JP2021159063A - コンニャク機能性食品及びその製造方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】コンニャク機能性食品及びその製造方法の提供。【解決手段】コンニャク機能性食品の製造方法であって、（１）コンニャク精粉、酵素及び水を混合して酵素分解を行い、酵素分解物を取得するステップと、（２）酵素分解物とヒドロキシメチルスターチナトリウムを混合して濃縮することで濃縮物を取得するステップと、（３）濃縮物を粉砕して成型することでコンニャク機能性食品を取得するステップ、を含むことを特徴とする方法。【選択図】なし
Description
本発明は栄養食品加工の技術分野に関し、特に、コンニャク機能性食品及びその製造方法に関する。
コンニャクは高い栄養価と医学的価値を有している。現代の研究によれば、コンニャクの塊茎の主な化学成分は、グルコマンナン、デンプン、その他の多糖、粗蛋白、必須アミノ酸や、カリウム、カルシウム、マグネシウム、ナトリウム、鉄、マンガン、銅等の人体に必須の多種の微量元素である。
コンニャクのグルコマンナンは、デンプンやセルロースに続く豊富な再生可能天然高分子資源であり、生分解性と水溶性を有している。グルコマンナンは、分子量が大きく、最高の粘度を有する自然界の食物繊維であり、自身の体積の２００倍もの水分子を吸着して粘性の溶液を形成可能なことから、満腹感を高めることが可能である。また、人体の消化酵素の影響を受けないため、熱量を発生することがない。つまり、グルコマンナンは周知の可溶性且つ多機能性の多糖であり、適度に分解することで機能がより強化されたコンニャクオリゴ糖を生成することも可能である。しかし、グルコマンナン（即ち、コンニャク精粉）をそのまま食したり、添加剤として使用したりすると腹部膨満感が生じるため、食品生産への応用には限りがある。
本発明は、速溶性のコンニャクグルコマンナンとコンニャクオリゴ糖を同時に含むコンニャク機能性食品及びその製造方法を提供することを目的とする。当該製品は、肥満予防、血中脂質の低下、血糖の低下、脂質過酸化の低下、抗炎症、生体におけるフリーラジカル除去の向上といった作用を有する。
上記の発明の目的を実現するために、本発明は以下の技術手段を提供する。
本発明は、コンニャク機能性食品の製造方法を提供する。当該製造方法は、（１）コンニャク精粉、酵素及び水を混合して酵素分解を行い、酵素分解物を取得するステップと、（２）酵素分解物とヒドロキシメチルスターチナトリウムを混合して濃縮することで濃縮物を取得するステップと、（３）前記濃縮物を粉砕して成型することでコンニャク機能性食品を取得するステップ、を含む。
好ましくは、前記ステップ（１）の酵素は、グルコマンナナーゼ、セルラーゼ及びペクターゼを含む。前記グルコマンナナーゼの用量はコンニャク精粉に対し５０〜７０ｕ／ｇとし、前記セルラーゼの用量はコンニャク精粉に対し４０〜６０ｕ／ｇとし、前記ペクターゼは体系総質量の０．０３〜０．０５％を占める。前記コンニャク精粉と水の比率は１０〜２０ｇ：１００ｍｌとする。また、前記酵素分解の温度は５５〜６５℃とし、酵素分解時間は２〜３ｈとする。
好ましくは、前記ステップ（２）におけるヒドロキシメチルスターチナトリウムと酵素分解物との質量体積比は２０〜４０ｇ：１００ｍｌとする。前記ステップ（２）における濃縮温度は７０〜９０℃とし、取得する濃縮物の水分含有量は８〜１０％とする。前記ステップ（２）における濃縮は真空濃縮とし、前記真空濃縮の真空度は０．０８〜０．１０ＭＰａとする。前記ステップ（３）における濃縮物の粉砕後の大きさは５０〜６０メッシュとする。
本発明は、更に、上記の製造方法で取得するコンニャク機能性食品を提供する。
本発明は、コンニャク機能性食品を提供する。当該製品はグルコマンナンを含んではいるが、従来のグルコマンナンと比べて重合度が低いため、速溶性を有するとともに、吸水膨張性を有さない。よって、グルコマンナンを食したり添加剤として使用したりした場合に腹部膨満感が発生するという従来技術の問題が解消される。更に、当該製品は、肥満予防、血中脂質の低下、肝脂肪変性の予防といった作用を有する。また、血糖の低下、脂質過酸化の低下、抗炎症、生体におけるフリーラジカル除去の向上といった作用を有し、糖尿病モデルラットの高血糖に対し改善作用を有する。
本発明は、更に、コンニャク機能性食品の製造方法を提供する。当該方法で製造される製品は、１錠あたりの重量が０．２８〜０．３２ｇ、水分含有量が８．３〜９％であり、「中国薬局方」（２０１５）の０９２１崩壊時間測定法により測定した場合の崩壊時間が３５〜４０ｍｉｎとなる。また、主要成分はコンニャクオリゴ糖及び可溶性多糖である。当該製品の生産過程では、食品レベルの酵素製剤と食品レベルのヒドロキシメチルスターチナトリウム以外には、いかなる加工助剤（酸、アルカリを含む）も食品添加剤（防腐剤、風味物質、色素等を含む）も使用しない。
本発明は、以下のステップを含むコンニャク機能性食品の製造方法を提供する。
（１）コンニャク精粉、酵素及び水を混合して酵素分解を行い、酵素分解物を取得する。
（２）酵素分解物とヒドロキシメチルスターチナトリウムを混合して濃縮することで濃縮物を取得する。
（３）前記濃縮物を粉砕して成型することでコンニャク機能性食品を取得する。
本発明において、前記コンニャク精粉は、市販の高純度のコンニャク精粉とすることが好ましい。
本発明において、前記ステップ（１）の酵素は、グルコマンナナーゼ、セルラーゼ及びペクターゼを含むことが好ましい。
本発明において、前記グルコマンナナーゼの用量は、コンニャク精粉に対し５０〜７０ｕ／ｇとすることが好ましく、より好ましくは、コンニャク精粉に対し５５〜６５ｕ／ｇ、更に好ましくは、コンニャク精粉に対し６０〜６２ｕ／ｇとする。前記セルラーゼの用量は、コンニャク精粉に対し４０〜６０ｕ／ｇとすることが好ましく、より好ましくは、コンニャク精粉に対し４５〜５５ｕ／ｇ、更に好ましくは、コンニャク精粉に対し４７〜５２ｕ／ｇとする。前記ペクターゼの用量は、体系総質量の０．０３〜０．０５％とすることが好ましく、より好ましくは、体系総質量の０．０３５〜０．０４％とする。
本発明において、前記体系とは、コンニャク精粉、酵素及び水を混合して得られる混合物のことをいう。
本発明において、好ましくは、コンニャク精粉と酵素を混合してから水と混合する。
本発明において、前記ステップ（１）のコンニャク精粉と水の比率は１０〜２０ｇ：１００ｍｌとすることが好ましく、より好ましくは、１３〜１７ｇ：１００ｍｌとする。
本発明において、前記酵素分解の温度は５５〜６５℃とすることが好ましく、より好ましくは６０〜６２℃とする。また、好ましくは、酵素分解時間を２〜３ｈとする。
本発明における前記酵素分解の原理としては、酵素の特異性に基づき、グルコマンナナーゼとセルラーゼを同時に使用することで、グルコマンナンをコンニャクオリゴ糖に酵素分解するとともに、セルラーゼがセルロースをグルコースに酵素分解する。また、ペクターゼがペクチンをガラクツロン酸に酵素分解することで、コンニャク精粉の粒子構造が破壊されるため、その他の酵素の作用効果が向上する。
本発明において、前記ステップ（２）のヒドロキシメチルスターチナトリウムと酵素分解物との質量体積比は、２０〜４０ｇ：１００ｍｌとすることが好ましく、より好ましくは２５〜３５ｇ：１００ｍｌとし、更に好ましくは２８〜３０ｇ：１００ｍｌとする。
本発明において、前記ヒドロキシメチルスターチナトリウムの作用は、充填及び粘着防止である。
本発明において、前記ステップ（２）の濃縮は湯煎条件下で行うことが好ましい。
本発明において、前記ステップ（２）の濃縮温度は７０〜９０℃とすることが好ましく、より好ましくは７５〜８５℃、更に好ましくは７８〜８２℃とする。また、取得する濃縮物の水分含有量は８〜１０％とすることが好ましく、より好ましくは８．５〜９％とする。
本発明において、前記ステップ（２）の濃縮は真空濃縮とすることが好ましい。前記真空濃縮の真空度は０．０８〜０．１０ＭＰａとすることが好ましく、より好ましくは０．０９ＭＰａとする。
本発明において、前記ステップ（３）の濃縮物の粉砕後の大きさは５０〜６０メッシュとすることが好ましく、より好ましくは５２〜５８メッシュとする。
本発明において、前記ステップ（３）で濃縮物を粉砕したあとは、打錠機で錠剤に成型することが好ましい。また、高さ（厚さ）の圧縮比は１〜２倍とすることが好ましい。
本発明は、更に、上記の製造方法で取得するコンニャク機能性食品を提供する。
以下に、実施例を組み合わせて、本発明で提供する技術手段につき詳細に説明するが、本発明の保護の範囲を限定するものと理解すべきではない。
ステップ１：酵素分解：１０ｇのコンニャク精粉とグルコマンナナーゼ、セルラーゼ及びペクターゼを混合した。グルコマンナナーゼの用量はコンニャク精粉に対し５０ｕ／ｇ、セルラーゼの用量はコンニャク精粉に対し４０ｕ／ｇとし、ペクターゼの用量は体系総質量の０．０３％とした。次に、水１００ｍｌと混合してから酵素分解を行った。条件を５５℃として２ｈ酵素分解することで酵素分解物を取得した。
ステップ２：濃縮：酵素分解物とヒドロキシメチルスターチナトリウムを混合した。ヒドロキシメチルスターチナトリウムと酵素分解物との質量体積比は２０ｇ：１００ｍｌとした。次に、真空度を０．０８ＭＰａ、濃縮温度を７０℃として真空濃縮を行った。これにより、水分含有量８％の濃縮物を取得した。
ステップ３：成型：前記濃縮物を大きさ５０メッシュとなるよう粉砕した。最後に、打錠機で錠剤に成型してコンニャク機能性食品を取得した。
当該方法で製造した製品は、１錠あたりの重量が約０．３２ｇ、水分含有量が約９％、「中国薬局方」（２０１５）の０９２１崩壊時間測定法により測定した崩壊時間が約４０ｍｉｎであった。
ステップ１：酵素分解：１３ｇのコンニャク精粉とグルコマンナナーゼ、セルラーゼ及びペクターゼを混合した。グルコマンナナーゼの用量はコンニャク精粉に対し６０ｕ／ｇ、セルラーゼの用量はコンニャク精粉に対し５５ｕ／ｇとし、ペクターゼの用量は体系総質量の０．０４％とした。次に、水１００ｍｌと混合してから酵素分解を行った。条件を６０℃として２ｈ酵素分解することで酵素分解物を取得した。
ステップ２：濃縮：酵素分解物とヒドロキシメチルスターチナトリウムを混合した。ヒドロキシメチルスターチナトリウムと酵素分解物との質量体積比は３０ｇ：１００ｍｌとした。次に、真空度を０．０９ＭＰａ、濃縮温度を８５℃として真空濃縮を行った。これにより、水分含有量９％の濃縮物を取得した。
ステップ３：成型：前記濃縮物を大きさ５２メッシュとなるよう粉砕した。最後に、打錠機で錠剤に成型してコンニャク機能性食品を取得した。
当該方法で製造した製品は、１錠あたりの重量が約０．３０ｇ、水分含有量が約８．５％、「中国薬局方」（２０１５）の０９２１崩壊時間測定法により測定した崩壊時間が約３７ｍｉｎであった。
ステップ１：酵素分解：２０ｇのコンニャク精粉とグルコマンナナーゼ、セルラーゼ及びペクターゼを混合した。グルコマンナナーゼの用量はコンニャク精粉に対し７０ｕ／ｇ、セルラーゼの用量はコンニャク精粉に対し６０ｕ／ｇ、ペクターゼの用量は体系総質量の０．０５％とした。次に、水１００ｍｌと混合してから酵素分解を行った。条件を６５℃として３ｈ酵素分解することで酵素分解物を取得した。
ステップ２：濃縮：酵素分解物とヒドロキシメチルスターチナトリウムを混合した。ヒドロキシメチルスターチナトリウムと酵素分解物との質量体積比は４０ｇ：１００ｍｌとした。次に、真空度を０．１０ＭＰａ、濃縮温度を９０℃として真空濃縮を行った。これにより、水分含有量１０％の濃縮物を取得した。
ステップ３：成型：前記濃縮物を大きさ６０メッシュとなるよう粉砕した。最後に、打錠機で錠剤に成型してコンニャク機能性食品を取得した。
当該方法で製造した製品は、１錠あたりの重量が約０．２８ｇ、水分含有量が約８．３％、「中国薬局方」（２０１５）の０９２１崩壊時間測定法により測定した崩壊時間が約３５ｍｉｎであった。
実施例１〜３で製造したコンニャク機能性食品について動物実験を行った。
ステップ１：動物モデルの作製及び群分け
健康なメスのマウス５０匹を選択し、一般飼料を２週間給餌したあと、ブランク対照群１０匹（一般飼料を給餌）とモデル対照群４０匹（高脂質飼料を給餌）の２群にランダムに分けた。次に、両群ともに制限なく飼料を与え、４週間飼育することでマウス肥満モデルを作製した。そして、モデル対照群を、１０匹ずつ高脂質モデル群（高脂質飼料を給餌）、コンニャク機能性食品低投与量群（高脂質飼料を給餌し、且つコンニャク食品１５ｍｇ・１００ｇ−１（ＢＷ）・ｄ−１を胃内投与）、コンニャク機能性食品中投与量群（高脂質飼料を給餌し、且つコンニャク食品３０ｍｇ・１００ｇ−１（ＢＷ）・ｄ−１を胃内投与）、コンニャク機能性食品高投与量群（高脂質飼料を給餌し、且つコンニャク食品６０ｍｇ・１００ｇ−１（ＢＷ）・ｄ−１を胃内投与）の４群に任意に分けた。続いて、ブランク対照群のマウスには引き続き一般飼料を給餌した一方、高脂質モデル群及びコンニャク食品低・中・高投与量群のマウスには引き続き高脂質飼料を給餌した。また、１か月連続でコンニャク食品を胃内投与した。飼育温度は２４〜２７℃、相対湿度は４５〜５０％とし、昼夜比率１１ｈ：１３ｈの断続照明を使用した。
健康なメスのマウス５０匹を選択し、一般飼料を２週間給餌したあと、ブランク対照群１０匹（一般飼料を給餌）とモデル対照群４０匹（高脂質飼料を給餌）の２群にランダムに分けた。次に、両群ともに制限なく飼料を与え、４週間飼育することでマウス肥満モデルを作製した。そして、モデル対照群を、１０匹ずつ高脂質モデル群（高脂質飼料を給餌）、コンニャク機能性食品低投与量群（高脂質飼料を給餌し、且つコンニャク食品１５ｍｇ・１００ｇ−１（ＢＷ）・ｄ−１を胃内投与）、コンニャク機能性食品中投与量群（高脂質飼料を給餌し、且つコンニャク食品３０ｍｇ・１００ｇ−１（ＢＷ）・ｄ−１を胃内投与）、コンニャク機能性食品高投与量群（高脂質飼料を給餌し、且つコンニャク食品６０ｍｇ・１００ｇ−１（ＢＷ）・ｄ−１を胃内投与）の４群に任意に分けた。続いて、ブランク対照群のマウスには引き続き一般飼料を給餌した一方、高脂質モデル群及びコンニャク食品低・中・高投与量群のマウスには引き続き高脂質飼料を給餌した。また、１か月連続でコンニャク食品を胃内投与した。飼育温度は２４〜２７℃、相対湿度は４５〜５０％とし、昼夜比率１１ｈ：１３ｈの断続照明を使用した。
ステップ２：サンプル採集
給餌１０週間後に各群のマウスを１２ｈ絶食させ、殺処理前に体重を測定した。そして、麻酔後に素早く眼球を摘出して採血し、頸椎脱臼により殺処理した。次に、肝臓、心臓、脾臓、腎臓、肺、腎周囲脂肪及び鼠蹊部皮下脂肪を素早く分離して、塩水で器官を洗浄してから濾紙で水を除去し、臓器及び組織の重量を測定した。
給餌１０週間後に各群のマウスを１２ｈ絶食させ、殺処理前に体重を測定した。そして、麻酔後に素早く眼球を摘出して採血し、頸椎脱臼により殺処理した。次に、肝臓、心臓、脾臓、腎臓、肺、腎周囲脂肪及び鼠蹊部皮下脂肪を素早く分離して、塩水で器官を洗浄してから濾紙で水を除去し、臓器及び組織の重量を測定した。
ステップ３：指標の測定
実験期間中は、マウスの成長状態（マウスの毛色、摂食、排便及び活動）を毎日記録した。また、水曜日と木曜日にそれぞれマウスの１日当たりの摂食量と飲水量を測定した。つまり、水曜日と木曜日に飼料の総量と給水総量を測定し、木曜日と金曜日の同一時間に飼料の残量と水の残量を測定した（即ち、摂食量＝飼料の総量−飼料の残量、飲水量＝水の総量−水の残量）。また、毎週土曜日に体重を１回測定した。
実験期間中は、マウスの成長状態（マウスの毛色、摂食、排便及び活動）を毎日記録した。また、水曜日と木曜日にそれぞれマウスの１日当たりの摂食量と飲水量を測定した。つまり、水曜日と木曜日に飼料の総量と給水総量を測定し、木曜日と金曜日の同一時間に飼料の残量と水の残量を測定した（即ち、摂食量＝飼料の総量−飼料の残量、飲水量＝水の総量−水の残量）。また、毎週土曜日に体重を１回測定した。
腹部を切開し、マウス体内の全ての脂肪（腎周囲の脂肪組織及び鼠蹊部の皮下脂肪組織を含む）を摘出して脂肪を測定し、式（１）に基づき脂肪指数を算出した。
脂肪指数／％＝ｍ１／ｍ×１００（１）
式中、ｍはマウスの殺処理前の体重／ｇ、ｍ１はマウス体内の各脂肪組織の質量／ｇである。
ステップ４：データ処理
ソフトウェアのＳＰＳＳ２０で統計分析を行い、平均値±標準偏差で表した。群間比較には一元配置分散分析を用いた。Ｐ＜０．０５は２つの群に有意差があることを示す。
ソフトウェアのＳＰＳＳ２０で統計分析を行い、平均値±標準偏差で表した。群間比較には一元配置分散分析を用いた。Ｐ＜０．０５は２つの群に有意差があることを示す。
表１から明らかなように、高脂質モデル群と正常対照群、コンニャク食品低・中・高投与量群との間には有意な差がみられた（Ｐ＜０．０５）。これは、コンニャク食品には満腹感があるためマウスの１日当たりの摂食量を減少可能であり、結果として血中脂質の低下や減量効果が達成されることを意味する。なお、コンニャク食品高投与量群の効果が最も顕著であった。
実施例１〜３で製造したコンニャク機能性食品について動物実験を行った。
ステップ１：糖尿病ラットモデルの作製
６０匹の健康なメスのラットを１週間正常に飼育した。また、期間中は実験動物の飲水量と摂食量を定期的に測定した。１週間後に実験動物の体重と空腹時血糖値を測定して記録し、１０匹ずつランダムに群分けした（正常対照群及び５つのモデル群）。モデル群のラットには、ＳＴＺを含有するクエン酸−クエン酸ナトリウム緩衝液を腹腔注射して糖尿病を誘発した（予め冷却しておいたクエン酸塩緩衝液ｐＨ＝４．５を用い、濃度１％でＳＴＺを溶解したあと、０．２２ｍｏｌ／Ｌの精密ろ過膜でろ過して除菌した。ＳＴＺは活性を喪失しやすいため、素早く計量したあと錫箔で包んで遮光した。また、準備したものをその場で使用するようにし、常に氷浴内で待機させた）。注射するＳＴＺの濃度は４５ｍｇ／ｋｇ、注射量は２％とした。一方、正常群のラットには等体積のクエン酸−クエン酸ナトリウム緩衝液を腹腔注射した。また、ＳＴＺの注射過程では、感染防止のためラットの腹腔の皮膚を消毒する必要があった。注射完了後、各群は引き続きこれまでの飲食を維持した。そして、２４ｈ後にラットの尾部から採血し、空腹時血糖値を測定した。血糖計及び血糖試験紙キットを用いてラットの空腹時血糖値を測定したところ、モデル群のラットの空腹時血糖値は＞１６．７ｍｍｏｌ／Ｌであった（２〜３回繰り返し測定可能としたが、血糖値は安定していた）。且つ、多飲多尿や体重減少が症状として発生したため、モデル作製に成功したとみなした。
６０匹の健康なメスのラットを１週間正常に飼育した。また、期間中は実験動物の飲水量と摂食量を定期的に測定した。１週間後に実験動物の体重と空腹時血糖値を測定して記録し、１０匹ずつランダムに群分けした（正常対照群及び５つのモデル群）。モデル群のラットには、ＳＴＺを含有するクエン酸−クエン酸ナトリウム緩衝液を腹腔注射して糖尿病を誘発した（予め冷却しておいたクエン酸塩緩衝液ｐＨ＝４．５を用い、濃度１％でＳＴＺを溶解したあと、０．２２ｍｏｌ／Ｌの精密ろ過膜でろ過して除菌した。ＳＴＺは活性を喪失しやすいため、素早く計量したあと錫箔で包んで遮光した。また、準備したものをその場で使用するようにし、常に氷浴内で待機させた）。注射するＳＴＺの濃度は４５ｍｇ／ｋｇ、注射量は２％とした。一方、正常群のラットには等体積のクエン酸−クエン酸ナトリウム緩衝液を腹腔注射した。また、ＳＴＺの注射過程では、感染防止のためラットの腹腔の皮膚を消毒する必要があった。注射完了後、各群は引き続きこれまでの飲食を維持した。そして、２４ｈ後にラットの尾部から採血し、空腹時血糖値を測定した。血糖計及び血糖試験紙キットを用いてラットの空腹時血糖値を測定したところ、モデル群のラットの空腹時血糖値は＞１６．７ｍｍｏｌ／Ｌであった（２〜３回繰り返し測定可能としたが、血糖値は安定していた）。且つ、多飲多尿や体重減少が症状として発生したため、モデル作製に成功したとみなした。
ステップ２：動物の群分け及び投薬
モデル作製に成功した糖尿病ラットを、コンニャク食品高・中・低投与量群、ポジティブ投与群、糖尿病モデル群にそれぞれ群分け及び調整した。また、血糖値がモデル作製前と同一のラットを正常群とした。次に、６週間連続で胃内投与を行った。実験期間中、各群のラットには通常通り自由に飲水及び摂食させた。胃内投与の時間は毎日午後４時であった。また、各群のラットに対する胃内投与量については、コンニャク食品高・中・低群がそれぞれ２．５００ｇ／（ｋｇ・ｄ）、１．２５０ｇ／（ｋｇ・ｄ）、０．６２５ｇ／（ｋｇ・ｄ）、ポジティブ投与群が０．１４０ｇ／（ｋｇ・ｄ）であった。且つ、正常群及び高血糖モデル群には等量の生理食塩水を投与した。
モデル作製に成功した糖尿病ラットを、コンニャク食品高・中・低投与量群、ポジティブ投与群、糖尿病モデル群にそれぞれ群分け及び調整した。また、血糖値がモデル作製前と同一のラットを正常群とした。次に、６週間連続で胃内投与を行った。実験期間中、各群のラットには通常通り自由に飲水及び摂食させた。胃内投与の時間は毎日午後４時であった。また、各群のラットに対する胃内投与量については、コンニャク食品高・中・低群がそれぞれ２．５００ｇ／（ｋｇ・ｄ）、１．２５０ｇ／（ｋｇ・ｄ）、０．６２５ｇ／（ｋｇ・ｄ）、ポジティブ投与群が０．１４０ｇ／（ｋｇ・ｄ）であった。且つ、正常群及び高血糖モデル群には等量の生理食塩水を投与した。
ステップ３：指標の測定
ラットへの胃内投与期間中は、各群のラットの体重を毎週測定して記録した。結果はｇで示し、各群のラットの体重の差を分析及び比較した。且つ、各群の実験ラットの空腹時血糖値を測定し、結果をｍｍｏｌ／Ｌで示すとともに、各群のラットの血糖値レベルの変化を分析及び比較した。また、実験動物の飲水量及び摂食量を測定して記録し、胃内投与期間中の各群のラットの飲水量及び摂食量の変化を分析した。
ラットへの胃内投与期間中は、各群のラットの体重を毎週測定して記録した。結果はｇで示し、各群のラットの体重の差を分析及び比較した。且つ、各群の実験ラットの空腹時血糖値を測定し、結果をｍｍｏｌ／Ｌで示すとともに、各群のラットの血糖値レベルの変化を分析及び比較した。また、実験動物の飲水量及び摂食量を測定して記録し、胃内投与期間中の各群のラットの飲水量及び摂食量の変化を分析した。
ステップ４：統計方法
ソフトウェアのＳＰＳＳ２０で統計分析を行い、平均値±標準偏差で表した。群間比較には一元配置分散分析を用いた。Ｐ＜０．０５は２つの群に有意差があることを示す。
ソフトウェアのＳＰＳＳ２０で統計分析を行い、平均値±標準偏差で表した。群間比較には一元配置分散分析を用いた。Ｐ＜０．０５は２つの群に有意差があることを示す。
表２から明らかなように、投与０日目において、モデル群のラットの摂食量は正常群よりも増加しており、有意な差がみられた（ｐ＜０．０５）。これは、モデル群のラットに糖尿病患者の症状としての多食があったことを意味する。また、投与後には、各コンニャク食品投与量群及びポジティブ投与群のラットの摂食量がモデル群よりも減少した。投与４２目において、モデル群のラットの摂食量は正常群との間に極めて顕著な有意差を示した（ｐ＜０．０１）。また、ポジティブ投与群及びコンニャク食品高・中投与量群のラットの摂食量は、モデル群との間に極めて顕著な有意差を示した（ｐ＜０．０１）。且つ、ポジティブ投与群とコンニャク食品高・中投与量群のラットの摂食量に有意な差はみられなかった（ｐ＜０．０５）。以上より、コンニャク食品は糖尿病ラットの多食症状を緩和可能であり、メトホルミンと類似の治療効果を有する可能性がある。
以上の実施例から明らかなように、本発明は、コンニャク機能性食品の製造方法を提供する。動物（白ネズミ）実験の結果より、当該製品は、肥満予防、血中脂質の低下、肝脂肪変性の予防といった作用を有することがわかった。また、血糖の低下、脂質過酸化の低下、抗炎症、生体におけるフリーラジカル除去の向上といった作用を有し、糖尿病モデルラットの高血糖に対し改善作用を有することがわかった。
以上は本発明の好ましい実施例にすぎない。当業者であれば、本発明の原理を逸脱しないことを前提に、若干の改良及び補足が可能であり、これらの改良及び補足もまた本発明の保護の範囲とみなすべきである。
Claims (4)
- コンニャク機能性食品の製造方法であって、
（１）コンニャク精粉、酵素及び水を混合して酵素分解を行い、酵素分解物を取得するステップと、
（２）前記酵素分解物とヒドロキシメチルスターチナトリウムを混合して濃縮することで濃縮物を取得するステップと、
（３）前記濃縮物を粉砕して成型することで前記コンニャク機能性食品を取得するステップ、を含むことを特徴とする方法。 - 前記ステップ（１）の前記酵素は、グルコマンナナーゼ、セルラーゼ及びペクターゼを含み、
前記グルコマンナナーゼの用量は前記コンニャク精粉に対し５０〜７０ｕ／ｇとし、前記セルラーゼの用量は前記コンニャク精粉に対し４０〜６０ｕ／ｇとし、前記ペクターゼは体系総質量の０．０３〜０．０５％を占め、
前記コンニャク精粉と前記水の比率は１０〜２０ｇ：１００ｍｌとし、
前記酵素分解の温度は５５〜６５℃とし、酵素分解時間は２〜３ｈとすることを特徴とする請求項１に記載の製造方法。 - 前記ステップ（２）における前記ヒドロキシメチルスターチナトリウムと前記酵素分解物との質量体積比は２０〜４０ｇ：１００ｍｌとし、
前記ステップ（２）における濃縮温度は７０〜９０℃とし、取得する前記濃縮物の水分含有量は８〜１０％とし、
前記ステップ（２）における濃縮は真空濃縮とし、前記真空濃縮の真空度は０．０８〜０．１０ＭＰａとし、
前記ステップ（３）における前記濃縮物の粉砕後の大きさは５０〜６０メッシュとすることを特徴とする請求項１に記載の製造方法。 - 請求項１〜３のいずれか１項に記載の製造方法で取得するコンニャク機能性食品。
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