JP2010012218A - 超音波医療装置 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】本発明は、酸化チタン材料(酸化チタン単独または酸化チタン複合材料)で被覆された医療機器(酸化チタンコート医療機器10)と、超音波照射手段20とからなる超音波医療装置に関する。医療機器の表面に存在する酸化チタン材料に超音波を照射することによって、当該医療機器表面において抗菌性、血管新生の促進、並びに血栓およびバイオフィルム分解などの優れた効果を発揮する。
【選択図】図1
Description
(i)活性基を有する高分子基材と、アミノ基を有する酸化チタンとからなり、上記活性基とアミノ基とが化学結合してなる;
(ii)酸化チタンが有する水酸基と、高分子基材が有し且つ当該水酸基と化学結合可能な官能基とが、化学結合してなる。
本発明の超音波医療装置を構成する「酸化チタンコート医療機器」は、酸化チタン材料で表面が被覆された医療機器である。
ここで「酸化チタン材料」とは、酸化チタンのみからなる材料(すなわち酸化チタン)、または高分子基材の表面に酸化チタンが被覆されてなる酸化チタン複合材料を意味する。ここで上記酸化チタンとしては、特に限定されるものではなく、岩波 理化学辞典 第4版(岩波書店)に記載されている酸化チタンが利用可能である。例えば、化学式 TiO2で表される二酸化チタン等が本発明において利用可能である。なお、上記二酸化チタンTiO2であれば、その表面に水酸基を有している。具体的に説明すると、上記TiO2の場合、酸化チタンの表面を最も多く占めている結晶面、すなわち、アナターゼ型の(001)面とルチル型の(110)面とには、2種類の水酸基が存在している。その1つは、Ti4+と結合しているターミナルOH基であり、もう1つは、2個のTi4+と結合しているブリッジOH基である(清野学著、酸化チタン 物性と応用、技法堂出版、2000を参照のこと)。
上記Zは、各種合成樹脂等の有機材料(高分子基材または高分子基材が有する活性基)と化学結合することができる反応性官能基であればよく、具体的には、例えば、ビニル基、エポキシ基、アミノ基、(メタ)アクリロキシ基、メルカプト基等が挙げられる。すなわち、本実施の形態で使用されるシランカップリング剤は、少なくとも反応性官能基を有している。また、上記Si−(OR)3は、酸化チタンと化学結合することができる官能基であればよく、具体的には、ORとしては、例えば、メトキシ基、エトキシ基等が挙げられる。また、上記化学式中の反応性官能基Zと、Siとは、高分子鎖で結合されていてもよく、低分子鎖で結合されていてもよく、直接結合されていてもよい。また、上記3つのORは、同じであってもよく、互いに異なっていてもよい。すなわち、上記3つのORのうちの少なくとも1つが酸化チタンと化学結合することができる官能基であればよい。
上記酸化チタン材料がその表面に被覆される医療機器としては、例えば体内埋設型医療機器、体内外連結用医療機器、または体表面接触型医療機器などが挙げられる。体内埋設型医療機器は体内に埋設される医療機器であり、例えば、人工心臓、ペースメーカー、埋め込み型除細動器、人工弁、人工弁輪、人工血管、ステント、人工関節、人工骨頭、内固定材、ミニ・マイクロプレートシステム、創外固定器、脊椎固定システム、人工靱帯、人工骨、人工鼻、人工喉頭、人工肛門、人工膀胱、人工内耳などが挙げられる。また体内外連結用医療機器は、体内と体外を連結するための医療機器であり、例えば、カテーテル、チューブ、カテーテルアクセスポート、胃ろう、シャントバルブ、脳外用ドレナージ、ブラッドアクセスなどが挙げられる。また体表面接触型医療機器とは、体表面と接触させて使用する医療機器であり、例えば創傷被覆材などが挙げられる。上記の他、輸液フィルターなどの医療機器も本発明において適用され得る。
本発明の超音波医療装置を構成する「超音波照射手段」は、上述の酸化チタンコート医療機器に対して超音波を照射するための手段である。当該超音波照射手段は、上述の酸化チタンコート医療機器に対して殺菌作用、血管新生促進作用、並びに血栓およびバイオフィルム分解作用などを発動させ得る超音波を発生させることができ、当該超音波を酸化チタンコート医療機器に対して照射することができるように構成されているものであれば、特に限定されるものではない。換言すれば、超音波照射手段は、酸化チタンコート医療機器に対して殺菌作用、血管新生促進作用、並びに血栓およびバイオフィルム分解作用などを発動させ得る出力の超音波を発生させることができるものであればよい。上記出力は、照射される酸化チタンコート医療機器の酸化チタン材料の種類、酸化チタン材料による被覆率、酸化チタンコート医療機器の設置の状態、設置場所によって種々異なるため、適宜最適な出力を検討のうえ、採用すればよい。特に限定されるものではないが、上記出力は焦点音響強度ISPTAが1W/cm2以下であることが好ましく、0.2W/cm2程度であることがさらに好ましい。
本発明の超音波医療装置の使用方法は、体内に埋設された酸化チタンコート医療機器に対して、超音波照射手段を用いて超音波を照射すればよい。照射される超音波の出力、周波数、照射時間、超音波の種類(連続波、パルス波、バースト波、および定在波)等の詳細な条件については特に限定されるものではなく、目的や対象となる生体に応じて最適な条件を検討の上、採用すればよい。
<方法>
酸化チタン複合材料への超音波照射によるOHラジカル発生を評価するため、共振周波数500kHz、開口素子直径40mm、曲率半径(焦点距離)30mmを持つ、チタン酸ジルコン酸鉛(「PZT」)製の焦点型超音波プローブを製作した(その構成については、図1の超音波プローブ(21)を参照のこと)。超音波プローブ設計の際は、必要な音響出力強度と焦点域でのビーム幅を考慮し、圧電材特性を考慮した数値シミュレーションにより、周波数と開口直径を決定した。また焦点距離については、照射領域が皮膚浅部であることを考慮して選定した。製作された超音波プローブの音場特性として、中心軸上音圧レベルよりも6dB低下した半値幅で定義されるビーム幅を感圧紙法(「超音波便覧」、超音波便覧編集委員会編、丸善株式会社、1999、pp.471.(ISBN 4-621-04633-0))で調べた結果、ビーム幅は5.8mmであり、ほぼ設計通りであることを確認した。
酸化チタン粒子(粒子径200〜300nm、アナタース型、比表面積5m2/g、石原産業株式会社製)を120℃で24時間乾燥させた後、300ml容の3口フラスコに上記酸化チタン粒子5.0gと、無水トルエン150ml、γ−アミノプロピルトリエチルシラン(信越シリコーン株式会社製、品番:KBE-903)5.0mlを入れ、120℃で、6時間還流することにより酸化チタンにアミノ基を導入したアミノ化酸化チタンを得た。得られたアミノ化酸化チタンを多量のトルエンにて遠沈法にて精製して、60℃で1昼夜乾燥した。
図2に示す実験システムを用い、OHラジカルによる酸化分解力を定量的に評価するため色素脱色試験を行った。色素脱色試験を行うにあたり、「岡田健吾、工藤信樹、山本克之:第80回日本超音波医学会講演抄録集、pp.333、2007」を参考にした。色素脱色試験には、希釈したメチレンブルー溶液を色素水溶液として用いた。酸化チタン複合体シートは、直径30mmの円筒形試料槽の下面に貼り付けて固定された。試料槽中にはメチレンブルー溶液を入れ、シート上に色素が十分吸着するまで放置した後、超音波照射を行って色素分解能を評価した。超音波照射条件は周波数500kHz、電圧10V、音響出力強度0.6W/cm2の連続波にて行われた。なお、この音響強度は、日本超音波医学会で定められる連続波超音波出力の安全基準(1W/cm2)を十分に満たしている。照射時間は最大で240分までとした。
色素脱色試験の結果を図3に示す。図3において、上記4パターンの結果を、それぞれ(1)US(-)AmTiO2(-)、(2)US(+)AmTiO2(-)、(3)US(-)AmTiO2(+)、(4)US(+)AmTiO2(+)で表記した。図3の縦軸の吸光度変化は、測定開始時を起点として、色素分解による吸光度の減少分を表しており、この変化分がOHラジカル発生量と正の相関があると見なして評価した。図3から、超音波のみを照射したUS(+)AmTiO2(-)の場合、および酸化チタン複合体シートに超音波を照射しなかった場合ではOHラジカルが若干増加したのに対し、酸化チタン複合体シートに超音波を照射したUS(+)AmTiO2(+)の場合において、吸光度は顕著に変化しOHラジカルが顕著に増加したことが確認された。よって、酸化チタン複合体シートに超音波照射することによって、OHラジカルが発生し、殺菌作用や抗菌作用を酸化チタン複合体シート上に発動させ得ることを示している。
<方法>
酸化チタン複合体シートに対する超音波照射による血管新生促進効果を確認すべく、超音波照射(US)の有無と酸化チタン複合体シート(AmTiO2)の有無との組み合わせ((1)US(-)AmTiO2(-)、(2)US(+)AmTiO2(-)、(3)US(-)AmTiO2(+)、(4)US(+)AmTiO2(+))の4パターンにおける腫瘍壊死因子(TNFα)産生量を定量した。なおTNFαは、脂肪細胞、マクロファージ、リンパ球などから産生され、血管内皮細胞増殖因子を誘導する間接的な血管新生促進因子として知られている(参考文献:P. Reher, et al., CYTOKINE, 11, 416-423(1999). A.L. Harris, Lancet, 349(suppl II), 13-15(1997).)。さらに上記4パターンにおける細胞生存数も同時に評価した。
ヒト骨髄由来単核細胞(Lot. No 070912B, Lonza Walkersville, Inc., MD, USA)を使用し、10% fetal bovine serum、penicilin/streptomycin(GIBCO)を添加したRPMI1640(GIBCO)培地にて37℃、5% CO2下で培養した。
図2に示された超音波プローブを組み込んだ実験システムを用い、周波数0.5MHz、出力114mW/cm2、連続波5分の至適条件にてサンプルに対して超音波を照射した。
細胞培養管内で、1×106cells/mLに調整された細胞をサンプルシート(直径15mm)上に播種し、24時間培養した。細胞培養管を、図2に示された実験システムの照射槽中に漬けることによって、培養後のサンプルシートに対して、37℃下、5分間超音波照射した。その後、細胞培養管を照射槽から取り出し、さらにインキュベーター内で2時間培養を行った。その後、細胞培養管から細胞培養液を分離し、2000×g、5分間遠心分離に供して上清を採取した。Tumour Necrosis Factor Alpha Human, Biotrak ELISA System(GE Healthcare UK)を使用し、ウェルプレートの各ウェルに検体およびビオチン化TNFα抗体を入れ、室温で2時間インキュベートした。洗浄液で3回洗浄し、各ウェルにHRP標識ストレプトアビジン100μLを加え、さらに室温で30分間インキュベートした。再度、洗浄液で洗浄後、発光基質溶解液を100μL加え、暗視下、30分間インキュベートし、450nmの吸光度を測定した。その後、検量線から細胞培養液上清中のTNFαの量を算出した。
超音波照射後の、それぞれの細胞培養管にcell counting Kit8(sanko junyaku, Tokyo, Japan)を入れ、37℃、CO2 5%のインキュベーター内で3時間染色を行った。その後、450nmの吸光度を測定することによって、細胞生存数を測定した。超音波照射による細胞への影響を調べるためである。
図4に細胞培養液上清中のTNFαを測定した結果を示す。図4中「*」はスチューデントT検定の有意差検定(n=4)において5%の危険率で有意差があったことを示し、「**」は1%の危険率で有意差があったことを示し、「ns」は有意差がなかったことを示す。
<方法>
(細胞培養)
ヒト骨髄由来単核細胞(Lot.No 071853A, Lonza Walkersville, Inc., MD, USA)を使用し、RPMI medium 1640(GIBCO)、FBS (-)にて37℃、5% CO2下で培養した。
図2に示された超音波プローブを組み込んだ実験システムを用い、周波数493.8kHz、出力225mW/cm2、連続波5分の条件にてサンプルに対して超音波を照射した。
細胞培養管内で、1×106cells/mLに調製された細胞懸濁液をサンプルシート(直径15mmのポリエステル(PET)シート)上に播種し、24時間培養した。細胞培養管を、図2に示された実験システムの照射槽中に漬けることによって、培養後のサンプルシートに対して、37℃下、5分間超音波照射した。その後、細胞培養管を照射槽から取り出し、さらにインキュベーター内で24時間培養を行った。その後、細胞培養管から細胞培養液を採取し、2000×g、5分間遠心分離を行うことで細胞上清を採取した。Amersham Biotrak Vascular Endthelial Growth Factor, Human ELISA System(GE healthcare UK)を使用し、ウェルプレートの各ウェルに検体と希釈液を入れ、室温で2時間インキュベートした。各ウェルの反応液を取り除き3回洗浄液で洗浄した。各ウェルにビオチン化VEGF2次抗体を100μL入れ、室温で1時間インキュベートした。洗浄液で3回洗浄し、各ウェルにHRP標識ストレプトアビジン100μL加え、さらに室温で30分間インキュベートした。再度、洗浄液で洗浄後、発光基質溶解液を100μL加え、暗視下30分後、450nmの吸光度を測定した。その後、検量線から細胞上清中のVEGFの量を算出した。
図6に細胞上清中のVEGFを測定した結果を示す。図6中「*」はスチューデントT検定の有意差検定(n=3)において5%の危険率で有意差があったことを示し、「**」は1%の危険率で有意差があったことを示す。
<方法>
(動物種)
Japanese whiteウサギ、オス、体重約2.5kgを動物実験に使用した。
セルシン(武田薬品工業株式会社)0.6mL、バイトリル(バイエル株式会社)0.4mLをウサギの皮下に注射し、ウサギ固定器にて固定した。人工呼吸器にて吸入麻酔を行い、麻酔確認後、毛刈りを行った。耳介をサージカルテープで固定し、消毒用エタノールとヒビスクラブ消毒液4%(大日本住友製薬株式会社、登録商標)にて消毒、さらにイソジン(明治製菓株式会社、登録商標)で術部の消毒を行った。フェザーメスNo.11にて耳介表皮を約5mm切開、皮下ポケットを形成し、両耳介の近位側に直径5mmサンプル(未処理ポリエステル)、遠位側にサンプル(PETシートにアミノ化酸化チタン粒子を化学結合させて作製された酸化チタン複合体シート)をそれぞれ埋植した。サンプルが完全に埋植されたのを確認後、6.0ナイロン糸で1針縫合、閉創を行った。
図1に示される超音波プローブ21を用い、周波数493.8kHz、出力10V(694mW/cm2)、連続波1分の条件にて、サンプル埋植日から2週間連続でサンプルが埋植された箇所に超音波照射を行った。さらに第1回目照射終了日から8日後、周波数500.0kHz、出力5V(81.3mW/cm2)、連続波5分の至適条件にて、サンプルに対して2週間連続で超音波照射した。
ソムノペンチル(共立製薬株式会社)の静脈内投与によりウサギを犠牲死させ、検体を採取し10%(w/v)ホルマリンで固定を行った。パラフィン切片を作製し、ヘマトキシリン−エオジン(HE)染色にて評価した。
図7にHE染色した検体の写真を示す。図7(a)は酸化チタン複合体シートを用い且つ超音波照射なしの結果(US(-)AmTiO2(+))を示し、図7(b)は酸化チタン複合体シートを用い且つ超音波照射ありの結果(US(+)AmTiO2(+))を示し、図7(c)は未処理のPETシートを用い且つ超音波無しの結果(US(-)AmTiO2(-))を示し、図7(d)は未処理のPETシートを用い且つ超音波照射ありの結果(US(+)AmTiO2(-))の結果をそれぞれ示す。
11 カテーテル
12 経皮デバイス
20 超音波照射手段
21 超音波プローブ
22 カプラ
23 波形発生器
24 RF信号増幅器
25 中継ケーブル
26 伝送ケーブル
27 振動素子
28 隙間
30 皮膚
31 焦点位置
100 超音波医療装置
Claims (16)
- 酸化チタン材料で表面が被覆された医療機器と、当該医療機器に対して超音波を照射するための超音波照射手段とを備え、
当該酸化チタン材料が、酸化チタンのみからなる材料、または高分子基材の表面に酸化チタンが被覆されてなる酸化チタン複合材料であることを特徴とする超音波医療装置。 - 上記超音波照射手段は、生体安全基準内の出力の超音波を照射することができる手段である、請求項1に記載の超音波医療装置。
- 上記超音波照射手段は、超音波の出力が調整可能となっている、請求項1または2に記載の超音波医療装置。
- 上記超音波照射手段は、連続波、パルス波、バースト波、および定在波からなる群から選択される1種類以上の超音波を発生することができる手段である、請求項1ないし3のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記超音波照射手段は、超音波を集束させて照射することができる手段である、請求項1ないし4のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記超音波照射手段は、カプラを備える、請求項1ないし5のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記超音波照射手段を構成する振動子は、電気機械結合係数が10%以上の圧電体からなる、請求項1ないし6のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記超音波照射手段を構成する振動子が、水晶、水溶性結晶、圧電セラミックス、高結合圧電結晶、高分子圧電材料、複合圧電材料、電着圧電膜材料のいずれか一つの圧電体、または上記材料のいずれかを組み合わせた圧電体からなる、請求項7に記載の超音波医療装置。
- 上記超音波照射手段は、150kHz以上の周波数の超音波を発生することができる手段である、請求項1ないし8のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記超音波照射手段は、単一送信において高調波または多周波を含む超音波を発生することができる手段である、請求項1ないし9のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記酸化チタン複合材料は、活性基を有する高分子基材と、当該活性基と反応可能な反応性官能基を有する酸化チタンとからなり、上記活性基と反応性官能基とが化学結合してなることを特徴とする請求項1ないし10のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記酸化チタン複合材料は、活性基を有する高分子基材と、アミノ基を有する酸化チタンとからなり、上記活性基とアミノ基とが化学結合してなることを特徴とする請求項1ないし10のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記酸化チタン複合材料は、酸化チタンが有する水酸基と、高分子基材が有し且つ当該水酸基と化学結合可能な官能基とが、化学結合してなることを特徴とする請求項1ないし10のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記酸化チタン複合材料が、以下の(i)および(ii)のいずれか一方または両方を満たすものである、請求項1ないし10のいずれか1項に記載の超音波医療装置:
(i)活性基を有する高分子基材と、アミノ基を有する酸化チタンとからなり、上記活性基とアミノ基とが化学結合してなる;
(ii)酸化チタンが有する水酸基と、高分子基材が有し且つ当該水酸基と化学結合可能な官能基とが、化学結合してなる。 - 上記医療機器は、酸化チタン材料で表面がフロック加工により被覆された医療機器である、請求項1ないし14のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
- 上記医療機器は、体内埋設型医療機器、体内外連結用医療機器、または体表面接触型医療機器である、請求項1ないし15のいずれか1項に記載の超音波医療装置。
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