JP2019030312A - オフターゲットを防ぐために変形したrna干渉を誘導する核酸、遺伝子発現抑制用組成物、遺伝子発現抑制用キット、細胞内ターゲット遺伝子の発現抑制方法、オフターゲット効果を抑制する方法 - Google Patents
オフターゲットを防ぐために変形したrna干渉を誘導する核酸、遺伝子発現抑制用組成物、遺伝子発現抑制用キット、細胞内ターゲット遺伝子の発現抑制方法、オフターゲット効果を抑制する方法 Download PDFInfo
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Abstract
Description
本発明者は、図1の図式化された例のように、アルゴノートタンパク質に結合するすべてのRNA干渉誘導核酸の5’シード部分を塩基配列ができないスペーサに変形させた場合、ターゲット遺伝子抑制効率(オンターゲット効果)が高いながらも、オフターゲット効果は完全に遮断することができることを予測し、マイクロRNA認識メカニズムに対するモデルである転移核型性モデル(Nat Struct Mol Biol.2012Feb12;19(3):321−7)に基づき、5’シードのうち特に軸(pivot)と呼ばれる5’末端の6番目の塩基配列に注目して本RNA干渉誘導核酸を発明した。
前記実施形態1においてdSpacerを利用して確認された事実をリボヌクレオチドバックボーンの類似スペーサであるリボヌクレオチドスペーサ(rSpacer)で確認するために、オフターゲットがなくなると現れたsiRLの5’末端の2番から7番までの位置のうち1つをrSpacerに置換(pi−r)した後、前記実施形態1で施行したものと同じ方法によってIC50を測定してオンターゲット効果を調査した。
前記デオキシリボヌクレオチドスペーサ(dSpacer)がsiRNAのシード部分に備えられるようにする配列構造には、前記実施例1と実施例2のように置換されるようになれば、siRNAがターゲット遺伝子のRNAと結合するときに非塩基部分がミスマッチ塩基配列(mismatch base pairing)するケースが存在する。さらに、図4aに示すように、dSpacerをsiRNAシード部分に挿入するようになれば、非塩基部分にバルジ(bulge)が生成されるケースも存在する。これにより、dSpacerを挿入した場合に現われるオンターゲットおよびオフターゲット効果の変化を調査した。先ず、前記実施例によってオフターゲットがなくなることを確認したsiRLの5’末端の2番から7番の間にdSpacerを挿入(pi−I)した後、前記実施例1と同じ方法によってIC50を測定してオンターゲット効果を調査した。
リボヌクレオチドスペーサ(rSpacer)がsiRNAのシード部分に挿入された変形(pi−rI)のオンターゲット効果を調べるために、前記実施例3と同じ方法によってIC50を測定した。
本発明に係るスペーサに置換されたsiRNA分子は、従来構造のsiRNA分子が有するマイクロRNA類似オフターゲットを抑制することを前記実施例1によって確認したため、これをマイクロRNAに適用して確認しようと、miR−124の5’末端から6番目の位置にデオキシリボヌクレオチドスペーサ(dSpacer)置換を加えて次のような実験を行った。先ず、人間のmiR−124−3pと同じ配列と6番の位置にdSpacerによって置換した配列(6pi)とを合成した後、miR−124−5pと二重体として製造し、HeLa細胞にmiR−124のシードサイト(5’末端から1〜8番目との完全相補配列)を2つ含んだpsi−check2ベクトルを共にトランスフェクションさせた後、前記実施例1と同じ方法によって多様な濃度のマイクロRNAにおけるルシフェラーゼ活性を測定した。
HITS−CLIP結果と比較分析することで、miR−124を発現させたときに生成されるアルゴノート結合位置を誘電体水準で正確に把握することができた。このようなmiR−124結合位置をde novo Ago−miR−124 clusterと名付け、このような結合位置のうちmiR−124のシードサイトを有しているターゲットmRNAを対象に、miR−124またはmiR−124−6piをHeLa細胞に発現させた後、RNA−seqによって得られたmRNAプロファイル結果を阻害される順に累積分布確率(cumulative fraction)によって比較分析した。
本発明に係る変形を実験用の目的から治療用の目的に確張することのできるsiRNA配列に適用してその効果を評価しようと、Alnylam社によって血中コレステロール数値を低めるために肝細胞のPCSK9遺伝子をRNA干渉現象によって阻害しようと開発されたsiRNAであるPCS−A1(A1)、PCS−A2(A2)(Proc Natl Acad Sci U S A.2008 Aug 19;105(33):11915−20)を対象にして実験を行った。A1の場合も、実施例1と同じ方法であるルシフェラーゼ活性度測定によって多様な位置に非塩基変形のオンターゲット効果を比較したとき、図7aに示すように、A1−6piが最も優れたターゲット遺伝子抑制効率を現したし、図7bに示すように、シード序列によるオフターゲット効果も完全に抑制した。A2の場合には、A1と同じ配列を備えるが、免疫反応を引き起こすという問題とRNAの安定化を改善するために、多様な位置に2’OMe変形が加えられるが、このようなA2 siRNA分子でも、実施例1と同じ方法によって測定したルシフェラーゼリポータ活性測定において、図7cに示すように、6pi変形がオフターゲットを防ぐと現われた。さらに、図7dに示すように、A2の場合には、6pi変形が加えられても、非変形形態のA2とほぼ類似する水準のオンターゲット抑制効率を、ルシフェラーゼリポータを利用したIC50測定において現わした。
前記実施例6で分析したPCSK9に対するsiRNAのオフターゲット効果を生体内で評価するために、生後7週の実験用マウス(C57/BL6)を利用してsiRNAを肝組職に伝達した後に評価を行った。siRNAの肝組職伝達は、invivo−jetPEI(polyplus社)という伝達物質を使用し、提供されるプロトコルにしたがって5mg/kg siRNAをそれぞれ5匹のマウスの尻尾の血管に注入(tail−vein injection)して伝達し、48時間後にマウスを犠牲にして血液と肝組職を抽出した後に実験を行った。先ず、摘出した肝組職の一部にある小さなサイズのRNAを含む(small RNAs)すべてのRNAを、miRNeasyキット(Qiagen社)を使用して分離した後、ここでそれぞれ伝達されたsiRNA、そしてターゲットであるPCSK9 mRNAの量をqPCRによって測定した。siRNAに対する測定は、プロトコル(Biotechniques.2005 Oct;39(4):519−25)にしたがってPoly(A)Tailing Kit(Ambion社)を利用して行った。先ず、RNAの3’末端に多様のアデノシンを付着させ、特定の配列を含むoligo−dTによってSuperscript III RT(invitrogen社)に逆転写を施行した後、oligo−dTに付けておいた特定のsequenceを認識する序列と測定しようとするsiRNAと同じ序列を備えたDNAプリマとを一対にし、SYBR○R Green PCR Master Mix(Applied Biosystems社)によってqPCRを施行した。PCSK9 mRNA測定は、前記実施例6と同じ方法によって実行した。血液中の総コレステロールの量は、Wako社のキットを利用してELISA方法により、提供プロトコルにしたがって測定した。
CuSO4を処理した結果と類似するように細胞死滅を誘導したが、A2−6piの場合には細胞死滅の誘導現象がなくなることが観察された。
前記実施例1において、ターゲット遺伝子発現抑制効果と共にオフターゲット効果を防ぐ効果を確認した、本発明に係る5’末端から6番目のヌクレオチドをデオキシリボヌクレオチドスペーサ(dSpacer)に置換した置換体と従来のオフターゲット効果抑制用変形置換体の性能を、前記実施例1と同じ方法によってIC50を測定して比較した。
前記実施例8で観察されたように、5’末端から6番目のヌクレオチドをdSpacerに置換した(6pi)siRNAは完全にオフターゲット効果を取り除くという点において、これは6番目に塩基がなくなり、これ以上この部分を通じてオフターゲットと塩基配列ができなくなるためであると予想することができる。したがって、理論的には、5’末端から6番目のヌクレオチドに塩基が存在しなければ、そのバックボーンがヌクレオチドではない他の変形であっても、その変形が単一ヌクレオチドと置換される同じ大きさのスペーサ変形であれば、同じオフターゲット除去効果を示すようになるであろう。これにより、本発明者は、図10に示した図式化した例のように、図1の5’末端から6番目の位置をdSpacer置換で確張し、5’末端から6番目の位置に塩基(base)がない形態で骨格を維持する最小のスペーサ(spacer)として5番目と7番目のヌクレオチドが共有結合するように設計した。すなわち、6番目の位置に、ヌクレオチドが占める空間を維持することのできるスペーサの最小の大きさでリン酸基と炭素原子3個(C3 spacer)からなる変形を設計した。ヌクレオチドなくC3変形を最小基準とし、塩基のないあらゆる形態の共有結合変形であっても5’末端から6番目の位置に適用されるようになれば、非塩基性ヌクレオチド置換と同じように、オンターゲット抑制効率を維持しながらも、オフターゲット効果は完全に取り除くことができるという効果を現すものと予想しながら、新たなRNA干渉誘導核酸を発明した。
siRNAを使用するときに現われるオフターゲット効果は、マイクロRNAのように主にシード位置の塩基配列によってターゲット遺伝子を認識し、その配列と塩基配列結合に依存的に引き起こる。マイクロRNAが生体で標的を認識する場合において、このようなシード結合による標的遺伝子抑制現象は、シード部分と標的との結合が弱く起こるときには、3’末端部分における追加的な塩基配列を形成した3’末端補償結合(3’−compensatory pairing)によって標的遺伝子が阻害されるという現象が報告された(Cell.2009;136:215−233)。したがって、マイクロRNA類似オフターゲット現象の一部も、このような3’末端補償結合のメカニズムによって現われるため、これを防ぐ方法が必要となる。
Claims (15)
- RNA干渉(RNA interference)を誘導する核酸の二本鎖のうち1つ以上の一本鎖において、5’末端から6番目のヌクレオチドまたは3’末端から1番目と2番目のヌクレオチドがスペーサ(Spacer)に置換される変形を少なくとも1つ以上含むことを特徴とする、RNA干渉を誘導する核酸。
- 前記二本鎖のうち変形の対象となる一本鎖は、RNA干渉現象を引き起こすアルゴノート(argonaute)タンパク質に結合することができる能力を備えることを特徴とする、請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸。
- 前記スペーサは、リン酸基または硫酸基を含む炭化水素鎖であることを特徴とする、請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸。
- 前記スペーサは、デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、および炭素数が3であるアルキル基からなる群から選択されるバックボーンであり、塩基配列ができないことを特徴とする、請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸。
- 前記RNA干渉を誘導する核酸は、置換によるターゲット遺伝子のRNAとのミスマッチ塩基配列(mismatch base pairing)または挿入によるバルジ(bulge)生成をさらに含むことを特徴とする、請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸。
- 前記核酸は、siRNA、miRNA、shRNA、DsiRNA、lsiRNA、ss−siRNA、piRNA、endo−siRNA、およびasiRNAからなる群から選択されることを特徴とする、請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸。
- 前記RNA干渉を誘導する核酸は、ターゲット遺伝子の発現を抑制することを特徴とする、請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸。
- 請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸を含む、遺伝子発現抑制用組成物。
- 請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸を含む、遺伝子発現抑制用キット。
- 請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸を細胞内に導入させる段階を含む、細胞内ターゲット遺伝子の発現抑制方法。
- 請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸を細胞内で発現させる段階を含む、細胞内ターゲット遺伝子の発現抑制方法。
- 請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸を細胞内に導入させる段階を含む、RNA干渉を誘導する核酸のガイド鎖(guide strand)によるオフターゲット効果を抑制する方法。
- 請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸を細胞内に導入させる段階を含む、RNA干渉を誘導する核酸のパッセンジャ鎖(passenger strand)によるオフターゲット効果を抑制する方法。
- 請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸を細胞内で発現させる段階を含む、RNA干渉を誘導する核酸のガイド鎖(guide strand)によるオフターゲット効果
を抑制する方法。 - 請求項1に記載のRNA干渉を誘導する核酸を細胞内で発現させる段階を含む、RNA干渉を誘導する核酸のパッセンジャ鎖(passenger strand)によるオフターゲット効果を抑制する方法。
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