JP2021063707A

JP2021063707A - 安定化されたｈｍｇｂ１含有溶液

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Publication number: JP2021063707A
Application number: JP2019188094A
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Inventors: 鈴代吉尾; Suzuyo Yoshio
Original assignee: Shino Test Corp
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Priority date: 2019-10-11
Filing date: 2019-10-11
Publication date: 2021-04-22
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Abstract

【課題】ＨＭＧＢ１含有溶液において、保存安定性を向上させることにより、長期間液状で安定なＨＭＧＢ１含有溶液を提供する。【解決手段】ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を添加させることにより、たとえ液体の状態であっても、ＨＭＧＢ１の変性若しくは分解又は効力の低下が生じることなく、長期間安定化が可能となる。特にカチオン部位が、第１族元素のイオン、第２族元素のイオン、又はアンモニウムイオンである物質。【選択図】なし

Description

本発明は、敗血症等の疾患のマーカーとなりうる試料中のＨＭＧＢ１（ハイモビリティーグループプロテイン−１；ＨＭＧ−１）を測定する際用いるＨＭＧＢ１含有溶液に関するものである。
本発明は、特に、化学、生命科学、分析化学及び臨床検査等の分野において有用なものである。

ハイモビリティーグループプロテイン（ＨｉｇｈＭｏｂｉｌｉｔｙＧｒｏｕｐＰｒｏｔｅｉｎ）は、クロマチン構造に含まれる大量の非ヒストンタンパク質として１９６４年に発見され、すべての高等動植物に普遍的に含まれるタンパク質であり、種族間で一次構造の保存性は極めて高い。
また、核内ばかりではなく、細胞質内にも豊富に存在することが分かっている。
生理作用ははっきりとは分かっていないが、ＨＭＧＢ１はＤＮＡと結合する際に二重螺旋構造を緩めることから、転写反応の際にＤＮＡの高次構造を最適構造に変化させて転写活性を高めるという、極めて広範囲の転写促進因子及びヌクレオソーム弛緩因子として機能すると考えられている。

ハイモビリティーグループプロテインには、いくつかの種類が存在する。例えば、ハイモビリティーグループプロテイン−１（ＨＭＧＢ１）、ハイモビリティーグループプロテイン−２（ＨＭＧＢ２）、ハイモビリティーグループプロテイン−３（ＨＭＧＢ３）、ハイモビリティーグループプロテイン−８（ＨＭＧＢ８）、ハイモビリティーグループプロテイン−１７（ＨＭＧＢ１７）、ハイモビリティーグループプロテイン−Ｉ（ＨＭＧＢＩ）、ハイモビリティーグループプロテイン−Ｙ（ＨＭＧＢＹ）、ハイモビリティーグループプロテイン−Ｉ（Ｙ）（ＨＭＧＢＩ（Ｙ））、ハイモビリティーグループプロテインＩ−Ｃ（ＨＭＧＢＩ−Ｃ）等を挙げることができる。

ワングらは１９９９年に、ＨＭＧＢ１自体を免疫原として調製したポリクローナル抗体を使用したウエスタンブロット法により、初めて血清中（血液中）のＨＭＧＢ１の定量測定を行った。
その結果、ワングらは、ＨＭＧＢ１が敗血症のマーカーとなりうることを示した。
そして、敗血症の患者において、生き残る患者と、死に至る患者を判別することが、精密に血液中のＨＭＧＢ１を測定することによって可能であることを示した。
即ち、ただ単に血液中でのＨＭＧＢ１の存在を確認するだけではなく、精密に定量することの有用性が明らかにされた（非特許文献１参照）。

ところで、試料中に含まれる測定対象物質の定量測定を行うには、濃度既知の標準液を用いて校正を行なうことが一般的であり、また、その定量測定が正確に、かつ精密に行われているかを確かめるために、濃度既知の測定試料を用いて精度管理を行なうことが一般的である。
ＨＭＧＢ１の測定に際して、校正に用いられる濃度既知の標準液や、精度管理に用いられる濃度既知の測定試料には、ＨＭＧＢ１含有溶液を用いる場合が多い。

しかしながら、水溶液中のタンパク質は、保存温度等の保存条件によっては変性や分解が促進されることも多く、その結果、タンパク質の高次構造が変化してしまい、抗体との反応性が低下してしまうことがあるため、このようなタンパク質の水溶液を、校正用の標準液や精度管理用の測定試料に用いてしまうと、誤った測定値を生ずる等の原因となりうる。

抗体との反応性の低下を防ぐために、タンパク質の水溶液を凍結乾燥して保存しておき、使用時に適切な量の水を添加して溶解させてから水溶液として使用する方法や、凍結保存する方法などが一般的にとられる。
しかし、凍結乾燥による方法では、使用時に水を添加しなければいけないため操作が煩雑となり、溶解操作による誤差が生じる恐れがある。
凍結保存による方法では、凍結融解の繰り返し、融解方法、融解状態によって測定値が変わってしまう可能性がある。
また、どちらの方法においても、液体の状態となった後の安定性は悪いことが殆どである。

凍結乾燥による方法、凍結による方法以外としては、ヘムタンパク質を含有する試料中に、遷移金属類を共存させることを特徴とするヘムタンパク質の安定化方法や、肺サーファクタント蛋白質と２価金属イオンを共存させ、肺サーファクタント蛋白質の抗原活性を安定化する方法などが知られている（特許文献１、特許文献２参照）。
しかしながら、ＨＭＧＢ１含有溶液の安定化について十分に検討した例はない。

上述のように、従来のＨＭＧＢ１含有溶液においては、保存安定性が不十分であり、ＨＭＧＢ１含有溶液の凍結乾燥品や凍結品を使わなければならず、使い勝手や正確性の面で課題を有しており、ＨＭＧＢ１の測定に問題が生じていた。よって、ＨＭＧＢ１含有溶液の保存安定性の向上が求められていた。

Ｈ．Ｗａｎｇら，ＳＣＩＥＮＣＥ，２８５巻，９号，２４８〜２５１頁，１９９９年発行

特開２００１−２４９１３２号公報特開２０１６−１８３１１２号公報

従って、本発明の課題は、ＨＭＧＢ１含有溶液において、保存安定性を向上させることにより、長期間液状で安定なＨＭＧＢ１含有溶液を提供することである。

本発明者は、上記課題の解決を目指して鋭意検討を行った結果、ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を添加させることにより、たとえ液体の状態であっても、ＨＭＧＢ１の変性若しくは分解又は効力の低下が生じることなく、長期間安定化できることを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、以下の発明を提供する。
（１）ＨＭＧＢ１とカチオン部位を有する物質とを含むＨＭＧＢ１含有溶液。
（２）カチオン部位が、第１族元素のイオン、第２族元素のイオン、又はアンモニウムイオンである、前記（１）記載のＨＭＧＢ１含有溶液。
（３）ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を添加することを特徴とする、溶液中のＨＭＧＢ１の安定化方法。
（４）カチオン部位が、第１族元素のイオン、第２族元素のイオン、又はアンモニウムイオンである、請求項３記載のＨＭＧＢ１の安定化方法。
（５）試料中のＨＭＧＢ１の測定に使用するための標準液であって、カチオン部位を有する物質を含有することを特徴とするＨＭＧＢ１測定用標準液。
（６）カチオン部位が、第１族元素のイオン、第２族元素のイオン、又はアンモニウムイオンである、請求項５記載のＨＭＧＢ１測定用標準液。

本発明のＨＭＧＢ１含有溶液は、ＨＭＧＢ１とカチオン部位を有する物質とを含むことにより、その保存安定性を向上させたＨＭＧＢ１含有溶液である。
また、本発明のＨＭＧＢ１の安定化方法は、ＨＭＧＢ１を液状で長期間安定化できる方法である。
そして、安定化されたＨＭＧＢ１含有溶液を標準液として用いることにより、疾患の診断等の場において、誤差を含まない、かつ正確なＨＭＧＢ１の測定値を提供することができるものである。

以下、本発明を詳細に説明するが、以下の実施の形態は、本発明を説明するための例示であり、本発明はこの実施の形態に限定されるものではない。また、本発明は、その要旨を逸脱しない限り、様々な形態で実施することができる。

〔１〕ＨＭＧＢ１含有溶液
１．概要
本発明においては、ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を含有させることにより、溶液状態のＨＭＧＢ１を安定化することができる。

２．ＨＭＧＢ１
本発明において、ＨＭＧＢ１としては、例えば、ヒト又は他の動物由来のもの等を挙げることができる。
また、ＨＭＧＢ１は、例えば、ヒト又は他の動物の体液、細胞、組織もしくは臓器等から、公知の方法等により抽出、精製等して、取得することができる。更に、ＨＭＧＢ１は、ヒト又は他の動物の遺伝子組み換え法により調製して取得することもできる。

なお、ＨＭＧＢ１のヒト胸腺、ブタ胸腺、ウシ胸腺、ヒト胎盤、好中球、ＨＬ−６０細胞株等からの取得の方法は、以下の文献等に記載されている（Ｈ．Ｇｏｏｄｗｉｎら，ＢｉｏｃｈｅｍｉｃａＢｉｏｐｈｉｓｉｃａＡｃｔａ，４０５巻，２８０〜２９１頁，１９７５年発行；Ｍ．Ｙｏｓｈｉｄａら，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，９５巻，１１７〜１２４頁，１９８０年発行；Ｙ．Ａｄａｃｈｉら，Ｊ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒ，５３０巻，３９〜４６巻，１９９２年発行）。

また、ＨＭＧＢ１の遺伝子組み換え法による調製方法は、以下の文献に記載されている（Ａ．Ｍｉｓｔｒｙら，ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，２２巻，７１８〜７２９頁，１９９７年発行）。

３．カチオン部位を有する物質
本発明のＨＭＧＢ１含有溶液は、カチオン部位を有する物質を含有する。本発明において、カチオン部位を有する物質としては、特に限定はなく、カチオン部位を有する物質であればよい。

（１）カチオン部位
本発明において、カチオン部位としては、例えば、金属イオン、又はアンモニウムイオン等を挙げることができる。

この金属イオンとしては、例えば、第１族元素、第２族元素、又はその他の金属等のイオンを挙げることができる。

第１族元素としては、例えば、リチウム、ナトリウム、カリウム、又はルビジウム等を挙げることができる。

第２族元素としては、例えば、ベリリウム、マグネシウム、ストロンチウム、又はバリウム等を挙げることができる。

その他の金属としては、例えば、ガリウム、インジウム、又はゲルマニウム等を挙げることができる。

本発明において、カチオン部位としては、例えば、第１族元素のイオン、第２族元素のイオン、又はアンモニウムイオンが好ましい。

（２）カチオン部位を有する物質
本発明において、カチオン部位を有する物質としては、特に限定はなく、カチオン部位を有する物質であればよい。
このカチオン部位を有する物質としては、例えば、カチオン部位の水酸化物、又はカチオン部位の塩等を挙げることができる。

このカチオン部位の塩としては、例えば、ハロゲンイオンとの塩、又は酸基との塩等を挙げることができる。

ハロゲンイオンとしては、例えば、フッ素イオン、塩素イオン、臭素イオン、又はヨウ素イオン等を挙げることができる。

酸基としては、例えば、硫酸基、塩酸基、硝酸基、リン酸、酢酸又はクエン酸等を挙げることができる。

そして、カチオン部位を有する物質の具体例としては、例えば、塩化カリウム、塩化ナトリウム、硝酸カリウム、硫酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム、臭化ナトリウム、塩化リチウム、塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化アンモニウム、又は硫酸アンモニウム等を挙げることができる。

本発明において、カチオン部位を有する物質としては、例えば、塩化カリウム、塩化ナトリウム、硫酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、クエン酸ナトリウム、リン酸ナトリウム、塩化リチウム、硫酸マグネシウム、又は硫酸アンモニウム等が好ましい。

本発明において、カチオン部位を有する物質の濃度は、溶液中のＨＭＧＢ１を十分に安定化できる量であれば特に限定されるものではなく、溶液中のＨＭＧＢ１の濃度等によって最適濃度は異なるが、溶液中において、１５０ｍＭ以上であればよく、好ましくは２００ｍＭ以上であり、より好ましくは５００ｍＭ以上であり、特に好ましくは１，０００ｍＭ以上である。

また、溶液中において、カチオン部位を有する物質の濃度の上限は、特に限定はないが、コスト等のことを考えると、３，０００ｍＭ以下が好ましく、２，０００ｍＭ以下がより好ましく、１，５００ｍＭ以下が特に好ましい。

なお、本発明で用いられるカチオン部位を有する物質は、単独で用いてもよいし、又は２種以上を組み合わせて用いてもよい。

４．溶液のｐＨ
本発明のＨＭＧＢ１含有溶液のｐＨは、ｐＨ９．０以下であることが好ましく、ｐＨ４．４〜８．０の範囲が特に好ましい。

また、本発明のＨＭＧＢ１含有溶液を前記のｐＨ範囲となるように使用する緩衝剤としては、前記のｐＨ範囲に緩衝能がある従来公知の緩衝剤を適宜使用することができる。
このような緩衝剤として使用できるものとしては、例えば、リン酸、クエン酸、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン、イミダゾール、グリシルグリシン、ＭＥＳ、Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ、ＡＤＡ、ＡＣＥＳ、Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓプロパン、ＰＩＰＥＳ、ＭＯＰＳＯ、ＭＯＰＳ、ＢＥＳ、ＨＥＰＥＳ、ＴＥＳ、ＤＩＰＳＯ、ＴＡＰＳＯ、ＰＯＰＳＯ、ＨＥＰＰＳ、ＨＥＰＰＳＯ、Ｔｒｉｃｉｎｅ、Ｂｉｃｉｎｅ、ＴＡＰＳ、ＣＨＥＳ、ＣＡＰＳＯ、若しくはＣＡＰＳ又はこれらの塩等の各緩衝剤を挙げることができる。

５．その他の構成成分
本発明のＨＭＧＢ１含有溶液の溶液中には、カチオン部位を有する物質の他に、公知の防腐剤等を必要に応じて適宜含有させることができる。

なお、本発明において、溶液中のＨＭＧＢ１を安定化するためには、ＨＭＧＢ１含有溶液に、カチオン部位を有する物質を存在させるだけでよく、それ以外の操作は特に必要ない。

〔２〕ＨＭＧＢ１測定用標準液
１．概要
本発明はまた、試料中のＨＭＧＢ１の測定に使用するための標準液において、カチオン部位を有する物質を含有させることを特徴とするＨＭＧＢ１測定用標準液を提供するものである。

２．ＨＭＧＢ１
本発明のＨＭＧＢ１測定用標準液における、ＨＭＧＢ１の詳細については、前記「〔１〕ＨＭＧＢ１含有溶液」に記載したとおりである。

また、本発明のＨＭＧＢ１測定用標準液に含有されるＨＭＧＢ１の濃度は、特に限定されるものではなく、ＨＭＧＢ１測定用標準液として通常使用される濃度範囲から適宜選択すればよい。

３．カチオン部位を有する物質
本発明のＨＭＧＢ１測定用標準液における、カチオン部位を有する物質の詳細については、前記「〔１〕ＨＭＧＢ１含有溶液」に記載したとおりである。

また、本発明において、ＨＭＧＢ１測定用標準液に、前記のカチオン部位を有する物質を含有させる場合の濃度は、標準液中のＨＭＧＢ１を十分に安定化できる量であれば特に限定されるものではなく、標準液中のＨＭＧＢ１の濃度等によって最適濃度は異なるが、標準液中において、１５０ｍＭ以上であればよく、好ましくは２００ｍＭ以上であり、より好ましくは５００ｍＭ以上であり、特に好ましくは１，０００ｍＭ以上である。

また、標準液中において、カチオン部位を有する物質の濃度の上限は、特に限定はないが、コスト等のことを考えると、３，０００ｍＭ以下が好ましく、２，０００ｍＭ以下がより好ましく、１，５００ｍＭ以下が特に好ましい。

４．標準液のｐＨ
本発明のＨＭＧＢ１測定用標準液のｐＨは、ｐＨ９．０以下であることが好ましく、ｐＨ４．４〜８．０の範囲が特に好ましい。

また、本発明のＨＭＧＢ１測定用標準液を前記のｐＨ範囲となるように使用する緩衝剤としては、前記のｐＨ範囲に緩衝能がある従来公知の緩衝剤等を適宜使用することができる。

なお、本発明のＨＭＧＢ１測定用標準液は、ＨＭＧＢ１含有溶液に前記のカチオン部位を有する物質を添加することによって調製することができ、例えば、前記のカチオン部位を有する物質とＨＭＧＢ１とを純水に溶解し、前記した従来公知の緩衝剤等によりｐＨを調整することにより、調製することができる。

また、本発明のＨＭＧＢ１測定用標準液は、試料中のＨＭＧＢ１を測定するための測定試薬と組み合わせて、試料中のＨＭＧＢ１を測定するための測定キットとして用いることができる。

以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例により限定されるものではない。

〔実施例１〕（本発明による溶液中のＨＭＧＢ１の安定化効果の確認−１）
塩化ナトリウムによる溶液中のＨＭＧＢ１の安定化効果を確認した。

１．ＨＭＧＢ１含有溶液の調製
後述する参考例１で調製したブタＨＭＧＢ１を含む溶液を、リン酸二水素カリウム−リン酸水素二カリウム緩衝液（ｐＨ７．４）で充分に透析した。
この透析後の前記ＨＭＧＢ１を含む溶液のタンパク質濃度をプロテインアッセイ（バイオラッド社製）で求めた。
そして、この前記ＨＭＧＢ１を含む溶液を、下記の濃度の塩化ナトリウム及びＢＳＡ１％を含む１０ｍＭグッド緩衝液（ｐＨ７．４）で希釈して、塩化ナトリウム濃度が異なるＨＭＧＢ１濃度が８０ｎｇ／ｍＬの５種類のＨＭＧＢ１含有溶液をそれぞれ調製した。
塩化ナトリウム：０ｍＭ、１５０ｍＭ、３００ｍＭ、５００ｍＭ又は１，０００ｍＭ

２．ＨＭＧＢ１含有溶液の保存
上記１で調製した５種類のＨＭＧＢ１含有溶液を冷蔵（２〜８℃）で保存した。

３．ＨＭＧＢ１の測定
保存開始時（０日）及び保存３日後、６１日後、１３１日後、１９３日後、３２７日後、４６９日後、並びに５９４日後に、５種類のＨＭＧＢ１含有溶液の各々のＨＭＧＢ１濃度を測定した。

なお、ＨＭＧＢ１の測定は、以下の（１）に記載する測定試薬を使用し、酵素免疫測定法（サンドイッチ法）により行った。

（１）測定試薬
（ａ）パーオキシダーゼ標識抗体
後述する参考例２で調製した、ＨＭＧＢ１及びＨＭＧＢ２に結合する抗体にパーオキシダーゼを結合させたパーオキシダーゼ標識抗体を、酵素免疫測定法のサンドイッチ法における酵素標識抗体として使用した。
（ｂ）マイクロプレート固相化抗体
後述する参考例３で調製した、ＨＭＧＢ１に結合しＨＭＧＢ２には結合しない抗体をマイクロプレートの各ウェルに固相化したマイクロプレート固相化抗体を、酵素免疫測定法のサンドイッチ法における固相化抗体として使用した。
（ｃ）希釈試薬
０．１％ＢＳＡを含む１００ｍＭグッド緩衝液（ｐＨ９．０）を調製し、希釈試薬とした。
（ｄ）洗浄液
０．０５％ツイーン２０（Ｔｗｅｅｎ２０）を含むリン酸緩衝生理食塩水（ｐＨ７．２）を調製し、洗浄液とした。
（ｅ）パーオキシダーゼ基質液
３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン（ＴＭＢＺ）を含む過酸化水素水溶液をパーオキシダーゼ基質液とした。
（ｆ）反応停止液
６Ｎ硫酸水溶液を調製して、反応停止液とした。
（ｇ）ＨＭＧＢ１測定用基準液
実施例１の１と同様にして調製したＨＭＧＢ１を含む溶液を、ＢＳＡ１％を含む１０ｍＭグッド緩衝液（ｐＨ７．４）で希釈して、ＨＭＧＢ１濃度が３２０ｎｇ／ｍＬのＨＭＧＢ１測定用基準液を調製し、−８０℃で凍結保存した。
なお、このＨＭＧＢ１測定用基準液は、使用時にＨＭＧＢ１濃度が８０ｎｇ／ｍＬとなるよう前記（１）の（ｃ）の希釈試薬で希釈して用いた。

（２）酵素免疫測定法（サンドイッチ法）による測定
（ａ）前記１で調製した、５種類のＨＭＧＢ１含有溶液をそれぞれ、前記（１）の（ｃ）の希釈試薬で４１倍に希釈した。
（ｂ）前記の５種類のＨＭＧＢ１含有溶液を、前記（１）の（ｂ）のマイクロプレート固相化抗体の各ウェルに１００μＬずつ添加して、３７℃で２時間静置して、マイクロプレートに固相化された抗体と、ＨＭＧＢ１含有溶液に含まれていたＨＭＧＢ１との抗原抗体反応を行わせた。
（ｃ）次に、前記のマイクロプレート固相化抗体の各ウェルを、前記（１）の（ｄ）の洗浄液で洗浄した。
（ｄ）前記（１）の（ａ）のパーオキシダーゼ標識抗体を、０．１％ＢＳＡを含むグッド緩衝液（ｐＨ７．０）で６，０００倍希釈した。次にこれを、前記の洗浄操作を行ったマイクロプレート固相化抗体の各ウェルに、１００μＬずつ添加した後、２５℃で２時間静置した。
これにより、マイクロプレートに固相化した抗体に結合したＨＭＧＢ１に、パーオキシダーゼ標識抗体を結合させる反応を行わせた。
（ｅ）その後、前記のマイクロプレート固相化抗体の各ウェルを前記（１）の（ｄ）の洗浄液で洗浄した。
（ｆ）次に、前記のマイクロプレート固相化抗体の各ウェルに、前記（１）の（ｅ）のパーオキシダーゼ基質液を１００μＬずつ添加した。そして、常温で反応させた。
（ｇ）前記のパーオキシダーゼ基質液の添加２０分後に、前記１の反応停止液を、前記のマイクロプレート固相化抗体の各ウェルに１００μＬずつ添加して、標識パーオキシダーゼの反応を停止させた。
（ｈ）次に、前記のマイクロプレート固相化抗体の各ウェル中の溶液の吸光度（４５０ｎｍ）をマイクロプレートリーダー（Ｍｏｄｅｌ６８０；バイオラッド社製）により測定した。
（ｉ）以上の操作により得られた、ＨＭＧＢ１濃度の測定結果を表１に示した。
なお、表１に示した各々の測定値（ＨＭＧＢ１濃度）は、生理食塩水（１５０ｍＭ塩化ナトリウム水溶液）を試料とした場合の吸光度を差し引き、前記（１）の（ｇ）のＨＭＧＢ１測定用基準液から換算したものである。

（３）測定結果
ＨＭＧＢ１濃度の測定結果を表１に示した。なお、表１に示した値は、測定で得られたＨＭＧＢ１濃度（ｎｇ／ｍＬ）であり、カッコ内の数値は保存開始時（０日）を１００％とした場合のＨＭＧＢ１の残存率を表したものである。

表１から明らかなように、ＨＭＧＢ１含有溶液に塩化ナトリウムを存在させていないもの（０ｍＭ）は、保存期間の経過に従ってＨＭＧＢ１の濃度が低下しており、保存開始時のＨＭＧＢ１濃度を１００％とした場合に、保存６１日後で７５．３％に、保存１３１日後では、５４．６％にまで低下していることが分かる。その後も、ＨＭＧＢ１濃度の低下は続き、５９４日目では４．３％まで低下していることが分かる。
これに対して、ＨＭＧＢ１含有溶液に塩化ナトリウムを存在させたものはいずれも、塩化ナトリウムを存在させない場合に比べてＨＭＧＢ１の残存率が著しく向上していることが分かる。
このように、ＨＭＧＢ１含有溶液に塩化ナトリウムを存在させることにより、溶液状態のＨＭＧＢ１を安定化できることが確認できた。

〔実施例２〕（本発明による溶液中のＨＭＧＢ１の安定化効果の確認−２）
カチオン部位を有する物質による溶液中のＨＭＧＢ１の安定化効果を確認した。

１．ＨＭＧＢ１含有溶液の調製
表２に記載のカチオン部位を有する物質を表２に記載のそれぞれの濃度で含有すること（又は含有しないこと）以外は、実施例１の１と同様にして、９種類のＨＭＧＢ１含有溶液をそれぞれ調製した。

２．ＨＭＧＢ１含有溶液の保存
上記１で調製した９種類のＨＭＧＢ１含有溶液を冷蔵（２〜８℃）で保存した。

３．ＨＭＧＢ１の測定
保存開始時（０日）及び保存６日後、１０日後、６４日後、９０日後、並びに２７６日後に、実施例１の３と同様にして、９種類のＨＭＧＢ１含有溶液の各々のＨＭＧＢ１濃度を測定した。

（３）測定結果
ＨＭＧＢ１濃度の測定結果を表２に示した。なお、表２に示した値は、測定で得られたＨＭＧＢ１濃度（ｎｇ／ｍＬ）であり、カッコ内の数値は保存開始時（０日）を１００％とした場合のＨＭＧＢ１の残存率を表したものである。

表２から明らかなように、ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を存在させていないもの（０ｍＭ）は、保存期間の経過に従ってＨＭＧＢ１の濃度が低下しており、保存開始時のＨＭＧＢ１濃度を１００％とした場合に、保存６４日後で７７．１％に、保存９０日後では４８．５％に、保存２７６日目では４０．６％まで低下していることが分かる。
これに対して、ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を存在させたものはいずれも、カチオン部位を有する物質を存在させない場合に比べてＨＭＧＢ１の残存率が著しく向上していることが分かる。
このように、ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を存在させることにより、溶液状態のＨＭＧＢ１を安定化できることが確認できた。

〔実施例３〕（本発明による溶液中のＨＭＧＢ１の安定化効果の確認−３）
カチオン部位を有する物質による溶液中のＨＭＧＢ１の安定化効果を確認した。

１．ＨＭＧＢ１含有溶液の調製
表３に記載のカチオン部位を有する物質を表３に記載のそれぞれの濃度で含有すること（又は含有しないこと）以外は、実施例１の１と同様にして、３種類のＨＭＧＢ１含有溶液をそれぞれ調製した。

２．ＨＭＧＢ１含有溶液の保存
上記１で調製した３種類のＨＭＧＢ１含有溶液を冷蔵（２〜８℃）で保存した。

３．ＨＭＧＢ１の測定
保存開始時（０日）及び保存１０２日後、並びに１６９日後に、実施例１の３と同様にして、２種類のＨＭＧＢ１含有溶液の各々のＨＭＧＢ１濃度を測定した。

４．測定結果
ＨＭＧＢ１濃度の測定結果を表３に示した。なお、表３に示した値は、測定で得られたＨＭＧＢ１濃度（ｎｇ／ｍＬ）であり、カッコ内の数値は保存開始時（０日）を１００％とした場合のＨＭＧＢ１の残存率を表したものである。

表３から明らかなように、ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を存在させていないもの（０ｍＭ）は、保存期間の経過に従ってＨＭＧＢ１の濃度が低下しており、保存開始時のＨＭＧＢ１濃度を１００％とした場合に、保存１０２日後で５７．５％に、保存１６９日後では、３７．８％にまで低下していることが分かる。
これに対して、ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を存在させたものはいずれも、カチオン部位を有する物質を存在させない場合に比べてＨＭＧＢ１の残存率が著しく向上していることが分かる。
このように、ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を存在させることにより、溶液状態のＨＭＧＢ１を安定化できることが確認できた。

〔参考例１〕（ブタＨＭＧＢ１の調製）
（１）ブタ胸腺を生理食塩水と一緒にミキサーにかけた。これを３回程度繰り返し、よく洗浄した。
（２）これを遠心分離機で遠心分離し（７，０００×Ｇ、１０分間）、上清を捨てた。
（３）胸腺細胞を別の容器に移し、７５０ｍＭ過塩素酸を添加し、ミキサーにかけた。
（４）これを遠心分離機で遠心分離し（７，０００×Ｇ、１０分間）、その上清を分取して、ポアサイズ０．４５μｍのガラスフィルターで濾過し、このガラスフィルターを７５０ｍＭ過塩素酸で洗浄した。
（５）アセトンに濾液を強く攪拌しながら加えた。
（６）この濾液を遠心分離機で遠心分離し（７，０００×Ｇ、１０分間）、その上清を分取して、さらにアセトンを加えた。
（７）沈殿を集めて、ドラフトで一晩乾燥させ、７．５ｍＭホウ酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ９．０）に溶解し、透析した。
（８）これをＣＭ−セファデックスカラムに通し、ブタ胸腺由来のＨＭＧＢ１を精製した。

〔参考例２〕（パーオキシダーゼ標識抗体の調製）
ＨＭＧＢ１及びＨＭＧＢ２に結合する抗体（モノクローナル抗体）にパーオキシダーゼを標識化して、パーオキシダーゼ標識抗体を調製した。

（１）パーオキシダーゼへのマレイミド基の導入
パーオキシダーゼ（西洋ワサビ由来）４ｍｇを０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）の０．３ｍＬに溶解した。これに、Ｎ−サクシニミジル−４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボン酸の１．０ｍｇをＮ，Ｎ’−ジメチルホルムアミドの６０μＬに溶解したものを添加して、３０℃で６０分間反応させた。
その後、これを０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）で一晩透析を行った。
以上の操作により、前記のパーオキシダーゼに、マレイミド基を導入した。

（２）抗体へのチオール基の導入
ＨＭＧＢ１及びＨＭＧＢ２に結合する抗体（モノクローナル抗体）〔自家調製品〕を、１０ｍｇ／ｍＬの濃度で含有する０．１Ｍリン酸緩衝液溶液（ｐＨ６．５）の０．５ｍＬに、Ｓ−アセチルメルカプト無水コハク酸の０．６ｍｇをＮ，Ｎ’−ジメチルホルムアミドの１０μＬに溶解したものを添加して、室温で３０分間反応させた。

その後これに、０．１ＭのＥＤＴＡの２０μＬ、０．１Ｍのトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．０）の０．１ｍＬ、及び１Ｍのヒドロキシルアミン塩酸塩（ｐＨ７．０）の０．１ｍＬをそれぞれ添加して、３０℃で５分間放置した。

次にこれを、５ｍＭのＥＤＴＡを含む０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）で平衡化しておいたセファデックスＧ−２５のカラムに通し、単純ゲル濾過クロマトグラフィーを行い、過剰のＳ−アセチルメルカプト無水コハク酸を取り除き、抗体画分を集めた。
以上の操作により、前記のＨＭＧＢ１及びＨＭＧＢ２に結合する抗体（モノクローナル抗体）に、チオール基を導入した。

（３）標識抗体の調製
前記（１）で調製したマレイミド基を導入したパーオキシダーゼ及び前記（２）で調製したチオール基を導入した抗体を一対一で混合し、３０℃で２０時間反応させて、前記抗体へのパーオキシダーゼの導入（標識化）を行った。

その後これを、０．１Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ６．５）で平衡化しておいたウルトラゲルＡｃＡ３４のカラムに通し、ゲル濾過クロマトグラフィーを行った。
このゲル濾過クロマトグラフィーの各画分を、１０％ポリアクリルアミド電気泳動にかけて確認を行い、未結合のパーオキシダーゼが混入しないように、パーオキシダーゼが結合した抗体の画分だけを集めた。

このパーオキシダーゼが結合した抗体の画分を濃縮して、パーオキシダーゼが結合した抗体、即ちパーオキシダーゼ標識抗体を得た。
そして、このパーオキシダーゼ標識抗体を含む溶液のタンパク質濃度を測定した。

〔参考例３〕（マイクロプレート固相化抗体）
ＨＭＧＢ１に結合しＨＭＧＢ２には結合しない抗体（モノクローナル抗体）をマイクロプレートに固相化して、マイクロプレート固相化抗体を調製した。

（１）ＨＭＧＢ１に結合しＨＭＧＢ２には結合しない抗体（モノクローナル抗体）〔自家調製品〕を、リン酸緩衝生理食塩水（５．５９ｍＭリン酸水素二ナトリウム、１．４７ｍＭリン酸二水素カリウム、１３７ｍＭ塩化ナトリウム、２．６８ｍＭ塩化カリウム（ｐＨ７．２））により１０μｇ／ｍＬとした後、９６ウェル−マイクロプレート（ヌンク社製）に１ウェル当り１００μＬずつ加え、３７℃で４日間以上静置して、前記抗体を前記マイクロプレートの各ウェルに吸着させ、固相化した。

（２）この抗体が固相化されたマイクロプレートに１％ＢＳＡを含む１０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）を１ウェル当り２００μＬずつ加えて、冷蔵で一晩以上静置してブロッキングを行った。

以上の操作により、ＨＭＧＢ１に結合しＨＭＧＢ２には結合しない抗体（モノクローナル抗体）をマイクロプレートに固相化した、マイクロプレート固相化抗体を調製した。

Claims

ＨＭＧＢ１とカチオン部位を有する物質とを含むＨＭＧＢ１含有溶液。
カチオン部位が、第１族元素のイオン、第２族元素のイオン、又はアンモニウムイオンである、請求項１記載のＨＭＧＢ１含有溶液。
ＨＭＧＢ１含有溶液にカチオン部位を有する物質を添加することを特徴とする、溶液中のＨＭＧＢ１の安定化方法。
カチオン部位が、第１族元素のイオン、第２族元素のイオン、又はアンモニウムイオンである、請求項３記載のＨＭＧＢ１の安定化方法。
試料中のＨＭＧＢ１の測定に使用するための標準液であって、カチオン部位を有する物質を含有することを特徴とするＨＭＧＢ１測定用標準液。
カチオン部位が、第１族元素のイオン、第２族元素のイオン、又はアンモニウムイオンである、請求項５記載のＨＭＧＢ１測定用標準液。