JP2021529538A - 重症熱性血小板減少症候群（ｓｆｔｓ）ウイルス感染疾患の予防または治療用ワクチン組成物 - Google Patents

重症熱性血小板減少症候群（ｓｆｔｓ）ウイルス感染疾患の予防または治療用ワクチン組成物 Download PDF

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本発明は、重症熱性血小板減少症候群（Ｓｅｖｅｒｅ Ｆｅｖｅｒ ｗｉｔｈ Ｔｈｒｏｍｂｏｃｙｔｏｐｅｎｉａ Ｓｙｎｄｒｏｍｅ；ＳＦＴＳ）ウイルス疾患による感染病を予防または治療するためのワクチン組成物に関する。【選択図】図１

Description

本発明は、重症熱性血小板減少症候群（Ｓｅｖｅｒｅ Ｆｅｖｅｒ ｗｉｔｈ Ｔｈｒｏｍｂｏｃｙｔｏｐｅｎｉａ Ｓｙｎｄｒｏｍｅ；ＳＦＴＳ）ウイルス疾患による感染病を予防または治療するためのワクチン組成物に関する。
重症熱性血小板減少症候群（ＳＦＴＳ；Ｓｅｖｅｒｅ Ｆｅｖｅｒ ｗｉｔｈ Ｔｈｒｏｍｂｏｃｙｔｏｐｅｎｉａ Ｓｙｎｄｒｏｍｅ）による激しい熱病は、中国、韓国および日本でよく現れる新興ウイルス疾患である。ＳＦＴＳに対する効果的なワクチンや特定治療法は現在提供されていないのが現状である。ＳＦＴＳは、高熱、嘔吐、下痢、血小板減少、白血球減少および多発性臓器不全のような症状を伴い、致死率が６〜３０％に達する深刻な疾患である（Yu XJ et al.,N.Engl.J.Med.2011;364:1523-32;Ding F et al Clin Infect Dis2013;56:1682-3）。
また、ＳＦＴＳウイルスの血清転換およびウイルス血症がヤギ、ヒツジ、ウシ、ブタおよびイヌのような飼育動物から発見され、このような動物もＳＦＴＳウイルスが広がった地域で中間媒介体として作用すると考えられる（Zhao L et al.Emerg Infect Dis2013;18:963-5;Niu G et al.Emerg Infect Dis2013;19:756-63）。
一方、中国公開特許公報第１０２０７０７０４号は、ＳＦＴＳウイルスを用いたＳＦＴＳウイルス増幅および検出キットを開示している。
そこで、本発明者らは、ＳＦＴＳに対する効果的なワクチンを考案するに至った。
本発明の目的は、個体で免疫反応を効果的に誘導するＳＦＴＳウイルス抗原の組換えＤＮＡまたはペプチド；およびこれを含むＳＦＴＳウイルスワクチンを提供することである。
具体的には、本発明は、重症熱性血小板減少症候群（Ｓｅｖｅｒｅ Ｆｅｖｅｒ ｗｉｔｈ Ｔｈｒｏｍｂｏｃｙｔｏｐｅｎｉａ Ｓｙｎｄｒｏｍｅ；ＳＦＴＳ）ウイルスによる感染病を予防または治療するためのワクチン組成物を提供する。
しかし、本発明がなそうとする技術的課題は以上に言及した課題に制限されず、言及されていないさらに他の課題は以下の記載から当業界における通常の知識を有する者に明確に理解されるであろう。
以下、本願に記載の多様な実施形態が図面を参照して記載される。下記の説明において、本発明の完全な理解のために、多様な特異的詳細事項、例えば、特異的形態、組成物および工程などが記載されている。しかし、特定の実施形態は、これらの特異的詳細事項の１つ以上、または他の公知の方法および形態とともに実行可能である。他の例において、公知の工程および製造技術は、本発明を不必要にあいまいにさせないために、特定の詳細事項で記載されない。「一つの実施形態」または「実施形態」についての本明細書全体にわたる参照は、実施形態と結び付けて記載された特別な特徴、形態、組成または特性が、本発明の一つ以上の実施形態に含まれることを意味する。したがって、本明細書全体にわたる多様な位置で表現された「一つの実施形態」または「実施形態」の状況は、必ずしも本発明の同一の実施形態を示さない。追加的に、特別な特徴、形態、組成、または特性は、一つ以上の実施形態においていかなる適した方法で組み合わされてもよい。
本発明における特別な定義がなければ、本明細書に使われたすべての科学的および技術的な用語は、本発明の属する技術分野における当業者によって通常理解されるのと同じ意味を有する。
本発明において、「予防」は、本発明の組成物の投与によりウイルスの成長、増殖、浸潤性または伝染性を遅延させるすべての行為を意味する。
本発明において、「治療」および「改善」は、本発明の組成物の投与によりウイルスの成長、増殖、または伝染性を抑制して、ＳＦＴＳＶ関連疾患が好転または有利に変更されるすべての行為を意味する。
本発明は、ウイルス抗原の組換えＤＮＡまたはペプチドを含むウイルスワクチンおよびワクチン方法に関し、また、抗原タンパク質またはペプチドである免疫源をコーディングするヌクレオチド配列を哺乳類の体内に導入するステップ（ここで、前記タンパク質またはペプチドは哺乳類の体内で発現して抗原タンパク質またはペプチドに対する免疫反応を引き起こす）を含むワクチン方法の改善に関する。このようなワクチン方法は公知である。
本発明の一実施形態によれば、
配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；
配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；
配列番号２９１で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９０で表される塩基配列を含む組換えの第３ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第３ペプチド；
配列番号２９３で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９２で表される塩基配列を含む組換えの第４ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第４ペプチド；および
配列番号２９５で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９４で表される塩基配列を含む組換えの第５ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第５ペプチドからなる群より選択されたいずれか１つ以上の組換えペプチドを有効成分として含む抗原用組成物を提供する。
本発明の抗原用組成物は、配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；および配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；の少なくとも１つを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；および配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；を含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号１〜７６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号１〜３８の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号３９〜７６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号１〜３８の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチド；および配列番号３９〜７６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号７７〜１５２の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号７７〜１１４の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号１１５〜１５２の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号７７〜１１４の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチド；および配列番号１１５〜１５２の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号１５３〜１８６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号１８７〜２２７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号１８７〜２０７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号２０８〜２２７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号１８７〜２０７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチド；および配列番号２０８〜２２７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号２２８〜２８５の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号２２８〜２５６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号２５７〜２８５の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明の抗原用組成物は、配列番号２２８〜２５６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチド；および配列番号２５７〜２８５の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明において、前記抗原用組成物は、筋肉内、皮内、皮下、表皮下、経皮、または静脈内から選択された経路を通して体内注射されるが、これに限定されるものではない。本発明において、前記抗原用組成物は、筋肉内注射により対象体に注入される。本発明において、前記抗原用組成物は、皮内注射により対象体に注入される。本発明において、前記抗原用組成物は、体内注射時、追加的に電気穿孔法を利用して対象体に注入される。
本発明の前記抗原用組成物は、免疫増強剤を追加的に含むことができる。本発明において、前記免疫増強剤は、ＩＬ−７およびＩＬ−３３の少なくとも１つであってもよく、好ましくは、ＩＬ−３３であってもよいが、これに限定されるものではない。
本発明の他の実施形態によれば、
配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；
配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；
配列番号２９１で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９０で表される塩基配列を含む組換えの第３ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第３ペプチド；
配列番号２９３で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９２で表される塩基配列を含む組換えの第４ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第４ペプチド；および
配列番号２９５で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９４で表される塩基配列を含む組換えの第５ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第５ペプチドからなる群より選択されたいずれか１つ以上を含む組換えペプチドを有効成分として含むワクチンを提供する。
本発明のワクチンは、配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；および配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；の少なくとも１つを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；および配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；を含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号１〜７６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号１〜３８の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号３９〜７６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号１〜３８の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチド；および配列番号３９〜７６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号７７〜１５２の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号７７〜１１４の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号１１５〜１５２の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号７７〜１１４の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチド；および配列番号１１５〜１５２の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号１５３〜１８６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号１８７〜２２７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号１８７〜２０７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号２０８〜２２７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号１８７〜２０７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチド；および配列番号２０８〜２２７の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号２２８〜２８５の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号２２８〜２５６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号２５７〜２８５の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明のワクチンは、配列番号２２８〜２５６の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチド；および配列番号２５７〜２８５の少なくとも１つのアミノ酸配列で表されるペプチドを含むことができる。
本発明において、前記ワクチンは、筋肉内、皮内、皮下、表皮下、経皮、または静脈内から選択された経路を通して体内注射されるが、これに限定されるものではない。本発明において、前記ワクチンは、筋肉内注射により対象体に注入される。本発明において、前記ワクチンは、皮内注射により対象体に注入される。本発明において、前記ワクチンは、体内注射時、追加的に電気穿孔法を利用して対象体に注入される。
本発明において、前記ワクチンは、免疫増強剤を追加的に含むことができる。本発明において、前記免疫増強剤は、ＩＬ−７（配列番号２９６）およびＩＬ−３３（配列番号２９７）の少なくとも１つであってもよく、好ましくは、ＩＬ−３３であってもよいが、これに限定されるものではない。
本発明の抗原用組成物またはワクチンは、追加的に、溶媒、賦形剤などをさらに含んでもよい。前記溶媒には、生理食塩水、蒸留水などが含まれ、前記賦形剤には、リン酸アルミニウム、水酸化アルミニウム、硫酸アルミニウムカリウムなどが含まれるが、これに限定されず、本発明の属する分野において通常ワクチンの製造に使用する物質をさらに含んでもよい。
本発明の抗原用組成物またはワクチンは、本発明の属する技術分野において通常利用される方法で製造することができる。本発明の抗原用組成物またはワクチンは、経口型または非経口型製剤に製造することができ、好ましくは、非経口型製剤である注射液剤に製造し、真皮内、筋肉内、腹膜内、静脈内、皮下内、鼻腔または硬膜外（ｅｐｉｄｕｒａｌ）経路で投与することができる。
本発明の抗原用組成物またはワクチンは、免疫学的有効量で個体に投与することができる。前記「免疫学的有効量」とは、重症熱性血小板減少症候群（Ｓｅｖｅｒｅ Ｆｅｖｅｒ ｗｉｔｈ Ｔｈｒｏｍｂｏｃｙｔｏｐｅｎｉａ Ｓｙｎｄｒｏｍｅ；ＳＦＴＳ）ウイルスまたはＳＦＴＳウイルスの予防または治療効果を奏し得る程度の十分な量と副作用や深刻なまたは過度の免疫反応を起こさない程度の量を意味し、正確な投与濃度は、投与される特定免疫源によって異なり、予防または治療対象者の年齢、体重、健康、性別、個体の薬物に対する敏感度、投与経路、投与方法など医学分野でよく知られた要素に応じて当業者によって容易に決定されてもよいし、１回〜数回投与可能である。
本発明のワクチンは、薬学的有効量で投与する。用語「薬学的有効量」とは、ワクチン効果を奏し得る程度の十分な量と副作用や深刻なまたは過度の免疫反応を起こさない程度の量を意味し、正確な投与濃度は、投与される抗原によって異なり、対象者の年齢、体重、健康、性別、対象者の薬物に対する敏感度、投与経路、投与方法など医学分野でよく知られた要素に応じて当業者によって容易に決定されてもよいし、１回〜数回投与可能である。
本発明のＤＮＡワクチンは、薬学的に許容される担体内に本発明の抗原決定基ペプチドをコーディングするヌクレオチドが含まれたＤＮＡワクチンで、好ましくは、ＤＮＡプラスミド形態であり、最も好ましくは、ｍｏｃｋプラスミド（ｐＶａｘ−１由来）形態であるが、これに限定されるものではない。したがって、前記ヌクレオチドが公知の多様な組換え発現ベクターに挿入されたものが好ましい。
本発明のさらに他の実施形態によれば、
配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡ；
配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡ；
配列番号２９０で表される塩基配列を含む組換えの第３ＤＮＡ；
配列番号２９２で表される塩基配列を含む組換えの第４ＤＮＡ；および
配列番号２９４で表される塩基配列を含む組換えの第５ＤＮＡからなる群より選択されたいずれか１つ以上の組換えＤＮＡを含む発現ベクターを提供する。
本発明の発現ベクターは、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡ；および配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡ；の少なくとも１つの組換えＤＮＡを含むことができる。
本発明の発現ベクターは、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡ；および配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡ；を含むことができる。
本発明において、前記「ベクター」は、宿主細胞で目的遺伝子を発現させるための手段を意味する。前記ベクターは、目的遺伝子発現のためのエレメントを含むもので、複製起点、プロモーター、オペレーター、転写終結配列（ターミネーター）などを含むことができ、宿主細胞のゲノム内への導入のための適切な酵素部位（例えば、制限酵素部位）および／または宿主細胞内への導入の成功を確認するための選別マーカーおよび／またはタンパク質への翻訳のためのリボソーム結合部位（ＲＢＳ）、ＩＲＥＳ（Ｉｎｔｅｒｎａｌ Ｒｉｂｏｓｏｍｅ Ｅｎｔｒｙ Ｓｉｔｅ）などを追加的に含むことができる。前記ベクターは、プロモーターとして前記融合ポリヌクレオチド（融合プロモーター）を有するように通常の遺伝工学的方法で操作されたものであってもよい。前記ベクターは、前記プロモーター以外の転写調節配列（例えば、エンハンサーなど）を追加的に含むことができる。
本発明において、「発現ベクター」は、目的の宿主細胞で目的のペプチドを発現できる組換えベクターであって、遺伝子挿入物が発現するように作動的に連結された必須の調節エレメントを含む遺伝子作製物を意味する。前記発現ベクターは、開始コドン、終結コドン、プロモーター、オペレーターなどの発現調節エレメントを含むが、前記開始コドンおよび終結コドンは、一般的にポリペプチドを暗号化するヌクレオチド配列の一部と見なされ、遺伝子作製物が投与された時、個体で必ず作用を示さなければならず、コーディング配列とインフレームになければならない。ベクターのプロモーターは、構成的または誘導性であってもよい。自己発現するのに必要なすべての要素を含む遺伝子構造体である発現カセットの形態で宿主細胞に導入可能である。前記発現カセットは、通常発現する遺伝子挿入物に作動可能に連結されているプロモーター、転写終結シグナル、リボソーム結合部位および翻訳終結シグナルを含むことができる。前記発現カセットは、自己複製が可能な発現ベクター形態であってもよい。本発明において、前記発現ベクターは、ウイルス性または非ウイルス性ベクターであってもよいし、前記ウイルス性ベクターは、アデノウイルスベクター、レンチウイルスを含むレトロウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクターまたは単純ヘルペスウイルスベクターなどであってもよいが、これに限定されない。また、前記非ウイルス性ベクターとしては、プラスミドベクター、バクテリオファージベクター、リポソーム、細菌人工染色体、酵母人工染色体などであってもよいが、これに限定されない。
本発明において、前記発現ベクターにおいて、前記目的遺伝子は、前記融合ポリヌクレオチドに作動可能に連結される。用語「作動可能に連結された（ｏｐｅｒａｔｉｖｅｌｙ ｌｉｎｋｅｄ）」は、遺伝子発現調節配列と他のヌクレオチド配列との間の機能的な結合を意味する。前記遺伝子発現調節配列は、「作動可能に連結（ｏｐｅｒａｔｉｖｅｌｙ ｌｉｎｋｅｄ）」されることで他のヌクレオチド配列の転写および／または翻訳を調節することができる。前記発現ベクターにおいて、前記融合ポリヌクレオチドが前記目的遺伝子に作動可能に連結されるために、前記融合ポリヌクレオチドは、前記目的遺伝子の５’末端に連結されたものであってもよい。本発明の発現ベクターは、発現させようとする目的タンパク質の暗号化遺伝子が作動可能に連結される場合、適切な宿主細胞で前記目的タンパク質を高い効率で発現させることができる目的タンパク質の発現ベクターとして使用できる。
本発明の前記発現ベクターは、免疫増強剤として、ＩＬ−７をコーディングする遺伝子（配列番号２９８）およびＩＬ−３３をコーディングする遺伝子（配列番号２９９）の少なくとも１つ、好ましくは、ＩＬ−３３をコーディングする遺伝子を追加的に含むことができる。
本発明の前記発現ベクターは、転写調節配列を追加的に含むことができる。前記転写調節配列は、ポリアデニル化配列（ｐＡ）のような転写終結配列；ｆ１複製起点、ＳＶ４０複製起点、ｐＭＢ１複製起点、アデノ複製起点、ＡＡＶ複製起点、ＢＢＶ複製起点などの複製起点；翻訳過程の開始点（ＡＴＧ）においてリボソームの認識率を高めることで遺伝子発現を高める可能性が高いと知られたコザック配列（Ｋｏｚａｋ ｓｅｑｕｅｎｃｅ、ＡＡＣＡＡＴＧＧＣ）；またはＩｇＥリーダー配列（ｌｅａｄｅｒ配列）などからなる群より選択された１種以上であってもよいが、これに限定されるものではない。
本発明の前記発現ベクターは、制限酵素切断部位を追加的にさらに含むことができる。前記制限酵素切断部位は、制限酵素によって特異的に認識されて切断される特定の塩基配列を指し示す。前記切断部位は、例えば、ＥｃｏＲＩ、ＢａｍＨＩ、ＨｉｎｄＩＩＩ、ｋｐｎＩ、ＳａｌＩ、ＮｏｔＩ、ＮｃｏＩ、ＰｓｔＩ、ＳｍａＩ、およびＸｈｏＩのような制限酵素によって特異的に認識される配列であってもよい。
また、本発明において、前記発現ベクターは、選別マーカーを追加的に含むことができる。前記選別マーカーは、発現ベクターが宿主細胞内への導入に成功したか否かを確認するか、安定した細胞株構築のための遺伝子として、例えば、抗生剤のような薬剤耐性遺伝子、代謝関連遺伝子、遺伝子増幅遺伝子などからなる群より選択された１種以上であってもよい。
本発明の前記発現ベクターは、前記組換えＤＮＡとともに、ＩＬ−７をコーディングする遺伝子（配列番号２９８）を含むことができ、この時、前記発現ベクター（好ましくは、発現プラスミド）は、制限酵素切断部位として、ＢａｍＨＩ、ＮｃｏＩ、およびＮｏｔＩからなる群より選択されたいずれか１つ以上を含むことができ、一例として、前記発現ベクターは、前記組換えＤＮＡとともに、配列番号３００で表される塩基配列を含むことができる。
本発明の前記発現ベクターは、前記組換えＤＮＡとともに、ＩＬ−３３をコーディングする遺伝子（配列番号２９９）を含むことができ、この時、前記発現ベクター（好ましくは、発現プラスミド）は、制限酵素切断部位として、ＢａｍＨＩ、ＮｃｏＩ、およびＮｏｔＩからなる群より選択されたいずれか１つ以上を含むことができ、一例として、前記発現ベクターは、前記組換えＤＮＡとともに、配列番号３０１で表される塩基配列を含むことができる。
本発明において、前記発現ベクターは、宿主細胞で発現可能なものであってもよい。例えば、前記宿主細胞は、動物細胞で転写開始を強く誘導できるものであってもよいし、具体的には、哺乳動物細胞、例えば、ヒトに由来する細胞のような動物細胞で転写開始を誘導するものであってもよい。
本発明の前記発現ベクターは、当業界で公知の多様な方法により構築可能である。
本発明のさらに他の実施形態によれば、本発明で提供する発現ベクターが宿主細胞に導入されて形質転換された形質転換体に関する。
本発明において、前記発現ベクターの細胞内への運搬（導入）は、当業界で広く知られた運搬方法を使用することができる。前記運搬方法は、例えば、微細注入法、カルシウムホスフェート沈殿法、電気穿孔法（ｅｌｅｃｔｒｏｐｏｒａｔｉｏｎ）、超音波穿孔法（ｓｏｎｏｐｏｒａｔｉｏｎ）、磁場を利用した自己注入法（ｍａｇｎｅｔｏｆｅｃｔｉｏｎ）、リポソーム−媒介形質感染法、遺伝子ボンバードメント（ｇｅｎｅ ｂｏｍｂａｒｄｍｅｎｔ）、デンドリマーおよび無機ナノ粒子の使用などを用いることができるが、これに限定されるものではない。
上述した発現ベクターを細胞に形質転換させて形質転換体を製造することができる。
本発明において、「形質転換体」とは、プロモーターと作動可能に連結され、有用物質をコーディングするＤＮＡ配列からなるＤＮＡ構造物（ＤＮＡ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔ）によって形質転換された細胞または植物体を意味する。本発明において、形質転換体は、形質転換された微生物、動物細胞、植物細胞、形質転換された動物または植物体、およびこれらに由来する培養細胞などを含む意味である。
本発明のさらに他の実施形態によれば、本発明は、上記のような抗原用組成物；上記のようなワクチン；上記のような発現ベクター；または上記のような形質転換体の有効量を個体に投与するステップを含む、重症熱性血小板減少症候群（ＳＦＴＳ）ウイルス感染に対する予防または治療方法を提供する。
本発明のさらに他の実施形態によれば、本発明は、上記のような抗原用組成物；上記のようなワクチン；上記のような発現ベクター；または上記のような形質転換体を有効成分として含む、重症熱性血小板減少症候群（ＳＦＴＳ）ウイルス感染に対する予防または治療用薬学組成物を提供する。
本発明において、前記薬学組成物は、カプセル、錠剤、顆粒、または注射剤、軟膏剤、粉末または飲料形態であることを特徴とし、前記薬学組成物は、ヒトを対象にすることを特徴とすることができる。
本発明の薬学組成物はこれらに限定されるものではないが、それぞれ通常の方法により、散剤、顆粒剤、カプセル、錠剤、水性懸濁液などの経口型剤形、外用剤、坐剤および滅菌注射溶液の形態に剤形化して使用できる。本発明の薬学組成物は、薬剤的に許容可能な担体を含むことができる。薬学的に許容される担体は、経口投与時には、結合剤、滑沢剤、崩壊剤、賦形剤、可溶化剤、分散剤、安定化剤、懸濁化剤、色素、香料などを使用することができ、注射剤の場合には、緩衝剤、保存剤、無痛化剤、可溶化剤、等張剤、安定化剤などを混合して使用することができ、局所投与用の場合には、基剤、賦形剤、潤滑剤、保存剤などを使用することができる。本発明の薬学組成物の剤形は、上述のような薬学的に許容される担体と混合して多様に製造可能である。例えば、経口投与時には、錠剤、トローチ、カプセル、エリキシル（ｅｌｉｘｉｒ）、サスペンション、シロップ、ウエハなどの形態に製造することができ、注射剤の場合には、単位投薬アンプルまたは複数回投薬形態に製造することができる。その他、溶液、懸濁液、錠剤、カプセル、徐放型製剤などに剤形可能である。
一方、製剤化に適した担体、賦形剤および希釈剤の例としては、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、エリスリトール、マルチトール、デンプン、アカシアガム、アルギネート、ゼラチン、カルシウムホスフェート、カルシウムシリケート、セルロース、メチルセルロース、微晶質セルロース、ポリビニルピロリドン、水、メチルヒドロキシベンゾエート、プロピルヒドロキシベンゾエート、タルク、マグネシウムステアレートまたは鉱物油などが使用できる。また、充填剤、抗凝集剤、潤滑剤、湿潤剤、香料、乳化剤、防腐剤などを追加的に含んでもよい。
本発明による薬学組成物の投与経路はこれらに限定されるものではないが、口腔、静脈内、筋肉内、動脈内、骨髓内、硬膜内、心臓内、経皮、皮下、腹腔内、鼻腔内、腸管、局所、舌下または直腸が含まれる。経口または非経口投下が好ましい。
本発明において、「非経口」は、皮下、皮内、静脈内、筋肉内、関節内、滑液包内、胸骨内、硬膜内、病巣内および頭蓋骨内注射または注入技術を含む。本発明の薬学組成物はさらに、直腸投与のための坐剤の形態で投与可能である。
本発明の薬学組成物は、使用された特定化合物の活性、年齢、体重、一般的な健康、性別、定式、投与時間、投与経路、排出率、薬物配合および予防または治療される特定疾患の重症を含んだ様々な要因によって多様に変化可能であり、前記薬学組成物の投与量は、患者の状態、体重、疾病の程度、薬物形態、投与経路および期間によって異なるが、当業者によって適宜選択可能であり、１日０．０００１〜５０ｍｇ／ｋｇまたは０．００１〜５０ｍｇ／ｋｇ投与することができる。投与は、１日に１回投与してもよく、数回分けて投与してもよい。前記投与量は、いかなる面でも本発明の範囲を限定するものではない。本発明による医薬組成物は、丸剤、糖衣錠、カプセル、液剤、ゲル、シロップ、スラリー、懸濁剤の剤形とすることができる。
本発明で提供するＳＦＴＳウイルスの組換えＤＮＡまたはペプチドおよびこれを含むＳＦＴＳウイルスワクチンは、個体でＳＦＴＳウイルスに対する免疫反応を効果的に誘発するので、ＳＦＴＳウイルス感染に対する予防および治療効果に優れている。
図１は、ＳＦＴＳウイルスに特異的なＴ細胞反応を測定するために、ＥＬＩＳｐｏｔ分析の結果を示すウェルイメージである。 図２Ａ〜図２Ｅは、ＳＦＴＳＶワクチン候補物質のＴ細胞免疫反応を示すグラフである。 図３Ａ〜図３Ｃは、ＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチン候補物質のＴ細胞の多機能性を評価した結果を示すグラフである。 図４は、ワクチン候補物質によって誘導されるＴ細胞の多機能性を示すグラフである。 図５Ａ〜図５Ｆは、ワクチンによって誘導されたＳＦＴＳＶ特異的抗体の生成を示すグラフである。 図６は、ＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチンによって誘導された中和抗体効能の定量評価を示すグラフである。 図７は、ＳＦＴＳＶワクチンの感染抑制効能を検証した結果を示すグラフである。 図８Ａ〜図８Ｄは、ＳＦＴＳＶワクチン候補物質によって中型動物でＳＦＴＳＶ特異Ｔ細胞免疫反応を示すグラフである。 図９は、ＤＮＡワクチンによって形成されたＳＦＴＳＶ特異反応抗体の形成をＥＬＩＳＡ方法で測定した結果を示すグラフである。 図１０は、ＤＮＡワクチンによって誘導された抗体の中和抗体力価をＰＲＮＴ５０方法で測定した結果を示すグラフである。
図１１は、ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおける生存率を示すグラフである。 図１２Ａ〜図１２Ｃは、リアルタイムＰＣＲによりＳＦＴＳＶウイルス数値を測定した結果を示すグラフである。 図１３Ａ〜図１３Ｃは、血小板数を測定した結果を示すグラフである。 図１４Ａおよび図１４Ｂは、ＳＦＴＳＶ感染後の体重および体温を測定した結果を示すグラフである。 図１５Ａおよび図１５Ｂは、ＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチン投与後、マウスで形成されたＳＦＴＳＶ中和抗体の交差反応を評価するためのＰＲＮＴ５０テストの結果を示すグラフである。 図１６は、ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてワクチンによって誘導されたＴ細胞免疫反応を確認したグラフである。 図１７は、ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてワクチンによって誘導された抗体免疫反応および中和抗体誘導能定量評価したグラフである。 図１８は、ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてＳＦＴＳＶ予防ＤＮＡワクチンの防御効能検証に関するグラフである。 図１９は、リアルタイムＰＣＲによりＳＦＴＳＶウイルス数値を測定したグラフである。 図２０は、リアルタイムＰＣＲによりＳＦＴＳＶウイルス数値を測定したグラフである。
図２１は、ＳＦＴＳＶ感染後の血小板数を測定した結果を示すグラフである。 図２２は、ＳＦＴＳＶ感染後の血小板数を測定した結果を示すグラフである。 図２３は、白血球数を測定した結果を示すグラフである。 図２４は、白血球数を測定した結果を示すグラフである。 図２５は、ＳＦＴＳＶ感染後の対照群の個体の体重を示すグラフである。 図２６は、ＳＦＴＳＶ感染後の対照群の個体の体重を示すグラフである。 図２７は、ＳＦＴＳＶ感染後の対照群の個体の体温を示すグラフである。 図２８は、ＳＦＴＳＶ感染後の対照群の個体の体温を示すグラフである。 図２９は、血清内ＡＬＴを測定した結果を示すグラフである。 図３０は、血清内ＡＬＴを測定した結果を示すグラフである。
図３１は、血清内ＡＳＴを測定した結果を示すグラフである。 図３２は、血清内ＡＳＴを測定した結果を示すグラフである。 図３３は、ＳＦＴＳＶ Ｇｃ発現プラスミド（ｐＧＸ−ＳＦＴＳＶ Ｇｃ＿ｈＣＯ、４６３５ｂｐ）を示す図である。 図３４は、ＳＦＴＳＶ Ｇｎ発現プラスミド（ｐＧＸ−ＳＦＴＳＶ Ｇｎ＿ｈＣＯ、４６２６ｂｐ）を示す図である。 図３５は、ＳＦＴＳＶ ＮＰ発現プラスミド（ｐＧＸ−ＳＦＴＳＶ ＮＰ＿ｈＣＯ、３７５６ｂｐ）を示す図である。 図３６は、ＳＦＴＳＶ ＮＳ発現プラスミド（ｐＧＸ−ＳＦＴＳＶ ＮＳ＿ｈＣＯ、３９００ｂｐ）を示す図である。 図３７は、ＳＦＴＳＶ ＲｄＲｐ発現プラスミド（ｐＧＸ−ＳＦＴＳＶ ＲｄＲｐ＿ｈＣＯ、９２７３ｂｐ）を示す図である。 図３８は、マウスＩＬ−７発現プラスミド（ｐＧＸ−ｍＩＬ−７＿ｍＣＯ、３４８３ｂｐ）を示す図である。 図３９は、マウスＩＬ−３３発現プラスミド（ｐＧＸ−ｍＩＬ−３３＿ｍＣＯ、３８１９ｂｐ）を示す図である。
本発明の一実施形態によれば、配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；配列番号２９１で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９０で表される塩基配列を含む組換えの第３ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第３ペプチド；配列番号２９３で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９２で表される塩基配列を含む組換えの第４ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第４ペプチド；および配列番号２９５で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９４で表される塩基配列を含む組換えの第５ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第５ペプチドからなる群より選択されたいずれか１つ以上を含む組換えペプチドを有効成分として含む抗原用組成物またはワクチンを提供する。
本発明の前記抗原用組成物またはワクチンは、免疫増強剤を追加的に含んでもよく、この時、前記免疫増強剤は、ＩＬ−７およびＩＬ−３３の少なくとも１つであってもよく、好ましくは、ＩＬ−３３であってもよいが、これに限定されるものではない。
以下、本発明を下記の実施例により詳しく説明する。ただし、下記の実施例は本発明を例示するものに過ぎず、本発明の内容が下記の実施例により限定されるものではない。
（ＳＦＴＳウイルス抗原５種および免疫増強剤２種の遺伝子の合成）
目的遺伝子（ＳＦＴＳＶ抗原または免疫増強剤遺伝子）５’末端にＩｇＥリーダーおよびコザック（ｋｏｚａｋ）配列を挿入し、３’末端に終止コドンを挿入した。最終的に、遺伝子の両端に制限酵素配列（５’ＢａｍＨＩと３’ＮｏｔＩ）を挿入した後、遺伝子の合成を進行させた。
（高効率バックボーンプラスミド（ｐＧＸ０００１）のクローニング）
挿入遺伝子の合成を完了した後、ＢａｍＨＩとＮｏｔＩに切断し、同じ制限酵素で切断された高効率バックボーンプラスミド（ｐＧＸ０００１）に挿入して、候補物質プラスミドを作製した（図３３〜図３９参照）。遺伝子の合成およびクローニング結果は塩基配列分析により確認した。
（体内抗原高発現ＤＮＡワクチンの配列の最適化）
最適な抗原５種として、Ｇｃ（ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ Ｃ）、Ｇｎ（ｇｌｙｃｏｐｒｏｔｅｉｎ Ｎ）、ＮＰ（ｎｕｃｌｅｏｃａｐｓｉｄ ｐｒｏｔｅｉｎ）、ＮＳ（ｎｏｎ−ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ｐｒｏｔｅｉｎ）、ＲｄＲｐ（ＲＮＡ ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ＲＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ）と、最適な免疫増強剤２種として、ＩＬ−７およびＩＬ−３３を選定した。前記抗原５種について、韓国人、中国人及び日本人から分離されたＳＦＴＳウイルス菌株２７〜３２個から導出された共通配列を確保した。共通配列は、多様なＳＦＴＳウイルスサブタイプおよび変種ウイルスの共通した抗原のアミノ酸配列を用いて交差免疫能がある汎用抗原配列にデザインした。Ｉｎ ｓｉｌｉｃｏ免疫情報学手法を活用して、多様なサブタイプおよび変種ＳＦＴＳウイルスに存在するヒトの主要ＭＨＣクラスＩおよびＩＩエピトープを発掘し、これを抗原に含むように配列をデザインした。以後、最適化されたＳＦＴＳウイルス抗原のアミノ酸配列に基づいてＤＮＡワクチンのための塩基配列を最終的に導出した。
以下の実験で使用される本発明の一実施例による発現カセット構造は、高発現プロモーター（プラスミドバックボーン配列）、コザック（ｋｏｚａｋ）配列、ＩｇＥリーダー（ｌｅａｄｅｒ）配列、ｐｏｌｙ Ａシグナル配列（プラスミドバックボーン配列）を含むようにし、この時、体内での遺伝子発現率を高めるために、ｋｏｚａｋ、ＩｇＥリーダー配列を目的遺伝子（ＳＦＴＳＶ抗原または免疫増強剤）の前に挿入した。一方、体内での抗原遺伝子発現率を高めるために、ＳＦＴＳウイルス抗原５種（Ｇｃ、Ｇｎ、ＮＰ、ＮＳ、ＲｄＲｐ）の配列をヒトコドンに最適化した。
（ＳＦＴＳウイルス抗原発現ＤＮＡワクチンリード物質の作製）
目的遺伝子（ＳＦＴＳＶ抗原または免疫増強剤遺伝子）５’末端にＩｇＥリーダー配列とコザック配列を挿入し、３’末端にストップコドンを挿入した。最終的に、遺伝子の両端に制限酵素配列（５’ＢａｍＨＩと３’ＮｏｔＩ）を挿入した後、遺伝子の合成を進行させた。挿入遺伝子の合成を完了した後、ＢａｍＨＩとＮｏｔＩに切断し、同じ制限酵素で切断された高効率バックボーンプラスミド（ｐＧＸ０００１）に挿入して、候補物質プラスミドを作製した。遺伝子の合成およびクローニング結果は塩基配列分析により確認した。
（マウスモデルを用いたＳＦＴＳウイルス抗原発現ＤＮＡワクチンの免疫原性評価）
免疫原性評価用ＯＬＰ（ｏｖｅｒｌａｐｐｉｎｇ ｐｅｐｔｉｄｅ）プールを作製した。具体的には、ＳＦＴＳウイルスの抗原５種に対する免疫原性を評価すべく、各抗原の配列を８個のアミノ酸が重複するようにして１５ｍｅｒのペプチドに断片化した。各ペプチドは、作製過程でいずれも高性能液体クロマトグラフィーとエレクトロスプレー質量分析器を用いて定性、定量して純度を確認した。この過程によりＧｎ抗原から計７６個のペプチドを確保し、このペプチドを３８個ずつ混合して、Ｇｎに対するＯＬＰ１、およびＯＬＰ２（各ペプチド２５ｕｇ／ｍｌ）を製造し（表１）、Ｇｃ抗原からは計７６個のペプチドを作製して、このペプチドを３８個ずつ混合して、ＯＬＰ３、およびＯＬＰ４を製造した（表２）。ＮＰ抗原からは計３４個のペプチドを確保し、これを混合してＯＬＰ５を製造し（表３）、ＮＳ抗原からは計４１個のペプチドを得て、これを混合してＯＬＰ６を製造し（表４）、ＲｄＲｐ抗原からは計５８個のペプチドを２９個ずつ混合して、ＯＬＰ７、およびＯＬＰ８を製造した（表５）。
より詳しくは、表１〜表５に示すように、配列番号１〜配列番号３８を混合したものであるＯＬＰ１である。また、配列番号３９〜配列番号７６を混合したものであるＯＬＰ２である。配列番号７７〜配列番号１１４を混合したものであるＯＬＰ３である。配列番号１１５〜配列番号１５２を混合したものであるＯＬＰ４である。配列番号１５３〜配列番号１８６を混合したものであるＯＬＰ５である。配列番号１８７〜配列番号２２７を混合したものであるＯＬＰ６である。配列番号２２８〜配列番号２５６を混合したものであるＯＬＰ７である。配列番号２５７〜配列番号２８５を混合したものであるＯＬＰ８である。
このように作製されたＯＬＰプールは以下のＴ細胞の免疫反応評価に使用した。
Figure 2021529538
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Figure 2021529538
（ＳＦＴＳウイルス抗原５種および免疫増強剤２種の免疫原性検証）
ＢＡＬＢ／ｃマウスを用いて、ナイーブグループ、ＤＮＡワクチンを筋肉内注射したグループ、ＤＮＡワクチンの筋肉内注射後に電気穿孔法を実施したグループ、ＤＮＡワクチンとＩＬ−７免疫増強剤を筋肉内注射後に電気穿孔法を実施したグループ、ＤＮＡワクチンとＩＬ−３３免疫増強剤を筋肉内注射後に電気穿孔法を実施したグループ、の計５種のグループに分けて、各グループあたり６匹ずつ接種を進行させた。ナイーブグループの各マウスには、ＳＦＴＳウイルスの遺伝子が挿入されていないプラスミドを２００ｕｇ接種し、他の４つのグループのマウスには、ＳＦＴＳウイルス抗原発現ＤＮＡ５種（Ｇｎ、Ｇｃ、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐのＤＮＡ配列、それぞれのＤＮＡ配列番号は２８６、２８８、２９０、２９２、および２９４であり、アミノ酸配列はそれぞれ２８７、２８９、２９１、２９３、および２９５である。）を各４０ｕｇずつ計２００ｕｇとなるように接種した。また、ＩＬ−７とＩＬ−３３免疫増強剤を接種するグループのマウスには、追加的にＤＮＡ接種とともに各免疫増強剤を５０ｕｇずつ接種した。ナイーブグループとＤＮＡワクチンを筋肉内注射したグループを除いた３つのグループのマウスには、筋肉内注射直後、接種部位に電気穿孔機を用いて０．２Ａで電気穿孔法を実施した。１回目接種２１日後に同量で２回目接種を進行させ、２回目接種２１日後にマウスを犠牲にして脾臓と鼠径リンパ節を分離して免疫原性評価に使用した。
（ＳＦＴＳＶワクチン候補物質のＴ細胞免疫反応検証）
ＳＦＴＳウイルスに特異的なＴ細胞反応を測定するために、ＥＬＩＳｐｏｔ分析を進行させた（図１）。９６ウェルフィルタープレートにＰＢＳで希釈した抗ヒトＩＦＮ−γ抗体（２μｇ／ｍｌ；ｅｎｄｏｇｅｎ）を各ウェルあたり１００ｕｌずつ分注し、４℃で一晩インキュベーションした後、マウスの脾臓細胞（５×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌ）をＳＦＴＳウイルスのペプチドから作製した８種のＯＬＰで刺激を与え、３７℃で２４時間インキュベーションを実施した。この後、プレートを洗浄してＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ２０／１％ＢＳＡで希釈したビオチニル化された抗ヒトＩＦＮ−γ抗体（０．５μｇ／ｍｌ；ｅｎｄｏｇｅｎ）を各ウェルあたり１００ｕｌずつ分注し、４℃で一晩インキュベーションした。４回の洗浄後、ＰＢＳ／Ｔｗｅｅｎ２０／１％ＢＳＡで５０００：１に希釈したストレプトアビジン−アルカリホスファターゼ（ＢＤ）を各ウェルあたり１００ｕｌずつ分注し、３７℃で１時間インキュベーションした。ＡＰ接合基質キット（ＡＰ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ｋｉｔ、ＢＩＯ−ＲＡＤ社）を用いて１０分間反応させてから、洗浄して反応を止めた後、ＩｍｍｕｎｏＳｐｏｔ（Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｌｉｍｉｔｅｄ）によりＳＦＴＳウイルス抗原によるＳＦＴＳウイルスに特異的なＴ細胞のＩＦＮ−γの生成を観察した。これによって、ＤＮＡワクチン接種後、マウスモデルにおいてＳＦＴＳウイルスに特異的なＴ細胞の免疫反応が成功裏に誘導されたことを確認した。このような免疫反応は、ＤＮＡワクチンの筋肉内注射後に電気穿孔法を実施したグループと、追加的にＩＬ−３３免疫増強剤をともに注射したグループで明確に観察することができ、特にＩＬ−３３免疫増強剤をＳＦＴＳウイルス抗原発現ＤＮＡワクチンとともに注射したグループで確実にＴ細胞の免疫反応が増加することを確認した（図２Ａ〜図２Ｅ）。
（ＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチン候補物質のＴ細胞機能の多機能性評価）
ワクチン接種済みのネズミから得た脾臓細胞にＳＦＴＳウイルスＯＬＰ刺激を与えた後、多色ＦＡＣＳを用いた細胞内サイトカイン染色法（ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｃｙｔｏｋｉｎｅ ｓｔａｉｎｉｎｇ；ＩＣＳ）で分析した。
表１〜表５に示すような８種類のＳＦＴＳウイルスＯＬＰでそれぞれ刺激を与え、ＩＦＮ−γ、ＴＮＦ−α、ＩＬ−２を分泌するＴ細胞サブセットを変換した。その結果、それぞれのサイトカインを合成するＴ細胞の割合を確認して、図３Ａ〜図３Ｃに示した。
図３Ａ〜図３Ｃに示すように、全般的に筋肉内注射のみ実施したグループ（ＩＭ）よりも、電気穿孔法を並行したグループ（ＩＭＥＰ）でより高い免疫反応が出ることを確認した。また、電気穿孔法とともに、免疫増強剤としてＩＬ−３３を用いたグループ（ＩＬ−３３）で最も強い免疫反応が出る傾向があることを確認した。このような傾向は、ＣＤ８＋Ｔ細胞でより良く確認された（図３Ａ〜図３Ｃ）。
ＳＦＴＳウイルスのＮＳタンパク質に相当するＯＬＰであるＯＬＰ６で最も強い免疫反応が誘導されることを確認し、特にＩＦＮ−γとＴＮＦ−αで非常に強い反応が現れることを確認した。これとともに、ＩＭグループよりもＩＭＥＰグループがより強い反応を示し、ＩＬ−３３を免疫増強剤として用いた時、最も強い免疫反応が誘導されることを、ＯＬＰ６を処理したＣＤ８＋Ｔ細胞で非常に明確に確認することができた。
これは、電気穿孔法とＩＬ−３３を用いる場合、ワクチンによって誘導されるＳＦＴＳウイルス特異Ｔ細胞の割合がさらに増加することを意味する。
（ワクチン候補物質によって誘導されるＴ細胞の多機能性分析）
ＦＡＣＳデータに基づいて各グループでＴ細胞の多機能性を分析した。ＦＡＣＳでの結果に基づいて、免疫反応が最も強く誘導されるＯＬＰ６で刺激されたＣＤ８＋Ｔ細胞の多機能性をグループごとにまとめて結果を得た。ＩＭグループに比べてＩＭＥＰグループが多機能Ｔ細胞の割合がより高く、電気穿孔法とともに、免疫増強剤としてＩＬ−３３を用いたグループでその割合が最も高くなる結果を示した。これは、ワクチンによって誘導されたＴ細胞免疫反応が、電気穿孔法とＩＬ−３３を用いる場合に質的にもより良くなることを意味する。このような傾向は、全体作動Ｔ細胞中の多機能性Ｔ細胞の割合においても類似することが明らかになった（図４）。また、ＣＤ４＋Ｔ細胞の場合、多機能性において大差がなかった。
（ＳＦＴＳＶワクチン候補物質の抗体形成能評価）
（ワクチンによって誘導されたＳＦＴＳＶ特異的抗体生成反応検証）
ＳＦＴＳＶワクチンによって誘導されるＳＦＴＳウイルスに特異的な抗体生成反応を測定するために、ＥＬＩＳＡ（ｅｎｚｙｍｅ−ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ）アッセイ手法を実施した。組換えＳＦＴＳＶ ＮＰ抗原タンパク質に対するＥＬＩＳＡ手法を確立するために、ワクチンにより免疫原性を備えたと評価されていたマウスの血清を用いて実験を進行させた。上記のように、ＥＬＩＳＡアッセイ手法を利用して、ワクチンによって誘導された抗体免疫反応を定量的に確認した。図５Ａ〜図５Ｆに示すように、筋肉注射＋電気穿孔法（ＩＭＥＰ）グループのマウスにおいて、他のグループに比べて強い抗体免疫反応が生成されたことを確認した。図５Ａ〜図５Ｆにて、ＣｒＭＮは、クロム前駆体（ｃｈｒｏｍｉｕｍ ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ）を用いてＭＮ（微細針）表面を処理して微細針の表面にナノパターンを形成させた微細針を用いた。
（ＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチンによって誘導された中和抗体効能の定量評価）
ＤＮＡワクチン候補物質と多様な免疫増強剤によってマウスで産生された３３個の抗体の中和抗体力価をＰＲＮＴ５０方法で測定した。
本発明者らが開発したマウス標準抗体を陽性対照群として用い、実験の結果、実験群の個体別に２０〜１６０ＳＮの適正濃度（ｔｉｔｅｒ）値を示して中和抗体が形成されたことを確認した。特に、筋肉注射＋電気穿孔法でＤＮＡワクチンを注入したグループ（ＩＭＥＰ）でより強い中和抗体反応が観察され、微細針グループ（Ｍｉｃｒｏｎｅｅｄｌｅ）では非常に弱い中和抗体効能が検出された（図６）。
（ＳＦＴＳＶ感染動物モデルとしての中型動物モデルの確立）
ＳＦＴＳＶワクチンの感染抑制効能を検証するための新しい動物モデルを開発した。中型動物にＳＦＴＳ患者から分離したＳＦＴＳＶを感染させた結果、血液内ウイルスが検出され、感染８日まで血小板数が減少し続けることが観察された（図７）。また、体温が４日目に２℃以上増加し、このような症状が持続するにつれ、感染後９日前と後で感染した個体がすべて死亡することを確認した。この結果は、患者の臨床経過とも非常に類似していた。ＳＦＴＳＶ感染後、回復期に入らなければ、約１０日ほど後には死亡する様相を見せた。本発明者らによって確立された中型動物モデルは、ＳＦＴＳＶ感染時、高熱、ウイルス数値（ｖｉｒａｌ ｌｏａｄ）増加、血小板および血液内構成成分の変化などＳＦＴＳ患者と非常に類似の臨床的所見を見せているため、ワクチン効能検証のためのＳＦＴＳＶ感染動物モデルとして優れた適合性を示すものと判断した。
（ＳＦＴＳＶ感染動物モデルを用いたＳＦＴＳＶワクチンの免疫原性究明）
本発明者らは、確立したＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルをＳＦＴＳＶワクチンの感染抑制効能を検証するモデルとして使用した。ワクチン処理群（Ｎ＝６）には、ＳＦＴＳウイルス抗原発現ＤＮＡ５種を各２００ｕｇずつ計１ｍｇとなるように混合（表６参照）して、両大腿部位に５００ｕｇずつ皮内注射で接種した。対照群には、ＳＦＴＳウイルスの遺伝子が挿入されていないｍｏｃｋプラスミド（ｐＶａｘ−１由来）１ｍｇを両大腿部位に５００ｕｇずつ皮内注射で接種した。２つのグループとも、皮内投与直後に電気穿孔機を用いて０．２Ａで電気穿孔法を実施した。ワクチンは２週間隔で計５回投与した（０日目、１４日、２８日、４２日、および５６日目に投与）。
Figure 2021529538
（ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてワクチンによって誘導されたＴ細胞免疫反応評価）
ワクチン投与前、２回／４回／５回ワクチン投与各２週後に５ｍｌの血液を採取し、ＰＢＭＣおよび血清を分離してＳＦＴＳＶ−特異Ｔ細胞免疫反応（ＥＬＩＳｐｏｔアッセイ）および抗体免疫反応（ＥＬＩＳＡおよび中和抗体アッセイ）を測定した。ワクチンによって形成されたＳＦＴＳＶ特異Ｔ細胞免疫反応をＥＬＩＳｐｏｔ分析法により評価した。図８Ａ〜図８Ｄに示すように、ＳＦＴＳＶワクチン候補物質によって中型動物で非常に強いＳＦＴＳＶ特異Ｔ細胞免疫反応が誘導されることを確認し、２回投与後に安定した免疫反応が観察されることを確認した。
（ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてワクチンによって誘導された抗体免疫反応および中和抗体誘導能の定量評価）
ＤＮＡワクチンによって形成されたＳＦＴＳＶ特異反応抗体の形成をＥＬＩＳＡ方法で測定評価した。図９に示すように、空ベクターワクチンを接種した６匹のＭＯＣＫグループの場合、陰性対照群の血清と類似する程度のＥＬＩＳＡ値を示して特異抗体が形成されていないと判断された。しかし、他の６匹のＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチン接種グループで産生されたＳＦＴＳＶ特異反応抗体が陽性対照群の血清と類似するかより高く現れることを観察した。この結果は、ワクチン候補物質が中型動物で抗体免疫反応を効果的に誘導できることを示す結果である。
ＤＮＡワクチンによって誘導された抗体の中和抗体力価をＰＲＮＴ５０方法で測定した。図１０に示すように、ＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチンを接種した６匹の動物で産生された中和抗体力価は陽性対照群と類似する程度で現れることを確認した。これに対し、空ベクターワクチンを接種した６匹のワクチングループでは中和抗体が全く生成されないことが確認できた。この結果は、ＤＮＡワクチン候補物質によってＳＦＴＳＶ−特異中和抗体が効果的に誘導できることを意味する。
（ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてＳＦＴＳＶ予防ＤＮＡワクチンの防御効能検証）
ワクチンの防御効能を検証するために、ＳＦＴＳＶワクチンを投与した個体に致死量のＳＦＴＳＶを感染させた後、生存率、ＳＦＴＳＶウイルス数値、血小板数、体温、体重変化などのような臨床症状を評価した。図１１に示すように、生存率を評価した結果、対照群で感染後７日目に２匹、８日目に３匹、９日目に１匹で６匹の対照群の個体がすべてへい死した。これに対し、ＳＦＴＳＶワクチンを投与した個体は６匹とも生存した。
リアルタイムＰＣＲによりＳＦＴＳＶウイルス数値を測定した。図１２Ａ〜図１２Ｃに示すように、対照群では感染後２日目にウイルス数値が増加し、感染４日目に最も高いウイルス数値を示すことが観察された。これと比較して、ワクチングループの４匹の中型動物ではウイルス数値が測定されなかった。１匹のワクチングループの個体で対照群と類似する程度のウイルス数値が測定されたが、感染４日目に減少した後、感染６日目に完全に除去されたことを確認した。この個体は、血小板が増加していた個体と同じ個体で、ウイルス数値が減少するにつれて血小板数値も正常に回復したことを観察した。
血小板数を測定した結果、対照群の急激な血小板の減少がＳＦＴＳＶ感染によって観察された（図１３Ａ〜図１３Ｃ）。これと比較して、ワクチングループの血小板数値は正常に維持されることを確認した。ワクチングループの１つの個体で感染後４日目に血小板数値が約１２０×１０３／ｕｌまで減少することを観察したが、感染６日後に血小板数値が正常に回復したことを確認した。
一方、図１４Ａに示すように、ＳＦＴＳＶ感染後、対照群の個体は体重が有意に減少したが、ワクチングループの個体は体重が全く減少しないことを確認した。また、図１４Ｂに示すように、ＳＦＴＳＶ感染後、対照群の個体は体温が約２℃程度増加するが、ワクチングループの個体は明確な体温変化が観察されなかった。
この結果をまとめると、本発明者らが開発したＳＦＴＳＶ予防ＤＮＡワクチン候補物質は、中型動物モデルにおいて多様な臨床指標（生存率、血小板数値、体温、体重）の検証により確認したとおり、ＳＦＴＳＶ感染を効果的に予防することができた。
（マウスおよび中型動物において誘導された中和抗体の交差反応（ｃｒｏｓｓ−ｒｅａｃｔｉｖｉｔｙ）効能検査）
ＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチン投与後、マウスで形成されたＳＦＴＳＶ中和抗体の交差反応を評価するために、他のＳＦＴＳウイルスとのＰＲＮＴ５０テストを実施した。図１５Ａに示すように、ＳＦＴＳＶ／２０１４ウイルスには中和抗体力価が４０〜８０程度形成されたのに対し、他のウイルスであるＳＦＴＳＶ／２０１５に対する中和抗体の形成が明確に現れなかった。
また、ＳＦＴＳＶ ＤＮＡワクチン投与後、中型動物で形成されたＳＦＴＳＶ中和抗体の交差反応を評価するために、他のＳＦＴＳウイルスとのＰＲＮＴ５０テストを実施した。図１５Ｂに示すように、中和抗体力価がＳＦＴＳＶ／２０１４ウイルスで１６０〜３２０程度の値となり、他のウイルスであるＳＦＴＳＶ／２０１５に比べて２倍程度高く形成したことを確認した。
（ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてＳＦＴＳＶ予防ＤＮＡワクチンの免疫原性検証）
上記のように確立したＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルを用いてＳＦＴＳＶワクチンの感染抑制効能を検証した。各ワクチンの防御効能を検証するために、それぞれＧｎおよびＧｃが組み合わされたＧｎ／Ｇｃ、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチン処理群（それぞれＮ＝４、Ｎ＝３、Ｎ＝３、Ｎ＝３）には、ＳＦＴＳウイルス抗原発現ＤＮＡ５種を各２００ｕｇずつ計１ｍｇとなるように混合して、両大腿部位に皮内注射で接種した。対照群には、ＳＦＴＳウイルスの遺伝子が挿入されていないｍｏｃｋプラスミド（ｐＶａｘ−１由来）１ｍｇを両大腿部位に５００ｕｇずつ皮内注射で接種した。両グループとも、皮内投与直後に電気穿孔機を用いて０．２Ａで電気穿孔法を実施した。ワクチンは２週間隔で計３回投与した（０日目、１４日、２８日目に投与）。
（ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてワクチンによって誘導されたＴ細胞免疫反応評価）
ワクチン投与前、および３回ワクチン投与各２週後に５ｍｌの血液を採取し、ＰＢＭＣおよび血清を分離してＳＦＴＳＶ特異Ｔ細胞免疫反応（ＥＬＩＳｐｏｔアッセイ）および抗体免疫反応（ＥＬＩＳＡおよび中和抗体アッセイ）を測定した。ワクチンによって形成されたＳＦＴＳＶ特異Ｔ細胞免疫反応をＥＬＩＳｐｏｔ分析法により評価した。ＳＦＴＳＶワクチン候補物質によって中型動物で接種したワクチンによって各ＳＦＴＳＶ抗原に対して非常に強いＳＦＴＳＶ特異Ｔ細胞免疫反応が誘導されることを確認した。図１６に示すように、Ｇｎ／Ｇｃ ＳＦＴＳＶワクチン処理群で最も優れたＳＦＴＳＶ特異免疫反応を確認することができた。
（ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてワクチンによって誘導された抗体免疫反応および中和抗体誘導能の定量評価）
ＤＮＡワクチンによって誘導された抗体の中和抗体力価をＰＲＮＴ５０方法で測定した。図１７に示すように、ＳＦＴＳＶ Ｇｎ／Ｇｃに対するＤＮＡワクチンを接種した４匹の動物で効果的に中和抗体力価が生成されることを確認した。これに対し、空ベクターワクチンを接種した６匹のワクチングループをはじめとして、それぞれＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するワクチンを接種したグループの個体では中和抗体が全く生成されないことが確認された。この結果は、Ｇｎ／Ｇｃに対するＤＮＡワクチン候補物質によってＳＦＴＳＶ−特異中和抗体が効果的に誘導できることを意味する。
（ＳＦＴＳＶ感染中型動物モデルにおいてＳＦＴＳＶ予防ＤＮＡワクチンの防御効能検証）
各ワクチンの防御効能を検証するために、それぞれＧｎ／Ｇｃ、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した個体に致死量のＳＦＴＳＶを感染させた後、生存率、ＳＦＴＳＶウイルス数値、血小板数、体温、体重変化、ＡＬＴ、およびＡＳＴ変化などの臨床症状を評価した。図１８に示すように、生存率を評価した結果、対照群で感染後６匹の個体とも死亡し、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した３つのグループでいずれも、３匹の個体のうち１匹のみが生存した。これに対し、Ｇｎ／Ｇｃに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した個体は４匹とも生存した。
また、リアルタイムＰＣＲによりＳＦＴＳＶウイルス数値を測定した。その結果を図１９および図２０に示した。対照群では、感染後２日目にウイルス数値が増加し、感染６日目に最も高いウイルス数値を示すことを観察した。これと比較して、Ｇｎ／Ｇｃワクチングループの４匹の中型動物ではウイルス数値が測定されなかった。１匹のＧｎ／Ｇｃワクチングループの個体で感染後２日目に微量のウイルス数値が測定されたが、感染４日目に完全に除去されたことを確認した。これに対し、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した３つのグループでは対照群のウイルス数値と類似する程度にこれが増加することを確認した。
また、図２１および図２２に示すように、血小板数を測定した結果、対照群でＳＦＴＳＶ感染によって急激な血小板の減少を観察した。これと比較して、Ｇｎ／Ｇｃワクチングループの血小板数値は正常に維持されることを確認した。これに対し、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した３つのグループでは感染６日目まで血小板数値が約３００×１０３／ｕｌまで減少することを観察した。
図２３および図２４に示すように、白血球数を測定した結果、対照群でＳＦＴＳＶ感染によって急激な白血球の減少を観察した。これと比較して、Ｇｎ／Ｇｃワクチングループの白血球数値は正常に維持されることを確認した。これに対し、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した３つのグループでは感染６日目あるいは４日目まで白血球数値が減少することを観察した。
一方、ＳＦＴＳＶ感染後、対照群の個体は約８０％以下まで体重が有意に減少したが、ワクチングループの個体は９０％以下の体重減少を見せていないことを確認した（図２５および図２６参照）。
また、図２７および図２８に示すように、ＳＦＴＳＶ感染後、対照群の個体は体温が約２℃程度増加したが、Ｇｎ／Ｇｃワクチングループの個体は明確な体温変化が観察されなかった。これに対し、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した３つのグループでは０．５〜１℃程度体温が増加することを観察した。
図２９および図３０に示すように、血清内ＡＬＴを測定した結果、対照群でＳＦＴＳＶ感染によって急激なＡＬＴ数値の増加を観察した。これと比較して、Ｇｎ／ＧｃワクチングループのＡＬＴ数値は正常に維持されることを確認した。これに対し、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した３つのグループでは感染６日目までＡＬＴ数値が急激に増加することを観察した。
また、図３１および図３２に示すように、血清内ＡＳＴを測定した結果、対照群でＳＦＴＳＶ感染によって急激なＡＳＴ数値の増加を観察した。これと比較して、Ｇｎ／ＧｃワクチングループのＡＳＴ数値は正常に維持されることを確認した。これに対し、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐに対するＳＦＴＳＶワクチンを投与した３つのグループでは感染６日目までＡＳＴ数値が急激に増加することを観察した。
これよりＧｎ／Ｇｃ、ＮＰ、ＮＳ、およびＲｄＲｐそれぞれ抗原の防御効能を中型動物（フェレット）感染モデルにおいて検証した結果、Ｇｎ／Ｇｃ ＤＮＡワクチンが、他の抗原−発現ＤＮＡワクチンに比べてはるかに高い防御効能を示すことを確認することができた。
以上、本発明の特定の部分を詳しく記述したが、当業界における通常の知識を有する者にとって、このような具体的な記述は単に好ましい実施形態に過ぎず、よって、本発明の範囲が制限されないことは明らかである。したがって、本発明の実質的な範囲は添付した請求項とその等価物によって定義されるというべきである。
本発明は、重症熱性血小板減少症候群（Ｓｅｖｅｒｅ Ｆｅｖｅｒ ｗｉｔｈ Ｔｈｒｏｍｂｏｃｙｔｏｐｅｎｉａ Ｓｙｎｄｒｏｍｅ；ＳＦＴＳ）ウイルス疾患による感染病を予防または治療するためのワクチン組成物に関する。

Claims (16)

  1. 配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；
    配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；
    配列番号２９１で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９０で表される塩基配列を含む組換えの第３ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第３ペプチド；
    配列番号２９３で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９２で表される塩基配列を含む組換えの第４ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第４ペプチド；および
    配列番号２９５で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９４で表される塩基配列を含む組換えの第５ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第５ペプチドからなる群より選択されたいずれか１つ以上を含む組換えペプチドを有効成分として含む抗原用組成物。
  2. 前記抗原用組成物は、筋肉内、皮内、皮下、表皮下、経皮、または静脈内から選択された経路を通して体内注射される、請求項１に記載の抗原用組成物。
  3. 前記抗原用組成物は、筋肉内注射により対象体に注入される、請求項１に記載の抗原用組成物。
  4. 前記抗原用組成物は、皮内注射により対象体に注入される、請求項１に記載の抗原用組成物。
  5. 前記抗原用組成物は、体内注射時、追加的に電気穿孔法を利用して対象体に注入される、請求項２に記載の抗原用組成物。
  6. 配列番号２８７で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第１ペプチド；
    配列番号２８９で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第２ペプチド；
    配列番号２９１で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９０で表される塩基配列を含む組換えの第３ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第３ペプチド；
    配列番号２９３で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９２で表される塩基配列を含む組換えの第４ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第４ペプチド；および
    配列番号２９５で表されるアミノ酸配列を含むか、配列番号２９４で表される塩基配列を含む組換えの第５ＤＮＡによってコーディングされる組換えの第５ペプチドからなる群より選択されたいずれか１つ以上を含む組換えペプチドを有効成分として含むワクチン。
  7. 前記ワクチンは、筋肉内、皮内、皮下、表皮下、経皮、または静脈内から選択された経路を通して体内注射される、請求項６に記載のワクチン。
  8. 前記ワクチンは、筋肉内注射により対象体に注入される、請求項６に記載のワクチン。
  9. 前記ワクチンは、皮内注射により対象体に注入される、請求項６に記載のワクチン。
  10. 前記ワクチンは、体内注射時、追加的に電気穿孔法を利用して対象体に注入される、請求項７に記載のワクチン。
  11. 前記ワクチンは、免疫増強剤を追加的に含む、請求項６に記載のワクチン。
  12. 前記免疫増強剤は、ＩＬ−７、およびＩＬ−３３の少なくとも１つである、請求項１１に記載のワクチン。
  13. 配列番号２８６で表される塩基配列を含む組換えの第１ＤＮＡ；
    配列番号２８８で表される塩基配列を含む組換えの第２ＤＮＡ；
    配列番号２９０で表される塩基配列を含む組換えの第３ＤＮＡ；
    配列番号２９２で表される塩基配列を含む組換えの第４ＤＮＡ；および
    配列番号２９４で表される塩基配列を含む組換えの第５ＤＮＡからなる群より選択されたいずれか１つ以上の組換えＤＮＡを含む発現ベクター。
  14. 請求項１３に記載の発現ベクターが宿主細胞に導入されて形質転換された形質転換体。
  15. 請求項１〜５のいずれか一項に記載の抗原用組成物、請求項６〜１２のいずれか一項に記載のワクチン、請求項１３に記載の発現ベクター、または請求項１４に記載の形質転換体の有効量を個体に投与するステップを含む、重症熱性血小板減少症候群（ＳＦＴＳ）ウイルス感染に対する予防または治療方法。
  16. 請求項１〜５のいずれか一項に記載の抗原用組成物、または請求項６〜１２のいずれか一項に記載のワクチン、請求項１３に記載の発現ベクター、または請求項１４に記載の形質転換体を有効成分として含む、重症熱性血小板減少症候群（ＳＦＴＳ）ウイルス感染に対する予防または治療用薬学組成物。
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