JP2010528672A - 5HTR2CmRNA編集機構の変更のマーカーとしての5HTR2Cおよび/またはADARを発現する細胞を含有する末梢組織サンプル、ならびにその適用 - Google Patents
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Abstract
Description
ヒト脳組織において、被験患者から容易に得ることができる生体サンプルからこれらのADAR基質、特に、AMPA型グルタミン酸受容体または5HTR2C mRNAの編集率またはプロフィールの変更を外挿することを可能とすること(ここで、この生体サンプルにおいて決定されたこれらのADAR基質の編集率またはプロフィールは脳生体サンプルから得られるものと相関させることができる);および/または
被験患者から容易に得ることができる生体サンプルに存在するマーカーを同定すること(ここで、該サンプル中の該マーカーの定性的および/または定量的分析は、脳組織におけるこれらのADAR基質の編集率またはプロフィールの変更と相関させることができ、このような生体サンプルおよび会合したマーカーはCNS(中枢神経系)に見られる受容体編集のリポーターとして使用可能である)
がやはり望ましい。
哺乳類由来の皮膚サンプルなどの、第一の、細胞を含有する末梢(peripherical)組織;または/および
哺乳類由来の血液サンプルなどの、第二の、細胞を含有する末梢(peripherical)組織、
が用いられる方法に関する。
該末梢(peripherical)生体サンプルにおける該mRNAの編集率またはその編集形態のプロフィール;および/または
該末梢(peripherical)生体サンプルで発現されるADARの性質または/および量
により決定される。
細胞を含有する皮膚および/または血液組織サンプルなど、これらのADARを発現する細胞を含有する末梢(peripherical)組織における、ADAR酵素、特に、ADAR1イソ型(特に、「ADAR1−150」および「ADAR1−110」)ならびにADAR2の変更されたまたは正常な発現の決定(性質および/または量);および/または
細胞を含有する皮膚および/または血液組織サンプルなど、5HTR2C mRNA編集を発現する細胞を含有する末梢(peripherical)組織における、5HTR2C mRNAの編集形態の5HTR2C mRNA編集率またはプロフィールの決定
は、脳組織における5HTR2C mRNA編集の機構の変更のリポーターマーカーとして、従って、患者のCNSで発現されるセロトニン作動系(serotinergic system)の多段階代謝経路の病理学的変更を評価するためのリポーターサンプルとして使用可能である。
in vitroにおいて患者がセロトニン2C受容体(5HTR2C)のmRNA編集の機構の変更に関連する病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかを決定するため;
in vitroにおいて患者により示される病状が5HTR2CのmRNA編集の機構の変更に関連するかどうかを決定するため;
脳組織において5HTR2C mRNA編集を調節し得る化合物、好ましくは、それを必要とする患者の脳組織において正常な5HTR2C mRNA編集を回復させ得る化合物を選択するため;または
哺乳類においてin vitroで、5HTR2CのmRNA編集の機構の変更に関連する病状の予防または治療に用いられる薬剤の有効性を決定するため
のリポーターサンプルおよびマーカーとして使用可能である。
皮膚細胞などの末梢(peripherical)組織サンプルにおける5HTR2C mRNAの編集率または編集形態のプロフィールを決定すること;または所望により、また、会合マーカーとして用いる場合には、
該末梢(peripherical)組織サンプルで発現されるADARの性質または/および量を決定すること
による、脳などのCNSで発現される5HTR2C mRNA編集系の病理学的変更を評価するための単一の、または会合したリポーターサンプルとしての、哺乳類、好ましくはヒト、マウスまたはラット由来の皮膚サンプルなどの5HTR2C mRNAおよび/またはADARを発現する1つの末梢(peripherical)組織の使用を含む。
血液細胞などの第二の末梢(peripherical)組織サンプルにおける5HTR2C mRNAの編集率または編集形態のプロフィールを決定すること;または所望により、また、会合マーカーとして用いる場合には、
該第二の末梢(peripherical)組織サンプルで発現されるADARの性質または/および量を決定すること
により、脳などのCNSで発現される5HTR2C mRNA編集系の病理学的変更を評価するための単一の、または会合したリポーターサンプルとしての、哺乳類、好ましくはヒト、マウスまたはラット末梢(peripherical)組織サンプル由来の全血サンプルなど、該第二の末梢(peripherical)組織の使用を含む。
a)被験患者から皮膚細胞および/または血液細胞などの細胞を含有する末梢(peripherical)組織を含有する生体サンプルを得る工程;
b)該5HTR2C mRNAの少なくとも編集形態または非編集形態の編集率、および/または皮膚細胞および/または血液細胞などの細胞を含有する末梢(peripherical)組織の該サンプルで発現されるADARの性質または/および量を決定する工程;
c)該患者がこのような病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかを、該5HTR2C mRNAのこの編集形態または非編集形態に関して工程b)で得られた編集率を比較することにより、かつ/または該サンプル(細胞を含有する末梢(peripherical)組織)で発現されたADARの性質または/および量を、5HTR2C mRNAの特徴的な対照編集率、または正常患者もしくはこのmRNA編集の機構の変更に関連する病状を示す患者に関して得られた発現ADARプロフィールと比較することにより特定する工程を含む。
a)該病状を示す患者から皮膚細胞および/または血液細胞などの細胞を含有する末梢(peripherical)組織を含有する生体サンプルを得る工程;
b)5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態の編集率、および/または皮膚細胞および/または血液細胞などの細胞を含有する末梢(peripherical)組織の該サンプルで発現されるADARの性質または/および量を決定する工程;
c)該患者がこのような病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかを、該5HTR2C mRNAのこの編集形態または非編集形態に関して工程b)で得られた編集率を比較することにより、かつ/または該末梢組織サンプルで発現されたADARの性質または/および量を、5HTR2C mRNAの特徴的な対照編集率、または正常患者もしくはこのmRNA編集の機構の変更に関連しないことが知られている病状を示す患者に関して得られた発現ADARプロフィールと比較することにより特定する工程
を含む。
哺乳類においてin vitroで、患者がmRNAの編集(その編集はADAR依存性A−to−I編集である)の機構の変更に関連する病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかを特定する方法;
哺乳類においてmRNAの編集(その編集はADAR依存性A−to−I編集である)を調節する薬剤をin vitroで特定する方法;
哺乳類において、患者においてin vitroで、mRNAの編集(その編集はADAR依存性A−to−I編集である)の機構の変更に関連する病状の予防または治療のために用いられる薬剤の有効性を決定する方法;
哺乳類において、患者が、mRNAの編集(その編集はADAR依存性A−to−I編集である)の機構の変更をもたらす、またはそれにより誘発される病状の処置に応答するか応答しないかを決定する方法であって、
a)被験患者から細胞を含有する末梢(peripherical)生体サンプル、特に、血液細胞を含有する生体サンプルを得る工程;
b)該末梢(peripherical)生体サンプルで発現されるADARの性質または/および量を決定する工程;
c)該サンプルで発現されるADARの性質または/および量を、正常患者またはこのmRNA編集の機構の変更に関連する病状を示す患者で得られる発現ADARプロフィールの特徴的な対照と比較する工程
を含む方法に向けられる。
a)該哺乳類に5HTR2C mRNA編集の候補モジュレーターを投与する工程;
b)該哺乳類から、皮膚細胞および/または血液細胞などの細胞を含有する末梢(peripherical)組織を含有する生体サンプルを得る工程;および
c)該モジュレーターの、
該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態の編集率に対する;および/または
皮膚細胞および/または血液細胞などの該末梢(peripherical)組織サンプルで発現されるADARの性質または/および量
に対する効果を、
工程b)の生体サンプルから得られたこの編集形態または非編集形態に関する編集率および/または発現されるADARの性質または/および量を、該哺乳類の細胞を含有する対照末梢(peripherical)組織から得られた編集率および/または発現されるADARの性質または/および量と比較することにより決定する工程
を含む方法に向けられる。
a)皮膚細胞系統および/または血液細胞系統(所望により、これらの細胞は組換え細胞または細胞系統であり得る)などの細胞を含有する末梢(peripherical)組織を含有する生体サンプルを得る工程;
b)該5HTR2C mRNA編集の候補モジュレーターの存在下で該生体サンプルを接触させる工程;および
c)該モジュレーターの、
該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態の編集率に対する;および/または
該末梢(peripherical)組織サンプルで発現されるADARの性質または/および量
に対する効果を、
工程b)の生体サンプルから得られたこの編集形態または非編集形態に関する編集率および/または発現されるADARの性質または/および量を、該哺乳類の皮膚細胞および/または血液細胞などの細胞を含有する対照末梢(peripherical)組織から得られた編集率および/または発現されるADARの性質または/および量と比較することにより決定する工程
を含む方法も含む。
a)該哺乳類から、皮膚細胞および/または血液細胞などの細胞を含有する末梢(peripherical)組織を含有する生体サンプルを得、該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態に関する編集率、および/または皮膚細胞および/または血液細胞などの該末梢(peripherical)組織サンプルにおいて発現されるADARの性質または/および量を決定する工程;
b)該哺乳類に病状の予防または治療を意図した薬剤を投与する工程;
c)該哺乳類から処置中または/および処置後に該末梢(peripherical)組織サンプルの新たなサンプルを得、該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態に関する編集率、および/または工程a)で選択されたサンプルにおいて発現されるADARの性質または/および量を決定する工程;および
d)該薬剤の有効性を、工程a)の生体サンプルから得られた編集率および/または発現されるADARの性質または/および量を工程c)で得られたものと比較することにより決定する工程(この編集率および/または発現されるの性質または/および量の調節は、処置の有効性に関して有意な正常患者で見られるものに近い、またはそれに相当する編集率および/または発現ADARの性質または/および量をもたらす)
を含む方法を含む。
e)処置期間(すなわち、15日、30日、2か月、6か月など)の後に編集率またはプロフィールおよび/または発現ADARの性質または/および量の修飾を、処置の開始前の編集率またはプロフィールおよび/または発現ADARの性質または/および量と比較することにより観察することにより、その患者がその処置に応答するか応答しないかを決定する工程をさらに含む方法に関する。
A)皮膚細胞系統、培養皮膚由来細胞もしくは皮膚組織などの皮膚細胞サンプル、または白血球などの血液細胞の全RNAを抽出し、その後、適当であればそのmRNAを生成する工程;
B)工程A)で抽出されたRNAを逆転写する工程;および
C)工程B)で得られたcDNAを、編集され得る編集部位を含有する5HTR2C mRNAフラグメントに特異的な少なくとも1対のプライマー(このプライマー対はRNA抽出物中に存在する可能性のある総ての編集形態および非編集形態を増幅し得るように選択される)を用いてPCR増幅する工程
を含む方法により決定される。
A)皮膚細胞系統、培養皮膚由来細胞もしくは皮膚組織などの皮膚細胞サンプル、または白血球などの血液細胞サンプルの全RNAを抽出し、その後、適当であればそのmRNAを生成する工程;
B)工程A)で抽出されたRNAを逆転写する工程;および
C)工程B)で得られたcDNAを、編集され得る編集部位を含有する5HTR2C mRNAフラグメントに特異的な少なくとも1対のプライマー(このプライマー対はRNA抽出物中に存在する可能性のある総ての編集形態および非編集形態を増幅し得るように選択される)を用いてPCR増幅する工程
(ここで、工程Bの逆転写は5HTR2C遺伝子に特異的なオリゴヌクレオチドプライマーを用いることで行われる)
を含む方法により決定される。
PCR9フォワード:5’-TGTCCCTAGCCATTGCTGATATGC-3’、配列番号35;
PCR10リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTAGTC-3’、配列番号36;
また、マウスまたはラットでは、
PCR9フォワード:5’-TGTCCCTAGCCATTGCTGATATGC-3’、配列番号35;
PCR10リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTAGTC-3’、配列番号36、
により行われ、2回目のPCRは以下のプライマーセット:ヒトでは、
PCR18フォワード:5’-ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC-3’、配列番号37;
PCR2リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTA-3’、配列番号38;
また、マウスまたはラットでは、
PCR1フォワード:5’-TTTGTGCCCCGTCTGGAT-3’、配列番号39;
PCR4リバース:5’-GCCTTAGTCCGCGAATTG-3’、配列番号40
により行われる。
1回目:
PCR9フォワード:5’-TGTCCCTAGCCATTGCTGATATGC-3’(配列番号35);
PCR10リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTAGTC-3’(配列番号36);
および2回目:
PCR18フォワード:5’-ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC-3’(配列番号37);
PCR2リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTA-3’(配列番号38)。
D)適当であれば、工程C)で得られたPCR産物を精製する工程;
E)適当であれば、工程D)で得られたPCR産物を定量する工程;
F)特に加熱した後に急冷することにより、二本鎖DNAを一本鎖DNAへ解離させる工程;
G)キャピラリー電気泳動により一本鎖DNAを分離する工程;および
H)蛍光を読み取り、適当であれば、蛍光リーダーに関連づけた取り込み系の手段によりプロフィールデータを取得することにより編集プロフィールを得る工程
を含むことを特徴とする。
配列ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC(配列番号37)を含むか、または有し、好ましくは、多くて100ヌクレオチド、より好ましくは、90、80、75、70、65、60、55、50、45、40、35、30、29、28、27および26ヌクレオチドを有するか;あるいは
配列番号37のフラグメントnt5〜nt14、好ましくは配列番号37のフラグメントnt4〜nt14、nt3〜nt14、nt2〜nt14、nt1−nt14、nt5〜nt15、nt5〜nt16、nt5〜nt17、nt5〜nt16、nt5〜nt17、nt5〜nt18、nt5〜nt19、nt5〜nt20、nt5〜nt21、nt5〜nt22、nt5〜nt23、nt5〜nt24、nt5〜nt25を含む。
ヒト:NM_001111.3;NM_001025107.1
マウス:NM_019655.2;NM_001038587.2、
ADAR2では:
ヒト:NM_001112.2;NM_015833.2;NM_015834.2およびNM_001033049.1、
マウス:NM_130895.2;NM_01024837;INM_01024838.1;NM_01024840.1およびNM_001024839.1。
A)血液サンプル細胞の全RNAを抽出した後、適当であれば、mRNAを精製する工程;
B)工程A)で抽出されたRNAを、オリゴdTプライマーによって逆転写させる工程;および
C)工程B)で得られたcDNAを、定量および/または定性分析される各ADAR mRNAに特異的な少なくとも1対のプライマーを用いてPCR増幅する工程
を含む方法によって行われる。
ヒトADAR1−150イソ型mRNAの増幅には:
EX1A 34pフォワード:5’-GCCTCGCGGGCGCAATGAATCC-3’(配列番号41)、
EX2 578mリバース:5’-CTTGCCCTTCTTTGCCAGGGAG-3’(配列番号42);
ヒトADAR1−110イソ型mRNAの増幅には:
EX1B 534pフォワード:5’-CGAGCCATCATGGAGATGCCCTCC-3’(配列番号43)、
EX2 804mリバース:5’-CATAGCTGCATCCTGCTTGGCCAC-3’(配列番号44);
ヒトADAR2 mRNAの増幅には:
ADAR2 1274pフォワード:5’-GCTGCGCAGTCTGCCCTGGCCGC-3’(配列番号45)、
ADAR2 1486mリバース:5’-GTCATGACGACTCCAGCCAGCAC-3’(配列番号46);
マウスADAR1−150イソ型mRNAの増幅には:
EX1A 19pフォワード:5’-GTCTCAAGGGTTCAGGGGACCC-3’(配列番号47)、
EX2 646mリバース:5’-CTCCTCTAGGGAATTCCTGGATAC-3’(配列番号48);
マウスADAR1−110イソ型mRNAの増幅には:
EX1B 72pフォワード:5’-TCACGAGTGGGCAGCGTCCGAGG-3’(配列番号49)、
EX2 646mリバース:5’-CTCCTCTAGGGAATTCCTGGATAC-3’(配列番号48);および
マウスADAR2 mRNAの増幅には:
EX7 1281pフォワード:5’-GCTGCACAGTCTGCCTTGGCTAC-3’(配列番号50)、
EX9 1622mリバース:5’-GCATAAAGAAACCTGAGCAGGGAC-3’(配列番号51)
からなる群から選択される。
A)所望により、血液サンプル細胞に含まれる全タンパク質を抽出した後、適当であれば、タンパク質の精製工程を行う工程;および
B)血液サンプル細胞に含まれる各ADARタンパク質の存在、性質および/または濃度を、該ADARタンパク質を特異的に認識することができる抗体、好ましくは標識された抗体の実現により決定する工程
を含む方法により行われる。
sc−33179抗ADAR1(H−176)ポリクローナル抗体-;または
sc−33180抗ADAR2(H−90)ポリクローナル抗体(Santa-Cruz)
が挙げられる。
かかる戦略の検証には以下を含めた:
1)マウスおよび/またはラットで得たコンバージェントな病理学的モデルにおいて行う、ある病状におけるヒト脳での編集プロセスの著しい変更の確認、ならびに死後観察による該病状におけるその病因関連性の検証。
2)診断上および治療上の調整に用いることができる非侵襲性レベルにおいて容易に利用できる末梢組織または細胞系統の同定。本発明ではこの戦略の検証を、A−関連編集調節の総てまたは一部の編集プロセスについての適切なマーカー:5−HT2cR mRNA編集プロフィール、編集酵素の異なるイソ型:ADARl −150、ADARl−I lO、ADAR2の発現についてのマーカーの測定:によって得た。
製造業者の仕様書に従って(Qiagen Rneasy, Mini Kit)組織または細胞抽出物から全RNAを抽出し、精製した。抽出したRNAの量および純度を、GeneQuant分光光度計(PharmaciaBiotech)を用いて260nmでの吸光度と260/280nm比の両方を測定することにより評価した。ゲノムDNAによる汚染の可能性をなくすために、8μlの各RNA(88ng〜1.3μg間)をさらに、最終用量10μlにおいて1単位のDNアーゼI(Invitrogen)を用いて室温で15分間処理した。1μlの25mM EDTAを加えることによりこの反応を停止させ、その後、65℃で10分間加熱した。DNアーゼIで処理したRNA(10μl)の逆転写を、15単位のThermoScript逆転写酵素(ThermoScript RT-PCR System, Invitrogen)とオリゴ(dT)プライマーを終濃度2.5μMで用いて行った。
追加のネステッドPCRでは、RT−1st PCR産物、すなわち32のヒト5−HT2cR(または5HT2CR)イソ型標準を含む、プラスミドから増幅した250bp cDNA、の1/50希釈溶液1μlを鋳型として用いた。これらの32の標準は、ヒト5−HT2cRの非編集(NE)および編集イソ型に相当する。増幅を最終容量20μlにおいてHPLC精製蛍光プライマー(フォワードプライマー:FAM-ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC-3’(配列番号37);リバースプライマー:VIC-GC AATCTTCATGATGGCCTT A-3’(配列番号38);終濃度各0.2μM)と、0.2単位のPlatinum Pfx DNAポリメラーゼ(Invitrogen)を用いて行った。
電気泳動シグナルを、インハウスソフトウエアを用いてさらに処理した。まず、各サンプルの電気泳動プロフィールの時間基準を、移動標準のROX標識鎖を用いて調整した。これによってFAM標識鎖およびVIC標識鎖により標準およびサンプルのシグナルを独自の時間基準において正確にデコンボリュートすることが可能となった。次いで、バックグラウンドを調整し減じた後、各シグナル下の全面積をノーマライズ化した。
は標準シグナルおよびシグナルにおけるそれらそれぞれの%giであるという仮説Nに基づいた。ベストフィッティングは残差平方和(SSE)
などのr2値を計算した後に統計学的に評価した。最大理論ベスフィッティングではr2=1となる。
5−HT2c受容体および編集酵素が皮膚に存在していることから、皮膚は末梢において5−HT2cR編集および編集酵素の発現レベルの両方を測定するための興味深い供給源であり得た。
先のバリデーション実験により推定されたように、ADAR1およびADAR2の発現はマウスおよびヒト皮膚の皮膚サンプルで発現されることが分かった。
遠心分離後、パスツールピペットにより富化細胞画分(リンパ球/PBMC=ホワイトリング)を採取する。この富化細胞画分を10mlの1×PBS無菌溶液で洗浄した後、250gで10分遠心分離する。洗浄工程を2回繰り返す。最後の遠心分離では、ペレットを、1ml 1×PBS無菌溶液に再懸濁させることによりマイクロ遠心管(1.5mlエッペンドルフ管)に採取しなければならない。最後の遠心分離(室温、250gで10分)後、上清を廃棄し、この富化細胞画分の「乾燥」ペレットをすぐにRNAレーザーRNA安定化試薬(Qiagen、参照番号:76104または76106)で覆う。浸漬したペレットを2〜8℃で保存し、リンパ球/PBMC遺伝子発現プロフィールをこの温度で最大4週間安定化させることができる。RNAレーザー試薬中でサンプルを輸送する場合は、ペレットが常に試薬中に浸漬した状態を維持するように確保する。輸送の際は試験管をまっすぐ維持するか、または安定化溶液で試験管を完全に満たす。輸送中、試験管はブルーアイスパックを満たしたポリスチレンボックスで維持することができる。より良い溶液は1mlのTRIzol試薬(Invitrogen、参照番号:15596−026)中に富化細胞画分のペレットをそのまま横たえ、室温で維持し、輸送することができる。この溶解試薬はフェノールを含み、サンプル試験管はしっかり密閉しなければならない。実際、備品供給者(Invitrogen)が記載しているように、TRIzol試薬(上記参照)中の白血球溶解液は、後に、全RNA(水相)およびタンパク質(有機相)の双方を抽出することが可能である。試験管は、室温またはドライアイス中で輸送することができる。
図1に示された分析プロセスは、剖検脳サンプルにおける5−HT2c受容体の総てのイソ型の分析を可能とする。6人の対照患者および注意深く選択した自殺鬱病患者の研究は、(1)特異的な脳領域が編集型および非編集型5−HT2CRイソ型の特異的分布パターンを示すこと、および(2)この分布パターンがヒト前側帯状皮質および背側前頭皮質で有意に変更され、これらが大鬱の病態生理学に関与していることを示した。イソ型の特徴におけるこれらの変化を表3に示し、これらは前側帯状皮質において見られる効果を示す。重要なことに、この技術は、対照と比べて増加方向または減少方向の双方でイソ型の優勢度の劇的変化を評価することができ、それらの変化の基礎にある潜在的な酵素の機能不全に洞察を与える。ここでは、例えば、ADARI活性(A部位とB部位を特異的に編集し、C部位には特異性が低い)がアップレギュレーションされている。
この実験はBalb/cJマウスで行った。20,000IU用量のマウスαインターフェロンをIP経路により注射し、注射後3時間、6時間および8時間の時点でマウス群(n=8)を犠牲にした。対照群(n=8)は0時間の時点で犠牲にした。血液、皮膚および脳は、RNA分解を避けるためすぐに処理した。各組織サンプルから全RNAを抽出し、誘導型ADAR1をコードする特異的mRNAを、参照としてGAPDH内因性遺伝子を用い、QPCRにより定量した。これらの結果を図6にまとめる。それらは明らかに、インターフェロンで処置したマウスの血液サンプルにおいてADAR1発現の有意な増加が見られ、皮膚サンプルおよび前頭皮質でも増幅応答が見られることを示す。
1)これらの実験条件では、脳においてADAR1発現誘導がすぐに見られた後、5−HT2cRの編集プロセスの有意な初期の変更が8時間目に見られる。ABCDおよびACDイソ型を含む12の編集イソ型の群では有意な増加が見られた。それらは全5−HT2cR mRNAの30%を占める。
2)この群の編集部位の割合の分析は、明らかに、編集されていることが判明したA、BおよびC部位の割合において有意な増加を示す。それらは主としてADAR1のより大きな活性によるものであると解釈することができる。これは分析が、もっぱらADAR1によるものであるこの群のイソ型に限られた場合に確認されたものである。
Claims (48)
- 脳におけるmRNA編集(該mRNA編集はADAR依存性A−to−I mRNA編集である)の病理的変化を評価するための方法であって、細胞を含有する末梢組織からなる生体サンプルの群から選択される単一の生体サンプルまたは2種類の異なる生体サンプルが用いられる、方法。
- 前記の細胞を含有する末梢組織が、皮膚サンプル、全血サンプル、白血球(blood white cells)、白血球(leucocytes)もしくはバッフィーコート由来細胞を含有する血液サンプル、尿サンプル、唾液サンプル、内部頬組織サンプル、膣または内部頬剥離細胞診または塗沫標本からなる群から選択される哺乳類生体組織である、請求項1に記載の方法。
- 前記の細胞を含有する末梢組織が、皮膚サンプル、全血サンプル、またはバッフィーコートを含有する血液サンプルからなる群から選択される、請求項1または2に記載の方法。
- 該編集mRNAが、AMPA型グルタミン酸受容体、Gタンパク質共役セロトニン受容体およびPDEA8をコードするmRNAからなる群から選択されるmRNAである、請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。
- 脳におけるmRNA編集の病理学的変更の評価が、
該サンプルにおける該mRNAの編集率またはその編集形態のプロフィール;および/または
該サンプルで発現されるADARの性質または/および量
により決定される、請求項1〜4のいずれか一項に記載の方法。 - ADAR依存性A−to−I mRNA編集を有する該mRNA が5HTR2C mRNAである、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 患者が5HTR2CのmRNA編集の機構の変更に関連する病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかをin vitroにおいて特定するための請求項6に記載の方法、または方法であって、
a)被験患者から皮膚細胞を含有する生体サンプルおよび/または血液細胞を含有する生体サンプルを得る工程;
b)該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態、または非編集形態の編集率、および/または前記皮膚細胞および/または血液細胞サンプルで発現されたADARの性質または/および量を決定する工程;
c)該5HTR2C mRNAのこの編集形態または非編集形態に関して工程b)で得られた編集率を比較することにより、かつ/または該サンプルで発現されたADARの性質または/および量を、5HTR2C mRNAの特徴的な対照編集率、または正常患者もしくはこのmRNA編集の機構の変更に関連する病状を示す患者に関して得られた発現ADARプロフィールと比較することにより、患者がこのような病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかを特定する工程
を含む、方法。 - 該病状が、精神病、統合失調症、鬱病、鬱性自殺または異常な摂食挙動からなる群から選択される、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- in vitroにおいて、患者により示される病状が5HTR2CのmRNA編集の機構の変更に関連するかどうかを決定するための請求項6〜8に記載の方法であって、
a)該病状を示す患者から皮膚細胞および/または血液細胞を含有する生体サンプルを得る工程;
b)5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態の編集率、および/または皮膚細胞および/または血液細胞の該サンプルで発現されるADARの性質または/および量を決定する工程;
c)該患者がこのような病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかを、該5HTR2C mRNAのこの編集形態または非編集形態に関して工程b)で得られた編集率を比較することにより、かつ/または該サンプルで発現されたADARの性質または/および量を、5HTR2C mRNAの特徴的な対照編集率、または正常患者もしくはこのmRNA編集の機構の変更に関連しないことが知られている病状を示す患者に関して得られた発現ADARプロフィールと比較することにより特定する工程
を含む、方法。 - 哺乳類においてin vivoで5HTR2C mRNAの編集を調節する薬剤をin vitroで特定するための請求項6〜8に記載の方法であって、
a)該哺乳類に5HTR2C mRNA編集の候補モジュレーターを投与する工程;
b)該哺乳類から脳組織サンプル、皮膚細胞および/または血液細胞を含有する生体サンプルを得る工程;および
c)該モジュレーターの、
該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態の編集率に対する効果;および/または
該脳組織サンプル、皮膚細胞および/または血液細胞のサンプルで発現されたADARの性質または/および量に対する効果
を、この編集形態または非編集形態の編集率、および/または工程b)において生体サンプルから得られた発現ADARの性質または/および量を該哺乳類の対照サンプル、皮膚細胞および/または血液細胞から得られた編集率、および/または発現ADARの性質または/および量と比較することにより決定する工程
を含む、方法。 - 哺乳類において5HTR2C mRNAの編集を調節する薬剤をin vitroで特定するための請求項6〜8に記載の方法であって、
a)哺乳類脳組織サンプル、皮膚細胞系統および/または血液細胞系統(所望により、これらの細胞は組換え細胞または細胞系統であり得る)を含有する生体サンプルを得る工程;
b)該5HTR2C mRNA編集の候補モジュレーターの存在下で該生体サンプルを接触させる工程;および
c)該モジュレーターの、
該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態の編集率に対する効果;および/または
該脳組織サンプル、皮膚細胞および/または血液細胞のサンプルで発現されたADARの性質または/および量に対する効果
を、この編集形態または非編集形態の編集率、および/または工程b)において生体サンプルから得られた発現ADARの性質または/および量を該哺乳類の対照脳組織サンプル、皮膚細胞および/または血液細胞から得られた編集率、および/または発現ADARの性質または/および量と比較することにより決定する工程
を含む、方法。 - 5HTR2CのmRNA編集の機構の変更に関連する病状の予防または治療のために用いられる薬剤の有効性を患者においてin vitroで決定するための、請求項6〜8に記載の方法であって、
a)該患者から皮膚細胞および/または血液細胞を含有する生体サンプルを得、該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態の編集率、および/または該皮膚細胞および/または血液細胞サンプルで発現されたADARの性質または/および量を決定する工程;
b)該患者に病状の予防または治療を意図した薬剤を投与する工程;
c)処置中または/および処置後に該患者から皮膚細胞および/または血液細胞を含有する新たな生体サンプルを得、該5HTR2C mRNAの少なくとも1つの編集形態または非編集形態の編集率、および/または工程a)で選択されたサンプルで発現されたADARの性質または/および量を決定する工程;および
d)該薬剤の有効性を、工程a)の生体サンプルから得られた編集率、および/または発現されたADARの性質または/および量を工程c)で得られたものと比較することにより決定する工程(正常患者で見られるものに近いまたは等しい編集率および/または発現されたADARの性質または/および量をもたらす編集率および/または発現されたADARの性質または/および量の調節が処置の有効性に重要である)
を含む、方法。 - 患者が5HTR2CのmRNA編集の機構の変更をもたらす、またはそれを誘発する病態の処置に応答するか応答しないかを決定するための請求項12に記載の方法であって、
e)処置期間(すなわち、15日、30日、2か月、6か月など)の後に編集率またはプロフィールおよび/または発現ADARの性質または/および量の修飾を、処置の開始前の編集率またはプロフィールおよび/または発現ADARの性質または/および量と比較することにより観察することにより、その患者がその処置に応答するか応答しないかを決定する工程
をさらに含む、方法。 - 患者または哺乳類がヒト、マウスまたはラット、好ましくはヒトである、請求項1〜13に記載の方法。
- 皮膚細胞がケラチノサイト、メラノサイト、繊維芽細胞、ランゲルハンス細胞およびメルケル細胞からなる群から選択され、皮膚組織が表皮および真皮からなる群から選択される、請求項2〜14に記載の方法。
- ケラチノサイトがHaCaT細胞などのヒト不死化細胞に由来し、あるいはメラノサイトがヒト不死化細胞または黒色腫に由来する、請求項15に記載の方法。
- ケラチノサイトが新生児の皮膚、真皮または毛包に由来し、メラノサイトが表皮または毛包に由来し、繊維芽細胞が真皮または乳頭毛包に由来する、請求項15に記載の方法。
- 皮膚細胞、培養皮膚由来細胞または皮膚組織がまぶたまたは耳の皮膚に由来する、請求項15に記載の方法。
- 編集率が、ヒト5HTR2C mRNAの編集および非編集形態のうち少なくとも1つ、好ましくは、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、2、22、23、24、25、26、27、28、29、30または32個に関して決定される、請求項6〜18に記載の方法。
- 編集率が該5HTR2C mRNAの編集および非編集形態総てに関して決定される、請求項6〜19に記載の方法。
- 該5HTR2C mRNAの各編集および非編集形態の編集率が、
A)皮膚細胞系統、培養皮膚由来細胞または皮膚組織の全RNAを抽出し、その後、適当であればそのmRNAを生成する工程;
B)工程A)で抽出されたRNAを逆転写する工程;および
C)工程B)で得られたcDNAを、編集され得る編集部位を含有する5HTR2C mRNAフラグメントに特異的な少なくとも1対のプライマー(このプライマー対はRNA抽出物中に存在する可能性のある総ての編集形態および非編集形態を増幅し得るように選択される)を用いてPCR増幅する工程
を含む方法により決定される、請求項6〜20に記載の方法。 - 該5HTR2C mRNAの各編集および非編集形態の編集率が、
A)皮膚細胞系統、培養皮膚由来細胞または皮膚組織の全RNAを抽出し、その後、適当であればそのmRNAを生成する工程;
B)工程A)で抽出されたRNAを逆転写する工程;および
C)工程B)で得られたcDNAを、編集され得る編集部位を含有する5HTR2C mRNAフラグメントに特異的な少なくとも1対のプライマー(このプライマー対はRNA抽出物中に存在する可能性のある総ての編集形態および非編集形態を増幅し得るように選択される)を用いてPCR増幅する工程
(ここで、工程Bの逆転写は5HTR2C遺伝子に特異的なオリゴヌクレオチドプライマーを用いることで行われる)
を含む方法により決定される、請求項6〜20に記載の方法。 - 工程B)において、5HTR2C遺伝子に特異的なオリゴヌクレオチドプライマーが配列5’-TTCGTCCCTCAGTCCAATCAC-3’(配列番号34)を有する、請求項21または22に記載の方法。
- 工程C)において、PCR増幅工程が2回のPCRを含むネステッドPCRであり、ここで、1回目のPCRが200bp〜300bpの間、好ましくは225bp〜275bpの間、より好ましくは240bp〜260bpの間の長さを有するPCR核酸産物をもたらすプライマーセットにより行われる、請求項21または22に記載の方法。
- 工程C)において、PCR増幅工程が2回のPCRを含むネステッドPCRであり、ここで、2回目のPCRが90bp〜160bpの間、好ましくは100bp〜140bpの間、より好ましくは110bp〜138bpの間の長さを有する最終PCR核酸産物をもたらすプライマーセットにより行われる、請求項21〜23に記載の方法。
- 工程C)において、PCR増幅工程が2回のPCRを含むネステッドPCRであり、1回目のPCRが次のプライマーセット:
フォワードプライマー5’-TGTCCCTAGCCATTGCTGATATGC-3’(配列番号35)と、
リバースプライマー5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTAGTC-3’(配列番号36)
により行われる、請求項21〜25に記載の方法。 - 工程C)において、PCR増幅工程が2回のPCRを含むネステッドPCRであり、2回目のPCRが次のプライマーセット:
フォワードプライマー5’-ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC-3’、配列番号37;と
リバースプライマー5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTA-3’、配列番号38;
また、
フォワードプライマー5’-TTTGTGCCCCGTCTGGAT-3’、配列番号39;
リバースプライマー5’-GCCTTAGTCCGCGAATTG-3’、配列番号40
により行われる、請求項21〜25に記載の方法。 - 工程C)において、PCR増幅工程が2回のPCRを含むネステッドPCRであり、1回目のPCRが次のプライマーセット:
マウスまたはラットでは、
フォワード:5’-TGTCCCTAGCCATTGCTGATATGC-3’、配列番号35;
リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTAGTC-3’、配列番号36;
ヒトでは、
フォワード:5’-TGTCCCTAGCCATTGCTGATATGC-3’、配列番号35;
リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTAGTC-3’、配列番号36、
により行われ、および
2回目のPCRが以下のプライマーセット:
マウスまたはラットでは、
フォワード:5’-TTTGTGCCCCGTCTGGAT-3’、配列番号39;
リバース:5’-GCCTTAGTCCGCGAATTG-3’、配列番号40;および
ヒトでは、
フォワード:5’-ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC-3’、配列番号37;
リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTA-3’、配列番号38
により行われる、請求項21〜25に記載の方法。 - 工程C)において、PCR増幅工程で用いられるプライマー(ネステッドPCRの場合には2回目)が標識され、好ましくは、蛍光団で標識される、請求項21〜28に記載の方法。
- 該5HTR2C mRNAの各編集および非編集形態の編集率が、該mRNAの編集および非編集型の個々の形態それぞれの編集プロフィールを提供し得るSSCP法により決定され、該SSCP法が工程A)、B)およびC)の後に
D)適当であれば、工程C)で得られたPCR産物を精製する工程;
E)適当であれば、工程D)で得られたPCR産物を定量する工程;
F)特に加熱した後に急冷することにより、二本鎖DNAを一本鎖DNAへ解離させる工程;
G)キャピラリー電気泳動により一本鎖DNAを分離する工程;および
H)蛍光を読み取り、適当であれば、蛍光リーダーに関連づけた取り込み系の手段によりプロフィールデータを取得することにより編集プロフィールを得る工程
を含む、請求項29に記載の方法。 - 病状のリスク、5HTR2C mRNA編集の変更に関連する病状または供試薬剤の効果の決定に用いられる5HTR2C mRNAの対照または標準編集率または編集プロフィールが、供試生体サンプルに用いられたものと同じ方法および与えられた条件下での該mRNAの編集および非編集型の個々の形態のそれぞれに関して得られる特徴的な編集率またはプロフィールである、請求項6〜30に記載の方法。
- 供試生体サンプル中に存在する編集および非編集型の個々の形態それぞれの品質および/または量を供試生体サンプルに用いたものと同じ方法および同じ条件下で得られる、これらの編集および非編集形態のそれぞれの既知の定性的および/または定量的混合物の編集率またはプロフィールと比較することにより評価される、請求項6〜31に記載の方法。
- 患者が脳におけるmRNA編集(該mRNA編集はA−to−I編集ADARに依存する)の機構の変更に関連する病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかをin vitroで特定するための方法であって、
a)被験患者から細胞を含有する血液サンプルを得る工程;
b)血液サンプル細胞に含まれるRNA発現産物に作用するアデノシンデアミナーゼ(ADAR)を決定する工程;および
c)該患者がこのような病状を呈するかどうか、または病状を発症するリスクがあるかどうかを、被験患者で得られた発現ADARの量および/または質を、正常患者またはこのmRNA編集の機構の変更に関連する病状を示す患者の血液サンプルで得られた発現ADARの量および/または質と比較することにより特定する工程
を含む、方法。 - 該編集mRNAが、AMPA型グルタミン酸受容体、Gタンパク質共役セロトニン受容体およびPDEA8をコードするmRNAからなる群から選択されるmRNAである、請求項33に記載の方法。
- 該編集mRNAが5HTR2C、好ましくは、ヒト5HTR2CをコードするmRNAである、請求項34に記載の方法。
- ADARを発現する血液サンプル細胞が白血球(blood white cells)、白血球(leucocytes)またはバッフィーコート由来細胞である、請求項33〜35に記載の方法。
- ADAR発現産物がADAR1、イソ型150および/または110であり、ADAR2遺伝子発現産物が好ましくは、DAR1、イソ型150kDおよび/または110kDタンパク質、およびADAR2タンパク質をコードするヒト遺伝子の発現産物である、請求項1〜36に記載の方法。
- ADAR発現産物がADAR mRNAである、請求項1〜37に記載の方法。
- ADAR mRNAの決定が、
A)該血液サンプル細胞の全RNAを抽出し、その後、適当であれば、mRNAを精製する工程;
B)工程A)で抽出されたRNAを逆転写させる工程;および
C)工程B)で得られたcDNAを、定量および/または定性分析される各ADAR mRNAに特異的な、少なくとも1対のプライマーを用いてPCR増幅する工程
を含む方法により行われる、請求項38に記載の方法。 - 工程C)において、ADAR mRNA PCR増幅に特異的なプライマー対が、
ヒトADAR1−150イソ型mRNAの増幅には:
EX1A 34pフォワード:5’-GCCTCGCGGGCGCAATGAATCC-3’(配列番号41)、
EX2 578mリバース:5’-CTTGCCCTTCTTTGCCAGGGAG-3’(配列番号42);
ヒトADAR1−110イソ型mRNAの増幅には:
EX1B 534pフォワード:5’-CGAGCCATCATGGAGATGCCCTCC-3’(配列番号43)、
EX2 804mリバース:5’-CATAGCTGCATCCTGCTTGGCCAC-3’(配列番号44);
ヒトADAR2 mRNAの増幅には:
ADAR2 1274pフォワード:5’-GCTGCGCAGTCTGCCCTGGCCGC-3’(配列番号45)、
ADAR2 1486mリバース:5’-GTCATGACGACTCCAGCCAGCAC-3’(配列番号46);
マウスADAR1−150イソ型mRNAの増幅には:
EX1A 19pフォワード:5’-GTCTCAAGGGTTCAGGGGACCC-3’(配列番号47)、
EX2 646mリバース:5’-CTCCTCTAGGGAATTCCTGGATAC-3’(配列番号48);
マウスADAR1−110イソ型mRNAの増幅には:
EX1B 72pフォワード:5’-TCACGAGTGGGCAGCGTCCGAGG-3’(配列番号49)、
EX2 646mリバース:5’-CTCCTCTAGGGAATTCCTGGATAC-3’(配列番号48);および
マウスADAR2 mRNAの増幅には:
EX7 1281pフォワード:5’-GCTGCACAGTCTGCCTTGGCTAC-3’(配列番号50)、
EX9 1622mリバース:5’-GCATAAAGAAACCTGAGCAGGGAC-3’(配列番号51)
からなる群から選択される、請求項39に記載の方法。 - ADAR発現産物がADARタンパク質である、請求項1〜37に記載の方法。
- 工程b)において、ADARタンパク質の決定が、
A)所望により、血液サンプル細胞に含まれる全タンパク質を抽出した後、適当であれば、タンパク質の精製工程を行う工程;および
B)血液サンプル細胞に含まれる各ADARタンパク質の存在および/または濃度を、該ADARタンパク質を特異的に認識することができる抗体、好ましくは標識された抗体の実現により決定する工程
を含む方法により行われる、請求項41に記載の方法。 - 配列ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC(配列番号37)を含む、もしくは有するか;または
配列番号37のフラグメントnt5〜nt14を含む、
単離された核酸。 - プライマーまたはプローブとしての請求項43に記載の核酸の使用。
- ヒト編集および編集5HTR2C mRNAのイソ型を増幅するための2回目のネステッドPCRプライマーセット:
フォワード:5’-ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC-3’(配列番号37)、
リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTA-3’(配列番号38)。 - ネステッドPCRによりヒト編集および非編集ヒト5HTR2C mRNAの総てのイソ型を増幅するためのプライマーセット:
1回目:
フォワード:5’-TGTCCCTAGCCATTGCTGATATGC-3’(配列番号35);
リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTAGTC-3’(配列番号36);
および2回目:
フォワード:5’-ATGTGCTATTTTCAACAGCGTCCATC-3’(配列番号37);
リバース:5’-GCAATCTTCATGATGGCCTTA-3’(配列番号38)。 - 好ましくは蛍光団で標識される、請求項43、45および46に記載の単離された核酸またはプライマーセット。
- 請求項43もしくは47に記載の核酸、または請求項45、46もしくは47のプライマーセットを含む、哺乳類5HTR2C mRNA編集率またはプロフィールの決定のためのキット。
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