JP2020535848A - 細胞収容装置 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、米国仮出願第62/565、962号(2017年9月29日に出願)及び米国仮出願第62/671、297号(2018年5月14日に出願)の利益を主張する。なおこれらの文献は、本明細書によって参照により本明細書に組み込まれている。
本明細書で述べるすべての刊行物、特許、及び特許出願は、それぞれの個々の刊行物、特許、または特許出願が参照により組み込まれていると明確かつ別個に示された場合と同じ程度まで、参照により本明細書に組み込まれている。
図108に示すように、約0.05秒という最短の融合時間によって、剥離力が最も強い融合がメンブレン間に形成された(.45N)。剥離力は融合強度を示すので、融合時間が短いことで装置の安定性及び寿命が増加し得る。融合温度800°F、場所あたり1打点、及び融合力約6ポンドで熱融合ツールによって形成した完全な装置を、図109に示す。チャネルの丸い均一な形状、ならびに図110に示す装置の剥離力応力ひずみ曲線によって、約0.45Nという高い融合強度が確認される。
小さい動物での評価用の六角形チャネルアレイ装置
この例では、小さい動物での評価用の六角形チャネルアレイ装置の構成について説明する。図6に、種々のサイズの六角形チャネルアレイ装置のレンダリングを示す。ラットでの試験用にデザインされたチャネルアレイ装置は細長い六角形状で、寸法は1.9cmx0.8cmである。ラット装置は93のチャネルを有し、SA:V比は82cm−1で、安全体積は97%であり、43μlの体積を保持することができる。マウスでの試験用にデザインされたチャネルアレイ装置は六角形状で、寸法は0.64cmx0.55cmである。マウス装置は19のチャネルを有し、SA:V比は82cm−1で、安全体積は95%であり、10μlの体積を保持することができる。ミッド装置は1.4cmx0.55cmで、49のチャネルを有し、SA:V比は83cm−1で、安全体積は96%であり、24μlの体積を保持することができる。SA:V比を一定に保ちながら、装置のサイズをスケール変更することができる。
変形ステップ後のPVDFメンブレンの超微細構造分析
この例では、変形ステップ後のPVDFメンブレンの超微細構造分析について説明する。PVDFメンブレンは、圧力及び温度の組み合わせの下で変形ステップを受けた。組み合わせは、65psi及び135℃、65psi及び150℃、65psi及び165℃、100psi及び135℃、100psi及び150℃、100psi及び165℃、140psi及び135℃、140psi及び150℃、140psi及び165℃であった。図12及び図16に、変形ステップを受けた後のPVDFメンブレンの断面図の走査型電子顕微鏡写真を示す。図17に、変形ステップを異なる圧力及び温度条件で行った場合の細胞収容装置に対する測定したチャネル深さまたは特徴深さ(μm)を示す。PVDFメンブレンは、温度及び圧力条件に応じてチャネル深さが異なっており、165℃という高い温度では全般的にチャネルは深くなった。チャネルの寸法は温度及び圧力条件によって制御することができる。チャネル寸法の制御は、細胞収容装置のSA:V比を決定するため、重要である。
融合ステップ後のPVDF細胞収容装置の分析
この例では、融合ステップ後のPVDF細胞収容装置の分析について説明する。第1のPVDFメンブレンは変形ステップを、65psi及び135℃、65psi及び150℃、65psi及び165℃、100psi及び135℃、100psi及び150℃、100psi及び165℃、140psi及び135℃、140psi及び150℃、または140psi及び165℃の下で受けた。次に、変形メンブレンを225℃で第2のPVDFメンブレンに融合した。図13に、融合ステップを受けた後のPVDF細胞収容装置の断面図の走査型電子顕微鏡写真を示す。第1のメンブレンを、65psi及び165℃、100psi及び150℃、140psi及び135℃、140psi及び150℃で変形させて、第2のメンブレンに融合した。これらの温度及び圧力パラメータの外で変形させた第1のメンブレンは融合が不十分であり、第1及び第2のメンブレン間の継ぎ目が走査型電子顕微鏡写真で明確に視認できた。
融合及び非融合条件のDSC分析
この例では、融合及び非融合条件のDSC分析について説明する。第1のPVDFメンブレンは、変形ステップを100psi及び160℃または100psi及び173℃の下で受け、続いて急冷された。図20に、100psi及び160℃で変形させたメンブレンの熱流測定値は小さいショルダーピークを有し、ベースラインPVDFメンブレンと同様であったことを示す。すなわち、このメンブレンは結晶配列を保存して、第2のメンブレンと融合することを示している。100psi及び173℃で変形させたメンブレンの熱流測定値は二次ピークを有していた。すなわち、このメンブレンは結晶領域を形成して、第2のメンブレンと融合しないことを示していた。
細胞収容装置の表面プロファイル
この例では、細胞収容装置の表面プロファイルについて説明する。図18に、そのチャネルアレイ内で均一な幾何学的形状を伴う平滑面を有していた細胞収容装置の表面インフェロメトリーを示す。活性領域は滑らかな多孔質表面を有していたが、融合領域は平坦面を有していた。
変形及び融合ステップ後のePTFEの超微細構造分析
この例では、変形及び融合ステップ後のePTFEメンブレンの超微細構造分析について説明する。ePTFEメンブレンは、変形ステップを30psi及び340℃、4psi及び360℃、または6psi及び360℃で受けた。図19に、変形ステップを受けた後のePTFEメンブレンの走査型電子顕微鏡写真を示す。ePTFEメンブレンはチャネルを形成することができた。全般的に温度が上がると、変形の増加及び節の減少が観察された。図20に、変形ステップを6psi及び360℃で、融合ステップを370℃で5分間受けた融合したePTFEメンブレンを示す。ePTFEメンブレンは、PVDFメンブレンと比べて、変形及び融合ステップに対して異なる温度及び圧力範囲が必要である。ここで説明する製造ステップを異なる材料のメンブレンに適用して細胞収容装置の形成に成功する場合がある。
ラットへの細胞収容装置の生体内移植
この例では、ラットへの細胞収容装置の生体内移植について説明する。これらの装置は、チャネル直径は同様で約350μmであったが、チャネル間隔は異なっていた。低密度装置はチャネル間のチャネル間隔が約500μmであり、高密度装置はチャネル間隔が約200μmであった。図28に示すように、高チャネル密度及び低チャネル密度を伴う細胞収容装置を、正常なラットの種々の場所の生体内に移植した(腹膜前、網内、肝上、及び皮下移植)。図29に、腹膜前移植後の細胞収容装置の周りの血管新生を示す。装置内の各チャネルにおいて微細血管が観察された。脈管構造のH&E組織像は平滑筋細胞の存在を示しており、動脈中に見られた。図37に、低チャネル密度装置と比べて高チャネル密度装置で観察されたさらなる血管新生及びさらなる分岐を示す。図32に、低チャネル密度及び高チャネル密度装置に対する血管及び分岐の装置あたりのカウントを示す。低チャネル密度装置の場合の装置あたり約500血管と比べて、高チャネル密度装置は装置あたり約1000血管であった。また、低チャネル密度装置の場合の装置あたり約300分岐と比べて、高チャネル密度装置は分岐が著しく多くて装置あたり約500分岐であった。装置のチャネル密度が高いほど、装置の周りの血管新生が多かった。より高いチャネル装置で見られる血管新生が増える利点は、より多くのチャネルが装置に加えられるため、装置の完全性とバランスを取る必要があり得ることである。チャネル密度は細胞収容装置の周りの血管新生のレベルに影響する可能性がある。
クラスタサイズのデザインへの影響
この例では、クラスタサイズがどのようにデザインに影響を及ぼす可能性があるかについて説明する。クラスタサイズは装置に充填された細胞集合体のサイズを指す。
ePTFEメンブレンの変形条件
この例では、ePTFEメンブレンに対する変形条件の結果を示す。図41に示すのは、360℃及び6psiで熱変形によって形成したePTFE細胞収容装置(形成時、上部)、及びその後に樹脂を用いてハードキャスティングしたものの断面画像である(下部)。形成時のePTFEメンブレンは、そのチャネル形状を保持しているようには見えず、節よりも小繊維構造が多いようには見えなかった。ePTFEメンブレンを樹脂を用いてハードキャスティングしたものは、変形ステップ後にそのチャネル形状を保持するように見えた。
2つの平坦なePTFEメンブレンのT剥離試験
この例では、融合したePTFEメンブレンの結合強度を試験する焼結及び非焼結のePTFEメンブレンのT剥離試験について説明する。図43に、異なる温度で異なる時間長さの間(1、5、15秒)融合された2つの平坦なePTFEメンブレンの薄膜引張試験に対するASTMD882−08規格に従うASTMT剥離試験による破壊荷重(N)を示す。ePTFEメンブレンは、融合前に370℃で7分間焼結した(AS)かまたは非焼結(AU)のいずれかであった。焼結したePTFEメンブレンは融合温度が約320℃〜325℃であり、非焼結のePTFEメンブレンは融合温度が約340℃〜350℃であった(DSCで測定)。2つの平坦なePTFEメンブレンを、302℃〜427℃の範囲の種々の温度で1、5、または15秒間、互いに融合した。ASTMT剥離試験を受けた後に、破断または破壊荷重(N)を記録した。全般的に、焼結−焼結メンブレン(AS/AS)間の融合は、破壊荷重(0N付近〜約0.3Nの範囲)が、非焼結−非焼結メンブレン(AU/AU)(0N付近〜約1Nの範囲)、または非焼結−焼結メンブレン(AU/AS)(約0.2N〜0.7Nの範囲)と比べて、最も低かった。全般的に、AU/AUメンブレンの融合は破壊荷重がもっと高かった。全般的に、融合温度の増加とともに破壊荷重は増加した。全般的に、少なくとも1つの非焼結メンブレンを有していると、破壊荷重が高くなった。
ePTFE装置のT剥離試験
この例では、ePTFE装置のT剥離試験について説明する。図38に、薄膜引張試験に対するASTMD882−08規格によるASTMT剥離試験用に用いるツールを示す。このツールを用いて、融合した細胞収容ePTFE装置を試験した。破壊時の被試験装置を示す。グラフはePTFE装置の応力ひずみ曲線を示す。第1のメンブレンは焼結及び変形させ、第2のメンブレンは平坦で非焼結であり、これらを474℃で0.05秒間融合した。ePTFE装置は、破壊ひずみが60%よりも大きく、約0.4Nの荷重に達した。これは、融合領域がもっと広い融合した平坦メンブレンの荷重の約78%であった。この応力ひずみ曲線は、融合部位が融合されて、高い引っ張り歪みにおいてさえ融合したままであることを示していた。
ePTFE装置のバースト圧力
この例では、細胞収容装置のバースト圧力の測定について説明する。装置のシール強度を試験するために、装置に10秒あたり1psiで水を充填して、破壊時の圧力またはバースト圧力を測定した。図39に、バースト圧力試験用の充填されたフレームを伴わないePTFE細胞収容装置と、ePTFE細胞収容装置(eCAD)プロトタイプに対する破壊時の充填圧力(psi)のグラフとを示す。PVDFプロトタイプの場合、破壊時のバースト圧力は約10psiであった。ePTFEプロトタイプの場合、破壊時のバースト圧力は約11psiであった。このバースト圧力は、典型的な充填条件下で装置が曝露され得る約2psiの最大充填圧力よりもはるかに高い。
細胞収容装置プロトタイプ
この例では、細胞収容装置のプロトタイプについて説明する。図14に、スカラップ状の周囲と種々のSA:V比を実現するためのチャネル寸法の変化とを伴う細胞収容装置のレンダリングを示す。図14に示すように、細胞収容装置は、全高1801、内部高さ1802、メンブレン厚1803、内部間隔1804、内径1805、スルーホール内径1806、及びスルーホール間隔1807によって特徴付けられる。
ヒト装置プロトタイプ
この例では、人間が利用するようにフレーム上に組立てられた細胞収容装置のプロトタイプについて説明する。図40に、人間が利用するようにフレーム上に組立てられた3つの細胞収容装置のプロトタイプを示す。細胞収容装置は形状が六角形であってもよい。フレームは、寸法が約26.9mmx75.6mmであってもよく、形状が長円形で細胞収容装置間の空間に穿孔があってもよい。細胞収容装置は約850μm厚で20cm2のフットプリントであってもよい。組立てられた装置は約4億の細胞を保持して細胞塊体積が約350μLであってもよい。これらの細胞はインスリンを形成することができる場合がある。
メンブレンの表面改質
この例では、メンブレン表面を改質するプロセスについて説明する。メンブレンを処理して、疎水性表面を伴うメンブレン上に親水性を与えてもよい。メンブレンの表面を、親水性を伴うポリマーを架橋することによって改質してもよい。またポリマーは生体適合性であってもよく、メンブレン上に生体適合性コーティングを形成してもよい。一例では、アンモニウム過硫酸塩(APS)開始剤を用いた熱開始重合プロセスにおいて、ヒドロキシプロピルアクリレート(HPA)をテトラ(エチレングリコール)ジアクリレート(TEGDA)を用いてメンブレン上で架橋してもよい。図41に、メンブレンの表面上に親水コーティングを形成するためのプロトコルの例を示す。ePTFE装置を100%エタノールに浸漬した後に、30%エタノールに3分間浸漬した。装置を、30%エタノール中の3%HPA、2%TEGDA、1%APSに5分間浸漬して、室温から80℃まで加熱した。そして、装置を100%エタノール中で5分間煮沸し、Milli−Q水または超純水に30分間浸漬して、乾燥させた。図38に、水中に親水コーティング処置浸漬した後のePTFE細胞収容装置を示す。図41に、表面改質後のePTFE装置の電子顕微鏡写真を示す。
装置のドット直径及び密度
この例では、装置のドット直径及び密度(たとえば中心間の間隔)について説明する。接着剤ドットを2層で積み重ねた。装置を手動でひっくり返して、細胞充填中に装置の厚さを制限するように作用する接着剤ドットのパターンを形成した。37ドットのパターン(各ドットは直径が約1.25mmで中心間の間隔が3.3mm)を、2連続層で堆積した。最初に、接着剤を0.05秒塗布で塗布して、各ドットを別個に1秒間硬化させることによって、パターンをメンブレンに対して作成した。より小さい第2の層を第1のパターン上に0.03秒の分配時間で適用して、未硬化のままにした。次に周辺接着剤を本明細書で説明するように配置して、マシンビジョンを用いてメンブレンを未硬化の接着剤の上に配置した。1秒の侵入時間の後、組立体全体の硬化を、最初に周辺を硬化させ、次に内部領域を掃引してドットパターンを28及び112秒間、それぞれ硬化させることによって行った。次に、完成装置を手動で組立体プラットフォームから取り出し、二次容器内に配置して、組立後の熱硬化を37℃で2時間行った。
装置のドット直径及び充填のパラメータ
この例では、種々の構成のドットを伴う装置の充填体積について説明する。ドット直径及び密度(たとえば、中心間の間隔)は、一連のカラムを形成することによって、許容可能な充填体積に影響を及ぼすことができる。種々の構成のドットを用いて例16に説明するように装置を調製した。装置をドットのパターンを用いて調製した。各ドットは直径が約1.25mmで、ドットピッチが2.6mm、3.3mm、または4.4mmであった。あるドットの中心を、その隣接するドットの中心からドットピッチ距離だけ離して配置した。同じ寸法の装置の場合に、ドットピッチが短い装置の方がドットピッチが長い装置よりもドット密度が高くてもよい。ドット直径及び装置寸法が同じ装置の場合に、ドットピッチが短い装置の方が、ドットピッチが長い装置よりも充填に利用できる内部体積が小さい可能性がある。そして、装置の外部上で制限されない状態でまたは外部制限部を伴って、装置に細胞懸濁液を充填した。外部制限部によって、装置のメンブレンが互いから離れるように外側に膨張することが防止される場合がある。図2に、装置に充填された細胞の量がドットピッチ及び制限部の存在とともに変化する様子を示す。ドットピッチが減少すると、充填する細胞の量は少なかった。細胞量は、ドットピッチが4.4mmで、制限部を用いずに充填した装置内の108x106細胞から、ドットピッチが2.6mmで、外部制限部を用いて充填した装置内の42x106細胞の細胞量まで減少した。同じドットピッチの装置の場合、装置に充填した大量の細胞が、外部制限部を用いて充填したときに減少した。
細胞収容装置上の接着剤ドット
細胞収容装置上にドットを形成するとき、装置を手動でひっくり返して、細胞充填中に装置の厚さを制限するように作用する接着剤ドットのパターンを形成することができる。たとえば、37ドットのパターン(各ドットは直径が約1.25mmで中心間の間隔が3.3mm)を、2連続層で堆積した。最初に、接着剤を0.05秒塗布で塗布して、各ドットを別個に1秒間硬化させることによって、パターンをメンブレンに対して作成した。より小さい第2の層を第1のパターン上に0.03秒の分配時間で適用して、未硬化のままにした。次に周辺接着剤をメンブレン上に配置して、マシンビジョンを用いてメンブレンを未硬化の接着剤の上に配置した。1秒の侵入時間の後、組立体全体の硬化を、最初に周辺を硬化させ、次に内部領域を掃引してドットパターンを28及び112秒間、それぞれ硬化させることによって行った。次に、完成装置を手動で組立体プラットフォームから取り出し、二次容器内に配置して、組立後の熱硬化を37℃で2時間行った。
超極薄装置の生体内移植
この例では、超極薄の細胞収容装置のNODscidガンマ(NSG)マウスモデル、免疫不全マウスモデルへの移植について説明する。NGSマウスに糖尿病を誘発した。図61に示すように、マウスの血中グルコースレベルは400mg/dL以上に上がった。糖尿病を誘発した後、超極薄装置をマウスの精巣上体脂肪パッド内に移植した。図61Aに、移植された超極薄装置の例を示す。これらの移植された超極薄装置には、親水コーティング及び800万のSC膵島細胞を伴う高流束ePTFEメンブレンが含まれている。超極薄装置を移植した後、すべてのテストマウスの血中グルコースレベルは約100mg/dLまで減少して糖尿病誘発前のレベルに近くなり、図61に示すように、90日間、超極薄装置を取り出すかまたは外植するまでそうであった。外植した超極薄装置を組織学によって分析した。図62B及びCに、装置の全体にわたる高密度の細胞を示し、NSGマウスモデルに90日間移植した後の装置の核が含まれている。膵島細胞が充填された超極薄装置を糖尿病の被検者に移植して、被検者の血中グルコースレベルを長期間に渡って減らして正常化することができる。
AS1超極薄装置の生体内移植
この例では、マウスモデルに30日間及び3ヶ月間の生体内移植を行った後の超極薄装置内の細胞の状態について説明する。図62に、マウスモデルに30日間の生体内移植を行った後の細胞が充填された超極薄装置の組織切片の低倍率画像を示す。超極薄装置をAS1メンブレンを用いて形成して、SC膵島細胞を充填した(SEM−01と指定)。図63に組織切片の高倍率画像を示す。細胞は良好に分配され、30日間の生体内後に装置の全体にわたって生存可能であった。
超極薄装置内の内分泌細胞の生体内移植
この例では、マウスモデルに3ヶ月間の生体内移植を行った後の超極薄装置内の内分泌細胞の細胞表現型について説明する。図64に、細胞収容装置に封入及び充填する前の内分泌細胞の微小凝集塊を示す。図65に、マウスに3ヶ月間の生体内移植を行った後の内分泌細胞の微小凝集塊が充填された超極薄装置の染色された組織画像を示す。青い染みは核を示し、オレンジブラウンの染みはCペプチドの存在を示し、ピンク色の染みはグルカゴンの存在を示している。図64の微小凝集塊内のオレンジブラウン及びピンク色の染みは、Cペプチド及びグルカゴンを分泌する活性な内分泌細胞の存在を示す。図65の微小凝集塊内のオレンジブラウン及びピンク色の染みは、3ヶ月間の生体内移植の間、超極薄装置内の内分泌細胞が生存可能及び活性な状態を続け、その内分泌腺表現型、分泌Cペプチド及び、グルカゴンを維持することを示している。
超極薄装置を用いた腹腔内グルコース負荷試験
この例では、種々の構成の超極薄装置を用いた腹腔内グルコース負荷試験について説明する。図66に、内分泌細胞が移植されたマウスまたは内分泌細胞が充填された超極薄装置における血清Cペプチド及び総インスリン含有量のレベルを示す。試験群は、被膜下に移植されたD601mcRA2内分泌細胞(群A)、AS1メンブレンを伴い、D601細胞が充填された超極薄装置(群B)、及びタイプAのePTFEメンブレンを伴い、D601細胞が充填された超極薄装置(群C)であった。細胞または装置をマウスに移植して、腹腔内グルコース負荷試験を行った。血清Cペプチドレベルを、ベースライン(青色)及び30分間グルコース刺激(オレンジ色)で、移植片内の総インスリン含有量とともに測定した。すべての群が、グルコース刺激による血清Cペプチドレベルの増加を示し、グルコース刺激によるインスリン生成を示した。群Aは、血清Cペプチドレベルがベースラインで約100pM、グルコース刺激により約250pMであり、総インスリン含有量が約700μgであった。群Bは、血清Cペプチドレベルがベースラインで約100pM、グルコース刺激により約200pMであり、総インスリン含有量が約500μgであった。群Cは、血清Cペプチドレベルがベースラインで約50pM、グルコース刺激により約600pMであり、総インスリン含有量が約550μgであった。この例では、血清Cペプチドレベルの増加により測定されたように、インスリン生成の増加によるグルコース制御の証拠を示している。
ヌードマウスモデルにおける宿主/超極薄装置の相互作用
この例では、ヌードマウスモデルへの装置移植後の宿主と超極薄装置の相互作用について説明する。図67に、ヌードラットの腹膜前部位での3ヶ月後のSC膵島細胞が充填されたコーティングされた選択透過メンブレンを含む超極薄装置の外植片のH&E染色画像を示す。画像は、マクロファージ及びマクロファージ融合、及び血管新生が無いことによる親水コーティングを有する選択透過メンブレンを伴う超極薄装置内での異物反応(FBR)の緩和を示している。また画像は、超極薄装置の内部からの宿主組織の分離及び装置内での生存細胞の集中を示している。
SC膵島細胞が充填された移植された装置における細胞生存性及び表現型
この例では、ヌードマウスモデルにSC膵島細胞が充填された超極薄装置の12週間の移植を行った後の細胞生存性及び表現型の維持について説明する。図68に、ヌードマウスモデルの腹膜前部位に12週間の移植を行った後の1600万のSC膵島細胞が充填された超極薄装置のH&E染色画像を示す。画像は、12週間の生体内後の装置核内での高レベルの細胞生存性を示す。図69に、腹膜腔にグルコースを投与した後の、SC膵島細胞が充填された超極薄装置が移植された4つの異なるマウスにおける60分間の間の血清Cペプチドレベルを示す。血清Cペプチドは、4つのマウスにおいて、0分での約30〜100pMから時間とともに約1000pM以上まで増加した。これは、マウスに移植された超極薄装置内のSC膵島細胞が活性で、インスリンを生成するその能力を維持していることを示している。
免疫適格性マウスモデルに移植された超極薄装置の生体適合性
この例では、免疫適格性ブラック6マウスモデルに移植されたAS1メンブレンを伴う超極薄装置の生体適合性について説明する。コーティングされたAS1メンブレンを伴う空のマウスサイズの超極薄装置をブラック6マウスの皮下に配置して、超極薄装置用の材料に対するベースライン宿主反応を評価した。1ヶ月後、宿主組織及び細胞からの装置完全性の維持について、及び異物反応(FBR)について、装置を評価した。図70A及び84Bに、装置内部に細胞が無いこと及びFBRが無いことを示す。FBRは、最初の月内のピーキングとして記述している(Beets、1998)。画像は、生体内にある間は装置の完全性は維持されたこと、ならびに装置材料及びコーティングは生体適合性があってFBRを誘発しないことを示している。
糖尿病のNSGマウスモデルへの超極薄装置の移植
この例では、AS1メンブレンを伴いラット膵島細胞が封入された超極薄装置を糖尿病のNSGマウスモデルに移植することについて説明する。AS1メンブレンを伴い400IEQラット膵島細胞が充填された超極薄装置を、糖尿病のNSGマウスに90日間、移植した。図71に、90日間の生体内後の生存可能な無傷のラット膵島細胞を伴う超極薄装置のH&E染色画像を示す。図72に、超極薄装置の移植前及び移植から90日間にわたる血中グルコースレベルを示す。糖尿病を誘発した後、動物にインスリンペレットを投与して、実験の最初の10〜20日間、血糖症を制御した。超極薄装置を移植した(「移植」と標示)後、90日間の移植にわたって、血中グルコースレベルは400mg/dL以上から約100mg/dL〜約300mg/dLまで減少した。マウスから装置を外植した後に血中グルコースレベルは増加した。このことは、超極薄装置の移植によって、長期に渡るグルコース制御が得られることを示している。
超極薄装置の細胞充填
図87及び88に、種々の構成の超極薄装置を示す。マウスモデルへの移植用にデザインされた超極薄装置は、800万の細胞を充填することができ、融合されたドットを装置の中心に有する。ヒト移植用にデザインされた超極薄装置は、融合されたドットもドットのアレイも有することができず、1億3300万の細胞を充填することができる。
ドットを伴う超極薄装置の質量流量
図75Aに、装置が充填されたときに装置の2つのメンブレンが互いから離れるように曲がることがないようにする接着制限部を与えるスポット溶接部のアレイを伴う超極薄ヒト移植用の装置を示す。図75Bに、装置が充填されたときに装置の2つのメンブレンが互いから離れるように曲がることを抑える超極薄装置に対する外部制限部を与える多孔金属プラテンを用いたセットアップを示す。任意の細胞収容装置(たとえば、超極薄装置及びスポット溶接部を伴う超極薄装置)を充填するときに、外部多孔性制限部を用いてもよい。図77に、3.3mmドットピッチを伴い外部多孔性制限部を伴うかまたは伴わないヒト移植用の超極薄装置の充填から測定した質量流量を示す。質量流量(cm3/分または標準立方センチメートル/分(sccm)で測定)は、外部多孔性制限部を伴う場合または伴わない場合で同様であり、約10秒で約7.5または8sccmのピークに到達し、時間とともに減少した。最初のピークに到達した後で、外部多孔性制限部を伴わない方が質量流量がわずかに高い。図78に、図75Aに示す装置と同様に、接着制限部を伴う超極薄装置の全体にわたる細胞分布のH&E染色画像を示す。これは、接着制限部を伴う装置を装置全体にわたって一様に充填できることを示す。
ドットを伴わないかまたはドットを伴う超極薄装置の細胞充填
この例では、ドットを伴わないかまたはドットを伴う超極薄装置の細胞充填について説明する。図79A及びBに、ドットを伴わない場合(A)及び3.3mmドットアレイマトリックスを装置の全体にわたって伴う場合(B)の2つの構成の六角形超極薄装置を示す。図80に、図79Aの場合と同様にドットを伴わない場合、及び図79Bの場合と同様に3.3mmドットアレイマトリックスを伴う場合の、単一の超極薄装置を充填することができる細胞の量を示す。ドットを伴わない装置には約1億2000万の細胞を充填することができ、3.3mmドットマトリックスを伴う装置には約8000万の細胞を充填することができた。このことは、ドットアレイマトリックス用いて、細胞充填を調整することができ、また装置に細胞を充填する間に装置のメンブレンが膨張または湾曲することを抑えられることを示している。
制限部を伴う超極薄装置の細胞充填
この例では、多孔性制限部を伴うかまたは伴わない超極薄装置の細胞充填について説明する。図81A及びBに、何らの制限部も伴わずに充填した場合(A)及び400μmスペーサを用いて離間に配置された多孔性プラテンを伴って充填した場合(B)の、3.3mmドットアレイマトリックスを伴う2つの構成の六角形超極薄装置を示す。図82に、図81Aの場合と同様に何らの制限部も伴わない場合、及び図81Bの場合と同様に多孔性制限部を伴う場合の、単一の超極薄装置を充填することができる細胞の量を示す。何らの制限部も伴わない装置には約8700万の細胞を充填することができ、多孔性制限部を伴う装置には約8000万の細胞を充填することができた。このことは、多孔性制限部によって、装置を充填する間のメンブレン膨張及び湾曲を抑えられることを示している。多孔性制限部間の目標距離を伴うスペーサを用いることによって、制限部をさらに調整可能とすることができる。
ミニブタモデルへの生体内移植
この例では、人間サイズの超極薄装置のミニブタ移植研究について説明する。10のミニブタに、空の超極薄装置、またはSC膵島細胞(SEM−01)または腹膜前もしくは皮下部位の豚膵島細胞が充填された超極薄装置を移植した。図83Aに、ミニブタに移植されたヒト単一モジュールデザインの2.6mmドットピッチを伴う超極薄装置の例を示す。図83Bに、ミニブタの正中線から約3インチ離れて肋骨縁を避ける場所にある標的とする腹膜前または皮下移植部位を示す。図83Cに、装置の移植に備えるためのBovie電気焼灼による皮下切開を示す。図83Dに、装置の移植に備えるための照明された牽引子による腹膜前切開を示す。移植部位の切開は、異なる移植アプローチに適応させることができる。図84Aに、超極薄装置の皮下留置の例を示す。図84Bに、超極薄装置の腹膜前留置の例を示す。図85に、超極薄装置の皮下(SQ)及び腹膜前(PP)移植から2週間後のミニブタの例を示す。画像は移植部位の周囲に炎症があるという肉眼的証拠は何ら示しておらず、動物も窮迫または痛みの徴候は示さなかった。
Claims (77)
- 細胞収容装置であって、
(a)複数のチャネルを含む第1の表面と前記第1の表面と対向する複数の第2の表面とを有する第1のメンブレンと、
(b)前記第1のメンブレンの前記複数の第2の表面に対向しそこに取り付けられた第2のメンブレンと、を含み、
前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンは、表面積対体積比が少なくとも約40cm−1の囲まれたコンパートメントを形成し、
前記囲まれたコンパートメントは、前記装置内に細胞を収容するための体積を与える前記細胞収容装置。 - 前記コンパートメントは単一の連続したオープンスペースを含む請求項1に記載の装置。
- 体積は約8uL〜約1、000uLである請求項1に記載の装置。
- 長さ及び幅の少なくとも一方が約0.25cm〜約3cmである請求項1に記載の装置。
- 厚さが少なくとも約300μmである請求項1に記載の装置。
- 前記複数のチャネルは前記第1のメンブレンに略垂直である請求項1に記載の装置。
- 前記複数のチャネルは直線アレイ内に配列されている請求項1に記載の装置。
- 前記複数のチャネルは極性アレイ内に配列されている請求項1に記載の装置。
- 前記複数のチャネルは平均直径が約400μm〜約3、000μmである請求項1に記載の装置。
- 前記直径は、前記複数のチャネル内の最も狭い点で測定される請求項9に記載の装置。
- 前記複数の各チャネルの中心は別のチャネルの中心から約75μm〜約500μmの距離で分離されている請求項1に記載の装置。
- 前記チャネルは、高さ対直径比が少なくとも約0.2である請求項1に記載の装置。
- 前記装置は、横断面に沿った面積あたりのチャネル数が約50/cm2よりも大きい請求項1に記載の装置。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方が、複数の小繊維によって相互接続された複数の節を含む請求項1に記載の装置。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方が、PVDF、PTFE、ePTFE、PCL、PE/PES、PP、PS、PMMA、PLGA、PLLA、またはそれらの任意の組み合わせを含む請求項1に記載の装置。
- 前記チャネル内の前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンを通る開口部をさらに含む請求項1に記載の装置。
- 前記開口部は前記チャネルに対する同心度が最大で前記チャネルの直径の25%である請求項16に記載の装置。
- 前記装置を受け取るように構成されたフレームをさらに含む請求項1に記載の装置。
- 前記フレームは複数の細胞収容装置を受け取るように構成されている請求項18に記載の装置。
- 前記フレームは、前記細胞収容装置の座屈を防ぐように構成された柔軟なメカニズムを含む請求項18に記載の装置。
- 細胞集団をさらに含む請求項1に記載の装置。
- 細胞集団はインスリン分泌集団である請求項21に記載の装置。
- 細胞集団は、グルコース促進インスリン分泌(GSIS)が可能な幹細胞由来細胞である請求項21に記載の装置。
- 親水性ポリマーを含むコーティングをさらに含む請求項1に記載の装置。
- インスリン拡散係数が約2x10−6cm2/s〜約1x10−5cm2/sである請求項1に記載の装置。
- 最大酸素拡散距離が約150μm未満である請求項1に記載の装置。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンは少なくとも約0.4Nの融合剥離力で融合されている請求項1に記載の装置。
- 第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方が半透性である請求項1に記載の装置。
- 前記第1のメンブレン、前記第2のメンブレン、または両方の半透性は、前記細胞を免疫攻撃から保護するように構成されている請求項28に記載の装置。
- 前記第1のメンブレン、前記第2のメンブレン、または両方の半透性は、免疫抑制療法がない場合に、前記細胞を免疫攻撃から保護するように構成されている請求項29に記載の装置。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方は、前記装置内での前記細胞の血管新生を可能にするように構成されている請求項1に記載の装置。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方は、免疫抑制療法がない場合に、前記装置内での前記細胞の血管新生を可能にするように構成されている請求項31に記載の組成物。
- 細胞収容装置であって、
(a)複数のチャネルを含む第1の表面と前記第1の表面と対向する複数の第2の表面とを有する第1のメンブレンと、
(b)前記第1のメンブレンの前記複数の第2の表面に対向しそこに取り付けられた第2のメンブレンと、を含み、
前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンは、囲まれたコンパートメントを形成し、
前記囲まれたコンパートメントは、前記装置内の100万〜10億のインスリン産生細胞を収容するための体積を与え、前記メンブレンは、前記装置からのインスリンの拡散を可能にする一方で前記装置内に前記インスリン産生細胞を保持する前記細胞収容装置。 - インスリン産生細胞と前記インスリン産生細胞を収容する装置とを含む組成物であって、前記装置は、個体に移植されると、前記装置内に前記インスリン産生細胞を保持しながらインスリンを放出し、前記装置内及び周囲での組織血管新生を容易にする前記組成物。
- 前記個体は、前記装置の前記移植または血管新生の間に免疫抑制剤が投与されない請求項34に記載の組成物。
- 100万〜10億のインスリン産生細胞を含む請求項34に記載の組成物。
- 前記装置は厚さが少なくとも約300μmである請求項34に記載の組成物。
- 前記装置は、複数の小繊維によって相互接続された複数の節を含むメンブレンを含む請求項34に記載の組成物。
- 細胞収容装置を製造する方法であって、
(a)第1の面及び対向する第2の面を有する第1のメンブレンを用意することと、
(b)前記第1のメンブレンの前記第1の面内に複数のチャネルを形成することと、
(c)前記第1のメンブレンの前記第2の面に第2のメンブレンを融合して、前記第1のメンブレンの前記第2の面と前記第2のメンブレンとの間に細胞を収容するためのコンパートメントを形成することと、を含む方法。 - 前記第1のメンブレン内に複数のチャネルを形成することは、
(a)前記第1のメンブレンを所定時間、所定の圧力及び所定の温度で加熱することと、
(b)前記複数のチャネルをモールドを使って成形することと、を含む請求項39に記載の方法。 - 前記第1のメンブレンに前記第2のメンブレンを融合することを前記モールド内で行う請求項40に記載の方法。
- 前記モールドにはポジ型モールドが含まれる請求項41に記載の方法。
- 前記モールドにはネガ型モールドが含まれる請求項41に記載の方法。
- 前記所定の温度は約100°摂氏(C)〜約600℃である請求項40に記載の方法。
- 前記所定の圧力は約2ポンド/平方インチ(psi)〜約140psiである請求項40に記載の方法。
- 前記所定時間は約3分間〜約30分間である請求項40に記載の方法。
- 前記所定の圧力は約3.5psiであり、所定の温度は約370℃である請求項40に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン内に複数のチャネルを形成することと、前記第1のメンブレンに前記第2のメンブレンを融合することとは、
(a)前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンをフレーム内に配置することであって、前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンは略平行であり、略位置合わせされており、ギャップ距離だけ分離されている、前記配置することと、
(b)前記第1のメンブレン上に融合ツールを用いて1つ以上の点を打点することであって、前記融合ツールは設定融合温度に加熱され、各打点の間に前記融合ツールは前記メンブレンに設定融合時間、接触する、前記打点することと、を含む請求項39に記載の方法。 - 前記第1のメンブレンに打点することにより、前記第1のメンブレン、前記第2のメンブレン、または両方を貫通し、前記第1のメンブレンの一部を前記第2のメンブレンに融合する請求項48に記載の方法。
- 前記フレームは、前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの外縁の少なくとも一部を取り囲む請求項48に記載の方法。
- 前記ギャップ距離は約300μm〜約1、200μmである請求項48に記載の方法。
- 前記融合ツールは打点接触面積が少なくとも約0.07mm2である請求項48に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン上に融合ツールを用いて1つ以上の点を打点することは、前記1つ以上の各点を最大で約16回打点することを含む請求項48に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン上に融合ツールを用いて1つ以上の点を打点することは、前記1つ以上の各点を1〜6回打点することを含む請求項53に記載の方法。
- 前記設定融合温度は約250℃〜約1、600℃である請求項53に記載の方法。
- 前記設定融合時間は約1秒未満である請求項53に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方は実質的に平坦である請求項39に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン内に前記複数のチャネルを形成する前に前記第1のメンブレンをエンボシングすることをさらに含む請求項39に記載の方法。
- 前記複数のチャネル内の前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの一部をレーザーアブレーションすることをさらに含む請求項39に記載の方法。
- 前記レーザーアブレーションによって前記第1のメンブレンと前記第2のメンブレンとの前記融合部分を取り除いて開口部を形成する請求項59に記載の方法。
- 前記開口部は前記チャネルに対する同心度が最大で前記チャネルの直径の25%である請求項60に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方は、PVDF、PTFE、ePTFE、PCL、PE/PES、PP、PS、PMMA、PLGA、PLLA、またはそれらの任意の組み合わせを含む請求項39に記載の方法。
- 前記装置を親水性ポリマーでコーティングすることをさらに含む請求項39に記載の方法。
- 前記第1のメンブレンを焼結する請求項39に記載の方法。
- 前記第2のメンブレンを焼結しない請求項39に記載の方法。
- 前記第2のメンブレン及び前記第1のメンブレンは、少なくとも約0.2Nの融合剥離力で融合されている請求項39に記載の方法。
- 方法であって、
a)糖尿病または前糖尿病の被検者の組織をインスリン分泌細胞集団を含む装置と接触させることであって、前記装置は、
(i)複数のチャネルを含む第1の表面と前記第1の表面と対向する複数の第2の表面とを有する第1のメンブレンと、
(ii)前記第1のメンブレンの前記複数の第2の表面に対向しそこに取り付けられた第2のメンブレンと、を含み、
前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンは、表面積対体積比が少なくとも約40cm−1の囲まれたコンパートメントを形成し、
前記囲まれたコンパートメントは前記装置内に細胞を収容するための体積を与える、前記接触させることと、
b)前記糖尿病の被検者における血中グルコースレベルの上昇に応じて、前記インスリン分泌細胞集団からインスリンを放出することであって、上昇したグルコースレベルは非糖尿病の被検者における血中グルコースレベルよりも高い、前記放出することと、を含む方法。 - 前記インスリン分泌細胞集団は、前記糖尿病または前糖尿病の被検者における血中グルコースレベルを下げるのに十分な量のインスリンを放出する請求項67のいずれか1項に記載の方法。
- インスリンを放出することは、前記糖尿病の被検者における前記血中グルコースレベルが正常レベルまで下がったら停止する請求項68に記載の方法。
- インスリンを放出することは、前記インスリン分泌細胞集団が前記糖尿病の被検者における血中グルコースレベルの上昇に再び曝露されたときに再開する請求項69に記載の方法。
- 前記インスリン分泌細胞集団は幹細胞由来細胞集団である請求項70に記載の方法。
- 前記インスリン分泌細胞集団はグルコース促進インスリン分泌(GSIS)が可能である請求項71に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方は半透性である請求項68に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン、前記第2のメンブレン、または両方の半透性は、前記細胞を免疫攻撃から保護するように構成されている請求項73に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン、前記第2のメンブレン、または両方の半透性は、免疫抑制療法がない場合に、前記細胞を免疫攻撃から保護するように構成されている請求項74に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方は、前記装置内での前記細胞の血管新生を可能にするように構成されている請求項68に記載の方法。
- 前記第1のメンブレン及び前記第2のメンブレンの少なくとも一方は、免疫抑制療法がない場合に、前記装置内での前記細胞の血管新生を可能にするように構成されている請求項76に記載の方法。
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