JP2015529090A - クロストリジウム−ディフィシルの検出のための組成物及び方法 - Google Patents

Abstract

生物学的又は非生物学的サンプル中のクロストリジウム-ディフィシルの存在又は不存在の迅速な検出方法が記載される。当該方法は、増幅ステップハイブリダイズステップ及び検出ステップを行うことを含み得る。さらに、クロストリジウム-ディフィシルの検出のために設計されるプライマー、プローブ及びキットが提供される。

Description

発明の技術分野
本発明は、微生物の診断分野に関し、より具体的にはクロストリジウム-ディフィシル（Clostridium difficile）の検出に関する。

クロストリジウム-ディフィシル（「Ｃ．ディフィシル（C. difficile）」又は「Ｃ．ディフ（C. diff）」）は、重篤な下痢及び他の腸疾患を引き起こしうる嫌気性のグラム陽性胞子形成細菌である。Ｃ．ディフィシルの胞子は病院で見つかることが多く、胞子は直接感染症を引き起こすことはできないが、摂取された場合に活性な感染型に変換しうる。Ｃ．ディフィシル感染症は、単純な下痢から顕著な罹患率及び死亡率を伴う偽膜性大腸炎まで、広範囲の臨床症候群を含む。抗生物質起因性大腸炎は、腸内細菌叢中の競合細菌が抗生物質によって一掃されたときに発症する、Ｃ．ディフィシルにより引き起こされる結腸の感染症である。それは、入院中の患者が感染する最も一般的な感染症である。

Ｃ．ディフィシルによる感染症の大部分は、６５歳以上の人の間並びに病院及び老人ホームなどの保健施設における患者の間で発症する。１９９６年から２００９年まで、６５歳以上の入院者のＣ．ディフィシル感染率は２００％増大し、６５〜７４歳では１７５％、７５〜８４歳では１９８％、そして、８５歳以上では２０１％の増大であった。８５歳以上の患者の間のＣ．ディフィシル感染率は、他の年齢群よりも著しく高かった（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｈｏｓｐｉｔａｌ Ｄｉｓｃｈａｒｇｅ Ｓｕｒｖｅｙ， Ａｎｎｕａｌ Ｆｉｌｅｓ， １９９６年〜２００９年）。

一般に、Ｃ．ディフィシル大腸炎の診断は、便サンプル中のC.ディフィシルにより産生される毒素を検出する検査を含む。Ａ毒素（ｔｄｃＡ）及びＢ毒素（ｔｄｃＢ）と呼ばれる、大腸炎を引き起こすことのできる２つの異なるＣ．ディフィシル毒素がある。これらの毒素の診断検査は市販されている。しかしながら、これらの検査は完璧ではなく、（Ｃ．ディフィシルが無い場合に毒素を発見する）偽陽性の検査結果及び（Ｃ．ディフィシルが存在する場合に毒素を発見しない）偽陰性の検査結果となる可能性がある。例えば、Ｃ．ディフィシルとＣ．ソルデリイ（C.sordellii）間の交差反応の可能性が知られている。「Ｃｌｏｎｉｎｇ ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｙｔｏｔｏｘｉｎ Ｌ−ｅｎｃｏｄｉｎｇ ｇｅｎｅ ｏｆ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｓｏｒｄｅｌｌｉｉ: ｈｏｍｏｌｏｇｙ ｗｉｔｈ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｄｉｆｆｉｃｉｌｅ ｃｙｔｏｔｏｘｉｎ Ｂ」Ｇｒｅｅｎ他、Ｇｅｎｅ、１９９５年、１６１：５７〜６１頁を参照のこと。したがって、培養よりも感度が高く、偽陽性又は偽陰性の結果をより生じにくい、Ｃ．ディフィシルの検出のための分子検査を開発する大きな臨床的必要性が依然としてある。

本発明の実施態様は、生物学的サンプル又は非生物学的サンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在の迅速な検出方法に関する。本発明は、少なくとも１つの循環ステップを実施することを含み、該ステップは、増幅ステップ及びハイブリダイズステップを含んでよい。さらに、本発明は、Ｃ．ディフィシルの検出のために設計されたプライマー、プローブ及びキットに関する。Ｃ．ディフィシルの検出のために本発明の方法において標的とされる遺伝子は、Ｃ．ディフィシルＢ毒素（ｔｃｄＢ）遺伝子である。例えば、毒素産生Ｃ．ディフィシルに特異的であり、エンテロトキシン陰性でサイトトキシン陽性のいくつかのクロストリジウム-ソルデリイ菌株を除く他のクロストリジウム種には存在しないと判断されたため（Ｇｒｅｅｎ他、Ｊ． Ｍｅｄ． Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ． １９９６年、４４：６０〜６４頁）、サイトトキシンＢをコードするｔｃｄＢが選ばれた。毒素産生Ｃ．ディフィシル菌株の間でのｔｃｄＢ遺伝子の多様性は、参照菌株ＶＰＩ１０４６３であるＴｏＸを含む３１種もの毒素遺伝子変異型（toxinotype）をこれまでもたらしている。ｔｃｄＢ遺伝子は、宿主細胞膜への結合に関与するＣ末端ドメイン、インターナリゼーションに関与する中間部分及びＮ末端触媒（毒性）部分を有する、一本鎖タンパク質をコードする（Ｒｕｐｎｉｋ他、Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ、２００５年、１５１（１）：１９９〜２０８頁）。

一態様において、本発明は、サンプル中のＣ．ディフィシルを検出する方法を提供し、該方法は、サンプルをｔｃｄＢプライマーのセットと接触させて、Ｃ．ディフィシルがサンプル中に存在する場合には増幅産物を産生することを含む、増幅ステップを行い；増幅産物と１又は２以上の検出可能なｔｃｄＢプローブとを接触させることを含む、ハイブリダイズステップを行い；そして、上記増幅産物の存在又は不存在を検出すること、ここで増幅産物の存在は、サンプル中のＣ．ディフィシルの存在を示し、増幅産物の不存在は、サンプル中のＣ．ディフィシルの不存在を示す、を含む。一実施態様において、ｔｃｄＢプライマーのセットにおける各プライマーは、配列番号１、２、３、４、５、及び６からなる群から選択されるヌクレオチドの配列又はその相補配列を含むか、又はそれからなり；そして、上記１又は２以上の検出可能なｔｃｄＢプローブは、配列番号７、８及び９からなる群から選択されるヌクレオチドの配列を含むか、又はそれからなる。いくつかの実施態様においては、ハイブリダイズステップは、増幅産物とドナー蛍光部位及び対応するアクセプター蛍光部位で標識されるプローブとを接触させることを含む。上記方法はさらに、プローブのドナー蛍光部位とアクセプター蛍光部位の間の蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）の存在又は不存在を検出することを含んでよい。蛍光の存在又は不存在は、サンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在を示す。

一態様において、増幅は、５’−３’エキソヌクレアーゼ活性を有するポリメラーゼ酵素を用いることができる。ある実施態様において、上記第一蛍光部位及び第二蛍光部位は、プローブの長さに沿って、お互いに５個以下のヌクレオチドの範囲内に (within no more than 5 nucleotides of each other) 存在してよい。別の態様において、ｔｄｃＢプローブは、二次構造を形成することができる核酸配列を含む。そのような二次構造の形成により、一般に、第一蛍光部位と第二蛍光部位との間が空間的に近接する。この方法のある実施態様において、プローブ上の第二蛍光部位はクエンチャーであることができる。

別の態様において、本発明は、個人からの生物学的サンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在を検出する方法を提供する。そのような方法は、一般に、少なくとも１つのサイクルステップを実施することを含み、これは、増幅ステップ及び色素結合ステップを含む。典型的に、増幅ステップは、サンプルと一対のｔｃｄＢプライマーとを接触させて、ｔｃｄＢの核酸分子がサンプル中に存在する場合にはｔｃｄＢの増幅産物を生成することを含み、色素結合ステップは、ｔｃｄＢの増幅産物と二本鎖ＤＮＡ結合色素とを接触させることを含む。そのような方法は、二本鎖ＤＮＡ結合色素の増幅産物への結合の存在又は不存在を検出することも含み、ここで、結合の存在は、サンプル中のＣ．ディフィシルの存在を示し、結合の不存在は、サンプル中のＣ．ディフィシルの不存在を示す。代表的な二本鎖ＤＮＡ結合色素は、エチジウムブロマイドである。さらに、そのような方法は、ｔｃｄＢの増幅産物と二本鎖ＤＮＡ結合色素との間の融解温度を決定することも含むことができ、ここで、該融解温度がＣ．ディフィシルの存在又は不存在を確認する。

さらなる態様において、本発明は、Ｃ．ディフィシル（ｔｃｄＢ標的）の核酸を検出するためのキットを提供する。該キットは、配列番号１、２及び３からなる群から選択される配列又はその相補配列を含むか又はそれからなる、第一オリゴヌクレオチド；配列番号４、５及び６からなる群から選択される配列又はその相補配列を含むか又はそれからなる第二オリゴヌクレオチド；並びに、配列番号７、８及び９からなる群から選択される配列又はその相補配列を含むか又はそれからなる、第三オリゴヌクレオチドを含むことができる。ある実施態様において、第一オリゴヌクレオチド及び第二オリゴヌクレオチドは、プライマーオリゴヌクレオチドであり、一方、検出可能に標識された第三オリゴヌクレオチドは、プローブオリゴヌクレオチドである。

一実施態様において、キットは、ドナー蛍光部位及び対応するアクセプター蛍光部位で既に標識されたプローブを含むことができるか、又はプローブを標識するための蛍光性（fluorophoric）部位を含むことができる。ある実施態様において、アクセプター蛍光部位はクエンチャーである。キットは、ヌクレオシド三リン酸、核酸ポリメラーゼ及び核酸ポリメラーゼの機能のために必要な緩衝液、の少なくとも１つを含むこともできる。キットは、添付文書及びサンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在を検出するためにプライマー、プローブ及び蛍光性部位を使用するための指示も含むことができる。

一態様において、本発明は、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９から選択されるヌクレオチドの配列又はその相補配列を含むか、又はそれからなるオリゴヌクレオチドを提供し、該オリゴヌクレオチドは、１００個以下のヌクレオチドを有する。ある実施態様において、オリゴヌクレオチドは、４０個以下のヌクレオチドを有する。別の態様において、本発明は、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９の１つ又はその相補配列に対して少なくとも７０％（例えば、少なくとも７５％、８０％、８５％、９０％又は９５％）の配列同一性を有する核酸を含むオリゴヌクレオチドを提供し、該オリゴヌクレオチドは、１００個以下、より特別には、４０個以下のヌクレオチドを有する。ある実施態様において、オリゴヌクレオチドは、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９の１つ又はその相補配列に対して少なくとも９０％の配列同一性を有する。一般に、これらのオリゴヌクレオチドは、これらの実施態様においてプライマー核酸、プローブ核酸などであってよい。これらの実施態様の或るものにおいて、オリゴヌクレオチドは、４０個以下のヌクレオチド（例えば、３５個以下のヌクレオチド、３０個以下のヌクレオチドなど）を有する。いくつかの実施態様において、オリゴヌクレオチドは、例えば、未修飾ヌクレオチドに比べて核酸ハイブリダイゼーションの安定性を変更するために、少なくとも１つの修飾ヌクレオチドを含む。場合により、オリゴヌクレオチドは、少なくとも１つの標識部位及び／又は少なくとも１つのクエンチャー部位を含む。いくつかの実施態様において、オリゴヌクレオチドは少なくとも１つの保存修飾変異（conservative modified variation）を含む。

さらに別の態様において、本発明は、一対のオリゴヌクレオチドプライマーを提供し、ここで、第一オリゴヌクレオチドプライマーは、配列番号１、２及び３からなる群から選択される配列又はその相補配列を含むか、又はそれからなり、さらにここで、第二オリゴヌクレオチドプライマーは、配列番号４、５及び６からなる群から選択される配列又はその相補配列を含むか、又はそれからなる。これらの実施態様の或るものにおいて、オリゴヌクレオチドの少なくとも１つは、４０個以下のヌクレオチド（例えば、３５個以下のヌクレオチド、３０個以下のヌクレオチド）を有する。いくつかの実施態様において、上記オリゴヌクレオチドの少なくとも１つは、例えば、未修飾ヌクレオチドに比べて核酸ハイブリダイゼーションの安定性を変更するために、少なくとも１つの修飾ヌクレオチドを含む。いくつかの実施態様において、オリゴヌクレオチドの少なくとも１つは、少なくとも１つの保存修飾変異を含む。

別段の定めのない限り、本明細書で使用されるすべての技術用語及び科学用語は、本発明が属する分野の当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。本発明の実施又は試験において、本明細書に記載されたものと同様の又は同等の方法及び材料が使用可能であるが、好適な方法及び材料が以下に記載される。さらに、該材料、方法及び実施例は、単に例示であって限定することを意図しない。

本発明の１又は２以上の実施態様の詳細は、添付の図面及び以下の記載に示される。本発明の他の特徴、目的及び利益は、図面及び詳細な説明、並びに特許請求の範囲から明らかである。

Ｃ．ディフィシルの毒素Ｂのための様々なプライマー対により産生されたＰＣＲ産物のゲルデータ及びＣ．ソルデリイとの交差反応性のレベルを示す。ＣＤＢ２０３ＢＺ／ＣＤ２０２ＢＺ（図１Ａ）。 Ｃ．ディフィシルの毒素Ｂのための様々なプライマー対により産生されたＰＣＲ産物のゲルデータ及びＣ．ソルデリイとの交差反応性のレベルを示す。ＣＤＮ２１１ＢＺ／ＣＤＢ２１４Ｎ（図１Ｂ）。 Ｃ．ディフィシルの毒素Ｂのための様々なプライマー対により産生されたＰＣＲ産物のゲルデータ及びＣ．ソルデリイとの交差反応性のレベルを示す。ＣＤＢ２０５ＢＺ／ＣＤＢ２０４ＢＺ（図１Ｃ）。 様々なプライマー対：ＣＤＢ２０３ＢＺ／ＣＤ２０２ＢＺ（図２Ａ）、ＣＤＮ２１１ＢＺ／ＣＤＢ２１４Ｎ（図２Ｂ）及びＣＤＢ２０５ＢＺ／ＣＤＢ２０４ＢＺ（図２Ｃ）によるＣ．ディフィシルＴｏｘ ０及びＣ．ソルデリイのゲノムＤＮＡの増幅におけるＣＤＢ２４２ＨＱ６プローブのＰＣＲ増殖曲線を示す。 様々なプライマー対：ＣＤＢ２０３ＢＺ／ＣＤ２０２ＢＺ（図２Ａ）、ＣＤＮ２１１ＢＺ／ＣＤＢ２１４Ｎ（図２Ｂ）及びＣＤＢ２０５ＢＺ／ＣＤＢ２０４ＢＺ（図２Ｃ）によるＣ．ディフィシルＴｏｘ ０及びＣ．ソルデリイのゲノムＤＮＡの増幅におけるＣＤＢ２４２ＨＱ６プローブのＰＣＲ増殖曲線を示す。 様々なプライマー対：ＣＤＢ２０３ＢＺ／ＣＤ２０２ＢＺ（図２Ａ）、ＣＤＮ２１１ＢＺ／ＣＤＢ２１４Ｎ（図２Ｂ）及びＣＤＢ２０５ＢＺ／ＣＤＢ２０４ＢＺ（図２Ｃ）によるＣ．ディフィシルＴｏｘ ０及びＣ．ソルデリイのゲノムＤＮＡの増幅におけるＣＤＢ２４２ＨＱ６プローブのＰＣＲ増殖曲線を示す。

発明の詳細な説明
サンプル中のＣ．ディフィシルを検出するためのリアルタイムアッセイが本明細書に記載される。Ｃ．ディフィシルを検出するためのプライマー及びプローブが、そのようなプライマー及びプローブを含有する製品又はキットとして提供される。他の方法に比べて増大した、Ｃ．ディフィシル検出のためのリアルタイムＰＣＲの感度、並びにサンプルの封じ込め及び増幅産物のリアルタイム検出を含む、リアルタイムＰＣＲの改善された特徴は、臨床検査室におけるＣ．ディフィシル感染症の日常的診断のためのこの技術の実施を実行可能とする。

上記方法は、一対のｔｄｃＢプライマーを用いて、サンプルからのｔｃｄＢ核酸分子の一部を増幅することを含む、少なくとも１つのサイクルステップを実施することを含む。本明細書で使用される「ｔｃｄＢプライマー」は、ｔｃｄＢをコードする核酸配列に特異的にアニールし、適切な条件下でそこから合成を開始するオリゴヌクレオチドプライマーをさす。ｔｃｄＢプライマーはそれぞれ、各増幅産物がｔｃｄＢに対応する核酸配列を含有するように、ｔｃｄＢ核酸分子内又はそれに隣接する標的にアニールする。ｔｃｄＢ核酸がサンプル中に存在するならばｔｃｄＢ増幅産物が産生され、したがって、ｔｃｄＢ増幅産物の存在はサンプル中のＣ．ディフィシルの存在を示す。増幅産物は、１又は２以上の検出可能なｔｃｄＢプローブに相補的な核酸配列を含有するはずである。各サイクルステップは、増幅ステップ、ハイブリダイゼーションステップ及び検出ステップを含み、検出ステップにおいて、サンプルは、サンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在の検出のための１又は２以上の検出可能なｔｃｄＢプローブと接触させられる。

本明細書で使用されるとおり、用語「増幅すること」は、テンプレート核酸分子（例えば、ｔｃｄＢ核酸分子）の一方又は両方の鎖に相補的な核酸分子を合成するプロセスをさす。核酸分子を増幅することは、典型的に、テンプレート核酸を変性させること、プライマーの融解温度未満の温度において、プライマーをテンプレート核酸にアニールさせること、及びプライマーから酵素により伸長させて、増幅産物を生成することを含む。増幅は、典型的に、デオキシリボヌクレオシド三リン酸、ＤＮＡポリメラーゼ酵素（例えば、Ｐｌａｔｉｎｕｍ（登録商標）Ｔａｑ）並びに適切な緩衝液及び／又はポリメラーゼ酵素の最適な活性のための補因子（例えば、ＭｇＣｌ₂及び／又はＫＣｌ）の存在を必要とする。

用語「プライマー」は、本分野の当業者に知られたとおりに本明細書で使用され、オリゴマー化合物、主にオリゴヌクレオチドと呼ばれるが、テンプレート依存性ＤＮＡポリメラーゼによるＤＮＡ合成を「開始」することができる修飾オリゴヌクレオチドとも呼ばれ、すなわち、オリゴヌクレオチドなどの３’末端は、３’−５’ホスホジエステル結合を確立するテンプレート依存性ＤＮＡポリメラーゼによってさらなる「ヌクレオチド」がそこへ結合されうる、遊離の３’−ＯＨ基を提供し、これによって、デオキシヌクレオシド三リン酸が用いられ、ピロリン酸が放出される。したがって、おそらく目的とする機能以外には、本発明による「プライマー」、「オリゴヌクレオチド」又は「プローブ」の間に基本的な相違はない。

用語「ハイブリダイズすること」は、１又は２以上のプローブを増幅産物へアニールすることをさす。ハイブリダイゼーション条件は、典型的に、プローブの融解温度未満の温度を含むが、それはプローブの非特異的なハイブリダイゼーションを回避する。

用語「５’−３’エキソヌクレアーゼ活性」は、典型的に核酸鎖合成と関連し、それによってヌクレオチドが核酸鎖の５’末端から除去される核酸ポリメラーゼの活性をさす。

用語「耐熱性ポリメラーゼ」は、熱に対して安定なポリメラーゼ酵素をさし、すなわち、該酵素は、テンプレートに相補的なプライマー伸長産物の形成を触媒し、二本鎖テンプレート核酸の変性をもたらすのに必要な時間、高温に供された場合に不可逆的に変性しない。一般に、合成は各プライマーの３’末端で開始し、テンプレート鎖に沿って５’から３’の方向に進行する。耐熱性ポリメラーゼは、サーマス-フィアバス（Thermus fiavus）、Ｔ．ルーバー（T.ruber）、Ｔ．サーモフィルス（T.thermophilus）、Ｔ．アクアティクス（T.aquaticus）、Ｔ．ラクテウス（T.lacteus）、Ｔ．ルベンス（T.rubens）、バシラス-ステアロサーモフィルス（Bacillus stearothermophilus）及びメタノサーマス-フェルビドゥス（Methanothermus fervidus）から単離されている。それにもかかわらず、耐熱性でないポリメラーゼも、該酵素が補充されるという条件でＰＣＲアッセイにおいて使用されることができる。

用語「その相補配列」は、所与の核酸と同じ長さであり、かつ、正確に相補的な核酸をさす。

核酸に関して使用される場合の用語「延長（extension）」又は「伸長（elongation）」は、追加のヌクレオチド（又は他の類似分子）が核酸に組み込まれる場合をさす。例えば、核酸は場合により、典型的に核酸の３’末端にヌクレオチドを付加するポリメラーゼなどの、ヌクレオチドを組み込む生体触媒により延長される。

２つ以上の核酸配列に関して、用語「同一の」又は「同一性」パーセントは、比較され、例えば、当業者に利用可能な配列比較アルゴリズムを用いて又は目視検査によって測定された対応が最大となるように整列化されたときに、同一であるか又は特定のパーセンテージの同一のヌクレオチドを有する、２つ以上の配列又は部分配列をさす。配列同一性パーセント及び配列類似性パーセントを決定するために好適な代表的アルゴリズムは、ＢＬＡＳＴプログラムであって、Ａｌｔｓｃｈｕｌ他、（１９９０）「Ｂａｓｉｃ ｌｏｃａｌ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ｓｅａｒｃｈ ｔｏｏｌ」、Ｊ． Ｍｏｌ． Ｂｉｏｌ． ２１５：４０３〜４１０頁、Ｇｉｓｈ他、（１９９３）「Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎ ｃｏｄｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎｓ ｂｙ ｄａｔａｂａｓｅ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｓｅａｒｃｈ」、Ｎａｔｕｒｅ Ｇｅｎｅｔ． ３：２６６〜２７２頁、Ｍａｄｄｅｎ他、（１９９６）「Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｎｅｔｗｏｒｋ ＢＬＡＳＴ ｓｅｒｖｅｒ」 Ｍｅｔｈ． Ｅｎｚｙｍｏｌ． ２６６：１３１〜１４１、Ａｌｔｓｃｈｕｌ他、（１９９７）「Ｇａｐｐｅｄ ＢＬＡＳＴ ａｎｄ ＰＳＩ−ＢＬＡＳＴ：ａ ｎｅｗ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｒｏｔｅｉｎ ｄａｔａｂａｓｅ ｓｅａｒｃｈ ｐｒｏｇｒａｍｓ」Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２５：３３８９〜３４０２頁、及びＡｈａｎｇ他、（１９９７）「ＰｏｗｅｒＢＬＡＳＴ： Ａ ｎｅｗ ｎｅｔｗｏｒｋ ＢＬＡＳＴ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｖｅ ｏｒ ａｕｔｏｍａｔｅｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ａｎｎｏｔａｔｉｏｎ」、Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ． ７：６４９〜６５６頁に記載されている。

オリゴヌクレオチドに関する「修飾ヌクレオチド」は、オリゴヌクレオチド配列の少なくとも１つのヌクレオチドが、該オリゴヌクレオチドに所望の性質を与える異なるヌクレオチドによって置換されている改変をさす。本明細書に記載のオリゴヌクレオチドにおいて置換されることのできる代表的な修飾ヌクレオチドは、例えば、Ｃ５−メチル−ｄｃ、Ｃ５−エチル−ｄＣ、Ｃ５−メチルｄＵ、Ｃ５−エチル−ｄＵ、２，６−ジアミノプリン、Ｃ５−プロピニル−ｄＣ、Ｃ５−プロピニル−ｄＵ、Ｃ７−プロピニル−ｄＡ、Ｃ７−プロピニル−ｄＧ、Ｃ５−プロパルギルアミノ−ｄＣ、Ｃ５−プロパルギルアミノ−ｄＵ、Ｃ７−プロパルギルアミノ−ｄＡ、Ｃ７−プロパルギルアミノ−ｄＧ、７−デアザ−２−デオキシキサントシン、ピラゾロピリミジン類似体、シュード−ｄＵ、ニトロピロール、ニトロインドール、２’−ｏ−メチルリボ−Ｕ、２’−ｏ−メチルリボ−Ｃ及びＮ４−エチル−ｄＣ、Ｎ６−メチル−ｄＡなどを含む。本発明のオリゴヌクレオチドおいて置換されることのできる他の多くの修飾ヌクレオチドは、本明細書で言及されるか、本分野で知られている。ある実施態様において、修飾ヌクレオチド置換は、オリゴヌクレオチドの融解温度（Ｔｍ）を、対応する未修飾オリゴヌクレオチドの融解温度（Ｔｍ）に比べて変更する。さらに実例を示すと、ある修飾ヌクレオチド置換は、本発明のいくつかの実施態様において、（プライマー二量体の形成を最小化するなどの）非特異的な核酸増幅を低減することができ及び／又は意図する標的アンプリコンの収率を増大させることなどができる。これらのタイプの核酸修飾の例は、米国特許第６，００１，６１１号などに記載されている。

Ｃ．ディフィシル核酸及びオリゴヌクレオチド
本発明は、例えば、ｔｃｄＢ遺伝子の一部を増幅することによってＣ．ディフィシルを検出する方法を提供する。Ｃ．ディフィシルからのｔｃｄＢ遺伝子の核酸配列は、入手可能である（例えば、Ｇｅｎｂａｎｋ寄託番号ＡＭ１８０３５５を参照のこと）。具体的には、ｔｃｄＢ核酸分子を増幅し、検出するためのプライマー及びプローブが本発明によって提供される。

Ｃ．ディフィシルの検出のために、ｔｃｄＢ核酸分子を増幅するためのプライマー及びプローブが提供される。本明細書で例示されるもの以外のｔｃｄＢ核酸も、サンプル中のＣ．ディフィシルを検出するために使用されることができる。例えば、機能的変異体が、特異性及び／又は感受性に関して当業者により日常的方法を用いて評価されることができる。代表的な機能的変異体は、本明細書に開示されたｔｃｄＢ核酸における、例えば、１又は２以上の欠失、挿入及び／又は置換を含みうる。

より具体的には、本発明のオリゴヌクレオチドは各々、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９から選択される配列、実質的に同一のその変異体であって、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９の１つに対して、例えば、少なくとも８０％、９０％もしくは９５％の配列同一性を有する上記変異体、又は配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９並びに該変異体の相補配列を有する核酸を含む。

本発明の一実施態様において、Ｃ．ディフィシルを含有することが疑われる生物学的サンプル中のＣ．ディフィシルの検出を提供するために、特別な一組のｔｃｄＢプライマー及びプローブが使用される。該一組のプライマー及びプローブは、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９からなる群から選択される核酸配列を含むか又はそれからなる、ｔｃｄＢに特異的な少なくとも１つのプライマー及びプローブを含んでよい。本発明の別の実施態様において、ｔｃｄＢのためのプライマー及びは、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９のうちの任意のプライマーの機能的に活性な変異体を含むか又はそれからなる。

配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９のうちの任意のプライマー及び／又はプローブの機能的に活性な変異体は、本発明の方法において該プライマー及び／又はプロ−ブを使用することによって同定されうる。配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９のうちの任意のプライマー及び／又はプローブの機能的に活性な変異体は、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９の各配列に比べて同様の又はより高い特異性及び感受性を提供するプライマーに関する。

変異体は、例えば、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９の各配列の５’末端及び／又は３’末端における１又は２以上のヌクレオチドの付加、欠失又は置換などの、１又は２以上のヌクレオチドの付加、欠失又は置換によって、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９の配列と相違してよい。上で詳述したとおり、プライマー（及び／又はプローブ）は、化学的に修飾されてよい、すなわち、プライマー及び／又はプローブは、修飾ヌクレオチド又は非ヌクレオチド化合物を含んでよい。その場合、プローブ（又はプライマー）は、修飾オリゴヌクレオチドである。「修飾ヌクレオチド」（又は「ヌクレオチド類似体」）は、何らかの修飾によって天然の「ヌクレオチド」とは異なるが、依然として、塩基若しくは塩基様化合物、ペントフラノシル糖若しくはペントフラノシル糖様化合物、リン酸部分若しくはリン酸様部分、又はそれらの組合せからなる。例えば、「標識」が、「ヌクレオチド」の塩基部分に結合されてよく、それによって、「修飾ヌクレオチド」が得られる。「ヌクレオチド」中の天然の塩基も、７−デスアザプリンなどによって置換されてよく、それによって、同様に「修飾ヌクレオチド」が得られる。用語「修飾ヌクレオチド」又は「ヌクレオチド類似体」は、本願において交換可能に使用される。「修飾ヌクレオシド」（又は「ヌクレオシド類似体」）は、「修飾ヌクレオチド」（又は「ヌクレオチド類似体」）について上で概説した方法による何らかの修飾によって、天然のオリゴヌクレオシドとは異なる。

ｔｃｄＢをコードする核酸分子、例えば、ｔｃｄＢの別の部分をコードする核酸、を増幅する修飾オリゴヌクレオチド及びオリゴヌクレオチド類似体を含むオリゴヌクレオチドは、例えば、ＯＬＩＧＯ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ Ｉｎｓｉｇｈｔｓ Ｉｎｃ．， Ｃａｓｃａｄｅ、Ｃｏｌｏ．）などのコンピュータプログラムを使用して設計されることができる。増幅プライマーとして使用されるオリゴヌクレオチドを設計するときの重要な特徴は、例えば、（電気泳動などによる）検出を容易化するための適切なサイズの増幅産物、一対のプライマーのメンバーに関する類似した融解温度、及び各プライマーの長さ（すなわち、プライマーは、配列特異的にアニールするため及び合成を開始するために十分に長い必要があるが、オリゴヌクレオチド合成の間にフィデリティーが減少するほど長い必要はない）。典型的に、オリゴヌクレオチドプライマーは、８〜５０ヌクレオチドの長さ（例えば、８、１０、１２、１４、１６、１８、２０、２２、２４、２６、２８、３０、３２、３４、３６、３８、４０、４２、４４、４６、４８又は５０ヌクレオチドの長さ）である。

本発明の方法は、Ｃ．ディフィシルの存在又は不存在を検出するために、一組のプライマーに加えて１又は２以上のプローブを使用してよい。用語「プローブ」は、定義された所定のストリンジェンシーでそれらが「標的核酸」、本発明の場合にはｔｃｄＢ（標的）核酸、に特異的に（すなわち、優先的に）ハイブリダイズすることを可能とする特異的なヌクレオチド配列を設計又は選択によって含有する、合成により又は生物学的に生成された核酸（ＤＮＡ又はＲＮＡ）をさす。「プローブ」は、それが標的核酸を検出することを意味する「検出プローブ」と呼ばれることができる。

本発明によれば、ｔｃｄＢプローブは、少なくとも１つの蛍光標識で標識されることができる。一実施態様において、ｔｃｄＢプローブは、蛍光色素などのドナー蛍光部位及びクエンチャーなどの対応するアクセプター蛍光部位で標識されることができる。

本発明の一実施態様において、少なくとも１つのプローブは、蛍光部位及び（標識を含まず示される）配列番号７、８及び９からなる群から選択される核酸配列を含むか又はそれからなる。

ハイブリダイゼーションプローブとして使用されるオリゴヌクレオチドを設計することは、プライマーの設計と同様のやり方で実施されることができる。本発明の実施態様は、増幅産物の検出のために単一のプローブ又は一対のプローブを使用してよい。実施態様によって、プローブ（複数可）の使用は、少なくとも１つの標識及び／又は少なくとも１つのクエンチャー部位を含んでよい。プライマーと同様に、プローブは通常、類似する融解温度を有し、各プロ−ブの長さは、配列特異的なハイブリダイゼーションが起こるのに十分でなくてはならないが、合成の間にフィデリティーが減少するほど長くてはならない。一般に、オリゴヌクレオチドプローブは１５〜３０（例えば、１６、１８、２０、２２、２４又は２５）ヌクレオチドの長さである。

本発明の構築物は、（配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９などの）ｔｃｄＢ核酸分子を含有するベクターを含む。本発明の構築物は、例えば、コントロールテンプレート核酸分子として使用されることができる。本発明における使用に好適なベクターは、市販されており及び／又は本分野において日常的な組換え核酸技術の方法によって産生される。ｔｃｄＢ核酸分子は、例えば、化学合成、Ｃ．ディフィシルからの直接クローニング又はＰＣＲ増幅によって得られることができる。

典型的に、本発明の方法における使用に好適な構築物は、ｔｃｄＢ核酸分子（例えば、配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９の１又は２以上の配列を含有する核酸分子）に加えて、所望の構築物及び／又は形質転換体を選択するための（抗生物質耐性遺伝子などの）選択マーカーをコードする配列及び複製の起点を含む。ベクター系の選択は、通常、宿主細胞の選択、複製効率、選択可能性、誘導可能性及び回収の容易性を含むが、これらに限定されない数種の因子に依存する。

ｔｃｄＢ核酸分子を含有する本発明の構築物は、宿主細胞中で増幅させることができる。本明細書で使用されるとおり、宿主細胞という用語は、原核生物並びに酵母、植物及び動物細胞などの真核生物を含むことを意味する。原核生物宿主は、Ｅ．コリ（E.coli）、サルモネラ・ティフィムリウム（Salmonella typhimurium）、セラチア・マルセッセンス（Serratia marcescens）及びバシラス・スブチリス（Bacillus subtilis）を含んでよい。真核生物宿主は、Ｓ．セレビシアエ（S.cerevisiae）、Ｓ．ポンベ（S.pombe）、ピキア・パストリス（Pichia pastoris）などの酵母、ＣＯＳ細胞又はチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞などの哺乳動物細胞、昆虫細胞及びアラビドプシス・タリアーナ（Arabidopsis thaliana）及びニコチアナ・タバクム（Nicotiana tabacum）などの植物細胞を含む。本発明の構築物は、本分野の当業者に一般に知られた任意の技術を用いて宿主細胞中に導入されることができる。例えば、リン酸カルシウム沈殿、エレクトロポーレーション、ヒートショック、リポフェクション、マイクロインジェクション及びウイルス媒介核酸導入は、核酸を宿主細胞中に導入するための一般的な方法である。さらに、裸ＤＮＡが細胞に直接送達されることができる（例えば、米国特許第５，５８０、８５９及び同第５，５８９，４６６号を参照のこと）。

ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）
米国特許第４，６８３，２０２号、同第４，６８３，１９５号、同第４，８００，１５９号及び同第４，９６５，１８８号は、慣用のＰＣＲ技術を開示する。典型的に、ＰＣＲは、選択された（ＤＮＡ又はＲＮＡなどの）核酸テンプレートに結合する２つのオリゴヌクレオチドプライマーを使用する。本発明において有用なプライマーは、ｔｃｄＢ核酸配列内で核酸合成の開始点として作用することのできるオリゴヌクレオチドを含む（例えば、配列番号１、２、３、４、５及び６）。プライマーは、慣用方法によって制限消化物から精製されることができるか、又は合成により生成されることができる。最大効率のためにはプライマーは一本鎖であることが好ましいが、二本鎖であることもできる。二本鎖プライマーは、最初に変性される、すなわち、鎖を分離するために処理される。二本鎖核酸を変性させるための１つの方法は、加熱による。

テンプレート核酸が二本鎖である場合、ＰＣＲにおいてテンプレートとして使用される前に２つの鎖を分離することが必要である。鎖の分離は、物理的、化学的又は酵素的手段を含む任意の好適な変性方法によって達成されることができる。核酸鎖を分離する１つの方法は、その大部分が変性される（例えば、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％又は９５％超が変性される）まで核酸を加熱することを含む。テンプレート核酸を変性させるために必要な加熱条件は、例えば、緩衝液の塩濃度及び変性される核酸の長さ及びヌクレオチド組成に依存するが、典型的には、温度及び核酸の長さなどの反応の特徴に依存する時間の間、約９０℃〜約１０５℃の範囲にわたる。典型的に、変性は約３０秒〜４分（例えば、１分〜２分又は１．５分）の間、実施される。

二本鎖テンプレート核酸が熱により変性させられる場合、反応混合物は、各プライマーのｔｃｄＢ核酸上のその標的配列へのアニーリングを促進する温度まで放冷される。アニーリングのための温度は、通常、約３５℃〜約６５℃（例えば、約４０℃〜約６０℃；約４５℃〜約５０℃）である。アニーリング時間は、約１０秒〜約１分（例えば、約２０秒〜約５０秒；約３０秒〜約４０秒）であることができる。次いで、反応混合物は、ポリメラーゼの活性が促進される又は最適化される温度、すなわち、アニールされたプライマーから延長が起こって、テンプレート核酸に相補的な生成物を産生するために十分な温度に調節される。温度は、核酸テンプレートにアニールされる各プライマーから延長産物を合成するために十分でなければならないが、その相補的テンプレートからの延長産物を変性させるほど高くてはならない（例えば、延長のための温度は、一般に、約４０℃〜約８０℃（例えば、約５０℃〜約７０℃；約６０℃）の範囲に及ぶ）。延長時間は、約１０秒〜約５分（例えば、約３０秒〜約４分；約１分〜約３分；約１分３０秒〜約２分）であることができる。

ＰＣＲアッセイは、ＲＮＡ又はＤＮＡ（ｃＤＮＡ）などのＣ．ディフィシル核酸を使用することができる。テンプレート核酸は、精製される必要はなく；それは、ヒト細胞中に含有されるＣ．ディフィシル核酸などの複雑な混合物の小部分であってよい。Ｃ．ディフィシル核酸は、Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ． Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ （Ｐｅｒｓｉｎｇ他（編）、１９９３年、Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ， Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ Ｄ．Ｃ．）に記載されたものなどの日常的技術によって生物学的サンプルから抽出されてよい。核酸は、プラスミド又は細菌、酵母、ウイルス、オルガネラ又は植物若しくは動物などの高等生物を含む天然の供給源などの任意の数の供給源から得られることができる。

オリゴヌクレオチドプライマー（例えば、配列番号１、２、３、４、５及び６）は、プライマーの伸長を誘導する反応条件下でＰＣＲ試薬と混合される。例えば、鎖延長反応は、一般に、５０ｍＭ ＫＣｌ、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ-ＨＣｌ（ｐＨ８．３）、１５ｍＭ ＭｇＣｌ₂、０．００１％（ｗ／ｖ）ゼラチン、０．５〜１．０μｇの変性テンプレートＤＮＡ、５０ｐｍｏｌの各オリゴヌクレオチドプライマー、２．５ＵのＴａｑポリメラーゼ及び１０％ ＤＭＳＯを含む。通常、反応は、ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＴＴＰ、ｄＧＴＰ又は１若しくは２以上のその類似体をそれぞれ、１５０〜３２０μＭ含有する。

新たに合成された鎖は、反応の後続のステップにおいて使用されることのできる二本鎖分子を形成する。鎖の分離、アニーリング及び伸長のステップは、標的ｔｃｄＢ核酸分子に対応する所望の量の増幅産物を産生するために必要な回数、繰り返される。反応における制限因子は、反応中に存在するプライマー、耐熱性酵素及びヌクレオシド三リン酸の量である。サイクルステップ（すなわち、変性、アニーリング及び伸長）は、少なくとも１回繰り返されることが好ましい。検出における使用のために、サイクルステップの数はサンプルの性質などに依存する。サンプルが核酸の複雑な混合物である場合、検出に十分な標的配列を増幅するために、より多くのサイクルステップが必要とされる。一般に、サイクルステップは、少なくとも約２０回繰り返されるが、４０、６０又は１００回でも繰り返されてよい。

蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）
ＦＲＥＴ技術（例えば、米国特許第４，９９６，１４３号、同第５，５６５，３２２号、同第５，８４９，４８９号及び同第６，６１２，６０３号を参照のこと）は、ドナー蛍光部位及び対応するアクセプター蛍光部位がお互いに一定の距離以内に位置するとき、可視化されることができるか又は別の方法で検出され及び／又は定量化されることのできるエネルギー移動が該２つの蛍光部位の間に起こるという概念に基づく。ドナーは、典型的に、ドナーが好適な波長の光照射によって励起された場合、エネルギーをアクセプターに移動させる。アクセプターは、典型的に、移動されたエネルギーを異なる波長の光放射の形態で再放射する。

一例において、オリゴヌクレオチドプローブは、ドナー蛍光部位及び移動されたエネルギーを光以外の形態で消散させる、対応するクエンチャーを含有することができる。プローブが完全である場合、ドナー蛍光部位からの蛍光発光が消光されるように、エネルギー移動は典型的に上記２つの蛍光部位の間で発生する。ポリメラーゼ連鎖反応の延長ステップの間、増幅産物に結合したプローブは、ドナー蛍光部位の蛍光発光がそれ以上消光されないように、Ｔａｑ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅなどの５’−３’エキソヌクレアーゼ活性によって切断される。この目的のための代表的なプローブは、例えば、米国特許第５，２１０、０１５号、同第５，９９４，０５６号及び同第６，１７１，７８５号に記載されている。よく使用されるドナー−アクセプター対は、ＦＡＭ−ＴＡＭＲＡ対である。よく使用されるクエンチャーは、ＤＡＢＣＹＬ及びＴＡＭＲＡである。よく使用されるダーククエンチャーは、ＢｌａｃｋＨｏｌｅ Ｑｕｅｎｃｈｅｒｓ（商標）（ＢＨＱ）、（Ｂｉｏｓｅａｒｃｈ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ， Ｉｎｃ．， Ｎｏｖａｔｏ， Ｃａｌ．）、Ｉｏｗａ Ｂｌａｃｋ（商標）、（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈ．， Ｉｎｃ．， Ｃｏｒａｌｖｉｌｌｅ， Ｉｏｗａ）、ＢｌａｃｋＢｅｒｒｙ（商標）Ｑｕｅｎｃｈｅｒ ６５０（ＢＢＱ−６５０）、（Ｂｅｒｒｙ ＆ Ａｓｓｏｃ．， Ｄｅｘｔｅｒ， Ｍｉｃｈ.）を含む。

別の例において、それぞれが蛍光部位を含有する２つのオリゴヌクレオチドプローブは、該オリゴヌクレオチドプローブのｔｃｄＢ標的核酸配列への相補性により決定される特定の位置において増幅産物にハイブリダイズすることができる。適切な位置における増幅産物核酸へのオリゴヌクレオチドプローブのハイブリダイゼーションに際して、ＦＲＥＴシグナルが生成される。ハイブリダイゼーション温度は、約１０秒〜約１分の間、約３５℃〜約６５℃の範囲に及ぶ。

蛍光の分析は、例えば、（適切なダイクロイックミラー及び特定の範囲における蛍光発光をモニターするためのフィルターを含む）光子計数落射蛍光顕微鏡システム、光子計数光電子増倍システム又は蛍光光度計を用いて実施されることができる。エネルギー移動を開始するための励起は、アルゴンイオンレーザー、高輝度水銀（Ｈｇ）アークランプ、光ファイバー光源、又は所望の範囲における励起のために適切にフィルター処理された他の高輝度光源によって実施されることができる。

ドナー及び対応するアクセプター蛍光部位に関して本明細書で使用される「対応する」は、ドナー蛍光部位の励起スペクトルと重複する発光スペクトルを有するアクセプター蛍光部位をさす。アクセプター蛍光部位の発光スペクトルの最大波長は、ドナー蛍光部位の励起スペクトルの最大波長よりも少なくとも１００ｎｍ大きくなくてはならない。したがって、効率的な非放射型エネルギー移動がその間で発生し得る。

蛍光ドナー及び対応するアクセプター部位は、一般に、（ａ）高効率のフォルスター型エネルギー移動；（ｂ）大きな最終ストークスシフト（＞１００ｎｍ）；（ｃ）可視スペクトルの赤色部分（＞６００ｎｍ）への可能な限りの発光のシフト；及び（ｄ）ドナーの励起波長における励起により発生したラマン水蛍光発光よりも大きな波長への発光のシフト、に関して選択される。例えば、ドナー蛍光部位は、レーザー光線（例えば、ヘリウム−カドミウムの４４２ｎｍ又はアルゴンの４８８ｎｍ）に近いその励起極大、高い消散 係数、高い量子収率及び対応するアクセプター蛍光部位の励起スペクトルとその蛍光発光との良好な重複を有するものが選択されうる。対応するアクセプター蛍光部位は、高い消散係数、高い量子収率、ドナー蛍光部位の発光とその励起との良好な重複及び可視スペクトルの赤色部分（＞６００ｎｍ）における発光を有するものが選択されうる。

ＦＲＥＴ技術において様々なアクセプター蛍光部位とともに使用されることのできる代表的なドナー蛍光部位は、フルオレセイン、Ｌｕｃｉｆｅｒ Ｙｅｌｌｏｗ、Ｂ−フィコエリトリン、９−アクリジンイソチオシアネート、Ｌｕｃｉｆｅｒ Ｙｅｌｌｏｗ ＶＳ、４−アセトアミド−４’−イソチオシアナトスチルベン−２，２’−ジスルホン酸、７−ジエチルアミノ−３−（４’−イソチオシアナトフェニル）−４−メチルクマリン、スクシミニジル１−ピレンブチレート及び４−アセトアミド−４’−イソチオシアナトスチルベン−２，２’−ジスルホン酸誘導体を含む。代表的なアクセプター蛍光部位は、使用されるドナー蛍光部位に依存して、ＬＣ Ｒｅｄ ６４０、ＬＣ Ｒｅｄ ７０５、Ｃｙ５、Ｃｙ５．５、ＬｉｓｓａｍｉｎローダミンＢスルホニルクロライド、テトラメチルローダミンイソチオシアネート、ローダミンｘイソチオシアネート、エリスロシンイソチオシアネート、フルオレセイン、ジエチレントリアミン五酢酸又は（ユーロピウム又はテルビウムなどの）ランタニドイオンの他のキレートを含む。ドナー及びアクセプター蛍光部位は、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ（Ｊｕｎｃｔｉｏｎ Ｃｉｔｙ， Ｏｒｅｇ．）又はＳｉｇｍａ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．（Ｓｔ． Ｌｏｕｉｓ Ｍｏ．）から入手可能である。

ドナー及びアクセプター蛍光部位は、リンカーアームを介して適切なプローブオリゴヌクレオチドに結合されることができる。リンカーアームはドナー及びアクセプター蛍光部位の間の距離に影響するため、各リンカーアームの長さは重要である。本発明の目的のためのリンカーアームの長さは、ヌクレオチド塩基から蛍光部位までのオングストローム（Å）で表した距離である。一般に、リンカーアームは、約１０Å〜約２５Åである。リンカーアームは、ＰＣＴ国際特許出願公開第ＷＯ８４／０３２８５号に記載された種類のものであってよい。ＰＣＴ国際特許出願公開第ＷＯ８４／０３２８５号は、リンカーアームを特定のヌクレオチド塩基に結合するための方法及び蛍光部位をリンカーアームに結合するための方法も記載する。

ＬＣ Ｒｅｄ ６４０−ＮＨＳ−エステルなどのアクセプター蛍光部位は、（ＡＢＩ（Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ， Ｃａｌｉｆ）Ｇｌｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ（Ｓｔｅｒｌｉｎｇ， Ｖａ．）から入手可能な）Ｃ６−ホスホラミダイトと組み合わされて、ＬＣ Ｒｅｄ ６４０−ホスホラミダイトなどを生成することができる。フルオレセインなどのドナー蛍光部位をオリゴヌクレオチドにカップリングするために頻繁に使用されるリンカーは、チオ尿素リンカー（ＦＩＴＣ由来のもの、例えば、Ｇｌｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ又はＣｈｅｍＧｅｎｅ（Ａｓｈｌａｎｄ，Ｍａｓｓ．）からのフルオレセインＣＰＧ）、アミド−リンカー（フルオレセインＮＨＳ−エステル由来のもの、例えば、ＢｉｏＧｅｎｅｘ（Ｓａｎ Ｒａｍｏｎ， Ｃａｌｉｆ．）からのフルオレセインＣＰＧ）又はオリゴヌクレオチド合成後にフルオレセイン−ＮＨＳ−エステルのカップリングを必要とする３’−アミノ−ＣＰＧを含む。

クロストリジウム-ディフィシルの検出
本発明は、生物学的サンプル又は非生物学的サンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在を検出するための方法を提供する。請求項に記載の方法は、ランからランへの持ち越し汚染などのサンプル汚染、感受性などの偽陰性及び特異性などの偽陽性の問題を回避することができる。上記方法は、一対のｔｃｄＢプライマーを用いてサンプルからのｔｃｄＢ核酸分子の一部を増幅すること及びＦＲＥＴ検出ステップを含む少なくとも１つのサイクルステップを実施することを含む。複数のサイクルステップが、好ましくはサーモサイクラー中で実施される。本発明の方法は、ｔｃｄＢの存在を検出するためのｔｃｄＢプライマー及びプローブを用いて実施されることができ、ｔｃｄＢの検出は、サンプル中のＣ．ディフィシルの存在を示す。

本明細書に記載のとおり、ＦＲＥＴ技術を利用した標識ハイブリダイゼーションプローブを用いて、増幅産物が検出されることができる。１つのＦＲＥＴフォーマットは、増幅産物の存在又は不存在、したがって、Ｃ．ディフィシルの存在又は不存在を検出するためにＴａｑＭａｎ（登録商標）技術を利用する。ＴａｑＭａｎ（登録商標）技術は、２つの蛍光部位で標識された１つの一本鎖ハイブリダイゼーションプローブを利用する。第一蛍光部位が好適な波長の光で励起されたとき、吸収されたエネルギーは、ＦＲＥＴの原理にしたがって、第二蛍光部位に移動される。第二蛍光部位は、一般に、クエンチャー分子である。ＰＣＲ反応のアニーリングステップの間、標識されたハイブリダイゼーションプローブは、標的ＤＮＡ（すなわち、増幅産物）に結合し、後続の伸長相の間にＴａｑポリメラーゼの５’−３’エキソヌクレアーゼ活性によって分解される。その結果、励起された蛍光部位及びクエンチャー部位が、お互いに空間的に分離される。結論として、クエンチャーの不存在下における第一蛍光部位の励起に際して、第一蛍光部位からの蛍光発光が検出されることができる。例として、ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ（登録商標）７７００ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ， Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ， ＣＡ）は、ＴａｑＭａｎ（登録商標）技術を使用し、サンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在を検出するための、本明細書に記載の方法を実施するのに好適である。

ＦＲＥＴと併せた分子標識も、本発明のリアルタイムＰＣＲ法を用いて増幅産物の存在を検出するために使用されることができる。分子標識技術は、第一蛍光部位及び第二蛍光部位によって標識されたハイブリダイゼーションプローブを使用する。第二蛍光部位は、一般にクエンチャーであり、蛍光標識は、典型的にプローブの各末端に配置される。分子標識技術は、（ヘアピンなどの）二次構造の形成を許容する配列を有するプローブオリゴヌクレオチドを使用する。プローブ内での二次構造形成の結果として、両蛍光部位は、プローブが溶液中にあるとき、空間的に近接する。標的核酸（すなわち、増幅産物）へのハイブリダイゼーション後、プローブの二次構造は破壊されて、好適な波長の光による励起後に第一蛍光部位の発光が検出できるように、蛍光部位がお互いに分離される。

別の一般的フォーマットのＦＲＥＴ技術は、２つのハイブリダイゼーションプローブを利用する。各プローブは異なる蛍光部位で標識されることができ、一般に、（増幅産物などの）標的ＤＮＡ分子内でお互いに密接してハイブリダイズするように設計される。ドナー蛍光部位、例えば、フルオレセインは、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）機器の光源により、４７０ｎｍにおいて励起される。ＦＲＥＴの間、フルオレセインはそのエネルギーをＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）−Ｒｅｄ ６４０（ＬＣ Ｒｅｄ ６４０）又はＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）−Ｒｅｄ−７０５（ＬＣ Ｒｅｄ ７０５）などのアクセプター蛍光部位へ移動させる。次いで、アクセプター蛍光部位は、より長波長の光を放射し、これは、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）機器の光検出システムによって検出される。効率的なＦＲＥＴは、蛍光部位が直接局所的に近接している場合及びドナー蛍光部位の発光スペクトルがアクセプター蛍光部位の吸収スペクトルと重複する場合にのみ起こる。発光シグナルの強度は、元の標的ＤＮＡ分子の数（例えば、Ｃ．ディフィシルゲノムの数）と相関させられ得る。ｔｃｄＢ核酸の増幅が起こり、増幅産物が産生される場合、ハイブリダイズステップは、プローブ対のメンバー間にＦＲＥＴに基づく検出可能なシグナルを生じさせる。

一般に、ＦＲＥＴの存在は、サンプル中のＣ．ディフィシルの存在を示し、ＦＲＥＴの不存在は、サンプル中のＣ．ディフィシルの不存在を示す。しかしながら、不十分な検体採取、輸送の遅れ、不適切な輸送条件又は一定の採取用スワブの使用（アルギン酸カルシウム又はアルミニウムシャフト）は、すべて、試験結果の成功及び／又は正確性に影響しうる条件である。本明細書に記載の方法を用いて、例えば、４５回以内のサイクルステップにおけるＦＲＥＴの検出は、Ｃ．ディフィシル感染症を示す。

本発明の方法の実施において使用可能な代表的な生物学的サンプルは、皮膚スワブ、鼻スワブ、創傷スワブ、血液培養、皮膚及び軟組織感染物を含むが、これらに限定されない。生物学的サンプルの採取及び貯蔵方法は、本分野の当業者に知られている。生物学的サンプルは、（本分野で知られた核酸抽出の方法及び／又はキットなどによって）処理されて、Ｃ．ディフィシル核酸を放出するか、又はいくつかの場合には、生物学的サンプルは、ＰＣＲ反応構成要素及び適切なオリゴヌクレオチドと直接的に接触させられることができる。

融解曲線の解析は、サイクルプロフィールに含まれ得る追加のステップである。融解曲線の解析は、ＤＮＡが、融解温度（Ｔｍ）と呼ばれる特徴的温度で融解することに基づき、これは、ＤＮＡ二本鎖の半分が一本鎖に分離された温度として定義される。ＤＮＡの融解温度は、主にそのヌクレオチド組成に依存する。したがって、Ｇ及びＣヌクレオチドに富むＤＮＡ分子は、豊富なＡ及びＴヌクレオチドを含むものよりも高いＴｍを有する。シグナルが消える温度を検出することによって、プローブの融解温度が決定されることができる。同様に、シグナルが生じる温度を検出することによって、プローブのアニーリング温度が決定されることができる。ｔｃｄＢ増幅産物からのｔｃｄＢプローブの融解温度（複数可）により、サンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在を確認することができる。

サーモサイクラーの各ランの中で、コントロールサンプルも同様にサイクル処理される（cycled）。ポジティブコントロールサンプルは、例えば、コントロールプライマー及びコントロールプローブを用いて、Ｃ．ディフィシル核酸の（ｔｃｄＢ以外の）コントロールテンプレートを増幅することができる。ポジティブコントロールサンプルは、例えば、ｔｃｄＢ核酸分子を含有するプラスミド構築物も増幅することができる。そのようなプラスミドコントロールは、（サンプル内などの）内部で又は患者サンプルと並行する別のサンプルのランにおいて増幅されることができる。サーモサイクラーの各ランは、例えば、Ｃ．ディフィシルテンプレートＤＮＡを欠くネガティブコントロールも含むことができる。そのようなコントロールは、増幅、ハイブリダイゼーション及び／又はＦＲＥＴ反応の成功又は失敗の指標である。したがって、コントロール反応は、例えば、配列特異的にアニールし、伸長を開始するプライマーの能力並びに配列特異的にハイブリダイズし、ＦＲＥＴを起こさせるプローブの能力を容易に決定することができる。

ある実施態様において、本発明の方法は、汚染を回避するためのステップを含む。例えば、サーモサイクラーの１つのランと次のランの間の汚染を低減又は排除するためにウラシル−ＤＮＡグリコシラーゼを利用する酵素的方法は、米国特許第５，０３５，９９６号、同第５，６８３，８９６号及び同第５，９４５，３１３号に記載されている。

本発明の方法を実施するために、ＦＲＥＴ技術と併せた慣用のＰＣＲ法が使用されることができる。一実施態様において、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）機器が使用される。以下の特許出願は、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）技術において使用されるリアルタイムＰＣＲを記載する：ＰＣＴ国際特許出願公開第ＷＯ９７／４６７０７号、同第ＷＯ９７／４６７１４号及び同第ＷＯ９７／４６７１２号。

ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）は、ＰＣワークステーションを用いて操作されることができ、Ｗｉｎｄｏｗｓ（登録商標） ＮＴオペレーティングを使用することができる。サンプルからのシグナルは、機器が光学ユニットの上に順次キャピラリーを配置するのに従って得られる。ソフトウエアは、各測定の直後にリアルタイムで蛍光シグナルを表示することができる。蛍光の取得時間は、１０〜１０００ミリ秒（ｍｓｅｃ）である。各サイクルステップの後、すべてのサンプルについて蛍光の定量的表示対サイクル数が、持続的に更新されることができる。生成されたデータは、さらなる分析のために保存されることができる。

ＦＲＥＴの代わりとして、蛍光ＤＮＡ結合色素（例えば、ＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｒｅｅｎ又はＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｏｌｄ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ））などの二本鎖ＤＮＡ結合色素を用いて増幅産物が検出されることができる。二本鎖核酸との相互作用に際して、そのような蛍光ＤＮＡ結合色素は、好適な波長の光による励起後に蛍光シグナルを放射する。核酸インターカレーター性色素などの二本鎖ＤＮＡ結合色素も使用されることができる。二本鎖ＤＮＡ結合色素が使用される場合、増幅産物の存在の確認のために融解曲線解析が通常実施される。

本発明が１又は２以上の市販の機器の構成によって限定されないことは理解される。

製品／キット
本発明は、さらに、Ｃ．ディフィシルを検出するための製品又はキットを提供する。本発明による製品は、Ｃ．ディフィシルを検出するために使用されるプライマー及び／又はプローブを、好適な包装材料とともに含むことができる。Ｃ．ディフィシルの検出のための代表的なプライマー及びプローブは、ｔｃｄＢ核酸分子にハイブリダイズすることができる。さらに、キットは、固体支持体、緩衝液、酵素及びＤＮＡ標準品などのＤＮＡの固定化、ハイブリダイゼーション及び検出のために必要な適切に包装された試薬及び材料を含んでもよい。プライマー及びプローブを設計する方法は本明細書に記載され、ｔｃｄＢ核酸分子を増幅し、それにハイブリダイズするプライマー及びプローブの代表例が提供される。

本発明の製品は、プローブを標識するための１又は２以上の蛍光部位も含むことができ、或いは、キットとともに供給されるプローブが標識されることができる。例えば、製品は、ｔｃｄＢプローブの一方を標識するためのドナー蛍光部位及び他方のｔｃｄBプローブを標識するためのアクセプター蛍光部位をそれぞれ含んでもよい。好適なＦＲＥＴドナー蛍光部位及び対応するアクセプター蛍光部位が、上で提供される。

本発明の製品は、サンプル中のＣ．ディフィシルを検出するためのｔｃｄＢプライマー及びプローブを使用するための指示をそこに有する添付文書又は包装ラベルも含むことができる。製品はさらに、本明細書に開示された方法を実施するための試薬（例えば、緩衝液、ポリメラーゼ酵素、補因子又は汚染を予防するための作用物質）を含んでもよい。そのような試薬は、本明細書に記載の市販の機器の１つに特有なものであってよい。

本発明は、以下の実施例においてさらに説明されるが、これは、特許請求の範囲に記載された発明の範囲を限定するものではない。

以下の実施例及び図面は、本発明の理解を助けるために提供され、その真の範囲は添付の特許請求の範囲に示される。本発明の精神を離れることなく、示される手順において改変が行われ得ることは理解されるであろう。

実施例１
Ｃ．ソルデリイとの交差反応性

３つの活性化したマスターミックス（ＭＭｘ）は、以下のプライマーセット：ａ）ＣＤＢ２０３ＢＺ／ＣＤＢ２０２ＢＺ（配列番号２及び４のアルキル化型−両プライマーは３’末端塩基において（ベンジル）アルキル化されている、ｂ）ＣＤＢ２１１ＢＺ／ＣＤＢ２１４Ｎ、フォワードプライマーは（ベンジル）アルキル化されており、リバースプライマーはアルキル化されていない、及びｃ）ＣＤＢ２０５ＢＺ／ＣＤＢ２０４ＢＺ（配列番号３及び５のアルキル化型−両プライマーは３’末端塩基において（ベンジル）アルキル化されている、からなり、検出のための裸のプローブである同じプローブＣＤＢ２４２ＨＱ６（配列番号９）を用いて試験した。

テンプレートを含まないコントロール緩衝液とともに、３回繰り返しのインプット量１＋Ｅ３ゲノム相当数（genomic equivalent）（ｇｅ）のＴｏｘ０並びに６回繰り返しのインプット量１＋Ｅ６ｇｅの専在種（exclusivity species）Ｃ．ソルデリイ１１２７９及び１１２６６のゲノムＤＮＡテンプレートを、ＬＣ４８０ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔにおいて３つの活性化したＭＭｘにより増幅した。１００ｂｐの分子量マーカーとともに各テンプレートについて反応をゲル上で行った（図１Ａ〜Ｃ）。

ゲルデータは、ポジティブコントロールテンプレートに関して、最も特異的なＰＣＲ産物が、ＣＤＢ２１１ＢＺ／１２４Ｎ、次にＣＤＢ２０３ＢＺ／２０２ＢＺ、そしてＣＤＢ２０５ＢＺ／２０４ＢＺから生成し；ネガティブコントロールは、３つのプライマーセットによりいかなるＰＣＲ特異的産物も明らかにしなかったが、非特異的産物がプライマー対ＣＤＢ２１１ＢＺ／２１４Ｎについての現象であった。３つのプライマー対の中で、ＣＤＢ２１１ＢＺ／２１４Ｎのみが、テンプレートとして２つのＣ．ソルデリイ単離物１１２７２及び１１２６６を用いて可視的な特異的ＰＣＲ産物を生成した。ＣＤＢ２０３ＢＺ／２０２ＢＺは、時にはＣ．ソルデリイのゲノムテンプレートに対するＰＣＲ特異的産物を産生するが、該産物の収量はＣＤＢ２１１ＢＺ／２１４Ｎとは決して一致しなかった。（ＮＣ：テンプレートを含まないコントロール、ＰＣ：Ｃ．ｄｉｆｆ Ｔｏｘ ０ゲノムＤＮＡ、分子量マーカーとしての１００ｂｐラダー）

プライマー対ＣＤＢ２１１ＢＺ／２１４ＮによりＣ．ソルデリイの増幅が起こったが（図１Ｂ）、プローブは、いかなる増殖曲線も生じないＣ．ソルデリイに対する差別化が可能であった。

以上の発明は、明確性及び理解の目的のために詳細に記載されたが、本開示を読むことにより、本分野の当業者には、本発明の真の範囲を離れることなく、様々な形態及び細部の変更が行われ得ることが明らかである。例えば、上記のすべての技術及び装置は、様々な組合せで使用されることができる。

Claims (16)

1. サンプル中のＣ．ディフィシルを検出する方法であって：
   − 前記サンプルをｔｃｄＢプライマーのセットと接触させて、ｔｃｄＢの核酸が前記サンプル中に存在する場合には増幅産物を産生することを含む、増幅ステップを行い；
   − 前記増幅産物と、１又は２以上の検出可能なｔｃｄＢプローブとを接触させることを含む、ハイブリダイズステップを行い；そして
   − 前記増幅産物の存在又は不存在を検出すること、ここで前記増幅産物の存在は、前記サンプル中のＣ．ディフィシルの存在を示し、前記増幅産物の不存在は、前記サンプル中のＣ．ディフィシルの存在を示す、
   を含み、ここで前記ｔｃｄＢプライマーのセットにおける各プライマーは、配列番号１、２、３、４、５及び６からなる群から選択される配列又はその相補配列を含み、そして
   前記１又は２以上の検出可能なｔｃｄＢプローブは、配列番号７、８及び９からなる群から選択される配列又はその相補配列を含む、前記方法。
2. − 前記ハイブリダイズステップは、ドナー蛍光部位及び対応するアクセプター蛍光部位で標識化されるプローブと前記増幅産物とを接触させることを含み；そして
   − 前記検出ステップは、前記プローブのドナー蛍光部位とアクセプター蛍光部位との間の蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）の存在又は不存在を検出することを含み、ここで前記蛍光の存在又は不存在は、前記サンプル中のＣ．ディフィシルの存在又は不存在を示す、請求項１に記載の方法。
3. 前記増幅は、５’−３’エキソヌクレアーゼ活性を有するポリメラーゼ酵素を用いる、請求項１又は２に記載の方法。
4. 前記第一及び第二蛍光部位は、前記ブローブ上においてお互いに５個以下のヌクレオチドの範囲内に存在する、請求項２又は３に記載の方法。
5. 前記第二蛍光部位がクエンチャーである、請求項２〜４のいずれか１項に記載の方法。
6. 前記ｔｃｄＢプローブは、二次構造を形成することができる核酸配列を含み、ここで前記二次構造の形成によって、前記第一蛍光部位と第二蛍光部位との間が空間的に近接する、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
7. Ｃ．ディフィシルの核酸を検出するためのキットであって：
   − 配列番号１、２及び３からなる群から選択される配列又はその相補配列を含む、第一オリゴヌクレオチド；
   − 配列番号４、５及び６からなる群から選択される配列又はその相補配列を含む、第二オリゴヌクレオチド；並びに
   − 配列番号７、８及び９からなる群から選択される配列又はその相補配列を含む、検出可能に標識された第三オリゴヌクレオチド
   を含む、前記キット。
8. 検出可能に標識された前記第三オリゴヌクレオチドが、ドナー蛍光部位及び対応するアクセプター蛍光部位を含む、請求項７に記載のキット。
9. 請求項８に記載のキット。
   前記アクセプター蛍光部位がクエンチャーである、請求項８に記載のキット。
10. 以下の構成要素：ヌクレオシド三リン酸、核酸ポリメラーゼ、及び前記核酸ポリメラーゼの機能のために必要な緩衝液、の少なくとも１つをさらに含む、請求項７〜９のいずれか１項に記載のキット。
11. 配列番号１、２、３、４、５、６、７、８及び９からなる群から選択されるヌクレオチド配列又はその相補配列を含む、オリゴヌクレオチド。
12. 前記オリゴヌクレオチドが、少なくとも１つの修飾ヌクレオチドを含む、請求項１１に記載のオリゴヌクレオチド。
13. 前記オリゴヌクレオチドが、少なくとも１つの保存修飾変異（conservatively modified variation）を含む、請求項１１又は１２に記載のオリゴヌクレオチド。
14. 前記オリゴヌクレオチドが、４０個以下のヌクレオチドを有する、請求項１１〜１３のいずれか１項に記載のオリゴヌクレオチド。
15. １又は２以上の検出可能な標識をさらに含む、請求項１１〜１４のいずれか１項に記載のオリゴヌクレオチド。
16. 少なくとも１つの標識部位、及び／又は少なくとも１つのクエンチャー部位を含む、請求項１１〜１５のいずれか１項に記載のオリゴヌクレオチド。