JP2017502087A - 化粧品組成物、皮膚科学組成物、または栄養化粧品組成物に使用するショ糖エステルを有効成分として含有する植物抽出物 - Google Patents
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Abstract
Description
- 3-O-(3-メチル-1-オキソブチル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,4-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(3-メチル-1-オキソブチル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3-(2-メチルプロパノエートノアート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,6-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3-(3-メチルブタノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,4-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-ノナノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,4-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-オクタノエート-α-D-グルコピラノシド。
- 3-O-(3-メチル-1-オキソブチル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,4-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド。
- 炭素数1〜10のアシル基を有し、中程度に有極性から無極性の1つ以上のショ糖エステルの合成。当業者は、各種周知の方法により、個々にショ糖エステルを合成し、本発明のショ糖エステル由来の有効成分を構成することができる。
- ジクロロエチレン、クロロホルムなどのハロゲン化炭化水素類
- メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、ブタノールなどのアルコール類
- エチレングリコール、プロピレングリコール、1,2-および1,3-プロパンジオール、ブタンジオール、グリセロールなどの グリコール類
- アセトン、メチルイソブチルケトン、メチルエチルケトンなどのケトン類
- ジエチルエーテル、メチルtert-ブチルエーテル、エチルtert-ブチルエーテル、テトラヒドロフラン(THF)、メチルTHFなどの脂肪族または環状エーテル類
- 2‐メトキシ‐1‐メチルエチルアセタート、2‐(2‐ブトキシエトキシ)エタノールおよびそのアセタートなどのグリコールエーテル類
- 酢酸エチル、乳酸エチル、プロピオン酸エチル、オレイン酸エチル、ステアリン酸メチル、オレイン酸オレインなどのエステル類で、酸は1つ以上の長鎖を有し、アルコールは1つ以上の長鎖を有する
- 1-(4-スルホブチルエーテル)-3-メチルイミダゾリウム硫酸水素塩、1-エチル-3-メチルイミダゾリウムビス(トリフルオロメタンスルホニル)イミドなどのイオン液体
- 共溶媒が有無での二酸化炭素などの超臨界流体
- 植物油などのagro-溶媒、リモネンまたはピネンなどのテルペン
- また、これら溶媒の組合せ。
- 粉砕、
- 適切な有機溶媒を用いた抽出と下記の、
- 必要であれば脱溶媒和と下記の、
- 必要であれば1つ以上の適切な方法での精製。
- 凍結粉砕、
- アルコール、植物油、またはエステルなどの共溶媒の有無での酢酸エチル、クロヘキサン、エタノール、超臨界二酸化炭素を用いた抽出、
- 結晶化または吸着による精製、
- 必要であれば濾過、
- 必要であれば脱溶媒和。
事前に果実から分離させて乾燥させたPhysalis peruvianaの萼は、1 mmグリッド付きのパウダーを造る造粒ミルで破砕する。粒子サイズは、ほぼ500μmである。
得られたパウダー(50 g)はセルロースシンブル(cellulose thimble)に置き、次にソックスレー抽出器に置く。
抽出に使用した溶媒はエタノール96%(50 ml)であり、抽出サイクルは約20回である。
溶媒媒質中の抽出物はRotavapor(ロータリーエバポレーター)で蒸発させ、媒質を除去する。
これにより、最終的に57%のショ糖エステルを含むPhysalis peruvianaの萼から11.0 gの抽出物が取れる。
事前に果実から分離させて乾燥させたPhysalis peruvianaの萼は、1 mmグリッド付きのパウダーを造る造粒ミルで破砕する。粒子サイズは、ほぼ500μmとする。
得られたパウダー(50 g)はセルロースシンブル(cellulose thimble)に置き、次にソックスレー抽出器に置く。
抽出に使用した溶媒は酢酸エチルであり、抽出サイクルは約20回である。溶媒媒質中で得られた抽出物は水を用いてオンカラム液−液抽出法(on-column liquid-liquid extraction)で温度を20℃〜65℃にして向流抽出で精製し、水溶性分子を除去する。次に酢酸エチルと抽出物を含む有機相はRotavaporで蒸発させて溶媒を除去する。
洗浄された抽出物はポリフェノール、ウィタノリド(withanolides)、遊離糖類が無い状態とする。
これにより、最終的に89.0%のショ糖エステルを含むPhysalis peruvianaの萼から6.2 gの抽出物が取れる。
事前に果実から分離させて乾燥させたPhysalis peruvianaの萼は1 mmグリッド付きのパウダーを造る造粒ミルで破砕する。粒子サイズはほぼ500μmとする。得られたパウダー(500 g)は超臨界流体抽出器に置いた。
抽出に使用した溶媒はエタノールなどの脂肪族アルコールの共溶媒を添加した二酸化炭素である。
抽出パラメータは、圧力75 bars〜200 bars、温度35℃〜50℃、CO2流量2 kg/h〜20 kg/h、CO2に対して1%〜5%エタノールである。
溶媒媒質中で得られた抽出物は活性炭または漂白粘土で脱色、冷間結晶化、さらに濾過して蒸発させる。
これにより、最終的にPhysalis peruvianaの萼から87.6%のショ糖エステルを含む85.5gの抽出物が取れる。
必要であれば、99.9%のクロマトグラフィー純度でPhysalis peruvianaの萼の抽出物を得るために、こうして得られた抽出物液膜かき取型、または遠心分子蒸留によって精製することができる。
実施例1で得られたPhysalis(1 g)の萼から得られる抽出物を、6 mlのCH3CN/H2O溶媒混合液に溶解する。10 mLの同じCH3CN/H2O混合液1:1で洗浄された固相抽出(SPE)(C18、10g)により、シンブル(thimble)で濾過する。
得られた溶出液は充填剤溶媒に関連し、画分1(300 mg)を得る。
続けて荷重のかかったシンブルはCH3CN/H2O溶媒グラジエント7:3(20 mL)および1:0(20 mL)に基づき順次溶出して画分2(500 mg)と画分3(100 mg)を得る。
画分1、画分2、画分3はHPLC-DAD-DEDLで分析し、初期の抽出物のクロマトグラムと比較する。
画分1はポリフェノール化合物、ウィタノリド、いくつかのフィサリン(physaline)、糖などの極性化合物を含む。
画分2はショ糖エステルを含む。
画分3は脂質画分である。
画分2(500 mg)は、H2O/CH3CN溶媒グラジエント(35分で3:7から0:1へ)で分取HPLC(C18、50x150 mm、5μm)による画分を行い、画分を得る。
- 画分IIIb(4分〜14分の溶出)
- 画分I(14分〜18分の溶出、230mg)
- 画分II(18分〜25分の溶出、200mg)
- 画分IIIa(25分〜35分の間)
画分IIIaおよびIIIbの画分を合わせ、画分IIIの画分(50 mg)を得る。
得られた画分の成分は下記の通りである。
画分I:
化合物1、3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,4-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
画分II:
化合物2、- 3-O-(3-メチル-1-オキソブチル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,4-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
画分III: 前記以外の化合物で主に下記を含むショ糖エステル
- 3-O-(3-メチル-1-オキソブチル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3-(2-メチルプロパノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,6-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3-(3-メチルブタノエート)-2-デカノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,4-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-ノナノエート-α-D-グルコピラノシド
- 3-O-(2-メチル-1-オキソプロピル)-β-D-フルクトフラノシル(1→2)-3,4-ビス(2-メチルプロパノエート)-2-オクタノエート-α-D-グルコピラノシド。
画分I、II、IIIの効果は正常ヒト表皮角化細胞およびヒト真皮線維芽細胞のモデルに対するトランスクリプトーム分析で研究されている。この包括的な転写物の発現分析をAffymetrix GeneAtla(商標)プラットフォームおよび36、000の転写物と変異体を含むU219「完全ヒトのトランスクリプトーム」チップを使用して、4時間から24時間のインキュベーション後に実施した。
細胞は24時間、培地に導入して栽培し、さらに24時間、試験培地でインキュベーションした。続けて培地は試験化合物の含有または未含有(対照)の試験培地で取り替えて、細胞を4時間または24時間インキュベーションした。全ての条件はn=3で完了した。
インキュベーション後に培養上清を除去し、細胞層をPBS溶液で洗浄した。プレートは直ちに-80℃で凍結乾燥した。
U219チップの使用についての原則−ディファレンシャル発現分析
- ターゲットの調製
各サンプルの全RNAはサプライヤーの勧めるプロトコールに基づくTriPure Isolation Reagentを使用して抽出した。RNAの質と量はキャピラリー電気泳動装置(Bioanalyzer 2100, Agilent)で評価した。
RNA増幅法およびビオチン化RNA類似体(RNAa)の合成は「GeneChip 3’IVT Express」キット(Affymetrix)を使用して実行した。一本鎖の相補的DNA(cDNA)はoligo(dT)存在下における全RNAの逆転写で合成した。DNAポリメラーゼの作用により二本鎖cDNA(ds DNA)を合成した。続けてビオチニル化RNAをビオチニル化リボヌクレオチド類似体存在下でcDNAから合成した。塩、酵素、遊離ヌクレオチドを除去する磁気ビーズをベースにした精製ステージ後、ビオチニル化RNAは100‐120ヌクレオチドをピークとする35から200ヌクレオチドのフラグメントに加水分解された(フラグメント化標的)。
フラグメンテーション前後に合成ビオチニル化RNAの品質管理はキャピラリー電気泳動装置(Bioanalyzer 2100, Agilent)で実施した。
- マーキングおよびハイブリダイゼーション
このステップは「3’IVTアレイ用のGeneAtlas(商標)ハイブリダイゼーション、洗浄、染色キット」(Affymetrix)を用いて実施した。
Affymetrix U219チップ(36、000の転写物と変異体)上でのフラグメント化RNAaのハイブリダイゼーションは45℃で20時間、「GeneAtlas fluidics station」ハイブリダイゼーションステーション(Affymetrix)上で実施した。ハイブリダイゼーション(BioB、BioC、BioD)のコントロールプローブおよびpolyA RNAコントロール(Lys、Phe、Dap)をハイブリダイゼーション中に追加した。フィコエリスリンと直接的に結合するハイブリダイゼーションのコントロールプローブはマーキングステップがどこであれ、ハイブリダイゼーションの有効性を確かなものにする。polyA RNAコントロールを使用してマーキングの質を検証する。
次に、マーキングは3つのステップで実施した(中間洗浄ステップも):
- ストレプトアビジン複合体の固定−チップ上のハイブリダイズされたRNAaにおけるフィコエリトリン
- ビオチンと結合した抗ストレプトアビジン抗体によるこの複合体の認識
- 信号の増幅を可能にするフィコエリトリンと結合したストレプトアビジンの添加。
生のデータをMicrosoft Excelで転送および処理した。
グループ間比較は対応のない相対スチューデントt検定(unpaired bilateral Student's t-test)を使用して実施した。統計分析はn≧5として解釈するが、n<5の場合は計算データを参考目的でのみ提供している。
用いられる式:
「倍変化」の分析をエクセルで実施して、それに続けてIngenuity IPA (相互パスウェイ分析、Interactive Pathway Analysis)ソフトウエアでの機能分析を行った。この分析では生物機能(プロセス)において有意に調整された遺伝子をまとめて扱うことができる。
線維芽細胞(NHDF)の分析
画分(I、II、III)で処理された線維芽細胞のトランスクリプトームプロフィール分析によれば、特に画分IIにより、遺伝子の発現調節を示した。
画分IIの場合、フィブリリン1(FBN1)のコード遺伝子の発現調節は非常に興味深い。事実、この遺伝子の発現は4時間(3.27倍)、24時間(8.24倍)のように経時的に有意に高くなる。
フィブリリン1(細胞外マトリックスの主成分)は線維芽細胞によって分泌され、ミクロフィブリルの重要な成分を構成する。これは主としてエラスチン繊維の集合に関与し、皮膚の弾性において重要な役割をする。
角化細胞(NHEK)の分析
3つの画分(I、II、III)で処理された角化細胞のトランスクリプトームプロフィール分析によれば特に画分IIIにより遺伝子の発現調節を示した。
3つの画分(I、II、III)による角化細胞の処理は角化細胞の分化タンパク質のコード遺伝子、KRT1、IVL、DSG1、DSC1、SPRR2A、SPRR2E、SPRR1A、SPRR2D、CALML5、SBSN、KRTDAPについて発現抑制を誘発した。
この効果により、画分I、II、IIIが角化細胞に対する抗分化効果の存在推定を可能にする。
下記の実施例では、本発明の有効成分は組成物の質量での10-6〜3%範囲の有効量において各種組成物に存在する。
ショ糖エステルを含むPhysalis peruvianaの萼から得られる抽出物は経口用組成物に組み込まれ、毎日50 mgから200 mgの抽出物の投与を可能とする。
1) ソフトカプセルの形態の抗老化用組成物
- 実施例に従ったPhysalis peruvianaの萼から得られる抽出物1 または 2または3
30 mg
- アルガン油 60 mg
- 不鹸化物中のリッチな麦芽油 300 mg
- ビタミンB群(B1, B2, B3, B5, B6, B9, B12) RDAの100%の適量 (q.s.f)
- トコトリエノール RDAの50%の適量 (q.s.f)
- ビタミンE
- ミツロウ
- 大豆レシチン
- 食用ゼラチン
- グリセリン ソフトカプセル1個となるように適量 (q.s.f)
この組成物は、1日当たり4〜6カプセル投与される。
2) 錠剤の形態の肌の張り用組成物
- 実施例に従ったPhysalis peruvianaの萼から得られる抽出物1または2または3
25 mg
- 硫化アミノ酸が豊富な穀物抽出物(麦、ソバ、米、キノア) 200 mg
- キレートの形態の亜鉛 RDAの100%の適量 (q.s.f)
- ビタミンC RDAの50%の適量 (q.s.f)
- 魚軟骨由来のグリコサミノグリカン 200 mg
- グルシデックス (Glucidex) IT 19(圧縮剤) 1錠が800 mgとなるように適量
この組成物は毎日5〜8タブレット投与される。
3) チョコレート風味のシリアルバーでの実施例
- 実施例に従ったPhysalis peruvianaの萼から得られる抽出物1 または 2または3
200 mg
- リコペン 6 mg
- アスタキサンチン 4 mg
- フコキサンチン 4 mg
- マイクロカプセル製剤中のルテイン 4 mg
- マイクロカプセル化トコトリエノール ビタミンEのRDAの100%の適量 (q.s.f)
- ダークチョコレート、オリゴフルクトース、糖、フルクトースシロップ、
脂肪分低減ココアパウダー、クランチシリアル、
脱脂粉乳、アーモンド、グリセロール、ソルベトール、
植物油、グリコースシロップ、香味料、
加糖練乳、大豆レシチン、脂肪酸のモノおよび
ジグリセリド、カラメルシロップ、
マルトデキストリン、塩、ソルビン酸カリウム、
αトコフェロール バー1個が50 gとなるように適量 (q.s.f)
この組成物は1日1回投与される。
4) バニラ風味の乳飲料における実施例
- 実施例に従ったPhysalis peruvianaの萼から得られる抽出物1 または 2または3
200 mg
- ポリフェノールが豊富な緑茶の抽出物 100 mg
- ビタミンB群(B1, B2, B3, B5, B6, B9, B12) RDAの100%の適量 (q.s.f)
- 亜鉛、マグネシウム、セレニウム RDAの100%の適量 (q.s.f)
脱脂粉乳、香味料、フルクトース、卵白、
使用済みバニラシード、糖、キャラメル、βカロテン、
キサンタンゴム、アスパルテーム、アセスルファムカリウム、
大豆レシチン、マルトデキストリン 小袋 1袋が30 gとなるように適量 (q.s.f)
この組成物は1日1回投与される。
フェーズAを量り、撹拌せず30分間膨張させる。フェーズAを湯煎で75℃に加熱する。フェーズBを量り、混合する。フェーズCを量って湯煎で75℃に加熱する。フェーズBをフェーズAに添加する。よく混合する。連続撹拌中にフェーズA+BにフェーズCを注入する。よく均質化させる。即座に、フェーズDを添加する。フェーズEを添加して、よく均質化する。フェーズFを添加して、よく均質化する。
連続撹拌中にフェーズAを分散させる。水中にUltrez 10を散らし、30分間膨張させる。完全溶解するまでフェーズCを加熱する。フェーズAとフェーズBとを混合する。フェーズCをフェーズ(B+A)に添加する。連続撹拌中にフェーズDをフェーズ(A+B+C)に添加する。フェーズEを添加する。フェーズFにより中和する。フェーズGを添加して混合する。
水中にカルボマーを散らし、15分間膨張させる。フェーズBを混合する。フェーズBをフェーズAに注入して均質化する。続けてフェーズCを量り、連続撹拌中にフェーズA+Bに添加する。1時間膨張させる。即座に、連続撹拌中に以前のフェーズにフェーズDを添加する。フェーズEにより中和する。撹拌する。
続けてフェーズFを添加する。連続撹拌中に少なくとも1時間、これを混合してからフェーズGを添加する。よく混合する。
フェーズAを量り、30分間膨張させる。フェーズAを湯煎で75℃に加熱する。完全可溶化までフェーズBを加熱する。フェーズBをフェーズAに添加する。フェーズCを湯煎で75℃に加熱する。連続撹拌中にフェーズA+BにフェーズCを添加する。フェーズDを添加してよく均質化させる。55℃でフェーズEにより中和する。まずフェーズFを、次にフェーズGを添加してよく均質化させる。
フェーズAを湯煎で75℃に加熱する。完全可溶化までフェーズBを加熱する。フェーズBをフェーズAに添加する。フェーズCを湯煎で75℃に加熱する。連続撹拌中にフェーズCをフェーズA+Bに添加する。フェーズDを添加してよく均質化させる。55℃でフェーズEにより中和する。フェーズFを添加してよく均質化させる。
フェーズAを量る。フェーズBを量り、混合する。連続撹拌中に30分間、フェーズBをフェーズAに添加する。フェーズCを量り、混合液が均質化するまで混合する。連続撹拌中にフェーズA+BにフェーズCを添加する。以前の混合液にフェーズDを添加する。連続撹拌中に以前の混合液にフェーズEを添加する。よく均質化させる。フェーズEを量り、混合して以前の混合液に添加する。連続的に混合する。
フェーズA : 水中にUltrez 10を注入し、30分間膨張させる。フェーズBを量り、60℃で融解させる。フェーズAを湯煎で75℃に加熱する。フェーズCを量り、湯煎で75℃へ加熱する。連続撹拌中(Staro s=500 rpm)に、フェーズCをフェーズAに添加する。無作為にフェーズA+BにフェーズBとフェーズDを添加して、これにフェーズEを添加する。よく均質化させる。45℃に冷却してフェーズFを添加する。35℃でフェーズGを添加してよく均質化させる。フェーズHを添加してよく均質化させる。
フェーズA : 水中にUltrez 10を注入し、30分間膨張させる。プロペラ式混合機(300rpm)で撹拌中、フェーズBを注入して1時間膨張させる。プロペラ式混合機(300rpm)で撹拌中にフェーズAをフェーズBに添加して、よく均質化させる。フェーズCを量って撹拌し、フェーズDを量って混合する。フェーズA+BにフェーズCを添加する。フェーズA+B+CにフェーズCを添加する。よく均質化させる。続けてフェーズE、フェーズF、フェーズG、最後にフェーズHを添加する。pH = 6.2.
フェーズA : 水中にUltrez 10を注入し、30分間膨張させる。プロペラ式混合機(300rpm)で撹拌中、フェーズBを注入して1時間膨張させる。プロペラ式混合機(300rpm)で撹拌中にフェーズAをフェーズBに添加して、よく均質化させる。フェーズCを量って撹拌し、フェーズDを量って混合する。ブレード型混合機(300 rpm)で撹拌中、フェーズA+BにフェーズCを添加する。フェーズA+B+CにフェーズCを添加する。よく均質化させる。続けてフェーズE、フェーズF、フェーズG、最後にフェーズHを添加する。よく均質化させる。
フェーズA : 水中にUltrez 10を分散し、20分間膨張させる。フェーズBを混合して完全な希釈になるまで60℃に加熱する。連続撹拌中にフェーズBをフェーズAに添加する。フェーズA+Bを加熱する。フェーズCを量り、75℃に加熱する。連続撹拌中にフェーズCをフェーズA+Bに添加する。注意深く均質化してフェーズDを添加する。フェーズEを添加する。50℃でフェーズFにより中和する。フェーズGおよびHを35℃で添加してNaOHでpH6.3に調節する。
フェーズAを85℃に加熱する。フェーズBを混合して85℃に加熱する。連続撹拌中(Staro s=3000 rpm、続けて1200 rpm)に、ゆっくりとフェーズAをフェーズBに添加する。80℃で予熱したフェーズCを添加して均質化する。35℃でフェーズDを添加する。注入する。
フェーズAを量り、ブレード型攪拌機(s=300rpm)でフェーズAを混合する。フェーズBを添加し、混合してフェーズCを添加する。フェーズDでpHを5.0〜5.5に調整する。
実施例21〜23に関する図ではウチュバ抽出物はEUcと短く表記する。実施例21〜23の全てにおいてウチュバ抽出物はクロマトグラフィー純度99.9%の実施例3に示す抽出プロセスから得られたものである。
真皮は表皮をしっかり支え、栄養分を含む。これは主として線維芽細胞とコラーゲン、エラスチン、また基本物質と呼ばれる物質を主として含む細胞外マトリックスを含む。これらの成分は線維芽細胞により合成される。真皮表皮接合部は表皮と真皮との間の結束性を確かなものにする。
コラーゲンは皮膚の細胞外マトリックスのタンパク質の大部分を占める。今日までに20種類のコラーゲンが同定され、IからXXとして記される。真皮全体にほぼ全部が存在するコラーゲン(つまりは、真皮の70%〜80%の乾燥重量を構成するコラーゲン)は真皮全体の細胞外マトリックスを形成するI型とIII型のコラーゲンである。真皮は加齢と伴に薄くなり、しわが肌の表面に現れる。その結果、皮膚の整合性および外部からの力学的な攻撃に対する抵抗においてコラーゲンがはたす重量な役割を考慮するとコラーゲンの中でも、特にI型とIII型のコラーゲンの合成の刺激は皮膚老化の信号を相殺する有効な方法と見られる(review by Tzaphlidou M., Micron 35 (2004) 173-177)。
コラーゲンIは皮膚に力学的抵抗を与える最重要のコラーゲンである。
脊椎動物の90%のコラーゲンはこのタンパク質である。これは(鉄筋コンクリート補強ほどの)骨格を構成して、より一般的には共通の結合組織を構成する。これは骨、皮膚、腱、角膜、内臓に見られる。
下記の研究により、真皮の細胞外マトリックスの本質的要素であるコラーゲンIの発現に対するウチュバ抽出物の効果研究が可能になった。
- 方法
複製老化による若いまたは老化したNHDF(正常ヒト真皮線維芽細胞)を96ウエルプレートに導入して5%CO2、37℃、24時間、インキュベーションした。
この細胞を試験生成物の存在下で24時間、処理した。
続けて細胞をフォルマリンで固定して、タンパク質の発現は免疫蛍光法で検出した。
蛍光マーキングは自動化顕鏡法(Arrayscan CellomicsTM)を用いて画像化し定量した。蛍光はコンパートメント分析生体応用により定量した。
化合物は24時間、細胞との接触を維持した。比色試験の最後の3時間にRocheのすぐに使えるWST1を培地に導入した。
この試薬はバイオレット指示薬(violet indicator)であるテトラゾリウム塩を含んでいる。またこの試薬は代謝的に活性な細胞の小細胞により、イエロー指示薬(yellow indicator)であるホルマザンに開裂する。このことから黄色の着色の度合いは生きた細胞の数に比例する。吸光度の測定は450 nmで実施する。
試験により、90%未満のコントロールエレメントは生成物の細胞毒性の可能性を示唆する(グラフ上の緑線で示す)と考えられる。またこのことは細胞の代謝活性が低下したことも示している。75%未満は有意な細胞毒性を示す(グラフ上の赤線で示す)。
加えて顕微鏡で細胞を観察して、その形態の観察と比較とを実施した。
結果を図1Aに示す。
ウチュバ抽出物は100から20ppm範囲の試験された強い濃度では細胞毒性を示すが、2ppmからは毒性が少ない。
ウチュバ抽出物は下記の濃度2 - 1 - 0.5 ppmで試験をした。
結果は図1Bに示す。
ウチュバ抽出物により若い細胞でコラーゲンIの発現が再確立される。若い細胞ではコラーゲンIの発現は均質ではない。一部の細胞は高いマーキングを示す一方、その他は低いマーキングを示す。複製老化した細胞ではウチュバ抽出物により再活性化した発現は、処理した細胞においてより均質である。
最も低い濃度が活性化であるという事実は、最も高い濃度がタンパク質合成に影響を与える細胞毒性が少ないという事実により説明できる。
ウチュバ抽出物はタンパク質発現を若い細胞で観察される発現に再確立することで、皮膚老化のターゲットであるコラーゲンIに対して作用する成分である。
使用した材料および方法
- 試験システム
説明: 3から6の継代培養でのヒト線維芽細胞モデル(NHDF)
培地: DMEMグルコース4.5 g/L + 1% NEAA + 10% SVF
培養条件: 37°C、5% CO2
- ニュートラルレッド(neutral red)の試験による細胞毒性の評価
NHDF細胞はD0に96ウエルプレートに、ウエル当たり4x103の細胞の率で導入する。 これをD1に48時間、完全培地で培養する。
試験対象の活物質の濃度は抽出物の%で表す。試験対象の生成物の貯蔵液は20%濃度(w/v)でジメチルスルホキシド(DMSO)中で調製した。第1の希釈は1/1000とした。最終DMSO濃度の0.1%を維持しながら下記の希釈を1/2とした。
NR試験をD3に実施する:培地は取り除き、細胞は37℃に予熱した250μLのPBSで洗浄した。200μlのニュートラルレッドを細胞に添加する。37℃で3時間のインキュベーション後、ニュートラルレッドを含む培地を取り除き、細胞を37℃に予熱した2x200μlのPBSで洗浄する。100μlのrevelation溶液(50%エタノール-1%酢酸)を添加し、細胞は45分間、連続撹拌して、日に当たらない周囲温度でインキュベーションした。
均質化後、DO540nmを測定する。
注記: ニュートラルレッド溶液の調製: ニュートラルレッド貯蔵液は超純水中の0.4%で調製する(この溶液は15日間、4℃で保存)。即座に、完全培地で1/80に希釈して、使用前に3000毎分回転数(rpm)で10分間、遠心する。
NHDF細胞はD0に96ウエルプレートにウエル当たり4x103の細胞の率で導入する。これをD1に48時間、完全培地で培養する。
試験対象の活物質の濃度は抽出物の%で表す。抽出物の貯蔵液は20%濃度(w/v)でのDMSO中で調製した。第1の希釈は1/1000とした。最終DMSO濃度の0.1%を維持しながら下記の希釈を1/2とした。
MTT試験をD3に実施する: 培地は完全培地中の0.5g/Lで100μLのMTTにより取り替える。37℃、5%、CO2で3時間のインキュベーション後、MTT容積は100μLのDMSOで取り替える。均質化後、DO540nmを測定する(ニュートラルレッドを用いた前記試験について記載した量状態)。
試験対象の生成物の説明: ウチュバ抽出物
上記の最初の2つの試験後、試験対象の生成物の3つの濃度、8.10-5%(0.8 ppm)、 16.10-5% (1.6 ppm)、32.10-5% (3.2 ppm)が実施すべき残りの試験について選択される。
細胞はD0に6ウエルプレートに、ウエル当たり25x103の細胞の率で導入する。これをD1に48時間、完全培地で培養する。
試験対象の活物質の濃度は抽出物の%で表す。抽出物の貯蔵液は20%濃度(w/v)でのDMSO中で調製した。第1の希釈は1/1000とした。(抽出物の最も高い濃度でのDMSO濃度に対応する)最終DMSO濃度の0.016%を維持しながら下記の希釈をした。
48時間後、培養上清を回収して‐80℃で保存する。
コラーゲンI用量をELISAキットの供給元の指示書に従って投与する(Tecomedical)。
(32. 10-5%での)高濃度では線維芽細胞によるコラーゲンIの産生は対照の条件に近い値へ低下する。この低下については高い濃度における細胞毒性の開始により説明できる。
結果を図2Aに示す。
細胞はD0に6ウエルプレートに、ウエル当たり25x103の細胞の率で導入する。これをD1に48時間、完全培地で培養する。
試験対象の活物質の濃度は抽出物の%で表す。抽出物の貯蔵液は20%濃度(w/v)でのDMSO中で調製した。第1の希釈は1/1000とした。(抽出物の最も高い濃度でのDMSO濃度に対応する)0.016%で最終のDMSO濃度を維持しながら下記の希釈をした。
コラーゲンIII用量はELISAキットの供給元の指示書に従って投与する(SunRed)。
下記の表は104細胞に関するコラーゲンIII(μg)の量を示す:
抽出物の最大濃度(32.10-5%)において、線維芽細胞によるコラーゲンIIIの産生はコラーゲンIを産生する場合の対象条件レベルに近いレベルに縮小する。この観察はこの濃度での細胞毒性の存在を確認するものである。
結果を図2Bに示す。
コラーゲンは線維芽細胞で合成されたMECの主成分(約70%)である。線維性(I、II、III、V、XI)および非線維性(IX、XII、XIV、XVI)コラーゲンの2つがある。コラーゲン繊維は柔らかく、組織での張力に抗している。形状は波状のビームであり、厚さや長さが変化する。IV型のコラーゲンは特別である。またこれは基底膜(緻密層)の「主要なネットワーク」を形成する。これは細胞接着、増殖、移動、血管新生(黒色腫)に関連する。これはインテグリン受容体との相互作用部位である。これは基板とMEDとの接点にある(S Pasco et al., Cancer Detection and Prevention, 29,260, 2005)。ラミニンIと伴にコラーゲンIVは組織の構造的および機能的維持のための基底膜の構造を構成するネットワークを形成する。
ウチュバ抽出物の4.10-5%と8.10-5%との2つの濃度について試験を実施した。
免疫細胞学によるコラーゲンIV発現の検出
細胞はD0にMillicell 8ウエルスライドに、400μlの完全培地4.103の細胞の率で導入する。これをD1に48時間、完全培地で培養する。試験対象の活物質の濃度は抽出物の%で表す。抽出物の貯蔵液は20%濃度(w/v)でのDMSO中で調製した。第1の希釈は1/1000とした。最終DMSO濃度の0.1%を維持しながら下記の希釈をした。48時間後、アルコール/酸混合物で細胞を固定する。続けて細胞を1時間、1/50にPBS + BSA/tweenで希釈された抗コラーゲンIV抗体(Rockland)でマークする。次にウエルスライドはPBSで2回、洗浄する。特定のマーキングの明瞭化は1時間、1/100にPBS + BSA/tweenで希釈されたFITC連結二次抗体(Santa-Cruz)で実施される。次に、スライドはPBSで2回、PBSで洗浄し、RotiMount Fluocare + DAPI (Roth)取付け液体でスライドとカバーガラスで挟む。
BX- 60落射蛍光顕微鏡(Olympus, Japan)に接続したDP72カメラ(Olympus, Japan)で緑色と青色の写真をとる。
2人の観察者で写真を調べて蛍光強度のスコアリングを0(ゼロのマーキング)から4(非常に高いマーキング)の直線目盛で行った。
同時にラムノース濃度はコラーゲンIVの発現についての正のコントロールエレメントとしてこの試験に統合した。事実、ラムノースおよびラムノースを含む多糖類は線維芽細胞においてコラーゲンの合成を誘導すると記述されている22。結果は図3Aに示す。
測定結果の分析はウチュバ抽出物で48時間の処理が為された線維芽細胞においてコラーゲンIV発現の大幅な上昇(約+300%)を示す。コラーゲンIV発現の上昇の振幅はラムノースで得たものに匹敵する。
エラスチンはMECの組成物に使用される(ラミニンやフィブロネクチンのように)構造糖タンパク質である。これは構造繊維状蛋白質のファミリーのタンパク質である。特にこれは成長期に線維芽細胞により分泌され、弾性を有する。この合成は年齢とともに低下し、エラスチンは伸びないコラーゲンに置き換わる。線状皮膚萎縮は力学的制約に関連して、このプロセスの身近な例である。第2の例は皮膚老化である。
細胞外マトリックスでは:
エラスチンは初めにプロエラスチンとして、次にトロポエラスチンとして線維芽細胞により細胞外スペースで合成され分泌される。これは弾性繊維およびフィブリリンの主要な(90%未満)成分である。このことから、共有架橋結合により弾性繊維を形成するエラスチンおよびフィブリリンに関連するコラーゲンは細胞外マトリックスの主要な成分である。エラスチンの総産生は思春期あたりで停止する。その後、利用可能なエラスチンは年齢とともに低下する。
劣化:
エラスチンの劣化は線維芽細胞によって分泌される酵素、エラスターゼの作用に関連している。エラスターゼの酵素作用はα1アンチトリプシンにより抑制される。劣化の抑制はエラスチンの安定性を増加するようにバランスさせる。
役割:
エラスチンを特徴づけるハッキリとした特色がある: エラスチンは細胞を結合させ生物組織を形成する。このことから皮膚、肺、血管、結合組織、特定の腱と軟骨の正しい機能はエラスチンの特徴と密接に関連している。名前が示すように、エラスチンは弾性である。同一の直径であれば輪ゴム5倍以上の弾性がある。切れるまで伸ばした場合には正常時の長さの150%まで延びる。このことから、これは細胞を伸ばすことができて、伸ばした後は元の状態に復元する柔軟性がある。
真皮:
エラスチンは皮膚の真皮に存在して支持体として作用する。例えば老化すると真皮の弾性と緊張力が失われ、下にある筋肉の収縮に適応できなくなり、しわが現れる。加えて、紫外線被爆はエラスチンの劣化を速める。
下記の研究により、エラスチンタンパク質の発現に対するウチュバ抽出物の効果についての研究が可能となる。
複製老化により若いまたは老化したNHDF(正常ヒト真皮線維芽細胞)を96ウエルプレートに導入して5%CO2、37℃、24時間、インキュベーションした。
この細胞を試験生成物の存在下で24時間、処理した。続けて細胞をフォルマリンで固定して、タンパク質の発現は免疫蛍光法で検出した。蛍光マーキングは自動化顕鏡法(Arrayscan CellomicsTM)を用いて画像化し定量した。蛍光はコンパートメント分析生体応用により定量した。
- 若い細胞: 若年ドナー(25才)のNHDF
- 複製老化による老化: 老化ステージまで数回にわたり培養された若年ドナーのNHDF。
結果を図3Bに示す。
ウチュバ抽出物により、若い細胞のタンパク質レベルを僅かに超えてエラスチン発現が再確立される。
得られた結果からウチュバ抽出物はvivoで外挿されるvitroでの弾性の向上を示す。
メチル化はヒストンのN末端の修飾である。これはリジンかアルギニンかのいずれかで実施できて1つ、2つ、または3つのメチル基の付加で実現できる。これはメチル化残基と付加基の数とに依存して、転写の活性化または制御に関連する。長時間静的であると考えれば、ヒストンのメチル化はアセチル化およびリン酸化と比べてより安定しているが、動的プロセスに係る可逆的修飾である。ますます増え続けるヒストンデメチラーゼが同定されている。一般的にこのタイプの修飾はアセチル化に対抗し、かつリジンの脱アセチル化はメチル化の前に起こらねばならない。この対抗はヘテロクロマチン(一般に表現可能でなく、特定の重要なアミノ酸でメチル化)と真正染色質領域(一般に表現可能で、アセチル化)との間の特定の動的バランスの確立に繋がる。例えばヒストンH3のリジン9はメチル化した時に周囲のクロマチンの制御に関連することが知られている。このメチル化はタンパク質HP1で認識され、これは従ってメチル化H3 上で固定する。HP1は周囲のヌクレオソームのヒストンH3 のリジン9をメチル化できるSuv39タンパク質、ヒストンメチルトランスフェラーゼを引き付ける。このことからヒストンH3のメチル化の仕組み、クロマチンの縮合の仕組みをス段階的に観察できる。しかしながら、このヘテロクロマチン侵入はH3の遭遇するリジン9が既にアセチル化しているならば停止する。これにより、競争的バランスが発現クロマチンドメインと抑制クロマチンドメインとの間に確立する。アセチル化またはメチル化レジンは各種タンパク質ドメインで認識されるので、ヒストン尾部(histone tail)の修飾は各種タンパク質クラス動員に繋がるエビジェネティック「マーク」の役割を果たす。またクロマチンのレベルで特定の因子の動員には、すでに関連しているヒストンおよびタンパク質の修飾の事前の存在を必要とする。従ってヒストンのコードはクロマチンに関連した別の因子により解釈され、これはタンパク質をクロマチンに動員するかどうかを決定する修飾ヒストンと別の因子との相互作用の組合せである。老化は生物の全ての組織に影響する。このプロセスは、複数の出版物(非特許文献23〜30)に記載があるように、DNAの特定のシトシン残基のレベルでのメチル化の変化のようなエピジェネティック修飾に関連している。老化、細胞分裂の蓄積、劣化した高分子におけるエピジェネティック修飾の役割は加齢表現型に寄与している。予測不可能な環境事象もDNAのメチル化、ヒストンのメチル化およびアセチル化などのエピジェネティック機構によってこの表現型を修飾する。エピジェネティック修飾の潜在的な可逆性により、それらは老化に関連した状態の処理に関する魅力的なターゲットになる。
観測されたタンパク質の発現の再活性機構を理解するために、本来の性質として老化した細胞に対するDNAのメチル化の分析を行った。事実、細胞の老化の特徴の1つはCpGジヌクレオチドに含まれるシトシンのレベルでのDNAにおけるメチル化ゾーンの蓄積である。これはプロモータの不活性化および特定の遺伝子の発現の低下に繋がる。
複製した本質的に若いまたは老化したNHDF(正常ヒト真皮線維芽細胞)は6ウエルプレートに導入してサブコンフルエンス(subconfluence)まで5%CO2、37℃でインキュベーションした。この細胞を試験生成物の存在下で24時間、処理した。続けて細胞はトリプシンの存在下で取り外してから溶解した。ゲノムDNAはエタノールで共沈させた。Enzoキットを使用してDNAのメチル化速度をELISAで測定した: 5‐メチルシトシンDNA ELISAキット。値は結果が見やすい50%から表す。
- 若い細胞: 若年ドナー(25才)のNHDF
- 複製老化による老化: 老化ステージまで数回にわたり培養された若年ドナーのNHDF。
細胞毒性の事前評価に続き、ウチュバ抽出物は2 - 1 - 0.5 ppm濃度で試験する。
- 結果: 結果を図4Bに示す。
得られた結果からウチュバ抽出物により、老化した皮膚モデルにつて試験された3つの濃度でメチル化の割合を低下させることが可能である。
フィブリリン1は弾性繊維に関連し、その集合に寄与するミクロフィブリルを構成するタンパク質である。
方法
若いNHDF(正常ヒト真皮線維芽細胞)を96ウエルプレートに導入して5%CO2、37℃、24時間、インキュベーションした。外因性老化の細胞は24時間中に照射に間を取った3回のUVA放射線と、1回のUVB放射線で照射された。この細胞を試験生成物の存在下で照射に間を取り24時間、処理した。続けて細胞をフォルマリンで固定して、タンパク質の発現は免疫蛍光法で検出した。蛍光マーキングは自動化顕鏡法(Arrayscan CellomicsTM)を用いて画像化し定量した。蛍光はコンパートメント分析生体応用により定量した。
- 若い細胞: 若年ドナー(25才)のNHDF
- UVA/B-:誘発老化 若年ドナーのNHDF、UVAおよびUVB放射線で照射される
細胞毒性の事前評価に続き、ウチュバ抽出物は2 - 1 - 0.5 ppm濃度で試験する。
結果を図4B に示す。
0.5ppmのウチュバ抽出物により若い細胞に同等か、またはそれ以上のレベルにフィブリリン1の発現が再確立される。
老化すると合成低下と増加した劣化が原因でコラーゲン繊維と弾性繊維は変化する。ウチュバ抽出物が細胞若返りに作用することを示すために、コラーゲンIおよびエラスチンにつては内因的(複製老化)で老化、または、フィブリリン1については繰り返されるUV放射線による外因的で老化(光老化)した細胞のこれらの繊維構造に関連するタンパク質の発現は定量された。
ウチュバ抽出物により、これらのマーカーの発現が再確立される。
この研究ではウチュバ抽出物は若いコントロールエレメントとの比較で完全にタンパク質の発現を再確立する。これは観察された効果の目的となる。異常な過剰発現は無く、ウチュバ抽出物は皮膚の生物学的平衡を尊重する。
また同時に、この特性に認められるラムノースなどの未処理細胞に関してウチュバ抽出物は線維芽細胞コラーゲンIVの発現を著しく増大させる。加えてコラーゲンIIIの量はウチュバ抽出物による線維芽細胞の治療中に増大する。これらの結果は再緻密化と構造レベルでのアンチエイジングの有効性を強化する。
DNAのメチル化の分析においては、ウチュバ抽出物はこの実験で一様な結果を示す。つまり試験された3つの濃度でメチル化が低下している。この効果は若返り効果がある細胞外マトリックスについてタンパク質の発現を再活性化させるこの生成物の作用機序に関する情報を提供している。
その結果としてウチュバ抽出物は抗老化、若返り、抗老化生物活性を示す成分または有効成分である。これはタンパク質発現を若い細胞で観察される発現に再確立することで皮膚老化の3つのターゲットに一貫して作用する。また成熟細胞におけるDNAのメチル化への作用のように、これはエピジェネティックに対する革新的な活性を示す。最後に、これは細胞外マトリックスのタンパク質の合成に対する有効性により深部の抗老化作用を示す。
フィラグリンはプロフィラグリン(フィラグリンの10-12モノマーおよびNH2-末端S-100調節タンパク質の反復)という前駆体の形をした顆粒層で合成される。これが現れるのが終末分化中に起こるプロフィラグリンの脱燐酸およびタンパク質分解後なので、このタンパク質の検出は表皮の終末分化の状態に関連している。
1) フィラグリンはマクロフィブリルのパケット形成中にケラチンの凝集に寄与する。
2) フィラグリンのモノマーは角化層の成分である(CE; 角質細胞の細胞膜の内部表面に沈着したエンベロープ:intercorneocytary脂質マトリックスを伴う皮膚の遮水特性に寄与する)。
3) モノマーは角質層の最上層で完全に分解して、表皮の水和維持に重要な吸湿性のアミノ酸(NMFまたは天然保湿因子)の混合物を産生する(非特許文献31)。
乾燥症または皮膚の乾燥がある病態(アトピー性皮膚炎、魚鱗癬)でプロフィラグリンおよびフィラグリンの低下が検出された(非特許文献32)。
Prokschらによれば(非特許文献33)、フィラグリンのモニタリングと発現はバリアー機能および/または角質層の水和レベルをモニタリングする良い方法である。これは皮膚科学ジャーナルで上層の水和マーカーとして有意である唯一の実マーカーである。それにもかかわらず臨床的には、これはTEWL(経皮水分蒸散量、transepidemal water loss)測定後に通過するマーカーである。
フィラグリンおよびロリクリンと同様にインボルクリンは終末分化マーカーである。これはトランスグルタミナーゼ(TGM)の特にTGM1のターゲットである角化エンベロープ(CE)のタンパク質である。インボルクリンは角化エンベロープ形成の初期の段階と、CE形成の後半の段階でTGM1によりオリゴマ化され、インボルクリンはセラミド35に関連する。マーキングはとげ状の層の上層から顆粒層およびSCの最初の層の内側までの表皮に局在する。
- 材料および方法:
説明: 女性、白人、51歳の哺乳類であるヒト皮膚の外植体(Biopredic − 35000 RENNES)
数: 直径が1cmである脱脂皮膚の9つのパンチの調製
培養の条件: 37°C, 5% CO 2
培地: グルコースの、抗生物質を補充した4.5g/Lの DMEM培地(ペニシリン-ストレプトマイシン-アムホテリシン)
実施例3で得たウチュバ抽出物はパラフィンオイルに0.05%および0.01%(w/v)に希釈した。トリグリセリドC8C10 55/45溶媒(コード EC-09-271)を使用した。
受け取った外植体は脱脂した。直径が1cmある円形皮膚ディスクを1つのパンチの使用で得た。6つのウエルプレート上に直径が1.6cmであるステンレススチールのグリッドを5mlの培地に配置した。表皮を空気にさらしながら、各外植体は培地に浸すためにグリットに付ける。外植体は48時間、培地を変えずに培養する。D0とD1とに試験する10μLの製剤の局所投与をして各種の処理を実施した。実験条件全てについて3つのパンチで繰り返した。
対照外植体を処理外植体と同じ方法で培養した。処理は濃度が0.05%である10μLのトリグリセリド溶媒で実施した。
培養終了期間の後で、外植体を収集してメスを使って2つの等しく分けた。最初の半分について液体窒素で冷却したイソペタンを使用してTeck TM細胞(Sakura)で凍結して、次に免疫標識を待ちながら‐80℃で維持した。残りの半分は4%緩衝ホルマリンで維持した。
クリオトーム(cryotome)を使用して各外植体の5μmの厚さの断面を造った。PBSでの再水和作用の後、溶液(PBS- BSA-Tween)中で調製された一次抗体溶液で断面を1時間、インキュベーションした。連続洗浄後、一次抗体が商用形態の100分の1でのFITCプローブに連結した二次抗体により明瞭化した。細胞核をDAPI蛍光塗料でマークした。
皮膚片はポリ‐リジントレイを使用して収集した。
それぞれの皮膚片は20倍でのOlympus BX60落射蛍光顕微鏡を使用して観察した。Cell Fソフトウェアで操作されるOlympus DP72カメラを使用して各片について2枚の写真を取った。写真のネガは次の手順で同定した: マーキングの日付‐処理条件‐画像数‐マーカー。DAPI核マーカーを使用して細胞核の対比染色(counterstaining)を行った。画像処理ソフトウェアを使用したスライディングカラー(sliding colour)により、細胞核の色を青から赤に変更した。表皮のそれぞれの処理条件については10倍の倍率でのマーキング強度のスコア法がある。評価スケールは次の通りである:
非常に低いマーキング 1
低いマーキング 2
中程度のマーキング 3
高いマーキング 4
得られたデータは分析し、溶媒対照条件と比較する形での棒グラフで示した。
全てのマーキングは表皮の上層レベル(表皮のとげ状および/または顆粒状および/または角膜)で局在していた。
- フィラグリンの免疫標識
スコア法の結果は図5Aのグラフに示した。
フィラグリンのマーキング発現データ分析により、用量増加は溶媒対照群と比較して0.01%(+21%)および0.05%(+37%)で、ウチュバ抽出物により処理された外植体の蛍光量に依存することが示された。
スコア法の結果は図5B のグラフに示した。インボルクリンのマーキング発現データ分析により、有意な用量増加は対照群と比較して0.01(+64%)および0.05%(+86%)で、ウチュバ抽出物により処理された外植体の蛍光量に依存することが示された。
この研究の結果から、ウチュバ抽出物を用いて48時間培養した皮膚の外植体の局所処理は皮膚の水和およびバリヤー効果に関するタンパク質の発現増加に繋がることが示された(フィラグリン、インボルクリンのそれぞれで)。ウチュバ抽出物による発現の増加はフィラグリン、インボルクリンと比較してインボルクリンにおいてかなり有意である。これらのタンパク質の最大の発現は0.05%の濃度で常に観察された。この結果から、本発明のウチュバ抽出物は表皮に関する構成および保湿活性プロフィールを提示する。
ウチュバ抽出物の色素脱失効果の可能性については正常ヒト上皮メラニン細胞(NHEM)のモデルを使用して実験を行った。メラニン合成に対するウチュバ抽出物の効果はL‐チロシンで刺激される条件下で10日間のインキュベーション後に評価した。この実験で参照阻害分子はリポ酸である。この作用機構はMITF転写因子(小眼症関連転写因子)の発現の阻害を必要とする。この転写因子はチロシナーゼの発現の主要な調節因子であり、この阻害はメラニン合成に関わる酵素であるチロシナーゼ発現の抑制をもたらす。メラニン細胞は24ウエルプレートに播き、24時間、培地で培養した。続けて、この培地はL‐チロシン(1 mM)を補充し、化合物または参照(5μg/mlで試験されたリポ酸)(刺激コントロールエレメント)を含有する、または含有しない培養培地(PMA free HMGS-2+ペニシリン50U/ml‐ストレプトマイシン50μg/mlを補充した培地254)で取り替えた。非刺激コントロール状態を同時に作った。次に合計10日間のインキュベーションで、3日間と7日間のインキュベーション後に細胞の処理を反復した。インキュベーション後、0.5 N NaOH溶液でメラニンを細胞の溶解により抽出した。サンプルの光学密度(OD)は405nmで測定され、外因的なメラニンの範囲(0.39から100μg/mlの基準を含むメラニンの曲線)との比較でメラニンの量は測定された。その結果はメラミンのμg/ml、刺激コントロールエレメント、阻害のパーセンテージなどで表された。1 mMで試験されたL‐チロシンでの正常ヒト上皮メラニン細胞(NHEM)の処理は、メラミン合成を強く刺激した。5μg/mlで試験された参照のリポ酸はL‐チロシンで誘導された刺激を強く阻害した(108%阻害)。この効果は期待されたものであり試験の検証を可能とした。
予備的な細胞毒性試験後に試験をした研究におけるウチュバ抽出物の濃度は選択された:
下記の表は実施例21‐23で試験されたウチュバ抽出物の濃度の対応関係を示す(組成物の全重量当たり重量でppmおよび%)。
Claims (10)
- 皮膚、皮膚付属器および粘膜に対して生物学的に活性な有効成分として使用するための、炭素数1〜10のアシル基を有し、中程度に有極性から無極性のショ糖エステル1つ以上を主として含むことを特徴とする、ナス科ホオズキ属 (Solanaceae family, of the Physalis genus) の多くの植物のうちの1種類の植物の萼からの植物抽出物。
- ブドウホオズキ (Physalis peruviana) の萼から得られることを特徴とする、請求項1に記載の植物抽出物。
- 皮膚、皮膚付属器および粘膜に対して生物学的に活性な有効成分として使用するために、請求項1に記載の抽出物から或いは合成によって得られることを特徴とする、炭素数1〜10のアシル基を有し、中程度に有極性から無極性のショ糖エステル。
- 有効成分として、請求項1および2に記載の植物抽出物または請求項3に記載のショ糖エステルを、適切な生理学的媒体中に含有することを特徴とする、化粧品組成物または栄養化粧品組成物。
- 前記有効成分が、前記組成物の全重量当たり、10-6〜50%の重量濃度で存在することを特徴とする、請求項4に記載の組成物。
- 局所投与に適し、主にオイル、水アルコールまたは水溶液の形態で、或いは油中水型エマルジョンまたは水中油滴型エマルジョンまたは多相エマルジョの形態で、或いはクリーム剤、懸濁液、または散剤の形態で存在し、前記組成物はほぼ液体または固体であっても良く、クリーム剤、ローション剤、ミルク、シャンプー、血清、軟膏剤、ゲル、ペースト、泡沫 (foam)、またはスティックのような形態であっても良いことを特徴とする、請求項4または5に記載の化粧品組成物。
- 皮膚、粘膜または皮膚付属器の見栄えを改善し、皮膚と粘膜の乾燥を予防し、且つ/或いはこれに抗し、老化および/または光老化の皮膚兆候を予防し、且つ/或いはこれに抗し、弾力の喪失および皮膚の張りに抗し、皮膚の色素を除去する美容処理プロセスで、皮膚および/または髪の表面に、請求項4から6のいずれかで定義した組成物の有効量を適用することを含むプロセス。
- 皮膚、粘膜または皮膚付属器の病理学的乾燥状態に関する皮膚科学的処理に使用して治癒を促進することを目的とする、単独または他の有効成分との併用における、請求項1に記載の植物抽出物または請求項3に記載のショ糖エステルの有効量。
- 皮膚、粘膜または皮膚付属器の見栄えを改善し、皮膚と粘膜の乾燥を予防し、且つ/或いはこれに抗し、老化および/または光老化の皮膚兆候を予防し、且つ/或いはこれに抗すことを意図して摂取される栄養化粧品組成物を調製するための、単独または他の有効成分との併用における、請求項1に記載の植物抽出物または請求項3に記載のショ糖エステルの有効量の使用。
- 請求項1に記載の植物抽出物を調製するプロセスであって、
- 植物の部位の乾燥と、
- 粉砕と、
- 適切な有機溶媒を用いた抽出と、これに続き、
- 必要に応じて行う脱溶媒和と、これに続き、
- 必要に応じて行う、1つ以上の適切な方法による精製とを含むプロセス。
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