JP2021038194A - ウルシオール含量低減組成物の製造方法、その製造方法により製造される組成物、肥満防止剤、脂肪蓄積抑制剤および血中レプチン量増加抑制剤 - Google Patents
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Abstract
Description
ここで、ウルシは種々の有効成分を含むものであり、医薬の原料として大いに期待される。しかし、ウルシに含まれているウルシオールには、アレルギー性接触性皮膚炎などの強いアレルギー症状を誘発する等の問題があることも知られている(非特許文献5)。そのため、ウルシに含まれる有効成分を安全に利用するためには、ウルシから有効成分を抽出して、なおかつ、ウルシオールを除去することが必要とされる。こうしたことから、従来は、ウルシからウルシオールを除去する工程と、有効成分を抽出する工程の2つの工程を実施することにより、ウルシから有効成分を取得することが行われている。
そこで本発明者らは、このような従来技術の課題を解決するために、ウルシの有効成分を確保しつつ、ウルシオールを簡単な工程で除去できる、ウルシ由来組成物の製造方法を提供することを目的として検討を進めた。
[2] 前記ウルシが、ウルシの葉部である、[1]に記載の製造方法。
[3] 濃縮前のアルコール濃度をa容量%とし、濃縮後のアルコール濃度をb容量%としたとき、a−bが10容量%以上である、[1]または[2]に記載の製造方法。
[4] 前記濃縮により、前記溶液のアルコール濃度を50容量%未満に低下させる、[1]〜[3]のいずれか1項に記載の製造方法。
[5] 前記濃縮を減圧下で行う、[1]〜[4]のいずれか1項に記載の製造方法。
[6] 前記濃縮を20〜50℃で行う、[1]〜[5]のいずれか1項に記載の製造方法。
[7] 前記濃縮により、前記溶液に含まれるウルシオールを析出させる、[1]〜[6]のいずれか1項に記載の製造方法。
[8] 前記濃縮により、前記溶液に含まれるウルシオールの濃度を10分の1未満に低下させる、[1]〜[7]のいずれか1項に記載の製造方法。
[9] 前記濃縮溶液のウルシオール濃度が0.1重量%未満である、[1]〜[8]のいずれか1項に記載の製造方法。
[10] 前記濃縮前の溶液に含まれるケルシトリンの80重量%以上が、前記濃縮後の濃縮溶液に残存している、[1]〜[9]のいずれか1項に記載の製造方法。
[11] 前記濃縮溶液を乾燥して粉末状にする工程をさらに含む、[1]〜[10]のいずれか1項に記載の製造方法。
[12] [1]〜[11]のいずれか1項に記載の製造方法により製造される組成物。
[13] ニレ、オウセイ、クコシ、レイシおよびケニンジンからなる群より選択される1以上をさらに含有する、[12]に記載の組成物。
[14] [12]または[13]に記載の組成物を含む肥満防止剤。
[15] [12]または[13]に記載の組成物を含む脂肪蓄積抑制剤。
[16] [12]または[13]に記載の組成物を含む血中レプチン量増加抑制剤。
本発明の製造方法で製造された組成物は、ウルシオール含量が低減されているため、肥満防止剤、脂肪蓄積抑制剤、血中レプチン量増加抑制剤として安全に用いることができる。
本発明のウルシオール含量低減組成物の製造方法は、水とアルコールの混合溶媒と、この混合溶媒中に抽出されたウルシの成分を含有する溶液を濃縮して、溶液の容量を2分の1以下にした濃縮溶液を得る工程(濃縮工程)を含むことを特徴とする。
ウルシは、葉、根、幹、枝などにより構成され、製造方法に供するのはいずれの部分であってもよいが、葉部や、幹および枝の樹皮や木部が採取し易く、中でも葉部を用いることが好ましい。樹皮や木部については盛んに研究されているものの、ウルシの葉部については研究例があまりなく、本発明の製造方法によりウルシオール含量を低減させることで、その有効成分の研究開発を大きく進展させることができる。
葉部を細片状または粉末状にするときには、採取した葉部をそのままカッター、細断機、コロイドミルなどを用いて処理してもよいが、いったん乾燥してから細断、粉末化処理を行うのが好ましい。葉部の乾燥は、水分含量が10重量%未満、好ましくは5重量%未満、より好ましくは3重量%未満になるまで行うのが一般的である。乾燥は、自然乾燥でも機械乾燥でもよい。また、乾燥を行う場合は、葉部採取から30分以内に行うのが好ましい。
得られたウルシ抽出液は、そのまま濃縮工程に供してもよいが、濾過等により不溶物を除去してから濃縮工程に供することが好ましい。
この濃縮過程で、ウルシオールが析出等して溶液におけるウルシオール含量が低減する。この析出したウルシオールを濾過等で濃縮溶液から除去することにより、ウルシオール含量が低減した組成物が得られる。これにより、本発明の製造方法では、溶液の濃縮という簡単な工程で、ウルシの有効成分を溶液中に確実に残しつつ、溶液のウルシオール含量を大幅に低減することができる。
また、溶液の濃縮により、溶液のアルコール濃度を50容量%未満に低下させることが好ましく、45容量%未満に低下させることがより好ましく、40容量%未満に低下させることがさらに好ましい。
また、溶液の濃縮により、溶液に含まれるウルシオールの濃度を、濃縮前のウルシオールの濃度の10分の1未満に低下させることが好ましく、20分の1未満低下させることがより好ましく、30分の1未満低下させることがさらに好ましい。
また、濃縮前の溶液に含まれるケルシトリンの80重量%以上が、濃縮後の濃縮溶液に残存していることが好ましく、濃縮前の溶液に含まれるケルシトリンの85重量%以上が、濃縮後の濃縮溶液に残存していることがより好ましい。
ウルシ抽出液や濃縮溶液に含まれる各成分の含量は、高速液体クロマトグラフィ(HPLC)により測定することができる。その具体的な測定条件については、実施例の欄の記載を参照することができる。
本発明の製造方法により製造されるウルシオール含量低減組成物(本発明の組成物)は、ウルシに由来する、ケルシトリンやポリフェノールなどの生理活性物質(有効成分)を含有するとともに、アレルギーを誘発するウルシオールの含量が大幅に低減されていることから、医薬組成物や健康飲料として有用である。このため、本発明の組成物の予防または治療有効量を、ヒトを含む哺乳動物に投与することによって疾患を予防または治療するために使用することができる。
また、本発明の組成物は血中レプチン量増加抑制剤として用いることができる。レプチンは、脂肪組織由来ホルモンであり、視床下部ニューロンのレプチン受容体を活性化して摂食抑制とエネルギー消費増加をもたらす一方で、肥満度が高い程、血中レプチン量が高値になることが知られている。そのため、血中レプチン量は、一般に肥満度の指標とされており、血中レプチン量が低い値である程、肥満が抑制されていることを意味する。本発明の血中レプチン量増加抑制剤の有効量を生体に投与すると、脂肪蓄積が抑制され肥満が防止される結果、血中レプチン量の増加が抑制されると推測される。なお、本発明の血中レプチン量増加抑制作用がレプチンの作用不足をもたらすものでないことは、後掲の実施例において、本発明のウルシオール含量低減組成物を適用した系で、血中レプチン量の増加が抑制されると同時に、体重増加や脂肪蓄積も抑制されていることから確認することができる。
たとえば、本発明の組成物を医薬品として使用する場合には、その投与経路によって様々な剤型を選択することができる。本発明の組成物は、経口的または非経口的に投与することができる。例えば、直腸投与、鼻内投与、頬側投与、舌下投与、膣内投与、筋肉内投与、皮下投与、静脈内投与を行なうことが可能である。中でも、本発明の組成物は、経口投与、皮下投与または経皮投与するのが好ましく、経口投与することが特に好ましい。
具体的には、紅茶、清涼飲料水、ジュース、あめ、澱粉質食品、各種加工食品等に使用することができるが、使用形態はこれらの具体例に限定されるものではない。また、必要に応じて、ゲル化剤などを添加して食感を改良してもよい。
(a)高速液体クロマトグラフィ(HPLC)による成分分析
ケルシトリン、ケルセチン、スルフレチン、フィセチン、フスチン等については、HPLCシステム(アジレント・テクノロジー社製:アジレント1100シリーズ)にて成分分析を行った。具体的には、逆相カラム(東ソー社製:TSKgel ODS-80Ts(内径4.6mm×長さ250mm))を用い、10mMのリン酸−アセトニトリル混合溶媒を移動相とするリニアグラジエント溶出(95:5→5:95、60分間)を行い、各成分の検出、含有量の測定を行った。
ウルシオールについては、HPLCシステム(島津製作所社製:LC6Aシステム)と逆相カラム(野村化学社製:Develosil ODS-5(内径10mm×長さ250mm))を用い、90%アセトニトリルを移動相として溶出させ、272nmの検出波長で検出、含有量の測定を行った。
(b)総ポリフェノール含有量の測定
総ポリフェノール量は、フォーリン・チオカルト法を用いて測定した。
(c)アルコール濃度の測定
アルコール濃度は、アルコール濃度計(アズワン社製:DAAL−25)を使用して測定した。
(d)抗酸化活性の測定
DPPHラジカル消去活性の測定:
96穴マイクロプレートに、測定用試料溶液60μLに、0.2MのMES(2−morpholinoethanesulphonic acid) 緩衝液(pH6.0)60μL、20%エタノール溶液60μL、エタノールに溶解した400μMのDPPH(2,2−Diphenyl−1−picrylhydrazyl)溶液60μLを加え室温で正確に20分間反応を行った。マイクロプレートリーダーを用いて520nmにおける吸光度を測定した。Troloxを用いて回帰直線を作成し、試料添加量(μL/assay)に相当するTrolox量(μmol Trolox/g)として算出した。
酸素ラジカル吸収能(ORAC)の測定:
96穴マイクロプレートに、測定用試料溶液25μL、Fluorescein溶液(75mMリン酸緩衝液(pH7.4)に溶解)150μLを加え、37℃で30分間インキュベーションした。AAPH(2,2’−azobis(2−methylpropionamidine)dihydrochloride)溶液25μLを添加して振盪撹拌後直ちに、37℃に保ったプレートリーダーを用いて蛍光強度を測定した(Em:485nm, Ex:528nm)。その後、5分間隔で60分間蛍光強度の経時変化を測定した。蛍光強度を記録したグラフの曲線下面積を算出し、試料1g 重量あたりのTrolox相当量(μmol Trolox/g)としてORAC値を表示した。
(e)α−グルコシダーゼ阻害活性の測定
96穴マイクロプレートに、測定用試料溶液10μLと67mMリン酸緩衝液(pH6.8)に溶解した酵母由来α-グルコシダーゼ(0.1mU/mL)40μLを加え、37℃ で15分間予備加温した。続いて、67mMリン酸緩衝液(pH6.8)に溶解したp-ニトロフェニルα-D-グルコピラノシド(1mM)50μLを添加し、反応を開始させた。37℃ で正確に30分間反応させた後、0.5M炭酸ナトリウム溶液100μLを加えて混合し反応を停止した。マイクロプレートリーダーを用いて、400nmにおける吸光度を測定した。α-グルコシダーゼ阻害率は、次の式を用いて計算した。
阻害率(%)={(C-S)/(C-B)}x 100
C:コントロールの400nmにおける吸光度
S:サンプルの400nmにおける吸光度
B:ブランクの400nmにおける吸光度
なお、阻害率が50%を示したときの酵素反応時における試料終濃度をIC50値と定義し、これをα-グルコシダーゼ阻害活性の尺度とした。
韓国ウォンジュ市にて採取したウルシ葉(Rhus vernicifluaの葉部)の乾燥粉末800gに対し、70%エタノール・30%水混合溶媒(10倍量、8L)を加え、室温(25℃)にて16時間撹拌することによりウルシ葉抽出液を得た。ここで得られたウルシ葉抽出液は、70%エタノール・30%水混合溶媒と、混合溶媒中に抽出されたウルシの成分を含む溶液に相当する。得られたウルシ葉抽出液を、濾紙(No.131)を装着したブフナーロートを用いて吸引濾過した。この濾液を、ロータリーエバポレーターを使用して40℃の湯浴中で約10分の1量(約800mL)まで減圧濃縮した。濃縮の工程でウルシオールを含む黒色の沈殿物が生じた。続いて濃縮溶液とウルシオールを含む黒色沈殿物とを分離するため、再度、濾紙(No.131)を装着したブフナーロートを用いて濃縮物の吸引濾過を行い、濾液(濃縮溶液)を回収した。
得られた濃縮溶液の成分分析を行ったところ、ウルシオールは検出されず、ケルシトリンやポリフェノールを含有していることが確認された。
その後、濃縮溶液に90℃で5分間の加熱殺菌を行い、十分に放冷した後、−80℃で予備凍結を行い、さらに、凍結乾燥機で約6日間凍結乾燥することでウルシ葉エキス乾燥粉末(組成物1)を得た。
実施例1で得たウルシ葉エキス乾燥粉末について、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)にて成分分析を行ったところ、ケルシトリンの含有が認められたが、樹皮や木部に含有しているケルセチンやスルフレチン、フィセチン、フスチン等は検出されなかった。
濃縮過程でのウルシオールおよびケルシトリンの含量変化を調べるため、実施例1と同様の条件で70%エタノール・30%水混合溶媒を用いてウルシ葉抽出液を調製し、このウルシ葉抽出液(900mL)を約1/10量(100mL)になるまで減圧濃縮した。この濃縮過程で段階的に溶液の一部(溶液サンプル)を採取して、その溶液サンプルのエタノール濃度、ウルシオール含量およびケルシトリン含量を測定し、その測定結果から、溶液サンプルを採取した時点での溶液のエタノール濃度、ウルシオール残存率およびケルシトリン残存率を求めた。その結果を図1に示す。図1において、横軸は、溶液サンプルを採取した時の溶液の容量を示し、左側縦軸は、溶液のエタノール濃度を示し、右側縦軸は、溶液のウルシオール残存率およびケルシトリン残存率を示す。ここで、残存率とは、濃縮前の含量を100重量%としたときの、各時点での含量の割合を意味する。
図1に示すように、ウルシオール含量は濃縮の進行により顕著に減少する一方で、有用成分であるケルシトリンは濃縮過程で殆ど失われず初期の含有量を維持した。このことから、エタノール・水混合溶媒によるウルシ抽出液を濃縮することにより、ウルシオール含量を選択的に低減できることがわかった。
ウルシ葉乾燥粉末800gに対し、10倍量(8L)のエタノール・水混合溶媒を加え、室温(25℃)にて16時間撹拌することによりウルシ葉抽出液を得た。このとき、混合溶媒のエタノール濃度は70%、40%、または35%とした。
以上の結果から、水・アルコール混合溶媒のウルシ葉抽出液に濃縮を行う本発明の製造方法は、アレルギー成分であるウルシオールのみを簡便かつ効率良く除去することができ、且つ、有用成分であるケルシトリンやポリフェノールの量を低下させずに維持できる特徴を有し、濃縮工程を用いない方法と比較して極めて優れていることがわかった。
(C)抗酸化活性の評価
実施例1で得たウルシ葉エキス乾燥粉末(組成物1)について、酸素ラジカル吸収能(ORAC)を測定して抗酸化活性を評価するとともに、総ポリフェノール量をカテキン当量で測定した。その結果を表2に示す。
実施例1で得たウルシ葉エキス乾燥粉末(組成物1)について、体重増加抑制作用、腹腔内脂肪蓄積抑制作用および血中レプチン量増加抑制作用を評価した。試験は、6週齢の雄のC57BL/6Jマウスについて行った。具体的には、18頭のC57BL/6Jマウス(日本エスエルシー社から購入)を3つのグループI、II、IIIに分け、グループIには高脂肪飼料(オリエンタル酵母工業社製:HFD−60)、グループIIには、組成物1を1重量%添加した高脂肪飼料、グループIIIには、組成物1を2重量%添加した高脂肪飼料をそれぞれ与え、週毎に2回の体重測定を行い、試験開始から56日目に腹腔内脂肪量の測定と採血を行って血中レプチン量を測定した。統計処理は、Dunnett法にて行い、有意水準は0.05とした。体重の測定結果を図2に示し、腹腔内脂肪量の測定結果を図3に示し、血中レプチン量の測定結果を図4に示す。図2〜4においてエラーバーは標準誤差を表す。血中レプチン量はELISA法にて測定した。
図2〜4に示すように、グループIと比較して、グループIIに体重増加抑制傾向が認められ、グループIIIには有意な体重増加抑制作用が認められた。また、グループIIIには、グループIと比較して腹腔内脂肪の蓄積抑制傾向が認められ、また、有意な血中レプチン量増加抑制作用が認められた。
Claims (16)
- 水とアルコールの混合溶媒に生ウルシを溶解させた溶液を濃縮して、溶液の容量を2分の1以下にした濃縮溶液を得る工程を含む、ウルシオール含量低減組成物の製造方法。
水とアルコールの混合溶媒と、前記混合溶媒中に抽出されたウルシの成分を含有する溶液を濃縮して、溶液の容量を2分の1以下にした濃縮溶液を得る工程を含む、ウルシオール含量低減組成物の製造方法。 - 前記ウルシが、ウルシの葉部である、請求項1に記載の製造方法。
- 濃縮前のアルコール濃度をa容量%とし、濃縮後のアルコール濃度をb容量%としたとき、a−bが10容量%以上である、請求項1または2に記載の製造方法。
- 前記濃縮により、前記溶液のアルコール濃度を50容量%未満に低下させる、請求項1〜3のいずれか1項に記載の製造方法。
- 前記濃縮を減圧下で行う、請求項1〜4のいずれか1項に記載の製造方法。
- 前記濃縮を20〜50℃で行う、請求項1〜5のいずれか1項に記載の製造方法。
- 前記濃縮により、前記溶液に含まれるウルシオールを析出させる、請求項1〜6のいずれか1項に記載の製造方法。
- 前記濃縮により、前記溶液に含まれるウルシオールの濃度を10分の1未満に低下させる、請求項1〜7のいずれか1項に記載の製造方法。
- 前記濃縮溶液のウルシオール濃度が0.1重量%未満である、請求項1〜8のいずれか1項に記載の製造方法。
- 前記濃縮前の溶液に含まれるケルシトリンの80重量%以上が、前記濃縮後の濃縮溶液に残存している、請求項1〜9のいずれか1項に記載の製造方法。
- 前記濃縮溶液を乾燥して粉末状にする工程をさらに含む、請求項1〜10のいずれか1項に記載の製造方法。
- 請求項1〜11のいずれか1項に記載の製造方法により製造される組成物。
- ニレ、オウセイ、クコシ、レイシおよびケニンジンからなる群より選択される1以上をさらに含有する、請求項12に記載の組成物。
- 請求項12または13に記載の組成物を含む肥満防止剤。
- 請求項12または13に記載の組成物を含む脂肪蓄積抑制剤。
- 請求項12または13に記載の組成物を含む血中レプチン量増加抑制剤。
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