JP2011017003A - ヘパリン様化合物、その製造並びに血管傷害および介入による動脈血栓を阻害するための使用 - Google Patents

Abstract

【課題】コラーゲン誘発性の血小板凝集を阻害するヘパリン様化合物、及び血管または毛細血管の傷害および介入による動脈血栓の予防的処置における使用法の提供。
【解決手段】該ヘパリン様化合物は多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン、並びに球状コア分子に直接にもしくはスペーサー／リンカーを介して結合したこの多重ヘパリンもしくはヘパリン様グリコサミノグリカンまたは低分子量ヘパリンもしくはヘパリン様グリコサミノグリカンを含むプロテオグリカンにおいて存在する負に帯電したヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子の高いカップリング密度を有する。該ヘパリン様化合物は、哺乳類のマスト細胞から組織抽出または細胞培養によって得られ、動脈血栓およびその続発症の予防的処置において局所的（local）または局所的（topical）に適用するための調製物、手段およびデバイスを製造するのに有用である。
【選択図】なし

Description

本発明は、流動全血においてコラーゲン誘発性の血小板凝集をほぼ完全に阻害する能力によって特徴づけられ、さらに、天然のマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）またはそこから得られるヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子において第一に提示される独特の特性を付与する負に帯電したヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン単位のカップリング密度によって特徴づけられるヘパリン様化合物に関する。本発明はさらに、該ヘパリン様化合物の製造方法および血管の傷害および介入（インターベンション）による動脈血栓の予防的処置における使用に関する。

ヘパリンはグリコサミノグリカンであり、Ｄ−グルクロン酸と高度にＮ−硫酸化されたＤ−グルコサミンから構成される酸性ムコ多糖である。ヘパリンは、腸、肝臓、肺など多くの哺乳類組織においてプロテオグリカンの形態で存在し、例えば哺乳類の血管や漿膜系に沿って存在している結合組織内型のマスト細胞に局在している。ヘパリンの主要な薬学的特性は、天然の抗凝固物質であるアンチトロンビンＩＩＩの活性を増強する能力である。

ヘパリンは、自然界ではタンパク質と結合して存在し、いわゆるヘパリンプロテオグリカンを形成する。通常、内因的なまたは天然の、自然界に存在するヘパリンプロテオグリカンは、それぞれ７５±２５ｋＤａの範囲の分子量を有し、１つのコアタンパク質またはポリペプチドに結合した１０〜１５のヘパリングリコサミノグリカン鎖を含んでいる。天然のヘパリングリコサミノグリカン鎖はそれぞれ、自然の環境でエンドグリコシダーゼにより開裂するような、末端と末端とで連続的につながった独立したヘパリン単位を数個含んでいる。その自然または天然の複合体は、純粋な形態で調製することが困難である。ゆえに、治療上のまたはこれに類するそれらの使用は触発されてはこなかった。ヘパリングリコサミノグリカンは、一般的にタンパク質と会合していわゆるプロテオグリカンを形成する負に帯電したヘテロ多糖類という大きなグループに属する。その他自然界に存在するグリコサミノグリカンの例には、例えば、コンドロイチン−４−硫酸およびコンドロイチン−６−硫酸、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、ヒアルロン酸、ヘパラン硫酸およびヘパリンがある。これら自然界で存在するヘパリン様化合物のうち、ヒアルロン酸だけは、一般に、タンパク質様のコア分子と会合していない。

過去数十年の間のヘパリンの研究における傾向は、ヘパリン鎖単位の開発と用途であったが、このヘパリン鎖単位は鎖をより短かくして特異性を高めた、全身臨床用調製物として分画されたものであった。一般に使用されている２種類の標準的な臨床用ヘパリンが、いわゆる非分画すなわち高分子量ヘパリン、そして分画すなわち低分子量ヘパリンである。この２種類のヘパリンは、それぞれ平均分子量が１５ｋＤaおよび５ｋＤａである。本発明においては、これらの２種類のヘパリンはいずれも低分子量ヘパリンとされる。大部分の市販の調製物は、その起源、調製方法および／または測定方法にもよるが、分子量４〜２０ｋＤａである。したがって、市販のヘパリンは、本発明における定義では低分子量ヘパリンに属する。

米国特許第５,５２９,９８６号には、合成により得られた巨大ヘパリン複合体分子が記載されている。この分子は、最低２０個のヘパリン部分からなるが、１００を越えるヘパリン部分を含むこともあり、天然のまたは合成により得られた実質的に直鎖状のポリマー骨格、例えばポリリシン、ポリオルニチン、キトサン、ポリアミンまたはポリアリルなど、と組合わされている。

しかしながら，この特許では、それぞれのヘパリン部分がおよそ１２ｋＤａという低分子量によって特徴付けられてもおり、これは天然のヘパリンプロテオグリカンに存在するヘパリン鎖よりもかなり短かいものである。米国特許第５,５２９,９８６号に記載の巨大ヘパリン分子は、体外循環系の表面のコーティングに特に有用であるといわれており、その作用は、アンチトロンビンＩＩＩに対する結合およびその作用の増強に基づいているといわれており、これは、現時点で存在するすべてのヘパリン調製物の、主要な機能的抗凝固メカニズムである。

主に、標準的なヘパリン調製物は血栓症の全身的処置に使用される。それらの標準的なヘパリン調製物自体は、静脈血栓など、凝固活性が優性な乏血小板血栓において最も効果的である。臨床用に使用される標準的なヘパリンは、血栓のさらなる成長をブロックすることで血栓症の全身的処置には効果的ではあるが、じゅく状斑の内因的破裂、または外因的な血管形成術または血管もしくは毛細血管の外科手術のいずれかに関連した血栓が形成する合併症を阻害するのには、十分に効果的であるとはいえない。

動脈に対する介入、例えばステントを用いるまたは用いない血管形成術（ＰＴ（Ｃ）Ａ＝経皮経管（冠動脈）形成術）および血管または毛細血管の外科手術、並びに（指向的）動脈切除術および末梢血栓動脈内膜切除術などは、主な死亡原因である心血管の疾患に対する発展途上の処置方式の代表的なものである。したがって、内因的な血管もしくは毛細血管の傷害および／または外因的介入に関連して起こる、血小板主導の動脈血栓が、しばしば直面する問題となり、これらの状況においては血栓症の伝統的な全身的処置の効力が制限される場合が多い。

動脈に対する介入に関連した現在の全身的抗血栓処置には、非分画ヘパリン（１２ｋＤａ）または低分子量ヘパリン（７.５ｋＤａ）等の抗凝固剤と、アセチルサリチル酸（シクロオキシゲナーゼ阻害剤）などの抗血小板薬またはチクロピジンまたはより良好なクロピドグレル（ＡＤＰアンタゴニスト）の組合せが含まれる。最近の開発では、強力な血小板糖タンパクＩＩｂ／ＩＩＩａ、フォンビルブラント因子およびフィブリノーゲン受容体アンタゴニスト、例えばアブシキシマブ、チロフィバンおよびベロフィバチドなどが代表的である。介入により処置された血栓になりやすい血管の急性血栓閉塞を３０〜３５％阻害した、新しい組合せ治療が成功している。血液製剤の注入を必要とする出血の危険性（大出血）は、だいたい６〜７％である。これまでアブシキシマブが最も効果的であるとされてきたが、これらは抗体ベースの薬剤なので、反復的な投与は抗原性を引き起こすことがある。

非分画ヘパリンによる全身的処置は多くの望ましくない影響、例えば予測不能なバイオアベイラビリティー、短かい半減期、アンチトロンビンＩＩＩの機能の減少につながるタンパク質に対する非特異的結合、および血小板減少症さらに血栓症による免疫学的血小板作用など、を受ける。これらの望ましくない影響は、低分子量の、分画されたペパリンの使用によって大いに回避されてきたが、フィブリンに結合したトロンビンおよび血小板に結合したＸａ因子の制御が制限されるために、そして血小板から分泌される血小板第４因子によるヘパリン活性の中和のために、動脈血栓を阻害する能力が制限されてきた。したがって、血管または毛細血管の傷害および介入による動脈血栓の有効で確かな予防的処置を発展させる必要性は非常に高い。

それらの研究において、本発明者らは、低分子量ヘパリンとは対照的に、哺乳類のマスト細胞から得られる天然のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）が強力な抗血栓特性を示すことを見出した。この特性は、血小板−コラーゲン相互作用を阻害するそのヘパリンプロテオグリカンの能力に基づいている。この独特の特性、即ち、コラーゲンに血小板が粘着した後の血小板活性化事象をブロックする特性は、非分画ヘパリンおよび分画された市販のヘパリンを含めて低分子量のヘパリンにはないものであり、アンチトロンビンＩＩＩまたはヘパリンコファクターＩＩの機能または活性を高める潜在能力も同時にもたらす。

これまでのヘパリンのメカニズム、即ち、現在の臨床的使用におけるヘパリンのアンチトロンビンＩＩＩ増強作用、さらに米国特許第５,５２９,９８６号に記載されている巨大ヘパリン分子構築物のアンチトロンビンＩＩＩ増強作用、とは対照的に、本発明のヘパリン様化合物の効力はアンチトロンビンＩＩＩ活性に依存するものではなく、これまで記載されていなかった、コラーゲン上での血小板粘着が引き金となる血小板活性化を強力に阻害するメカニズムに基づくものである。現在、このメカニズムの詳細は分かっていないが、コラーゲンへの血小板ＧＰＩａ／ＩＩａの結合の後の活性化シグナルの破壊、コラーゲンによって通常誘発される、膜のリン脂質フリップ・フロップおよび血小板においてプロコアグラント活性によると考えられる。フォンビルブラント因子（ｖＷＦ）への強い結合も関与しているのかもしれない。

本発明は、全身的な抗血小板薬と組み合せることができる、局所的適用形態での抗血小板処置の別の方法を提供する。この組合せは、血管形成術、血管および毛細血管の外科手術および動脈内膜切除との組み合せにおいて使用し、血小板が接着するための暴露された内皮下血管および毛細血管のコラーゲンを不動態化することができる。最初の研究において、ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）により達成された望ましい効果によって、血小板−血小板相互作用の阻害に基づく局所的な血栓形成は有意に減少したけれども、コラーゲン上での粘着は残存した。粘着血小板上でのコラーゲンにより誘発される血小板の活性化は、マスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）、多重ヘパリングリコサミノグリカン分子それ自体またはコア分子に結合した多重ヘパリングリコサミノグリカン分子、負に帯電したグリコサミノグリカンの十分なカップリング密度をもたらす空間的に最適な巨大分子の提示または配置をもたらす長球状または球状のコア分子に結合した低分子量ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン、の存在下で完全にブロックされることが示された。

上に定義された効果は、ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）が７５±２５ｋＤａの分子量を有し、および／または多重の担体（コア分子）に結合し、スペーサー／リンカーを有し、非分画もしくは分画ヘパリンまたはヘパリン様鎖が最適な空間的位置で提示されたときに得られ、このＨＥＰ−ＧＡＧ分子を含むプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）分子は、溶液中として存在するかまたはコラーゲンでコートされた表面上に固定化するかまたは吻合術の際、閉じる血管表面に塗布する。現在の手段を用いた、血栓を阻害するためおよび過剰な創傷修復を制限するためのトロンビンターゲッティングは、処置部位の再狭窄の発生を依然として伴っていた。本発明のＨＥＰ−ＧＡＧ分子およびＨＥＰ−ＰＧ分子の利点は、正常な止血応答を確保する、保持された全身的血小板機能にあった。生体内での平滑筋細胞増殖に対する、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧ分子およびＨＥＰ−ＰＧ分子の局所的阻害効果も、低分子量ヘパリン分子種の効果（Wang & Kovanen, Circulation Res, 印刷中）と比較して有意に優れていることを示した。

これらの予備的な発見に基づき、本発明者らは本発明のヘパリン様化合物、並びにその調製とその使用のための方法を開発した。本発明の目的は以下に記載する。

本発明の第１の目的は、マスト細胞由来の多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）および／またはヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）の構造と特性を模擬した可溶性のヘパリン様化合物を提供することであり、このＨＥＰ−ＧＡＧ分子およびＨＥＰ−ＰＧ分子は、血小板−コラーゲン相互作用のほぼ完全な阻害に基づくこれまで報告されなかったメカニズムによって特徴づけられることが示された。このメカニズムは、新たに開発され、合成的、半合成的または生物工学的に修飾されたヘパリン様化合物の特性、並びに血管または毛細血管の傷害、および血管形成術、ステント術および血管移植術などの介入による血栓を阻害するのに有用な局所的に適用可能な特性をスクリーニングし決定するのに有用であり、便利である。

本発明の別の目的は、適合し得る添加剤、担体などと組み合せて本発明のヘパリン様化合物を含有する薬学的に有用な調製物を提供することであった。

本発明の第３の目的は、本発明のヘパリン様化合物を投与するための手段および／またはデバイスを、該手段またはデバイスをコーティングすることにより提供することであった。

さらに、本発明の目的は、マスト細胞からＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子を製造するための方法を提供し、さらにそのマスト細胞またはＨＥＰ−ＧＡＧもしくはＨＥＰ−ＰＧ分子を化学的および／または生物工学的方法により修飾して、請求の範囲で定義された、天然のマスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧ分子またはそれから得られる多重ＨＥＰ−ＧＡＧ分子の空間的配置と特性に類似した最適な立体的配置と特性を有する、新規のヘパリン様化合物を提供することであった。

さらに、本発明の目的は、本発明のヘパリン様化合物の、それ自体としてのまたは調製物を製造するための成分としての使用、および血管形成術、ステント術および血管移植術などの血管および毛細血管の外科手術または介入に関連した動脈血栓を含む重篤な血管障害の予防的処置および阻害に有用なデバイスの使用であった。

血小板−コラーゲン相互作用は、止血および動脈血栓の発達の引き金となる必須の事象である。予備研究において、本発明者らは、ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）の分子量、つまり多重構造またはそのヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）部分の空間的配置または提示に基づくヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）の特に高い分子量、と血小板−コラーゲン相互作用に対するその阻害効果との間の明確な関連性を見い出した。最良の結果は、多重グリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）、または血管のマスト細胞が活性化されてそれら細胞の顆粒が外部の体液にエキソサイトーシスにより排出され、そこで顆粒由来のヘパリン分子が可溶化されるような、生体内における状況を模擬するサイズを有する多重グリコサミノグリカン鎖を含むヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）によって、得られることが示された。この可溶化されたヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）は、平均して約１０個の、それぞれの分子量が７５±２５ｋＤａであるヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）部分を含む。所望の効果は、いくつかの非分画または分画本明細書におけるいわゆる低分子量ヘパリングリコサミノグリカン単位が末端−末端結合または末端−側鎖結合で、多重グリコサミノグリカンそのものまたはコア分子に結合した多重グリコサミノグリカンを形成することによっても得られた。さらに、同様な凝集の阻害は、多重非分画ヘパリン鎖（１２±１０ｋＤａ）の多重アミノ硫酸基がヘテロな二機能性カップリング試薬、即ち空間的な配置とカップリング密度を有する本発明の最適に帯電したヘパリン様化合物を製造するための最適なコア分子を与えるスペーサーまたはリンカー分子、例えば球状タンパク質であるアルブミンに存在するリジン残基と結合するＮ−サクシニルイミジル−３（２−ピリジルチオ）プロピオネート（ＳＰＳＤ）など、とカップリングした場合に見い出された。

このように、本発明はヘパリン様化合物であって、多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子を含み、高分子量を有し、いくつかの末端−末端結合および／または末端−側鎖結合で結合したヘパリン、またはヘパリン様グリコサミノグリカンそのものもしくは天然または合成により得られた、鎖状の、好ましくは短いまたは球状のコア分子に連結したヘパリン様グリコサミノグリカン分子、または球状のコア分子と複合体を形成するヘパリン様グリコサミノグリカンからなるヘパリン様化合物に関する。好ましくは、コア分子自体よりも多くのヘパリンまたはヘパリン様分子の結合を可能にするスペーサーまたはリンカー分子を使用して、該ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカンの望ましく十分なカップリング密度を得る。本発明のヘパリン様化合物は、本発明のヘパリン様化合物に、本発明のヘパリン様化合物の独特の特異的な特性の原因であるかまたは密接に関連しているようである空間的配置をもたらすような、負に帯電したヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子または単位のカップリング密度を有し、その特性は、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子についてはじめて認識され、該特性は、血管または毛細血管の傷害または介入による動脈血栓の一般的な原因である流動血液におけるコラーゲン上の血小板凝集を実質的に完全に阻害する能力である。

本発明のヘパリン様化合物は、好ましくはいくつかの多重の末端−末端結合および／または末端−側鎖結合で結合したヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子を含む。そのそれぞれは、好ましくは７５±２５ｋＤａまたは７５±−２５ｋＤａ以上の分子量を有する。

本発明のヘパリン様化合物において、多重ヘパリンまたはヘパリングリコサミノグリカン分子は、天然または合成のコア分子と結合、連結または複合体を形成することができる。コア分子は、好ましくは球状であるかまたは所望の長球状の配置を与えるものであるが、より鎖状に近いコア分子に結合することもできる。

さらに、低分子量のヘパリンまたはヘパリングリコサミノグリカン分子はコア分子に結合することができる。しかし、そのような場合には、コア分子は長球状または球状の配置を有する。さらに、スペーサーまたはリンカー分子の使用が望ましく、これはより多くのヘパリンまたはヘパリン様分子または単位の連結を可能にし、したがってより最適な空間的配置とより高いカップリング密度をもたらす。

コア分子はタンパク質またはポリペプチドであると有利である。コア分子の有用な例は、球状タンパク質、例えばアルブミン好ましくはヒト由来の血清アルブミンである。コア分子のさらなるタイプは、ポリペプチドであるが、これは非常に長い必要はなく、例えば、Ｓer−Ｇly−Ｓer−Ｇly−配列の１またはそれ以上の繰り返しを含む。別法として、他の種類のアミノ酸配列を使用することができる。

本発明は、商業的に入手可能なヘパリンおよびタンパク質またはポリペプチドからの一般的な修飾を含む、天然の供給源、合成または半合成または生物工学的方法からヘパリン様化合物を製造するための方法を記載する。

天然のヘパリン様化合物は、単離・精製した結合組織由来のマスト細胞を適当な培養細胞培地中で、良好な細胞増殖およびヘパリンを含有する顆粒の産生を可能にする条件を用いて増殖させることにより製造する。増殖工程を終了したのち、即ちヘパリンプロテオグリカンの収量が最適になったら、ヘパリンプロテオグリカンを含有する顆粒を、場合により活性化および／または溶解により放出させる。活性化工程は、マスト細胞脱顆粒を誘導し、可溶化された多重ＨＥＰ−ＰＧ分子を放出させるマスト細胞アゴニストにより行うことができる。好ましいアゴニストは塩基性ポリアミンやカルシウムイオノフォアからなる群から選択する。放出された顆粒を、周囲の培地中で可溶化させ、この可溶化したヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）を外の培地から集める。その後、所望であれば、天然の多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）を該ヘパリンプロテオグリカンから分離することができ、該ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子をさらにお互いに連結させて、高度の分岐および／または多重性を有するヘパリングリコサミノグリカンを得ることができる。

合成的または半合成的方法において、いくつかのヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン単位を、末端−末端および／または末端−側鎖で共有結合により連結させることができる。場合により、特に低分子量のヘパリン分子を出発物質として使用する場合、カップリング剤例えばスペーサーまたはリンカー分子を使用して、最適な多重性と空間的配置が得られるようにする。

上記の本発明はすべて、血管または毛細血管傷害および／または介入による動脈血栓の予防的処置のための方法に関する。この方法は、本発明のヘパリン様化合物の局所的投与によって行なわれる。局所的投与は、調製物の形態の本発明のヘパリン様化合物の有効量を直接、および／または本発明のヘパリン様化合物でコーティングしたデバイス例えばステント、血管移植片または体外循環系などとして間接的に適用することにより行なわれる。本発明のヘパリン様化合物は、薬学的に許容しうる担体および／または添加剤と組み合せて、適用や投与においてより有利な調製物を得ることができる。

本発明はさらに、血管または毛細血管の傷害または介入に関連する本発明のヘパリン様化合物の局所的な投与のための調製物、手段および／またはデバイスを記載する。効果的な局所的投与は、例えば本発明のヘパリン様化合物でコーティングされた手段および／またはデバイスにより得られる。

本発明はさらに、血管傷害または介入の部位での血小板凝集または詰まりを阻害するための方法に関する。この阻害は、特に本発明のヘパリン様化合物でコーリングされたデバイスの助けにより得られる。

局所的投与のための手段および／またはデバイスを製造するための方法はさらに、活性を保持し保存ができるように、例えばデバイスを本発明のヘパリン様化合物を含む溶液と接触させ、ほぼ滅菌条件下でこのデバイスを処理することを示唆し、そして包含する。デバイスは、例えば凍結乾燥により乾燥することができ、滅菌したバイアル内で使用するまで保存することができる。本発明のヘパリン様化合物でコーティングされたデバイスを処理し保存するための別の方法が当業者に知られている。

このように、本発明は、血管または毛細血管の傷害および介入による動脈血栓の原因である、流動している全血におけるコラーゲン上の血小板凝集の実質的に完全な阻害が可能な、医薬品および／またはデバイスを製造するためのヘパリン様化合物の使用に関する。

クエン酸塩添加血漿（希釈率１：３）におけるトロンビン時間に対する種々のヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）の用量依存的効果を示す。ＨＭＷＨ＝高分子量、即ち非分画ヘパリン、ＬＭＷＨ＝低分子量、即ち分画ヘパリン、ＨＥＰ−ＰＧ＝マスト細胞由来水溶性ヘパリンプロテオグリカン。 クエン酸塩により抗凝固処理された血小板豊富血漿（ＰＲＰ）における、コラーゲン誘導性血小板凝集（２５μｇ／ｍL）の最大凝集（％）に対する、マスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧ（分子量７５０ｋＤａ）、ＨＥＰ−ＰＧから得られたヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）鎖（分子量７５ｋＤａ）、ＨＭＷＨ（分子量１５ｋＤａ）、ＬＭＷＨ（分子量５ｋＤａ）の効果の比較を示す。 ＰＰＡＣＫ−抗凝固流動全血における種々のずり速度条件下でのコラーゲン（ウシ、Ｉ型、線維性）上の血小板沈着に対するマスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧ（３μｇ／ｍL）の効果を示す。潅流時間は５分であった。数値は、４人のドナーについて、２００、７００および１７００ １／ｓでの平均±ＳＤで示し、それぞれ２回ずつ行なった。 固定化した標準ヘパリン（１０ｍg／ｍL）またはマスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧ（１０ｍg／ｍL）の潅流チャネルの、ずり速度１６４０ １／ｓでモノマーコラーゲンＩ型上をヒト全血で潅流した後のスキャンニング電子顕微鏡写真である。対照である上の図は、大きな血小板凝集が潅流チャネルにおいてみられる。真中の図では、標準的な非分画ヘパリン（ＨＭＷＨ）が凝集の大きさをある程度減少させたが、表面の領域は外見的には影響を受けなかった。下の図では、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧの存在下で、血小板沈着がほとんどみられず、主に低いずり速度条件でのチャネルの淵において、単一の血小板の粘着がときおりみられるだけであった。 線維状の形態のコラーゲンＩ型（エキリン、Horm（商標）コラーゲンNycomed）上での血小板粘着に対する、固定化した非分画の標準的なヘパリン（１０ｍg／ｍL）およびＨＥＰ−ＰＧ（１０μｇ／ｍL）の効果を示す。この形態のコラーゲンに対する血小板粘着は、ＧＰ Ｉａ／ＩＩａに加え、ＧＰ ＩＶおよびＧＰ ＶＩに依存する。ドナーは５人であり、それぞれ２回ずつ行なった。ずり速度は１６４０ １／ｓであり、潅流時間は５分であり、血液をＰＰＡＣＫ３０μＭで抗凝固処理した。Ｃｏｌｌはコラーゲンであり、ＨＭＷＨは非分画の標準的なヘパリンであり、ＨＥＰ−ＰＧはマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカンである。 ペプシンで消化した天然の酢酸可溶性ウシコラーゲン線維である、モノマー形態のコラーゲンＩ型上での血小板沈着に対する、固定化した非分画の標準的なヘパリン（１０ｍg／ｍL）およびマスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧ（１０μｇ／ｍL）の効果を示す。血小板沈着は、ＧＰ Ｉａ／ＩＩａに大きく依存する。非分画ヘパリンおよびＨＥＰ−ＰＧはいずれも、固定化したまたはモノマー形態のコラーゲンの場合、血小板沈着を阻害したが、ＨＥＰ−ＰＧは阻害機能において、有意により強力なものであった。ドナーは５人であり、それぞれ２回ずつ行なった。ずり速度は１６４０ １／ｓであり、潅流時間は５分であり、血液をＰＰＡＣＫ３０μＭで抗凝固処理した。Ｃｏｌｌはコラーゲンであり、ＨＭＷＨは非分画の標準的なヘパリンであり、ＨＥＰ−ＰＧはマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカンである。 Ｍg²⁺（２ｍＭ）含有緩衝液中での血小板と線維状Ｉ型コラーゲンとの相互作用に対する、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧの効果を示す。実験は２２℃にて１００×１０⁶／ｍLの血小板を用い、均等な血小板凝集を導く静的条件下で行った。データは、４人のドナーについての平均±ＳＤであり、それぞれ２回ずつ行なった。ＰＤは血小板沈着である。 Ｍg²⁺（２ｍＭ）含有緩衝液中における、血小板とコラーゲンとの相互作用に対するマスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧの効果を示す。実験は３７℃にて３００×１０⁶／ｍLの血小板を用い、血小板と線維状Ｉ型コラーゲンに粘着した血小板との相互作用を可能にする低速回転（１００ｒｐｍ）下で行った。データは、５人のドナーについての平均±ＳＤであり、それぞれ２回ずつ行なった。^*Ｐ＜０.０００１（二重ｔ−テスト）。ＰＤは血小板沈着である。 血液を１０分間ベッセルに循環させた後の、ラット吻合モデルのスキャンニング電子顕微鏡写真である。潅流を行なった吻合部位の７５倍および５００倍の２種類の倍率である。左側の図は、塩水処理した吻合を示し、右側の図は、マスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧで処理した吻合を示す。実験結果は５回行なったうちの代表的なものを示す。 （Ａ）クエン酸塩添加ＰＲＰにおけるコラーゲン（Sigma, 凝集キット,２５μｇ／ｍＬ）誘発性の血小板凝集を示す。（Ｂ）コラーゲン誘発性の血小板凝集に対するマスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧ（ヘパリン３μｇ／ｍＬ）の効果を示す。（Ｃ）コラーゲン誘発性の血小板凝集に対するアルブミン結合非分画ヘパリン（ヘパリン０．７５μｇ／ｍＬ）の効果を示す。

定義
本記載では、以下の略語および頭字語を頻繁に使用する。ＧＰは糖タンパク質を意味する。ＨＥＰ−ＧＡＧは、流動している全血におけるコラーゲン誘発性の血小板凝集のほぼ完全な阻害が可能な、長い（７５ｋＤ）または分岐したまたは多重ヘパリングリコサミノグリカンを意味する。ＨＥＰ−ＰＧは、上で定義したＨＥＰ−ＧＡＧ分子を含むヘパリンプロテオグリカン（天然のまたは合成のまたは半合成の、コア分子に結合した、即ちタンパク−またはペプチドに結合した）を意味する。ＨＭＷＨは、商業的に入手可能な、非分画の高分子量の７.５〜３０ｋＤaのヘパリンまたはヘパリングリコサミノグリカン単位を意味する。ＬＭＷＨは、商業的に入手可能な、低分子量の、７.５ｋＤa未満のヘパリンまたはヘパリングリコサミノグリカン単位を意味する。この２つのタイプのヘパリンは、本発明においては、いわゆる低分子量ヘパリン分子または単位である。ＨＳＡは、ヒト血清アルブミンを意味し、ＢＳＡは、ウシ血清アルブミンを意味し、ＭＷは分子量を意味する。ＰＢＳは、リン酸緩衝化塩水を意味する。ＰＰＡＣＫは、Ｄ−フェニルアラニル−１−プロピル−１−アルギニンクロロメチルケトンを意味し、ＰＲＰは、血小板豊富血漿を意味し、ＳＤＳは、ドデシル硫酸ナトリウムを意味し、ＴＥＳは、Ｎ−トリス（ヒドロキシ−メチル）メチル−２−アミノエタンスルホン酸を意味し、ｖＷｆはフォンビルブラント因子を意味する。ＳＰＤＰは、Ｎ−サクシニルイミジル−３−（２−ピリジルチオ）プロピオネートを意味する。

本記載においては、使用する用語は、免疫化学、免疫学、生化学などを含め、医学の分野においてそれらが一般的に有する、それらの分野の教科書や論文に記載されている意味と同じ意味を有する。但し、いくつかの用語については、より広い意味で使用し、その用語の一般に使用されている意味とは若干違う意味を有する。これらの用語のうちのいくつかを、以下に定義する。

「ヘパリン様化合物」なる語は、マスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカンおよびヘパリングリコサミノグリカンと構造的に類似した化合物を意味し、流動している全血におけるコラーゲン誘発性の血小板凝集をほぼ完全に阻害する能力と、Lassila R, Lindstedt K, Kovanen PT. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology 1997; 17 (12):3578-3587に記載された方法によって測定することができる天然のマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）またはそこから得られるヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子によって示される独特の特性を付与する、負に帯電したヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン単位のカップリング密度によって特徴付けられる化合物を意味する。

本発明のヘパリン様化合物は、可溶性ものもコラーゲン上に固定化されたものも、血管の傷害および介入による動脈血栓の原因である流動している全血におけるコラーゲン上での血小板凝集を阻害する能力、並びに流動している全血とコラーゲンとの相互作用を阻害する能力によって、特に、特徴付けられる。ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子の多重構造または最適なカップリング密度に加え、この特性は本発明のヘパリン様化合物に要求される基礎的な必須要件である。

最も具体的な意味では、「ヘパリン様化合物」は、マスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）およびそれから得られるヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）に限定される。しかし、負に帯電したヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子または単位の所望の高いカップリング密度を有する化合物を生じる、独特の、空間的に最適な配置を有するヘパリン様化合物を得るための、直接にまたはスペーサーもしくはリンカー分子の助けによってコア分子に連結した、多重の、非分画または分画ヘパリンまたはヘパリン様鎖もまた含まれる。本発明のヘパリン様化合物の独特の特性を付与する所望の高いカップリング密度は、例えば天然のマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）または多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子においてはじめて見出され、その特性によってそれら分子が説明されるようである。

本発明において「ヘパリンまたはヘパリン様プロテオグリカン」なる語は、ヘパリン様化合物の定義において記載した基礎的な必須要件を満たすヘパリンまたはヘパリン様プロテオグリカンを意味する。好ましくは、プロテオグリカンは、コア分子に結合した、３を越える多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子を含む。上記の「ヘパリンまたはヘパリン様プロテオグリカン」なる語はすべて、組織抽出または好ましくは細胞の培養によって哺乳類の結合組織型マスト細胞から得られる、天然の、水溶性のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）を包含する。これらのヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）は、通常約１０〜１５の多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子を含む。合成によって製造されたヘパリンまたはヘパリン様プロテオグリカンは、上で定義した基礎的な必須要件を満たす限り、任意の数の多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子を含むことができる。

「水溶性または可溶化されたヘパリン様化合物」なる語は、マスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧ分子が、マスト細胞の顆粒から，その分子が可溶化する外の媒体へ放出され、その後で細胞の残骸やその他の不溶性成分から分離できることを意味する。本発明の他のヘパリン様化合物は、たとえ、その分子すべての固有の特性が、特定の、特に固体表面に容易に粘着するものであったとしても、上で定義したのと同じタイプの可溶性が付与されるということが観察される。

上記の「多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子」なる語はすべて、マスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカンから得られ、分子量７５±２５ｋＤａを有する天然のヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子を包含する。この用語はまた、例えば非分画または分画低分子量ヘパリンから得られる、末端−末端および／または末端−側鎖で連結した数個のグリコサミノグリカン単位を有する合成または半合成的に得られるヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカンを包含する。この「多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子」は、ヘパリン様化合物の定義において記載した特性を有する多重の直鎖または分岐鎖の分子を形成する。各ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子は、ヘパリン様化合物の定義に記載した特性を付与するに十分な分子量を有するものである。

「多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子」または非分画または分画ヘパリンもしくはヘパリン様鎖は、天然の、合成または半合成コア分子、例えばタンパク質、好ましくは球状タンパク質と複合体を形成して、上で定義した特性を有するヘパリンプロテオグリカンを得ることができる。

「多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン分子」なる語は、例えば少なくとも３〜４の末端−末端または末端−側鎖で連結した、それぞれ商業的に入手可能な非分画または分画低分子量ヘパリンに相当する分子量を有するヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン単位を有する分子を包含する。それらの分子量は、一般に２０ｋＤａ未満、主として１５ｋＤａ未満であるが、１２ｋＤａ未満の分子量を有するヘパリングリコサミノグリカンも使用することができる。そのような場合は、単に、ヘパリン様化合物に関して定義した特性を付与するに十分に高い分子量またはカップリング密度を有するＨＥＰ−ＧＡＧ分子を得るためにそれら分子をさらに多く結合させねばならないというだけである。天然マスト細胞由来の自然の多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子は、一般に、約７５±２５ｋＤａの分子量を有する。そのような天然の、「多重ヘパリングリコサミノグリカン分子」もまた末端−末端および／または末端−側鎖で連結させて、より大きな分子を得ることもでき、これもまた本発明の範囲に属する。このように、本発明の多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）は、それらの任意の多重を含めて、少なくとも７５±２５ｋＤａの分子量を有する。請求の範囲に定義したヘパリン様化合物の特徴を他に有していれば、ヘパリン様グリコサミノグリカンが定義された分子量を有していなければならないという必要性はない。高い分子量のほかに、十分なカップリング密度を得るための別の方法は、非分画または分画グリコサミノグリカン、例えばヘパリン、を球状のコア分子へ連結ことである。所望の密度は、特に、より多くの所望のヘパリンまたはヘパリングリコサミノグリカン単位の結合を可能にする特異的なスペーサーまたはリンカー分子を用いることにより得られる。

たとえ、天然のマスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧ分子およびＨＥＰ−ＰＧ分子が血漿において実質的に低いアンチトロンビン結合活性を有することにより特徴づけられたとしても、本発明のヘパリン様化合物すべてがそうではない。しかしながら、血管または毛細血管の傷害および介入による動脈血栓の原因であるコラーゲン誘発性の血小板凝集を実質的に完全に阻害する可能性は、本発明のすべてのヘパリン様化合物にあるものであるが、その化合物のうちのいくつかにおいては、その特性が強力なアンチトロンビンＩＩＩ促進活性と結びつく。この組合せ効果はさらに有利な特性を、その製品、即ち本発明の化合物、調製物およびデバイスに付与する。

このように、本発明における「ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン」および「ヘパリンまたはヘパリン様プロテオグリカン」なる語は、マスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）またはヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）だけでなく、合成、半合成のまたは組換えＤＮＡ技術を用いて製造されたヘパリン様グリサミノグリカンおよびヘパリン様プロテオグリカンも意味する。

最も広い態様では、「ヘパリン様化合物」なる語は、直鎖状のまたは分岐したヘパリン様グリコサミノグリカン、即ちアミノ基を含み天然または合成または半合成のコア分子に連結または共有結合した、数百の単糖類からなる化合物を意味する。

そのようなヘパリン様化合物は、上で記載した必要条件および基礎的必須要件を満たし、天然のマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）およびヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）の特徴を有する分子を得るために、例えばコンドロイチン硫酸、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、へパラン硫酸および／またはヒアルロン酸など、天然に存在するグリコサミノグリカン分子種そのものまたは化学的または組換えＤＮＡ技術を含む生物工学的手段により修飾されたものから得られる。ヘパリン様グリコサミノグリカン分子は天然物から単離する必要はない。それら分子を合成することもでき、または天然に存在する分子種のフラグメントを互いに、特にヘパリンフラグメントを連結させて新たな改変体を得ることもでき、その特性は当業者に知られている方法によって容易に試験することができる。

「マスト細胞」なる語は、哺乳類またはヒト由来の血管または漿膜のマスト細胞のような、結合組織に関連するマスト細胞を意味し、それぞれの組織から単離することができ、その細胞を培地中で、その細胞の増殖と、マスト細胞の溶解および／または活性化による本発明のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）の分泌とを可能にする条件下で培養することができる。ヒトのマスト細胞を含め哺乳類のマスト細胞は、入手可能であり、文献に記載されている（Ｂｕｔｔｅｒｆｉｅｌｄ ＪＨ， Ｗｅｉｌｅｒ Ｄ， Ｄｅｗａｌｄ Ｇ， Ｇｌｅｉｃｈ ＧＪ， Ｌｅｕｋ Ｒｅｓ １９８８； １２： ３４５−５５； Ｎｉｌｓｓｏｎ Ｇ， Ｂｌｏｍ Ｔ， Ｋｕｓｃｈｅ−Ｇｕｌｌｂｅｒｇ Ｍ， Ｋｊｅｌｌｅｎ Ｌ， Ｂｕｔｔｅｒｆｉｅｌｄ ＪＨ， Ｓｕｎｄｓｔｏｍ Ｇ， Ｎｉｌｓｓｏｎ Ｋ， Ｈｅｌｌｍａｎ Ｌ． Ｓｃａｎｄ Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ １９９４； ３９： ４８９−９８）。マスト細胞は一般に、慣用の突然変異誘発または組換えＤＮＡ技術により修飾することができる。

「カップリング密度」なる語は、負に帯電したヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカンが、本発明のヘパリン様化合物の特徴が得られるような方式で空間的に互いにまとまることを意味する。これは、多重ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカンを調製することにより、または短い分子をお互いに、十分な結合と負電荷の最適な提示を可能にするような空間的配置にまとめることにより、達成される。

「スペーサー／リンカー分子」なる語は、所望の化合物または分子の、コア分子への結合を可能にする多様な基を有する重合化合物を意味する。ＳＰＳＤが一つの例であるが、例えばタンパク質化学および組合せ化学（combinatorial chemistry）の分野の当業者は、等価な利点を有する多様な他のスペーサー／リンカー分子を見い出すことができる。

「流動全血におけるコラーゲン上での血小板凝集を実質的に完全に阻害する能力」なる語は、Lassila R, Lindstedt K, Kovanen PT. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology 1997; 17 (12):3578-3587に記載の方法によって測定したときに、血小板とコラーゲンとの間の相互作用を阻止することができるということを意味する。

「局所的投与」または「局所的使用」なる語は、本発明のヘパリン様化合物を血管の傷害領域に、そのものとしてまたは in situ もしくはオン・プレイス（on place）の形態で、即ち局所的（locally）または局所的（topically）に適用可能な調製物もしくは組成物および／または手段もしくはデバイスとして投与することを意味する。局所的投与は、例えば、露出した血管組織を溶液でフラッシング（flushing）することによって行なう。本発明のヘパリン様化合物は、デバイスをコーティングするのに使用することができ、それを傷害した血管に接触させて設置することができる。このようなデバイスは、例えば“コーティングされたステント”、即ち血管を開いたまま維持するために血管内に設置する小さなデバイス、または弱くなった血管組織を置き換えるために使用する“血管移植片”である。コーティングすることができるデバイスのその他の例には、例えば体外循環系があり、その内壁を本発明のヘパリン様化合物でコーティングすることができる。

「予防的処置」なる語は、局所的（local）または局所的（topically）適用、例えば本発明のヘパリン様化合物をそれ自体としてまたは適当な調製物としてまたは該ヘパリン様化合物でコーティングされたデバイスの形態で、露出した血管組織をフラッシングすることにより、血管または毛細血管の傷害および介入による血栓を阻止することを意味する。ヘパリン様化合物の局所的投与は、それ自体としてまたは慣用の調製物の全身的投与と組み合せて使用することができる。

「動脈血栓」なる語は、アテローム血栓症およびその他脈管構造の止血状態、血管傷害および医原性の血管形成術およびその他の介入を含む、内因的な状態に関連する動脈内の血栓を意味する。

「調製物」なる語は、患者に投与するための調製物、手段および／またはデバイス中の、適合し得る、薬学的に許容し得る添加物、担体と組み合せて使用する本発明のヘパリン様化合物を意味する。

（発明の一般的記載）
本発明の第一の目的は、生体内での血小板−コラーゲン相互作用について、本発明のＨＥＰ−ＧＡＧ分子またはＨＥＰ−ＰＧ分子の効果と、標準的なヘパリン（平均分子量１５および５ｋＤa）の効果とを比較することであった。標準的なヘパリンとは対照的に、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧおよびＨＥＰ−ＧＡＧ分子は、血小板豊富血漿におけるコラーゲン誘発性の血小板凝集とセロトニン放出を完全に阻害することが示された。本発明のマスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよび／またはＨＥＰ−ＰＧ分子によって引き起こされるこの阻害は、それらの巨大分子構造に依存していることが示された。流動血液では、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子はまた、コラーゲンでコーティングされた表面上での血小板の沈着を、低いおよび高いずり速度（shear rate）の両方で阻害した。マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子は糖タンパク（ＧＰ）Ｉａ／ＩＩａ介在の血小板粘着を阻害しなかったが、その後の血小板の活性化と凝集、並びにコラーゲン刺激後の血小板へのフィブリノーゲン結合を減弱化した。マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子は血小板に結合しなかったが、フォンビルブラント因子（ｖＷｆ）に強固に結合し、コラーゲンへの結合を増強した。高いずり速度での血小板粘着とリストセチン刺激後のＧＰ Ｉｂに対するｖＷｆ結合は、顕著に影響しなかったが、本発明のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子は、トロンビン誘発性の凝集とＧＰ ＩＩｂ／ＩＩＩａへのｖＷｆ結合を減少させた。これらの知見は、ＨＥＰ−ＰＧの分泌を確保することによる血管マスト細胞の活性化が、マトリックスコラーゲンの血栓形成性を、その血小板活性化能力を阻害することにより局所的に減弱化し得ることを暗示している。

トロンビン活性を阻害するマスト細胞由来ＨＥＰ−ＰＧの能力を調べることが、この研究の最初の目的であった。具体的には、非常に高い分子量のヘパリン分子種の阻害効果を、標準的なヘパリンの、アンチトロンビンＩＩＩ活性の増強に本質的によるところの、よく知られている抗凝固機能（Nader HB, Dietrich CP., in Lane DA and Lindahl U (eds): Heparin: Chemical and Biological Properties, Clinical Application. Erward Arnold, London. 1989, pp81-96）と比較した。トロンビンを阻害するＨＥＰ−ＰＧ、ＨＭＷＨ、およびＬＭＷＨの異なる能力に焦点を当てたこの分析（図１）は、血漿タンパク質の非存在下では、ＨＥＰ−ＰＧのほうがＨＭＷＨよりもアンチトロンビンＩＩＩを直接増強する機能的な能力が優れているが、血漿の存在下ではＨＥＰ−ＰＧはＨＭＷＨよりも効力が低かったことが示された。これらのデータにより、ＨＥＰ−ＰＧが、ＨＭＷＨと比較して、ヘパリンに対する結合についてアンチトロンビンＩＩＩと拮抗すると考えられているｖＷｆなどの血漿タンパク質とより効果的に結合するかどうかについて理解できた。分子量が大きいヘパリンほど、血漿タンパク質に対する親和性が高いということは示されている（Baruch D, Ajzenberg N, Denis C, Legendre J-C, Lormeau J-C, Meyer D. Thromb Heamost 1994: 67:639-643）。総括すると、ＨＭＷＨおよびＬＭＷＨと比較した、観察された血小板−コラーゲン相互作用に対するＨＥＰ−ＰＧの阻害能力（以下実施例１５〜１６を参照）は、アンチトロンビンＩＩＩに依存するトロンビン阻害によるものではないと結論づけられた。

本研究の主な知見は、（ｉ）コラーゲン誘発性の血小板凝集（図２）、（ｉｉ）それに続く密な顆粒の放出（セロトニン）、および（ｉｉｉ）低いおよび高いずり速度条件下両方の、流動全血における固定化されたコラーゲン上の血小板沈着（図３）のＨＥＰ−ＰＧによる全体的な阻害であった。以前に、ＨＭＷＨ（濃度＞６μｇ／ｍL）は、脱陽イオン化ＰＲＰにおける低用量コラーゲンにより誘発される血小板凝集を減少させることは示されていた（Fernandez F, N'guyen P, van Ryn J, Ofosu FA, Hirsh J, Buchanan MR. Thromb Res. 1986; 43: 491-495）。本研究では、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧが、ＨＭＷＨとは対照的に、コラーゲン誘発性血小板凝集およびセロトニン放出を、コラーゲン濃度に関係なく全体的に阻害することがわかった。興味深いことに、ＨＥＰ−ＰＧ分子は、血小板豊富血漿（ＰＲＰ）にコラーゲンの１０秒後に加えた場合でさえ、血小板に対するコラーゲンの作用を阻害できることが示された。マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧ分子は、ＰＰＡＣＫ−ＰＲＰよりもクエン酸塩ＰＲＰにおいて、コラーゲンによる血小板凝集を効果的に阻害することを示し、ＨＥＰ−ＰＧ分子が、コラーゲン刺激に対する陽イオン依存の血小板機能をブロックするのに最も強力であることを示した（図２、３、４）。血小板ＧＰ Ｉａ／ＩＩａの異質性により、人によって様々な血小板応答をもたらしたが、これは恐らく、ゲルろ化された血小板の凝集に対する、ＨＥＰ−ＰＧの若干変り得る阻害効果に反映されるものだった。これらの結果は、ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子の多重構造に関連することを示した。

使用した条件下では、ＨＥＰ−ＰＧ分子はコラーゲンまたは静止している血小板とは直接には結合しなかったようであることから、ＨＥＰ−ＰＧ分子は他のメカニズムにより血小板−コラーゲン相互作用を妨害した。ＨＥＰ−ＰＧがＭg²⁺−依存性の血小板粘着を阻害せずに、その後で血小板凝集を減少させた（図４および５）という知見は、ＧＰＩａ／ＩＩａからＧＰＩＩｂ／ＩＩＩａへの活性化シグナルの伝達の減弱を暗示した。このように、フィリノーゲン結合の検出された減少は、コラーゲン誘発性血小板活性化の妨害とって間接的なものであった。ＨＥＰ−ＰＧがＧＰ ＩＩｂ／ＩＩＩａに直接作用しなかったという示唆はさらに、ＨＥＰ−ＰＧの存在下での正常なＡＤＰおよびエピネフリン誘発性の凝集とフィブリノーゲン結合によって裏付けられた。本発明のＨＥＰ−ＧＡＧ分子についても同様の結果が得られた。

この知見は、コラーゲン上での血小板粘着後の活性化の減少（図３、４、５）を暗示し、これは、低いおよび高いずり速度での流動血液における血小板補充の阻害を導くものである。ＨＥＰ−ＰＧによってＭg²⁺依存の血小板粘着は減少しなかったので、根底にあるメカニズムとしてのＧＰ Ｉａ／ＩＩａの直接的阻害は除外される。コラーゲン誘発性の凝集だけでなくトロンビン誘発性の凝集をも阻害する、強い負電荷を有する巨大分子であるＨＥＰ−ＰＧ分子は、アゴニストによる活性化の間の負に帯電した血小板膜リン脂質の外への移動を寸断した（Bevers EM, Comfurius P, Zwaal RFA. Blood Rev 1991; 5: 146-154）。ＧＰ Ｉａ／ＩＩａ介在のコラーゲンに対する粘着の後の、血小板機能の低下は、ＧＰ ＩＩｂ／ＩＩＩａに対するリガンド結合の減少によって媒介されたのであろう。実際、ＨＥＰ−ＰＧはコラーゲンにより刺激された血小板へのフィブリノーゲン結合を減少し、ＨＥＰ−ＧＡＧも同様に減少させることが示された。流動条件下では、コラーゲンへの血小板補充は、ｖＷｆと、血小板ＧＰ ＩｂおよびＩＩｂ／ＩＩＩａ並びにコラーゲンに対するその結合に決定的に依存している。ＧＰ ＩＩｂ／ＩＩＩａはトロンビンが引き金となってｖＷｆに結合し、ヒルジンを使用した条件下では、血小板を加えた６０秒後にトロンビンのタンパク質加水分解作用を阻止した。ＨＥＰ−ＰＧはまた、ｖＷｆの血小板への結合を減少させた（以下の表ＩＩを参照）。以上をまとめると、コラーゲンに対する血小板粘着の後、ＨＥＰ−ＰＧは血小板活性化をブロックし、同時にｖＷｆに強固に結合することにより、ＧＰ ＩＩｂ／ＩＩＩａに対するｖＷｆのアベイラビリティーを減少させた。マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧ分子およびＨＥＰ−ＰＧ分子はｖＷｆに結合することにより、ｖＷｆの、ＧＰ ＩＩｂ／ＩＩＩａとの相互作用だけでなく、ＧＰ Ｉｂとの相互作用の破壊をももたらした。したがって、リストセチン誘発性の血小板凝集がＨＥＰ−ＰＧにより顕著に減少した（以下の表Ｉ参照）。

１００倍過剰のＨＭＷＨはｖＷｆ結合を阻害したが、使用したＨＥＰ−ＰＧの濃度では、リストセチンにより刺激された血小板に対するｖＷｆの結合（静止条件）は影響を受けなかった。ＨＥＰ−ＰＧが血小板−コラーゲン相互作用を阻害する高いずり速度での流動血液においては、これらの巨大分子は、静止結合分析における効果と比較して、ｖＷｆ−依存の血小板活性化に対する効果が確かに強かった。実際、試験管内および生体内の両方で、ＨＭＷＨはｖＷｆ依存の血小板機能がかなり妨害されることが既に報告されている（Sobel M, McNeill PM, Carlson PL, Kermode JC, Adelman B. Conroy R, Marques D: J Clin Invest 1991; 87: 1787-1793）。しかし、ＨＥＰ−ＰＧは、ｖＷｆのコラーゲンへの結合を阻害するどころかむしろ増強し、この結合はＧＰ Ｉｂおよびヘパリン結合領域が存在するＡ１ドメイン以外のｖＷｆ分子の他のドメインによっても媒介される。ｖＷｆのコラーゲンへの結合の増加によってコラーゲンの血小板活性化ドメインは遮蔽されたと考えられる。

本発明のヘパリン様分子の供給源の１つであるマスト細胞は、血管壁の外膜層および小静脈の血管周囲に多く存在する（Galli SJ. N Engl J Med 1993, 328: 257-265）。それらは、アテローム発生の部位である動脈内膜にも存在し、活性化されたマスト細胞は、最も一般的な破裂部位である、冠アテロームの炎症領域の肩の部分（inflammatory shoulder region）へ浸潤することが分かっている（Kovanen PT, Kaartinen M, Paavonen T. Circulation 1995; 92: 1084-1088）。活性化されると、炎症中に起こるように、マスト細胞は脱顆粒し一連の血管作用因子をエキソサイトーシス (exocytosis) によって排出する。なかでも短命ロイコトリエンおよびプロスタグランジン、血小板活性化因子およびヒスタミンは血小板を刺激することが知られている。ヒスタミンは、内皮のフォンビルブラント因子（ｖＷｆ）およびＰ−セレクチンを放出し、２つの因子は血小板および白血球に対する重要な粘着シグナルである（Wagner DD. Thromb Haemost 1993; 70: 105-110）。さらに、マスト細胞は、そこから臨床的に使用されるヘパリンが得られるグリコサミノグリカンを分泌するのに対し（Nader HB, Dietrich CP., in Line DA and Lindahl U (eds): Heparin: Chemical and Biological Properties, Clinical Application. Edward Arnold, London. 1989, pp 81-96 ）、活性化された血小板は、血小板第４因子、ヘパリン中和因子、およびヘパリン開裂エンドグリコシダーゼであるヘパリチナーゼを分泌する。このように、これら２つのタイプの細胞間での相互作用が、それらが活性化された後に存在するようであるが、これまで十分に特徴付られてはこなかった。

止血においてマスト細胞活性化が関与するかどうかを、マスト細胞が過剰に活性化された状態になる２つの臨床的状態である、アナフィラキシーおよび肥満細胞症の間に調べることができる。これらの状態でも、血管内皮における変化、つまりその非血栓形成特性のダウンレギュレーション、粘着分子の誘導、透過性の増加および内皮下構造の露出（Wagner DD. Thromb Haemost 1993; 70: 105-110）、を引き起こす血小板アゴニストや強力な炎症メディエーターの放出にもかかわらず、血栓はあまりおこらなかった。

したがって、活性化されたマスト細胞はそれ自身の血栓形成性を阻害することも可能であった。以前、その抗凝固能力に加え、臨床的に有用な高分子量のヘパリングリコサミノグリカン（ＨＭＷＨ；平均分子量１５ｋＤａ）が、低用量のコラーゲンによって誘発される血小板凝集を阻害することを示した（Fernandez F, N'guyen P, van Ryn J, Ofosu FA, Hirsh J, Buchanan MR. Thromb Res. 1986; 43: 491-495）；興味深いことに、ヘパリンの阻害効果は使用したヘパリンの分子量に直接関係することが分かった。

本発明を導いた研究では、（ＨＥＰ−ＧＡＧ）−およびＨＥＰ−ＰＧ−分子は、マスト細胞顆粒からエキソサイトーシスの後に放出された。可溶性のＨＥＰ−ＰＧの放出の後に顆粒の不溶性のマトリックスを形成する残ったプロテオグリカン（顆粒残遺物；直径０.５〜１.０μｍ）は、ヘパリングリコサミノグリカン鎖のみから構成されていた（Lindstedt K, Kokkonen JO, Kovanen PT. J Lipid Res 1992; 33: 65-74）。一方、顆粒から細胞外の液体に放出された可溶性のプロテオグリカンは、ヘパリンを含み、程度は低いがコンドロイチン硫酸グリコサミノグリカン鎖も含んでいた（Lindstedt K, Kokkonen JO, Kovanen PT. J Lipid Res 1992; 33: 65-74）。可溶性ＨＥＰ−ＰＧに対するヘパリナーゼおよびコンドロイチナーゼの異なる効果、つまり前者はその阻害活性を減少させるが後者はそうでないということから、血小板−コラーゲン相互作用に対する阻害効果がＨＥＰ−ＰＧのヘパリングリコサミノグリカンに起因しているということが分かった。可溶性ＨＥＰ−ＰＧの構造的解析では、二糖単位の組成がヘパリンに典型的なものである（J-p. Li, P. Kovanen, U. Lindahl, unpublished results）。したがって、ＨＥＰ−ＰＧと市販のヘパリンとの間の観察された機能の違いは、グリコサミノグリカン鎖の組成以外の他の要因によるものであると結論できた。このように、血小板機能を阻害するインタクトなＨＥＰ−ＰＧ（分子量７５０ｋＤａ）の能力は、上に既に述べたようにＨＭＷＨ（分子量１５ｋＤａ）またはＬＭＷＨ（分子量５ｋＤａ）（図２）よりも大きかった、ＨＥＰ−ＰＧから放出されるヘパリングリコサミノグリカン鎖（分子量７５ｋＤａ）の能力よりも高かった。同時に、上記の知見は、本発明の高い分子量のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）をもたらす、大きいサイズのヘパリン鎖と、そのコアタンパク質への結合の両方が、観察された阻害に寄与する最も重要な因子であることを示した。

ヘパリナーゼでヘパリン鎖の部分を破壊すると阻害能力が減少するので、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧの阻害能力は、ヘパリン鎖にのみ関連していた。ＨＥＰ−ＰＧを高塩濃度で処理し、プロテアーゼのイオン介在の結合、つまりグリコサミノグリカン鎖に結合したチマーゼ、トリプターゼ、およびカルボキシペプチダーゼＡを切断した後でもコラーゲン誘発性の血小板凝集に対する記載した阻害能力が存在していた。

等モル濃度で標準的なヘパリンの負の電荷を中和することが知られている硫酸プロタミンは、１００倍モル過剰でＨＥＰ−ＰＧの効果のみを阻害した。このことは、ヘパリンの天然のアントゴニストである血小板由来の第４因子が、血小板凝集の間に放出され、ＨＥＰ−ＰＧを中和するための非常に高い局所的濃度に必要であろうということを示した。分子量５００，０００を有するポリリジンの血小板凝集濃度においてさえ、ＨＥＰ−ＰＧは阻害能力を保持した。これらの証拠はすべて、ヘパリンの強い負電荷がＨＥＰ−ＰＧの活性に決定的なものであることを示した。

血管傷害によって露出したコラーゲンにより相互作用を受ける血小板は、止血とアテローム血栓症の両方において非常に重要な役割を果たしていると考えられている。血小板−血管壁相互作用における血管コラーゲンの重要性は、コラーゲンに対する糖タンパク質受容体またはＧＰ Ｉａ／ＩＩａに対するｍａｂｓにおける血小板の欠陥、およびコラーゲン合成が最適化されたときに平滑筋細胞マトリックスの血栓形成性が増大することによるコラーゲン合成の欠陥を有する出血障害の患者においては明らかである。マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧは、マスト細胞が存在し、様々な刺激によって活性化され得る、内皮下および外膜へ局所的に分泌され得る（Kolodgie FD, Virmari R, Cornhill JF, Herderick EE, Smialek J. J Am Coll Cardiol 1991; 17: 1553-1560）。コラーゲンに対する血小板反応性に対するＨＥＰ−ＰＧの有意の阻害能力は、血管壁における血栓を制限する新たなマスト細胞依存の生理学的メカニズムを暗示した。このメカニズムは、ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子の多重構造に依存していると考えられた。最初の知見は、後になって確認され、他のヘパリン様化合物においても見出すことができた。

本研究の別の目的は、血小板−コラーゲン相互作用に対するマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）の効果を調べることであった。モデルとしてラット漿膜マスト細胞を使用した。これらの細胞は、それぞれモノマーを含み、分子量７５ｋＤａ（５０〜１００ｋＤａの範囲）のヘパリングリコサミノグリカン鎖を平均で１０個含む、分子量７５０ｋＤａ（７５０〜１０００ｋＤａの範囲）の（ＨＥＰ−ＰＧ）からなる細胞質分泌性顆粒で満たされている。

活性化されると、マスト細胞はそれら顆粒のうちのいくつかを、細胞外液に放出し、そこで顆粒ＨＥＰ−ＰＧの画分が可溶化する（Lindstedt K, Kokkonen JO, Kovanen PT. J Lipid Res 1992; 33: 65-74）。これらの可溶性ＨＥＰ−ＰＧは、コラーゲン誘発性の血小板凝集と固定されたコラーゲンとの血小板の相互作用を強力に阻害することが分かった。この知見は、多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）またはＨＥＰ−ＧＡＧ分子を含むヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）自体が血管の細胞外マトリックスに対する反応性を減弱し、それによりマスト細胞の他の潜在的な血栓形成効果と拮抗するということを暗示している。ＨＥＰ−ＧＡＧ分子構造の多重の特徴は、所望の効果を達成するのに非常に重要であることが示され、本発明においてマスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧ分子の活性は、他のヘパリン様化合物の活性と同様、負に帯電したヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカンの分子の複雑さおよび/または高いカップリング密度に基づいているということが示された。

本発明のヘパリン様化合物、特にマスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子によって得られた改良は、コラーゲン誘発性の血小板凝集および血小板豊富血漿におけるセロトニン放出を完全に阻害するという事実に基づいていることが示された。さらに、本発明のヘパリン様化合物は、流動している全血においてコラーゲンでコーティングされた表面における血小板沈着を、低いおよび高いずり速度の両方で好ましく阻害する。マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子と同じように、それらは血小板の活性化および凝集、並びに血小板へのフィブリノーゲンの結合をコラーゲン刺激の後に、同時に、フォンビルブラント因子（ｖＷｆ）を強固に結合し、そのコラーゲンへの結合を促進することにより、同様に、いくつかの決定的なコラーゲンの血小板活性化領域を遮蔽することにより、好ましく減弱化する。さらに、ヘパリン様化合物は好ましくはトロンビン誘発性の凝集と、その後のフォンビルブラント因子の糖タンパク質ＧＰ ＩＩｂ／ＩＩＩａ複合体への結合を減少させる。流動している全血における血小板懸濁液中でのコラーゲン誘発性の血小板凝集および血小板と固定されたコラーゲンとの相互作用の阻害は、それらの最も傑出した特性である。

アレルゲン誘発性のマスト細胞活性化が出血時間を有意に長引かせ、出血時間において提供者の血液中でのトロンビン生成を減少させたという事実（Kauhanen P, Kovanen PT, Reunala T, Lassila R. Thromb Haemost, Thromb Haemost 1998; 79: 843-7）は、マスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）および多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）の特性としての、血管の細胞外マトリックスに対する血小板の反応性の減少による出血時間の皮膚のマスト細胞活性化誘発性の遷延化を説明するようである。

マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧは、１０分間続く急性モデルおよび７２時間の追跡モデルにおいて、吻合の間のラットの大腿動脈における血栓形成を破壊することが示した。これは本発明のヘパリン様化合物の所望の特性である。ＨＥＰ−ＧＡＧ分子およびＨＥＰ−ＰＧ分子が、所望の技術的特徴を有する本発明の他のいくつかのヘパリン様化合物によっても得られ、その結果として、血管または毛細血管の傷害または例えば血栓によって引き起こされた血管系における他の重篤な障害に関連する血小板凝集の阻害を含む改良が、本発明の他のヘパリン様化合物によって得ることができた。

マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子を含め、本発明のヘパリン様化合物は、例えば手術後の治癒で望ましくないまたは過剰な血液凝固を生じる分画されていないヘパリンと比較すると、より効果的な障害の局所的予防的処置および阻害をもたらすことが示された。多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）部分を含むマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）と同様に、本発明のヘパリン様化合物は、血管細胞外マトリックスに対する血小板の反応性を減弱させる効果の原因であることが示された。マスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧ分子のＨＥＰ−ＧＡＧ部分の多重構造または負に帯電したグリコサミノグリカン単位の高いカップリング密度が、その化合物に独特の特性を付与する本発明のヘパリン様化合物をもたらすことを示した。このように、長球状、瓶ブラシ状の空間的提示または配置が、所望の効果を得るために特に重要であるということ、その結果、多重の末端−末端および／または末端−側鎖で連結したグリコサミノグリカン単位を有する合成または半合成で得られたＨＥＰ−ＧＡＧ分子が、それ自身で特に有利であり、マスト細胞由来のＨＥＰ−ＧＡＧおよびＨＥＰ−ＰＧ分子と同じかまたは改良された特性によって特徴づけられることが示された。

本発明の他のヘパリン様化合物は、グリコサミノグリカン単位、好ましくはヘパリングリコサミノグリカン単位を末端−末端または末端−側鎖で連結させて十分に大きなグリコサミノグリカン分子を形成することにより製造することができ、該多重の直鎖または分岐したグリコサミノグリカン分子は、それ自体で使用でき、または天然の、合成または半合成によって得られたコア分子、例えば球状タンパク質またはポリペプチド鎖など、好ましくは短いポリペプチド鎖と複合体を形成し、それらの特性は容易にスクリーニングおよび試験することができるものである。

本発明のヘパリン様化合物は、局所的使用のための調製物を製造するのに、およびデバイス、例えばステント、移植片および／または体外循環系などをコーティングするのに有用である。該調製物、手段およびデバイスは、血管の傷害および介入による動脈血栓の予防的処置、並びに流動している全血のコラーゲンとの相互作用の阻害において後で使用することができる。このように本発明のヘパリン様化合物は、改善された、即ち、改善された効力による、アテローム血栓症を含む血栓および血管の傷害および血管内皮のその他の変化を含む他の止血状態を阻害するためのより効果的な局所的処置のための、医薬調製物または医薬を製造するために使用することができる

上記のすべての本発明のヘパリン様化合物は、血管または毛細血管の傷害または介入による動脈血栓の予防的処置に使用し、これらをそれ自身としてまたは適当な、適合する添加物、担体などと組み合せて、または本発明のヘパリン様化合物でコーティングされたステント、移植片などのデバイスとして、局所的に適用または投与する。

様々な種類のデバイス、例えばステントは、その使用およびそのコーティングについて詳細に記載されており、例えばその内容が本明細書の一部を構成する以下の特許公報に記載されている：ＷＯ ９８／２２１６２、ＥＰ ８３２６１８、ＵＳ ５,７１８,８６２、ＵＳ ５,６０３,７２２、ＵＳ ５,５８３,２１３、ＵＳ ５,５７１,１６６、ＵＳ ５,５５４,１８２、ＵＳ ５,６１８,２９８、ＵＳ ５,３４２,６２１、ＵＳ ５,４０９,６９６。

該デバイスはまた、種々の適用に応じた、多くの種々の形態で商業的に入手可能である。そのような製品は、例えば、ＡＶＥ（Arterial Vascular Engineering, Santa Rosa, CA 95403, USA）製のMicrostent II（商標）、SciMed Boston Scientific Corporation, France 製のNIR（商標）およびNIROYAL（商標）ステントである。デバイスは、剛体の、半剛体の、弾力性の、らせん形をした、一般にプラスティック、シリコン、金属、ハイドロキシアパタイトでできたものである。ステントの調製の材料として特に好ましいのは、ポリアクリル酸であるが、本発明のＨＥＰ−ＧＡＧおよび／またはＨＥＰ−ＰＧ分子でコーティング可能な、所望なフレキシブルな、弾力性のある、半剛体のまたは剛体の、堅さを有するその他のものは、本発明の範囲から何ら除外されることはない。

本発明は、他の血管または毛細血管の手術を含む、血管形成術、ステントおよび／または移植片の適用などの血管の傷害による血栓を含む血栓症の予防的処置および／または阻害において使用するための、薬学的または医学的活性を有する調製物に関する。

本発明の、水溶性の、ヘパリン様化合物を得るために使用する方法および材料、並びにそれを含む調製物およびデバイスおよびそれらの使用を以下の実施例においてさらに詳細に記載する。

実施例は、単なる説明であって発明の範囲の限定と解釈されるべきではない。当業者は、本発明を応用するためのさらなる可能性をすぐに認識するであろう。

（使用した方法および材料を記載する実施例）
実施例１Ａ
ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）の製法
刺激されたマスト細胞によってエキソサイトーシスされたヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）
マスト細胞はラットの腹膜腔および胸膜腔から報告（Ｙｕｒｔ・ＲＷ；Ｗｅｓｌｅｙ・Ｌｅｉｄ，Ｊｒ．Ｒ；Ａｕｓｔｅｎ・ＫＦ著、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、１９７７年、２５２巻：５１８〜５２１頁）に従って分離した。標準的な検定においてはマスト細胞１０〜１３×１０⁶個をＨＳＡ（Ｒｅｄ・Ｃｒｏｓｓ・ Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ・Ｓｅｒｖｉｃｅ社、ヘルシンキ、フィンランド）０．１ｍｇ／ｍＬおよび５．６ｍＭ−グルコース添加ＰＢＳ緩衝液１ｍＬ中にインキュベーションした。プレインキュベーション（１５分間、３７度）後、細胞を特異的マスト細胞アゴニストである化合物４８／８０（Ｓｉｇｍａ・Ｃｈｅｍｉｃａｌ社）（５μｇ／ｍＬ）とともに１５分間インキュベーションした。対照実験は化合物４８／８０が血小板凝集を誘導しないことが証明された。脱顆粒したマスト細胞１５０×ｇで１０分間遠心分離してを沈降させ、上清液をさらに１５分間１２０００ｇで遠心分離してエキソサイテーションした顆粒を沈降させ、顆粒不含上清液をアルシアンブルー（Ｆｌｋａ社）反応性物質の含量について分析した（Ｌｉｎｄｓｔｅｄｔ・Ｋ；Ｋｏｋｋｏｎｅｎ・ＪＯ；Ｋｏｖａｎｅｎ・ＰＴ著、Ｊ．Ｌｉｐｉｄ・Ｒｅｓ．、１９９２年、３３巻：６５〜７４頁）。血漿不含で行った実験では大豆トリプシン阻害剤（Ｓｉｇｍａ社）を加えてマスト細胞由来天然セリンプロテアーゼを不活化した。実験を通じてＨＥＰ−ＰＧは３００倍濃度までの商業的ブタ非分画高分子量ヘパリン（ＨＭＷＨ）（Ｌｅｉｒａｓ、フィンランド）（平均ＭＷ１５ｋＤａ、１％＜７。５ｋＤａ、１ｍｇ＝１００ＩＵ・ＵＳＰ）および分画低分子量ヘパリン（ＬＭＷＨ）（Ｆｒａｇｍｉｎ，Ｋａｂｉ・Ｐｈａｒｍａｃｉａ社）（ＭＷ５ｋＤａ、２５％＞７．５ｋＤａ、１ｍｇ＝１５２抗Ｘａ単位）と比較した。ＨＥＰ−ＰＧは緩衝液または血漿中のイオン化カルシウムまたはマグンシウムの含量を変化させなかった（Ｍｉｃｒｏｌｙｔｅ・６、Ｋｏｎｅ・Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社、フィンランド）（Ｂｏｉｎｋ・ＴＢＴＪ；Ｂｕｃｋｅｌｙ・ＢＭ；Ｃｈｒｉｓｔｉａｎｓｅｎ・ＴＦ，Ｃｏｖｉｎｇｔｏｎ・ＡＫ；Ｍｕｌｌｅｒ−Ｐｌａｔｈｅ・Ｄ；Ｓａｃｈｓ・Ｃｈ；Ｓｉｇｇａａｒｄ−Ａｎｄｅｒｓｏｎ・Ｏ著、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｃｈｅｍ．Ｃｌｉｎ．Ｂｉｏｃｈｅｍ、１９９１年、２９巻：７６７〜７７２頁）。マスト細胞を^３５Ｓ−硫酸ナトリウム（Ａｍｅｒｓｈａｍ・Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ）と報告（Ｌｉｎｄｓｔｅｄｔ・Ｋ；Ｋｏｋｋｏｎｅｎ・ＪＯ；Ｋｏｖａｎｅｎ・ＰＴ著、Ｊ．Ｌｉｐｉｄ・Ｒｅｓ．、１９９２年、３３巻：６５〜７４頁）のようにインキュベーションすることによってＨＥＰ−ＰＧを放射能標識した。実験によってはＨＥＰ−ＰＧをコンドロイチナーゼＡＢＣおよびヘパリナーゼ（共に生化学工業社）で処理した。

実施例１Ｂ
ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）の製法
天然ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）
哺乳類起源でたとえば皮膚マスト細胞および漿膜マスト細胞のような結合組織型マスト細胞は実施例１Ａに記載した方法または僅か修正した方法を用いてラットのみならずたとえばウシ、ブタ、ヒツジその他の哺乳類種からも分離できる。ウシまたはブタの屠殺時に腹膜腔および胸膜腔を燐酸緩衝食塩水を用いて洗浄する。液を集めて１回１００×ｇで５分間遠心分離し、沈降した細胞をＰＢＳに再懸濁する。マスト細胞の分離はファイコル中で勾配遠心分離することによって達成され、その間にマスト細胞は３０％および４０％ファイコル層の中間層に濃縮される。可溶性プロテオグリカンを得るためにマスト細胞を塩基性ポリアミンである化合物４８／８０またはカルシウムイオノフォアＡ２３１８７で刺激してマスト細胞顆粒のエキソサイトーシスを誘導させる。

エンドグリコシダーゼによって分解される常法通りに分離されたウシまたはブタ誘導ヘパリングリコサミノグリカンとは対照的に、培養された精製マスト細胞は遊離の実質的に分解されていないポリサッカライド鎖を蓄積するが、それはエンドグリコシド分解を受けない（Ｎａｄｅｒ・ＨＢ；Ｄｉｅｔｒｉｃｈ・ＣＰ著、Ｌａｎｅ・ＤＡとＬｉｎｄａｈｌ・Ｕ編、「Ｈｅｐａｒｉｎ：Ｃｈｅｍｉｃａｌ・ａｎｄ・Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ・Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ，Ｃｌｉｎｉｃａｌ・Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ」、Ｅｄｗａｒｄ・Ａｒｎｏｌｄ社、ロンドン、１９８９年、８１〜９６頁）。リンパ節由来マスト細胞はヒト細胞系統であるＨＭＣ−１と同様に培養できる。これらの培養された細胞は遺伝子的に処理してはぺの産生を強化できる。マウス骨髄由来マスト細胞とフィブロブラストとの共培養はコンドロイチン硫酸に関連するヘパリンの生合成を増加することが報告されている。共培養の使用は後にＨＥＰ−ＰＧ分子を放出する細胞の増殖を改善するために推奨される。

このようなヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）は典型的にはプロテオリシス分解に対する抵抗性がより高いことが知られている。これはおそらく炭水化物でペプチドコアが高度に置換されているためである。これは長時間持続する活性のためおよび安定性および貯蔵性または寿命の増加によるＨＥＰ−ＰＧ分子の使用可能性を増大する。

実施例１Ｃ
ヒトのマスト細胞からヒト由来天然ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）を製造する方法
ヒト起源のたとえば皮膚マスト細胞および漿膜マスト細胞のような結合組織型マスト細胞は実施例１Ａに記載した方法または僅かに修正した方法を用いて分離できる。通常に行われる生検走査で患者から採取できる程度の少量な試料のみが必要でないことは明らかである。ヒト由来マスト細胞はその後通常の細胞培養培地中でこのマスト細胞がを好に増殖させる条件下に培養される。マスト細胞は燐酸緩衝食塩水で収集し、実施例１Ａおよび１Ｂに記載したように処理する。一度培養されると細胞培養物を保存してそれ自体既知の方法によって貯蔵されて多数の細胞を産生するための無制限な源泉を提供する。

実施例１Ｄ
ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）の製法
合成高分子量ヘパリン鎖およびＨＥＰ−ＰＧ
ＨＥＰ−ＧＡＧ分子およびＨＥＰ−ＰＧ分子の多重構造は血小板−コラーゲン相互作用に対する阻止作用に必須である。しかしながら、７５±２５ｋＤａまたはそれ以上の非常に長いグリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）鎖は阻止性能を保持しているが、これは低分子量種とは対照的である。そこで、合成鎖は分子量が少なくとも１２ｋＤａ、好ましくは１５〜２０ｋＤａを持つグリコサミノグリカン単位少なくとも３個〜１０個を含み、これが末端−末端または末端−側鎖で相互に結合して直線状または分枝状ヘパリングリコサミノグリカン鎖分子を形成していなければならない。さらに在来型に近い構築物を得るためには別々の長鎖ヘパリン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）鎖を米国特許第５５２９９５８号に記載されているような多量体リンカー分子に結合することもある。有用な多量体コア分子は例えば反復Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−配列を含む鎖様ペプチドまたはＳＰＤＰ、Ｎ−サクシニルイミジル−３−（２−ピリジルチオ）プロピオネートのようなリンカー分子を介してヘパリンに結合できるたとえばアルブミン（ＨＳＡ）のような球状プロテインである。

リンカー量に対して過剰量のヘパリンを使用すべきである。しかしその比率は所望の合成ヘパリン様化合物の構造に依存して変化するのは当然である。これらの選択肢、即ち単鎖ＨＥＰ−ＧＡＧ分子および合成ＨＥＰ−ＰＧ構築物は天然のヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）にある可能性あるプロテイン部分が存在しないために抗原性の少ない改善された製品を製造する可能性を提供する。これとは別に最適ヘパリン密度を持つ高分子量多重ＨＥＰ−ＧＡＧ分子は標準的な非分画ヘパリン（１２ｋＤａ）鎖をたとえばヘテロ双官能結合試薬であるＳＰＳＤを用いてアルブミンのような球状コア分子に結合することによって得ることができる。

実施例１Ｅ
ヘパリンとウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）との交差結合
ヘパリン（Ｌｏｖｅｎｓ社、ＭＷ１５ｋＤａ）２ｍｇをＰＢＳで希釈しヘテロ双官能結合試薬ＳＰＤＰ（Ｎ−サクシンイミジル−３−（２−ピリジルチオ）プロピオネート、Ｆｌｕｋａ・Ｃｈｅｍｉｅ社、スイス）１ｍｇとメタノール中で結合した。ヘパリン結合試薬溶液（２００μＬ）をＤＴＴ（ジチオスレイトール、Ｓｉｇｍａ・Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）１０ｍｇ／ｍＬ（８００μＬ）によって活性化し、ＤＴＴの効果を３４３ｎｍで分光光学的に監視した。試料１ｍＬをＰＤ−１０カラムｈａｒｍａｃｉａ・Ｂｉｏｔｅｃｈ社、ウプサラ、スウェーデン）から溶離し、１０画分（各１ｍＬ）を採取した。各画分の吸光度を分光光学的に３４３ｎｍで分析し、この中で遊離ＤＴＴを含まない４画分を一緒に保存した。 ＢＳＡ０．２５０ｍｇ（１００μＬ）およびＳＰＤＰ０．５ｍｇ（５０μＬ）を２０分間２２℃で撹拌し、０．９％塩化ナトリウム８５０μＬを加えた。この試料をＰＤ−１０カラムをとおして溶離し各１ｍＬ画分を採取した。各画分から非結合ＳＰＤＰ１００μＬを除去するために各画分をＤＴＴ９００μＬで処理して吸光度を３４３ｎｍで測定した。遊離ＳＰＤＰを含まない画分５個を集めた。ヘパリン−ＳＰＤＰおよびＢＳＡ−ＳＰＤＰ双方の貯蔵各画分の塩化ナトリウム濃度を３Ｍまで上昇させ、これら２種の液を一緒に４℃で一夜インキュベーションして結合を誘導した。ヘパリン−ＢＳＡ結合試料は０．９％ＮａＣｌでＳｅｐｈａｃｒｙｌ・Ｓ−３００ゲル（Ｐｈａｒｍａｃｉａ・Ｂｉｏｔｅｃｈ社）またはＰＤ−１０から溶離した。各画分０．５ｍＬで第１〜第４５画分または第１〜第２５画分の各々を採取してＢＳＡ−含量、すなわち２８０ｎｍの吸光度に基づいて画分２４〜３６または画分１６〜２１を採取した。

各画分を濃縮し、ＶＳＷＰＯ２５００フィルム（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社、ブレッドフォード、ＭＡ）を使用して３０分間水に対して透析したかまたは（Ｓｐｅｃｔｒａｐｏｒ・ｍｏｌｅｃｕｌａｒ・ｐｏｒｏｕｓ・ｍｅｍｂｒａｎｅ・ＭＷＣＯ：１２〜１４．０００，Ｓｐｅｃｔｒｕｍ・Ｍｅｄｉｃａｌ・Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社、ラグナヒルズ、ＣＡ）で３０分間水に対して微量透析し、２時間後に反復した。続いて各画分をグリコサミノグリカン含量について分析し（Ｂｌｙｓｃａｎ、Ｂｉｏｃｏｌｏｒ社、ベルファスト、北アイルランド）、血小板凝集計で検査した（図１０参照）。一例としてＰＤ−１０で分離したヘパリン０．７４μｇ／ｍＬを含有する画分＃２１に対する凝集曲線を示す。全画分１８〜２１はコラーゲン誘導血小板凝集に対する阻止性能を示した（詳細については実施例２２を参照）。

実施例２
トロンビンの阻害
プールしたクエン酸化血漿におけるトロンビン時間によっておよびトロンビン基質（Ｓ−２２３８、Ｃｈｒｏｍｏｇｅｎｉｘ、Ｋａｂｉ・Ｐｈａｒｍａｃｉａ社）（Ｌａｒｓｅｎ・ＭＬ；Ａｂｉｌｄｇａａｒｄ・Ｕ；Ｔｅｉｅｎ・ＡＮ；Ｇｊｅｓｄａｌ・Ｋ著、Ｔｈｒｏｍｂ．Ｒｅｓ．、１９７８年、１３巻：２８５〜２８８頁）を用いるクロモゲン検定によってＨＥＰ−ＰＧ、ＨＭＷＨおよびＬＭＷＨの相対的力価を測定した。後者の検定ではトロンビン（Ｄａｄｅ、Ｂａｘｔｅｒ・Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社、ＦＬ）１Ｕ／ｍＬ（１１０Ｕ／ｍｇ）が使用したグリコサミノグリカン濃度の効果を決定するために選択した量であった。外因性トロンビン活性は抗トロンビンＩＩＩ（Ｋａｂｉ・Ｐｈａｒｍａｃｉａ社）単独の存在下および血漿希釈２段階（１：５および１：４０）トリス−ＮａＣｌ、ＨＳＡ、ｐＨ８．２）においてグリコサミノグリカンの競合的結合に対する対照として評価した。血漿（１：４０希釈）の不在下および存在下において、外因性抗トロンビンＩＩＩを２段階の濃度、７．５および１０ＭＵ／ｍＬで使用した。氷上の試薬を９６ウェルマイクロタイタープレート（Ｆａｌｃｏｎ・３０７２、Ｂｅｃｔｏｎ・Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社）に入れ、３７℃で１０分間インキュベーションした。Ｓ−３３３８を添加し、反応を２０％酢酸で停止し、残留するトロンビン活性を分光光学的に評価した。（４０５ｎｍ）（Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ・Ｍｕｌｔｉｓｃａｎ・ＭＣＣ、Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ社、フィンランド）。

実施例３
血小板調製
研究に用いた血液は医薬を投与されていない健康ボランティアが提供した。自由流動血液９容積ＰＴＦＥカニューレ（Ｖｉｇｇｏ社、スフェーデン）を用いてＤ−フェニアラニル−１−プロピル−１−アルギニンクロロメチルケトン（ＰＰＡＣＫ）（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ社）（２００〜４００μＭ）または酸性クエン酸デキストロース抗凝固剤（ＡＣＤ）［凝固にはｐＨ４．９（ｐＨ７．３、ＰＲＰ中）およびゲル濾過にはｐＨ４．５］に採取した。血小板豊富血漿（ＰＲＰ）を遠心分離によって分離（１８０×ｇ、１２分、２２℃）し、血小板凝集研究および接着検定に使用した。セロトニン陽性血小板の沈着と放出反応を検出するためにＰＲＰ中の血小板を¹⁴Ｃ−セロトニン（比放射能８μＣｉ／ｍＬ、最終濃度セロトニン４０ｎＭ）（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）または３Ｈ−セロトニン（比放射能１５μＣｉ／ｍＬ、最終濃度セロトニン１０ｎＭ）（Ａｍｅｒｓｈａｍ社）と３７℃で１５分間標識した。血液潅流研究では標識ＰＲＰを残留血液に加えた。セロトニン標識による血小板検出法は沈着したプロテインの決定と電子顕微鏡術によって検証されている（Ｍｕｓｔｏｎｅｎ・Ｐ；Ｌａｓｓｉｌａ・Ｒ著、Ｔｈｒｏｍｂ．Ｈａｅｍｏｓｔ．、１９９６年、７５巻：１７５〜１８１頁）。

ゲル濾過した血小板はＰＲＰからＰＧＥ₁（２５ｎｇ／ｍＬ）およびアピラー ゼ（１Ｕ／ｍＬ）（双方ともＳｉｇｍａ社）存在下における単回の洗浄操作の後に製造し、血小板懸濁液を次にセファロースＣＬ−２Ｂカラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ・ＬＫＢ社）を通した。ゲル濾過の後、リストセチン（１．０ｍｇ／ｍＬ）（Ｓｉｇｍａ社）は血小板反応を誘導せず、ｖＷｆの不在を示し、またこの細胞懸濁液は交差免疫電気泳動が証明するように抗トロンビンＩＩＩ活性を示さなかった（Ｌａｎｅ・ＤＡ；Ｂｏｉｓｃｌａｉｒ・ＭＤ著、Ｔｈｏｍｐｓｏｎ・ＪＭ編、「Ｂｌｏｏｄ・Ｃｏａｇｕｌａｔｉｏｎ・ａｎｄ・Ｈａｅｍｏｓｔａｓｉｓ．Ａ・Ｐｒａｃｔｉｃａｌ・Ｇｕｉｄｅ．」、Ｃｈｕｒｃｈｉｌｌ−Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎｅ社、１９９１年、４５〜７０頁）。ゲル濾過血小板は凝集実験、コラーゲンへのＭｇ⁺⁺依存性血小板接着実験、および血小板−血小板相互作用をっ媒介するリガンド（フィブリノーゲンおよびｖＷｆ）結合の実験のために使用した。溶離緩衝液は１ｍＭ−Ｍｇ⁺⁺添加ＨＥＰＥＳであった（Ｔｉｍｍｏｎｓ・Ｓ；Ｈａｗｉｇｅｒ・Ｊ著、Ｈａｗｉｇｅｒ・Ｊ編、「Ｐｌａｔｅｌｅｔｓ：Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ，Ａｄｈｅｓｉｏｎ，Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ．Ｍｅｔｈｏｄｓ・ｉｎ・Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ」、Ａｃａｄｅｍｉｃ・Ｐｒｅｓｓ社、サンジェゴ、ＣＡ、１９８９年、１６９巻：１１〜２２頁）。通常、２ｍＭ−Ｃａ⁺⁺をゲル濾過血小板懸濁液に添加したがＭｇ依存性接着（２ｍＭ）の検定にはＣａ⁺⁺は省略した（Ｓａｎｔｏｒｏ・ＳＡ著、Ｃｅｌｌ、１９８６年、４６巻：９１３〜９２０頁）。流動する血漿因子不含再構成血液中で血小板−コラーゲン相互作用を研究する時には２ｍＭ−Ｃａ⁺⁺および１ｍＭ−Ｍｇ⁺⁺添加ＨＳＡ（４％）溶液を用いた（Ｓａｋａｒｉａｓｓｅｎ・ＫＪ；Ｍｕｇｇｌｉ・Ｒ；Ｂａｕｍｇａｒｔｎｅｒ・ＨＲ著、Ｈａｗｉｇｅｒ・Ｊ編、「Ｐｌａｔｅｌｅｔｓ：Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ，Ａｄｈｅｓｉｏｎ，Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ．Ｍｅｔｈｏｄｓ・ｉｎ・Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ」、Ａｃａｄｅｍｉｃ・Ｐｒｅｓｓ社、サンジェゴ、ＣＡ、１９８９年、１６９巻：３７〜７０頁）。遠心分離および再構成の後、検定の前に最終血小板懸濁液を３０分間安定化させた。

実施例４
血小板凝集
ＰＲＰ中およびゲル濾過血小板懸濁液中での凝集はＰａｙｔｏｎ血小板凝集計（Ｐａｙｔｏｎ・Ａｓｓ．社、カナダ）を用いて実験した。ペプシン抽出コラーゲン（Ｓｉｇｍａ社、血小板凝集キット）およびウシＩ型原繊維コラーゲン（Ｍｉｌｌｅｒ・ＥＪ；Ｒｈｏｄｅｓ・ＲＫ著、Ｍｅｔｈｏｄｓ・ｉｎ・Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、１９８２年、８２巻：３３〜６４頁）、コラーゲン試薬Ｈｏｒｍ（Ｎｙｃｏｍｅｄ，Ｈｏｒｍｏｎ・Ｃｈｅｍｉｅ社、ドイツ）、トロンビン、リストセチン、ＡＤＰ（Ｓｉｇｍａ社）およびエピネフリン（Ｂｉｏａｎａｌｙｔｉｃａｌ・Ｓｙｓｔｅｍｓ社、ＩＮ）をアゴニストに使用して、血小板懸濁液２７０μＬに対して各々３０μＬ容を添加した。ＨＥＰ−ＰＧ、ＨＭＷＨおよびＬＭＷＨの効果はそれらを１分間のプレインキュベーションの間にまたはアゴニスト（コラーゲン）とともに添加することによって研究した。場合によってはＨＥＰ−ＰＧをコラーゲンの１０秒後または２０秒後に添加した。応答は一次凝集（速度、１／分）勾配および最大凝集率（％）として評価した。

実施例５
分離原繊維コラーゲンの固定化
原繊維コラーゲンはウシアキレス腱から酢酸抽出およびペプシン不含塩沈殿によって抽出した（Ｍｉｌｌｅｒ・ＥＪ；Ｒｈｏｄｅｓ・ＲＫ著、Ｍｅｔｈｏｄｓ・ｉｎ・Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、１９８２年、８２巻：３３〜６４頁）。コラーゲン（０．３６ｍｇ／ｍＬ濃度）は０．５Ｍ−酢酸中に保存し、フィブリル形成は６０ｍＭ−ＴＥＳ緩衝液（１：１）で中和し、３５℃で９０分間湿潤雰囲気中でインキュベーションすることによって誘導した（Ｈｏｌｍｅｓ・ＤＦ；Ｃａｐａｌｄｉ・ＭＪ；Ｃｈａｐｍａｎ・ＪＡ著、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｍａｃｒｏｍｏｌ．、１９８６年、８巻：１６１〜１６６頁。Ｗｉｌｌｉａｍｓ・ＢＲ；Ｇｅｌｍａｎ・ＲＡ；Ｐｏｐｐｋｅ・ＤＣ；Ｐｉｅｚ・ＫＡ著、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、１９７８年、２５３巻：６５７８〜６５８５頁）。接着実験にはこの原繊維コラーゲン溶液をエタノール洗浄円形Ｔｈｅｒｍａｎｏｘカバースリップ（直径１．５ｍｍ）上に５回スプレーした。コラーゲン懸濁液は液滴が乾燥する直前に継続的にスプレーした。コラーゲンは直径および相互間隔の双方が５０〜２００μｍの原繊維含有液滴の均一層として付着したことは走査電子顕微鏡術によって確認した（ＪＥＯＬ・ＪＳＥＭ・８２０、日本）。このカバースリップを同日に使用する前は湿潤雰囲気に保存した。潅流実験にはＴＥＳを添加して密栓したチューブを３５℃で９０分間インキュベーションすることによってコラーゲンを固定化して在来型原繊維をＰＴＦＥチューブ（Ｏｐｔｉｎｏｖａ社、フィンランド）中に原位置形成させた。インキュベーションした後、チューブをＰＢＳで洗浄した。

実施例６
ＰＲＰ中またはＭｇ⁺⁺−緩衝液中における血小板とコラーゲンとの相互作用
固定化コラーゲンへの血小板の接着を２ｍＭ−Ｍｇ⁺⁺添加ＨＥＰＥＳ中でＰＲＰ（ＰＰＡＣＫ）およびゲル濾過血小板の両方について研究した（Ｓａｎｔｏｒｏ・ＳＡ著、Ｃｅｌｌ、１９８６年、４６巻：９１３〜９２０頁）。コラーゲン被覆Ｔｈｅｒｍａｎｏｘカバースリップを２４ウェルプレート（ＮＵＮＣ）（２％ＨＳＡでプレ被覆）の底に入れ、カウントを１００または３００×１０⁶／ｍ Ｌに調整した¹⁴Ｃ−セロトニン標識ＰＲＰまたはゲル濾過血小板（Ｔｈｒｏｍｂｏｃｏｕｎｔｅｒ・Ｃ、Ｃｏｕｌｔｅｒ・Ｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃｓ社）１ｍＬを添加した。検定前にイミプラミン−ホルムアルデヒドを用いて氷上で血小板懸濁液中の¹⁴Ｃ−シンチレーション放射能および血漿中へのセロトニンの放出をチューブ中で測定した（Ｈｏｌｍｓｅｎ・Ｈ；Ｄａｎｇｅｌｍａｉｅｒ・ＣＡ著、「Ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔ・ｏｆ・ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ・ｏｆ・ｓｅｒｏｔｏｎｉｎ」、Ｈａｗｉｇｅｒ・Ｊ編、「Ｐｌａｔｅｌｅｔｓ：Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ，Ａｄｈｅｓｉｏｎ，Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ．Ｍｅｔｈｏｄｓ・ｉｎ・Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ」、Ａｃａｄｅｍｉｃ・Ｐｒｅｓｓ社、サンジェゴ、ＣＡ、１９８９年、１６９巻：２０５〜２１０頁）。

回転なしに２２℃で３０分間（血小板１００×１０⁶個／ｍＬの接着研究用） または１００ｒｐｍで回転しつつ３７℃で３０分間（血小板３００×１０⁶個／ ｍＬから接着血小板への凝集研究用）インキュベーションした後、カバースリップを取り、緩衝液で３回洗浄し、シンチレーション計数に付した。コラーゲンを被覆したカバースリップに沈着した血小板の数を添加した血小板の数と比放射能から算出した。血小板から血漿へのセロトニン放出は前記の通りに測定したが、常に５％以下であった。これらの条件の下におけるＧＰＩＩｂ／ＧＰＩＩＩａの役割を評価するために接着検定（Ｃｏｌｌｅｒ・ＢＳ；Ｐｅｅｒｓｃｈｋｅ・ＥＩ；Ｓｃｕｄｄｅｒ・ＬＥ；Ｓｕｌｌｉｖａｎ・ＣＡ著、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．、１９８３年、７２巻：３２５〜３３８頁）を行う前にＰＲＰをＧＰＩＩｂ／ＧＰＩＩＩａに対するｍＡｂ（ｍ７Ｅ３、Ｂａｒｒｙ・Ｃｏｌｌｅｒ博士から恵与）とともにプレインキュベーションした。

実施例７
流動全血中または再構成血液中における血小板とコラーゲンとの相互作用
プレインキュベーション済¹⁴Ｃ−セロトニン標識血小板含有ＰＰＡＣＫ−抗凝固血液（３０ｍＬ）中での血小板とコラーゲンとの相互作用を研究するために、血液を潅流ポンプ（Ｃｏｌｅ・Ｐａｒｍｅｒ、ＩＬ）に連結したコラーゲン被覆チューブを通して５分間再循環した。流速１０ｍＬ／分で様々な剪断速度（２００、７００および１７００／秒）を誘導するために様々な直径（１．１、１．５および１．９ｍｍ）のチューブを使用した。コラーゲン表面は血液を潅流する前にＰＢＳを潅流（３７℃で１５秒間）することによって安定化した。潅流の後、接着しなかった血小板をＰＢＳを３０秒間潅流させることによって洗い流した。接着した血小板は２％ＳＤＳ中で３０分間２回インキュベーションすることによって脱着させ、溶解物をシンチレーション計数に付した。場合によっては、走査電子顕微鏡像を潅流後の表面から得た。接着検定の項に記載したように血小板のカウント、血液の基底放射能、およびセロトニン放出を測定した。血漿蛋白質不在下における血小板−コラーゲン相互作用の研究には洗浄した赤血球、軟膜およびゲル濾過¹⁴Ｃ−セロトニン標識血小板をＨＳＡ溶液中に含む再構成血液を用いた（Ｓａｋａｒｉａｓｓｅｎ・ＫＬ；Ｍｕｇｇｌｉ・Ｒ；Ｂａｕｍｇａｒｔｎｅｒ・ＨＲ著、Ｈａｗｉｇｅｒ・Ｊ編、「Ｐｌａｔｅｌｅｔｓ：Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ，Ａｄｈｅｓｉｏｎ，Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ．Ｍｅｔｈｏｄｓ・ｉｎ・Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ」、Ａｃａｄｅｍｉｃ・Ｐｒｅｓｓ社、サンジェゴ、ＣＡ、１９８９年、１６９巻：３７〜７０頁）。われわれはまた標準ヘパリン（１０ｍｇ／ｍＬ）およびＨＥＰ−ＰＧ（１０μｇ／ｍＬ）をいずれも原繊維コラーゲン（Ｈｏｒｍ）または在来型酢酸抽出Ｉ型コラーゲンからペプシンを用いて製造した単量体コラーゲンに固定化した。ただし、このＨＥＰ−ＰＧは溶液として使用した。

実施例８
血小板とＨＥＰ−ＰＧとの間の相互作用
休止期の血小板へのＨＥＰ−ＰＧの結合を³⁵Ｓ−標識ＨＥＰ−ＰＧとＰＲＰとともにまたはゲル濾過血小板とともに３７℃で１５分間インキュベーションすることによって評価した。³⁵Ｓ−シンチレーション放射能を沈降またはゲル濾過を使用して血漿画分および血小板中に回収した。また３０分間インキュベーションすることによってｔｈｅｒｍａｎｏｘカバースリップ上にＨＥＰ−ＰＧを固定化した。結合したＨＥＰ−ＰＧ量は³⁵Ｓ−結合から測定して５６±６ｎｇ／ｃｍ² （平均値±標準偏差、ｎ＝４）の値を得た。血小板とＨＥＰ−ＰＧとの相互作用を次に前記の血小板接着検定によって測定した。

実施例９
活性化血小板へのｖＷｆおよびフィブリノーゲンの結合
ｖＷｆ（比活性２００Ｕ／ｍｇ蛋白質）（ＣＲＴＳ、フランス）（Ｂｕｒｎｏｕｆ−Ｒａｄｏｓｅｖｉｃｈ・Ｍ；Ｂｕｒｎｏｕｆ・Ｔ著、Ｖｏｘ・Ｓａｎｇ、１９９２年、６２巻：１〜１１頁）およびフィブリノーゲンをＢｏｌｔｏｎとＨｕｎｔｅｒの方法（Ｂｏｌｔｏｎ・ＡＥ；Ｈｕｎｔｅｒ・ＷＭ著、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．、１９７３年、１３３巻：５２９〜５３９頁）によってＩ¹²⁵（Ａｍｅ ｒｓｈａｍ）を用いて放射性ヨード化した。ｖＷｆおよびフィブリノーゲンの構造的安定性は勾配（４〜２１％）ＳＤＳゲル電気泳動を用いて分析することによって確認した。放射能標識ｖＷｆの機能はリストセチン−誘導ゲル濾過血小板凝集およびトロンビン誘導凝固による放射能標識フィブリノーゲンの凝集によって確認した。ゲル濾過血小板は３分間リストセチン（１ｍｇ／ｍＬ）またはトロンビン（０．１Ｕ／ｍＬ）で刺激した。あるチューブはトロンビンを添加６０秒後にヒルジン３Ｕ／ｍＬで阻害した。次に¹²⁵Ｉ−ｖＷｆ（１５μｇ／ｍＬ）を加 え、血小板（１×１０⁸）３７℃で撹拌することなくインキュベーションした。 血小板不含および血小板結合放射能を分離するために血小板懸濁液を１．３５％ＨＳＡ添加０．３Ｍ−ショ糖の上部に重層し、９５０×ｇで５分間遠心分離して血小板を沈降させた。上清液を集め、開口し、画分の放射能を計数した。¹²⁵Ｉ −フィブリノーゲン（１００μｇ／ｍＬ）のＡＤＰ−刺激およびコラーゲン刺激（撹拌）血小板への結合を同様に研究した。データはスカッチャード分析に付した。

実施例１０
コラーゲンおよびヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）へのｖＷｆの結合
コラーゲンへのｖＷｆの結合に及ぼすＨＥＰ−ＰＧ、ＨＭＷＨおよびＬＭＷＨの効果をＬａｗｒｉｅほか（Ｌａｗｒｉｅ・ＡＳ；Ｈａｒｒｉｓｏｎ・Ｐ；Ａｒｍｓｔｒｏｎｇ・ＡＬ；Ｗｉｌｂｏｕｒｎ・ＢＲ；Ｄａｌｔｏｎ・ＲＧ；Ｓａｖｉｄｇｅ・ＧＦ著、Ｂｒ．Ｊ．Ｈａｅｍａｔｏｌ．、１９８９年、７３巻：１００〜１０４頁）に従って評価した。この目的のため９６ウェルのマイクロタイターウェル（Ｍａｘｉｓｏｒｂ、ＮＵＮＣ社）をペプシン化Ｉ型コラーゲン（６７ｍＭ−燐酸塩、ｐＨ７．２に対して透析）（５０μｇ／ｍＬ）とともに３７℃で２時間被覆し、次に洗浄し、３％ＢＳＡでブロックした。次に、ｖＷｆ（０．１μｇ／ｍＬ）をプレートに加え、様々な濃度のＨＥＰ−ＰＧＨＭＷＨおよびＬＭＷＨの存在下に２時間インキュベーションした。続いて結合したｖＷｆをペルオキシダーゼ−結合ポリクローナル抗体（Ｄａｋｏ社）を使用して定量した。これに加えてｖＷｆ（１μｇ）をＨＥＰ−ＰＧ（０．５μｇ）と共に２２℃で１０分間インキュベーションし、酢酸セルロースプレート（Ｈｅｌｅｎａ・Ｌａｂ．、ＴＸ）に付着させた。このプレートを２ｍＭ−Ｃａ⁺⁺および２ｍＭ−Ｍｇ⁺⁺添加５ｍＭ−ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４によって１８０Ｖで３０分間電気泳動し、アルシアンブルーで染色してＨＥＰ−ＰＧを可視化し、またはポンカウレッドで染色してｖＷｆを可視化した。

実施例１１
統計学的分析
結果は平均値±標準偏差で示す。数値の組み合わせの間の相違の統計学的有意性は一対の値はスチューデントのｔ−検定によって、または記載したものは要因ＡＮＯＶＡによって算出した。

実施例１２
ラット大腿動脈の顕微手術における吻合および血栓症モデル２種
この研究で行った操作は全て適当な学会の指針によって承認されたものであって、また動物実験に対する政府の指針に従ったものである。処置の前にラットを麻酔した（Ｈｙｐｎｏｒｍ^TM１０ｍＬ、Ｄｏｒｍｉｃｕｍ^TM３ｍＬ、水を加えて１０ｍＬ、腹腔内）。吻合を行う前に大腿動脈を露出し、クランプ２個を設置し、血管を切断し、次に食塩水、標準ヘパリン（ＭＷ１５ｋＤａ、１ｍｇ／ｍＬ、１００ＡＴＵ／ｍＬ）またはＨＥＰ−ＰＧ（１０μｇ／ｍＬ）のいずれか１００μＬで洗浄した。操作の後（約１５分）に血管を１０−０顕微手術糸を用いる８〜１０スティッチを使用する縫合によって閉鎖した。１０分後に循環を再開し、この後にラットに過剰用量の麻酔剤を投与して実験を終了した。各処置モードはラット５匹で試験した。

吻合部位を切開して、走査型電子顕微鏡によって盲検の状態で評価を行った。各試料から７５倍および５００倍の異なる倍率２種を採用した。顕微鏡像は格付システム０〜３によって分析した。

最初の血栓症モデルでは（Ｄａｖｉｄｓｓｏｎ・ＳＦほか著、Ｐｌａｓｔ．Ｒｅｃ．Ｓｕｒｇ．、８６巻：５７９〜５８２頁、１９９０年）、血管を２分間ブルドッグクランプで押し潰し、次に血管を部分的に開いて内壁を針で１０回掻いてから食塩水、ヘパリンまたはＨＥＰ−ＰＧのいずれかを流し、血管を閉じた。循環を１０分間再開した。これ以外の実験操作は吻合モデルに記載する実験計画に従って行った。

他方の血栓症モデルでは（Ａｎｄｅｒｓｅｎ・ＤＭほか著、Ｍｉｃｒｏｓｕｒｇｅｒｙ、１５巻：４１３〜４２０頁、１９９４年）、血管を吻合モデルにおいてのように処理したが、縫合する時に血管を血流に向けて裏返して血管の全ての層、外膜、中膜および内膜が血流に露出するようにした。これ以外の実験操作は吻合モデルに記載する実験計画に従って行った。

（結果を証明する実施例）
実施例１３
トロンビンの阻害
血漿希釈１：３で実験した時には１．０μｇ／ｍＬの濃度のマスト細胞由来の可溶性ＨＥＰ−ＰＧは明らかにトロンビン時間を延長した（図１）。しかしながら、ＨＥＰ−ＰＧはＨＭＷＨまたはＬＭＷＨよりもトロンビンを明らかに非効果的に阻害した。またクロモゲン検定で測定するとＨＥＰ−ＰＧは１：５血漿希釈の存在下にはＨＭＷＨよりも明らかに非効果的にトロンビンを阻害した。この相違は使用した様々なトロンビン濃度において観察できた（０．５〜３Ｕ／ｍＬ）（データ未記載）。

血漿蛋白質がＨＥＰ−ＰＧが内因性アンチトロンビンＩＩＩまたはヘパリンコファクターＩＩの作用を増強する性能に影響を及ぼすかどうかを研究するために様々な濃度のＨＥＰ−ＰＧおよびＨＭＷＨが血漿の存在または不在下に残留するトロンビン活性に及ぼす効果を測定した。血漿希釈（１：４０）では、ＨＥＰ−ＰＧはＨＭＷＨとは大差がなかった（図２）。しかしながら血漿不在下にはＨＥＰ−ＰＧはＨＭＷＨよりも強力にアンチトロンビンＩＩＩ活性を強化した。そこでＨＥＰ−ＰＧはアンチトロンビンＩＩＩの作用を強化できるが、この性能は血漿蛋白質の存在によって妨害される。

実施例１４
血小板豊富な血漿中での血小板凝集およびセロトニン放出
マスト細胞誘導ＨＥＰ−ＰＧは研究した２種のＰＲＰ中において強力にコラーゲン誘導血小板凝集を阻止した。クエン酸化抗凝固ＰＲＰ中で実験した時には、ＨＥＰ−ＰＧは１．０μｇ／ｍＬと低濃度で阻止的であった（図２）。この濃度でＨＭＷＨおよびＬＭＷＨは凝集を阻害しなかった。そしてこれらのヘパリンは３００倍過剰（３００μｇ／ｍＬ）を使用しても無効であった。次にわれわれはＨＥＰ−ＰＧをアルカリで処理して蛋白質成分を溶解することによって分離したグリコサミノグリカン鎖を得た。平均ＭＷ７５ｋＤａのこのグリコサミノグリカン鎖ＨＥＰ−ＧＡＧの阻害作用は在来型ＨＥＰ−ＰＧのものよりも明らかに弱かったが、ＨＭＷＨおよびＬＭＷＨのものよりも明らかに強かった。ＨＥＰ−ＰＧとは対照的にＨＭＷＨはコラーゲン誘導凝集をクエン酸化ＰＲＰ中、低濃度のコラーゲン（＜２．０μｇ／ｍＬ）の時のみ妨害した。

クエン酸化およびＰＰＡＣＫ−抗凝固ＰＲＰ中のコラーゲン誘導凝集に及ぼすＨＥＰ−ＰＧの用量依存性の効果はＨＥＰ−ＰＧの阻害効果は１５０μｇ／ｍＬまでのコラーゲン濃度には非依存的であること、およびカチオン枯渇血漿中ではＰＰＡＣＫ−ＰＲＰ中よりもさらに強力であり、この場合には全素がいこうかは３μｇ／ｍＬの濃度でさえ達成されることが証明された。阻害は完全であって、ＨＥＰ−ＰＧおよびコラーゲンが同時に添加されるか、ＨＥＰ−ＰＧがコレーゲンよりも１０秒後に添加されるかには無関係であった。ＨＥＰ−ＰＧは血小板のセロトニン放出をＰＲＰ中では５０％から基底レベル（１０％）まで低下させ、試験した最高コラーゲン濃度（１５０μｇ／ｍＬ）でさえこのレベルであった。 次の実験でわれわれはＨＥＰ−ＰＧをヘパリナーゼまたはコンドロイチナーゼＡＢＣで処理した。われわれはヘパリナーゼを用いる処理がコラーゲン誘導血小板凝集を阻害するＨＥＰ−ＰＧの性能を完全に破壊するが、一方ではコンドロイチナーゼＡＢＣによる処理がＨＥＰ−ＰＧの阻害能力を減少させないことを発見した。顆粒レムナントを形成する巨大凝集ＨＥＰ−ＰＧ複合体（すなわち、エキソサイトーシスした顆粒から可溶性プロテオグリカンが放出された後に残る残留物）（Ｋｏｖａｎｅｎ・ＰＴ著、Ｅｕｒ．Ｈｅａｒｔ・Ｊ．、１４巻：補Ｋ：１９９２年、１０５〜１１７頁。Ｌｉｎｄｓｔｅｄｔ・Ｋ；Ｋｏｋｋｏｎｅｎ・ＪＯ，Ｋｏｖａｎｅｎ・ＰＴ著、Ｊ．Ｌｉｐｉｄ・Ｒｅｓ．、１９９２年、３３巻：６５〜７４頁）は同量の可溶性ＨＥＰ−ＰＧと比較するとコラーゲン誘導血小板凝集には影響を及ぼさない。しかしながら、顆粒レムナントが最初に２Ｍ−ＮａＣｌを用いて処理してＨＥＰ−ＰＧ単量体に崩壊した後に血小板に添加すると阻害作用は可溶性ＨＥＰ−ＰＧで観察されるものと等しい。

血小板のコラーゲン誘導応答を完全に失ったＨＥＰ−ＰＧの濃度（３μｇ／ｍＬ）をコラーゲン以外のアゴニストが誘導する血小板凝集に対するＨＥＰ−ＰＧの効果を試験するために選択した。表Ｉに示す通り、ＨＥＰ−ＰＧはリストセチンが誘導する血小板の凝集を阻害し、その阻害はリストセチン濃度０．６０ｍｇ／ｍＬで完全であった。また、阻害は２段階のリストセチン濃度０．７５および１．０ｍｇ／ｍＬでもかなりの値に達した。ＨＭＷＨおよびＬＭＷＨはリストセチン誘導の凝集をＨＥＰ−ＰＧと同程度には阻害しなかった。さらに、ＨＥＰ−ＰＧはＡＤＰまたはエピネフリン（１０μＭ）に応答しての血小板凝集を顕著に変更することはなかった（未記載）。

実施例１５
ゲル濾過血小板の凝集
ＨＥＰ−ＰＧをゲル濾過血小板の懸濁液に加える時、コラーゲン誘導血小板凝集は不完全にしか阻害されない。コラーゲン２５μｇ／ｍＬを用いるとＨＥＰ−ＰＧ３μｇ／ｍＬの阻害効果は２５％と６０％との範囲になる。われわれはまたトロンビン（０．１および０．２５ＩＵ／ｍＬ）誘導ゲル濾過血小板凝集を研究した。再び血小板凝集はＨＥＰ−ＰＧによってＨＭＷＨまたはＬＭＷＨ（全てが３．０μｇ／ｍＬ）によるよりも効果的に阻止された（未記載）。ＨＭＷＨは１００倍の濃度（３００μｇ／ｍＬ）を使用すれば使用したトロンビン濃度２段階で完全に阻止した。

実施例１６
ゲル濾過血小板の凝集
次にわれわれは血小板と固定化コラーゲンの間の相互作用を評価した。血小板１００×１０⁶個／ｍＬを２２℃で静置、Ｍｇ⁺⁺−依存性条件下に研究した時 にはＨＥＰ−ＰＧ（３μｇ／ｍＬ）は接着血小板の単層形成に影響を与えなかった（図３）。これとは対照的に血小板３００×１０⁶個／ｍＬを３７℃で回転した時にはＨＥＰ−ＰＧは後続する血小板−血小板相互作用を顕著に阻害した。しかしながら、ＰＰＡＣＫ−ＰＲＰ中ではＨＥＰ−ＰＧはこの相互作用を有意には減少させなかった。対応する条件下では、ＧＰＩＩｂ／ＩＩＩａに対するｍＡｂ（ｍ７Ｅ３、１０μｇ／ｍＬ）はコラーゲン誘導血小板沈着を各２０％、７５％および８０％阻害した。

実施例１７Ａ
流動血液中での血小板とコラーゲンとの間の相互作用に及ぼす可溶性ＨＥＰ−ＰＧの効果
ＰＰＡＣＫで抗凝固された全血を様々な剪断速度でコラーゲン被覆チューブを通して潅流した時に、ＨＥＰ−ＰＧ（３μｇ／ｍＬ）は血小板の沈着を顕著に阻害したが、コラーゲンへの接着は阻害しなかった。阻害は低剪断速度（２００・１／秒）および高剪断速度（７００および１７００・１／秒）の両方で明確であった。同じ実験（７００および１７００・１／秒）を血漿不含再構成血液を使用して反復した時には血小板はＨＥＰ−ＰＧの存否とは無関係に同程度がコラーゲンに接着した（未記載）。全血を１７００・１／秒で潅流の後に撮影したコラーゲン被覆表面を被う血小板の走査電子顕微鏡像にはＨＥＰ−ＰＧの存在時には凝集物が全く存在しないことを証明した。この剪断速度では血小板接着はＨＥＰ−ＰＧの存在による明確な減少は示さなかった。表面被覆率はＨＥＰ−ＰＧ不在では２２±４％、ＨＥＰ−ＰＧ存在では１７±５％であった（ｎ＝３）。

実施例１７Ｂ
流動全血中での単量体コラーゲン被覆表面への血小板沈着阻害に及ぼす固定化ＨＥＰ−ＰＧの効果
コラーゲンとＨＭＷＨおよびＨＥＰ−ＰＧの共固定化ではＢｌｙｓｃａｎ検定（北アイルランド、ベルファスト）によって示されるコラーゲン付着を減少させなかった。ＨＥＰ−ＰＧ１０μｇ／ｍＬをＩ型コラーゲン（ペプシン処理またはウシの腱からペプシンで分離したもの）に固定化し、緩衝液または非分画ヘパリンＨＭＷＨ（分子量＝１５ｋＤａ、ヘパリン、レイラス、フィンランド）１０μｇ／ｍＬと比較した時にＨＥＰ−ＰＧは血小板ｒｅｃｒｕｉｔｍｅｎｔを１０分の１以下まで減少させたが、一方ＨＭＷＨはそれを４分の１まで減少させた。実施例７Ａに示す通りの溶液中で有効であるのに加えてコラーゲン表面に固定化したＨＥＰ−ＰＧは流動する血液中での血小板−血小板相互作用を同様に高度で効果的な阻害を示した。この結果を下記図６に示す。

実施例１７Ｃ
流動全血中での原繊維コラーゲン被覆表面への血小板沈着阻害に及ぼす固定化ＨＥＰ−ＰＧの効果
コラーゲン（Ｈｏｒｍ試薬）と１０ｇ／ｍＬとの共固定化を非分画ヘパリン１０μｇ／ｍＬのものと比較した。非分画ヘパリンとは対照的にＨＥＰ−ＰＧは明らかに表面への血小板の沈着を５０％も減少させた。そこで単量体コラーゲンに固定化したＨＥＰ−ＰＧの効果はさらに在来型コラーゲン繊維についても得ることができた。この結果を下記の図５に示す。

実施例１８
血小板へのフィブリノーゲンおよびｖＷｆの結合
ＨＥＰ−ＰＧはフィブリノーゲンのコラーゲン刺激血小板への結合を減少させる傾向がある。すなわち１ｍＬ当り２．４±１．２から１．５±０．７ピコモル／血小板１０⁸個まで（ｎ＝４、ｐ＝０．０６）、バックグラウンドは０．８± ０．４ピコモル／血小板１０⁸個である。しかしＡＤＰが誘導する結合には影響 を与えなかった（未記載）。しかしながら、ＨＥＰ−ＰＧ（３μｇ／ｍＬ）はトロンビン刺激血小板へのｖＷｆの結合を４０％阻害した（２３４対３４９ｎｇ／血小板１０⁸個）（表ＩＩ）。同じ濃度のＨＭＷＨには明確な効果がなかったが １００倍過剰では（３００μｇ／ｍＬ）では血小板へのｖＷｆの阻害を完全に遮断した。ＨＥＰ−ＰＧはリストセチン刺激血小板へのｖＷｆの結合を阻害しなかった。同様な結果はＨＭＷＨでも得られた。再び１００倍過剰（３００μｇ／ｍＬ）のＨＭＷＨはリストセチン刺激血小板へのｖＷｆの結合を明確に阻止した。

実施例１９
血小板とヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）との間の相互作用
コラーゲンの代わりにＨＥＰ−ＰＧを固定化し、ＰＰＡＣＫ−ＰＲＰ中の血小板を接触させる時には血小板沈着のレベルは血小板０．３６±０．１７×１０⁶ 個／ｃｍ²（ｎ＝４）であって、このレベルは固定化アルブミン、ＨＳＡ（０． ５０±０．３１×１０⁶個／ｃｍ²）（ｎ＝４）で得られる値と変わらなかった。血小板がＨＥＰ−ＰＧに結合しないという発見は³⁵Ｓ−標識ＨＥＰ−ＰＧ（３〜１０μｇ／ｍＬ）をＰＲＰ中でインキュベーションしたのち血小板を沈降させて³⁵Ｓ−シンチレーションの放射能を計数する実験によって確認した。沈降物には³⁵Ｓ−シンチレーション放射能は存在せず、ＨＥＰ−ＰＧは血小板と共沈降しなかったことを示された。さらにその上、洗浄した血小板を³⁵Ｓ−ＨＥＰ−ＰＧとともにインキュベーションし、続いてゲル濾過に付すと³⁵Ｓ−ＨＥＰ−ＰＧは血小板集団の後から別れて溶離した。

実施例２０
ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）へのおよびコラーゲンへのｖＷｆの結合
ｖＷｆおよびＨＥＰ−ＰＧを単独でまたは一緒に酢酸セルロース板上で電気泳動させ、プレートを両蛋白質およびグリコサミノグリカンについて染色して個々の成分を可視化した。ＨＥＰ−ＰＧへのｖＷｆの添加は陽極から陰極への易動度を逆転させ、ｖＷｆとＨＥＰ−ＰＧとの間の会合を示唆した。ＨＥＰ−ＰＧは高剪断速度における血小板−コラーゲン相互作用を阻害し、その他のｖＷｆ−媒介血小板機能も妨害した（表Ｉ）ので、われわれはＨＥＰ−ＰＧがｖＷｆのコラーゲンへの結合に影響を及ぼすか同化をＥＬＩＳＡ検定を用いて研究した。コラーゲンへのｖＷｆ結合は阻止されず、反対に顕著に強化された。この結果はＨＭＷＨおよびＬＭＷＨについて得られた結果とは全く異なっていた。ＨＥＰ−ＰＧと比較すると、１０倍過剰の濃度（３０μｇ／ｍＬ）においてさえＨＭＷＨは僅かにｖＷｆのコラーゲンへの結合を僅かに増加し、ＬＭＷＨはいかなる効果も示さなかった。

実施例２１
ヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）とコラーゲンとの間の相互作用
われわれはＨＥＰ−ＰＧのコラーゲンへの結合も試験した。これにはＨＥＰ−ＰＧが血小板−コラーゲン相互作用を阻害した条件と類似した条件（すなわち類似のＨＥＰ−ＰＧおよびコラーゲン濃度および類似のインキュベーション時間）を採用した。コラーゲン（ペプシン化または原繊維）を固定化した時にはＨＥＰ−ＰＧとは相互作用しなかった。この結果は³⁵Ｓ−ＨＥＰ−ＰＧを用いるかまたはグリコサミノグリカンをアルシアンブルーで検出して得られた。さらにその上コラーゲンとＨＥＰ−ＰＧとをインキュベーションした後、ショ糖クッションを通して遠心分離して得られたペレットはアルシアンブルー活性を示さなかった。

実施例２２
ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）と交差結合した非分画化ヘパリンの存在下におけるコラーゲンが誘導する血小板凝集
非分画化ヘパリン（１２ｋＤａ）をウシ血清アルブミンと実施例１Ｅに記載したように交差結合して血小板凝集計で分析した（図１０参照）。一例としてヘパリン０．７４μｇ／ｍＬを有するＰＤ−１０分離画分＃２１について凝集曲線を提供する。画分１８〜２１は全てコラーゲン誘導血小板凝集に対して阻害効果を示した。そこで、図１０Ａは緩衝液３０μＬとプレインキュベーションしたクエン酸化ＰＲＰ中での血小板凝集を例示する。例示した反応は最終濃度２５μｇ／ｍＬのコラーゲン（Ｓｉｇｍａ・ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ・ｋｉｔ・ｃｏｌｌａｇｅｎ）３０μＬに対するものである。図１０ＢではＰＲＰを３μｇ／ｍＬの最終濃度で３０μＬのＨＥＰ−ＰＧとともに１分間プレインキュベーションした。コラーゲン（２５ｍｇ／ｍＬ）に対する反応は得られなかった。図１０ＣではＰＲＰを０．７４μｇ／ｍＬ（Ｂｌｙｓｃａｎ）の濃度で３０μＬの画分＃２１アルブミン結合ヘパリンとともに１分間プレインキュベーションした。コラーゲン（２５ｍｇ／ｍＬ）に対する反応は得られなかった。

実施例２３
生体内動脈血栓症モデルおよび顕微吻合手術モデルで得られた結果
われわれはラットで血管の表面層を針での掻き傷を与えたものと与えなかったものについておよび動脈の深層、すなわち内膜、中膜および外膜の血液接触を形成するための不適正な配置の吻合のあるものとないものを対象とする大腿動脈吻合の間にＨＥＰ−ＰＧを局所的に適用した生体内データを得た。この実験はしばしば血栓症の併発によって中止されている血管手術および顕微手術の間に起きる動脈血栓症のモデルを提供する。 目視的観察によれば血栓症は対照実験（食塩水投与）の開腹したほとんど全ての動物に起きており、開存度は１４／２２であり、１０μｇ／ｍＬのＨＥＰ−ＰＧを容積１００μＬを吻合部を閉じている時間（約１０分）に局所投与し、次に非抗凝固血液をその損傷部位に１０分間流通させた後に屠殺したラットでは２１／２２血管が開存性であった。

われわれは１０分間血流を解放する時に「インジウム」標識ラット血小板（３００〜５００×１０⁶個／ｍＬ）０．５ｍＬを点滴する吻合モデルを研究した。

続いてラットを屠殺し、血液および吻合試料を採取した。ガンマ線カウンターで血液中血小板および吻合部位の放射能を計数したところ、ＨＥＰ−ＰＧについて明確な効果が判明した（１１１−インジウム標識血小板：ＮａＣｌ １４．２±７．２（ｎ＝７） 対 ＨＥＰ−ＰＧ ７．５±２．９×１０⁶。平均値±ＳＤ
（ｎ＝７）／吻合部位。ｐ＝０．０２５、ＡＮＯＶＡ）。

走査電子顕微鏡分析では余分な血栓症誘発（掻き傷または不適正吻合）のない吻合モデルでのＨＥＰ−ＰＧ群では明らかに少ない血栓症応答を検出できた。血栓症的反応は壁在性で主に血小板接着層からなり、凝集物は散在的または不在であった（図８）。走査電子顕微鏡像（「盲検」分析）は次の成績を示した（分１最大４）。

ＮａＣｌ ３．２（ｎ＝５）；ＨＭＷＨ ２．８（ｎ＝５）；ＨＥＰ−ＰＧ １．８（ｎ＝５）；ｐ＝０．０３。吻合モデルでのＨＥＰ−ＰＧ対食塩水、ＡＮＯＶＡ、反復測定。吻合後７２時間に分析した時にも同様な結果を得た。

表Ｉ．ＰＴＰ（クエン酸）中におけるリストセチン誘導血小板凝集に及ぼすグリコサミノグリカンの効果

表ＩＩ．刺激された血小板へのｖＷｆ（最終濃度５μｇ／ｍＬ）の結合に及ぼすＨＥＰ−ＰＧおよびＨＭＷＨの効果

数値は平均値±標準偏差（ｎ＝４、二重）である。「−」実施せず。
要因ＡＮＯＶＡ：トロンビン＋ヒルジン：ＨＥＰ−ＰＧｖｓ対照群およびＨＥＰ−ＰＧｖｓＨＭＷＨ（３００μｇ／ｍＬ）ｐ＜０．０５。
ＨＭＷＨ（３００μｇ／ｍＬ）ｖｓ対照群およびＨＭＷＨ（３００μｇ／ｍＬ）ｖｓＨＭＷＨ（３μｇ／ｍＬ）。ｐ＜０．００１。
ｍ７Ｅ３＋トロンビン＋ヒルジン：ｍ７Ｅ３ｖｓ対照群。ｐ＜０．００１。
トロンビン、ヒルジンなし：ＨＭＷＨ（３００μｇ／ｍＬ）ｖｓ対照群および
ｖｓＨＥＰ−ＰＧ。共にｐ＜０．００１。
リストセチン：ＨＭＷＨ（３００μｇ／ｍＬ）ｖｓ対照群、ｖｓＨＥＰ−ＰＧ
およびｖｓＨＭＷＨ（３μｇ／ｍＬ）。各ｐ＜０．００１。

Claims (14)

1. 可溶性ヘパリン様グリコサミノグリカン分子を含んでなることを特徴とするヘパリン様化合物であって、該ヘパリン様グリコサミノグリカン分子は多重構造を有し、分子量が少なくとも７５±２５ｋＤａであり、該ヘパリン様化合物は流動血液中のコラーゲン上での粘着を維持するとともにコラーゲン誘発性の血小板凝集を実質的に完全に阻害する能力を有する、ヘパリン様化合物。
2. ヘパリン様グリコサミノグリカンがマスト細胞由来のヘパリンプロテオグリカンから単離される請求項１のヘパリン様化合物。
3. 次の工程
   （ａ）単離されたおよび精製されたマスト細胞を細胞培養培地中で細胞増殖が可能な条件を用いて培養すること、
   （ｂ）要すれば活性化および／または溶解することによりヘパリンプロテオグリカン含有顆粒を遊離させること、
   （ｃ）遊離された顆粒を周辺の培養培地に溶解させること、
   （ｄ）その培地から溶解したヘパリンプロテオグリカン（ＨＥＰ−ＰＧ）を収集すること、
   （ｅ）ＨＥＰ−ＰＧ分子から多重ヘパリングリコサミノグリカン（ＨＥＰ−ＧＡＧ）分子を分離すること、
   を含んでなる請求項１のヘパリン様化合物の製造方法。
4. 工程（ｂ）の活性化が、マスト細胞の脱顆粒化を誘導しそこから得られるマスト細胞由来のＨＥＰ−ＰＧ分子およびＨＥＰ−ＧＡＧ分子を放出する、マスト細胞アゴニストを用いて行われる、請求項３の製造方法。
5. アゴニストが塩基性ポリアミンおよびカルシウムイオノフォアからなる群から選択される請求項４の製造方法。
6. 工程（ｅ）で得られる多重ヘパリングリコサミノグリカンの構造が合成的、半合成的または生物工学的方法によって修飾されることを特徴とする請求項３の製造方法。
7. 数種のヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン単位が共有結合によって連結して少なくとも７５±２５ｋＤａの分子量を有する多重ヘパリン様グリコサミノグリカン分子を生じる、請求項１のヘパリン様化合物の製造方法。
8. ヘパリンまたはヘパリン様グリコサミノグリカン単位がヘテロ二官能カップリング試薬Ｎ−サクシンイミジル−３−（２−ピリジルチオ）プロピオネート（ＳＰＤＰ）を用いて連結される、請求項１のヘパリン様化合物の製造方法。
9. 請求項１のヘパリン様化合物で被覆された、血管または毛細血管の傷害および／またはインターベンションに関連する局所投与のためのデバイス。
10. ステントを含んでなる請求項９のデバイス。
11. 血管移植片を含んでなる請求項９のデバイス。
12. 体外循環システムを含んでなる請求項９のデバイス。
13. 製薬的に許容され適合する担体および／またはアジュバントと組み合わせて請求項１のヘパリン様化合物を含有する、血管または毛細血管の傷害および／またはインターベンションに関連する局所投与のための製剤。
14. デバイスを請求項１のヘパリン様化合物を含む溶液と接触させる、血管または毛細血管の傷害またはインターベンションに関連する局所投与のためのデバイスの製造方法。

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