KR101237036B1 - 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화한 신규한 siRNA 구조 및 그 용도 - Google Patents

안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화한 신규한 siRNA 구조 및 그 용도 Download PDF

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Abstract

본 발명은 신규한 siRNA 구조 및 그 용도에 관한 것으로, 보다 상세하게는 안티센스 및 센스로 구성되는 이중가닥의 siRNA 분자로서 상기 siRNA의 안티센스 상에, 특히 5' 말단의 2번째 위치에, 단일 뉴클레오티드의 도입에 의한 단일 뉴클레오티드 벌지(bulge)를 적어도 하나 이상 가지는 것을 특징으로 하는 siRNA 분자 및 이를 이용한 목적 유전자의 발현 억제 방법에 관한 것이다. 본 발명에 따른 siRNA 분자는 우수한 목적 유전자 발현 억제 효율을 보이면서도, 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화한 타겟 선별성이 향상된 새로운 구조의 siRNA 분자를 제공함으로써, 종래의 siRNA 분자들을 대체하여 유전자 치료 등 siRNA를 기반으로 하는 유전자 발현 억제 기법에 널리 사용될 수 있다.

Description

안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화한 신규한 siRNA 구조 및 그 용도{Novel siRNA Structure for Minimizing Off-target Effects by Antisense Strand and the Use Thereof}
본 발명은 신규한 siRNA 구조 및 그 용도에 관한 것으로, 보다 상세하게는 우수한 목적 유전자 발현 억제 효율을 보이면서도, 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화한 새로운 구조의 siRNA 분자 및 이를 이용한 목적 유전자의 발현 억제 방법에 관한 것이다.
오프-타겟 발현억제(off-target silencing)는 RNA 간섭(RNA interference, RNAi)의 주된 염려사항 중 하나이다. 종래의 19+2 구조는 안티센스가닥과 mRNA의 불완전한 페어링(pairing) 또는 RISC 복합체에서 센스 가닥 도입 (incorporation)을 일으킬 수 있고, 이러한 두 경우는 의도하지 않은 타겟의 절단을 가져오는바, 종래 19+2 구조는 상당한 비특이적인 발현억제를 나타낸다 (Jackson, A.L. & Linsley, P.S., Trends Genet., 20(11): 521, 2004). 최근 연구에서, 본 발명자는 센스 가닥을 짧게 한 16+3A 구조의 비대칭 siRNA (asymmetric siRNA)를 제시한 바 있다 (Chang C.I. et al ., Mol . Ther ., 17(4): 725, 2009). 이러한 asiRNA 구조는 센스 가닥 매개 발현억제와 RNAi 기구 포화와 같은, 19+2 구조의 siRNA와 관련된 문제들을 극복한 구조이다. 많은 다른 연구자들은 또한, 주로 센스 가닥 매개 비특이적인 발현억제를 처리하기 위한 다양한 siRNA 변형을 제안하여 왔다 (Elmen, J., et al ., Nucleic Acids Res ., 33(1): 439, 2005; Sano, M., et al ., Nucleic Acids Res., 36(18): 5812, 2008; Sun, X., et al ., Nat . Biotechnol ., 26(12): 1379, 2008). 그러나, 이러한 연구들과 비교할 때, 안티센스에 의하여 매개되는 오프-타겟 발현억제를 감소시키기 위한 연구들은 극히 적었다.
Jackson 등은 처음으로 siRNA 매개 유전자 발현억제가 타겟 의존적인 방법이라기 보다는 서열 의존적임에 대한 증거를 제시하였다 (Jackson, A.L., et al ., Nat. Biotechnol ., 21(6): 635, 2003; Jackson, A.L., et al ., Rna, 12(7): 1179, 2006b). 게다가, RISC에 의한 타겟 절단을 개시하는 것은 RNA 이중가닥과 전사체 사이의 제한된 상보성으로 충분하다. Birmingham 등은 전사체의 3' UTR과 siRNA의 seed 영역의 의도되지 않은 페어링이 siRNA의 오프-타겟 효과의 주된 원인이 됨을 보였다 (Birmingham et al ., Nat . Methods , 3(3): 199, 2006). siRNA 가이드 가닥의 hexamer seed 영역, 예를 들면 2~7 뉴클레오티드와 성숙된 전사체(mature transcripts)의 3' UTR의 상보적인 서열사이의 매치(match)는 오프-타겟 유전자 조절의 주요 결정자로 영향을 준다 (Lin et al ., Nucleic Acids Res ., 33(14): 4527, 2005; Anderson et al ., Rna, 14(5): 853, 2008). 이러한 오프-타겟은 표현형 스크리닝에 기반한 RNAi에서 양성 hit중 30%까지를 설명하는 측정할 수 있는 양의 표현형 변화를 유도할 수 있다. 종래의 19+2 구조의 siRNA에 의해 매개되는 광범위한 오프-타겟 발현억제를 볼 때, 의도된 발현억제 효율은 유지시키면서 오프-타겟 발현억제만을 감소시킬 수 있는 siRNA backbone의 임의의 화학적 또는 구조적 변경은 큰 관심사이다.
Dharmacon Research (Lafayette, CO)와 Rosetta Inpharmatics (Seattle, WA)간의 합작연구는 siRNA의 가이드 가닥에서 특정한 위치의 뉴클레오티드의 리보실 링의 2' 위치에 추가된 메틸기가 현저하게 siRNA에 의해 매개되는 오프-타겟 효과를 감소시킨다는 것을 보였다 (Jackson et al ., Rna , 12(7): 1197, 2006). 추가적으로 가이드 가닥에서 2번 위치의 화학적 변형은 의도된 타겟의 발현 억제에 현저한 영향 없이, 오프 타겟 효과의 수 및 정도를 모두 감소시키는데 가장 효과적인 것으로 발견되었다. 그러나, Ambion Inc.는 2'OMe 변형된 siRNA를 LNA 변형된 siRNA와 비교하였고, LNA 변형된 siRNA가 안티센스 가닥 매개 오프-타겟 효과를 감소시키는데 우월함을 발견하였다 (Puri et al., Nucleic Acids Symp. Ser .2008). 그러나 이러한 화학적 변형들은 성공적으로 siRNA의 안티센스 오프-타겟 효과를 성공적으로 감소시키는 반면, 2'-OMe와 같은 이들 중 몇몇은 온-타겟 억제효율도 감소시킬 수 있는 것으로 나타났다. 더욱이, 이러한 화학적 변형전략은 세포 내 발현되는 siRNAs에는 확장할 수 없었다.
이에 본 발명자들은 유전자 억제 효율이 높으면서도 안티센스 가닥에 의하여 일어나는 오프-타겟 효과도 최소화한 새로운 구조의 siRNA 구조를 제공하고자 예의 노력한 결과, 새로운 구조의 siRNA 분자를 제작한 다음, 이의 유전자 발현 억제 효과가 영향받지 않으면서도 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 나타내지 않는 타겟 선별성이 향상된 효과를 가지는 것을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 목적은 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 나타내지 않는 타겟 선별능이 향상된 효과를 가지는 새로운 siRNA 복합체를 제공하는 데 있다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 안티센스 가닥 (antisense strand) 및 상기 안티센스 가닥에 상보적인 센스 가닥(sense strand)으로 구성되는 이중가닥의 siRNA 분자로서, 상기 siRNA의 안티센스 가닥에 단일 뉴클레오티드 도입에 의한 단일 뉴클레오티드 벌지(bulge)를 적어도 하나 이상 가지는 것을 특징으로 하는 siRNA 분자를 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 siRNA 분자를 함유하는 유전자 발현 억제용 조성물을 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 siRNA 분자를 함유하는 유전자 발현 억제용 키트를 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 siRNA 분자를 세포 내에서 도입시키는 단계를 포함하는 유전자 발현 억제 방법을 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 siRNA 분자를 세포 내 발현시키는 단계를 포함하는 세포 내 목적 유전자의 발현 억제 방법을 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 siRNA 분자를 세포 내 도입시키는 단계를 포함하는 siRNA 분자의 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과의 억제방법을 제공한다.
본 발명은 또한, 상기 siRNA 분자를 세포 내 발현시키는 단계를 포함하는 siRNA 분자의 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과의 억제방법을 제공한다.
본 발명은 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화한 새로운 구조의 siRNA 분자 및 이를 이용한 목적 유전자의 발현 억제 방법을 제공하는 효과가 있다. 본 발명에 따른 siRNA 분자는 우수한 목적 유전자 발현 억제 효율을 보이면서도, 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화한 타겟 선별성이 향상된 새로운 구조의 siRNA 분자를 제공함으로써, 종래의 siRNA 분자들을 대체하여 유전자 치료 등 siRNA를 기반으로 하는 유전자 발현 억제 기법에 널리 사용될 수 있다.
도 1은 서바이빈에 대한 siRNA 및 이의 안티센스 가닥의 5' 말단을 기준으로 2번, 3번, 4번, 5번, 16번, 17번, 18번 및 19번 위치에서 단일 뉴클레오티드 벌지를 갖도록 제조한 siRNA들을 나타낸다.
도 2는 도 1의 siRNA들에 대한 오프-타겟 억제 효과를 루시퍼라제 활성으로 측정한 그래프이다.
도 3a는 HeLa 세포로 co-transfection되는 on-target 또는 off-target luciferase reporter를 나타내는 개략도이고, 3b는 서바이빈 안티센스 타겟 (WT) 및 Mismatches 타겟들에 대한 siSurvivin와 siSurvivin-2, 18 및 19의 오프-타겟 억제 효과를 루시퍼라제 활성으로 측정한 그래프이다 (siGFP: 대조군)이고, 3c는 wild type과 mismatch 타겟간 루시퍼라제의 활성 비를 평균화하여 나타낸 그래프이다.
도 4는 siSurvivin, siSurvivin-2 'A', siSurvivin-2 'C', 및 siSurvivin-2'OMe의 siRNA들을 나타낸다.
도 5는 endogenous Survivin mRNA에 대한 siSurvivin, siSurvivin-2 'A', siSurvivin-2 'C', 및 siSurvivin-2'OMe의 siRNA들의 IC50 값을 나타내는 그래프이다.
도 6은 서바이빈 안티센스 타겟 (WT) 및 Mismatches 타겟들에 대한 도 4의 siRNA들의 오프-타겟 억제 효과를 루시퍼라제 활성으로 측정한 그래프로서 (siGFP: 대조군), 6a는 10nM의 siRNA를 사용한 경우, 6b는 25nM의 siRNA를 사용한 경우, 6c는 50nM의 siRNA를 사용한 경우이다.
도 7은 도 4의 siRNA들의 wild type과 mismatch 타겟간 루시퍼라제의 활성 비를 평균화하여 나타낸 그래프이다.
도 8은 siMPHOSPH1, siMPHOSPH1-2 'A', siMPHOSPH1-2 'G' 및 siMPHOSPH1-2'OMe의 siRNA들을 나타낸다.
도 9는 endogenous MPHOSPH1 mRNA에 대한 siMPHOSPH1, siMPHOSPH1-2 'A', siMPHOSPH1-2 'G' 및 siMPHOSPH1-2'OMe의 siRNA들의 IC50 값을 나타내는 그래프이다.
도 10은 MPHOSPH1 안티센스 타겟 (WT) 및 Mismatches 타겟들에 대한 도 8의 siRNA들의 오프-타겟 억제 효과를 루시퍼라제 활성으로 측정한 그래프로서 (siGFP: 대조군), 10a는 10nM의 siRNA를 사용한 경우, 10b는 25nM의 siRNA를 사용한 경우, 10c는 50nM의 siRNA를 사용한 경우이다.
도 11은 도 8의 siRNA들의 wild type과 mismatch 타겟간 루시퍼라제의 활성 비를 평균화하여 나타낸 그래프이다.
도 12는 siMAPK14, siMAPK14-2 'G', siMAPK14-2 'C', 및 siMAPK14-2'OMe의 siRNA들을 나타낸다.
도 13은 endogenous MAPK14 mRNA에 대한 siMAPK14, siMAPK14-2 'G', siMAPK14-2 'C', 및 siMAPK14-2'OMe의 siRNA들의 IC50 값을 나타내는 그래프이다.
도 14는 MAPK14 안티센스 타겟 (WT) 및 Mismatches 타겟들에 대한 도 12의 siRNA의 오프-타겟 억제 효과를 루시퍼라제 활성으로 측정한 그래프로서 (siGFP: 대조군), 14a는 10nM의 siRNA를 사용한 경우, 14b는 25nM의 siRNA를 사용한 경우, 14c는 50nM의 siRNA를 사용한 경우이다.
도 15는 도 12의 siRNA들의 wild type과 mismatch 타겟간 루시퍼라제의 활성 비를 평균화하여 나타낸 그래프이다.
도 16은 서바이빈 안티센스 타겟 (WT) 및 Mismatches 타겟들에 대한siSurvivin, siSurvivin-2 'C', siSurvivin 16+3A 및 siSurvivin16+3A-2'C'의 siRNA의 오프-타겟 억제 효과를 루시퍼라제 활성으로 측정한 그래프이다 (siGFP: 대조군).
도 17은 siSurvivin, siSurvivin-2 'C', siSurvivin 16+3A 및 siSurvivin16+3A-2'C'의 wild type과 mismatch 타겟간 루시퍼라제의 활성 비를 평균화하여 나타낸 그래프이다.
도 18은 siSurvivin, siSurvivin-2 'C', siSurvivin 16+3A 및 siSurvivin16+3A-2'C'의 서바이빈 센스 타겟에 대한 오프-타겟 효과를 루시퍼라제 활성으로 측정한 그래프이다.
도 19는 각 siRNA 및 fork-siRNA들의 구조를 나타낸다.
도 20은 도 19의 각 siRNA 및 fork-siRNA들의 오프-타겟 억제 효과를 루시퍼라제 활성으로 측정한 그래프이다 (siGFP: 대조군).
도 21은 각 siRNA들의 siRNA 활성 및 HeLa 세포 생존율을 측정한 그래프이다.
도 22는 siSurvivin, siSurvivin-2 'C', siSurvivin 16+3A 및 siSurvivin16+3A-2'C', siSurvivin-2'OMe의 게놈 범주 마이크로어레이 시 오프타겟 유전자의 수를 나타낸 그래프이다.
도 23은 siSurvivin, siSurvivin-2'C', siSurvivin-2OMe의 마이크로어레이 기반 게놈 범주 오프타겟 프로파일링을 수행한 결과로서, 23A 내지 C는 siSurvivin (A), siSurvivin-2'C' (B), siSurvivin-2'OMe (C) 처리에 따른 안티센스 시드 영역과 상동성을 가지는 전사체 (적색 점), 변형된 안티센스 시드영역과 상동성을 가지는 전사체 (황색 점), 기타 전사체 (회색 점)에 대한 발현 변화를 보이는 MA plot이고, 23D 내지 F는 siSurvivin (D), siSurvivin-2'C' (E), siSurvivin-2'OMe (F) 처리에 따른 발현을 log2 fold 변화로 나타낸 그래프이고, 23G는 오프-타겟의 수를 나타내는 그래프이고, 23H는 siRNA 매개 오프-타겟 억제의 감소율을 나타내는 그래프이다.
다른 식으로 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 갖는다. 일반적으로, 본 명세서에서 사용된 명명법은 본 기술분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다.
본 발명의 상세한 설명 등에서 사용되는 주요 용어의 정의는 다음과 같다.
본원에서 "siRNA (small interfering RNA)"란, 서열 특이적으로 효율적인 유전자 발현 억제(gene silencing)를 매개하는 짧은 이중 가닥의 RNA(dsRNA)를 의미한다.
본원에서, "안티센스 가닥(antisense strand)"이란 관심있는 목적 핵산(target nucleic acid)에 실질적으로 또는 100% 상보적인 폴리뉴클레오티드로서, 예를 들어 mRNA (messenger RNA), mRNA가 아닌 RNA 서열(e.g., microRNA, piwiRNA, tRNA, rRNA 및 hnRNA) 또는 코딩 또는 비코딩 DNA 서열과 전체로서 또는 일부로서 상보적일 수 있다. 본원에서, 안티센스 가닥 및 가이드 가닥은 교환되어 사용될 수 있다.
본원에서, "센스 가닥(sense strand)"이란 목적 핵산과 동일한 핵산 서열을 갖는 폴리뉴클레오티드로서, mRNA (messenger RNA), mRNA가 아닌 RNA 서열(e.g., microRNA, piwiRNA, tRNA, rRNA 및 hnRNA) 또는 코딩 또는 비코딩 DNA 서열과 전체로서 또는 일부로서 동일한 폴리뉴클레오티드를 말한다.
본원에서 "유전자"란 최광의의 의미로 간주되어야 하며, 구조 단백질 또는 조절 단백질을 암호화할 수 있다. 이때, 조절단백질은 전사인자, 열 충격단백질 또는 DNA/RNA 복제, 전사 및/또는 번역에 관여하는 단백질을 포함한다. 본 발명에 있어서, 발현 억제의 대상이 되는 목적유전자는 바이러스 게놈에 내재된 것으로, 동물유전자로 통합되거나 염색체 외 구성요소로서 존재할 수 있다. 예컨대, 목적유전자는 HIV 게놈상의 유전자일 수 있다. 이 경우, siRNA 분자는 포유동물 세포 내 HIV 유전자의 번역을 불활성화시키는데 유용하다.
본원에서, "오프-타겟 효과(Off-target effect)"란 본래 siRNA는 안티센스 가닥과 상보적인 서열을 갖는 mRNA의 분해를 유도하여 해당 mRNA의 유전자 발현을 억제하는 효과를 얻기 위하여 사용하는 것임에 불구하고, siRNA의 센스 가닥에 의해 타 mRNA의 분해가 발생하게 되는 경우 센스 가닥에 의해 발생하는 이러한 예상치 못한 타 mRNA의 분해 내지 해당 유전자의 발현 억제 효과 및 siRNA의 안티센스 가닥이 잘못된 타겟과 페어링하여 타 mRNA의 분해가 발생하는 안티센스 가닥에 의한 타 mRNA의 분해 내지 해당 유전자의 발현 억제효과를 모두 포함하는 것이다.
본원에서, "벌지(bulge)"란 이중가닥의 핵산에 있어서, 하나 이상의 뉴클레오티드의 도입으로 인하여 페어링(pairing)이 이루어지지 않고 벌어진 부분을 말한다.
본 발명은 일 관점에서, 안티센스 가닥 (antisense strand) 및 상기 안티센스 가닥에 상보적인 센스 가닥(sense strand)으로 구성되는 이중가닥의 siRNA (small interfering RNA) 분자로서, 상기 siRNA의 안티센스 가닥에 단일 뉴클레오티드 도입에 의한 단일 뉴클레오티드 벌지(bulge)를 적어도 하나 이상 가지는 것을 특징으로 하는 siRNA 분자에 관한 것이다.
본 발명의 siRNA 분자는 일반적으로 합성된 것일 수 있으나, 이에 국한되는 것은 아니다. 즉, 본 발명에 있어서, 상기 siRNA 분자는 화학적 또는 효소학적으로 합성된 것일 수 있다. 본 발명의 siRNA 분자는 표준 재조합 기법에 의해 자연 발생적 유전자로부터 유도할 수 있으나, 이 경우 발현을 변화시킬 목적 유전자의 mRNA의 적어도 일부분과 뉴클레오티드 서열 수준에서 실질적으로 상보적인 것을 특징으로 할 수 있다.
이에 본 발명에 따른 siRNA 분자는 화학적 변형을 포함하는 것을 특징으로 할 수 있다. 상기 화학적 변형은 상기 siRNA에 포함되는 적어도 1종의 뉴클레오티드의 리보스의 2' 위치의 히드록실기가 수소원자, 불소원자, -O-알킬기, -O-아실기, 및 아미노기 중 어느 하나로 치환되는 것을 특징으로 할 수 있으며, 이에 제한되지 않고 siRNA의 전달능을 높이기 위해서라면 -Br, -Cl, -R, -R'OR, -SH, -SR, -N3 및 -CN (R= alkyl, aryl, alkylene) 중 어느 하나로도 치환될 수 있다. 또한, 적어도 1종의 뉴클레오티드의 포스페이트 백본이 phosphorothioate form, phosphorodithioate form, alkylphosphonate form, phosphoroamidate form 및 boranophosphate form 중 어느 하나로 치환될 수 있다. 또한, 상기 화학적 변형은 상기 siRNA에 포함되는 적어도 1종의 뉴클레오티드가 LNA (locked nucleic acid), UNA(unlocked nucleic acid), Morpholino, PNA (peptide nucleic acid) 중 어느 하나로 치환된 것임을 특징으로 할 수 있으며, 상기 화학적 변형은 상기 siRNA가 지질, 세포투과성 펩타이드(cell penetrating peptide) 및 세포 표적 리간드로 구성된 군에서 선택되는 하나 이상과 결합되는 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 단일 뉴클레오티드 벌지는 상기 siRNA의 안티센스 가닥의 5' 말단 영역 또는 3' 말단 영역에 존재하는 것을 특징으로 할 수 있으며, 이때 5' 말단 영역은 5' 말단으로부터 2~4번째 위치의 뉴클레오티드이며, 3' 말단 영역은 3' 말단으로부터 2~4번째 위치의 뉴클레오티드인 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명에 있어서, 벌지를 형성하기 위하여 도입되는 뉴클레오티드는 특정 염기로 한정되지 않으나, 도입 후 인접하게 되는 뉴클레오티드와 다른 염기를 가지는 뉴클레오티드 또는 염기가 없는(abasic) 뉴클레오티드인 것을 특징으로 할 수 있다. 이는 센스 가닥의 인접한 뉴클레오티드와 모호한 페어(ambiguous pairs)를 형성하는 것을 막기 위하여 요청된다.
본 발명에서는, siRNA의 안티센스 가닥 상에 단일 뉴클레오티드 도입에 의한 벌지를 형성하는 경우 본래의 siRNA 구조와 대비할 때 목적 유전자 발현 억제효율은 유사하거나 더 우수하면서도 안티센스 가닥에 의하여 유도되는 오프-타겟 효과를 최소화하는 것을 확인하였는데, 본 발명의 일 실시예에서는 안티센스의 5' 말단으로부터 2~4번째 뉴클레오티드 위치 또는 17~19번째 뉴클레오티드 위치, 즉 3' 말단으로부터 2~4번째 위치의 뉴클레오티드 상에 단일 뉴클레오티드 벌지가 존재할 때 목적 유전자 발현 억제 효율이 우수함을 제시하였다.
한편, 본 발명의 다른 실시예에서는 안티 센스 가닥에 의해 유도되는 오프-타겟 효과를 최소화하는지 살펴보기 위하여, 안티센스 타겟에 대하여 치환에 의한 변이를 일으킨 mismatch target에 대한 억제효율 측정실험을 수행하여, siRNA의 안티센스의 5' 말단에서 2번째 위치에 단일 뉴클레오티드 벌지 형성 시 가장 효율적으로 오프-타겟효과를 저해함을 보였다. 이에 본 발명에 있어서, 바람직하게는 상기 단일 뉴클레오티드 벌지는 상기 siRNA의 안티센스의 5' 말단의 2번째 뉴클레오티드에 존재하는 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명의 실시예에서는, 목적유전자로서 서바이빈(Survivin) 뿐만 아니라, MPHOS1MAPK14를 타겟으로 하는 siRNA에 대해서도 동일하게 본 발명에 따른 siRNA 구조 적용 시 우수한 효율로 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화하여 타겟에 대한 선별능을 높이는 효과를 가져옴을 확인한바, 본 발명에 따른 siRNA 구조는 기타 다른 목적 유전자를 타겟으로 하는 siRNA를 제공한 경우에도 동일한 결과를 얻을 수 있다는 것은 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 자명한 사항이라 할 것이다.
한편, 본 발명의 일 실시예에서는, 본 발명자들에 의해 센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 감소시키는 것으로 알려진 구조인 비대칭 siRNA 분자에 대하여 적용하는 경우 효과적으로 센스 및 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 모두 최소화하는 매우 효율성이 우수한 siRNA 분자가 제공될 수 있음을 확인하였다. 이에 본 발명에 있어서, 상기 siRNA는 19~21 뉴클레오티드(nucleotide, nt)의 안티센스 (antisense) 및 상기 안티센스에 상보적인 서열을 갖는 13~17nt의 센스(sense)로 구성되고, 상기 안티센스의 5'방향의 말단이 블런트 말단(blunt end)이고 안티센스의 3'말단에 돌출부(overhang)를 갖는 것을 특징으로 하는 siRNA 분자인 것을 특징으로 할 수 있다. 이때, 센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화하면서 RNAi 기구를 포화시키지 않기 위하여 바람직하게는 상기 구조에서 상기 센스의 길이는 15~16nt이며 상기 돌출부의 길이는 3~6nt인 것을 특징으로 하거나, 안티센스의 길이가 19nt이고 상기 돌출부의 길이가 2~4nt인 것을 특징으로 할 수 있다.
아울러, 본 발명의 다른 실시예에서는, 본 발명에 따른 siRNA 분자의 전체 세포 내 오프-타겟 억제에 대한 효과를 분석하기 위하여 게놈 와이드 발현 프로파일링을 수행한 결과, 본 발명에 따른 siRNA 분자는 비변형된 siRNA 분자나 다른 변형 siRNA 분자에 비하여 현저히 세포 전체적으로 오프-타겟 억제 효과가 있음을 확인할 수 있었다.
아울러, 본 발명은 본 발명에 따른 siRNA 분자가 효율적으로 목적 유전자 발현 억제 효과를 가져옴을 제시한 바, 본 발명은 다른 관점에서 상기 siRNA 분자를 함유하는 유전자 발현 억제용 조성물에 관한 것이다.
상기 유전자 발현 억제용 조성물은 유전자 발현 억제용 키트(kit)의 형태로 제공될 수 있다. 유전자 발현 억제용 키트는 병, 통(tub), 작은 봉지(sachet), 봉투(envelope), 튜브, 앰플(ampoule) 등과 같은 형태를 취할 수 있으며 이들은 부분적으로 또는 전체적으로 플라스틱, 유리, 종이, 호일, 왁스 등으로부터 형성될 수 있다. 용기는, 처음에는 용기의 일부이거나 또는 기계적, 접착성, 또는 기타 수단에 의해 용기에 부착될 수 있는, 완전히 또는 부분적으로 분리가 가능한 마개를 장착할 수 있다. 용기는 또한 주사바늘에 의해 내용물에 접근할 수 있는, 스토퍼가 장착될 수 있다. 상기 키트는 외부 패키지를 포함할 수 있으며, 외부 패키지는 구성 요소들의 사용에 관한 사용설명서를 포함할 수 있다.
본 발명은 또 다른 관점에서, 상기 siRNA 분자를 이용하여 세포 내 목적 유전자의 발현을 억제시키는 방법에 관한 것이다. 즉, 본 발명은 상기 siRNA 분자를 세포 내 도입시키는 단계를 포함하는 세포 내 타겟 유전자의 발현 억제 방법을 제공할 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 siRNA 분자의 안티센스는 목적 유전자의 mRNA 서열에 상보적인 것을 특징으로 할 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 목적 유전자는 내인성(endogeneous) 유전자이거나 삽입유전자(transgene)일 수 있다.
이때, 본 발명에서 따른 siRNA 분자는 기존의 오프-타겟 효과를 가진다고 알려진 2'-OMe나 LNA 같은 화학적 변형을 가지는 siRNA 분자들과 달리 반드시 합성 siRNA로 제한되지 않고, 세포 내에서 발현 벡터 등을 이용하여 발현되는 siRNA나 shRNA에도 적용이 가능한 장점이 있다. 즉, 본 발명에 따른 siRNA 분자는 세포 내에서 발현시킴으로써 목적 유전자의 발현을 억제시킬 수 있다. 따라서, 본 발명은 다른 관점에서, 상기 siRNA 분자를 세포 내에서 발현시키는 단계를 포함하는 유전자 발현 억제 방법에 관한 것이다.
한편, 본 발명에 따른 siRNA 분자는 세포 내에서 발현시켜 수득될 수 있는 것을 특징으로 하는바, 본 발명은 또 다른 관점에서, 상기 siRNA 분자를 세포 내에서 발현시키는 방법에 관한 것이다.
아울러, 본 발명에 따른 siRNA 분자는 siRNA 분자의 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화하는 바, 본 발명은 다른 관점에서, 상기 siRNA 분자를 세포 내 도입 또는 발현시키는 단계를 포함하는 siRNA 분자의 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과의 억제방법에 관한 것이다.
실시예
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로서, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.
특히, 하기 실시예에서는 목적유전자로서, 서바이빈(Survivin), MPHOSPH1 MAPK14에 대한 siRNA만을 예시하였으나, 기타 다른 목적 유전자를 타겟으로 하는 siRNA를 제공한 경우에도 동일한 결과를 얻을 수 있다는 것은 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 자명한 사항이라 할 것이다.
단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA 분자와 종래의 siRNA 분자 간 목적 유전자 발현 억제 효과 비교
본 발명에 따른 siRNA 분자와 종래 구조의 변형되지 않은 siRNA 분자의 안티센스 가닥에 의해 매개되는 오프-타겟 효과를 비교하기 위하여, 다음의 실험을 수행하였다.
먼저, 안티센스 가닥 상의 단일 뉴클레오티드의 벌지를 형성한 siRNA를 도 1과 같이 안티센스 가닥의 5' 말단을 기준으로 2번, 3번, 4번, 5번, 16번, 17번, 18번 및 19번 위치에서 단일 뉴클레오티드 벌지를 갖도록 제조하였다. 도 1에서 도입된 단일 뉴클레오티드는 적색으로 표시하였으며, *표는 벌지의 위치를 나타낸다. RNA들은 화학적으로 합성되고 HPLC로부터 분리된 것으로 Samchully Pharma, Inc. 로부터 구매되었으며, 이들은 제조사의 지침에 따라 어닐링(annealing)반응을 수행하였다.
상기 벌지를 가지는 siRNA 분자들과 본래의 siRNA 분자에 대하여 Hela 세포 (ATCC CCL-2)에서 안티센스 타겟의 발현억제를 다음과 같이 시험하였다. 대조군으로서는 siGFP를 이용하였다.
siGFP
센스 5'-GGCUACGUCCAGGAGCGCA-3' (서열번호 11)
안티센스 5'-UGCGUCCUGGACGUAGCC-3' (서열번호 12)
즉, siGFP, 변형되지 않은 본래의 siRNA 분자인 siSurvivin 및 도 1의 벌지된 각 siSurvivins들을 각각 10nM씩 siSurvivin 안티센스 타겟 서열을 가지는 pMIR 반디불(firefly) 루시퍼라제(luciferase) 벡터와 함께 Lipofectamine 2000 시약(Invitrogen)을 이용하여 제조자의 프로토콜에 따라 Hela 세포에 트랜스펙션시켰다.
상기 벡터는 siSurvivin 안티센스 타겟서열에 상응하는 DNA 올리고뉴클레오티드를 pMIR Report-luciferase vector (Ambion)의 3' UTR의 SpeI 및 HindⅢ의 위치로 클로닝하여 제작하였으며, 상기 포함된 siSurvivin 안티센스 타겟서열은 다음과 같다.
siSurvivin antisense target oligo
5'-CTAGTAAGGAGATCAACATTTTCAA-3' (서열번호 13)
Hela 세포는 10% FBS (fetal bovine serum), 100 U/ml 페니실린, 및 100 ㎍/ml 스텝토마이신을 보충한 Dulbecco's 개질 Eagle's 배지 (Invitrogen)에서 배양하였으며, 세포들은 24-웰 플레이트에서 24시간 동안 평판 배양하고, 30-50% 컨플루언스에서 항생제 없는 완전배지에서 트랜스펙션을 수행하였다.
트랜스펙션을 수행한 후 24시간 후, 세포를 Passive lysis buffer (Dual-luciferase Reporter Assay system; Promega)를 이용하여 용해시킨 다음, Victor3 plate reader (PerkinElmer)를 이용하여 각 세포 추출물 20 ㎕ 당 루시퍼라제 활성을 측정하였다. 반딧불이 루시퍼라제 활성은 각 개개의 웰에 대한 Renilla 루시퍼라제 활성에 의하여 표준화되며, 각 siRNA 구조의 발현 억제 효율은 siGFP가 트랜스펙션된 샘플의 루시퍼라제 활성의 표준화에 의하여 계산되었다. 모든 실험은 3번씩 반복되었다.
그 결과, 도 2에 나타난 바와 같이, 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA 분자들은 위치 위존적으로 타겟에 대한 발현 억제 효과가 감소하는 것을 확인할 수 있었다. 즉, 안티센스 가닥의 5' 말단을 기준으로 2번째 위치 및 19번째 위치에 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA의 경우 종래의 변이를 가지지 않는 siSurvivin과 거의 동일한 억제효율을 가지는 것으로 나타났으며, 18번째 위치에서의 단일 뉴클레오티드에서 벌지를 가지는 siRNA도 80% 이상의 억제효율을 보였다. 또한, 3번째 및 4번째 위치 및 17번째 위치의 단일 뉴클레오티드에서 벌지를 가지는 siRNA들도 상기보다는 낮은 억제효율을 보이기는 하나, 중앙 영역인 5번째나 16번째 위치에서 벌지를 가지는 siRNA보다는 현저한 발현 억제 효과를 가짐을 볼 수 있었다.
이에 목적 유전자에 대한 발현 억제 효과 면에서 살펴볼 때, siRNA 분자의 안티센스 가닥의 5' 말단을 기준으로 2~4번째 위치의 뉴클레오티드 또는 3' 말단을 기준으로 2~4번째 위치의 뉴클레오티드에 벌지를 가지는 siRNA 분자를 사용하는 것이 바람직하며, 더욱 바람직하게 2번째, 18번째 또는 19번째 위치에 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA를 사용하는 것이 바람직함을 확인할 수 있었다.
추가적으로, 상기 도 1의 siSurvivins 및 이의 변형한 siSurvivins와, 종래 오프-타겟 효과를 가진다고 알려진 2'OMe 변형을 가지는 siRNA 분자의 열역학적 안정성을 비교하기 위하여 다음의 실험을 수행하였다. siSurvivin-2'OMe는 안티센스의 2번째 위치의 뉴클레오티드의 2'Ome 변형을 가지는 siRNA 분자이다.
siSurvivin duplexes의 녹는점(Tm)은 SYBR Green I Premix Ex Taq (TaKaRa, Bio Inc., Shiga, Japan) 및 SDS software version 2.0.1을 이용한 Step-One real-time PCR machine (Applied Biosystems, Foster City, CA)fmf 사용하여 측정하였다. premix는 1μM의 siSurvivin oligos를 포함하며, 서열은 95℃에서 2분간 denature 시킨 후, 10분간 hold동안 30℃까지 10% ramp로 처리하였다. 그 다음 시료는 다시 95℃가 될 때까지 30초 hold로 0.4℃ 단계로 가열하였다. Tm 값은 melt curve 분석으로 계산하였다.
그 결과, 표 1에 나타난 바와 같이, 안티센스 가닥의 5' 말단을 기준으로 2번째 위치 및 19번째 위치에 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA의 경우 열적 안정성이 영향을 받지 않음을 확인할 수 있었다. 그러나 다른 위치의 경우 Tm 값이 감소되는 것으로 나타났고 이것이 유전자 발현 억제에 영향을 준 것으로 사료된다.
siRNA Tm(℃) △Tm(℃)
siSurvivin 59.61 -
siSurvivin-2 61.45 +1.84
siSurvivin-3 55.94 -3.67
siSurvivin-4 56.44 -3.17
siSurvivin-5 56.28 -3.33
siSurvivin-16 56.28 -3.33
siSurvivin-17 55.27 -4.34
siSurvivin-18 55.44 -4.17
siSurvivin-19 58.2 -1.41
siSurvivin-2'OMe 60.12 +0.51
단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA 분자와 종래의 siRNA 분자의 완전한 타겟과 불완전한 타겟 사이의 선별 효과 비교
본 발명에 따른 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA 분자와 종래 구조의 siRNA 분자의 타겟에 대한 민감도를 살펴보기 위하여, 상기에서 목적 유전자 발현 효과가 우수한 것으로 나타난 2번째, 18번째 및 19번째 위치에서 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA 분자 (siSurvivin-2, siSurvivin-18, siSurvivin-19) 및 종래의 19+2 구조의 siRNA 분자 (siSurvivin)에 대하여 다음의 실험을 수행하였다.
먼저, 실시예 1과 동일한 방법으로 다음의 siSurvivin 안티센스 타겟 서열의 Wild type 및 Mismatch type들을 각각 포함하는 pMIR 클론들을 제작하였다 (도 3a, Mismatch 타겟의 명칭에서 숫자는 치환된 위치를 나타낸다).
Wild type : 5'-CTAGTAAGGAGATCAACATTTTCAA-3' (서열번호 13)
Mismatch 3: 5'-CTAGTAAGGAGATCAACATTT C CAA-3' (서열번호 14)
Mismatch 5: 5'-CTAGTAAGGAGATCAACAT C TTCAA-3' (서열번호 15)
Mismatch 7: 5'-CTAGTAAGGAGATCAAC C TTTTCAA-3' (서열번호 16)
Mismatch 9: 5'-CTAGTAAGGAGATCA C CATTTTCAA-3' (서열번호 17)
Mismatch 11: 5'-CTAGTAAGGAGAT G AACATTTTCAA-3' (서열번호 18)
Mismatch 13: 5'-CTAGTAAGGAG C TCAACATTTTCAA-3' (서열번호 19)
Mismatch 15: 5'-CTAGTAAGG C GATCAACATTTTCAA-3' (서열번호 20)
Mismatch 17: 5'-CTAGTAA T GAGATCAACATTTTCAA-3' (서열번호 21)
Hela 세포를 상기 wild type 및 Mismatch 타겟들을 포함한 벡터로 트랜스펙션 시킨 다음, 실시예 1과 동일한 방법으로 siSurvivin 또는 siSurvivin-2, 18 및 19를 각각 10nM을 도입한 다음 루시퍼라제 활성을 측정하였다.
그 결과, 도 3b에 나타난 바와 같이, 본 발명에 따른 구조의 siRNA 분자들은 종래 구조의 siRNA에 비하여 불일치(mismatch)를 가지는 타겟에 대한 발현 억제효과가 감소된 것으로 나타나, 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 감소시키는 효과가 있음을 확인할 수 있었다.
추가적으로 불일치 영역을 가지는 않는 완전한 타겟 서열과 하나의 뉴클레오티드만을 치환시킨 불완전한 서열간의 타겟 선별능을 제시하기 위하여, wild type과 mismatch 타겟간 루시퍼라제의 활성 비를 계산하여 평균화하여 도 3c로 나타내었다. 그 결과, 도 3c에 나타난 바와 같이, siSurvivin-2가 불완전한 타겟에 대한 억제효율이 적으면서도 타겟을 특이적으로 발현억제하는 타겟 선별능이 가장 우수한 siRNA 분자로 확인되었다.
본 발명에 따른 siRNA 분자와 2' OMe 변형을 가지는 siRNA 분자간 오프 - 타겟 선별능 비교
본 발명에 따른 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA 분자와 종래 오프-타겟 효과를 가진다고 알려진 2'OMe 변형을 가지는 siRNA 분자의 오프-타겟 선별능을 비교하기 위하여, 다음의 실험을 수행하였다.
먼저 도 4와 같이, siSurvivin, siSurvivin-2 'A', siSurvivin-2 'C', 및 siSurvivin-2'OMe를 제조하였다. 도 4에서, siSurvivin-2 'A'는 안티센스의 2번째 위치에 A를 도입한 것이고, siSurvivin-2 'C'는 도입된 안티센스의 2번째 위치에 C를 도입한 것이고, siSurvivin-2'OMe는 안티센스의 2번째 위치의 뉴클레오티드의 2'Ome 변형을 가지는 siRNA 분자를 나타내며, 적색은 벌지 뉴클레오티드이고, 청색은 2'OMe로 변형된 뉴클레오티드를 가리킨다.
도 4의 siRNA 분자들에 대하여, 실시예 2와 동일한 방법으로 타겟에 대한 민감도를 살펴보기 위한 실험을 수행하였다. 추가로, siRNA가 더 높은 농도에서도 on- ve off-target 선별을 유지하는지 확인하기 위하여, siRNA를 10, 25 및 50nM의 농도로 테스트하였다.
endogenous Survivin mRNA(on-target)에 대한 siSurvivin, siSurvivin-2 'A', siSurvivin-2 'C', 및 siSurvivin-2'OMe의 siRNA들의 IC50 값을 측정한 결과, 도 5에 나타난 바와 같이, 본 발명에 따른 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA 분자의 경우 변형되지 않은 siSurvivin과 유사한 IC50값을 갖는 것으로 나타났고, 이에 반하여 2'-OMe 변형된 siRNA의 경우 더 높은 IC50값을 갖는 것으로 나타나 유전자 발현 억제 효율에 있어 손실이 다소 있는 것으로 나타났다.
아울러, 각각 10, 25 및 50nM의 농도에서 오프-타겟 억제를 측정한 결과, 도 6 및 7에 나타난 바와 같이, 2번째 위치에 벌지를 가지는 siRNA 분자가 도입된 가장 우수한 타겟 선별능을 가짐을 확인할 수 있었다. 특히 이는 종래 오프-타겟 효과를 가진다고 알려진 2'OMe 변형을 가지는 siRNA 분자와 대비하여서도 현저하게 우수한 타겟 선별능을 가지는 것으로 나타났다.
본 발명에 따른 siRNA 분자와 2' OMe 변형을 가지는 siRNA 분자간 오프 - 타겟 선별능 비교 (2)
실시예 1 내지 3의 실험결과가 Survivin에 대한 siRNA(siSurvivin)에만 특이적인 것인지 또는 다른 siRNA에도 적용할 수 있는지 검토하기 위하여 다음의 추가실험을 수행하였다.
우선, MPHOSPH1에 대한 siRNA (siMPHOSPH1)에 대한 적용가능성을 검토하기 위하여, 도 8과 같이, siMPHOSPH1, siMPHOSPH1-2 'A', siMPHOSPH1-2 'G', 및 siMPHOS1-2'OMe를 제조하였다. 도 8에서, siMPHOS1-2 'A'는 안티센스의 2번째 위치에 A를 도입한 것이고, siMPHOS1-2 'G'는 도입된 안티센스의 2번째 위치에 G를 도입한 것이고, siMPHOSPH1-2'OMe는 안티센스의 2번째 위치의 뉴클레오티드의 2'Ome 변형을 가지는 siRNA 분자를 나타내며, 적색은 벌지 뉴클레오티드이고, 청색은 2'OMe로 변형된 뉴클레오티드를 가리킨다.
도 8의 siRNA 분자들에 대하여, 실시예 4와 동일한 방법으로 타겟에 대한 민감도를 살펴보기 위한 실험을 수행하였다. 다만, 이때 pMIR에 도입되는 siMMPHOSPH1 안티센스 타겟 올리고 (wild type) 및 이의 변이체(Mismatch)들은 다음과 같다.
Wild type: 5'-CTAGTGACATGCGAATGACACTAGA-3' (서열번호 29)
Mismatch 5: 5'-CTAGTGACATGCGAATGACTCTAGA-3' (서열번호 30)
Mismatch 7: 5'-CTAGTGACATGCGAATGTCACTAGA-3' (서열번호 31)
그 결과, 도 9에 나타난 바와 같이, endogenous MPHOSPH1 mRNA(on-target)에 대한 siMPHOSPH1, siMPHOSPH1-2 'A', siMPHOSPH1-2 'G', 및 siMPHOSPH1-2'OMe의 siRNA들의 IC50 값을 측정한 결과, 이전에 보고된 바와 같이 변형되지 않은 siMPHOSPH1는 10nM에서 on-target 억제효율이 오직 45%dp 불과하여 비효율적인 것으로 나타났으며, 2'-OMe 변형된 siRNA의 경우 유전자 발현 억제 효율이 더 낮았다. 그러나, 이에 반하여 본 발명에 따른 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 siRNA 분자의 경우 10nM에서 70%까지 억제시키는 것으로 나타나 억제 효율이 우수함을 확인할 수 있었다.
아울러, 각각 10, 25 및 50nM의 농도에서 오프-타겟 억제를 측정한 결과, 도 10 및 도 11에 나타난 바와 같이, siMPHOSPH1에 있어서도 siSurvivin과 마찬가지로, 2번째 위치에 벌지를 가지는 siRNA 분자가 도입된 가장 우수한 타겟 선별능을 가짐을 확인할 수 있었다. 또한, 종래 오프-타겟 효과를 가진다고 알려진 2'OMe 변형을 가지는 siRNA 분자와 대비하여서도 현저하게 우수한 타겟 선별능을 나타내는 결과를 얻을 수 있었다.
또한, 추가적으로 MAPK14에 대한 siRNA (siMAPK14)에 대한 적용가능성을 검토하기 위하여, 도 12와 같이, siMAPK14, siMAPK14-2 'G', siMAPK14-2 'C', 및 siMAPK14-2'OMe를 제조하였다. 도 12에서, siMAPK14-2 'G'는 안티센스의 2번째 위치에 G를 도입한 것이고, siMAPK14-2 'C'는 도입된 안티센스의 2번째 위치에 C를 도입한 것이고, siMAPK14-2'OMe는 안티센스의 2번째 위치의 뉴클레오티드의 2'Ome 변형을 가지는 siRNA 분자를 나타내며, 적색은 벌지 뉴클레오티드이고, 청색은 2'OMe로 변형된 뉴클레오티드를 가리킨다.
도 12의 siRNA 분자들에 대하여, 실시예 3과 동일한 방법으로 타겟에 대한 민감도를 살펴보기 위한 실험을 수행하였다. 다만, 이때 pMIR에 도입되는 siMAPK14 안티센스 타겟 올리고 (wild type) 및 이의 변이체(Musmatch)들은 다음과 같다.
Wild type: 5'-CTAGTCCTACAGAGAACTGCGGTTA-3' (서열번호 37)
Mismatch 5: 5'-CTAGTCCTACAGAGAACTGTGGTTA-3' (서열번호 38)
Mismatch 7: 5'-CTAGTCCTACAGAGAACAGCGGTTA-3' (서열번호 39)
그 결과, 도 13에 나타난 바와 같이, endogenous MAPK14 mRNA(on-target)에 대한 siMAPK14, siMAPK14-2 'G', siMAPK14-2 'C', 및 siMAPK14-2'OMe의 siRNA들의 IC50 값을 측정한 결과, 비변형된 siMAPK14 (IC50 324pM)과 비교하여, 2'OMe 변형된 siMAPK14-2'OMe (IC50 1.79nM)는 현저히 높은 IC50값을 갖는 것으로 나타나 유전자 발현 억제 효율에 있어 손실이 있는 것으로 나타났다. 이에 반하여 siMAPK14-2 'C'는 비변형된 siMAPK14 와 유사한 IC50값을 보였다. 다만, siMAPK14-2 'G'의 경우 다소 유전자 발현억제 효율에 있어 손실이 있는 것으로 나타났는데, 이는 본 siRNA 구조에서 벌지 뉴클레오티드인 'G' 위치가 센스 가닥의 근접한 뉴클레오티드와 wobble pair를 형성할 수 있다는 점에 주목하여야 할 것이다.
아울러, 각각 10, 25 및 50nM의 농도에서 오프-타겟 억제를 측정한 결과, 도 14 및 도 15에 나타난 바와 같이, siMAPK14에 있어서도 siSurvivin이나 siMPHOS1과 마찬가지로, 2번째 위치에 벌지를 가지는 siRNA 분자가 도입된 가장 우수한 타겟 선별능을 가짐을 확인할 수 있었다. 또한, 종래 오프-타겟 효과를 가진다고 알려진 2'OMe 변형을 가지는 siRNA 분자와 대비하여서도 현저하게 우수한 타겟 선별능을 나타내는 결과를 얻을 수 있었다.
이러한 실험결과를 종합하면, 본 발명에 따른 siRNA 구조는 특정 siRNA에서만 적용되는 것이 아니며, 동일한 구조를 가지는 siRNA이면 안티센스 가닥에 의하여 매개되는 오프-타겟 효과를 감소시키고 타겟에 대한 선별능이 향상되는 효과를 얻을 수 있음을 알 수 있다.
단일 뉴클레오티드 벌지( bulge )를 가지는 16+3A의 비대칭 구조를 가지는 siRNA의 오프 - 타겟 효과 감소능 측정
종래 본 발명자들에 의하여 센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 최소화하는 것으로 알려진 siRNA 구조인 16+3A구조에 대하여 본 발명에 따른 siRNA 구조를 적용한 경우 오프-타겟 효과를 감소시키는지 확인하기 위하여, siSurvivin-2 'C', 16+3A 구조를 갖는 siSurvivin (siSurvivin 16+3A) 및 안티센스 가닥의 2번째 위치에 단일 뉴클레오티드 벌지를 가지는 16+3A 구조의 siSurvivin (siSurvivin16+3A-2'C')에 대하여 다음과 같은 실험을 수행하였다.
16+3A 구조는 19~21 뉴클레오티드(nucleotide, nt)의 안티센스 (antisense) 및 상기 안티센스에 상보적인 서열을 갖는 15~19nt의 센스(sense)로 구성되고, 상기 안티센스의 5'방향의 말단이 블런트 말단(blunt end)이고 안티센스의 3'말단에 돌출부(overhang)를 갖는 것을 특징으로 하는 것을 siRNA 분자에 있어서, 19nt의 안티센스 및 16nt의 센스로 구성되며, 안티센스의 3' 말단에 3nt의 돌출부를 갖는 것을 특징으로 하는 구조를 말하며, siSurvivin 16+3A 및 siSurvivin16+3A-2'C'는 다음과 같다.
siSurvivin 16+3A
Antisense: 5'-UGAAAAUGUUGAUCUCCUU-3' (서열번호 40)
Sense: 5'-GAGAUCAACAUUUUCA-3' (서열번호 41)
siSurvivin16+3A-2'C'
Antisense: 5'-UCGAAAAUGUUGAUCUCCUU-3' (서열번호 42)
Sense: 5'-GAGAUCAACAUUUUCA-3' (서열번호 41)
상기 siRNA에 대하여 실시예 2와 동일한 방법으로 루시퍼라제 활성을 측정한 결과, 도 16 및 17에 나타난 바와 같이, 16+3A 구조의 siRNA의 안티센스 상에 단일 뉴클레오티드 벌지를 도입하는 경우, 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 효과적으로 감소시키게 됨을 확인할 수 있었다.
한편, 추가적으로 상기 siRNA 분자들의 센스 가닥에 의해 매개되는 발현 억제 감소효과를 확인하기 위하여, 상기 siRNA 분자들에 대하여 실시예 2와 동일한 방법으로 센스 가닥을 타겟으로 하는 유전자 발현 억제 효과를 살펴보기 위한 실험을 수행하였다. 다만, 이때 pMIR에 도입되는 siSurvivin 센스 타겟 올리고 (siSurvivin sense target oligo)는 다음과 같다.
siSurvivin sense target oligo
5'-CTAGTTGAAAATGTTGATCTCCTTA-3' (서열번호 43)
그 결과, 도 18에 나타난 바와 같이, 종래의 siRNA 분자와 대비 시 본 발명에 따른 siRNA 분자의 센스 가닥에 의한 오프타겟 효과를 저해하는 정도는 약간 상승하긴 하였으나 낮은 수준이었으나, 기존의 16+3A 구조에 적용한 siSurvivin16+3A-2'C'의 경우 기존의 16+3A 구조의 siRNA 분자 (siSurvivin16+3A)와 거의 유사한 센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 감소시키는 효과를 나타내는 것으로 확인되었다.
따라서, 본 발명에 따른 siRNA 분자에 비대칭 구조를 적용 시 센스 가닥 및 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과를 모두 최소화한 우수한 siRNA 분자를 얻을 수 있음을 알 수 있었다.
본 발명에 따른 siRNA 분자와 미스매치 변형된 siRNA ( fork - siRNAs )와의 비교
센스 가닥의 3' 말단 쪽에 단일 뉴클레오티드 미스매치를 가지는 소위 "fork-siRNAs"의 경우, 안티센스의 RISC로의 도입을 촉진하고 센스 가닥 매개 RNAi의 감소시킨다고 알려져 있는바, 본 발명에 따른 벌지구조가 "fork-siRNA"와 유사한 구조를 발생시키는지 확인하기 위하여 다음의 실험을 수행하였다.
먼저, 도 19와 같이, siRNA와 그 fork-siRNA들을 준비하였다. 그 다음, 실시예 2 및 4와 동일한 방법으로 타겟에 대한 민감도를 살펴보기 위한 실험을 수행하였다.
그 결과, 도 20에 나타난 바와 같이, 3개의 모든 mRNA에 대하여 fork-siRNA들은 오프-타겟 억제에서는 감소를 보이지 않았다. 더욱이 20c에서 볼 수 있듯이, siMPHOSPH1의 fork 변형의 경우 siMPHOSPH1 보다 유전자 발현 억제효율을 향상시키지 못하는 것으로 나타났다.
이러한 결과는 본 발명에 따른 siRNA 분자는 fork 변형과는 서로 구조적으로 그리고 기능적으로 다름을 나타낸다.
본 발명에 따른 siRNA 분자의 siRNA 매개 독성 확인
의도하지 않은, 불완전하게 매치된 mRNAs에 대한 안티센스 가닥의 억제는 siRNA 매개 부작용이다. 몇몇 siRNA는 현저한 on-target transcript에 대한 억제 없이 세포 생존을 억제하며, 이들은 거짓 양성 표현형으로 나타난다. 이에 안티센스 오프-타겟 억제를 감소시키기 위한 siRNA의 변형체들은 이러한 표현형을 감소시켜야 한다. 이에 MTT 분석을 사용하여 세포 생존율에서 siRNA 매개 손실에 대한 변형체들의 효과를 평가하였다.
세포의 생존율은 제조자의 설명서에 따라 MTT colorimetric assay (TaKaRA, Bio Inc., Shiga, Japan)를 사용하여 측정하였다. 간략하게는, 96 웰 플레이트에 시딩된 HeLa 세포에 10nM의 siRNA를 트렌스펙션 시킨 후 96시간 후 20㎕의 MTT 시약을 100㎕ 완전배지로 추가하였다. 그 후, 세포는 37℃, 5% CO2를 가지는 humified atmosphere에서 30분간 인큐베이션하였다. 생장 배지는 제거하고 100㎕ complete DMSO(dimethyl sulphoxide)를 웰에 첨가하였다. 플레이트는 5분간 shaker에서 유지시킨 후, 색변화를 620nm를 레퍼런스 파장으로 하여 540nm에서 ELISA 플레이트 리더로 측정하였다. 모든 흡수값은 배지 자체만 포함한 blank로 보정되었다. % 세포 생존율은 미처리한 대조군을 100% 생존으로 간주하여 계산하였다. IC50 값은 Sigma plot 10.0으로 계산하였다.
그 결과, 도 21에 나타난 바와 같이, siMAPK-14의 경우에는 세포 사멸이 관찰되지 않은반면, 10nM의 siSurvivin 및 siMPHOSPH-1로 트랜스펙션된 HeLa 세포는 세포 생존성에서 현저한 감소를 유발하였다. 100% 생존한 것으로 간주된 Lipofectamine 2000- 처리한 세포(대조군)와 비교하여, 비변형된 siSurvivin은 72% 세포 생존을 보였다. 이에 반하여 본 발명에 따른 구조인 벌지 변형체의 경우, 억제활성에 전혀 손실없이 세포 생존성은 약 92%까지 증가하였다. 한편, siSurvivin 2'-OMe 변형은 또한 siRNA-매개 세포 사멸을 감소시키는 것으로 나타났다.
siSurvivin과 반대로, siMPHOSPH-1은 매우 독성이 강한 것으로 발견되었다. siMPHOSPH-1은 매우 높은 세포 사멸을 가져왔고 (85%), 이는 안티센스 억제 활성과는 관계없다. 이에 반하여 본 발명에 따른 구조인 벌지 변형체는, 억제 활성을 증가시키는 것 이외에 세포 사멸도 현저히 감소시키는 것으로 나타났다(도 21b).
게놈 범주 마이크로어레이( genome wide microarray )에서의 오프 - 타겟 효과의 감소 효과 확인 (1)
실시예 1 내지 5의 루시퍼라제 리포터 분석에 따른 발견을 재확인하기 위하여, 변형되지 않은 siSurvivin 및 본 발명에 따른 구조의 siSurvivin을 처리한 Hela 세포로부터 준비한 cDNA에 대해 마이크로어레이를 수행하였다.
즉, 전체 RNA는 TRI Reagent? (Ambion) 및 RNeasy? mini kit (Qiagen)을 이용하여 제조자의 프로토콜에 따라 추출하였다. 10㎍의 전체 RNA는 Invitrogen의 키트를 이용하여 각각 이중가닥 cDNA (dscDNA)로 합성하였다. 시료들은 에탄올로 침전시켰다. 1㎍의 dscDNA를 Cy3-라벨된 랜덤 9mer (TriLink Biotechnologies)를 사용하여 Klenow 단편 (NEB)에 의한 라벨링을 위해 사용하였고, 라벨된 시료들은 이소프로판올을 이용하여 침전시켰다. Sample tracking control과 alignment oligo를 포함하는 4㎍의 Cy3-라벨된 DNA를 Nimblegen 385K 4-plex 인간 마이크로어레이로 42℃에서 18시간동안 Nimblegen Hybridization 시스템 (Nimblegen)을 이용하여 혼성화시켰다. 어레이를 세척한 다음, 어레이 이미지는 GenePix 4000B 스캐너(Axon Instruments)를 이용하여 얻었고, 스캔된 이미지는 NimbleScan 소프트웨어 (Nimblegen)로 전송하였다. 발현 데이터는 분위수 표준화(quantile normalization; Biopharm Stat. 2004 Aug;14(3):575-89. Effect of normalization on significance testing for oligonucleotide microarrays. Parrish RS, Spencer HJ 3rd)와 Robust Multichip Average (RMA) 알고리즘 (Effects of filtering by Present call on analysis of microarray experiments. McClintick JN, Edenberg HJ. BMC Bioinformatics. 2006 Jan 31;7:49)을 이용하여 표준화하였다.
siGFP 대조군에 대한 상대적인 siSurvivin 구조들의 24,000 개 유전자에 대한 발현에서의 변화를 계산하였으며, siSurvivin 구조들로 인하여 발현량이 2배 이상 감소되도록 조절된 유전자들을 선별하고 이러한 발현이 감소된 유전자들의 3' UTR과 2-8 seed 뉴클레오티드의 일치작업을 BLAST를 사용하여 수행하였다. mRNA의 2' UTR과 2-8 seed 뉴클레오티드 일치(matches)를 가지는 2배 이상 발현억제된 전사체들은 안티센스 오프-타겟으로 간주하였다.
그 결과, 도 22에 나타난 바와 같이, siSurvivin-2 'C' 및 siSurvivin16+3A-2 'C'와 같은 본 발명에 따른 siRNA 분자들은 상대적으로 현저하게 낮은 오프-타겟 유전자를 가지는 것으로 나타났다. 특히 오프-타겟 효과를 감소시키는 것으로 알려진 2'OME로 변형시킨 siSurvivin-2'OMe의 경우는 오히려 변형되지 않은 siSurvivin에 비하여 더 높은 오프-타겟 유전자수를 나타내었다. 즉, 2'OMe로 변형된 siRNA의 오프타겟 감소 효과를 관찰할 수 없었다.
게놈 범주 마이크로어레이( genome wide microarray )에서의 오프 - 타겟 효과의 감소 효과 확인 (2)
본 발명에 따른 siRNA 구조의 전체 세포 내 오프-타겟 억제에 대한 효과를 분석하고 상기 루시퍼라제 리포터 분석의 내용을 재확인하기 위하여, 변형된 siSurvivin 및 비변형된 siSurvivin을 처리한 HeLa 세포로부터 준비한 cDNA를 이용하여 게놈 와이드 발현 프로파일링을 수행하였다.
전체 RNA는 실시예 8과 동일한 방법으로 추출하였다. Sample tracking control과 alignment oligo를 포함하는 4㎍의 Cy3-라벨된 DNA를 Nimblegen 385K 4-plex 인간 마이크로어레이로 42℃에서 18시간동안 Nimblegen Hybridization 시스템 (Nimblegen)을 이용하여 혼성화시킨 다음, 어레이를 세척한 다음, 어레이 이미지는 InnoScan? 900 스캐너(Innopsys, Carbonne, France)를 이용하여 얻었고, 스캔된 이미지는 Mapix 소프트웨어 (Innopysys)로 전송하였다. 발현 데이터는 분위수 표준화(quantile normalization; Biopharm Stat. 2004 Aug;14(3):575-89. Effect of normalization on significance testing for oligonucleotide microarrays. Parrish RS, Spencer HJ 3rd)와 Robust Multichip Average (RMA) 알고리즘 (Effects of filtering by Present call on analysis of microarray experiments. McClintick JN, Edenberg HJ. BMC Bioinformatics. 2006 Jan 31;7:49)을 이용하여 표준화하였다.
본 실험에서는 outliers로서 intensity distrubution의 양끝에서 0.3%의 전사체를 제거하고, 23856 전사체를 본 연구에서 사용하였다. 이 중에서 RefSeq Human mRNA 서열로 나타나는 18978개의 서열을 분석에 사용하였다. siSurvivin 안티센스 및 센스 시드(nucleotide 2-8, 2-7, 1-7)가 Target Rank (http://genes.mit.edu/targetrank/)를 이용하여 각 개별 human RefSeq 3'-UTR과 매치되었으며, 각 siRNA 시드 매치를 가지는 또는 가지지 않는 전사체들의 전체 변화는 MA plot으로 나타내었다.
먼저, 가이드 가닥의 시드 영역 (5' 말단에서 1-8, 2-8 및 1-7 위치)와 mRNA의 상동성을 비교하였고, 안티센스 시드 영역과 상동성을 보이는 3'-UTR을 갖는 전사체는 전체 전사체의 10.7% (n=2031)로 분석되었다. 일반적으로 50% 이상의 다운조절된 전사체를 세포내 변화에서 현저한 효과를 가진다고 하기 때문에, 50% 이상 발현억제된 전사체들은 안티센스 오프-타겟으로 간주하였다.
아울러, siSurvivin 센스 시드 영역과 상동성을 보이는 3'-UTR을 갖는 전사체는 전체 전사체의 2.7% (n=521)로 분석되었다. 역시 이중 50% 이상 발현억제된 전사체들은 센스 오프-타겟으로 간주하였다.
또한, siRNA 시드 영역의 염기 변환 또는 도입에 따라, 새로운 시드 영역에 대한 새로운 오프-타겟 전사체가 발생할 수 있으므로 변형된 안티센스 (modified antisense) 시드에 대한 상동성을 분석하였고, siSurvivin-2'C 시드에 대하여 상동성을 분석한 결과, 이와 상동성을 보이는 3'-UTR을 갖는 전사체는 전체 전사체의 0.5% (n=95)로 분석되었다.
상기와 같이 분석을 수행한 결과, 도 23에 나타난 바와 같이, 본 발명에 따른 siRNA 분자인 siSurvivin-2'C의 경우, 비변형된 siSurvivin (n=130) 및 siSurivivin-2'OMe (n=101)에 비하여 현저히 낮은 안티센스 오프-타겟의 수를 나타내었다 (도 23G). 아울러, 도 23H에 나타난 바와 같이, 수(number) 뿐만 아니라 안티센스 오프-타겟 억제의 정도에 있어서도 50%까지 감소됨을 확인할 수 있었다. 이에 반하여, siSurvivin-2'OMe의 경우 이러한 감소를 확인할 수 없었다.
이상으로 본 발명의 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.
<110> SUNGKYUNKWAN UNIVERSITY Foundation for Corporate Collaboration <120> Novel siRNA Structure for Minimizing Off-target Effects by Antisense Strand and the Use Thereof <130> P10-B269 <150> KR10-2009-0105808 <151> 2009-11-04 <160> 46 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin <220> <223> Molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <400> 1 ugaaaauguu gaucuccuut t 21 <210> 2 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sense strand of siSurvivin <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <400> 2 aaggagauca acauuuucat t 21 <210> 3 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-2 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 3 uagaaaaugu ugaucuccuu tt 22 <210> 4 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-3 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 4 uguaaaaugu ugaucuccuu tt 22 <210> 5 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-4 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 5 ugauaaaugu ugaucuccuu tt 22 <210> 6 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-5 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 6 ugaauaaugu ugaucuccuu tt 22 <210> 7 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-16 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 7 ugaaaauguu gaucugccuu tt 22 <210> 8 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-17 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 8 ugaaaauguu gaucucgcuu tt 22 <210> 9 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-18 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 9 ugaaaauguu 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Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-2 'C' <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 22 ucgaaaaugu ugaucuccuu tt 22 <210> 23 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin-2'OMe <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (2) <223> 2'OMe modified nucleotide <400> 23 ugaaaauguu gaucuccuut t 21 <210> 24 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siMPHOSPH1 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <400> 24 cuagugucau ucgcauguct t 21 <210> 25 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sense strand of siMPHOSPH1 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <400> 25 gacaugcgaa ucagacuagt t 21 <210> 26 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siMPHOSPH1-2 'A' <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 26 cauaguguca uucgcauguc tt 22 <210> 27 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siMPHOSPH1-2 'G' <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 27 cguaguguca uucgcauguc tt 22 <210> 28 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siMPHOSPH1-2'OMe <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (2) <223> 2'OMe modified nucleotide <400> 28 cuagugucau ucgcauguct t 21 <210> 29 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> siMPHOSPH1 antisense target oligo <400> 29 ctagtgacat gcgaatgaca ctaga 25 <210> 30 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mismatch 5 of siMPHOSPH1 antisense target oligo <400> 30 ctagtgacat gcgaatgact ctaga 25 <210> 31 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mismatch 7 of siMPHOSPH1 antisense target oligo <400> 31 ctagtgacat gcgaatgtca ctaga 25 <210> 32 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siMAPK14 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <400> 32 aaccgcaguu cucuguaggt t 21 <210> 33 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sense strand of siMAPK14 <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <400> 33 ccuacagaga acugcgguut t 21 <210> 34 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siMAPK14-2 'G' <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 34 agaccgcagu ucucuguagg tt 22 <210> 35 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siMAPK14-2 'C' <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(20) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (21)..(22) <223> deoxyribonucleotides <400> 35 acaccgcagu ucucuguagg tt 22 <210> 36 <211> 21 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siMAPK14-2' OMe <220> <223> molecule is combined RNA/DNA <220> <221> misc_feature <222> (1)..(19) <223> ribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (20)..(21) <223> deoxyribonucleotides <220> <221> misc_feature <222> (2) <223> 2'OMe modified nucleotide <400> 36 aaccgcaguu cucuguaggt t 21 <210> 37 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> siMAPK14 antisense target oligo <400> 37 ctagtcctac agagaactgc ggtta 25 <210> 38 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mismatch 5 of siMAPK14 antisense target oligo <400> 38 ctagtcctac agagaactgt ggtta 25 <210> 39 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Mismatch 7 of siMAPK14 antisense target oligo <400> 39 ctagtcctac agagaacagc ggtta 25 <210> 40 <211> 19 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin 16+3A <400> 40 ugaaaauguu gaucuccuu 19 <210> 41 <211> 16 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sense strand of siSurvivin 16+3A <400> 41 gagaucaaca uuuuca 16 <210> 42 <211> 20 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Antisense strand of siSurvivin 16+3A-2'C' <400> 42 ucgaaaaugu ugaucuccuu 20 <210> 43 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> siSurvivin sense target oligo <400> 43 ctagttgaaa atgttgatct cctta 25 <210> 44 <211> 19 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sense strand of siSurvivin-Fork <400> 44 aaggagauca acauuuuuu 19 <210> 45 <211> 19 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sense strand of siMAPK14-Fork <400> 45 ccuacagaga acugcggaa 19 <210> 46 <211> 19 <212> RNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Sense strand of siMPHOSPH1-Fork <400> 46 gacaugcgaa ucagacuuu 19

Claims (18)

  1. 안티센스 가닥 (antisense strand) 및 상기 안티센스 가닥에 상보적인 센스 가닥(sense strand)으로 구성되는 이중가닥의 siRNA (small interfering RNA) 분자로서, 상기 siRNA의 안티센스 가닥의 5' 말단 영역 또는 3' 말단 영역에 단일 뉴클레오티드 도입에 의한 단일 뉴클레오티드 벌지(bulge)를 적어도 하나 이상 가지는 것을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  2. 삭제
  3. 제1항에 있어서, 상기 siRNA의 안티센스 가닥의 5' 말단 영역은 5' 말단으로부터 2~4번째 위치의 뉴클레오티드인 것을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  4. 제1항에 있어서, 상기 siRNA의 안티센스 가닥의 3' 말단 영역은 3' 말단으로부터 2~4번째 위치의 뉴클레오티드인 것을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  5. 제1항에 있어서, 상기 단일 뉴클레오티드 벌지는 상기 siRNA의 안티센스 가닥의 5' 말단의 2번째 뉴클레오티드에 존재하는 것을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  6. 제1항에서, 상기 도입되는 단일 뉴클레오티드는 인접하는 뉴클레오티드와 다른 염기를 가지는 뉴클레오티드 또는 염기가 없는(abasic) 뉴클레오티드인 것을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  7. 제1항에 있어서, 상기 siRNA는 19~21 뉴클레오티드(nucleotide, nt)의 안티센스 가닥 및 상기 안티센스 가닥에 상보적인 서열을 갖는 13~17nt의 센스 가닥으로 구성되고, 상기 안티센스 가닥의 5'방향의 말단이 블런트 말단(blunt end)이고 안티센스 가닥의 3'말단에 돌출부(overhang)를 갖는 것을 특징으로 하는 siRNA 분자인 것을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  8. 제7항에 있어서, 상기 센스 가닥의 길이는 15~16nt이며, 상기 돌출부의 길이는 3~6nt인 것을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  9. 제1항에 있어서, 화학적 변형을 포함하는 것을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  10. 제9항에 있어서, 상기 화학적 변형은 상기 siRNA 분자에 포함되는 적어도 1종의 뉴클레오티드의 리보스의 2' 위치의 히드록실기가 수소원자, 불소원자, -O-알킬기, -O-아실기 및 아미노기 중 어느 하나로 치환된 것임을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  11. 제9항에 있어서, 상기 화학적 변형은 상기 siRNA에 포함되는 적어도 1종의 뉴클레오티드의 포스페이트 백본이 phosphorothioate form, phosphorodithioate form, alkylphosphonate form, phosphoroamidate form 및 boranophosphate form 중 어느 하나로 치환된 것임을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  12. 제9항에 있어서, 상기 화학적 변형은 상기 siRNA에 포함되는 적어도 1종의 뉴클레오티드가 LNA (locked nucleic acid), UNA(unlocked nucleic acid), Morpholino 및 PNA (peptide nucleic acid) 중 어느 하나로 치환된 것임을 특징으로 하는 siRNA 분자.
  13. 제1항 및 제3항 내지 제12항 중 어느 한 항의 siRNA 분자를 함유하는 유전자 발현 억제용 조성물.
  14. 제1항 및 제3항 내지 제12항 중 어느 한 항의 siRNA 분자를 함유하는 유전자 발현 억제용 키트.
  15. 제1항 및 제3항 내지 제12항 중 어느 한 항의 siRNA 분자를 인체를 제외한 세포 내 도입시키는 단계를 포함하는 세포 내 목적 유전자의 발현 억제 방법.
  16. 제1항 및 제3항 내지 제12항 중 어느 한 항의 siRNA 분자를 인체를 제외한 세포 내에서 발현시키는 단계를 포함하는 세포 내 목적 유전자의 발현 억제 방법.
  17. 제1항 및 제3항 내지 제12항 중 어느 한 항의 siRNA 분자를 인체를 제외한 세포 내 도입시키는 단계를 포함하는 siRNA 분자의 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과의 억제방법.
  18. 제1항 및 제3항 내지 제12항 중 어느 한 항의 siRNA 분자를 인체를 제외한 세포 내 발현시키는 단계를 포함하는 siRNA 분자의 안티센스 가닥에 의한 오프-타겟 효과의 억제방법.
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