JP2013040143A - 肝機能障害予防改善剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】オゾン化オリーブ油等のオゾン化油脂を有効成分とする肝機能障害予防改善剤、肝機能障害予防改善用飲食品及び肝機能障害予防改善用飼料とする。上記肝機能障害予防・改善剤は、肝臓脂肪蓄積を抑制、すなわち肝臓へのトリグリセリドの蓄積を抑制し、脂質のうちトリグリセリドのみを選択的に血中へ放出させることができ、また、血中のPAI−1の濃度を低減ないし上昇抑制する効果を有する。
【選択図】なし
Description
(1)オゾン化油脂を有効成分として含有することを特徴とする肝機能障害予防改善剤や、
(2)血中のプラスミノーゲン活性化抑制因子(PAI−1)の濃度の上昇を抑制するために用いられる上記(1)に記載の肝機能障害予防改善剤や、
(3)オゾン化油脂が、オゾン化オリーブ油であることを特徴とする上記(1)又は(2)に記載の肝機能障害予防改善剤や、
(4)オゾン化油脂を有効成分として含有し、肝機能障害予防改善作用がある旨の表示が付された肝機能障害予防改善用飲食品や、
(5)オゾン化油脂を有効成分として含有し、肝機能障害予防改善作用がある旨の表示が付された肝機能障害予防改善用飼料に関する。
得られた被検ラットの肝臓に含まれるトリグリセリド、コレステロール、リン脂質の各総量を測定するために、ラットから摘出した肝臓の総脂質成分をFolchらの方法(Folch J et al., J. Biol. Chem., 226, 497-509, 1957)により、以下の操作で抽出・濃縮して肝臓脂質抽出液を調製した。摘出した肝臓0.1gを7.5mLのメタノール、15mLのクロロホルムと共にホモジナイズし、その後37℃で30分加温し、クロロホルム・メタノール混合液(chloroform:methanol=2:1,v/v)を添加して25mLとした混合液を濾過した。続いて、濾液に蒸留水を約20%容加え、転倒混和し、一晩低温室(4℃)に静置した。静置後分離したクロロホルム層をアルゴンガス使用の下、エバポレーターを用いて減圧濃縮し、石油エーテルに再溶解して総量を25mLとした溶液を肝臓脂質抽出液とした。
肝臓トリグリセリド濃度については、Fletcherらの方法(Fletcher MJ. Et al., Clin. Chim. Acta., 22, 393-397, 1968)により定量した。Zucker(fa/fa)ラットについては0.5mL、Zucker(+/+)ラットについては2mLの肝臓脂質抽出液を乾燥し、それぞれ5mLのクロロホルムと1.0gのシリカゲル(Mallinckrodt Baker社製)を添加し、シェイカーで5分間振とうした後、遠心分離(3000rpm、10分、10℃)を行った。その上清を1mL採取して乾燥した後、2mLのイソプロパノール・蒸留水混合液(isopropanol:H2O=9:1,v/v)と0.6mLの5%KOH溶液(in isopropanol:H2O=2:3)を加え攪拌した後、60〜70℃の水浴中で30分間加温して鹸化を行った。室温に戻した後、1mLの0.003molメタ過ヨウ素酸ナトリウムと0.5mLのアセチルアセトン溶液を加えて攪拌し、50℃の水浴中で30分間加温して発色させた。再び室温に戻した後、波長405nmにおける吸光度を測定した。その結果を表3に示す。
肝臓コレステロール濃度については、コレステロールE−テストワコー(和光純薬工業株式会社製)を用いて、コレステロールオキシダーゼ・DAOS法(Allain C.C. et al., Clin. Chim. Acta., 20, 470-475, 1974)により測定した。1mLの肝臓脂質抽出液を乾燥し、10μLの10%トリトン(in isopropanol)を添加して攪拌し、続いて1.5mLの発色試薬を添加して攪拌した。その後、37℃で5分間加温し、1.5mLのクロロホルムを添加して、シェイカーで5分間振とうし、遠心分離(3000rpm,20分,10℃)を行い、その上清の波長600nmにおける吸光度を測定した。その結果を表3に示す。
肝臓リン脂質濃度については、Rouserらの方法(Fletcher MJ. et al., Clin. Chim. Acta., 22, 393-397, 1968)により定量した。0.5mLの肝臓脂質抽出液を乾燥し、1mLの70%過塩素酸を添加した後、溶液が無色になるまで180〜190℃で30〜60分間熱分解を行った。続いて、液温を室温に戻し、5mLの蒸留水と1mLの2.5%モリブデン酸アンモニウム溶液と1mLの10%アスコルビン酸水溶液とを添加して攪拌し、100℃の沸騰浴中で5分間加温して発色させた。再び室温に戻した後、波長820nmにおける吸光度を測定した。その結果を表3に示す。
得られた被検ラットの血清に含まれるトリグリセリド、コレステロール、リン脂質、遊離脂肪酸、グルコース濃度を測定した。
血清グリセリド濃度については、トリグリセライドE−テストワコー(和光純薬工業株式会社製)を用いて、GPO・DAOS法により、波長600nmにおける吸光度を測定して定量した。
血清コレステロール濃度については、コレステロールE−テストワコー(和光純薬工業株式会社製)を用いて、コレステロールオキシダーゼ・DAOS法により、波長600nmにおける吸光度を測定して定量した。その結果を表4に示す。
血清リン脂質濃度については、リン脂質C−テストワコー(和光純薬工業株式会社製)を用いて、コリンオキシダーゼ・DAOS法により、波長600nmにおける吸光度を測定して定量した。その結果を表4に示す。
血清遊離脂肪酸濃度については、NEFA C−テストワコー(和光純薬工業株式会社製)を用いて、ACS・ACOD法により、波長550nmにおける吸光度を測定して定量した。その結果を表4に示す。
血清グルコース濃度については、グルコースCII−テストワコー(和光純薬工業株式会社製)を用いて、ムタローゼ・GOD法により、波長505nmにおける吸光度を測定して定量した。その結果を表4に示す。
得られた被検ラットの血清に含まれる血清プラスミノーゲン活性化抑制因子(PAI−1)、血清C反応性タンパク(C-reactive protein;CRP)、血清インスリン、血清アディポネクチン、血清単球走化活性因子1(monocyte chemoattractant protein-1;MCP−1)濃度を測定した。
血清PAI−1濃度については、IMUCLONETMRat PAI-1 ELISA(American Diagnostica Inc.製)を用いてELISA法により測定した。その結果を表5に示す。
血清CRP濃度については、C-Reactive Protein ELISA Kit(Alpha Diagnostic International Inc.製)を用いてELISA法により測定した。その結果を表5に示す。
血清インスリン濃度については、レビス インスリン−ラットT(株式会社シバヤギ製)を用いてELISA法により測定した。その結果を表5に示す。
血清アディポネクチン濃度については、マウス/ラットアディポネクチンELISAキット(大塚製薬株式会社製)を用いてELISA法により測定した。その結果を表5に示す。
血清MCP−1濃度については、MCP-1 Rat ELISA Kit(Invitrogen製)を用いてELISA法により測定した。その結果を表5に示す。
得られた被検ラットの肝機能を、肝機能障害指標酵素としてアスパラギン酸アミノ基転移酵素(AST)活性及びアラニンアミノ基転移酵素(ALT)活性を測定することにより解析した。
AST活性については、トランスアミナーゼCII−テストワコー(和光純薬工業株式会社製)を用いて、POP・TOOS法により、波長555nmにおける吸光度を測定して定量した。その結果を表6に示す。
ALT活性については、トランスアミナーゼCII−テストワコー(和光純薬工業株式会社製)を用いて、POP・TOOS法により、波長555nmにおける吸光度を測定して定量した。その結果を表6に示す。
得られた被検ラットの肝臓における肝臓トリグリセリド代謝関連酵素活性を測定した。肝臓トリグリセリド代謝関連酵素としては、脂肪酸合成酵素(Fatty Acid Synthase;FAS)、カルニチンパルミトイルトランスフェラーゼ(Carnitine Palmitoyltransferase;CPT)、ペルオキシソームβ酸化(Peroxisomal β-oxidation)関連酵素、ホスファチジン酸ホスホハイドロレース(Phosphatidate phosphohydrolase;PAP)を測定し、測定試料として、ラットから摘出した肝臓のホモジネートを以下の操作で調製した。摘出した肝臓2gを6倍容の0.25Mのスクロース(和光純薬株式会社製)と1mMのEDTA(片山化学工業株式会社製)を含む10mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4)で氷冷下ホモジナイズした後、遠心分離(3000rpm,700×g,10分,4℃)を行った。続いて、その上清について遠心分離(12000rpm,10000×g,10分,4℃)を行い、ミトコンドリア画分を沈殿させた。さらにこの上清について遠心分離(40000rpm,125000×g,60分,4℃)を行い、上清の細胞質画分と沈殿したミクロソーム画分を得た。
脂肪酸合成酵素活性については、Kelleyらの方法(Kelley DS et al., Biochem. J., 235, 87-90, 1986)で測定した。アセチルCoA(Sigma-Aldrich社製) 0.05mM、NADPH(オリエンタル酵母株式会社製) 0.3mM、EDTA(片山化学工業株式会社製) 0.2mMを含む100mMリン酸カリウム緩衝液(pH7.0)に細胞質画分を添加し、30℃の下、波長340nmの吸光度を2分間計測することにより、ブランクでのNADPHの吸光度の減少を求めた。その後、最終濃度が0.2mMとなるようにマロニルCoA(Sigma-Aldrich社製)を添加して混和し、波長340nmの吸光度を3分間追跡して、次式に従い、マロニルCoA添加時に得られた反応時の吸光度の減少からブランクの吸光度の減少を差し引くことによりNADPHの減少速度を求め脂肪酸合成酵素活性を算出した。その結果を表7に示す。
脂肪酸合成酵素活性(nmol/min/mg protein)={(反応時の吸光度の減少−ブランクの吸光度の減少)/6220}×109×(反応液量mL/1000)×(1/測定時間min)×(1/タンパク質量mg)
なお、6220はNADPHのモル吸光係数である。
カルニチンパルミトイルトランスフェラーゼ活性については、Markwellらの方法(Markwell MA, et al., J. Biol. Chem., 248, 10, 3426-3432, 1973)で測定した。パルミトイルCoA(フナコシ株式会社製) 0.0375mM、5,5´−ジチオビス(2−ニトロ安息香酸)(DTNB)(東京化成工業株式会社製) 0.25mM、EDTA(片山化学工業株式会社製) 1.25mM、トリトンX−100(和光純薬株式会社製) 0.1%を含む58mMトリス塩酸緩衝液(pH8.0)にミトコンドリア画分を添加し、27℃の下、波長412nmの吸光度を5分間計測することによりブランクでの還元型DTNBの増加を求めた。その後、最終濃度が1.25mMとなるようにL−カルニチン(Sigma-Aldrich社製)を添加して、総反応液量1mLでの波長412nmの吸光度を3分間追跡して、次式に従い、L−カルニチン添加時に得られた反応時の吸光度の増加からブランクの吸光度の増加を差し引くことにより、CoAの生成速度を求め、カルニチンパルミトイルトランスフェラーゼ活性を算出した。その結果を表7に示す。
カルニチンパルミトイルトランスフェラーゼ活性(nmol/min/mg protein)={(反応時の吸光度の増加−ブランクの吸光度の増加)/13600}×109×(反応液量mL/1000)×(1/タンパク質量mg)
なお、13600はCoAのモル吸光係数である。
ペルオキシソームβ酸化活性については、Lazarowの方法(Lazarow PB, Methods Enzymol. Academic Press, New York, 72, 315-319, 1981)で測定した。NAD(オリエンタル酵母株式会社製)0.2mM、DTT(片山化学工業株式会社製) 1mM、牛血清アルブミン(Sigma-Aldrich社製) 75μg/mL、トリトンX−100(和光純薬株式会社製) 100μL、CoA(Sigma-Aldrich社製) 0.1mM、FAD(Sigma-Aldrich社製) 0.01mM、シアン化カリウム(片山化学工業株式会社製) 1mMを含む47mMトリス塩酸緩衝液(pH8.0)にミトコンドリア画分を添加し、37℃の下、波長340nmの吸光度を3分間計測することにより、ブランクでのNADHの吸光度の増加を求めた。その後、最終濃度が0.01mMとなるように1mMパルミトイルCoA(フナコシ株式会社製)を混合して、総反応液量1mLでの波長340nmの吸光度を5分間追跡して、次式に従い、パルミトイルCoA添加時に得られた反応時の吸光度の増加からブランクの吸光度の増加を差し引くことにより、NADHの生成速度を求め、ペルオキシソームβ酸化活性を算出した。その結果を表7に示す。
ペルオキシソームβ酸化活性(nmol/min/mg protein)={(反応時の吸光度の増加−ブランクの吸光度の増加)/6220}×109×(反応液量mL/1000)×(1/測定時間min)×(1/タンパク量mg)
なお、6220はNADHのモル吸光係数である。
ホスファチジン酸ホスホハイドロレース活性については、Waltonらの方法(Walton, P. A. et al., Anal. Biochem., 151, 479-486, 1985)で測定した。0.9%塩化ナトリウムを用いて超音波処理により混合させたホスファチジルコリン(Sigma-Aldrich社製) 1.0mM、EDTA(片山化学工業株式会社製) 1.25mMを含む50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.0)に最終濃度が3.25mMとなるよう塩化マグネシウム(和光純薬株式会社製)を添加した場合及び無添加の場合のそれぞれに対して、ミクロソーム画分を添加し、総容量を0.2mLとして、37℃で15分間インキュベートした。続いて、反応液に0.8mLの発色液(ラウリル硫酸ナトリウム(和光純薬株式会社製) 0.13%、アスコルビン酸 1.25%、モリブデン酸アンモニウム四水和物 0.32%を含む0.375M硫酸水溶液)を加え、45℃で20分間インキュベートすることにより反応生成物である無機リンを発色させ、波長820nmの吸光度を測定した。ホスファチジン酸(Sigma-Aldrich社製)とホスファチジルコリンが入っていない反応によりミクロソームからのリンの産生量を測定してブランクの無機リン量を求め、次式に従い、反応生成物である無機リン量を求めた。
無機リン産生量(μg)=反応によるリン産生量(ミクロソームからのリンの産生量+ホスファチジン酸とホスファチジルコリンからのリン産生量)
求めた無機リン産生量から次式に従いホスファチジン酸ホスホハイドロレース活性を算出した。その結果を表7に示す。
ホスファチジン酸ホスホハイドロレース活性(nmol/min/mg protein)=無機リン産生量×103×(1/30.97)×(1/15min)×(1/タンパク質mg)。
なお、リンの原子量を30.97とした。
糞中脂質排泄率を池田らの方法(池田邦夫、「脂質の機能」、食品機能研究法、株式会社光琳、平成12年、P21−24)で測定した。各ラットの屠殺直前の2日間の糞を採取し、凍結乾燥した後粉砕した。0.25gを精秤し、7〜8mLあたり2滴程度の濃塩酸(和光純薬株式会社製)を滴下したヘプタン・ジエチルエーテル・精製エタノール混液(heptane:diethyl ether:purified ethanol=1:1:1、v/v)を4mL加え、1分間シェイカーで振とうし、3000rpmで10分間遠心分離した。上層を一定量回収し、ヘプタン・ジエチルエーテル・精製エタノール・脱イオン水混液(1:1:1:1、v/v、上層のみ)を4mL加え、1分間シェイカーで振とうし、3000rpmで10分間遠心分離した。続いてこの操作をもう一度繰り返し、上層を回収後、乾燥して重量を測定した。その結果を表8に示す。
本発明のオゾン化油脂を摂食させることにより、被検ラットの肝臓重量が減少し、グリセリドの肝臓への蓄積が抑制された。オゾン化油脂摂食による脂肪酸合成・脂肪酸分解系酵素活性への影響は認められず、糞中脂質排泄率も変動が認められなかったのに対し、血清中のトリグリセリド濃度は上昇していたことから、オゾン化油脂がグリセリドを肝臓から血中に放出する作用を有していることが確認された。また、これとは逆に血中コレステロールは有意に低下しており、オゾン化油脂の作用はトリグリセリドのみに選択的であることが確認された。ラットの血清に含まれる炎症因子であるPAI−1、CRP、MCP−1濃度を測定した結果、摂食によりPAI−1、CRPは低下傾向を示し、MCP−1は上昇した。また、抗炎症因子であるアディポネクチンについては、血清濃度が減少した。これらの各測定結果については、単回帰分析、Tukey-Kramer法およびStudent’s t test(W.S. Gosset, Biometrika, vol. 6, no. 1, p1-25, 1908)によって検定を行い、危険率5%未満を有意差として分析した。単回帰分析の結果、トリグリセリドの肝臓への蓄積の抑制とCRP、MCP−1、アディポネクチン濃度との関連性は低く、トリグリセリドの肝臓への蓄積の抑制と正の相関を示すのは、PAI−1濃度のみであることがわかった(図1)。本発明のオゾン化油脂の肝機能障害予防改善作用が、血中のPAI−1濃度の抑制を介したものであることが確認された。
Claims (5)
- オゾン化油脂を有効成分として含有することを特徴とする肝機能障害予防改善剤。
- 血中のプラスミノーゲン活性化抑制因子(PAI−1)の濃度の上昇を抑制するために用いられる請求項1に記載の肝機能障害予防改善剤。
- オゾン化油脂が、オゾン化オリーブ油であることを特徴とする請求項1又は2に記載の肝機能障害予防改善剤。
- オゾン化油脂を有効成分として含有し、肝機能障害予防改善作用がある旨の表示が付された肝機能障害予防改善用飲食品。
- オゾン化油脂を有効成分として含有し、肝機能障害予防改善作用がある旨の表示が付された肝機能障害予防改善用飼料。
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