡＫ０３Ｎ、味の素社製）、フィーダー細胞に代わる足場としてＬａｍｉｎｉｎ５１１－Ｅ８（商品名、ニッピ社製）を用いた。

具体的なヒトＥＳ細胞の維持培養操作は、以下の様に行った。まず、サブコンフレント（培養面積の６割が細胞に覆われる程度）になったヒトＥＳ細胞（ＫｈＥＳ－１株）を、ＰＢＳにて洗浄後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔ（商品名、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）を用いて単一細胞へ分散した。その後、単一細胞へ分散されたヒトＥＳ細胞を、Ｌａｍｉｎｉｎ５１１－Ｅ８にてコートしたプラスチック培養ディッシュに播種し、Ｙ２７６３２（ＲＯＣＫ阻害物質、１０μＭ）存在下、ＳｔｅｍＦｉｔ培地にてフィーダーフリー条件下で培養した。上記プラスチック培養ディッシュとして、６ウェルプレート（イワキ社製、細胞培養用、培養面積９．４ｃｍ^２）を用いた場合、上記単一細胞へ分散されたヒトＥＳ細胞の播種細胞数は１ウェルあたり１．２×１０^４細胞とした。播種した１日後に、Ｙ２７６３２を含まないＳｔｅｍＦｉｔ培地に交換した。以降、１～２日ごとに一回Ｙ２７６３２を含まないＳｔｅｍＦｉｔ培地にて培地交換した。その後、播種した６日後に、サブコンフレントになる１日前まで培養した。

当該サブコンフレント１日前のヒトＥＳ細胞を、次の二つの条件、（１）ＳＡＧ（Ｓｈｈシグナル伝達経路作用物質、３００ｎＭ）の存在下、又は（２）ＳＡＧ及びＳＢ４３１５４２（ＴＧＦβシグナル伝達経路阻害物質、５μＭ）の存在下で、１日間フィーダーフリー条件下で培養した（以下、Ｐｒｅｃｏｎｄｉｔｉｏｎ処理と記載する場合もある）。

Ｐｒｅｃｏｎｄｉｔｉｏｎ処理したヒトＥＳ細胞をＰＢＳにて洗浄後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて細胞分散液処理し、さらにピペッティング操作によって単一細胞に分散した後、単一細胞に分散されたヒトＥＳ細胞を非細胞接着性の９６ウェル培養プレート（商品名：ＰｒｉｍｅＳｕｒｆａｃｅ ９６ウェルＶ底プレート、住友ベークライト社製）の１ウェルあたり１．２×１０^４細胞になるように１００μＬの無血清培地に浮遊させ、３７℃、５％ＣＯ_２で浮遊培養した。その際の無血清培地（ｇｆＣＤＭ＋ＫＳＲ）には、Ｆ－１２培地とＩＭＤＭ培地との１：１混合液に１０％ＫＳＲ、４５０μＭ １－モノチオグリセロール、１×Ｃｈｅｍｉｃａｌｌｙ ｄｅｆｉｎｅｄ ｌｉｐｉｄ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｅを添加した無血清培地を用いた。

浮遊培養開始時（浮遊培養開始後０日目）に、上記無血清培地にＹ２７６３２（ＲＯＣＫ阻害物質、終濃度２０μＭ）を添加した。また、同時にＳＡＧ（Ｓｈｈシグナル伝達経路作用物質、３０ｎＭ）を添加有り無しで検討した。浮遊培養開始後３日目に、Ｙ２７６３２及びＳＡＧを含まず、ヒト組み換えＢＭＰ４（商品名：Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｈｕｍａｎ ＢＭＰ－４、Ｒ＆Ｄ社製）を含む培地を用いて、外来性のヒト組み換えＢＭＰ４を終濃度１．５ｎＭで含む培地を５０μＬ添加した。

このようにして調製された細胞を浮遊培養開始後３、６、９、１５、及び１８日目に、無血清培地（ｇｆＣＤＭ＋ＫＳＲ）で半量交換した。当該浮遊培養開始後１５又は１８日目の凝集体を、９０ｍｍの低接着培養皿（住友ベークライト社製）に移し、Ｗｎｔシグナル伝達経路作用物質（ＣＨＩＲ９９０２１、３μＭ）及びＦＧＦシグナル伝達経路阻害物質（ＳＵ５４０２、５μＭ）を含む無血清培地（ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地に１％Ｎ２ Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔが添加された培地）で３７℃、５％ＣＯ_２で、３～４日間培養した。その後、９０ｍｍの低接着培養皿（住友ベークライト社製）にて、Ｗｎｔシグナル伝達経路作用物質及びＦＧＦシグナル伝達経路阻害物質を含まない血清培地（ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）に１０％ウシ胎児血清、１％ Ｎ２ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）、Ｔａｕｒｉｎが添加された培地：以下、ＮｕｃＴ０培地と記載する場合がある）で長期培養した。２～４日に１回上記血清培地にて半量培地交換した。浮遊培養開始後３８日目に、顕微鏡及び蛍光顕微鏡を用いて、観察した（図１）。

その結果、ＳＡＧ及びＳＢ添加によるＰｒｅｃｏｎｄｉｔｉｏｎ処理を行い、分化誘導開始時にＳＡＧを添加しなかった場合、ＲＰＥの作製効率が良かった（図１Ｂ、Ｂ’）。上記以外の条件では、ＣＲＸ陽性の視細胞前駆細胞を有する神経網膜を含む細胞凝集体の作製効率が良かった（図１Ａ、Ａ’、Ｃ、Ｃ’、Ｄ、Ｄ’）。

＜実施例２ ＮＲとＲＰＥ細胞との接着１＞
実施例１のようにして作成されたＲＰＥ細胞とＮＲを、それぞれ浮遊培養開始後４０日目以降Ｗｎｔシグナル伝達経路作用物質及びＦＧＦシグナル伝達阻害物質を含まない血清培地（ＮｕｃＴ０培地とＮｕｃＴ２培地を１：３で混合した培地：以下、ＮｕｃＴ１培地と記載する場合がある。なお、ＮｕｃＴ２培地とは、Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ Ｍｅｄｉｕｍ（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）に１０％ＦＢＳ、Ｂ２７ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ ｗ／ｏ Ｖ．Ａ．（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）、Ｌ－Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ、Ｔａｕｒｉｎ、Ｔ３が添加された培地を意味する。）で５９日目まで長期培養した。当該浮遊培養開始後６０日目以降Ｗｎｔシグナル伝達経路作用物質及びＦＧＦシグナル伝達阻害物質を含まない血清培地（ＮｕｃＴ２培地）で長期培養した。

浮遊培養開始後８０～９０日目のＲＰＥ細胞及び５０～１２０日目のＮＲをそれぞれ用意し、それぞれ下記のように処理をした（図２Ａ）。
ＲＰＥ細胞：ＰＢＳ（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）で洗浄後、Ｔｒｙｐｌｅ ｓｅｌｅｃｔ（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）で酵素処理を１５～３０分間行い、ピペッティングすることでシングルセル化し、４０μｍのセルストレーナー（Ｃｅｌｌ ｓｔｒａｉｎｅｒ）に通した後、Ｎｕｃ培地に懸濁させた。
ＮＲ：ＮＲをチューブに回収し、ｉＭａｔｒｉｘ５１１（ニッピ社製）又はＭａｔｒｉｇｅｌ（ＢＤ社製）でコーティングを１５～６０分実施し、ＰＢＳで洗浄した。

上記のようにして調製したＮＲとＲＰＥ細胞を低接着のＰｒｉｍｅＳｕｒｆａｃｅ（登録商標）９６Ｖプレート（住友ベークライト社製）に播種した。播種１時間後に顕微鏡及び蛍光顕微鏡を用いて観察した。その結果、ＮＲの周りにシングルセル化されたＲＰＥ細胞がウェルの底に沈んで集まっていることが確認された（図２Ｂ、Ｂ’）。また、翌日にＰＢＳで洗浄して顕微鏡及び蛍光顕微鏡にて観察したところ、ＮＲの表面にＲＰＥ細胞が接着していることを確認した（図２Ｃ、Ｃ’、Ｄ、Ｄ’）。

接着後１日目、６日目、４５日目の経時変化を観察した。その結果、１日目で接着したＲＰＥ細胞が６日目では徐々に増殖してＮＲ表面を覆い始め、４５日目ではＮＲ表面を覆っていることが蛍光顕微鏡にて確認された（図３Ｅ、Ｆ、Ｇ）。また、４５日目ではＮＲ表面に接着しているＲＰＥ細胞は六角形構造を形成することも蛍光顕微鏡にて確認された（図３Ｈ、Ｈ’）

接着させた後５０日目ＮＲ－ＲＰＥ細胞の凝集塊を、４％ＰＦＡで固定し、凍結切片を作製した。これらの凍結切片に関し、ＭＩＴＦタンパク質について抗ＭＩＴＦ抗体（商品名：Ａｎｔｉ ＭＩＴＦ Ａｎｔｉｂｏｄｙ、ＥＸ ａｌｐｈａ社製）を用いて免疫染色を行った。これらの免疫染色された切片を、共焦点蛍光顕微鏡を用いて観察した。その結果、ＮＲとＲＰＥ細胞を接着させた凝集体ではＣＲＸ陽性の視細胞前駆細胞の表面にＭＩＴＦ陽性のＲＰＥ細胞が局在していることを確認した（図４Ｉ、Ｊ）。

これらの結果から、別々に作り分けたＲＰＥ細胞とＮＲを接着させ、ＮＲ上にＲＰＥ細胞が局在したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートが作製できることが分かった。

＜実施例３ ＮＲとＲＰＥ細胞との接着２＞
実施例１のようにして作製されたＲＰＥ細胞とＮＲを、それぞれ浮遊培養開始後４０日目以降Ｗｎｔシグナル伝達経路作用物質及びＦＧＦシグナル伝達阻害物質を含まない血清培地（ＮｕｃＴ０培地とＮｕｃＴ２培地を１：３で混合したＮｕｃＴ１培地で培養。ＮｕｃＴ２培地：Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ Ｍｅｄｉｕｍに１０％ＦＢＳ、Ｂ２７ ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ ｗ／ｏ Ｖ．Ａ．、Ｌ－Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ、Ｔａｕｒｉｎ、Ｔ３が添加された培地）で５９日目まで長期培養した。当該浮遊培養開始後６０日目以降Ｗｎｔシグナル伝達経路作用物質及びＦＧＦシグナル伝達阻害物質を含まない血清培地（ＮｕｃＴ２培地）で長期培養した。

３％メチルセルロース（Ｓｉｇｍａ ａｌｄｒｉｃｈ社製）入りの血清培地中に、浮遊培養開始後５０～１２０日目のＮＲを、ピペットを用いて添加し、浮遊させた。また、浮遊培養開始後８０～９０日目のＲＰＥ細胞の凝集体を１０個程度回収して、ＰＢＳで洗浄し、Ｔｒｙｐｌｅ ｓｅｌｅｃｔ（Ｔｈｅｒｍｏ ｆｉｓｈｅｒ社製）で酵素処理を１５～６０分間行い、ピペッティングすることでシングルセル化した。シングルセル化したＲＰＥ細胞を４０μｍのＣｅｌｌ ｓｔｒａｉｎｅｒ（Ｆａｌｃｏｎ社製）に通した後、８００ｒｐｍで遠心し、上清を除去した。培地を１０μＬ添加後、３μｌ回収し、３％メチルセルロース（Ｓｉｇｍａ ａｌｄｒｉｃｈ社製）入りの血清培地中、ＮＲに向けて吐き出した（図５Ａ、Ｂ）。１時間以内に顕微鏡及び蛍光顕微鏡で観察したところ、シングルセル化したＲＰＥ細胞がＮＲに付着していることを確認した（図６Ｃ、Ｃ’）。接着１３日後、顕微鏡及び蛍光顕微鏡にて観察したところ、ＮＲ上に接着していることを確認した（図６Ｄ、Ｄ’）。

これらの結果から、別々に作り分けたＲＰＥ細胞とＮＲをメチルセルロース入りの培地中に添加することでＲＰＥ細胞をＮＲ上に接着させることが可能であることが分かった。

＜実施例４：ＮＲ－ＲＰＥ細胞シートの移植及び生着確認＞
実施例２で作製したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートをＮｕｃ Ｔ２培地にてコンジュゲートさせてから５日間及び５０日間培養した（図７Ａ、Ａ’、Ｄ、Ｄ’）。上記培養したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートからＮＲとＲＰＥ細胞を同時に切り出した（図７Ｂ、Ｂ’、Ｃ、Ｃ’、Ｅ、Ｅ’、Ｆ、Ｆ’）。顕微鏡及び蛍光顕微鏡で観察したところ、外側から観察するとＲＰＥ細胞が接着していることが観察され、内側から観察すると、ＲＰＥ細胞はほとんど観察されずＣＲＸ：：Ｖｅｎｕｓの蛍光がよく確認できた。よって、ＮＲ－ＲＰＥ細胞シートにおいて極性をもって切り出すことができた。

上記のようにして切り出したＮＲ－ＲＰＥ細胞シートを、注射器を用いて視細胞変性モデルである網膜変性ラットの網膜下へ移植した。移植５か月以上後に眼組織をパラホルムアルデヒド固定（ＰＦＡ固定）してスクロース置換した。クライオスタットを用いて、組織切片を作製した（図８Ｇ、Ｇ’）。切片を顕微鏡及び蛍光顕微鏡下で観察したところ、ＨｏｓｔのＲＰＥ上にＲＰＥ層があり、その上にＣＲＸ：：Ｖｅｎｕｓ陽性の視細胞Ｒｏｓｅｔｔｅが確認された（図８Ｇ、Ｇ’）。

免疫染色によって、Ｒｈｏｄｏｐｓｉｎ抗体（商品名：Ａｎｔｉ ＲｅｔＰ１抗体、Ｓｉｇｍａ社製）を用いて、移植後のグラフトを評価した。また、ヒト細胞質マーカー特異的マウスモノクローナル抗体（商品名：Ｓｔｅｍ１２１、ＴａＫａＲａ社製）、抗ＲＰＥ６５抗体（商品名：ＲＰＥ６５ Ａｎｔｉｂｏｄｙ、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）を用いて、それぞれ、組織切片中のヒト細胞、ＲＰＥ細胞を染色し、移植後のグラフトを評価した。

染色した組織を、共焦点顕微鏡（商品名：ＴＣＳ ＳＰ８、ライカ社製）を用いて蛍光観察を行った。その結果、視細胞はＲｈｏｄｏｐｓｉｎ陽性であることがわかり、ＲＰＥ細胞と同時移植した視細胞においても、問題なく成熟することが分かった（図９Ｈ）。また、Ｓｔｅｍ１２１とＲＰＥ６５で染色した切片を観察したところ、下側のＲＰＥ６５陽性のＲＰＥ層はＳｔｅｍ１２１陰性であることから、ＨｏｓｔのＲＰＥ細胞であること、一方でその上側にあるＲＰＥ６５陽性のＲＰＥ層はＳｔｅｍ１２１陽性であったことから、Ｇｒａｆｔ由来のＲＰＥ層であることが分かった（図１０Ｉ）。また、Ｇｒａｆｔ由来のＲＰＥ層のすぐ上側にＣＲＸ：：Ｖｅｎｕｓ陽性の視細胞Ｒｏｓｅｔｔｅが観察された。

上記結果より、ＮＲ－ＲＰＥ細胞シートの同時移植では視細胞は成熟すること及び、ＮＲとＲＰＥ細胞は方向性をもって同時移植・生着が可能であることが示された。

Claims (17)

1. 神経網膜を含むコア部と、前記コア部の表面の少なくとも一部を連続的に又は断続的に覆う被覆部とを備える、スフェア状細胞凝集体であって、
   （１）前記神経網膜において、少なくとも視細胞層を含む神経網膜層が形成されており、前記視細胞層は少なくとも視細胞、視細胞前駆細胞及び網膜前駆細胞からなる群から選択される１以上の細胞を含み、前記視細胞層に含まれる細胞が前記コア部の表面の接線方向に連続して存在しており、
   （２）前記被覆部は、互いに接触する網膜色素上皮細胞を含み、
   （３）前記細胞凝集体は、水晶体、硝子体、角膜及び血管を含まず、
   （４）前記網膜色素上皮細胞は、前記神経網膜層とともに連続する上皮構造を構成しておらずいない、かつ
   （５）（１）における視細胞層と、該視細胞層の少なくとも一部を覆う網膜色素上皮細胞との間に、さらにハイドロゲルが存在する
   ことを特徴とするスフェア状細胞凝集体。
2. 網膜色素上皮細胞が多角形又は敷石状の細胞形態を示す、請求項１に記載のスフェア状細胞凝集体。
3. 神経網膜における網膜前駆細胞及び視細胞前駆細胞の存在割合が２０％以上である、請求項１又は２に記載のスフェア状細胞凝集体。
4. 神経網膜における網膜前駆細胞及び視細胞前駆細胞の存在割合が３０％以上である、請求項１～３のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体。
5. 網膜前駆細胞及び視細胞前駆細胞がＣｈｘ１０陽性細胞又はＣｒｘ陽性細胞である、請求項１～４のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体。
6. 被覆部がコア部の表面積の５０％以上を覆っている、請求項１～５のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体。
7. 被覆部がコア部の表面積の２０％以上を連続的に覆っている、請求項１～６のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体。
8. 請求項１～７のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体を含有してなる、被験物質の毒性又は薬効評価用試薬。
9. 請求項１～７のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体に被験物質を接触させ、被験物質が該スフェア状細胞凝集体又は該スフェア状細胞凝集体に含まれる細胞に及ぼす影響を検定することを含む、被験物質の毒性又は薬効評価方法。
10. 請求項１～７のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体を含有してなる、網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患の治療薬。
11. 網膜色素上皮細胞、網膜系細胞若しくは網膜組織の障害又は網膜組織の損傷に基づく疾患の治療における使用のための請求項１～７のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体。
12. 請求項１～７のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体を有効成分として含有する、医薬組成物。
13. 請求項１～７のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体から物理的に切り出されてなる、スフェア状細胞凝集体の一部。
14. 網膜色素上皮細胞及び神経網膜を含む細胞シートである、請求項１３に記載のスフェア状細胞凝集体の一部。
15. 請求項１～７のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体の一部を物理的に切り出す工程を含む、スフェア状細胞凝集体の一部の製造方法。
16. 前記スフェア状細胞凝集体の一部が、網膜色素上皮細胞及び神経網膜を含む細胞シートである、請求項１５に記載の製造方法。
17. 神経網膜を含むスフェア状の細胞凝集体（神経網膜の細胞凝集体）であって、
    （Ｉ）前記神経網膜の細胞凝集体において、前記神経網膜は前記細胞凝集体の表面に存在しており、かつ
    （ＩＩ）前記神経網膜において少なくとも視細胞層を含む神経網膜層が形成されており、前記視細胞層には視細胞、視細胞前駆細胞及び網膜前駆細胞からなる群から選択される１以上の細胞が存在している、神経網膜の細胞凝集体を調製する工程と、
    網膜色素上皮細胞を調製する工程と、
    前記神経網膜の細胞凝集体及び前記網膜色素上皮細胞をハイドロゲルの存在下で接触させる工程とを含む、請求項１～７のいずれか１項に記載のスフェア状細胞凝集体の製造方法。
    
    

Images