JP2010500984A - Ccr5に対する抗体と抗膜融合ペプチドとの抱合体 - Google Patents
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Abstract
Description
mAb CCR5−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]n
を特徴とし、式中、mは、各抗膜融合ペプチドに関して独立して0(すなわち、mAb CCR5と抗膜融合ペプチドとの間のペプチド結合)または1(すなわち、mAb CCR5と抗膜融合ペプチドとの間のリンカー)のいずれかであり、nは、1〜8の整数である。
(1)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]
(2)[重鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(3)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]−[抗膜融合ペプチド]
(4)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]
(5)[軽鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(6)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]−[抗膜融合ペプチド]
(7)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(8)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
からなる群より選択され、式中、リンカーは、該鎖抱合体中(該鎖抱合体内および該鎖抱合体間)で同一または異別であり得、mは、1または0の整数であり、mは、該鎖抱合体中(該鎖抱合体内および該鎖抱合体間)で独立して同一または異別であり得る。
a)アミノ酸配列番号1によって定義される重鎖可変ドメイン(VH)およびアミノ酸配列番号2によって定義される軽鎖可変ドメイン(VL);
b)アミノ酸配列番号3によって定義される重鎖可変ドメインおよびアミノ酸配列番号4によって定義される軽鎖可変ドメイン;
c)アミノ酸配列番号5によって定義される重鎖可変ドメインおよびアミノ酸配列番号6によって定義される軽鎖可変ドメイン;
d)アミノ酸配列番号7によって定義される重鎖可変ドメインおよびアミノ酸配列番号8によって定義される軽鎖可変ドメイン
からなる群より独立して選択される重鎖可変ドメインおよび軽鎖可変ドメインを含むことを特徴とする。
[抗体]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]n
を特徴とし、式中mは、各抗膜融合ペプチドに関して独立して0(すなわち、抗体と抗膜融合ペプチドとの間のペプチド結合)または1(すなわち、抗体と抗膜融合ペプチドとの間のリンカー)のいずれかであり、nは、2〜8の整数であり、好ましくは、2〜8の偶数であり、より好ましくは、2または4である。好ましくは、該抗体は、mAb CD4である。
(1)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]
(2)[重鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(3)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]−[抗膜融合ペプチド]
(4)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]
(5)[軽鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(6)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]−[抗膜融合ペプチド]
(7)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(8)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
からなる群より選択され、式中、リンカーは、該鎖抱合体中(該鎖抱合体内および該鎖抱合体間)で同一または異別であり得、mは、1または0の整数であり、mは、該鎖抱合体中(該鎖抱合体内および該鎖抱合体間)で独立して同一または異別であり得る。
a)アミノ酸配列番号81によって定義される重鎖可変ドメイン、および配列番号75によって定義される軽鎖可変ドメイン;
b)アミノ酸配列番号82によって定義される重鎖可変ドメイン、および配列番号76によって定義される軽鎖可変ドメイン;
c)アミノ酸配列番号84によって定義される重鎖可変ドメイン、および配列番号78によって定義される軽鎖可変ドメイン;
d)アミノ酸配列番号85によって定義される重鎖可変ドメイン、および配列番号79によって定義される軽鎖可変ドメイン;
e)アミノ酸配列番号86によって定義される重鎖可変ドメイン、および配列番号80によって定義される軽鎖可変ドメイン
より独立して選択される重鎖可変ドメインおよび軽鎖可変ドメインを含むことを特徴とする。
a)抱合体の発現に適した条件下で、本発明に従った抱合体をコードする1つまたはそれ以上の核酸分子を含有する1つまたはそれ以上のプラスミドを含有する細胞を培養すること、
b)細胞または上清から抱合体を回収すること
を含むことを特徴とする、本発明に従った抱合体の産生のための方法を含む。
発明の説明
a)アミノ酸の配列番号1によって定義される重鎖可変ドメイン(VH)および配列番号2によって定義される軽鎖可変ドメイン(VL);
b)アミノ酸の配列番号3によって定義される重鎖可変ドメインおよび配列番号4によって定義される軽鎖可変ドメイン;
c)アミノ酸の配列番号5によって定義される重鎖可変ドメインおよび配列番号6によって定義される軽鎖可変ドメイン;
d)アミノ酸の配列番号7によって定義される重鎖可変ドメインおよび配列番号8によって定義される軽鎖可変ドメイン
からなる群より独立して選択される重鎖可変ドメインおよび軽鎖可変ドメインを含む。
[抗体]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]n
を特徴とし、式中、mは、各抗膜融合ペプチドに関して独立して、0(すなわち、抗体と抗膜融合ペプチドとの間の直接的なペプチド結合)または1(すなわちリンカーが、抗体と抗膜融合ペプチドとの間に存在する)であり、およびnは、1〜8の整数である。一実施態様において、nは、2〜8の整数である。別の実施態様において、nは、2〜4の整数である。別の実施態様において、nは、2〜4の整数である。本発明の一実施態様は、抗体の重鎖の各C末端に、または軽鎖の各N末端に抗膜融合ペプチドを含むことを特徴とする抱合体を含む。本実施態様において、2個の抗膜融合ペプチドが、1個の抗体へ抱合される。他の実施態様において、抱合体は、重鎖の各C末端におよび軽鎖の各N末端に抗膜融合ペプチドを含むことを特徴とする。本実施態様において、4個の抗膜融合ペプチドが、1個の抗体へ抱合される。一実施態様において、該抗体mAb CCR5またはmAb CD4が存在する。
a)抱合体の発現に適した条件下で、本発明に従った抱合体をコードする1つまたはそれ以上の核酸分子を各々含有する1つまたはそれ以上の発現プラスミドを含有する細胞を培養すること、
b)細胞または上清から抱合体を回収すること
を含む、本発明に従った抱合体の産生のための方法である。
本発明に従った抱合体において有用なmAb CCR5を発現させる好ましいハイブリドーマ細胞系を、Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH (DSMZ), Germanyに寄託した。
<CCR5>Pz01.F3: 抗体A 配列番号1、2
<CCR5>Pz02.1C11: 抗体B 配列番号3、4
<CCR5>Pz03.1C5 : 抗体C 配列番号5、6
<CCR5>F3.1H12.2E5: 抗体D 配列番号7、8
<CCR5>Pz04.1F6: 抗体E
mAb CD4の可変ドメイン1は、米国特許第5,871,732号の配列番号10、15、45、および56において報告される。
mAb CD4の可変ドメイン2および4は、Reimann, K.A., et al., Aids Res. Human Retrovir. 13 (1997) 933-943において報告される。
mAb CD4の可変ドメイン3は、WO91/009966の図3、4、12、および13において報告される。
配列番号1 <CCR5>Pz01.F3重鎖、可変ドメイン
配列番号2 <CCR5>Pz01.F3軽鎖、可変ドメイン
配列番号3 <CCR5>Pz02.1C11重鎖、可変ドメイン
配列番号4 <CCR5>Pz02.1C11軽鎖、可変ドメイン
配列番号5 <CCR5>Pz03.1C5重鎖、可変ドメイン
配列番号6 <CCR5>Pz03.1C5軽鎖、可変ドメイン
配列番号7 <CCR5>F3.1H12.2E5重鎖、可変ドメイン
配列番号8 <CCR5>F3.1H12.2E5軽鎖、可変ドメイン
配列番号9 重鎖CDR1 mAb CCR5
配列番号10 重鎖CDR1 mAb CCR5
配列番号11 重鎖CDR1 mAb CCR5
配列番号12 重鎖CDR1 mAb CCR5
配列番号13 重鎖CDR2 mAb CCR5
配列番号14 重鎖CDR2 mAb CCR5
配列番号15 重鎖CDR2 mAb CCR5
配列番号16 重鎖CDR3 mAb CCR5
配列番号17 重鎖CDR3 mAb CCR5
配列番号18 軽鎖CDR1 mAb CCR5
配列番号19 軽鎖CDR1 mAb CCR5
配列番号20 軽鎖CDR1 mAb CCR5
配列番号21 軽鎖CDR2 mAb CCR5
配列番号22 軽鎖CDR2 mAb CCR5
配列番号23 軽鎖CDR2 mAb CCR5
配列番号24 軽鎖CDR3 mAb CCR5
配列番号25 軽鎖CDR3 mAb CCR5
配列番号26 γ1重鎖定常領域
配列番号27 γ4重鎖定常領域
配列番号28 κ軽鎖定常ドメイン
配列番号29 C34
配列番号30 T20
配列番号31 T1249
配列番号32 T651
配列番号33 T2635
配列番号34 N36
配列番号35 DP107
配列番号36〜62、67〜70 リンカーペプチド
配列番号63 成熟mAb CCR5κ軽鎖のアミノ酸配列
配列番号64 成熟mAb CCR5γ1重鎖のアミノ酸配列
配列番号65 成熟mAb CCR5抱合体重鎖のアミノ酸配列
配列番号66 HIV−1 gp41
配列番号71 成熟mAb CD4κ軽鎖のアミノ酸配列
配列番号72 成熟mAb CD4γ1重鎖のアミノ酸配列
配列番号73 afp−1
配列番号74 成熟mAb CD4抱合体重鎖のアミノ酸配列
配列番号75 ネズミ軽鎖可変ドメイン1mAb CD4
配列番号76 キメラ軽鎖可変ドメイン1 mAb CD4
配列番号77 キメラ軽鎖1 mAb CD4
配列番号78 キメラ軽鎖可変ドメイン2 mAb CD4
配列番号79 キメラ軽鎖可変ドメイン3 mAb CD4
配列番号80 キメラ軽鎖可変ドメイン4 mAb CD4
配列番号81 ネズミ重鎖可変ドメイン1 mAb CD4
配列番号82 キメラ重鎖可変ドメイン1 mAb CD4
配列番号83 キメラ重鎖1 mAb CD4
配列番号84 キメラ重鎖可変ドメイン2 mAb CD4
配列番号85 キメラ重鎖可変ドメイン3 mAb CD4
配列番号86 キメラ重鎖可変ドメイン4 mAb CD4
配列番号87 軽鎖CDR1 mAb CD4
配列番号88 軽鎖CDR1 mAb CD4
配列番号89 軽鎖CDR1 mAb CD4
配列番号90 軽鎖CDR1 mAb CD4
配列番号91 軽鎖CDR2 mAb CD4
配列番号92 軽鎖CDR2 mAb CD4
配列番号93 軽鎖CDR2 mAb CD4
配列番号94 軽鎖CDR3 mAb CD4
配列番号95 軽鎖CDR3 mAb CD4
配列番号96 軽鎖CDR3 mAb CD4
配列番号97 重鎖CDR1 mAb CD4
配列番号98 重鎖CDR1 mAb CD4
配列番号99 重鎖CDR1 mAb CD4
配列番号100 重鎖CDR2 mAb CD4
配列番号101 重鎖CDR2 mAb CD4
配列番号102 重鎖CDR2 mAb CD4
配列番号103 重鎖CDR3 mAb CD4
配列番号104 重鎖CDR3 mAb CD4
配列番号105 重鎖CDR3 mAb CD4
ヒト免疫グロブリン軽鎖および重鎖のヌクレオチド配列に関する一般的な情報は、Kabat, E.A., et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th ed., Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991)に示される。抗体鎖のアミノ酸は、EU付番に従って付番される(Edelman, G.M., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 63 (1969) 78-85, Kabat, E.A., et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest,5th ed., Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD, (1991))。
Sambrook, J. et al., Molecular cloning: A laboratory manual; Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 1989に記載されるとおり、標準的な方法を使用して、DNAを操作した。製造元の説明書に従って、分子生物学的試薬を使用した。
化学合成によって作製されるオリゴヌクレオチドから、望ましい遺伝子セグメントを調製した。PCR増幅を含むオリゴヌクレオチドのアニーリングおよび連結によって、特異な制限エンドヌクレアーゼ切断部位によって隣接される長さ100〜600塩基対の遺伝子セグメントを集合させた後、A−オーバーハングを介してpCR2.1−TOPO−TAクローニングベクター(Invitrogen Corp., USA)中へクローニングした。サブクローニングされた遺伝子断片のDNA配列をDNA配列決定によって確認した。
アミノ酸配列に基づいて算出されるモル吸光係数を使用して、280nmで光学密度(OD)を測定することによって、抱合体のタンパク質濃度を測定した。
抗CCR5抗体発現プラスミドの作製
抗CCR5抗体軽鎖可変ドメイン(VL)およびヒトκ軽鎖定常部(CL)をコードする遺伝子セグメントを、抗CCR5抗体重鎖可変ドメイン(VH)およびヒトγ1重鎖定常部(CH1−ヒンジ−CH2−CH3)に関する遺伝子セグメントと同様に接合した。
ベクター4900は、HEK293細胞中のmAb CCR5軽鎖(ゲノム的に組織された発現カセット;エクソン−イントロン組織)の一過性発現のための発現プラスミドである。
− 選択可能なマーカーとしてのハイグロマイシン抵抗性遺伝子、
− エプスタイン・バーウイルス(EBV)の複製起点oriP、
− イー・コリ中でのこのプラスミドの複製が可能となるベクターpUC18由来の複製起点、および
− イー・コリ中でアンピシリン抵抗性を付与するβ−ラクタマーゼ遺伝子
を含有する。
− ヒトサイトメガロウイルス由来の最初期エンハンサーおよびプロモーター、
− 合成の5’非翻訳領域、
− シグナル配列イントロンを含むネズミ免疫グロブリン重鎖シグナル配列(シグナル配列1、イントロン、シグナル配列2[L1−イントロン−L2])、
− 5’末端の独特なBsmI制限部位(L2シグナル配列)および3’末端の独特なNotI制限部位とともに配置されるセグメントをコードするネズミ抗CCR5抗体成熟可変κ軽鎖、
− ヒト/マウスκ軽鎖ハイブリッドイントロン2、
− ヒトκ軽鎖遺伝子定常部、
− ヒト免疫グロブリンκポリアデニル化(「ポリA」)シグナル配列、および
− 5’末端および3’末端にそれぞれある独特な制限部位AscIおよびFseI。
ベクター4991は、HEK293細胞中のmAb CCR5γ1重鎖(ゲノム的に組織された発現カセット;エクソン−イントロン組織)の一過性発現のための発現プラスミドである。
− 選択可能なマーカーとしてのハイグロマイシン抵抗性遺伝子、
− エプスタイン・バーウイルス(EBV)の複製起点oriP、
− イー・コリ中でのこのプラスミドの複製が可能となるベクターpUC18由来の複製起点、および
− イー・コリ中でアンピシリン抵抗性を付与するβ−ラクタマーゼ遺伝子を含有する。
− ヒトサイトメガロウイルス由来の最初期エンハンサーおよびプロモーター、
− 合成の5’非翻訳領域、
− シグナル配列イントロンを含むネズミ免疫グロブリン重鎖シグナル配列(シグナル配列1、イントロン、シグナル配列2[L1−イントロン−L2])、
− 5’末端の独特なBsmI制限部位(L2シグナル配列)およびスプライスドナー部位および3’末端の独特なNotI制限部位とともに配置されるセグメントをコードするネズミ抗CCR5抗体成熟可変重鎖、
− マウス重鎖エンハンサー要素(JH3、JH4部分)を含むヒト/マウス重鎖ハイブリッドイントロン2(Neuberger, M.S., EMBO J. 2 (1983) 1373-1378)、
− ゲノムヒトγ1重鎖遺伝子定常部、
− ヒトγ1免疫グロブリンポリアデニル化(「ポリA」)シグナル配列、および
− 5’末端および3’末端にそれぞれある独特な制限部位AscIおよびSgrAI。
ベクター4995は、HEK293細胞中のキメラペプチド−抗CCR5抗体γ1重鎖抱合体(ゲノム的に組織された発現カセット;エクソン−イントロン組織)の一過性発現のための発現プラスミドである。
− 選択可能なマーカーとしてのハイグロマイシン抵抗性遺伝子、
− エプスタイン・バーウイルス(EBV)の複製起点oriP、
− イー・コリ中でのこのプラスミドの複製が可能となるベクターpUC18由来の複製起点、および
− イー・コリ中でアンピシリン抵抗性を付与するβ−ラクタマーゼ遺伝子を含有する。
− ヒトサイトメガロウイルス由来の最初期エンハンサーおよびプロモーター、
− 合成の5’非翻訳領域、
− シグナル配列イントロンを含むネズミ免疫グロブリン重鎖シグナル配列(シグナル配列1、イントロン、シグナル配列2[L1−イントロン−L2])、
− 5’末端の独特なBsmI制限部位(L2シグナル配列)およびスプライスドナー部位および3’末端の独特なNotI制限部位とともに配置されるセグメントをコードするネズミ抗CCR5抗体成熟可変重鎖、
− マウス重鎖エンハンサー要素(JH3、JH4部分)を含むヒト/マウス重鎖ハイブリッドイントロン2(Neuberger, M.S., EMBO J. 2 (1983) 1373-1378)、
− ゲノムヒトγ1重鎖遺伝子定常部、
− 抗膜融合ペプチドT−2635、
− ペプチドリンカー配列[GQ4]3GNN、
− ヒトγ1免疫グロブリンポリアデニル化(「ポリA」)シグナル配列、および
− 5’末端および3’末端にそれぞれある独特な制限部位AscIおよびSgrAI。
最終的な抗CCR5抗体発現プラスミドの作製
mAb CCR5遺伝子セグメント、任意のリンカー遺伝子セグメントおよび抗膜融合ペプチド遺伝子セグメントを含む融合遺伝子(重鎖および/または軽鎖抗体融合遺伝子)は、公知の組換え方法および技術を使用して、従った核酸セグメントの接続によって集合した。ペプチドリンカーおよび抗膜融合ポリペプチドをコードする核酸配列を、化学合成によって各々合成した後、増幅のためのイー・コリプラスミド中へ連結した。サブクローニングされた核酸配列を、DNA配列決定によって確認した。
HEK293 EBNA細胞における免疫グロブリンおよび免疫グロブリン変異形の一過性発現
10%超低濃度IgGのFCS(ウシ胎仔血清、Gibco)、2mMグルタミン(Gibco)、1%(v/v)非必須アミノ酸(Gibco)および250μg/mL G418(Roche Molecular Biochemicals)を補充されたDMEM(ダルベッコ改変イーグル培地、Gibco)中で培養された接着増殖するHEK293−EBNA細胞(エプスタイン・バーウイルス核抗原を発現させるヒト胚性腎細胞系293;米国培養細胞系統保存機関寄託番号ATCC # CRL−10852)の一過性トランスフェクションによって、組換え抗CCR5抗体および抗CCR5抗体突然変異形を生じた。トランスフェクションのために、FuGENE(商標)6トランスフェクション試薬(Roche Molecular Biochemicals)を、3:1〜6:1の範囲の試薬(μL):DNA(μg)の比で使用した。抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体軽鎖および重鎖を含む軽鎖および重鎖を2個の異なるプラスミドから、それぞれ1:2〜2:1の範囲の軽鎖:重鎖をコードするプラスミドのモル比を使用して発現させた。細胞培養上清を含有する抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体をトランスフェクション後第4〜11日目に回収した。例えばHEK293細胞中でのヒト免疫グロブリンの組換え発現に関する一般的な情報は、Meissner, P. et al., Biotechnol. Bioeng. 75 (2001) 197-203に付与される。
SDS PAGE、ウェスタンブロッティングトランスファーおよび免疫グロブリン特異的抗体抱合体による検出を使用する発現分析
発現および分泌された抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体を、ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)によって処理し、分離された抗CCR5抗体および抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体−抱合体鎖をゲルからメンブレンへ転移させた後、免疫学的方法によって検出した。
LDS試料バッファー、4倍濃縮物(4×):4gのグリセロール、0.682gのトリス塩基、0.666gのトリス塩酸、0.8gのLDS(ドデシル硫酸リチウム)、0.006gのEDTA(エチレンジアミン四酢酸)、水中のServa Blue G250の1%(w/w)溶液0.75mL、フェノールレッドの1重量%(w/w)溶液0.75mL、水を添加して、10mLの全体容積にする。
トランスファーバッファー:39mMグリシン、48mMトリス塩酸、0.04重量%(w/w)SDS、および20容積%(v/v)メタノール。
TBSバッファー:50mMトリス塩酸、150mM NaCl、pH7.5に調整した。
ブロッキング溶液:TBSバッファー中の1%(w/v)ウェスタンブロッキング試薬(Roche Molecular Biochemicals)
TBSTバッファー:0.05容積%(v/v)トゥイーン20を有する1×TBSバッファー
免疫学的検出のために、ウェスタンブロッティングメンブレンを室温でTBSバッファー中で5分間を2回、およびブロッキング溶液中で90分間を1回、振盪しながらインキュベートした。
重鎖:抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体の重鎖の検出のために、ペルオキシダーゼへ抱合された精製済みウサギ抗ヒトIgG抗体を使用した(DAKO、コード番号P 0214)。
検出に使用されるペルオキシダーゼ標識二次抗体抱合体は、100mMβ−メルカプトエタノールと20%(w/v)SDSとを含有する1Mトリス塩酸バッファー(pH6.7)中で、メンブレンを70℃で1時間インキュベートすることによって、染色されたブロットから除去することが可能である。この処理の後、ブロットを異なる二次抗体で、第二の時間、染色することが可能である。二次検出の前に、TBSバッファー中で各10分間振盪しながら、ブロットを室温で3回洗浄する。
ペプチド免疫グロブリン抱合体のアフィニティ精製、透析および濃縮
公知の方法に従ってプロテインA−セファロース(商標)CL−4B(GE Healthcare former Amersham Bioscience, Sweden)を使用するアフィニティクロマトグラフィーによって、発現および分泌された抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体を精製した。簡潔には、遠心分離(10,000gで10分間)および0.45μmフィルターによる濾過の後、清澄化された培養上清を含有するペプチド免疫グロブリン抱合体を、PBSバッファー(10mM Na2HPO4、1mM KH2PO4、137mM NaClおよび2.7mM KCl、pH7.4)で平衡化されたプロテインA−セファロース(商標)CL−4Bカラムへ適用した。結合していないタンパク質を、PBS平衡化バッファーおよび0.1Mクエン酸バッファー(pH5.5)で洗い流した。抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体を0.1Mクエン酸バッファー(pH3.0)で溶出し、抱合体を含有する画分を1Mトリス塩基で中和した。次に、抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体をPBSバッファーに対して4℃で大規模に透析し、Biomax−SKメンブレン(Millipore Corp., USA)を装備したUltrafree(登録商標)−CL遠心分離フィルターユニットで濃縮し、氷水槽中に0℃で保存した。還元剤の存在下および非存在下でのSDS−PAGEおよびクーマシーブリリアントブルーでの染色によって、抱合体の完全性を実施例4に記載のとおり分析した。抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体の凝集体を分析用分子ふるいクロマトグラフィーによって分析した。
ペプチド免疫グロブリン抱合体の脱グリコシル化
抗CCR5抗体および抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体のN架橋された炭水化物を、ペプチド−N−グリコシダーゼF(PNGaseF, Roche Molecular Biochemicals, Mannheim, GermanyまたはProzyme, San Leandro, CA)による酵素処理によって切断した。したがって、約2mg/mLのタンパク質濃度で、PBSバッファー中で1mgのN−グリコシル化タンパク質あたり50mUのPNGaseFを使用して、抗CCR5抗体および抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体を37℃で12〜24時間インキュベートした。その後、公知の方法に従った調製用ゲル濾過によって、ペプチド−N−グリコシダーゼFを分離した。簡潔には、PNGaseFで処理された抗CCR5抗体および抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体を、PBSバッファー(10 mM Na2HPO4、1 mM KH2PO4、137 mM NaClおよび2.7 mM KCl、pH 7.4)で平衡化されたSuperose(商標)12 10/300 GLカラム(GE Healthcare former Amersham Bioscience, Sweden)に適用した後、Amersham Bioscience(GE Healthcare former Amersham Bioscience, Sweden)製のAktaエクスプローラークロマトグラフィーシステムを使用して、0.5〜1.0mL/分の流速で平衡化バッファーを使用して溶出した。
単一周期の抗ウイルス活性アッセイ
偽型NL−Balウイルスの産生のために、プラスミドpNL4−3Δenv(env遺伝子内に欠失を有するHIV pNL4−3ゲノムコンストラクト)およびpCDNA3.1/NL−BAL env[(エイズ試薬に関してNIBSC Centralized Facilityから得られる)NL−Bal env遺伝子を含有するpcDNA3.1プラスミド]をHEK 293FT細胞系(Invitrogen)中へトランスフェクトし、10%ウシ胎仔血清(FCS)、100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン、2mM L−グルタミンおよび0.5mg/mLジェネテシン(すべての培地はInvitrogen/Gibco製)を含有するダルベッコ変法最小培地(DMEM)中で培養した。偽型ウイルスを含有する上清をトランスフェクションの2日後に回収し、0.45μmの孔サイズのPES(ポリエーテルスルホン)フィルター(Nalgene)による濾過によって細胞デブリを除去し、分注して−80℃で保存した。アッセイの性能における標準化のために、ウイルスストックの一定分量を使用して、JC53−BL(US NIH Aids Reagent Program)細胞を感染させると、1個のウェルあたり約1.5×105RLU(相対的光単位)を生じた。検査用抗膜融合ペプチド−抗CCR5抗体抱合体、参照抗体および参照抗膜融合ペプチド(T−20、T−1249、T−651およびT−2635)を96ウェルプレート中に連続希釈した。アッセイを四つ組で実施した。各プレートは、細胞コントロールおよびウイルスコントロールのウェルを含有した。ウイルスストックの1.5×105RLUの等量を各ウェルに添加した後、2.5×104個のJC53−BL細胞を各ウェルに添加し、1ウェルあたり200μLの最終アッセイ容積にした。37℃、90%相対湿度、および5%CO2で3日間のインキュベーションの後、培地を吸引し、Steady−Glo(登録商標)ルシフェラーゼアッセイシステム(Promega)50μLを各ウェルへ添加した。室温でインキュベーションを10分間した後、アッセイプレートをルミノメーター(Luminoskan, Thermo Electron Corporation)で読み取った。バックグラウンドを減算した後、各用量地点に関してルシフェラーゼ活性の%阻害を算出し、エクセル(第3.0.5版ビルド12、Microsoft)用のXLfit曲線適合ソフトウェアを使用することによって、IC50およびIC90値を決定した。
細胞−細胞融合アッセイ
第1日目に、白色96マイクロタイタープレート中で、10%FCSおよび2μg/mLのドキシサイクリンを補充したDMEM培地中にgp160を発現させるHeLa細胞(2×104個/50μL/ウェル)を播種する。第2日目に、上清試料または抗体コントロール100μL/ウェルを、透明な96マイクロタイタープレート中に添加する。次に、培地中に8×104個のCEM−NKr−Luc懸濁細胞を含有する100μLを添加し、37℃で30分間インキュベートする。HeLa細胞培地を96ウェルプレートから吸引し、200μLの抗体/CEM−NKr−Luc混合物由来の100μLを添加し、37℃で一晩インキュベートする。第3日目に、100μL/ウェルのBright−Glo(商標)ルシフェラーゼアッセイ基質(1,4−ジチオスレイトールおよび亜ジチオン酸ナトリウム;Promega Corp., USA)を添加し、室温で最低でも15分間インキュベートした後、発光を測定する。
栄養素と、400μg/mLのG418および200μg/mLのハイグロマイシンBを有する10%FCSとを含有するDMEM培地中で、HeLa−R5−16細胞(ドキシサイクリン誘導の際にHIV gp160を発現させるための細胞系)を培養する。CEM.NKR−CCR5−Luc(カタログ番号:5198、NIH AIDS Research & Reference Reagent Program McKesson BioServices Corporation Germantown, MD 20874, USAから入手可能なT細胞系)。細胞種:CEM.NKR−CCR5(カタログ番号4376)をトランスフェクトして(電気穿孔法)、HIV−2 LTRの転写調節下でルシフェラーゼ遺伝子を発現させ、10%ウシ胎仔血清、4mMグルタミン、ペニシリン/ストレプトマイシン(100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン)、および0.8mg/mL硫酸ジェネテシン(G418)を含有するRPMI1640中で増殖させる。増殖特徴:丸いリンパ球系細胞、形態はほとんど変化しない。単一細胞として懸濁液中で細胞が増殖し、小さな凝集塊を形成し得る。1週間に2回分裂1:10。特別な特徴:HIV−2LTRのトランス活性化後にルシフェラーゼ活性を発現。初代HIV単離物による感染、中和および薬物感受性アッセイに適している(Spenlehauer, C., et al., Virology 280 (2001) 292-300, Trkola, A., et al., J. Virol. 73 (1999) 8966-8974)。NIH AIDS Research and Reference Reagent Program, NIAID, NIHを通じてJohn Moore博士およびCatherine Spenlehauer博士から細胞系を得た。Bright−Glo(商標)ルシフェラーゼアッセイバッファー(Promega Corp. USA、部分番号E2264B)、Bright−Glo(商標)ルシフェラーゼアッセイ基質(Promega Corp. USA、部分番号EE26B)。
末梢血単核細胞(PBMC)における抗ウイルス活性アッセイ
製造元のプロトコールに従って、Ficoll−Paque(Amersham, Piscataway, New Jersey, USA)密度勾配遠心分離によって、ヒトPBMCを(Stanford Blood Centerから得られる)バフィーコートから単離する。簡潔には、50mLコニカルチューブ中のバフィーコートから血液を転移させ、滅菌済みダルベッコリン酸塩類バッファー(Invitrogen/Gibco)で50mLの最終容積に希釈する。希釈した血液25mLを2本の50mLコニカルチューブへ転移させ、Ficoll−Paque Plus(Amersham Biosciences)12.5mLを注意深く下層に敷き、450×gでブレーキをかけずに室温で20分間遠心分離する。白色細胞層を新しい50mLコニカルチューブへ注意深く転移させ、PBSで2回洗浄する。残存する赤血球細胞を除去するために、ACK溶解バッファー(Biosource)とともに室温で5分間インキュベートし、PBSでもう1回洗浄する。PBMCを計数し、10%FCS(Invitrogen/Gibco)、1%ペニシリン/ストレプトマイシン、2mM L−グルタミン、1mMピルビン酸ナトリウム、および2μg/mL植物性血球凝集素(Invitrogen)を含有するRPMI1640中に2〜4×106個/mLの濃度で37℃で24時間インキュベートする。96ウェル丸底プレート中で、連続希釈した検査用ペプチド−免疫グロブリン抱合体、参照免疫グロブリンおよび参照ペプチド(T−20、T−1249、T−651およびT−2635)の存在下で、1×105個のPBMCにHIV−1 JR−CSFウイルス(Koyanagi, Y., et al., Science 236 (1987) 819-822)を感染させる。使用されるウイルスの量は、ウェルあたり1.2ngのHIV−1 p24抗原と等価である。感染を四つ組で設定する。プレートを37℃で6日間インキュベートする。感染終了時に、Microsoft Excel Fit(第3.0.5版ビルド12;等式205、Microsoft)において1個の結合部位を有するS字形用量反応モデルを使用するp24 ELISA(HIV−1 p24 ELISA #NEK050B、Perkin Elmer/NEN)を使用することによって、ウイルス産生を測定する。
抗CD4抗体発現プラスミドの作製
抗CD4抗体軽鎖可変ドメイン(VL)およびヒトκ軽鎖定常部(CL)をコードする遺伝子セグメントを、抗CD4抗体重鎖可変ドメイン(VH)およびヒトγ1重鎖定常部(CH1−ヒンジ−CH2−CH3)に関する遺伝子セグメントと同様に接合した。
ベクター6310は、HEK293細胞中のmAb CD4軽鎖(ゲノム的に組織された発現カセット;エクソン−イントロン組織)の一過性発現のための発現プラスミドである。
− 選択可能なマーカーとしてのネオマイシン抵抗性遺伝子、
− イー・コリ中でのこのプラスミドの複製が可能となるベクターpUC18由来の複製起点、および
− イー・コリ中でアンピシリン抵抗性を付与するβ−ラクタマーゼ遺伝子
を含有する。
− ヒトサイトメガロウイルス由来の最初期エンハンサーおよびプロモーター、
− ヒト抗体生殖系列遺伝子の5’非翻訳領域、
− シグナル配列イントロンを含むネズミ免疫グロブリン重鎖シグナル配列(シグナル配列1、イントロン、シグナル配列2[L1−イントロン−L2])、
− 3’末端でスプライスドナー部位および独特なBamHI制限部位とともに配置されたヒト化抗CD4抗体成熟κ軽鎖可変ドメインをコードするセグメント
− 切断型ヒトκ軽鎖イントロン2、
− ヒトκ軽鎖遺伝子定常部、
− ウシ成長ホルモン(bGH)ポリアデニル化(「ポリA」)シグナル配列、および
− 3’末端にある独特な制限部位AscIおよびSgrAI。
ベクター6309は、例えば、HEK293細胞中のmAb CD4γ1重鎖(ゲノム的に組織された発現カセット;エクソン−イントロン組織)の一過性発現のための発現プラスミドである。
− イー・コリ中でのこのプラスミドの複製が可能となるベクターpUC18由来の複製起点、および
− イー・コリ中でアンピシリン抵抗性を付与するβ−ラクタマーゼ遺伝子
を含有する。
− ヒトサイトメガロウイルス由来の最初期エンハンサーおよびプロモーター、
− ヒト抗体生殖系列遺伝子の5’非翻訳領域、
− シグナル配列イントロンを含むネズミ免疫グロブリン重鎖シグナル配列(シグナル配列1、イントロン、シグナル配列2[L1−イントロン−L2])、
− 3’末端でスプライスドナー部位および独特なXhoI制限部位とともに配置されたヒト化抗CD4抗体成熟重鎖可変ドメインをコードするセグメント、
− マウス/ヒト重鎖ハイブリッドイントロン2、
− L234AおよびL235A突然変異を含有するゲノムヒトγ1重鎖遺伝子定常部、
− ウシ成長ホルモン(bGH)ポリアデニル化(「ポリA」)シグナル配列、および
− 3’末端にある独特な制限部位SgrAI。
ベクター6303は、例えば、HEK293細胞中のキメラペプチド−抗CD4抗体γ1重鎖抱合体(ゲノム的に組織された発現カセット;エクソン−イントロン組織)の一過性発現のための発現プラスミドである。
− イー・コリ中でのこのプラスミドの複製が可能となるベクターpUC18由来の複製起点、および
− イー・コリ中でアンピシリン抵抗性を付与するβ−ラクタマーゼ遺伝子
を含有する。
− ヒトサイトメガロウイルス由来の最初期エンハンサーおよびプロモーター、
− ヒト抗体生殖系列遺伝子の5’非翻訳領域、
− シグナル配列イントロンを含むネズミ免疫グロブリン重鎖シグナル配列(シグナル配列1、イントロン、シグナル配列2[L1−イントロン−L2])、
− 3’末端でスプライスドナー部位および独特なXhoI制限部位とともに配置されたヒト化抗CD4抗体成熟重鎖可変ドメインをコードするセグメント、
− L234AおよびL235A突然変異を含有するマウス/ヒト重鎖ハイブリッドイントロン、
− 配列番号69のペプチド性セリン−グリシンリンカー配列、
− 配列番号73の抗膜融合ペプチドafp−1、
− ウシ成長ホルモン(bGH)ポリアデニル化(「ポリA」)シグナル配列、および
− 3’末端にある独特な制限部位SgrAI。
最終的な抗CD4抗体発現プラスミドの作製
mAb CD4遺伝子セグメント、任意のリンカー遺伝子セグメントおよび抗膜融合ペプチド遺伝子セグメントを含む融合遺伝子(重鎖および/または軽鎖抗体融合遺伝子)は、公知の組換え方法および技術を使用して、従った核酸セグメントの接続によって集合した。ペプチドリンカーおよび抗膜融合ポリペプチドをコードする核酸配列を、化学合成によって各々合成した後、増幅のためのイー・コリプラスミド中へ連結した。サブクローニングされた核酸配列を、DNA配列決定によって確認した。
HEK293 EBNA細胞における免疫グロブリンおよび免疫グロブリン変異形の一過性発現
10%超低濃度IgGのFCS(ウシ胎仔血清、Gibco)、2mMグルタミン(Gibco)、1容積%(v/v)非必須アミノ酸(Gibco)および250μg/mL G418(Roche Molecular Biochemicals)を補充されたDMEM(ダルベッコ変法イーグル培地、Gibco)中で培養された接着増殖するHEK293−EBNA細胞(エプスタイン・バーウイルス核抗原を発現させるヒト胚性腎細胞系293;米国培養細胞系統保存機関寄託番号ATCC # CRL−10852)の一過性トランスフェクションによって、組換え抗CD4抗体および抗CD4抗体突然変異形を生じた。トランスフェクションのために、FuGENE(商標)6 Transfection Reagent(Roche Molecular Biochemicals)を、3:1〜6:1の範囲の試薬(μL):DNA(μg)の比で使用した。抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体軽鎖および重鎖を含む軽鎖および重鎖を2個の異なるプラスミドから、それぞれ1:2〜2:1の範囲の軽鎖:重鎖をコードするプラスミドのモル比を使用して発現させた。細胞培養上清を含有する抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体をトランスフェクション後第4〜11日目に回収した。例えばHEK293細胞中でのヒト免疫グロブリンの組換え発現に関する一般的な情報は、Meissner, P. et al., Biotechnol. Bioeng. 75 (2001) 197-203に示される。
SDS PAGE、ウェスタンブロッティングトランスファーおよび免疫グロブリン特異的抗体抱合体による検出を使用する発現分析
発現および分泌された抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体を、ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)によって処理し、分離された抗CD4抗体および抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体−抱合体鎖をゲルからメンブレンへ転移させた後、免疫学的方法によって検出した。
LDS試料バッファー、4倍濃縮物(4×):4gのグリセロール、0.682gのトリス塩基、0.666gのトリス塩酸、0.8gのLDS(ドデシル硫酸リチウム)、0.006gのEDTA(エチレンジアミン四酢酸)、水中のServa Blue G250の1%(w/w)溶液0.75mL、フェノールレッドの1%(w/w)溶液0.75mL、水を添加して、10mLの全体容積にする。
トランスファーバッファー:39mMグリシン、48mMトリス塩酸、0.04重量%(w/w)SDS、および20容積%(v/v)メタノール。
TBSバッファー:50mMトリス塩酸、150mM NaCl、pH7.5に調整。
ブロッキング溶液:TBSバッファー中の1%(w/v)ウェスタンブロッキング試薬(Roche Molecular Biochemicals)。
TBSTバッファー:0.05容積%(v/v)トゥイーン20を有する1×TBSバッファー。
免疫学的検出のために、ウェスタンブロッティングメンブレンを室温でTBSバッファー中で5分間を2回、およびブロッキング溶液中で90分間を1回、振盪しながらインキュベートした。
重鎖:抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体の重鎖の検出のために、ペルオキシダーゼへ抱合された精製済みウサギ抗ヒトIgG抗体を使用した(DAKO、コード番号P 0214)。
検出に使用されるペルオキシダーゼ標識二次抗体抱合体は、100mMβ−メルカプトエタノールと20%(w/v)SDSとを含有する1Mトリス塩酸バッファー(pH6.7)中で、メンブレンを70℃で1時間インキュベートすることによって、染色されたブロットから除去することが可能である。この処理の後、ブロットを異なる二次抗体で、第二の時間、染色することが可能である。二次検出の前に、TBSバッファー中で各10分間振盪しながら、ブロットを室温で3回洗浄する。
ペプチド免疫グロブリン抱合体のアフィニティ精製、透析および濃縮
公知の方法に従ってプロテインA−セファロース(商標)CL−4B(GE Healthcare former Amersham Bioscience, Sweden)を使用するアフィニティクロマトグラフィーによって、発現および分泌された抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体を精製した。簡潔には、遠心分離(10,000gで10分間)および0.45μmフィルターによる濾過の後、清澄化された培養上清を含有するペプチド免疫グロブリン抱合体を、PBSバッファー(10mM Na2HPO4、1mM KH2PO4、137mM NaClおよび2.7mM KCl、pH7.4)で平衡化されたプロテインA−セファロース(商標)CL−4Bカラムへ適用した。結合していないタンパク質を、PBS平衡化バッファーおよび0.1Mクエン酸バッファー(pH5.5)で洗い流した。抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体を0.1Mクエン酸バッファー(pH3.0)で溶出し、抱合体を含有する画分を1Mトリス塩基で中和した。次に、抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体をPBSバッファーに対して4℃で大規模に透析し、Biomax−SKメンブレン(Millipore Corp., USA)を装備したUltrafree(登録商標)−CL遠心分離フィルターユニットで濃縮し、氷水槽中に0℃で保存した。還元剤の存在下および非存在下でのSDS−PAGEおよびクーマシーブリリアントブルーでの染色によって、抱合体の完全性を実施例13に記載のとおり分析した。抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体の凝集体を分析用分子ふるいクロマトグラフィーによって分析した。
ペプチド免疫グロブリン抱合体の脱グリコシル化
抗CD4抗体および抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体のN架橋された炭水化物を、ペプチド−N−グリコシダーゼF(PNGaseF、Roche Molecular Biochemicals, Mannheim, GermanyまたはProzyme, San Leandro, CA)による酵素処理によって切断した。したがって、約2mg/mLのタンパク質濃度で、PBSバッファー中で1mgのN−グリコシル化タンパク質あたり50mUのPNGaseFを使用して、抗CD4抗体および抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体を37℃で12〜24時間インキュベートした。その後、公知の方法に従った調製用ゲル濾過によって、ペプチド−N−グリコシダーゼFを分離した。簡潔には、PNGaseFで処理された抗CD4抗体および抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体を、PBSバッファー(10 mM Na2HPO4、1 mM KH2PO4、137 mM NaClおよび2.7 mM KCl、pH 7.4)で平衡化されたSuperose(商標)12 10/300 GLカラム(GE Healthcare former Amersham Bioscience, Sweden)に適用した後、Amersham Bioscience(GE Healthcare former Amersham Bioscience, Sweden)製のAktaエクスプローラークロマトグラフィーシステムを使用して、0.5〜1.0mL/分の流速で平衡化バッファーを使用して溶出した。
単一サイクルの抗ウイルス活性アッセイ
偽型NL−Balウイルスの産生のために、プラスミドpNL4−3Δenv(env遺伝子内に欠失を有するHIV pNL4−3ゲノムコンストラクト)およびpCDNA3.1/NL−BAL env[(エイズ試薬に関してNIBSC Centralized Facilityから得られる)NL−Bal env遺伝子を含有するpcDNA3.1プラスミド]をHEK 293FT細胞系(Invitrogen Corp.)中へトランスフェクトし、10%ウシ胎仔血清(FCS)、100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン、2mM L−グルタミンおよび0.5mg/mLジェネテシン(すべての培地はInvitrogen/Gibco製)を含有するダルベッコ変法最小培地(DMEM)中で培養した。偽型ウイルスを含有する上清をトランスフェクションの2日後に回収し、0.45μmの孔サイズのPES(ポリエーテルスルホン)フィルター(Nalgene)による濾過によって細胞デブリを除去し、分注して−80℃で保存した。アッセイの性能における標準化のために、ウイルスストックの一定分量を使用して、JC53−BL(US NIH Aids Reagent Program)細胞を感染させると、1個のウェルあたり約1.5×105RLU(相対的光単位)を生じた。検査用抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体、親抗CD4抗体、参照抗体および参照抗膜融合ペプチド(T−651)を、96ウェルプレート中に連続希釈した。アッセイを四つ組で実施した。各プレートは、細胞コントロールおよびウイルスコントロールのウェルを含有した。ウイルスストックの1.5×105RLUの等量を各ウェルに添加した後、2.5×104個のJC53−BL細胞を各ウェルに添加し、1ウェルあたり200μLの最終アッセイ容積にした。37℃、90%相対湿度、および5%CO2で3日間のインキュベーションの後、培地を吸引し、Steady−Glo(登録商標)ルシフェラーゼアッセイシステム(Promega)50μLを各ウェルへ添加した。室温でインキュベーションを10分間した後、アッセイプレートをルミノメーター(Luminoskan, Thermo Electron Corporation)で読み取った。バックグラウンドを減算した後、各用量地点に関してルシフェラーゼ活性の%阻害を算出し、エクセル(第3.0.5版ビルド12、Microsoft)用のXLfit曲線適合ソフトウェアを使用することによって、IC50およびIC90値を決定した。結果を表4および5にそれぞれ示す。
細胞−細胞融合アッセイ
第1日目に、白色96マイクロタイタープレート中で、10%FCSおよび2μg/mLのドキシサイクリンを補充したDMEM培地中にgp160を発現させるHeLa細胞(2×104個/50μL/ウェル)を播種する。第2日目に、上清試料または抗体コントロール100μL/ウェルを、透明な96マイクロタイタープレート中に添加する。次に、培地中に8×104 個のCEM−NKr−Luc懸濁細胞を含有する100μLを添加し、37℃で30分間インキュベートする。HeLa細胞培地を96ウェルプレートから吸引し、200μLの抗体/CEM−NKr−Luc混合物由来の100μLを添加し、37℃で一晩インキュベートする。第3日目に、100μL/ウェルのBright−Glo(商標)ルシフェラーゼアッセイ基質(1,4−ジチオスレイトールおよび亜ジチオン酸ナトリウム;Promega Corp., USA)を添加し、室温で最低でも15分間インキュベートした後、発光を測定する。
栄養素と、400μg/mLのG418および200μg/mLのハイグロマイシンBを有する10%FCSとを含有するDMEM培地中で、HeLa−R5−16細胞(ドキシサイクリン誘導の際にHIV gp160を発現させるための細胞系)を培養する。CEM.NKR−CCR5−Luc(カタログ番号:5198、NIH AIDS Research & Reference Reagent Program McKesson BioServices Corporation Germantown, MD 20874, USAから入手可能なT細胞系)。細胞種:CEM.NKR−CCR5(カタログ番号4376)をトランスフェクトして(電気穿孔法)、HIV−2 LTRの転写調節下でルシフェラーゼ遺伝子を発現させ、10%ウシ胎仔血清、4mMグルタミン、ペニシリン/ストレプトマイシン(100U/mLペニシリン、100μg/mLストレプトマイシン)、および0.8mg/mL硫酸ジェネテシン(G418)を含有するRPMI1640中で増殖させる。増殖特徴:丸いリンパ球系細胞、形態はほとんど変化しない。単一細胞として懸濁液中で細胞が増殖し、小さな凝集塊を形成し得る。1週間に2回分裂1:10。特別な特徴:HIV−2LTRのトランス活性化後にルシフェラーゼ活性を発現。初代HIV単離物による感染、中和および薬物感受性アッセイに適している(Spenlehauer, C., et al., Virology 280 (2001) 292-300, Trkola, A., et al., J. Virol. 73 (1999) 8966-8974)。NIH AIDS Research and Reference Reagent Program, NIAID, NIHを通じてJohn Moore博士およびCatherine Spenlehauer博士から細胞系を得た。John Moore and Catherine Spenlehauer.Bright−Glo(商標)ルシフェラーゼアッセイバッファー(Promega Corp. USA、部分番号E2264B)、Bright−Glo(商標)ルシフェラーゼアッセイ基質(Promega Corp. USA、部分番号EE26B)。
末梢血単核細胞(PBMC)における抗ウイルス活性アッセイ
製造元のプロトコールに従って、Ficoll−Paque(Amersham, Piscataway, New Jersey, USA)密度勾配遠心分離によって、ヒトPBMCを(Stanford Blood Centerから得られる)バフィーコートから単離する。簡潔には、50mLコニカルチューブ中のバフィーコートから血液を転移させ、滅菌済みダルベッコリン酸塩類バッファー(Invitrogen/Gibco)で50mLの最終容積に希釈する。希釈した血液25mLを2本の50mLコニカルチューブへ転移させ、Ficoll−Paque Plus(Amersham Biosciences)12.5mLを注意深く下層に敷き、450×gでブレーキをかけずに室温で20分間遠心分離する。白色細胞層を新しい50mLコニカルチューブへ注意深く転移させ、PBSで2回洗浄する。残存する赤血球細胞を除去するために、ACK溶解バッファー(Biosource)とともに室温で5分間インキュベートし、PBSでもう1回洗浄する。PBMCを計数し、10%FCS(Invitrogen/Gibco)、1%ペニシリン/ストレプトマイシン、2mM L−グルタミン、1mMピルビン酸ナトリウム、および2μg/mL植物性血球凝集素(Invitrogen)を含有するRPMI1640中に2〜4×106個/mLの濃度で37℃で24時間インキュベートする。96ウェル丸底プレート中で、連続希釈した検査用抗膜融合ペプチド−抗CD4抗体抱合体、参照免疫グロブリン、親抗CD4抗体および参照ペプチド(T−651)の存在下で、1×105個のPBMCにHIV−1 JR−CSFウイルス(Koyanagi, Y., et al., Science 236 (1987) 819-822)を感染させる。使用されるウイルスの量は、ウェルあたり1.2ngのHIV−1 p24抗原と等価である。感染を四つ組で設定する。プレートを37℃で6日間インキュベートする。感染終了時に、Microsoft Excel Fit(第3.0.5版ビルド12;等式205、Microsoft)において1個の結合部位を有するS字形用量反応モデルを使用するp24 ELISA(HIV−1 p24 ELISA #NEK050B、Perkin Elmer/NEN)を使用することによって、ウイルス産生を測定する。
DSM ACC 2682
DSM ACC 2683
DSM ACC 2684
Claims (26)
- 1〜8つの抗膜融合ペプチドが各々、HIV gp120結合性細胞表面受容体に対する抗体の重鎖および/または軽鎖の1末端に抱合することを特徴とする、1つまたはそれ以上の抗膜融合ペプチドと該HIV gp120結合性細胞表面受容体に対する抗体とを含む抱合体。
- HIV gp120結合性細胞表面受容体に対する抗体が、2つまたは4つの抗膜融合ペプチドに抱合することを特徴とする、請求項1に記載の抱合体。
- HIV gp120結合性細胞表面受容体に対する抗体が、抗CCR5抗体(mAbCCR5)であることを特徴とする、請求項1に記載の抱合体。
- 抗CCR5抗体の末端の少なくとも2つが各々、抗膜融合ペプチドに抱合することを特徴とする、請求項3に記載の抱合体。
- 抗膜融合ペプチドが、直鎖状ペプチドであり、および5〜100アミノ酸のアミノ酸配列を含むことを特徴とする、請求項3に記載の抱合体。
- 一般式mAb CCR5−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]nであり、式中mが、各抗膜融合ペプチドに関して独立して0または1のいずれかであり、およびnが、最大でも1〜8の整数であることを特徴とする、請求項3〜5のいずれか一項に記載の抱合体。
- (1)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]
(2)[重鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(3)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]−[抗膜融合ペプチド]
(4)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]
(5)[軽鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(6)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]−[抗膜融合ペプチド]
(7)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[重鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(8)[抗膜融合ペプチド]−[リンカー]m−[軽鎖]−[リンカー]m−[抗膜融合ペプチド]
(式中、リンカーが、同一または異別であり得、mが、1または0の整数であり、およびmが、独立して同一または異別であり得る)
からなる群より選択され、mAb CCR5の重鎖および/または軽鎖と抗膜融合ペプチドとの抱合体を含むことを特徴とする、請求項6に記載の抱合体。 - 鎖抱合体(2)、(3)、(4)、または(7)を含むことを特徴とする、請求項7に記載の抱合体。
- 2個の[mAb CCR5軽鎖]および2個の(2)、2個の[mAb CCR5軽鎖]および2個の(3)、2個の[mAb CCR5重鎖]および2個の(4)、または2個の[mAb CCR5軽鎖]および2個の(7)を含むことを特徴とする、請求項7に記載の抱合体。
- 抗膜融合ペプチドが、配列番号29〜35および配列番号73によって定義されるペプチドの群より選択されることを特徴とする、請求項3〜9のいずれか一項に記載の抱合体。
- 抗CCR5抗体が、免疫グロブリンフレームワークと重鎖CDR3配列番号16および17からなる群より選択されるCDR3領域とからなる重鎖可変ドメインを含むことを特徴とする、請求項3〜10のいずれか一項に記載の抱合体。
- 抗CCR5抗体が、免疫グロブリンフレームワークと、重鎖CDR3配列番号16および17からなる群より選択されるCDR3領域と、重鎖CDR2配列番号13、14、および15からなる群より選択されるCDR2領域と、ならびに重鎖CDR1配列番号9、10、11、および12からなる群より選択されるCDR1領域とからなる重鎖可変ドメインを含むことを特徴とする、請求項3〜11のいずれか一項に記載の抱合体。
- 抗CCR5抗体が、配列番号1、3、5、および7の群より選択される重鎖可変ドメインを含むことを特徴とする、請求項3〜12のいずれか一項に記載の抱合体。
- 抗CCR5抗体が、免疫グロブリンフレームワークと、配列番号18、19、および20より選択されるCDR1領域と、配列番号21、22、および23より選択されるCDR2領域と、ならびに配列番号24、および25より選択されるCDR3領域とからなる重鎖可変ドメインを含むことを特徴とする、請求項3〜13のいずれか一項に記載の抱合体。
- 抗CCR5抗体が、重鎖CDRとして配列番号1のCDRを、および軽鎖CDRとして配列番号2のCDRを含むか、重鎖CDRとして配列番号3のCDRを、および軽鎖CDRとして配列番号4のCDRを含むか、重鎖CDRとして配列番号5のCDRを、および軽鎖CDRとして配列番号6のCDRを含むか、または重鎖CDRとして配列番号7のCDRを、および軽鎖CDRとして配列番号8のCDRを含むことを特徴とする、請求項3〜14のいずれか一項に記載の抱合体。
- 抗CCR5抗体が、重鎖可変ドメインと、
a)アミノ酸配列番号1によって定義される重鎖可変ドメイン(VH)および配列番号2によって定義される軽鎖可変ドメイン(VL);
b)アミノ酸配列番号3によって定義される重鎖可変ドメインおよび配列番号4によって定義される軽鎖可変ドメイン;
c)アミノ酸配列番号5によって定義される重鎖可変ドメインおよび配列番号6によって定義される軽鎖可変ドメイン;
d)アミノ酸配列番号7によって定義される重鎖可変ドメインおよび配列番号8によって定義される軽鎖可変ドメイン
からなる群より独立して選択される軽鎖可変ドメインとを含むことを特徴とする、請求項3〜15のいずれか一項に記載の抱合体。 - 抗CCR5抗体が、アミノ酸配列番号1によって定義される重鎖可変ドメイン(VH)およびアミノ酸番号2によって定義される軽鎖可変ドメイン(VL)、アミノ酸配列番号3によって定義される重鎖可変ドメインおよびアミノ酸配列番号4によって定義される軽鎖可変ドメイン、アミノ酸配列番号5によって定義される重鎖可変ドメインおよびアミノ酸配列番号6によって定義される軽鎖可変ドメイン、またはアミノ酸配列番号7によって定義される重鎖可変ドメインおよびアミノ酸配列番号8によって定義される軽鎖可変ドメイン;
アミノ酸グリシン(G)およびアスパラギン(N)、トリペプチドGST、および配列番号36〜62、および配列番号67〜70からなる群より選択されるリンカー;ならびに
配列番号29〜35および配列番号73によって定義されるペプチドの群より選択される抗膜融合ペプチド
を含むことを特徴とする、請求項3〜16のいずれか一項に記載の抱合体。 - 配列番号29〜35および配列番号73の群より選択される抗膜融合ペプチドを含むことを特徴とする、請求項3〜16のいずれか一項に記載の抱合体。
- 配列番号2の2つの軽鎖可変ドメイン、配列番号1の重鎖可変ドメインを各々含むタイプ(2)の2つの抱合体、配列番号40のリンカーおよび配列番号33の抗膜融合ペプチドを含むことを特徴とするか、配列番号4の2つの軽鎖可変ドメイン、配列番号3の重鎖可変ドメインを各々含むタイプ(2)の2つの抱合体、配列番号40のリンカーおよび配列番号33の抗膜融合ペプチドを含むことを特徴とするか、配列番号6の2つの軽鎖可変ドメイン、配列番号5の重鎖可変ドメインを各々含むタイプ(2)の2つの抱合体、配列番号40のリンカーおよび配列番号33の抗膜融合ペプチドを含むことを特徴とするか、または配列番号8の2つの軽鎖可変ドメイン、配列番号7の重鎖可変ドメインを各々含むタイプ(2)の2つの抱合体、配列番号40のリンカーおよび配列番号33の抗膜融合ペプチドを含むことを特徴とする、請求項3〜18のいずれか一項に記載の抱合体。
- 抗CCR5抗体が、アミノ酸S228、L234、L235、および/またはD265における突然変異を有し、IgG4サブクラスまたはIgG1もしくはIgG2サブクラスであり、および/またはPVA236突然変異を含有することを特徴とする、請求項3〜19のいずれか一項に記載の抱合体。
- IgG4サブクラスの抗CCR5抗体が、突然変異S228Pを有し、およびIgG1サブクラスの抗CCR5抗体が、突然変異L234AおよびL235Aを有することを特徴とする、請求項20に記載の抱合体。
- a)請求項1〜21のいずれか一項に記載の抱合体の発現に適した条件下で、請求項1〜21に記載の抱合体をコードする1つまたはそれ以上の核酸分子を含有する1つまたはそれ以上のプラスミドを含有する細胞を培養すること、
b)細胞または細胞培養上清から抱合体を回収すること
を含むことを特徴とする、請求項1〜21のいずれか一項に記載の抱合体の産生のための方法。 - 請求項1〜21のいずれか一項に記載の抱合体を、医薬的に許容され得る賦形剤または担体と共に含有する、医薬組成物。
- ウイルス感染の処置のための薬物の製造のための、請求項1〜21のいずれか一項に記載の抱合体の使用。
- ウイルス感染が、HIV感染であることを特徴とする、請求項24に記載の使用。
- 抗ウイルス処置の必要のある患者の処置のための、請求項1〜21のいずれか一項に記載の抱合体の使用。
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