JP2010527617A - 高濃度の生物学的に活性な分子を含む組成物とその製造方法 - Google Patents

Abstract

バクテリア細胞からの対象とする生物学的に活性な分子の高純度試料を製造するための大規模方法が開示される。その方法は、複数の該細胞の細胞懸濁液と溶解液とを接触させ；該溶菌液を中和液で中和して、中和した溶菌液及び残骸物を含む分散液を製造し；少なくとも１つフィルターを通過させて、分散液をろ過し；該中和した溶菌液に対してイオン交換分離を行い、イオン交換溶出液を製造し；そして、該イオン交換溶出液に対して疎水性相互作用分離を行い、疎水性相互作用液を製造する工程を含む。さらに、開示された大規模方法により製造された大量のプラスミドＤＮＡを含む組成物が提供される。

Description

関連出願の相互参照
本出願は、本明細書に参照により援用される２００７年５月２３日に出願された米国仮出願第６０／９３９，７９２号の利益を主張する。

発明の分野
本発明は、高濃度のプラスミドのような生物学的に活性な分子を含むバルク組成物、及びそのような組成物を製造する方法に関する。

発明の背景
細胞中で作られ、細胞から分離される生物学的に活性な分子に関する多くの使用例がある。参照により本明細書に援用される米国出願公開第２００５００１４２４５号は、生体材料製造の方法と装置を開示する。生物学的に活性な分子はタンパク質と核酸分子を含んでいる。生きている細胞のそのような分子の製造は、代替製造法に対して多くの優位性を提供するが、細胞から生物学的に活性な分子を抽出するとき、分離と精製の問題が発生する。細胞の中には多くの成分が存在し、対象とする生物学的に活性な分子の高い収量が現実化することを妨げ、また同時に最終産物への望ましくない夾雑物の存在を表している。

プラスミド製造は、非ウイルス性の遺伝子治療とＤＮＡワクチン領域の出現によって興味深い領域になっている。プラスミドは大きく複雑な巨大分子で、破壊されていなければスーパーコイル状のＤＮＡ構造として維持される。化学合成法によるよりも、多くの場合生物系で製造し、そして引き続きこの系で単離し精製した方が費用の点で効果的である。プラスミドの生物学的製造は通常、対象とするプラスミドを含むエシャリチア・コリ（“Ｅ．ｃｏｌｉ”）の培養の形をとる。

精製工程の流れを準備するのに使われる細胞溶解とそれに引き続く処理工程は、どのプラスミド調製工程においても、最も難しく、複雑で、そして重要な工程である。それぞれのプラスミド製造作業で収量と品質がこの工程で決定される。継続的で規模の拡大を望め、プラスミドの大きさに無関係に高濃度で形成される高品質の生成物を製造する最適の方法に関する研究においては、商業として成り立ち得る、受け入れられる工程を獲得するまでには困難があった。

プラスミド精製でアルカリと界面活性化剤を用いるバクテリアの溶解はよく使われる方法である。残念ながら、この方法は大規模調製（すなわち規模拡大生産）に対しては重大な挑戦が必用がある。第一に、溶解液での懸濁された細胞の十分な混ぜ合わせは、小規模の場合、細胞の入った容器を単にボルテックス又は反転することよって簡単に処理することができる。しかし数十数百リットル範囲の大規模になると非実用的である。羽車によるミキシングのような、大容量の液体をかき混ぜるのに最もよく使われる方法は問題がある。何故なら最初のかき混ぜの後いくらかの細胞が分解し始め、溶液の粘性を劇的に高めるゲノムＤＮＡを放出するからである。粘性の上昇はさらなる混ぜ合わせを著しく妨害する。もう１つの問題は、アルカリ溶解液の添加による高ｐＨでの過剰なインキュベーションがプラスミドの永久的な変性に通じるということであり、大抵の次の使用目的、特に治療目的で不適合となる。さらに、浮き上がる沈殿物からのかなりの量の材料の、プラスミド含有溶液への混入を避けるため、この工程の混ぜ合わせは入念ではあるが十分優しく（すなわちせん弾力を抑えて）行わなければならない。宿主のゲノムＤＮＡとエンドトキシンが、大量に浮き上がる沈殿物に含まれており、プラスミドに混在すると以降の精製過程で分離するのが難しくなる。このように、プラスミドの大規模製造は、大量の細胞を溶解液に晒し、溶解液を混ぜ合わせ中和し、プラスミドの製造を最適化し、プラスミドの分解を最小化し、他の細胞成分の除去を最大にし、材料がさらに精製され、比較的大容量の高濃度、高品質、高純度の最終生成物が製造される。

プラスミドを精製する方法は多種存在する；しかしそれらは大規模調製には向いていない。研究室規模の精製技術は、大規模プラスミド調製の容量にスケールアップできない。大規模調製は、収量と分子整合性を最適化し、夾雑物の除去とプラスミド濃度の最大化を要求する。高濃度のプラスミドＤＮＡを大量に製造することにおいては、スーパーコイル及びオープンサークルの弛緩型に維持することに問題がある。貯蔵条件は一般的には高塩分が要求され、時間に伴う分子的な分解が塩存在化においてさえも問題となる。多くの現行の精製法は潜在的に危険で、毒性があり、突然変異誘発的で夾雑物と一緒になり、そして／又は、大規模調製には好ましくない高価な物質又は装置の使用に依存する。現行の精製方法のいくつかは、タンパク質の最終的な除去を行うために酵素の使用を利用している。そしてこのような酵素は大規模調製では費用が嵩み、生物学的混入の危険性の原因となる。

プラスミドのような対象とする生物学的に活性な分子の大規模製造の方法の必要性が存在する。最終生成物が、高収率で、高濃度で、分解が最小に抑えられ、夾雑物の存在なしの、装置の最小化及び／又は工程の最小化のような費用に効果的な様式で作られる。高濃度で、分解及び不純物、夾雑物そして不要な物質の存在の最小化が図られた大量のプラスミド溶液とそのような溶液を調製する方法についての必要性が存在する。大量のプラスミドの必要性は、プラスミド量がミリグラム（“ｍｇ”）範囲かその上を製造するのにさらに多くの細胞を必要とする、低コピー数プラスミドにおいてより大きい。

本発明の局面は、バクテリア細胞から少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子の高純度試料を製造する大規模方法を含む。大規模方法は以下の工程を含む：
ａ）複数の該細胞の細胞懸濁液と溶解液（ｌｙｓｉｓ ｓｏｌｕｔｉｏｎ）との接触によって溶菌液を製造し；
ｂ）中和液による該溶菌液（ｌｙｓａｔｅ ｓｏｌｕｔｉｏｎ）を中和し、中和した溶菌液と残骸物を含む分散液を製造し；
ｃ）少なくとも１つのフィルターを通過させて分散液をろ過し；
ｄ）該中和した溶菌液に対してイオン交換分離を行い、イオン交換溶出液を製造し；及び
ｅ）該イオン交換溶出液に対して疎水性相互作用分離を行い、疎水性相互作用液を製造する。この局面のいくつかの態様において、大規模工程はさらに、該疎水性相互作用液の限外ろ過による、少なくとも１つの生物学的に活性な分子の溶液の調製の工程を含むものである。

さらなる本発明の局面は、バクテリアの細胞から少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子の高純度試料を製造するための大規模方法を含む。また以下の工程を含む：細胞の分散液内のバクテリア細胞を溶解液と接触させ、溶菌液を形成する；溶菌液を、中和液を溶菌液にバブルカラムミキサーを使って混合することにより中和し、中和した混合液を形成する；中和した混合液を第一フィルターと第二フィルターに通してろ過し、ろ過溶液を形成する；ろ過溶液をイオン交換カラムに通しイオン交換液を形成する；イオン交換液を疎水性相互作用カラムか疎水性相互作用膜に通し疎水性相互作用液を形成する；そして、疎水性相互作用の限外ろ過で少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子の高純度試料を形成する；ここで、接触工程からろ過溶液の通過の工程までの大規模工程の１つの工程から次の工程への各移行は実質的に連続的である。

本発明のその他の局面において、本明細書で記載され明らかにされた方法によって調製された少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子を含む組成物が提供される。ここで、少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子とはＤＮＡプラスミドである。いくつかの態様において、組成物は、溶液中で約１０ｍｇ以上の量の少なくとも１つのＤＮＡを含む。ここで該プラスミドの高純度性とは約９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％より高く存在しているプラスミドのことである。

本発明の多くの目的と利益は、付随されている図を参照することにより当業者により理解されるであろう。

図１は連続的な工程の流れでの、バクテリア細胞から対象とする生物学的に活性な分子を分離し精製するのに使われる１つの態様を図式化して示している。 図２は下の実施例１からの試料を含むゲル電気泳動の写真を示す。レーン１はスーパーコイル状のプラスミドラダー（インビトロジェン）である；レーン２ 細胞溶解液；レーン３ Ｑアニオン交換後の産物；レーン４ 疎水性相互作用による精製後の産物；そしてレーン５ 限外ろ過後の混ぜ合わされた最終産物。 図３は下の実施例３からの試料を含むゲル電気泳動の写真を示す。レーン１はスーパーコイル状のプラスミドラダー（インビトロジェン）である；レーン２は４８μｍひだ状カートリッジを使って第一ろ過後の溶菌液である；レーン３は１μｍひだ状カートリッジを使っての第二次ろ過後のろ過溶液である；レーン４はＣ０ＨＣポドフィルターを使って第三次ろ過後のろ過溶液である；レーン５はムスタングＱアニオン交換工程経た後のフラクション＃１の溶出産物である；レーン６はＱ溶出液の二番目のフラクションである。

細胞から対象とする生物学的に活性な分子の精製法は、細胞から高レベルの純度と濃度の対象とする生物学的に活性な分子を精製するときに提供される。好ましくは対象とする生物学的に活性な分子とは、プラスミド又はＤＮＡプラスミドである。細胞は、対象とする生物学的に活性な分子を含む細胞なら何でもよい。いくつかの態様において、細胞とは微生物細胞のことであり、例えばバクテリアのような原核生物細胞のようなものである。いくつかの態様において、細胞はＥ．ｃｏｌｉ細胞である。細胞は、例えば培養のようなどのような方法で製造され生成されてよい。細胞を培養する方法は当業者では周知である。本発明は、細胞から対象とするどのような生物学的に活性な分子を抽出するのにも用いられる。いくつかの態様において、本発明は、対象とする１つ以上の生物学的に活性な分子を抽出するのに用いられる。対象とする生物学的に活性な分子は、核酸又はタンパク質のような巨大分子である。いくつかの態様において、対象とする生物学的に活性な分子はプラスミドである。

交互に使用される用語“プラスミド”又は“ＤＮＡプラスミド”は、染色体ＤＮＡとはかけ離れた染色体ＤＮＡ外分子である環状ＤＮＡで、染色体ＤＮＡと独立して複製が可能である。コードされた配列又は導入遺伝子は、ＤＮＡプラスミド内によく含まれており、それが実際に存在するときは、ＤＮＡプラスミドは発現プラスミドあるは発現コンストラクトと呼ばれる。コード配列又は“コードされた核酸配列”は、核酸分子を投与された個々の細胞内での発現を指示することが可能なプロモータとポリアデニレーションシグナルを含む調節エレメントに実施可能にリンクした開始及び終止シグナルを含むことができる。

記載された工程の参照として使われる“大規模”という用語は、少なくとも１つの生物学的に活性な分子、特にＤＮＡプラスミドの、約１グラム又はそれ以上の量をバクテリア細胞又はバクテリア細胞の懸濁液から製造する精製工程、及び／又は約１キログラム又はそれ以上のバクテリア細胞ペーストの溶解を必要とする精製工程をいう。

生物学的に活性な分子、特にＤＮＡプラスミドの純度レベルの参照として使われる“高純度”は、少なくとも約９０％以上、そして好ましくは約９１％以上、約９２％以上、約９３％以上、約９４％以上、約９５％以上、約９６％以上、約９７％以上、約９８％以上、又は約９９％以上のレベルで宿主バクテリア細胞からの分子の精製をいう。

本明細書で記載されたプロセスの参照として使われる“連続的な”又は“実質的に連続的”という用語は、精製プロセスの最初からイオン交換クロマトグラフィーカラムに添加するプロセスまでの、精製プロセスのそれぞれの工程からそれぞれの次のプロセスの間の物質（又は溶液若しくは分散液）の連続的な流れをいう。例えば、接触工程で溶解液と分散液のバクテリア細胞が接触し溶菌液を形成するとき、そのような溶菌液は、中和液による中和の次の工程に直接的に流れ込む。工程間のこのような連続的な移行は、精製工程のプロセスの工程間の保持又はインキュベーション工程を排除する。

用語“生物学的に活性な分子”とは、機能を発揮する状態のバクテリア内に含まれる分子又は生体分子をいう。そしていくつかの態様において、特にＤＮＡプラスミドをいう。そのようなＤＮＡプラスミドは単離でき、対象とする細胞を形質移入するのに使うことできる。本発明の組成物は少なくとも一種の生物学的に活性な分子を含む。いくつかの態様においては、本発明の組成物は一種以上の生物学的に活性な分子を含む。

プラスミドは、例えばｐＭＢ１又はｐＳＣ１０１のプラスミドが含む複製の起点に依存してコピー数が大きく異なる。これはプラスミドが弛緩状態であるか又は厳密な条件下にあるかを決定する；またプラスミドのサイズ及び随伴性の挿入された配列を決定する。ｐＵＣシリーズとその誘導体のようないくつかのプラスミドは、バクテリアの細胞内で、非常に高いコピー数に達することを可能にする変異を有する。ｐＢＲ３２２系のプラスミドは一般的に低コピー数で維持される。非常に大きなプラスミドはしばしば、細胞１つにつき非常に少ないコピー数で維持される。本発明のいくつかの態様は、グラム量のような大量のプラスミド量を生み出すための大規模で、経済的で最少工程数の製造プロセスで（より高収量を維持するために）、細胞、好ましくはバクテリア細胞からのプラスミドの精製を可能にする、プラスミド精製プロセスに関する。いくつかの態様において、プラスミドは低コピー数のプラスミドである。提供されたプロセスの結果として生じる製造された生物学的に活性な分子の目的から、低コピー数のプラスミドは約３００以下、約１００以下、約５０以下、約２０以下、約１０以下、又は約５以下のコピー数を達成するプラスミドである。

本発明の１つの局面は、バクテリア細胞から少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子の高純度試料を製造するための大規模プロセスを含む。大規模プロセスは以下の工程を含む：
ａ）複数の該細胞による細胞懸濁液と溶解液とを接触させることによって溶菌液を製造し；
ｂ）中和液による該溶菌液を中和して、中和した溶菌液と残渣を含む分散液を製造し；
ｃ）少なくとも１つのフィルターを通過させて分散液をろ過し；
ｄ）該中和した溶菌液に対してイオン交換分離を行って、イオン交換溶出液を製造し；そして
ｅ）該イオン交換溶出液に対して疎水性相互作用分離を行って、疎水性相互作用液を製造する。

１つの態様において、大規模プロセスは、高せん断インラインミキサーで、溶菌液と該細胞懸濁液を混合させることを含む溶菌液製造工程を含む。

いくつかの態様において、製造工程は、約１分〜約２０分まで、好ましくは約４分〜約８分まで、さらに好ましくは５分の間ミキサー中で細胞懸濁液を溶解液と接触させることを含む。いくつかの態様において、中和工程はバブルミキサー中で中和液と溶菌液を混合させることを含む。いくつかの態様において、疎水性相互作用の分離実行工程は疎水性相互作用カラム又は疎水性相互作用膜を使い疎水性相互作用分離を行って、疎水性相互作用液を形成することを含む。疎水性相互作用の分離工程は、不純物をフロースルーか洗浄させ得る、疎水性相互作用膜又はカラムへの結合によって、対象とする生物学的に活性な分子を分離することができる。いくつかの態様において、不純物が結合するのに対して、対象とする生物学的に活性な分子は疎水性相互作用カラムをフロースルーする場合がある。いくつかの態様において、対象とする生物学的に活性な分子は疎水性相互作用膜（すなわちＨＩＣ膜）をフロースルーする（本明細書では“方法Ｉ”という）。いくつかの態様において、対象とする生物学的に活性な分子は、ブチルカラムのようなＨＩＣカラムに結合する（本明細書では“方法ＩＩ”という）。いくつかの態様において、ＨＩＣ膜とブチルカラムのようなＨＩＣカラムの組み合わせが使われ（本明細書では“方法ＩＩＩ”という）、ＤＮＡプラスミドのグラム又はそれ以上の量のような、高純度の大規模な量の対象とする生物学的に活性な分子を製造する。いくつかの態様において、疎水性相互作用分離は、ブチル疎水性相互作用クロマトグラフィー溶液の溶出液である疎水性相互作用液を製造するために、少なくともブチル疎水性相互作用クロマトグラフィーを使用する分離を含む。

いくつかの態様において、記載された大規模プロセスはさらに、該疎水性相互作用液の限外ろ過による、少なくとも１つの生物学的に活性な分子の溶液の調製の工程を含むことができる。さらに、該生物学的に活性な分子の溶液のろ過滅菌による生物学的に活性な分子の滅菌溶液の調製の工程を実行することができる。

いくつかの態様において、大規模プロセスは、中和した溶菌液を残骸物から分離するのに一定期間、分散液を保持し、次に少なくとも一つのフィルターを通過させて、中和した溶菌液のろ過を要求する保持工程を含む。

いくつかの態様において、アニオン交換膜を使用してイオン交換分離実行工程が実行される。好ましくは、イオン交換分離工程は、イオン交換カラム、そして好ましくはムスタング（登録商標）Ｑカートリッジの使用を含む。

いくつかの態様において、大規模プロセスは、連続したプロセスを含んでいるか又は、バクテリア細胞から高純度の生物学的に活性な分子製造のための連続した大規模プロセスと呼ばれている。その方法は、大規模プロセスの１つの工程から次の工程への十分で連続的な移行を含み、また容器に溶菌液を集め初期の粗製な中和した溶菌液を製造するために分散液を第１のフィルターに通過させることによって、分散液の中の残骸物から中和した溶菌液を分離することを含む。いくつかの態様において、その工程はさらに、次の粗製な中和した溶菌液を製造するために、最初の粗製な中和した溶菌液を第２のフィルターに通過させることを含む。

ある態様において、本発明は、バクテリアの細胞から高純度の対象とする生物学的に活性な分子を製造するための大規模プロセスを含み、次の工程を含む：溶解液と細胞の分散液内のバクテリア細胞を接触させ、溶菌液を形成させ；バブルカラムミキサーにより中和液を溶菌液に混合させることによって溶菌液を中和して、中和した混合液を形成し；第１のフィルターと第２のフィルターに中和した混合液を通過させ、ろ過溶液を形成し；イオン交換カラムにろ過溶液を通過させて、イオン交換液を形成し；イオン交換液を疎水性相互作用カラム又は疎水性相互作用膜に通して疎水性相互作用液を形成し；そして疎水性相互作用液を限外ろ過し、高純度の対象とする生物学的に活性な分子を形成し；ここで、接触工程からろ過溶液通過工程の大規模プロセスの１つの工程から次の工程のそれぞれの移行は実質的に連続的である。本発明の別な局面において、本明細書で記載された大規模プロセスで調製された対象とする生物学的に活性な分子を含む組成物が提供され、ここで対象とする生物学的に活性な分子はＤＮＡプラスミドである。いくつかの態様において、組成物は、溶液で約１０ｍｇ以上の量でＤＮＡプラスミドを含む。ここで該プラスミドの高純度性とは約９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％より高い状態で存在するプラスミドである。請求項１８の組成物、ここで該プラスミドの濃度は約５、６、７、８、９、１０、１１、１２、又は１３ｍｇ／ｍＬである。いくつかの組成物は、約５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％又は９５％のスーパーコイル状のプラスミド、好ましくは８０％を超えるスーパーコイル状のプラスミドのレベルでプラスミドを含んでいる。いくつかの組成物は、プラスミド１ｍｇにつき約１０ＥＵ以下のエンドトキシンを含んでいる。そしていくつかの態様では、組成物はプラスミド１ｍｇにつき約１ＥＵ以下のエンドトキシンを含む。いくつかの態様では、プラスミド１ｍｇにつき約０．１ＥＵ以下のエンドトキシンを含む。いくつかの態様において、組成物は約１．０％以下のＲＮＡ又は約０．４％以下のＲＮＡを含んでいる溶液を含む。いくつかの好ましい態様では、組成物は約１．０％以下のタンパク質、好ましくは約０．２０％以下のタンパク質を含んでいる溶液を含む。いくつかの態様では、組成物は約１％以下のゲノムＤＮＡ、好ましくは約０．０１％以下のゲノムＤＮＡを含んでいる溶液を含む。

本明細書に提供されているたくさんの工程を含む本発明の１つの態様の一例は、次の工程を含む：第１工程、対象とする細胞が製造され回収される；第２工程、細胞が溶解され、対象とする生物学的に活性な分子を含むその内容物が溶液に放出される；第３工程、固形の細胞残渣と沈殿した細胞成分が、少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子を含む流動体から分離される；第４工程、対象とする生物学的に活性な分子を含む溶液がイオン交換クロマトグラフィーに供される；第５工程、イオン交換クロマトグラフィーで部分精製された材料が疎水性相互作用クロマトグラフィーに供される；第６工程、疎水性相互作用クロマトグラフィーからの材料が限外ろ過と膜分離精製に供され、少なくとも一種の対象とする生物学的に活性な分子が濃縮され、そして溶液から余分な塩が除かれる；第７工程、濃縮され脱塩された製造物は任意でろ過滅菌に供され、例えば筋肉内送達、静脈内送達、鼻腔内送達、心臓内送達、噴霧剤送達、経皮的送達、筋肉へのインビボ電気穿孔促進送達、皮下又は皮内へのインビボ電気穿孔促進送達、さらにまた薬学的投与のその他の知られている方法を含む、薬学的使用に適したものにする。

本発明のいくつかの態様は、プロセスの保持工程に限定されない生産規模に帰着する連続的モードの工程の組み合わせの運転を含む、本明細書で開示されたプロセス工程を含むがこれに限定されるわけではない。そのようなプロセスは大規模な、例えば約１グラム以上のプラスミドの製造などの薬学的グレードの生体分子の製造を可能にする。発明のいくつかの態様は、大規模製造又は医薬品に有害と証明された材料又はプロセスの使用を排除する。例えば、酵素の封入、熱変性、機械的分離（そのような分離を行う機械）、例えば遠心装置、又は有機又は揮発性の溶媒、例えばイソプロパノールを含む。

対象とする細胞は、発行と回収の通例の方法により製造され回収される。当業者は十分な量の対象とする細胞を調製することができる。例えば、細胞は、対象とするプラスミドを高コピー数含んでいるＥ．ｃｏｌｉであり、プラスミド含有細胞は、バッチ法又は添加バッチ法を用いて高密度に培養される。プラスミド含有Ｅ．ｃｃｌｉ細胞の調製法及びそのようなバッチ又は添加バッチ培養法は当業者にはよく知られている。細胞は遠心又はろ過のような通常法で回収でき、細胞ペーストを形成する。そのような回収法は当業者にはよく知られている。さらに当業者は、回収された細胞又は細胞ペーストがすぐに処理されるのか又は後日の処理のために凍結又は冷却状態で保存すべきなのか認識している。

回収された細胞は溶解液で溶解でき、対象とする生物学的に活性な分子を含む内容物が溶菌液に放出される。

一般的に、細胞を溶解する前に、細胞ペーストが、対象とする生物学的に活性な分子を含んでいる細胞の懸濁物を調製するのに使われる。細胞はどのような適切な溶液を使っても懸濁できる。懸濁溶液内の細胞を含む懸濁液は、タンク又は他の貯蔵容器で維持することができる。二つの容器を使うことが可能で、二番目の容器は追加の細胞を懸濁するのに使われ、一方、一番目の容器が溶解プロセスで使われる。いくつかの態様において懸濁溶液は中程度の濃度の緩衝液、中程度の濃度のキレート試薬、又はその両方ともを含む。いくつかの態様において、懸濁溶液はｐＨ約８の約２５ｍＭトリス塩酸（“Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ”）、そして約１０ｍＭエデト酸二ナトリウム（“Ｎａ₂ＥＤＴＡ”）を含む。いくつかの態様において、細胞懸濁液は、既知重量の細胞ペーストを既知重量の懸濁溶液で懸濁することにより調製する。例えば、一容の細胞ペーストが約４〜１０部（ｐａｒｔ）の緩衝液で再懸濁され、いくつかの態様においては約６〜８部の緩衝液で再懸濁される。いくつかの態様において、生じた細胞懸濁液の光学密度は約５０〜８０ＯＤ₆₀₀単位である。いくつかの態様においてそれは約６０〜７０ＯＤ₆₀₀単位である。

溶解液は、アルカリ、酸、酵素、有機溶媒、界面活性剤、又はそれらの混合物のような、１つ又はそれ以上の溶解試薬を好ましく含んでいる。しかし、動物由来の酵素又は有機溶媒の使用は好ましいものではない。なぜなら医薬品の生産にそれらが有害だからである。いくつかの態様において溶解液は、アルカリ、界面活性剤、又はその混合物を含む。適切なアルカリは、水酸化ナトリウム又は水酸化カリウムを含んでいるがこれらに限定されるわけでない。界面活性剤は、非イオン性、カチオン性、又はアニオン性である。適切な界面活性剤は、ドデシル硫酸ナトリウム（“ＳＤＳ”）、トリトン、ツイーン、又は多価性試薬（エチレンオキシドとプロピレンオキシドに基づいたブロック共重合体）を含んでいるが、これに限定されるわけではない。適切なアルカリ又は界面活性剤の選択は、当業者の間ではよく知られている。いくつかの態様において、溶解液は、水酸化ナトリウム（“ＮａＯＨ”）とＳＤＳを含む。いくつかの態様において、ＮａＯＨの濃度は、約０．１〜約０．３Ｎであり、いくつかの態様において約０．２Ｎである。いくつかの態様においてＳＤＳの濃度は、約０．１％〜約５％、いくつかの態様において約１％であってもよい。いくつかの態様において、溶解液は、タンク又は他の貯蔵容器で維持される。

細胞懸濁液と溶解液が合わされ細胞が溶解して、溶菌液が作られる。いくつかの態様において、それらは合わされ、混ぜ合わされそして高レベルの細胞の溶解と生物学的材料の放出を可能にするに十分な時間、混合物として維持されることによって溶菌液を形成する。

いくつかの態様において、細胞懸濁液と溶解液は異なるタンクで維持され、１以上のポンプでそのようなタンクから引き出される。細胞懸濁液と溶解液は、“Ｙ”コネクタを使って互いに接触してもよい。いくつかの態様において、同量の細胞懸濁液と溶解液がデュアルヘッドポンプを使って、同じ流速で送り込まれる。しかし当業者は、望まれるならそれぞれのポンプを使って、異なる容量の細胞懸濁液と溶解液を異なった速度で送れることを認識している。いくつかの態様において、細胞懸濁液と溶解液は同時にガラス繊維強化プラスチックのデュアルヘッドポンプを通じて、約０．３Ｌ／分〜約２Ｌ／分で送り込まれる。このとき接触した流動体は約０．６Ｌ／分〜約４Ｌ／分の速度で“Ｙ”コネクタを出て行く。当業者はこれらの流速を簡単に増加させたり減少させたりすることができ、どのような要求される処理量に対しても対応できるようにチューブのサイズを増加させたり減少させたりできることを認識している。“Ｙ”コネクタを出た後、接触した細胞懸濁液と溶解液は、高せん断インラインミキサーを通過してもよい。ミキサーは、フロースルーモード（バッチモードとは反対の）で、高速高せん断の混ぜ合わせを提供できる装置なら何でもいい。いくつかの態様において、ミキサーは回転子／固定子ミキサー又はエマルシファイアである。当業者は、多種類のそのような高せん断インラインミキサーが商品として入手可能なことを認識している。どのようなミキサーを使用しても、本発明の範囲内である。いくつかの態様において、ミキサーは標準エマルサスクリーン付のシルバーソンＬ４Ｒ回転子／固定子ミキサー（米国マサチューセッツ州、イーストロングメドウ、シバーソンマシーンズＩｎｃ）であり、インラインアセンブリーである。ロータは、約５００ｒｐｍ〜約９００ｒｐｍ、５００〜６００ｒｐｍ、約５００ｒｐｍ〜約７００ｒｐｍ、約５００ｒｐｍ〜約８００ｒｐｍ、約６００ｒｐｍ〜約７００ｒｐｍ、約６００ｒｐｍ〜約８００ｒｐｍ、約６００ｒｐｍ〜約９００ｒｐｍ、約７００ｒｐｍ〜約８００ｒｐｍ、又は７００ｒｐｍ〜約９００ｒｐｍのような速度で運転される。そのようなミキサーは、約０．３Ｌ／分〜約２Ｌ／分の細胞懸濁液の処理に適している。しかし当業者は、実質的により大容量の細胞懸濁液を処理するために大規模ミキサーに置き換えることができることを認識している。そのような置き換えは当業者にはただの通常の実験として簡単に達成される。高せん弾インラインミキサーの使用は、細胞懸濁液と溶解液の徹底的で素早い混ぜ合わせを容易にし、細胞を溶解試薬とよく馴染むように接触させ効果的な溶解を達成する。さらにミキサーは異なる流動体流速にすぐに適応し、異なる流速に順応する柔軟性のある速さで混ぜ合わを提供する。高せん弾インラインミキサーを出て行く材料は次に保持コイルを通る。このコイルは単に、決められた時間に流動体がコイルを通過ということを提供するのに十分な管の長さを含む。コイルの機能は、実質的に完全な溶解を確実なものとするために細胞と溶解試薬の間に十分な接触時間を提供することにある。同時に、コイルは否定的な結果を招かないように接触時間があまり長くならないようにしている。細胞がプラスミド含有細胞で溶解液がアルカリを含むときのような、いくつかの態様において、アルカリへの暴露を十分長く続け、実質的に完全なタンパク質、ゲノムＤＮＡ、そしてその他の細胞成分の変性と同様に実質的に完全な細胞の溶解を達成することを確実にすることが望まれる。しかしまた、アルカリへの暴露があまり長くなりすぎて永久的に変性したプラスミドを大量に作ってしまわないようにすることも望まれるのである。コイルは１つの完全な管、又は流動体流速を柔軟にするために２〜１０の管に分割される。保持コイルはこの接触時間を制御できるようにしている。いくつかの態様において、この接触時間は約２分〜約１０分である。いくつかの態様において、この接触時間は約２分〜約９分、約２分〜約９分、約２分〜約８分、約２分〜約７分、約２分〜約６分、約３分〜約１０分、約３分〜約９分、約３分〜約８分、約３分〜約７分、約３分〜約６分、約４分〜約１０分、約４分〜約９分、約４分〜約８分、約４分〜約７分、約４分〜約６分、約５分〜約１０分、約５分〜約９分、約５分〜約８分、約５分〜約７分、又は約５分〜約６分である。好ましくは、接触時間は、約４分〜約８分又は約４分〜約６分である。いくつかの態様において接触時間は約５分である。いくつかの態様において、保持コイルの長さと直径は、望まれる暴露時間が、溶解された細胞が望まれる速度で流れていくときに達成されるようなものである。いくつかの態様において、保持コイルは、長さ約１０フィート〜長さ約１５０フィート、長さ約２５フィート〜長さ約１００フィート、又は長さ約４０フィート〜長さ約６０フィートである。いくつかの態様において保持コイルは、長さ約５０フィートであり、いくつかの態様において保持コイルは、長さ約１００フィートである。保持コイルは内径が約０．５インチ〜約２インチであり、そしていくつかの態様において０．６２５インチである。さらにまたいくつかの態様において、溶解された細胞は、高せん断インラインミキサーから出て行き、約１００ｍＬ／分〜約１０Ｌ／分、約２００ｍＬ／分〜約８Ｌ／分、約３００ｍＬ／分〜約６Ｌ／分、約４００ｍＬ／分〜約４Ｌ／分、約４００ｍＬ／分〜約２Ｌ／分、又は約６００ｍＬ／分〜約１．２Ｌ／分という速度で保持コイルを通過する。好ましくは保持コイルを通る速度は、約０．６ｍＬ／分〜約１０Ｌ／分である。いくつかの好ましい態様において、保持コイルを通過する速度は、約６００ｍＬ／分で、いくつかの態様においてそれは約１２００ｍＬ／分である。コイルの長さと直径の調節は当業者によって達成され、生物学的に活性な分子の製造がスケールアップされたときは、より速い流速に調節されたり調整されたりする。溶菌液が保持コイルから集められる。

溶菌液は、中和液（中和沈殿溶液ともいう）と接触されることにより中和され、中和された溶菌液と残骸物を含む分散液が製造される。結果として生じた分散液が維持され、残骸物からの中和された溶菌液の分離が促進される。

いくつかの態様において、溶解された細胞を含む溶菌液は、中和チャンバーの中で中和液と混ぜることによって中和される。溶菌液の中和は、中和チャンバーの中で混ぜ合わせることにより促進される。いくつかの態様において、中和はバブルカラムミキサー内でバブルミキシングすることにより追跡することができる。好ましくは、バブルカラムミキサー内でバブルミキシングと連結して中和が起こる。いくつかの態様において、保持コイルから出て行く溶菌液はバブルカラムミキサーに入って行く。その一方で、同時にポンプが別のタンクから中和／沈殿溶液をバブルカラムミキサーに送る。いくつかの実施例において、また同時に、別のタンクから圧縮ガスがバブルカラムミキサーの底部に撒き散らされる。いくつかの態様において、溶菌液は一方の側から底部のカラムに入り、一方、中和／沈殿溶液が反対の側から底部に入って行く。圧縮されたガスは、カラムの横断面を横切って十分に均一にガス気泡を送るためにデザインされた焼結スパージャを通って撒き散らされる。溶解された細胞を含む溶菌液と中和液はカラムを垂直に上へ流れ、最上部近くの側面の出口ポートを通って出て行く。液体垂直カラムのガス気泡の通過は溶菌液を中和／沈殿溶液と混ぜ合わすのに役立つ。上昇ガス気泡で提供されるミキシングは徹底的ではあるが穏やかでせん断力が小さくなければならない。中和／沈殿液が溶菌液の溶解した細胞と混ざり合うとき、溶液から細胞成分が沈殿する。シュノーケルがバブルカラムミキサーの最上部に提供されており余分なガスに出口を与える。

いくつかの態様において、溶菌液は、アルカリ、界面活性剤、又はその混合液で溶解されたプラスミド含有細胞から成り、そして中和／沈殿溶液がアルカリを中和し、タンパク質、膜、エンドトキシン、そしてゲノムＤＮＡのような宿主細胞成分を沈殿させる。いくつかの態様において、アルカリはＮａＯＨであり、界面活性剤はＳＤＳであり、そして中和／沈殿溶液は、酢酸カリウム、酢酸アンモニウム、又はその混合液であってもよい。いくつかの態様において、中和／沈殿溶液は、約１Ｍ酢酸カリウム、そして約３Ｍ〜約７Ｍ酢酸カリウムを含む非緩衝液を含む。そのような中和／沈殿溶液の使用は、ｐＨが約７〜約８の懸濁液を製造する。酸性条件はＤＮＡの脱プリンを導くので、これは酸性のｐＨより好ましい。いくつかの態様において、中和／沈殿溶液は、約２℃〜約８℃の冷却した形態で供給される。

バブルカラムミキサーは、低せん断力での混合を提供するので、溶菌液へＤＮＡとエンドトキシンの過剰の放出を避けることができる。当業者は、ガスのバブルカラムミキサーを流れる好ましい速度を決定することができる。ガスの流速は約１分間に２標準リットル〜約２０標準リットルで使用できる。適切なガスならどれでも使用することができ、空気、窒素、アルゴン、そして二酸化炭素を含むが、これらに限定されるわけではない。ガスはろ過した圧縮空気である。

溶菌液と中和液の組み合わせは、中和した溶菌液と残骸物を含有する分散液の生成を来たす。中和した溶菌液は、タンク又は貯蔵容器に集められてもよい。いくつかの態様において、容器は５〜１０℃に冷却される。容器内での中和された溶菌液の保持のための時間は必ずしも必須ではない。１時間以下から、約１時間〜約１２時間、約１２時間〜約１５時間、又は１５時間以上まで変化し得る。いくつかの態様において、用いられる時間は約１２時間であり、一方いくつかの実施例では約１５時間の時間が用いられ、その他の実施例では、“一晩中”いう時間もある（約１５時間以上と定義される）。１つの態様において、中和された溶菌液から細胞残骸物を実質的に完全に分離することを達成するために十分な保持期間が採用される。しかし、プロセス規模は、粗製な溶菌液保持タンクによって制約を受け、この保持期間によってプロセス時間が引き延ばされる。

低収率のプラスミド産物の大規模精製を達成するために、中和された溶菌液の保持時間が１時間以下に減らされる。いくつかの態様において、中和された溶菌液はそれが生成されるときと同時に処理され、よって容器中の保持時間はほとんど無視できる。いくつかの態様において、容器内で溶菌液を集めてから約５分〜６０分の時間後、溶菌液は次の工程によって同時に処理される。溶菌液の保持時間の減少又は除去はまた、溶菌液がその生成とともにすぐに処理されるので、容器による工程容量制限を取り除かれる。

中和された溶菌液は、固相／液相分離法のどのようなアプローチからでも透明にすることができる。例えばバッグによるろ過、カートリッジによるろ過、バッチ遠心、連続遠心などがある。次の精製プロセスでの膜又はカラムの目詰りを避けるため、溶液内の粒子の完全な除去が望まれる。同時に、溶菌液は余分なせん断に供されてはならない。これはゲノムＤＮＡを切り刻み、ゲノムＤＮＡ、切り刻まれたゲノムＤＮＡ、エンドトキシンそして他の夾雑物の放出の原因となり、プラスミド含有溶液に放出されてしまう。少容量の溶菌液を処理するにはバッチろ過法が用いられる。しかしこの方法は大規模のときは非実用的である。連続遠心もまた適していない。なぜなら沈殿物が高せん断応力に供され、溶液に高レベルの夾雑物が放出されるからであるいくつかの態様において、異なるグレードのフィルター媒体を用いる一連のろ過が利用できる。第１のろ過は、大部分のミクロンサイズの巨大細胞群を除去するために用いられ、一方、連続した第２のろ過では、残りの微粒子を保持する。次のプロセスで厳密な透明性が望まれ第２のろ過が不十分なとき、任意に第３のろ過が行われる。

いくつかの態様において、高汚染保持能力と溶液に対する最少の妨害ということでバッグ及びカートリッジフィルターを用いることができる。フィルターバッグ又はカートリッジはどのようなサイズ、形、ポアサイズの等級、媒体でもよい。フィルター媒体は好ましくは、医薬品グレードの又は米食品医薬品局（ＦＡＤ）の指示に則った材料から作られる。フィルターの材質はまた電荷がなく生成物がほとんど結合しないものが好ましい。フィルター材質の粒子径限度値は約０．１μｍ〜約数百ミクロンまでの間を変化する。それは標的生成物のサイズより大きくてフィルター媒体により生成物が保持されないようにする。バッグフィルターとカートリッジフィルターの媒体は単層状、多層状、ひだ状、多ひだ状である。

いくつかの態様において、大規模なプロセスに適応させるために、同じポアサイズの等級で２以上のフィルターが並行して使われてもよい。細胞壁と細胞膜の成分、沈殿物、ゲノムＤＮＡ、タンパク質、脂質、リポ多糖、及びその他の夾雑物を含む溶菌液の固形粒子の大部分がろ過によって除去される。しかし、所望の透明性の溶液を送るのに第１のろ過が不十分なとき、ポアサイズを小さくした又はより保持速度を大きくした第２のろ過が次に配置されてもよい。いくつかの態様においては、大規模なプロセスに適応させるため、２以上の第２のフィルターが並行して設置されてもよい。大規模プロセスでは多くのフィルターが要求されるときもあり、当業者は、使用されるフィルター数、さらに粒子径限度値のような詳細が容易に変更されることを認識している。

いくつかの態様において、分散液が集められ、清澄化タンクで維持され、残骸物を沈殿させるか浮き上がらせてもよい。したがって、いくつかの態様において、分散液は、粗製な細胞溶解物のスラリーとして集められ、バブルカラムミキサーからの宿主細胞成分を沈殿させ、清澄化タンクで維持され、残骸物を沈殿するか浮き上がるかさせる。分散液は、沈殿させられた宿主細胞成分の実質的に完全な分離を達成するのに十分な時間、清澄化タンクで保持され維持される。これは中和した溶菌液から残骸物を作り上げる。沈殿成分は、バブルカラムミキサーにより導入された捕捉されたガス気泡に助けられて分散液の表面に上がる場合がある。いくつかの態様において、分散液は、清澄化タンクで約６時間〜約２４時間保持され、いくつかの態様においては約１２時間〜約１８時間保持されてもよい。いくつかの態様において、分散液は、保持する時間中、１５℃以下に冷却され、いくつかの態様においては、ＲＮＡ又は他の不純物の沈殿を援助するため約２℃〜約８℃に冷却されてもよい。いくつかの態様において、分散液は、非常に低いｒｐｍ、好ましくは１５ｒｐｍ〜約２５ｒｐｍで操作される羽車ミキサーによるように、保持期間中、穏やかに混ぜ合わされてもよい。

いくつかの態様において、例えば清澄化タンクのような、分散液を保持する容器が真空にされてもよい。これは、沈殿した成分が液体の表面に移動するのを助ける。さらにこれは、浮き上がる綿状の沈殿物／残骸をコンパクトにし、次の工程でのその除去を助け、さらにまた後の工程でより多くの割合の中和した溶菌液を回収するのを可能にする。さらに、これは、後のクロマトグラフィー工程を詰まらせる場合がある、溶液の捕捉された空気を除去する。いくつかの態様において、適用される真空は、ＨＧの約１５インチ〜ＨＧの３０インチ（水銀柱インチ（ｉｎ・Ｈｇ））、約２０水銀柱インチ〜約３０水銀柱インチ、いくつかの態様において、約２５水銀柱インチ〜約３０水銀柱インチである。いくつかの態様において、真空はこの保持期間を通して維持されてもよい。真空は、真空ポンプ又は入手可能な他の真空又は陰圧装置を用いて適用されてもよい。いくつかの態様において、固相／液層分離を始める前に、タンクに充てられた任意の真空は注意深く放出される。粗製な細胞溶解液、すなわち中和した溶菌液は、次にポンプを使ってタンクから集められ、デプスフィルターと最終フィルターを通過させ、次に保持タンクに集められる。いくつかの態様において、清澄化タンクは視界ガラスが取り付けられ、オペレータが液体レベルの位置とコンパクトに沈殿された宿主細胞成分を観察するのを可能にする。タンクからの材料のポンプによる吸出しは、視覚的にモニターされ、沈殿した宿主細胞成分がラインに入る前に停止する。これは次のフィルターが詰まるのを防止する。バッグろ過（又はカートリッジろ過）又は遠心操作は要求されない。さらに、残骸物の妨害は、ゲノムＤＮＡ又はエンドトキシンのような成分の中和した溶菌液への放出を最小化する。中和された溶菌液が清澄化タンクからポンプで引き出された後、微粒子を除くために、それは１以上のフィルターに通過してもよい。いくつかの態様において、約１〜３個のフィルターが連続して使用されてもよい。第１のフィルターは大きな粒子を除去し、そして以下のフィルターは連続的に小さくなって行く粒子を除去する。いくつかの態様において、連続して二つのフィルターが使われる。いくつかの態様において、第１のフィルターは、粒子径限度値が約５μｍ〜約１５μｍ、好ましくは約７．５μｍ〜約１２μｍ、又はさらに好ましくは約９μｍ〜約１１μｍの前ろ過のデプスフィルターである。いくつかの態様において、前ろ過のデプスフィルターは粒子径限度値が約１０μｍである。第２のフィルターは、好ましくは、カットオフが約０．０１μｍ〜約０．２５μｍ、又は好ましくは約０．０５μｍ〜約０．１５μｍの膜フィルターである。いくつかの態様において、膜フィルターはカットオフが約０．１μｍである。しかし、当業者は、使用されるフィルターの数、さらにはそれらの粒子径限度値のような詳細が容易に変更できることを認識している。

異なったベンダーから市販品が出ており、フィルターの広範囲の選択が可能である。１つの特徴的なタイプは、７２０シリーズのひだ状カートリッジフィルター（米国テキサス州、ヒューストン、ＣＰＩフィルターズ）で、強い汚染保持能力と優れた処理能力を示した。３００シリーズや５００シリーズのような高性能多層フィルターバッグ（米国テキサス州、ヒューストン、ナイトコーポレーション）は微細粒子の保持がかなり高いことを示した。１２層の媒体までの累進密度型のプロガフ^TMフィルターバッグ（米国オハイオ州、クリーブランド、イートンフィルトレーション）は、多くのサイズの粒子の除去において高性能を示す。いくつかの態様において、ひだ状カートリッジろ過、続く多層状又はひだ状カートリッジろ過の組み合わせは、中和した溶菌液内の粒子の清澄化に最高の成果を与えることがある。

カートリッジフィルター又はバッグフィルターが、操作の簡単さと高処理能力のために、フィルターハウジング又はフィルター容器内で組み立てられるのが好ましい。容器の材料は、タイプ３０４又は３１６のステンレス鋼、又は炭素鋼であってもよく、一方、全プラスチックハウジングは、ポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）、塩素化ポリ塩化ビニル（ＣＰＶＣ）、ポリエステルプラスチック（ＰＰＬ）、又はフッ化ポリビニリデン（ＰＶＤＦ）構築物を有し、超純粋又は腐蝕性の応用に有利である場合がある。フィルター容器は、使用者により設計されるか又はいくつかの製造者から容易に入手可能である。例えば、イートン・フィルトレーション（米国オハイオ州、クリーブランド）は、任意の要求される用途を満たすように設計されたハウジング／容器の広い選択を提供する。そのようなものにトップライン、サイドライン、デュオライン、モデュライン、ポリライン、フローライン、エコライン、マキシラインシリーズがある。当業者は、プロセス要求に適うフィルターハウジングの構築と特徴を決定できる。

場合により、追加のデプスフィルター又は膜フィルターが第２のろ過後に実施されてもよい。フィルターは、中和した溶菌液の微粒子の更なる除去のためにカットオフが約０．１μｍ〜約０．２μｍであることが好ましい。マイスナーから出ているバンガードＰＰとアルファＰＰ（米国カリフォルニア州、カメリオ）、ミリポアから出ているクラリガード（米国マサチューセッツ州、ビレリカ）、ポールから出ているＨＰとプレフロー（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ）のようなカートリッジフィルターについて、ディスポーザブルなものにするのか、ハウジングの助けがあるものにするか熟慮されるべきである。しかし、これらのカートリッジフィルターの大半は処理能力に限界がある。特にディスポーザブル型のものについてはそうである。大規模における応用を適応させるための拡張可能な形式を提供するディスポーザブル成分の使用が好ましい。ミリポア（米国マサチューセッツ州、ビレリカ）は、研究室又はプロセススケールのいずれかにおける応用を目指して、高性能デプスフィルターシステムのミリスタックプラスポドを開発した。ポドフィルターのフィルター媒体は、選択されたグレードのセルロース繊維と珪藻土から成り、夾雑物の大きな保持能力と優れた維持能力を持つことが実証されている。ステンレスホルダーによる取り外し可能な形式の積み重ねられたディスク設計は、締まった空間における大きな表面積でのろ過を可能にする。当業者は媒体のグレードとポドフィルターの膜領域を決定し、特別な運転の必要性に対応できる。

対象とする生物学的に活性な分子を含む、清澄化された中和した溶菌液は、カラムクロマトグラフィー又は膜をベースにしたものを含むイオン交換クロマトグラフィーに供される。好ましくは、アニオン交換膜クロマトグラフィーのような、膜に基づいたアプローチが用いられてもよい。例えば、中和した溶菌液がイオン交換膜に適用される。いくつかの態様によれば、対象とする生物学的に活性な分子は膜に接触し、そこで対象とする生物学的に活性な分子は膜に結合し、一方、不純物は膜を流れ出るか洗い出されてしまう。このように不純物から対象とする生物学的に活性な分子を分離する。あるいは、対象とする生物学的に活性な分子が膜を通して流出してもよく、一方、不純物が保持されることもある。いくつかの態様において、対象とする生物学的に活性な分子は膜に結合し、そして、弱く結合した不純物を除去するために洗浄後、対象とする生物学的に活性な分子は膜から溶出される。膜に塩溶液を流すことにより溶出が達成される。塩溶液は、対象とする生物学的に活性な分子の膜への結合に打克つためには十分な強度、濃度、又は伝導率を有している。対象とする生物学的に活性な分子はこのようにイオン交換溶出液から回収される。

任意のイオン交換膜が適切であり得るが、いくつかの態様において、四級アミノ基を含む強アニオン交換膜のようなアニオン交換膜が使用されてもよい。そのような膜の実施例は、ムスタングＱ（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ、ポールコーポレーション）、サルトバインドＱ（米国ニューヨーク州、エッジウッド、サルトリウス）、及びインターセプトＱ（米国マサチューセッツ州、ビレリカ、ミリポアコーポレート）を含むが、これらに限定されるわけではない。

いくつかの態様において、プラスミド含有細胞は、溶解及び中和されて、中和した溶菌液を生成し、それはポールのムスタングＱカートリッジ（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ、ポールコーポレーション）を使用する精製法を含むアニオン交換膜精製法により処理されてもよい。いくつかの態様において、中和した溶菌液は、適量の精製水で希釈され、約９５ｍＳ／ｃｍ未満、又は約８５ｍＳ／ｃｍの伝導率になるように調整されてもよい。伝導率は、いくつかの態様において、約８０ｍＳ／ｃｍ〜約８５ｍＳ／ｃｍになるよう調整されてもよい。望ましい伝導率を達成するために、溶菌液の容量の約１．５倍量の精製水が希釈のために使われ得る。好ましい塩溶液を流すことによってムスタング（登録商標）Ｑカートリッジの条件を設定することができる。いくつかの態様において、溶液は、約０．５Ｍ塩化ナトリウム〜約１．０Ｍ塩化ナトリウム（“ＮａＣｌ”）、いくつかの他の態様において０．６７Ｍ ＮａＣｌを含む。平衡化溶液は、緩衝剤、キレート剤、又はその組み合わせを含んでもよい。いくつかの態様において、この平衡化／洗浄液は、０．６７Ｍ ＮａＣｌに加えて、ｐＨ８の１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１ｍＭ Ｎａ₂ＥＤＴＡを含んでもよい。いくつかの態様において、平衡化／洗浄液は、約８００ｍＬ／分〜約１５００ｍＬ／分でカートリッジの中をポンプで送られてもよい。希釈された中和した溶菌液は、いくつかの態様において４８００ｍＬ／分未満で、いくつかの態様においては約２０００ｍＬ／分〜約２０，０００ｍＬ／分で、カートリッジの上にポンプで送り込まれてもよい。添加されたカートリッジは、好ましくは約８００ｍＬ／分〜約１５００ｍＬ／分の流速で平衡／洗浄緩衝液で洗浄されてもよい。洗浄は、いくつかの態様において、溶出液の２６０ｎｍの吸光度（Ａ₂₆₀）が大よそベースラインに戻るまで続けられてもよい。プラスミドは、１Ｍ ＮａＣｌ、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、１ｍＭ Ｎａ₂ＥＤＴＡ、そしてｐＨ８を含む溶液で溶出されてもよい。いくつかの態様において、約５００ｍＬ／分〜約９０００ｍＬ／分、約５００ｍＬ／分〜約８０００ｍＬ／分、約５００ｍＬ／分〜約７０００ｍＬ／分、約５００ｍＬ／分〜約６０００ｍＬ／分、約５００ｍＬ／分〜約５０００ｍＬ／分、約５００ｍＬ／分〜約４０００ｍＬ／分、約５００ｍＬ／分〜約３０００ｍＬ／分、約５００ｍＬ／分〜約２０００ｍＬ／分、約６００ｍＬ／分〜約５０００ｍＬ／分、約６００ｍＬ／分〜約４０００ｍＬ／分、約６００ｍＬ／分〜約３０００ｍＬ／分、約６００ｍＬ／分〜約２０００ｍＬ／分、又は約６００ｍＬ／分〜約１５００ｍＬ／分の流速で溶出が行われてもよい。いくつかの態様において、溶出は溶出液のＡ₂₆₀が大よそベースラインに戻るまで続けられる。当業者は、単なる通常の実験法を用いて、大きな膜面積を利用して流速を簡単に上げることができ、列挙された溶液の特定の塩濃度を変えて特定の生体分子の収率と純度を最大にすることができることを認識している。回収された溶出液は、イオン交換溶出液で、疎水性相互作用工程による次の精製に使用される。

イオン交換膜からのイオン交換溶出液は、疎水性相互作用クロマトグラフィー（本明細書では“ＨＩＣ”）による精製に供される。いくつかの態様において、対象とする生物学的に活性な分子がＨＩＣ膜又はカラムに結合し、一方、不純物は流れ出るか洗浄される。いくつかの態様において、対象とする生物学的に活性な分子が流れ出て、一方、不純物が結合する。いくつかの態様において、対象とする生物学的に活性な分子はＨＩＣ膜を流れ出る（本明細書では“方法Ｉ”と呼ぶ）。いくつかの態様において、対象とする生物学的に活性な分子は、ブチルカラムのようなＨＩＣカラムに結合する（本明細書では“方法ＩＩ”と呼ぶ）。いくつかの態様において、ブチルカラムのような、ＨＩＣ膜とＨＩＣカラムの組み合わせが用いられ（本明細書では“方法ＩＩＩ”と呼ぶ）、高純度の対象とする生物学的に活性な分子が大規模に製造されてもよい。

イオン交換溶出液は疎水性相互作用膜への流入の前に条件を設定されてもよい。典型的には、条件設定は、望ましい量の望ましい塩の添加から成る。いくつかの態様において、要望通り、製造物又は不純物の結合をもたらすのに適度の量の硫酸アンモニウムが使用される。典型的には、方法ＩＩＩにおいて、ブチルカラムへの添加前ならＨＩＣろ過溶液の条件設定は必要でない場合がある。

いくつかの態様において、イオン交換溶出液は、ポールのムスタング（登録商標）Ｑカートリッジを使ってアニオン交換クロマトグラフィーによって生成されさらに疎水性相互作用によって精製される。いくつかの態様において、ポールのスーポアＰＥＳ付きクリーンパック^TMノバカプセル（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ、ポールコーポレーション）のようなＨＩＣ膜が使われる。カートリッジは、濃縮硫酸アンモニウムを含む平衡化／洗浄液を流して、条件設定されてもよい。いくつかの態様において、平衡化／洗浄液は、約１Ｍ〜約３Ｍの硫酸アンモニウム、さらにいくつかの態様において、２．４Ｍ硫酸アンモニウム及び１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、約ｐＨ８を含む。いくつかの態様において、平衡化／洗浄液の伝導率は、約２４０ｍＳ／ｃｍ〜約２６０ｍＳ／ｃｍである。いくつかの態様において、平衡化／洗浄液の伝導率は、約２４０ｍＳ／ｃｍ〜約３００ｍＳ／ｃｍで、いくつかの態様において、平衡化／洗浄液は約２５０ｍＳ／ｃｍ〜約２７０ｍＳ／ｃｍであり、そしていくつかの態様において、平衡／洗溶液は約２４５ｍＳ／ｃｍ〜約２５５ｍＳ／ｃｍである。いくつかの態様において、使用されるＨＩＣカラムはトヨパールブチル樹脂６５０Ｍ（米国ペンシルバニア州、モンゴメリービル、トーソーバイオサイエンスＬＬＣ）というレジンが充填されたカラムである。いくつかの態様において、カラムは、約１．５Ｍ〜約３．０Ｍの硫酸アンモニウムを含む溶液で平衡化される。いくつかの態様において、カラムは２．５Ｍ硫酸アンモニウムと１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌを含む溶液で平衡化されてもよい。

疎水性相互作用膜は、主として疎水性相互作用に基づいて、対象とする生物学的に活性な分子又は不純物のどちらかと結合するような任意の膜であってもよい。ＨＩＣ膜の実施例は、ポールのスーポアポリエーテルサルフォン（“ＰＥＳ”）フィルター、ＰＶＤＦフィルター、ＧＥのＰＥＳカプセルフィルター、そして低タンパク質結合性で広範囲の化学的適合性を持った類似の親水性膜を含むが限定されるわけではない。典型的なＨＩＣレジンは、ブチル、ヘキシル、フェニル、オクチル、プロピル、ネオペンチル、ヒドロキシプロピル、ベンジル、メチルそしてそれらの誘導体を含むが限定されるわけではない。

いくつかの態様において、イオン交換溶出液は、３Ｍ又は４．１Ｍ硫酸アンモニウムで希釈し、伝導率を約２４０ｍＳ／ｃｍ〜約２９０ｍＳ／ｃｍの間に、そしていくつかの態様において、約２４５ｍＳ／ｃｍ〜約２５５ｍＳ／ｃｍとすることによって条件設定されてもよい。ＨＩＣ方法Ｉを用いるときは、希釈された溶出液は、条件設定されたＨＩＣカートリッジをいくつかの態様において、約１００ｍＬ／分〜約２００ｍＬ／分の流速で流れてもよい。フロースルーが次の限外ろ過／透析ろ過のために回収されてもよい。場合により、ＨＩＣカートリッジは水で洗浄され、そして製造物から除去された夾雑物を分析するのに洗浄液が回収されてもよい。方法ＩＩを使用するとき、希釈されたイオン交換溶出液が、流速１０〜２０総容積／分（ＢＶ／分）でカラムに添加されてもよい。対象とする生物学的に活性な分子は、吸光度がベースラインに戻るまで約１．０Ｍ硫酸アンモニウム〜約２．５Ｍ硫酸アンモニウムで洗浄され、次に例えば０．５〜２．０Ｍ硫酸アンモニウムで溶出されてもよい。不純物が注入用の滅菌水で取り出されてもよく、その結果、カラムは反復使用のために再生可能となる。方法ＩＩＩは、方法Ｉで記載したＨＩＣ膜、その後、方法ＩＩで記載したＨＩＣカラムを使用する。方法Ｉ、ＩＩ又はＩＩＩの選択は製造物の性質と品質要求に依存し、当業者によって決定され得る。ＨＩＣ法を使用して、対象とする生物学的に活性な分子を含むＨＩＣ溶出液が生成される。当業者は、単に通常の実験法を利用して、大きな膜面積又はカラムの直径を用いて流速を簡単に上げることができ、ある特定の生体分子の収率と純度を最大化するためにリストにある溶液の特定の塩濃度を変えることができることを認識している。

場合により、ＨＩＣ溶出液に存在する対象とする生物学的に活性な分子はさらに精製してもよい。いくつかの態様において、ＨＩＣ溶出液は限外ろ過／透析ろ過に供され、対象とする生物学的に活性な分子が濃縮され、余分な塩が除かれ、所望により、希釈液の組成を変えることができる。限外ろ過／透析ろ過を行う方法は当業者にはよく知られている。いくつかの態様において、接線フローろ過が使用できる。いくつかの態様において、バッチ法が使われる。

限外ろ過／透析ろ過膜が、名目上の分子量カットオフ（“ＮＭＷＣＯ”）に基づいて選択され、対象とする生物学活性のある材料が保持液で保持され、一方、塩のような低分子量材料はろ過溶液に進んで行く。当業者は、単なる通常の実験法と結び付けて、サイズと対象とする製造物の性質に基づいて、そのような膜を選択することができる。対象とする生物学活性のある材料はプラスミドであるときのいくつかの態様のような、いくつかの態様において、限外ろ過／透析ろ過がポールのセントラメートユニット（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ、ポールコーポレーション）、又はミリポアのペリコン（登録商標）ＸＬユニット（米国マサチューセッツ州、ビレリカ、ミリポアコーポレート）、又は類似した特質のユニットを用いて実行される。そして使用される膜、すなわち、ポールのオメガ^TMサスペンディッドスクリーン膜カセット（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ、ポールコーポレーション）又はミリポアのメディアムスクリーン膜カセット（米国マサチューセッツ州、ビレリカ、ミリポアコーポレート）、又はＮＭＷＣＯが１００ｋＤ又は５０ｋＤの当該技術分野で知られている類似したカセットを用いて実行される。いくつかの態様において、プラスミドは少なくとも約２．５ｍｇ／ｍＬに濃縮されてもよい。いくつかの態様において、少なくとも約５．０ｍｇ／ｍＬ、いくつかの態様において少なくとも約１０．０ｍｇ／ｍＬ、一方、いくつかの態様において、濃度は少なくとも１２．５ｍｇ／ｍＬ、そしていくつかの態様において濃度は少なくとも１５ｍｇ／ｍＬ又はそれ以上である。いくつかの態様において、濃縮されたプラスミド溶液の伝導率は約５０ｍＳ／ｃｍ未満である。

限外ろ過／透析ろ過からの保持液で回収された、濃縮され脱塩された対象とする生物学活性のある材料は、滅菌された産物が望まれるなら任意にろ過滅菌に供されてもよい。滅菌ろ過の方法は当業者にはよく知られており、そのような方法ならどんなものでも選択されてもよい。結果として生じた材料は、十分に精製された生物学活性のある製造物から成る。製造物は、薬学的、獣医学的、又は農学的応用を含むが、これに限定されない多くの目的に使用され得る。このように、この方法は、十分に精製された生物学的に活性な分子のバルク調製を提供する。これらの分子はプラスミドであってもよい。いくつかの態様において、それらは実質的に、ゲノムＤＮＡ、ＲＮＡ、タンパク質そしてエンドトキシンを含まないプラスミドであってもよい。

生物学的に活性な分子がプラスミドである態様のようないくつかの態様において、０．２２μｍカットオフのポールのアクロパック^TM２００フィルター（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ、ポールコーポレーション）を用いて、ろ過滅菌が好ましく実行されてもよい。

用意された工程で製造されたプラスミドＤＮＡは高純度で非常に低い夾雑物の混入を示した。いくつかの態様において、純度の高いプラスミドＤＮＡとは、９０％以上の、９１％以上の、９２％以上の、９３％以上の、９４％以上の、９５％以上の、９６％以上の、９７％以上の、９８％以上の、又は９９％以上のレベルで存在するプラスミドＤＮＡをいう。純度は、ＲＮＡ、ゲノムＤＮＡ、エンドトキシン、そしてタンパク質のレベルが低いというような、夾雑物のレベルが低いということで特徴づけられることは直ちに明白である。いくつかの態様において、プラスミドＤＮＡは、約１０ｍｇ以上、２０ｍｇ以上、３０ｍｇ以上、１００ｍｇ以上、２００ｍｇ以上、３００ｍｇ以上、５００ｇ以上、１ｇ以上、１０ｇ以上、２０ｇ以上、３０ｇ以上、１００ｇ以上、２００ｇ以上、３００ｇ以上、１ｋｇ以上、又は２ｋｇ以上の量で存在してもよい。いくつかの態様において、プラスミドＤＮＡは１ｍｇ／ｍＬの濃度で存在してもよい。図１は製造工程の１つの態様の模式図である。

この態様は、与えられた一定の細胞試料を採取し、試料の連続した流れの中で、始まりからスタートし、溶解と中和工程を含み、分離工程（すなわちイオン交換クロマトグラフィーの開始）までの精製プロセスと同じ経験工程を有するのに使われる連続プロセスを示す。細胞は、細胞懸濁タンク１０１に入っている再懸濁溶液に再懸濁される。溶解液は溶解液タンク１０２の中に入れられる。細胞懸濁液と溶解液が“Ｙ”コネクタの二つの入り口にそれぞれ１０４又は１０５のポンプを用いて送り込まれる。“Ｙ”コネクタを出て行く溶液は、インラインミキサー１０７の高せん断力で混ぜ合わされるミキサー１０７を出て行く溶菌液は、４〜６分の保持時間をかけて保持コイル１０８を通過する。保持コイルを出て行く溶解液／細胞の混合液はバブルカラムミキサー１０９に入る。一方、同時にポンプ１０６が中和／沈殿（ＮＰ）液を、別なタンクのＮＰ液タンク１０３からバブルカラムミキサーへ送り込む。同時に圧縮ガスタンク１１０からの圧縮タンクが、バブルカラムミキサーの底に設置されているスパージャに供給される。中和した溶菌液が容器１１１に集められる。容器１１１の中に溶菌液を集める１〜６０分の後、溶菌液が同時に次の工程によって処理さる。第一次ろ過のポンプ１１２が粗製な溶菌液を第一次フィルター１１３に送り込む。フィルター１１３後の第一次ろ過溶液は、同時にポンプ１１４を経由して第二次フィルター１１５にポンプで送り込まれる。１１５の後のろ過溶液は、ポンプ１１６を経由して、第三次フィルター１１７を通ってろ過される。清澄化した溶菌液のためのポンプ１１８は、清澄化した溶菌液のための容器１１９からミキサー１２１への流れを駆動させる。混ぜ合わされ希釈された溶液は希釈溶菌液のための容器１２２に集められる。希釈された中和した溶菌液は、予め条件設定されたムスタング（登録商標）Ｑカートリッジ１２４にポンプで送り込まれる。これはポンプ１２３で達成される。

いくつかの態様において、本明細書で提供されるプロセスによる製造物は精製され；濃縮され、脱塩され、ろ過滅菌されたプラスミドは、タンパク質、ゲノムＤＮＡ、ＲＮＡ、そしてエンドトキシンのような不純物が実質的には含まないことが可能である。これらの低レベルの、好ましくは実質的に存在しない量の不純物又は夾雑物が本明細書では提供される。最も好ましいレベルとしては、そのような不純物や夾雑物が検出できない量であることである。いくつかの態様において、ＢＣＡ（ビシンコニン酸）タンパク質アッセイ（米国イリノイ州、ロックフォード、ピアス・バイオテクノロジーＩｎｃ）で決定される残留タンパク質は、生物学的に活性な分子好ましくは提供された製造方法で作られたプラスミドの溶液の中で、約１％（重量で）、０．９％以下、０．８％以下、０．７％以下、０．６％以下、０．５％以下、０．４％以下、０．３％以下、０．２％以下、又は約０．１％以下で存在している。いくつかの態様において、残留タンパク質は０．２％以下である。さらに好ましくは０．１％以下である。いくつかの態様において、生物学的に活性な分子好ましくは提供された製造方法で作られたプラスミドの溶液中の残留エンドトキシンは、約１００エンドトキシン単位／１ミリグラムのプラスミド（ＥＵ／ｍｇ）以下、約２０ＥＵ／ｍｇ以下、約１０ＥＵ／ｍｇ以下、約１．０ＥＵ／ｍｇ以下、約０．９ＥＵ／ｍｇ以下、約０．８ＥＵ／ｍｇ以下、約０．７ＥＵ／ｍｇ以下、約０．６ＥＵ／ｍｇ以下、約０．５ＥＵ／ｍｇ以下、約０．４ＥＵ／ｍｇ以下、約０．３ＥＵ／ｍｇ以下、約０．２ＥＵ／ｍｇ以下、約０．１ＥＵ／ｍｇ以下である。好ましくは、いくつかの態様において、エンドトキシンのレベルは、約０．２ＥＵ／ｍｇ以下、そしてさらに好ましくは、約０．１ＥＵ／ｍｇ以下である。いくつかの態様において、疎水性相互作用ＨＰＬＣで決められる残留ＲＮＡは、生物学的に活性な分子好ましくは提供された製造方法で作られたプラスミドの溶液の中で、約５％（重量で）以下、約０．９％以下、０．８％以下、０．７％以下、０．６％以下、０．５％以下、０．４％以下０．３％以下、０．２％以下、又は約０．１％以下である。好ましくは、いくつかの態様において、ＲＮＡの量は約０．５％以下、そしてさらに好ましくは、約０．４％以下ある。いくつかの態様において、ｑＰＣＲで決められる残留ゲノムＤＮＡは、生物学的に活性な分子好ましくは提供された製造方法で作られたプラスミドの溶液の中で、約５％（重量で）以下、約１％以下、０．９％以下、０．８％以下、０．７％以下、０．６％以下、０．５％以下、０．４％以下、０．３％以下、０．２％以下、０．１％以下、約０．０１％以下、約０．００１％以下、約０．０００１％以下、約０．００００１％以下、約０．０００００１％以下である。好ましくは、いくつかの態様において、ゲノムＤＮＡの量は約０．１％以下、そしてさらに好ましくは約０．００１％以下、そして最も好ましくは約０．０００００１％以下である。

本明細書で提供される方法により、高収率と高濃度のプラスミドＤＮＡを大量に生成することができる。提供されるプロセスにより製造されたプラスミドＤＮＡは、高純度のプラスミドＤＮＡの溶液を含む。いくつかの態様において、高純度のプラスミドＤＮＡは、約９０％以上、約９１％以上、約９２％以上、約９３％以上、約９４％以上、約９５％以上、５ｍｇ／ｍＬ以上、６ｍｇ／ｍＬ以上、７ｍｇ／ｍＬ以上、８ｍｇ／ｍＬ以上、９ｍｇ／ｍＬ以上、１０ｍｇ／ｍＬ以上、１１ｍｇ／ｍＬ以上、１２ｍｇ／ｍＬ以上、１３ｍｇ／ｍＬ以上、１４ｍｇ／ｍＬ以上、１５ｍｇ／ｍＬ以上である。いくつかの態様において、プラスミドＤＮＡは約５ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬ、約５ｍｇ／ｍＬ〜約１４ｍｇ／ｍＬ、約５ｍｇ／ｍＬ〜約１３ｍｇ／ｍＬ、約５ｍｇ／ｍＬ〜約１２ｍｇ／ｍＬ、約５ｍｇ／ｍＬ〜約１１ｍｇ／ｍＬ、約５ｍｇ／ｍＬ〜約１０ｍｇ／ｍＬ、約５ｍｇ／ｍＬ〜約９ｍｇ／ｍＬ、約５ｍｇ／ｍＬ〜約８ｍｇ／ｍＬの濃度、約６ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬ、約６ｍｇ／ｍＬ〜約１４ｍｇ／ｍＬ、約６ｍｇ／ｍＬ〜約１３ｍｇ／ｍＬ、約６ｍｇ／ｍＬ〜約１２ｍｇ／ｍＬ、約６ｍｇ／ｍＬ〜約１１ｍｇ／ｍＬ、約６ｍｇ／ｍＬ〜約１０ｍｇ／ｍＬ、約６ｍｇ／ｍＬ〜約９ｍｇ／ｍＬ、約６ｍｇ／ｍＬ〜約８ｍｇ／ｍＬの濃度、約７ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬ、約７ｍｇ／ｍＬ〜約１４ｍｇ／ｍＬ、約７ｍｇ／ｍＬ〜約１３ｍｇ／ｍＬ、約７ｍｇ／ｍＬ〜約１２ｍｇ／ｍＬ、約７ｍｇ／ｍＬ〜約１１ｍｇ／ｍＬ、約７ｍｇ／ｍＬ〜約１０ｍｇ／ｍＬ、約７ｍｇ／ｍＬ〜約９ｍｇ／ｍＬ、約８ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬ、約８ｍｇ／ｍＬ〜約１４ｍｇ／ｍＬ、約８ｍｇ／ｍＬ〜約１３ｍｇ／ｍＬ、約８ｍｇ／ｍＬ〜約１２ｍｇ／ｍＬ、約８ｍｇ／ｍＬ〜約１１ｍｇ／ｍＬ、約８ｍｇ／ｍＬ〜約１０ｍｇ／ｍＬ、約９ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬ、約９ｍｇ／ｍＬ〜約１４ｍｇ／ｍＬ、約９ｍｇ／ｍＬ〜約１３ｍｇ／ｍＬ、約９ｍｇ／ｍＬ〜約１２ｍｇ／ｍＬ、約９ｍｇ／ｍＬ〜約１１ｍｇ／ｍＬ、約１０ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬ、約１０ｍｇ／ｍＬ〜約１４ｍｇ／ｍＬ、約１０ｍｇ／ｍＬ〜約１３ｍｇ／ｍＬ、約１０ｍｇ／ｍＬ〜約１２ｍｇ／ｍＬ、約１１ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬ、約１１ｍｇ／ｍＬ〜約１４ｍｇ／ｍＬ、約１１ｍｇ／ｍＬ〜約１３ｍｇ／ｍＬ、約１２ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬ、約１２ｍｇ／ｍＬ〜約１４ｍｇ／ｍＬ、又は約１３ｍｇ／ｍＬ〜約１５ｍｇ／ｍＬの濃度である。いくつかの態様において、プラスミドＤＮＡは、約５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％又は９５％より大きいスーパーコイルプラスミドのスーパーコイルの割合で示される濃度で存在する。好ましくは８０％より大きい。いくつかの態様において、プラスミドＤＮＡは、５０〜９０％、５０〜８０％、５０〜７５％、５０〜７０％、５０〜６５％、５０〜６０％、６０〜９０％、６０〜８０％、６０〜７５％、６０〜７０％、６５〜９０％、６５〜８０％、６５〜７５％、６５〜７０％、７０〜９０％、７０〜８０％、７０〜７５％、８０〜９０％、８５〜９０％、９０〜９５％、又はそれ以上のスーパーコイルの割合で示される濃度で存在する。いくつかの態様において、プラスミドＤＮＡは、９０％又はそれ以上、９５％又はそれ以上、又は９８％又はそれ以上のスーパーコイルと弛緩型（オープンサークルで分解されていない）の割合で示される濃度で存在する。いくつかの態様において、プラスミドＤＮＡは、２年かそれ以上の保管の後も５０％かそれ以上で本質的に残りが弛緩型（オープンサークルで分解されていない）の、２年かそれ以上の保管の後も６０％かそれ以上で本質的に残りが弛緩型（オープンサークルで分解されていない）の、２年かそれ以上の保管の後も６５％かそれ以上で本質的に残りが弛緩型（オープンサークルで分解されていない）の、２年かそれ以上の保管の後も８５％かそれ以上で本質的に残りが弛緩型（オープンサークルで分解されていない）のスーパーコイルの割合で示される濃度で存在する。ここで保管は水の凝固点以下で行われる。いくつかの態様において、プラスミドＤＮＡは、２年かそれ以上の保管の後も９０％かそれ以上、９５％かそれ以上、９８％かそれ以上のスーパーコイルと弛緩型（オープンサークルで分解されていない）の割合で示される濃度で存在する。ここで保管は水の凝固点以下で行われる。本明細書で記載したこのようなプラスミド標品は、本明細書で記載されたプロセスによって生成物として製造される。

本発明は以下の実施例でさらに例証される。ここで、明言しない場合は部（ｐａｒｔ）と割合は重量で、度はセルシウスである。発明の好ましい態様を示すこれらの実施例は、例証の方法でのみ与えられることが理解されねばならない。上記の議論とこれらの実施例で当業者は、本発明の本質的な性格を確認することができ、そしてそこの精神と視野から離れることなく、発明の多くを変化させと修飾することができ、多くの使用と条件に適応させることができる。このように、本明細書で示され記載されて来たものに加えて、発明の多くの修飾が、前述の当業者には明白である。そのような修飾はまた、添付の特許請求の範囲を満たすように意図されている。

実施例１
プラスミドＡを含むエシェリキア・コリ（“Ｅ．ｃｏｌｉ”）細胞が、光学細胞密度（“ＯＤ₆₀₀”）が７２という高密度になるまで培養され遠心で集菌された。プラスミドＡは６５４９ｂｐのサイズである。プラスミドは約２５０コピー／細胞という低いコピー数で典型的に複製する。細胞湿重量（“ＷＣＷ”）約３．１ｋｇの細胞ペーストが最終容量を約２１．５Ｌにした２５ｍＭトリス−塩酸（“Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ”、米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）、１０ｍＭエデト酸二ナトリウム（“Ｎａ₂ＥＤＴＡ”、米国ニュージャージー州、フェアローン、フィッシャーサイエンティフィック）、ｐＨ８からなる再懸濁溶液に懸濁された。この細胞懸濁液が、３００ｍＬ／分で“Ｙ”コネクタの一方の側にポンプで送り込まれた。同時に、０．２Ｎ水酸化ナトリウム（“ＮａＯＨ”、米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）、１％ドデシル硫酸ナトリウム（“ＳＤＳ”、米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）からなる溶菌液が３００ｍＬ／分で“Ｙ”コネクタの他方の側にポンプで送り込まれた。“Ｙ”コネクタを出て行く合わされた流動体は、標準的なエマルサスクリーン（米国マサチューセッツ州、イーストロングメドウ、シバーソンマシーンズＩｎｃ）とインラインアセンブリーを取り付けたシルバーソンモデルＬ４Ｒ回転子／固定子ミキサーにすぐに通された。ミキサーは８００ｒｐｍのロータ速度で運転された。

回転子／固定子ミキサーを出る流動体は、５０フィートで０．６２５インチ（内径）の保持コイルの中を通された。約６００ｍＬ／分の全流速、保持コイルの通過時間約５分で、完全細胞溶解が可能である。

保持カラムを出て行く細胞溶解液（溶菌液）がバブルカラムミキサーの中に通過された。同時に１Ｍ酢酸カリウム（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）、７Ｍ酢酸アンモニウム（米国ニュージャージー州、ギブスタウン、ＥＭＤケミカルズＩｎｃ）からなる冷（約４°Ｃ）中和／沈殿溶液が独立して、６００ｍＬ／分で、バブルカラムミキサーへポンプで送り込まれた。溶菌液と中和／沈殿溶液がミキシングカラムを垂直に上昇し、最上部近くの出口を通って出て行った。溶液がミキシングカラムを通されたとき、圧縮空気が約３．０ｓｌｐｍ速さでミキシングの直径全てに渡る微細な気泡の一定した流れを供給するよう設計された焼結スパージャを通ってカラムの底に導入された。余分の空気がカラムの最上部を通って通気された。溶菌液と中和／沈殿溶液がカラムを通過する場合、それらは、上昇する気泡の穏やかな乱流によって連続的に混ぜ合わされた。これはＳＤＳカリウム、変性された細胞タンパク質、結合した脂質と細胞成分からなる白色の綿状沈殿物（残骸成分）の形成によって証明された。

中和カラムミキサーを出て行く、中和され沈殿された溶菌液（中和した溶菌液の分散液と残骸）が清澄化容器の中で集められた。この工程は、全体の細胞ペーストの懸濁液が溶解され、中和と沈殿され、清澄化タンクで集められるまで連続モードで運転された。全溶液の容量は、細胞懸濁液２１．５Ｌプラス再懸濁緩衝液による再懸濁タンクの５Ｌの洗浄、２６．５Ｌの溶解液、そして５３Ｌの中和液で全容量は約１０６Ｌになった。

収集の後、清澄化タンクの材料は視界ガラスで観察された。固体に捕捉されるはっきりと見える空気泡に助けられて、綿状沈殿物が液体の表面に上がるのを見ることができた。清澄化タンクに約２８水銀柱インチの減圧が適用され、浮き上がる沈殿物の顕著で目で確認できる圧縮がもたらされる。

材料は約１６時間室温で減圧下で清澄化タンク内で保持された。減圧は次に圧縮された沈殿物の破壊を回避するためにゆっくりと通気された。プラスミド含有溶液（中和した溶菌液）がタンクから底のサニタリーフィッティングを通って注意深くポンプで送り出された。タンクの液体と沈殿物のレベルは連続してモニターされ、沈殿物がタンクから出ないことを確実にするため、ポンプによる流れをちょうどよいときに停止した。これは１０μｍデプスフィレトレーション、引き続き０．１μｍの最終ろ過に供された。中和した溶菌液の一部は、フィルターの詰まりによってろ過の間に失われた。結果として、約６９Ｌの清澄な中和した溶菌液が得られた。アニオン交換による更なる工程のための調製として、中和した溶菌液が次に約９３Ｌの精製水で希釈され、全容量１６２Ｌそして約９７ｍＳ／ｃｍ伝道率が達成された。ろ過された中性済溶菌液のプラスミド濃度が約１７μｇ／ｍＬと見積もられ、これは約１１７０ｍｇの全プラスミドに相当した。

清澄化し、希釈された中和した溶菌液はアニオン交換で更に精製された。総容積２６０ｍＬのポールのムスタングＱカートリッジが、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び１ｍＭ ＥＤＴＡ（米国ニュージャージー州、フェアローン、フィッシャーサイエンティフィック）、ｐＨ８から１ｘＴｒｉｓ−ＥＤＴＡ（“ＴＥ”）緩衝液内の０．６７Ｍ塩化ナトリウム（“ＮａＣｌ”、米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）４Ｌで平衡化された。１６２Ｌの容量の希釈された中和した溶菌液が１．２Ｌ／分の流速でＱカートリッジにポンプで注入された。２６０ｎｍにおけるカートリッジ溶出液の紫外線（“ＵＶ”）の吸光度がモニターされ、ストリップチャートレコーダを用いて記録された。添加の後、カートリッジは１．２Ｌ／分で溶出液のＡ₂₆₀がベースラインに近づくまで平衡化緩衝液で洗浄された。次にプラスミドが、１Ｍ ＮａＣｌ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）を含む１ｘＴＥ緩衝液を１．２Ｌ／分でポンプで流すことによってカートリッジから溶出された。溶出は、Ａ₂₆₀がベースラインに戻ったら終了した。全溶出液量は約４．８Ｌで、全部で、Ａ₂₆₀に基づく約９１５ｍｇのＤＮＡを含んでいた。Ｑアニオン交換の収率は約７８％である。タンパク質、ＲＮＡの大部分、ゲノムＤＮＡそしてエンドトキシンを含む夾雑物はフロースルーで除かれ、この工程で洗浄された。

溶出液はさらにブチルカラムの方法ＩＩを経由した疎水性相互作用によって精製された。Ｋ５／１５アマシャム（米国ニュージャージー州、ピスカタウェイ）カラムが、総容積（“ＢＶ”）２９０ｍＬのトヨパールブチル樹脂６５０Ｍ（米国ペンシルバニア州、モンゴメリービル、トーソーバイオサイエンスＬＬＣ）で詰められた。添加の前に、２４Ｌ容の３Ｍ硫酸アンモニウム（米国ニュージャージー州、ギブスタウン、ＥＭＤケミカルズＩｎｃ）が４．８ＬのＱ溶出液と混ぜ合わされた。カラムが、ポンプで４３ｍＬ／分で流された、２Ｌの２．５Ｍ硫酸アンモニウム（米国ニュージャージー州、ギブスタウン、ＥＭＤケミカルズＩｎｃ）で平衡化された。条件設定されたＱ溶出液が４３ｍＬ／分でブチルカラムに添加され、引き続き４３ｍＬ／分で５Ｌの２．５Ｍ硫酸アンモニウム（米国ニュージャージー州、ギブスタウン、ＥＭＤケミカルズＩｎｃ）で洗浄され、そして生成物が４３ｍＬ／分で、１．５Ｌの１．８Ｍ硫酸アンモニウム（米国ニュージャージー州、ギブスタウン、ＥＭＤケミカルズＩｎｃ）で溶出された。カラムは、ＲＮＡとエンドトキシンを含む結合した夾雑物除去するために、滅菌噴射水（“ＷＦＩ”，Ｂａｘｔｅｒ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ，Ｄｅｅｒｆｉｅｌｄ，ＩＬ）で取り除かれ、反復使用のため再生された。溶出液は９５％の収率でプラスミドを約８７０ｍｇ達成し、一方、プラスミドのスーパーコイルの割合はＱの後の６６％からブチルカラム工程の後の８０％以上まで高められた。

ブチルＨＩＣからの溶出液が、１ｆｔ²の面積で名目上の分子量カットオフ５０ｋＤａのポールのオメガサスペンディッドスクリーン膜カセット（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ、ポールコーポレーション）付のセントラメート^TMカセットホルダを使った限外ろ過／透析ろ過（“ＵＦ／ＤＦ”）で濃縮され脱塩された。ＤＮＡ濃度９．０２６ｍｇ／ｍＬ（Ａ₂₆₀より）の４１．２ｍＬ容のバルク保持液が回収された。ＵＦ／ＤＦ装具のためのＷＦＩの最初の洗浄が濃度１．６ｍｇ／ｍＬの４６．９ｍＬを製造した。ＷＦＩの二回目の洗浄は０．２６８ｍｇ／ｍＬの濃度で６５．８ｍＬ製造した。ＵＦ後の合わせたＤＮＡの回収は約４７６ｍｇで、収率は５５％であった。ＵＦ後の達成される最終的なプラスミドのスーパーコイルの割合は８７％以上であった。

実施例１の試料はアガロースゲル電気泳動による分析に供された。図２として表示される。全ての試料レーン（レーン２〜５）で主要なバンドが存在している。一方，一番弱いバンドは、標的プラスミドＡのスーパーコイル型である。レーン１はスーパーコイルプラスミドのラダー（インビトロジェン）である。レーン２は６．５ｋｂプラスミド生成物を含む細胞溶解液を示す。その一方で試料の中には大量のＲＮＡも存在していた。レーン３はＱアニオン交換後の生成物を示す。プラスミドが濃縮され、ＲＮＡがさらに少なくなっていることが示された。レーン４は疎水性相互作用による精製後の生成物を表示した。そしてレーン５は最終生成物をＵＦ後に混ぜ合わせたものを示している溶菌液の夾雑ＲＮＡが除かれ、望みのスーパーコイルプラスミドの純度が実質的に６０％から＞８５％に上がった。

実施例２
プラスミドＢを含むＥ．ｃｏｌｉ細胞３１４０グラム量が、ｐＨ８の２５ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び１０ｍＭ Ｎａ₂ＥＤＴＡからなる再懸濁緩衝液に再懸濁され最終容量が１８．８Ｌになった。プラスミドＢは４．７ｋｂのサイズである。懸濁された細胞は、８００ｒｐｍのロータ速度で運転されるシルバーソンモデルＬ４Ｒ回転子／固定子ミキサーによる３００ｍＬ／分の同じ流速で、０．２Ｎ ＮａＯＨ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び１％ＳＤＳ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）からなる溶解液と混ぜ合わされた。ミキサーからの溶菌液の流出物は、予め冷却された（４〜５℃）中和／沈殿（ＮＰ）溶液と混ぜ合わせるバブルカラムに入る前に、保持コイルでの５−分の保持時間が維持された。１Ｍ酢酸カリウム（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び３Ｍ酢酸アンモニウム（米国ニュージャージー州、ギブスタウン、ＥＭＤケミカルズＩｎｃ）を含むＮＰ溶液が、６００ｍＬ／分でバブルカラムミキサーに供給され、同時に圧縮空気が流速３〜５ｓｌｐｍで底部のスパージャから導入された。

中和した細胞溶解液は最初、バブルカラムの出口ポートに垂れ下がっている２００〜４００μｍの波打ったメッシュバッグに受け止められた。大きな細胞の綿状の塊りはバッグの中に保持された。一方プラスミドＤＮＡとその量の減った細胞残骸を含む粗製な溶菌液が、予め冷却された（５℃）清澄化タンクに集められた。同時に生じた粗製な溶菌液は、２Ｌ／分の流速で、エコラインフィルター容器（米国ニュージャージー州、アイセリン、イートンフィルトレーション）に取り付けられた４８μｍのひだ状のカートリッジフィルター（米国テキサス州、ヒューストン、ＣＰＩフィルターズ）にポンプで送られた。第一次ろ過済溶菌液が容器の中で集められ、７５Ｌの全容量が回収された。第二次ろ過が後に実施された。第一次ろ過済溶菌液が、２Ｌ／分の流速で、エコラインフィルター容器（米国ニュージャージー州、アイセリン、イートンフィルトレーション）に取り付けられた５２３多層バッグフィルター（Ｋｎｉｇｈｔ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｂａｒｒｉｎｇｔｏｎ，ＩＬ）にポンプで送られた。回収された溶液が容器に集められ、６５Ｌの全容量が回収された。最後にデプスフィルトレーションがミリスタックポドディスポーザブルデプスフィルターシステム（米国マサチューセッツ州、ビレリカ、ミリポア）で行われた。フィルター媒体は０．２〜２．５μｍのポアサイズ分布を有した。膜面積が０．１１ｍ²のポドフィルターが第二次ろ過済溶菌液を清澄化するために使われた。６０Ｌ容量の最終的な清澄化した溶菌液が達成できた。ＮＴＵ値が２以下の高清澄化が実証された。ろ過のそれぞれの段階での溶菌液試料中のプラスミドの純度と形状は区別がつかなかった。

実施例３
プラスミドＣ（３．５ｋｂのプラスミドサイズ）を含むＥ．ｃｏｌｉ細胞が、高密度になるまで培養され遠心で集菌された。細胞湿重量２４．４ｋｇが４００−Ｌの可動培養容積から回収された。細胞が、ｐＨ８の２５ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び１０ｍＭ Ｎａ２ＥＤＴＡ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、マリンクロット・ベーカー）からなる１７１Ｌの再懸濁緩衝液で３時間再懸濁された。再懸濁された細胞が、シルバーソンの高せん断ミキサーで、６００ｍｌ／分という同じ流速で、新鮮な溶解液と混ぜられ、約５分間保持ループ内で保持された。１Ｍ酢酸カリウム（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び３Ｍ酢酸アンモニウム（米国ニュージャージー州、ギブスタウン、ＥＭＤケミカルズＩｎｃ）からなる中和／沈殿溶液がバブルミキサーへ、１．２Ｌ／分の流速でポンプによって送り込まれ、溶解された細胞と混ぜ合わされた。ガス流速５〜６ｓｌｐｍで供給された圧縮空気は、攪拌力として働きまた中和された溶菌液を収集タンクに運んだ。溶解工程には約５時間が使われた。バブルミキシング装置を出て行く中和された細胞は収集タンクに向けられ、次のろ過に連続的に供された。

中和された粗製な溶菌液はその生成とともに三つの連続したろ過で処理され、これらの清澄化工程は溶解工程と同時に運転された。最初のろ過は、綿状細胞塊を含む粗製な溶菌液を４８μｍひだ状カートリッジフィルター（米国テキサス州、ヒューストン、ＣＰＩフィルターズ）を取り付けたトップラインフィルター容器（米国ニュージャージー州、アイセリン、イートンフィルトレーション）に、２．４Ｌ／分の流速でポンプで送り込むことによって実行された。第一次のろ過は、細胞綿状沈殿物のような大きい粒子の大半を除去するのに採用された。そしてひだ状の膜がより多くのろ過面積が提供されることによって単層又は多層構築物よりより速い流速とより大きい処理能力が発揮された。そしてひだ状の膜がより多くのろ過面積を提供しと、単層又は多層構築物よりより速い流速とより大きい処理能力を提供する。四つのひだ状カートリッジが、細胞綿状沈殿物を含む６８０Ｌ容の中和した粗製溶菌液を処理するのに使用され、回収された第一次ろ過済溶菌液は６００Ｌと見積もられた。４８μｍひだ状カートリッジフィルターを出て行く溶液は、直接、１μｍ多層カートリッジフィルター（米国テキサス州、ヒューストン、ＣＰＩフィルターズ）の取り付けられた第二次エコラインフィルター容器（米国ニュージャージー州、アイセリン、イートンフィルトレーション）に２．４Ｌ／分の流速でポンプで送り込まれた。この工程は第二次ろ過済溶菌液の１μｍ〜５０μｍの範囲の小粒子の大部分を除去した。次のムスタングＱは０．２μｍに等しいポアサイズを持ち、このように、０．２μｍかそれ以下の絶対規格のポアサイズのフィルターによる第三次デプスフィルトレーションが実行された。デプスフィルターのミリスタックプラスポドフィルターシステムは、大容量の工程及び微細な粒子の高い維持どちらも達成できる。ステンレス鋼製のポドホルダに取り付けられたミリスタックＣ０ＨＣフィルター（米国マサチューセッツ州、ビレリカ、ミリポア）が、溶菌液の濁度を減らすために使用され、２ネフェロ分析濁度ユニット（ＮＴＵ）になるまで使用された。膜面積が１．１ｍ²のＣ０ＨＣフィルターは、第二次ろ過済溶菌液４００Ｌ容を処理した。

ミリスタックフィルターを出て行くろ過済溶菌液が容器の中に集められた。この容器からの溶液の画分が“Ｙ”コネクタに流速２．２Ｌ／分でポンプにより送り込まれ、流速０．７Ｌ／分で同じ“Ｙ”コネクタにポンプにより送り込まれた水で混ぜ合わされた。混合液がケニックスインラインミキサーに流されもう１つの保持タンクに導かれた。保持タンクの中のこのような希釈された溶菌液の伝導率は９０〜９５ｍＳ／ｃｍの範囲であった。４００Ｌ容の希釈された溶菌液が、総容積が２６０ｍｌ容の１０インチのムスタングＱ（米国ニューヨーク州、イーストヒルズ、ポール）に添加された。Ｑカプセルは２００ＬのＱへの添加の前に飽和された。約３ｇのプラスミドＤＮＡがＱ溶出液から回収された。Ｑの産物のスーパーコイルの割合は８０％〜９０％の間であり、Ｑ溶出液のＲＮＡ含量はゲル分析で顕著ではなかった。

実施例３の試料はアガロースゲル電気泳動による分析に供された。これは図３に表示されている。それぞれのレーンのより強いバンドは、プラスミドのスーパーコイル型である。これは８０〜９０％の範囲の割合で存在する。レーン１はスーパーコイルプラスミドラダー（インビトロジェン）である。レーン２は、４８μｍひだ状カートリッジを使う第一次ろ過の後の溶菌液であり、ＲＮＡの高い含有を示す。レーン３は、１μｍひだ状カートリッジを使う第二次ろ過後のろ過溶液であり、さらにＲＮＡの高い含有を示す。レーン４は、Ｃ０ＨＣポドフィルターを使う第三次ろ過後のろ過溶液であり、ＲＮＡの減少した比率を示す。レーン５は、ムスタングＱアニオン交換の工程を経た後の溶出産物の画分＃１であり、ＲＮＡが限定的で、その画分が高純度であることが実証されている。レーン６はＱ溶出液の二番目の画分を示す。溶出液＃１と同じ純度である。

実施例４
細胞湿重量２５ｋｇのプラスミドＣを含むＥ．ｃｏｌｉ細胞が、ｐＨ８の２５ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び１０ｍＭ Ｎａ₂ＥＤＴＡからなる１０５Ｌの再懸濁液で、全３時間に渡って再懸濁された。プラスミドＣのサイズは３．５ｋｂである。再懸濁された細胞は、シルバーソンモデルＬ４Ｒ回転子／固定子ミキサーに流速１５００ｍｌ／分でポンプにより送り込まれ、同時に、０．２Ｎ ＮａＯＨ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び１％ＳＤＳ（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）からなる溶解液が同じミキサーによって１５００ｍｌ／分の流速で送られた。溶解された細胞を含む混合液が、内径（ＩＤ）１インチで１００フィートの長さの保持コイルを通る。懸濁液がミキサーに入ってから保持コイルを出るまでのおおよその保持時間は５分である。溶解された細胞は、次にバブルカラムに入り、予め冷却された（４〜５℃）中和／沈殿溶液（ＮＰ）に接触した。１Ｍ酢酸カリウム（米国ニュージャージー州、フィルスバーグ、Ｊ．Ｔ．ベーカー）及び３Ｍ酢酸アンモニウム（米国ニュージャージー州、ギブスタウン、ＥＭＤケミカルズＩｎｃ）を含むＮＰ溶液が、３０００ｍＬ／分の流速でバブルカラムミキサーに供給された。同時に、底部のスパージャから６〜１０ｓｌｐｍの流速で圧縮空気が導入され攪拌力として働き、中和した溶液が、粗製溶菌液タンクへと導くディバーティングパイプへ入ることを容易にした。

２０分間粗製な溶菌液を集めた後、溶液が６Ｌ／分の流速で粗製溶菌液タンクの底部から、４８μｍのひだ状カートリッジフィルター（米国テキサス州、ヒューストン、ＣＰＩフィルターズ）が取り付けられたトップラインフィルター容器（米国ニュージャージー州、アイセリン、イートンフィルトレーション）にポンプにより送り込まれた。同時に、第一次フィルター容器からのろ過溶液が、６Ｌ／分の流速で、１μｍひだ状カートリッジフィルター（米国テキサス州、ヒューストン、ＣＰＩフィルターズ）が取り付けられた第二次トップラインフィルター容器（米国ニュージャージー州、アイセリン、イートンフィルトレーション）にポンプで送り込まれた。第一次ろ過は４８μｍ以上の粒子の９９％を除去し、五つの１０インチカートリッジフィルターが、総容量７００Ｌの粗製な溶菌液を清澄化した。三つの１０インチの１μｍカートリッジフィルターの使用で第二次ろ過が完了し、１μｍ以上の粒子の９９％が除去された。第二次容器からのろ過溶液が、５〜６Ｌ／分の流速のポンプの助けを借りて、清澄化溶菌液タンクに集められた。第三次フィルターシステムである、ステンレス鋼製の試験的規模のポドホルダ内に取り付けられたミリスタックプラスＣ０ＨＣポドフィルター（米国マサチューセッツ州、ビレリカ、ミリポア）が採用され、次のムスタングＱ精製のための高清澄化が達成できた。清澄化溶菌液タンクからの溶液は、６Ｌ／分の流速でポドフィルターにポンプで送り込まれた。膜面積２．２ｍ²Ｃ０ＨＣフィルターは、入り口の圧が１０ｐｓｉになる前に６５０Ｌ容の第二次ろ過済溶菌液を処理した。第三次ポドフィルターのろ過溶液がろ過済溶菌液用容器内に集められた。

ろ過済溶菌液が “Ｙ”コネクタに送られ、ムスタングＱに添加される前に、ケニックスインラインミキサーを経て水０．３〜０．４Ｖ／溶菌液Ｖの比率で水と混ぜ合わされた。溶菌液が５Ｌ／分の流速でポンプにより流され、一方水が１．７５〜２Ｌ／分の流速で供給された。混合物が希釈溶菌液タンク内で集められた。保持タンク内のこのような希釈された溶菌液の伝導率は９０〜９５ｍＳ／ｃｍの範囲にある。約８００Ｌ容の希釈された溶菌液が、５０００ｍｌ容の総容積を持つムスタングＱ ＸＴ５０００（Ｐａｌｌ，Ｅａｓｔ Ｈｉｌｌｓ，ＮＹ）に添加された。約２５ｇのプラスミドＤＮＡがＱ溶出液で回収された。回収されたＱ溶出液は、高い割合のスーパーコイル型と限定的なレベルの夾雑物の混入を示した。

実施例５
以下の表Ｉは、コピー数の少ないプラスミドＡに関する、方法ＩＩを用いて製造された十四個のプラスミド標品を示す。そしてそこでは、検出されたいくつかの純度パラメータも付してある。生成のプロトコールは、上記の実施例３で議論されたものである。

プラスミド試料の分析
プラスミドＣは３．５ｋｂのサイズを有す（実施例３と実施例４にあるように）。プラスミドＤ１〜Ｄ３は４．４〜４．７ｋｂの範囲にあり、発現遺伝子である以外は類似したコンストラクトを有している。プラスミドＥ１〜Ｅ２は３．８ｋｂのサイズを有し、発現遺伝子である以外は類似したコンストラクトを有している。プラスミドＦは２．５ｋｂのサイズを有す。

Claims (31)

1. バクテリア細胞からの少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子の高純度試料を製造するための大規模方法であって、以下の工程：
   ａ）複数の細胞の細胞懸濁液を溶解液（ｌｙｓｉｓ ｓｏｌｕｔｉｏｎ）と接触することによる溶菌液（ｌｙｓａｔｅ ｓｏｌｕｔｉｏｎ）を製造し；
   ｂ）中和液を用いて該溶菌液を中和して、中和した溶菌液と残骸物を含む分散液を製造し；
   ｃ）少なくとも１つのフィルターを通過させて分散液をろ過し；
   ｄ）該中和した溶菌液に対してオン交換分離を行って、イオン交換溶出液を製造し；
   ｅ）該イオン交換溶出液に対して疎水性相互作用分離を行い、疎水性相互作用液を製造する
   を含む前記方法。
2. 工程ａ）が、強いせん断力がかかるインラインミキサー中で前記細胞懸濁液と溶解液とを混合することを含む、請求項１に記載の方法。
3. 工程ｂ）が、バブルミキサー中で前記溶菌液と前記中和溶液とを混合することを含む、請求項１又は２に記載の方法。
4. 工程ｅ）が、疎水性相互作用カラム又は疎水性相互作用膜を使用して、疎水性相互作用分離を行い、疎水性相互作用液を形成することを含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
5. さらに、下記の工程：
   ｆ）前記疎水性相互作用液の限外ろ過によって、生物学的に活性な分子の溶液を調製する
   ことを含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
6. さらに、下記の工程：
   ｇ）生物学的に活性な分子の該溶液の滅菌ろ過によって、少なくとも１つの生物学的に活性な分子の滅菌溶液を調製する
   ことを含む、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
7. さらに、一定時間、分散液を保持して、中和した溶菌液を残骸物から分離し、少なくとも１つのフィルターを通過させて中和した溶菌液をろ過することを含む、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
8. 前記製造工程が、約１分〜約２０分の時間、ミキサー中で前記細胞懸濁液と溶解液とを接触を含む、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
9. 前記時間が約４分〜約８分である、請求項８に記載の方法。
10. 前記時間が約５分である、請求項８に記載の方法。
11. 前記生物学的に活性な分子がプラスミドである、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
12. 前記イオン交換がアニオン交換膜である、請求項１〜８のいずか１項に記載の方法。
13. ブチル疎水性相互作用クロマトグラフィー溶出液である疎水性相互作用溶液を生産するために、工程ｅ）が、疎水性相互作用分離の実行がブチル疎水性相互作用クロマトグラフィーを含む、請求項１〜８、１１、及び１２のいずれか１項に記載の方法。
14. 実質的に連続的に１つの工程から次の工程へ移行することを含み、容器中で溶菌物を回収し、分散液を第１のフィルターに通過させて、最初の粗製な中和した溶菌液を製造することによって、分散液中の残骸物から中和した溶菌液を分離することを含む、請求項１〜８、及び１１〜１３のいずれか１項に記載の方法。
15. さらに最初の粗製な中和した溶菌液を第２のフィルターに通過させて、次の粗製な中和した溶菌液を製造することを含む、請求項１４に記載の方法。
16. バクテリア細胞由来の少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子の高純度の試料を製造するための大規模方法であって、以下の工程：
    細胞の分散液中のバクテリア細胞と溶解液とを接触させ、溶菌液を形成し；
    バブルカラムミキサーで溶菌液の中和溶液を溶菌液に混合して、中和した混合液を形成させ；
    中和した混合液を第１のフィルター及び第２のフィルターに通過させて、ろ過溶液を形成させ；
    ろ過溶液をイオン交換カラムに通過させて、イオン交換液を形成させ；
    イオン交換液を疎水性相互作用カラム又は疎水性相互作用膜に通過させて、疎水性相互作用液を形成させ；
    疎水性相互作用液を限外ろ過して、少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子の高純度の試料を形成させる
    ことを含み、ここで、接触工程からろ過溶液を通過させる工程の、１工程から次の工程へのそれぞれの移行は、実質的に連続的に起こる前記方法。
17. 請求項１に記載の方法によって調製された少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子を含む組成物であって、ここで、少なくとも１つの対象とする生物学的に活性な分子はＤＮＡプラスミドである前記組成物。
18. 前記組成物が溶液中に約１０ｍｇ以上の量でＤＮＡプラスミドを含む、ここで該プラスミドの高純度は、該プラスミドが約９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、又は９９％を超えて存在する、請求項１７に記載の組成物。
19. 前記プラスミドの純度が約９９％より大きい、請求項１８に記載の組成物。
20. 溶液中のプラスミドの濃度が約５、６、７、８、９、１０、１１、１２、又は１３ｍｇ／ｍＬである、請求項１８又は１９に記載の組成物。
21. 前記プラスミドが約５０％を超えるスーパーコイル状のプラスミドを含む、請求項１８〜２１のいずれか１項に記載の組成物。
22. 前記プラスミドが約８０％を超えるスーパーコイル状のプラスミドを含む、請求項１８〜２１のいずれか１項に記載の組成物。
23. 前記溶液がプラスミド１ｍｇ当たり約１０ＥＵ以下のエンドトキシンを含む、請求項１８〜２２のいずれか１項に記載の組成物。
24. 前記溶液がプラスミド１ｍｇ当たり約１ＥＵ以下のエンドトキシンを含む、請求項１８〜２２のいずれか１項に記載の組成物。
25. 前記溶液がプラスミド１ｍｇ当たり約０．１ＥＵ以下のエンドトキシンを含む、請求項１８〜２２のいずれか１項に記載の組成物。
26. 該溶液が約１．０％以下のＲＮＡを含む、請求項１８〜２５のいずれか１項に記載の組成物。
27. 該溶液が約０．４％以下のＲＮＡを含む、請求項１８〜２５のいずれか１項に記載の組成物。
28. 該溶液が約１．０％以下のタンパク質を含む、請求項１８〜２５のいずれか１項に記載の組成物。
29. 該溶液が約０．２０％以下のタンパク質を含む、請求項１８〜２７のいずれか１項に記載の組成物。
30. 該溶液が約１％以下のゲノムＤＮＡを含む、請求項１８〜２９のいずれか１項に記載の組成物。
31. 該溶液が約０．０１％以下のゲノムＤＮＡを含む、請求項１８〜２９のいずれか１項に記載の組成物。

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