JP2009106159A

JP2009106159A - 融合ポリペプチド結合磁気微粒子による細胞分離方法

Info

Publication number: JP2009106159A
Application number: JP2007278362A
Authority: JP
Inventors: Tadashi Matsunaga; 是松永; Haruko Takeyama; 春子竹山; Tomoko Yoshino; 知子吉野; Masayuki Takahashi; 正行高橋
Original assignee: Tokyo University of Agriculture and Technology NUC
Current assignee: Tokyo University of Agriculture and Technology NUC
Priority date: 2007-10-26
Filing date: 2007-10-26
Publication date: 2009-05-21
Also published as: WO2009054136A1

Abstract

【課題】簡便で細胞生存に対する悪影響のない、高収率且つ高純度で細胞を分離する方法の提供。
【解決手段】以下の工程：１）磁性細菌の磁気微粒子膜上に発現できるアミノ酸配列からなるポリペプチド；上記ポリペプチドのアミノ酸配列と実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチド；及びそれらの部分ポリペプチドから選択されるアンカーポリペプチドとプロテインＧの抗体結合ドメインを有する抗体結合性ポリペプチドとの融合ポリペプチドを、その有機膜中に有する磁性細菌由来磁気微粒子に、標的細胞と結合し得る抗体を固定化する工程；２）該抗体を固定化した磁性細菌由来磁気微粒子に、標的細胞を接触させる工程；３）該標的細胞と結合した磁気微粒子を磁気回収する工程、を行うことを特徴とする、試料中の標的細胞の分離又は検出方法。
【選択図】なし

Description

本発明は、磁性細菌由来磁気微粒子を利用した、試料中の標的細胞を磁気的に分離又は検出する方法及びそのためのキットに関する。

細胞医療は、患者から分離した特定の細胞を、体外にて様々な処理を施した後に再び患者に戻す医療技術であり、悪性腫瘍や感染症など既存の外科的治療や投薬治療が困難とされている様々な疾患に対しても高い治療効果が望める次世代医療として期待されている。その細胞医療を支える基礎技術として細胞分離技術がある。

元来、細胞分離技術として、蛍光標識抗体を用いて標的細胞を分離するフローサイトメーターを用いたセルソーティングシステム（ＦＡＣＳ：Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ−ＡｃｔｉｖａｔｅｄＣｅｌｌＳｏｒｔｅｒ）が開発されてきたが、ＦＡＣＳは、フローサイトメトリーという高価で大規模な装置、それを使用するための熟練した技術が必要であることや、スループットが低いといった問題を有する。一方、抗体を固定化した磁性粒子を用いて標的細胞を磁気標識した後、外部磁場により細胞集団から標的細胞の分離を図る磁気細胞分離システムは、ＦＡＣＳと比較し迅速、簡便且つハイスループットに標的細胞の分離が可能である。

磁気細胞分離システムに用いられる磁性粒子には、マイクロサイズのものとナノサイズのものとが開発されてきた。常磁性体であるマイクロ磁性粒子（非特許文献１；非特許文献２；非特許文献３）は、一般的な永久磁石により容易に回収が可能である。しかし、その大きさが故に、細胞表面に結合したマイクロ磁性粒子が分離後の細胞の増殖や代謝に影響を与えることが報告されている。これに対し、ナノ磁性粒子を用いた磁気細胞分離システム（非特許文献４；非特許文献５；非特許文献６）を用いて分離された細胞は、正常に増殖・分化し、細胞の機能を保持し、また、生体内へ直接投与した場合においても害を与えないとの報告がある。

従って、現行の磁気細胞分離システムでは主にナノ磁性粒子が利用されるようになってきている。しかし、粒径や形状の均一なナノ磁性粒子を作製するには高い技術が必要である。また、ナノ磁性粒子は超常磁性体であるために、高効率な分離、回収には強磁性のスチールウールを充填した特殊なカラムを用いなければならず、その利用には煩雑さやカラム詰まりによる収率低下の問題が残されている(非特許文献７)。この欠点は、より大きな細胞を分離する場合、特に問題となる。
Babcock, G. J., Mirzabekov, T., Wojtowicz, W., and Sodroski, J. (2001), J Biol Chem 276, 38433-40. Luxton, R., Badesha, J., Kiely, J., and Hawkins, P. (2004), Anal Chem 76, 1715-9. Safarik, I., and Safarikova, M. (1999), J Chromatogr B Biomed Sci Appl 722, 33-53. Cui, Y., Wang, Y., Hui, W., Zhang, Z., Xin, X., and Chen, C. (2005), Biomed Microdevices 7, 153-6. Hutten, A., Sudfeld, D., Ennen, I., Reiss, G., Hachmann, W., Heinzmann, U., Wojczykowski, K., Jutzi, P., Saikaly, W., and Thomas, G. (2004), J Biotechnol 112, 47-63. Weissleder, R., Kelly, K., Sun, E. Y., Shtatland, T., and Josephson, L. (2005), Nat Biotechnol 23, 1418-23. Miltenyi, S., Muller, W., Weichel, W., and Radbruch, A. (1990), Cytometry 11, 231-8.

本発明は、簡便で、細胞の生存に悪影響を与えない、高収率且つ高純度で細胞を分離する方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、磁性細菌が菌体内で産生する磁気微粒子において、それを被覆する有機膜に、特定のアンカーポリペプチドと抗体結合ドメインを有する抗体結合性ポリペプチドとの融合ポリペプチドを発現させ、その抗体結合性ポリペプチド部分に抗体を結合させて抗体固定化磁気微粒子を作製し、この磁気微粒子に当該抗体を介して標的細胞を結合させ、そしてその粒子を磁気的に回収することにより、簡便に、高収率且つ高純度で細胞を分離することができること、及び分離された細胞生存に対する悪影響がほとんど見られないことを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は、以下の発明に係るものである。
（１）以下の工程１）〜３）を行うことを特徴とする、試料中の標的細胞の分離又は検出方法：
１）配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド；配列番号１で示されるアミノ酸配列と実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチド；及びそれらの部分ポリペプチドから選択されるアンカーポリペプチドとプロテインＧの抗体結合ドメインを有する抗体結合性ポリペプチドとの、融合ポリペプチドを、その有機膜中に有する磁性細菌由来磁気微粒子に、標的細胞と結合し得る抗体を固定化する工程；
２）該抗体を固定化した磁性細菌由来磁気微粒子に、標的細胞を接触させる工程；
３）該標的細胞と結合した磁気微粒子を磁気回収する工程。
（２）磁気カラムを使用しない（１）記載の方法。
（３）有機膜から融合ポリペプチド以外のポリペプチドが除去されてなる（１）又は（２）記載の方法。
（４）配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド；配列番号１で示されるアミノ酸配列と実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチド；及びそれらの部分ポリペプチドから選択されるアンカーポリペプチドとプロテインＧの抗体結合ドメインを有する抗体結合性ポリペプチドとの融合ポリペプチドを、その有機膜中に有する磁性細菌由来磁気微粒子、該抗体結合性ポリペプチド及び標的細胞と結合し得る抗体、並びに該抗体を介して該標的細胞と結合した該磁気微粒子を磁気回収するための手段を含有することを特徴とする、試料中の標的細胞の分離又は検出キット。
（５）前記手段が磁気カラムを含まない、（４）記載のキット。
（６）有機膜から融合ポリペプチド以外のポリペプチドが除去されてなる（４）又は（５）記載のキット。

本発明の方法によれば、磁性細菌由来磁気微粒子を用いて、簡便に、高収率且つ高純度で、細胞を磁気的に分離することが可能となる。また本発明の方法によれば、従来法における細胞増殖への影響や分離手順の煩雑さの問題が解消され、また磁気カラムを使用しないので、カラム詰まりによる収率低下の問題が解決される。

本発明において、「磁性細菌」とは、体内に磁気微粒子を蓄積する能力を有する細菌をいう。磁性細菌の例としては、Ｍａｇｎｅｔｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍ種の微生物（例えば、ＭａｇｎｅｔｏｓｐｉｒｉｌｌｕｍｍａｇｎｅｔｉｃｕｍＡＭＢ−１（ＦＥＲＭＢＰ−５４５８）、ＭＳ−１（ＩＦＯ１５２７２、ＡＴＣＣ３１６３２、ＤＳＭ３８５６）、ＳＲ−１（ＩＦＯ１５２７２ＤＳＭ６３６１）、及びＤｅｓｕｌｆｏｖｉｂｒｉｏ種の微生物（例えば、Ｄｅｓｕｌｆｏｖｉｂｒｉｏｓｐ．ＲＳ−１（ＦＥＲＭＰ−１３２８３））等が挙げられる。このうち、ＡＭＢ−１が好ましい。

本発明において、「ポリペプチド」とは、複数のペプチド結合を含む物質のことをいい、「ペプチド」および「タンパク質」の両方を包含する概念である。一般に、「ペプチド」とは、ポリペプチドを含む高分子のうち、分子量１万以下のものをいい、「タンパク質」とは、ポリペプチドを含む高分子のうち、分子量１万以上のものをいう。

本発明において、「融合ポリペプチド」とは、２以上のタンパク質またはそのフラグメントが連結されている、天然には見いだされないポリペプチドをいう。

本発明において、「磁性細菌由来磁気微粒子」とは、磁性細菌がその菌体内で産生し得る磁気微粒子をいう。このような磁性細菌により産生された磁気粒子は、磁性細菌粒子（ＢａｃＭＰｓ：ＢａｃｔｅｒｉａｌＭａｇｎｅｔｉｃＰａｒｔｉｃｌｅｓ）と称される。ＢａｃＭＰｓは、粒径が５０〜１００ｎｍのナノ磁性粒子である。ＢａｃＭＰｓは、単磁区構造を持つ強磁性体であり、弱い磁界に対しても強く反応する為、水溶液中で効率的に磁気回収が行える。またＢａｃＭＰｓは、表面に荷電を有する脂質膜（有機膜）に覆われている為、水溶液中での分散性にも優れている。

本発明のＢａｃＭＰｓは、その有機膜中に、以下に示すアンカーポリペプチドと抗体結合性ポリペプチドとの融合ポリペプチドを有する。

「アンカーポリペプチド」は、磁性細菌の細胞膜上又はＢａｃＭＰｓを覆う脂質二重膜である磁気微粒子膜（有機膜）上に、その一部または全部が結合して発現されるポリペプチドであって、これを含む融合ポリペプチドを当該膜にアンカリングさせる役割を有するものである。本発明のアンカーポリペプチドは、以下の（Ａ）〜（Ｃ）から選択される：
（Ａ）配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド；
（Ｂ）配列番号１で示されるアミノ酸配列と実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチド；
（Ｃ）上記（Ａ）又は（Ｂ）の部分ポリペプチド。
配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチドの例としては、例えば、Ｍｍｓ１３（ＡｒａｋａｋｉＡ．ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７８，８７４５−５０，２００３）が挙げられる。Ｍｍｓ１３は、Ｍａｇｎｅｔｏｓｐｏｒｉｌｌｕｍ種の磁性細菌に由来する膜タンパク質である。

配列番号１で示されるアミノ酸配列と実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチドもまた、本発明のアンカーポリペプチドとして使用できる。ここで、「実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチド」とは、そのアンカーポリペプチドとしての機能を有する限りにおいて、配列番号１で示されるアミノ酸配列において、１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチドをいう。

１又は複数個の範囲としては、そのアンカーポリペプチドとしての機能を有する限りにおいて限定されないが、例えば、１〜３０個、好ましくは１〜２０個、より好ましくは1〜数個（例えば、１〜１０個、より好ましくは１〜５個）が挙げられる。特定アミノ酸配列において、1又は複数個のアミノ酸配列を置換、欠失、挿入又は付加する技術は公知であり、例えば、サイトスペシフィック・ミュータゲネシスなどのような各種方法を採用することができる。

「実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチド」としてはまた、そのアンカーポリペプチドとしての機能を有する限りにおいて限定されないが、配列番号１で示されるアミノ酸配列と、８０％以上の配列同一性、好ましくは８５％以上の配列同一性、より好ましくは９０％以上の配列同一性、さらにより好ましくは９５％以上の配列同一性を有するポリペプチドが挙げられる。アミノ配列の同一性は、リップマン−パーソン法（Ｌｉｐｍａｎ−Ｐｅａｒｓｏｎ法；Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２７，１４３５（１９８５））によって計算される。具体的には、遺伝情報処理ソフトウェアＧｅｎｅｔｙｘ−Ｗｉｎ（Ｖｅｒ．５．１．１；ソフトウェア開発）のホモロジー解析（ＳｅａｒｃｈＨｏｍｏｌｏｇｙ）プログラムを用いて、Ｕｎｉｔｓｉｚｅｔｏｃｏｍｐａｒｅ（ｋｔｕｐ）を２として解析を行うことにより算出される。

上記における、「アンカーポリペプチドとしての機能」とは、磁気微粒子膜への局在化を指示する機能をいい、好ましくは、Ｍｍｓ１３が有する当該機能をいう。

上記ポリペプチドの部分ポリペプチドであって、磁気微粒子膜への局在化を指示する機能を有するものもまた、本発明の好ましいアンカーポリペプチドとして用いることができる。好ましい部分ポリペプチドとしては、配列番号１で示されるアミノ酸配列のポリペプチドの少なくとも１〜８７番アミノ酸残基からなる、膜結合フラグメントを含むポリペプチドが挙げられる。

本発明の抗体結合性ポリペプチドは、プロテインＧの抗体結合ドメインを有するポリペプチドであるが、これには、抗体結合性タンパク質プロテインＧ（配列番号２）、その抗体結合ドメインを含むフラグメント、及びそれらと実質的に同一なポリペプチドが包含される。

プロテインＧは、配列番号２で示されるアミノ酸配列からなり、複数の抗体結合ドメイン（配列番号２の、アミノ酸残基１９０〜２４４番（Ｂ１ドメイン）、アミノ酸残基２６０〜３１４番（Ｂ２ドメイン）またはアミノ酸残基３３０〜３８４番（Ｂ３ドメイン））を有する抗体結合性タンパク質である。本発明の方法で使用される抗体結合性ポリペプチドとしては、このプロテインＧの抗体結合ドメインの１つ又は複数を有するポリペプチドを使用することができる。さらに、プロテインＧ又はその抗体結合ドメインを含むポリペプチドと実質的に同一なポリペプチドもまた、本発明の抗体結合性ポリペプチドとして使用することができる。ここで、「実質的に同一なポリペプチド」とは、その抗体結合性ポリペプチドとしてプロテインＧと同等の機能を有する限りにおいて、プロテインＧ又はその抗体結合ドメインのアミノ酸配列において、１又は複数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は付加されたアミノ酸配列からなるポリペプチドをいう。

１又は複数個の範囲としては、その抗体結合性ポリペプチドとしてプロテインＧと同等の機能を有する限りにおいて限定されないが、例えば、１〜３０個、好ましくは１〜２０個、より好ましくは1〜数個（例えば、１〜１０個、より好ましくは１〜５個）が挙げられる。特定アミノ酸配列において、1又は複数個のアミノ酸配列を置換、欠失、挿入又は付加する技術は公知であり、例えば、サイトスペシフィック・ミュータゲネシスなどのような各種方法を採用することができる。

「実質的に同一なポリペプチド」としてはまた、その抗体結合性ポリペプチドとしてプロテインＧと同等の機能を有する限りにおいて限定されないが、プロテインＧ又はその抗体結合ドメインのアミノ酸配列と、８０％以上の配列同一性、好ましくは８５％以上の配列同一性、より好ましくは９０％以上の配列同一性、さらにより好ましくは９５％以上の配列同一性を有するポリペプチドが挙げられる。アミノ配列の同一性は、前述のアンカーポリペプチドの説明に関連して記載された手法と同様の手法で計算することができる。

本発明の方法において使用される、アンカーポリペプチドと抗体結合性ポリペプチドとの融合ポリペプチドを有する磁気微粒子は、本発明者らによって既に開示されている方法によって作製することができる（特許第３６２５５４４号公報；ＷＯ９７／０３５９６４号パンフレット）。あるいは、本発明者らにより、遺伝子組み換え技術によりＢａｃＭＰｓ膜タンパク質をアンカー分子として外来タンパク質をＢａｃＭＰｓ上にディスプレイする技術が開発されている（Ｍａｔｓｕｎａｇａ，Ｔ．，Ａｒａｋａｋｉ，Ａ．，ａｎｄＴａｋａｈｏｋｏ，Ｍ．（２００２），ＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌＢｉｏｅｎｇ７７，６１４−８；Ｏｔａ，Ｈ．，Ａｒａｋａｋｉ，Ａ．，Ｔａｎａｋａ，Ｔ．，Ｔａｋｅｙａｍａ，Ｈ．，ａｎｄＭａｔｓｕｎａｇａ，Ｔ．（２００３），ＢｉｏｍｏｌＥｎｇ２０，３０５−９；Ｔａｎａｋａ，Ｔ．，ａｎｄＭａｔｓｕｎａｇａ，Ｔ．（２００１），ＢｉｏｓｅｎｓＢｉｏｅｌｅｃｔｒｏｎ１６，１０８９−９４；Ｙｏｚａ，Ｂ．，Ａｒａｋａｋｉ，Ａ．，ａｎｄＭａｔｓｕｎａｇａ，Ｔ．（２００３），ＪＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ１０１，２１９−２８）。具体的には、本発明のアンカーポリペプチドと抗体結合性ポリペプチドとの融合ポリペプチドを有する磁気微粒子は、アンカーポリペプチドをコードする遺伝子断片（例えば、配列番号１で示されるアミノ酸配列又はその断片をコードする塩基配列からなるポリヌクレオチド）と抗体結合性ポリペプチドをコードする遺伝子断片（例えば、配列番号２で示されるアミノ酸配列又はその断片をコードする塩基配列からなるポリヌクレオチド）との融合ＤＮＡを含む組換えベクターを磁性細菌に導入して菌を形質転換させ、この形質転換された磁性細菌を培養して菌体内で上記融合ＤＮＡを発現させることにより、作製することができる。

組換えベクターとしては、当該細菌内で複製可能なものであって、上記融合ポリペプチドの発現を磁性細菌内で転写制御可能なＤＮＡ断片をプロモーターとして含み、且つ当該プロモーターの下流に当該融合ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列が挿入されたものが使用される。組換えベクターは、当業者が通常行う手順に従って作製することができる。作製には、磁性細菌内で複製可能な公知のベクターのいずれかを用いればよい。例示的ベクターは、プロモーター、複製起点、およびベクターを導入した細菌の選択を容易にするための選択マーカーを有し、好ましくは、プロモーターの下流に、遺伝子の挿入を容易にするための制限酵素部位を有する。さらに、挿入された遺伝子の発現を増強および安定化させるための３’非翻訳領域を有していてもよい。ベクターは、好ましくはプラスミドであり、例えば、特許第３６２５５４４号公報に記載されるｐＲＫ４１５、特開平１１−２８５３８７公報に記載されるｐＭＳ−Ｔ１またはその誘導体を好適に用いることができる。あるいは、アンカーポリペプチド及びプロモーターが既に組み込まれた公知のプラスミド（例えば、ｐＵＭＧＰ１６Ｍ１３（ＹｏｓｈｉｎｏＴ．ａｎｄＭａｔｓｕｎａｇａＴ．，Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，７２（１），４６５−４７１（２００６））を使用してもよい。

ベクターに組み込まれるプロモーターとしては、好適には、磁性細菌膜タンパク質を高効率でさせ得るプロモーターが使用される。より好ましいプロモーターとしては、特開２００６−７５１０３で開示される、Ｐｍｓｐ１、Ｐｍｓｐ２及びＰｍｓｐ３が挙げられる。

融合ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列は、抗体結合性ポリペプチド遺伝子断片をアンカーポリペプチド遺伝子断片の３’末端側及び５’末端側のいずれか一方に融合させたものでもよいし、両末端に融合させたものでもよい。一端のみに融合させた場合には、もう一方の端にマーカー遺伝子等の異なる遺伝子を融合させることもできる。両末端に融合させた場合、磁気微粒子への抗体結合性ポリペプチドの固定化量を向上させることができる。

作製された組換えベクターを磁性細菌に導入することにより、細菌を形質転換させる。導入には、当該技術分野において知られるいずれの方法を用いてもよく、例えば、接合伝達、塩化カルシウム法、マイクロインジェクション、エレクトロポレーション、遺伝子銃等の公知の方法を用いることができる。形質転換した細菌は公知の方法で培養され、磁気微粒子を産生する。

こうして産生された磁気微粒子上には、それを被覆する有機膜（磁性微粒子膜）にアンカーポリペプチドを介してアンカリングした状態で、融合ポリペプチドが発現している。融合ポリペプチドと磁気微粒子との連結は、融合ポリペプチドのアンカーポリペプチド部分に拠っているため、融合ポリペプチドの抗体結合性ポリペプチド部分は、その天然のコンフォメーション又はそれに近いコンフォメーションをとることができ、したがって、本来の機能を保持することができる。すなわち、本発明の磁気微粒子は、その表面の抗体結合性ポリペプチドの抗体結合能が高度に保持されているので、高い細胞結合能を発揮することができる。

磁性細菌により産生された磁気微粒子は、磁性細菌培養物から通常の手法に従って回収することができる。例えば、磁気微粒子は、培養された菌体を破壊又は溶菌した後、遠心分離にかけることで単離することが可能である。

本発明の方法で使用される磁気微粒子において、目的の融合ポリペプチド以外のポリペプチドを除去することができる。除去は、特開２００６−３１４３１４公報に開示されている方法に従って行うことができる。このように目的以外のポリペプチドを除去することにより、非特異的な細胞の吸着を抑制し、目的の細胞の分離効率を向上させることができる。

上記のように作製された磁気微粒子上に存在する融合ポリペプチドの抗体結合性ポリペプチド部分に、標的細胞に対する特異的抗体を結合させて、抗体固定化磁気微粒子を作製し、これと標的細胞を含む試料とを接触させることにより、標的細胞を磁気的に分離することができる。あるいは、上記抗体固定化磁気微粒子を、標的細胞が含まれる可能性のある試料と接触させることにより、その試料中における当該標的細胞の存在の有無を検出することができる。

本発明の方法に用いられる試料としては、標的細胞を含む生体（例えば、動物又は植物の組織、器官、体液、菌体等）及びそれら含み得る検体（例えば、培養物、土壌、水中等）に由来する試料を挙げることができる。これらの試料は、そのまま使用しても、精製して用いてもよく、又は必要に応じて適切な溶媒に懸濁されるか、若しくは適宜希釈されて用いられ得る。

磁気微粒子に固定すべき抗体は、融合ポリペプチドの抗体結合性ポリペプチド部分に結合され得、その結合により分離すべき標的細胞との結合性を失わない任意の抗体が使用できる。本発明で使用される「抗体」とは、標的細胞を特異的に認識する性質を有する限り、抗体又はそのフラグメントを含む。抗体の種類は、抗体結合性ポリペプチドの種類に応じて決定される。例えば、抗体結合性ポリペプチドがプロテインＧである場合、抗体としてはＩｇＧファミリー（例えば、ヒトＩｇＧ１〜４；マウスＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ２ｂ、ＩｇＧ３；ラットＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ２ｂ、ＩｇＧ２ｃ；ウサギＩｇＧ；ウシＩｇＧ１〜２；ウマＩｇＧａｂ、ＩｇＧｃ；ヤギＩｇＧ１〜２；モルモットＩｇＧ；イヌＩｇＧ；ネコＩｇＧ；ヒツジＩｇＧ１；及びブタＩｇＧ、ＩｇＧ２）が使用され得る。抗体はまた、分離すべき標的細胞と特異的に結合し得るように、適宜設計され得る。好ましくは、モノクローナル抗体及びポリクローナル抗体が挙げられるが、モノクローナル抗体がより好ましい。抗体は、当業者が通常行う手順に従って作製してもよく、また市販品を購入してもよい。

抗体と融合タンパク質が発現したＢａｃＭＰｓとを反応させることにより、抗体固定化磁気微粒子を作製できる。反応は、例えば、目的の抗体と融合タンパク質が発現したＢａｃＭＰｓとを、適切なバッファー中で、室温（２０℃〜２４℃）で、３０分〜６０分間インキュベートすることによって行われる。

得られた抗体固定化磁気微粒子を試料と接触させ、抗体と試料中の標的細胞とを結合させる。本発明の方法において、その細胞表面に発現しているタンパク質がわかっており、且つそのタンパク質に対する抗体が得られる限り、標的細胞の種類は特に限定されず、磁気微粒子に固定化する抗体を適宜選択することによって、任意の細胞を標的とすることができる。例えば、本発明で分離検出され得る標的細胞としては、免疫細胞、神経細胞、上皮細胞、腫瘍細胞などの多岐にわたる細胞が挙げられる。より具体的には、本発明で使用する抗体が抗ＣＤ抗体である場合、標的細胞としては、当該ＣＤ抗原発現白血球細胞が挙げられる。

試料を含む液体に抗体固定化磁気微粒子を添加し、例えば、４℃で、１０〜１５分間インキュベートすることによって、試料中の標的細胞を抗体固定化磁気微粒子に結合させる。次いで、磁気微粒子を、磁気を利用して分離・回収する。この磁気的分離・回収には、従来法のような特殊な磁気カラムを使用する必要はなく、磁性体が設置できるような容器である限り、材質に関係なく、任意の容器を使用することができる。例えば、分離・回収のための容器としては、通常の免疫学的実験又は細胞学的実験で使用される容器（例えば、ガラス製またはプラスチック製の試験管、フラスコ、ビーカー、チューブ、シャーレなど）を用いることができる。磁気的分離・回収に使用される磁性体としては、強磁性を有する任意の磁性体を使用することができる。当該磁性体の形状や大きさは、上記分離・回収用容器に設置可能であり、且つ容器内の磁気微粒子の分離・回収に十分な磁力を提供できる限り、特に制限されない。例えば、磁性体としては、Ｎｅｏｄｙｍｉｕｍ−ｉｒｏｎ−ｂｏｒｏｎ（Ｎｄ−Ｆｅ−Ｂ）磁石（２０×１２×５ｍｍ）を用いることができる。

回収した磁気微粒子を適切な溶媒で１〜数回洗浄することにより、夾雑物が除去され、磁気微粒子とともにそれに特異的に結合した細胞が単離される。回収には、遠心分離やろ過等の公知の方法を組み合わせて使用することもできる。

上記のように分離・回収された磁気微粒子から、さらに、結合した標的細胞を回収することができる。磁気微粒子の分離後、プロテインＧと結合性を有する抗体（例えばヒトＩｇＧ）を過剰に加え、加えた抗体とプロテインＧ上に結合していた抗体（細胞と結合している抗体）との置換反応を起こさせることで、細胞表面から磁性細菌粒子を外すことができる。あるいは、プロテインＧとＭｍｓ１３タンパク質の間にプロテアーゼ（例えばトロンビン）切断部位を設け、分離後にプロテアーゼ処理することによって、細胞表面から磁性細菌粒子を外すことができる。こうして得られた細胞は、その分離工程においてほとんど悪影響を受けておらず、その増殖、分化能を失っていないので、培養し増殖させることによって、研究及び臨床における種々の用途に使用することができる。

本発明によれば、上記融合ポリペプチドをその有機膜上に有するＢａｃＭＰｓを用いて細胞を分離又は検出するためのキットが提供される。キットは、上記融合ポリペプチドをその有機膜上に有するＢａｃＭＰｓと、標的細胞と結合した当該ＢａｃＭＰｓを磁気回収するための手段とを含み得る。キットにおいて、当該ＢａｃＭＰは、抗体固定化磁気微粒子の形態で提供されてもよい。キットは、抗体固定化磁気微粒子の作製に必要な抗体を別途含む形態で提供されてもよい。あるいは、キットは、抗体を含まない形態で提供され、使用者が自身で適切な抗体を結合させてから使用してもよい。

以下の実施例により、本発明を説明する。本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。

（実施例１）プロテインＧ発現ＢａｃＭＰｓの作製
プロテインＧ発現ＢａｃＭＰｓの作製を行った（図１）。ＢａｃＭＰｓ上へのプロテインＧのディスプレイを目的とし、プラスミドの構築を行った。プロテインＧのＩｇＧｂｉｎｄｉｎｇｄｏｍａｉｎ（Ｂ１−ｄｏｍａｉｎ）をコードする遺伝子（１７４ｂｐ）が導入されたプラスミド（ｐＰＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ）（Ｏｐｅｒｏｎ社に遺伝子合成を発注）から制限酵素ＳｓｐＩを用いてＢ１−ｄｏｍａｉｎ遺伝子を切り出し、Ｍｍｓ１３及びプロモーター領域を含むプラスミドｐＵＭＧＰ１６Ｍ１３（ＹｏｓｈｉｎｏＴ．ａｎｄＭａｔｓｕｎａｇａＴ．，Ａｐｐｌ．Ｅｎｖｉｒｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．，７２（１），４６５−４７１（２００６））のＳｓｐＩサイトに導入した。これをプロテインＧ発現用プラスミド（ｐＵＭ１３Ｂ１）とした。ｐＵＭ１３Ｂ１を磁性細菌ＡＭＢ−１にエレクトロポレーションにて導入、培養後、得られた形質転換体より抽出したＢａｃＭＰｓを１％ＳＤＳ中で３０分煮沸することでＢａｃＭＰｓ膜タンパク質を回収し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによりプロテインＧのＢａｃＭＰｓ膜への発現を確認した。
その結果、形質転換体より抽出したＢａｃＭＰｓの膜タンパク質のＳＤＳ−ＰＡＧＥにおいて、アンカータンパク質：Ｍｍｓ１３とプロテインＧの融合ポリペプチドに相当するバンドが確認された（図２）。これより、ｐＵＭ１３Ｂ１を磁性細菌に導入することでプロテインＧ発現ＢａｃＭＰｓ（プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ）が作製されたことが示された。

（実施例２）プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓの抗体結合能評価
プラスミドｐＵＭ１３Ｂ１またはｐＵＭ１３ＺＺ（特開２００６−３１４３１４）を導入したＡＭＢ−１の形質転換体よりプロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ、プロテインＡ−ＢａｃＭＰをそれぞれ抽出した。ＨＥＰＥＳによる洗浄後、各ＢａｃＭＰｓとｍｏｕｓｅＩｇＧ１、ｍｏｕｓｅＩｇＧ２ａ又はｒａｔＩｇＧ２ａ（０．８〜５０μｇ／ｍｌ）とをインキュベート（ＲＴ、６０分）することで、ＢａｃＭＰｓ上に各抗体を固定化した。２０μｇのＭｏｕｓｅＩｇＧ１固定化またはｍｏｕｓｅＩｇＧ２ａ固定化ＢａｃＭＰｓに対し、ＡＬＰ標識ｇｏａｔＦ（ａｂ）₂ａｎｔｉ−ｍｏｕｓｅＩｇＧＡｂ（１０μｇ／ｍｌ）２０μｌを、２０μｇのｒａｔＩｇＧ２ａ固定化ＢａｃＭＰｓに対し、ＡＬＰ標識ｇｏａｔＦ（ａｂ）₂ａｎｔｉ−ｒａｔＩｇＧＡｂ（１０μｇ／ｍｌ）２０μｌを反応させた（ＲＴ、３０分）。磁気的に分離して洗浄した後、ＢａｃＭＰｓ懸濁液（２０μｌ）にルミホス５３０（８０μｌ）を加え、５分後の発光強度を測定した。ＡＬＰ標識Ａｂを用いて作製した検量線を基に、測定さえた発光強度からＢａｃＭＰｓ上に固定化された固定化量を算出した。さらに、下記条件を用い、ＢａｃＭＰｓ上に固定化された抗体量から、ＢａｃＭＰの１粒子上に固定化された抗体量を算出した（抗体分子量：１５０ｋＤａ、ＢａｃＭＰ直径：７５ｎｍ、ＢａｃＭＰ密度：５．２ｇ／ｃｍ³）。
その結果、ＭｏｕｓｅＩｇＧ１（図３（Ａ））及びｒａｔＩｇＧ２ａ（図３（Ｃ））については、プロテインＡ−ＢａｃＭＰｓに固定化した場合と比較し、プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓに固定化した場合において、多数の抗体がＢａｃＭＰｓ上に固定化された。一方、ｍｏｕｓｅＩｇＧ２ａ（図３（Ｂ））については、プロテインＡ−ＢａｃＭＰｓに固定化した場合及びプロテインＧ−ＢａｃＭＰｓに固定化した場合の両方において、多数の抗体がＢａｃＭＰｓ上に固定化された。これより、作製したプロテインＧ−ＢａｃＭＰｓは幅広い種の抗体を固定化するのに有用であることが示された。

（実施例３）細胞表面への抗体固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓの結合分布解析
Ｒａｊｉ細胞懸濁液９０μｌ（１×１０⁵ｃｅｌｌｓ）に対し、ＦｃＲｂｌｏｃｋｉｎｇｒｅａｇｅｎｔ（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ社から購入）１０μｌを反応させた（４℃、１５分）。遠心洗浄後、細胞懸濁液１００μｌに対し、ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ固定化Ｃｙ３標識プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ１００μｌ（１０μｇ）を反応させた（４℃、１０分）。さらに、Ａｌｅｘａｆｌｏｕｒ−４８８標識ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社から購入）１０μｌを反応させた（４℃、１０分）。磁気分離洗浄後、回収された細胞を共焦点蛍光顕微鏡により観察した。
その結果、Ｃｙ３由来の蛍光より、ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂを固定化したＣｙ３標識プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓは細胞表面全体にほぼ単分散した状態で結合していることが観察された（図４（Ａ））。また、Ａｌｅｘａｆｌｏｕｒ−４８８（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社から購入）由来の蛍光観察結果（図４（Ｂ））との比較より、ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓは、Ｒａｊｉ細胞表面のＣＤ１９タンパク質を認識し結合していることが確認された（図４（Ｃ））。抗体固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓは高特異性で標的細胞（細胞表面タンパク質）と結合することから、優れた細胞分離用磁気担体であることが示された。

（実施例４）プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いた末梢血単核球（ＰＢＭＣｓ）からの細胞分離
末梢血１０ｍｌをＰＢＳ２５ｍｌで希釈した後、ＨＩＳＴＯＰＡＱＵＥ−１０７７（Ｓｉｇｍａ社から購入）１５ｍｌに重層し遠心分離を行った（１８００ｒｐｍ，３０分）。抽出した単核球（ＰＢＭＣｓ）層を更に遠心洗浄した（１５００ｒｐｍ、６分）。抗体固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いたＰＢＭＣｓからの細胞分離は以下の手順で行った（図５）。ＰＢＭＣｓ懸濁液８０μｌ（１×１０⁶ｃｅｌｌｓ）に対し、ＦｃＲｂｌｏｃｋｉｎｇｒｅａｇｅｎｔ２０μｌを反応させた（４℃、１５分）。続いて、ｍｏｕｓｅＩｇＧ１ａｎｔｉ−ＣＤ３、ＣＤ１９、ｍｏｕｓｅＩｇＧ２ａａｎｔｉ−ＣＤ１４、ＣＤ２０、ｒａｔＩｇＧ２ａａｎｔｉ−ＣＤ２ｍＡｂを各々固定化したプロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ５μｌ（５μｇ）をそれぞれ反応させた（４℃、１０分）。さらに、ＰＥ標識ａｎｔｉ−ＣＤ２、ＣＤ３、ＣＤ１４、ＣＤ１９ｍＡｂ、ＦＩＴＣ標識ａｎｔｉ−ＣＤ２０ｍＡｂ１０μｌをそれぞれ反応させた（４℃、５分）。遠心洗浄、磁気分離洗浄を行なった後、フローサイトメトリーにより分離細胞の蛍光を解析し標的細胞回収純度を評価した。
その結果、ＰＢＭＣｓ中にそれぞれ異なる割合で含まれた細胞（ＣＤ２⁺、ＣＤ３⁺細胞−Ｔ細胞、ＣＤ１９⁺、ＣＤ２０⁺細胞−Ｂ細胞、ＣＤ１４⁺細胞−単球）を、各種抗体を固定化したプロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いて一様に高い純度で分離されたことが確認された（図６、表１）。これより、抗体固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓはＰＢＭＣｓからの磁気細胞分離における磁気担体として優れていることが示された。

（実施例５）プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ及び細胞分離システムの細胞毒性評価
Ｒａｊｉ細胞懸濁液８０μｌ（５×１０⁵ｃｅｌｌｓ）に対し、ＦｃＲｂｌｏｃｋｉｎｇｒｅａｇｅｎｔ２０μｌを反応させた（４℃、１５分）。続いて、ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ２０μｌ（２０μｇ）を反応させた（４℃、１０分）。磁気分離洗浄後、回収された細胞をＲＰＭＩ１６４０（１０％ＦＢＳ、１００Ｕ／ｍｌｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ−ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ）中で培養した（５×１０⁴ｃｅｌｌｓ／ｍｌ）。培養２４時間後の細胞生存率をセルカウンター；ＣＡＳＹにて測定した。
その結果、ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いて分離されたＲａｊｉ細胞の生存率は９５．８±０．５％であり、非分離Ｒａｊｉ細胞の９５．０±１．５％と同等であった。これより、抗体固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ及び本細胞分離システムは、分離対象細胞の生存にほぼ悪影響を与えないことが示された。

（実施例６）プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いた細胞分離精度とプロテインＡ−ＢａｃＭＰｓを用いた細胞分離精度の比較
ＰＢＭＣｓ懸濁液９０μｌ（１×１０⁶ｃｅｌｌｓ）に対し、ＦｃＲｂｌｏｃｋｉｎｇｒｅａｇｅｎｔ１０μｌを反応させた（４℃、１５分）。続いて、ＰＥ標識ａｎｔｉ−ＣＤ３、ＣＤ１９ｍＡｂ、ＦＩＴＣ標識ａｎｔｉ−ＣＤ２ｍＡｂ３μｌをそれぞれ反応させた（４℃、１０分）。遠心洗浄後、ｍｏｕｓｅＩｇＧ１ａｎｔｉ−ＣＤ３、ＣＤ１９、ｒａｔＩｇＧ２ａａｎｔｉ−ＣＤ２ｍＡｂを各々固定化したプロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ及びプロテインＡ−ＢａｃＭＰｓ５μｌ（５μｇ）を、それぞれ反応させた（４℃、１０分）。遠心洗浄、磁気分離洗浄を行なった後、フローサイトメトリーにより分離細胞の蛍光を解析した。また、ヘマサイトメーターを用いて細胞数を計測し、標的細胞回収率を算出した。
その結果、ＣＤ１９⁺細胞の分離に関しては、プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ、プロテインＡ−ＢａｃＭＰｓを用いた場合共に同等の純度で標的ＣＤ１９⁺細胞が分離されたことが確認された（図７（Ａ））。一方、ＣＤ２⁺及びＣＤ３⁺細胞の分離に関しては、プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いた場合の方がより高純度で標的細胞の分離が可能であったことが確認された（図７（Ｂ）及び（Ｃ））。また、回収率に関しては、ＣＤ２⁺、ＣＤ３⁺及びＣＤ１９⁺細胞の分離全てにおいて、プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いた方がより高回収率での標的細胞の分離が可能であった（表２）。これより、プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓはプロテインＡ−ＢａｃＭＰｓよりも優れた磁気細胞分離用磁気担体であることが示された。

（実施例７）ガラス管を用いた細胞分離システム（本発明方法）と磁気カラムを用いた細胞分離システム（従来法）の非標的細胞洗浄効率の比較
培養細胞株；ｃｏｓ７，Ｒａｊｉ，ＴＨＰ−１細胞（１×１０⁶ｃｅｌｌｓ）懸濁液各々１ｍｌをガラス管（日電理化硝子社から購入ＤｉｓｐｏＴｕｂｅ／ＤＰ−１０Ｓ、外径：１０ｍｍ、全長：７５ｍｍ、肉厚：０．８ｍｍ、内径：８．４ｍｍ）又は磁気カラム（ＭｉｌｔｅｎｙｉＢｉｏｔｅｃ社から購入（１３０−０４２−２０１））内に導入し、磁気洗浄操作を行った。洗浄後、ガラス管ではＰＢＳｂｕｆｆｅｒ（２ｍＭＥＤＴＡ、０．５％ＢＳＡ含有）で再懸濁することで、また磁気カラムではＰＢＳｂｕｆｆｅｒ（２ｍＭＥＤＴＡ、０．５％ＢＳＡ含有）で押し出すことで、ガラス管又は磁気カラム内に残存した細胞を取り出し、細胞数をカウントした。
その結果、ガラス管を用いた場合において、導入した各細胞全てにおいてガラス管内への残存は殆ど確認されなかった（表３）。磁気カラムを用いた場合においては、ガラス管を用いた場合と比較し残存細胞数は多く、特にｃｏｓ７及びＲａｊｉ細胞に関しては多数の細胞の残存が確認された。３種の細胞それぞれの特徴が、ｃｏｓ７細胞（接着細胞，大きさ：１５−３０μｍ）、Ｒａｊｉ細胞（浮遊細胞、大きさ：１５−２０μｍ）、及びＴＨＰ−１細胞（浮遊細胞、大きさ：１０μｍ）であることから、磁気カラムを用いた場合、大きな細胞ほど洗浄しきれず残存すると考えられた。これより、ガラス管を用いた本発明の細胞分離方法は、従来の磁気カラムを用いた細胞分離法と比較し、大きな細胞を含んだ細胞集団（組織由来の細胞懸濁液や接着細胞懸濁液など）からの細胞分離に特に有用であることが示された。また、ガラス管を用いた本発明の細胞分離方法では、細胞の残存が殆どないことから、より精度の必要な希少細胞の分離、検出にも適していることが示された。

（実施例８）プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いた全血からの細胞分離
ヒト末梢血：５００μｌに対し、ＦｃＲｂｌｏｃｋｉｎｇｒｅａｇｅｎｔ８μｌとプレインキュベーション（４℃、１０分）させたｍｏｕｓｅＩｇＧ１由来ａｎｔｉ−ＣＤ１９、ＣＤ３ｍＡｂ固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ４８μｌ（２０μｇ）を反応させた（４℃、１０分）。さらに、ＰＥ標識ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ、ＰＥ標識ａｎｔｉ−ＣＤ３ｍＡｂ５０μｌをそれぞれ反応させた（４℃、１０分）。遠心洗浄、磁気分離洗浄を行なった後、フローサイトメトリーにより分離細胞の蛍光を解析した。磁気分離洗浄２回目のみ懸濁ｂｕｆｆｅｒとして、溶血ｂｕｆｆｅｒ（ＶｅｒｓａＬｙｓｅ）を用いた。また、ヒト末梢血に含まれたＣＤ１９⁺、ＣＤ３⁺細胞の割合を評価するため以下の実験を行った。ヒト末梢血１００μｌに対し、ＰＥ標識ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ、ＰＥ標識ａｎｔｉ−ＣＤ３ｍＡｂ５μｌをそれぞれ反応させた（４℃、１０分）。さらに、ＶｅｒｓａＬｙｓｅ１ｍｌを加え反応させた（ＲＴ、１０分）。遠心洗浄後、フローサイトメトリーにより回収細胞（白血球）の蛍光を解析した。また、ヘマサイトメーターを用いて細胞数を計測し、末梢血中に含まれた各細胞数を算出した。
抗体を用いて白血球中のＣＤ１９⁺細胞及びＣＤ３⁺細胞の含有率を評価した結果、ＣＤ１９⁺細胞は白血球の４．９±０．５％、ＣＤ３⁺細胞は３０．３±３．５％含まれていた。白血球は末梢血由来血球細胞中の約０．１％に当たることから、ＣＤ１９⁺細胞は末梢血由来血球細胞中に約０．５×１０^-3％、ＣＤ３⁺細胞は約０．３×１０^-2％含まれていたと考えられた。また、ａｎｔｉ−ＣＤ１９、ＣＤ３ｍＡｂ固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いて、ヒト末梢血よりＣＤ１９⁺細胞またはＣＤ３⁺細胞の磁気細胞分離を行なった結果、ＣＤ１９⁺細胞は９７．０±２．０％、ＣＤ３⁺細胞は９６．８±１．０％の回収純度で分離されたことが確認された（図８）。これより、プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いた磁気細胞分離システムは、全血からの標的細胞の高純度分離回収システムとしても応用可能であることが示された。

プロテインＧ発現ＢａｃＭＰｓ作製手順。ｐＵＭ１３Ｂ１形質転換磁性細菌ＡＭＢ−１（１）と野生型ＡＭＢ−１（２）からのＢａｃＭＰｓから抽出された膜タンパク質の、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ。Ｍ：分子量マーカー。プロテインＧとプロテインＡとの間でのＢａｃＭＰｓ結合抗体数の比較。（Ａ）マウスＩｇＧ１、（Ｂ）マウスＩｇＧ２ａ、（Ｃ）ラットＩｇＧ２ａ。プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓ（白丸）、プロテインＡ−ＢａｃＭＰｓ（黒丸）。共焦点蛍光顕微鏡観察像：（Ａ）Ｒａｊｉ細胞に結合したａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂｓ固定化−Ｃｙ３−プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓの分布、（Ｂ）同じ細胞のＡｌｅｘａｆｌｏｕｒ−４８８−ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ標識像、（Ｃ）ＢａｃＭＰｓの分布はＡｌｅｘａｆｌｏｕｒ−４８８−ａｎｔｉ−ＣＤ１９ｍＡｂ標識と一致している。本発明の細胞分離方法を示す模式図。ＰＢＭＣｓのフローサイトメトリー分析：抗体固定化プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓを用いた本発明の方法による細胞分離前（Ａ）、及び分離後（Ｂ）。細胞分離精度の比較：（Ａ）マウスＩｇＧ１によるＣＤ１９⁺細胞の分離、（Ｂ）マウスＩｇＧ１によるＣＤ３⁺細胞の分離、（Ｃ）ラットＩｇＧ２ａによるＣＤ２⁺細胞の分離。左：分離前、中央：プロテインＡ−ＢａｃＭＰｓによる分離結果、右：プロテインＧ−ＢａｃＭＰｓによる分離結果。抗体固定化ｐｒｏｔｉｅｎＧ−ＢａｃＭＰｓを用いた本発明の方法による全血からの細胞分離。分離前後における白血球のフローサイトメトリー分析。左：分離前、右：分離後。

Claims

以下の工程１）〜３）を行うことを特徴とする、試料中の標的細胞の分離又は検出方法：
１）配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド；配列番号１で示されるアミノ酸配列と実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチド；及びそれらの部分ポリペプチドから選択されるアンカーポリペプチドとプロテインＧの抗体結合ドメインを有する抗体結合性ポリペプチドとの融合ポリペプチドを、その有機膜中に有する磁性細菌由来磁気微粒子に、標的細胞と結合し得る抗体を固定化する工程；
２）該抗体を固定化した磁性細菌由来磁気微粒子に、標的細胞を接触させる工程；
３）該標的細胞と結合した磁気微粒子を磁気回収する工程。
磁気カラムを使用しない、請求項１記載の方法。
有機膜から融合ポリペプチド以外のポリペプチドが除去されてなる請求項１又は２記載の方法。
配列番号１で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド；配列番号１で示されるアミノ酸配列と実質的に同一なアミノ酸配列からなるポリペプチド；及びそれらの部分ポリペプチドから選択されるアンカーポリペプチドとプロテインＧの抗体結合ドメインを有する抗体結合性ポリペプチドとの融合ポリペプチドを、その有機膜中に有する磁性細菌由来磁気微粒子、該抗体結合性ポリペプチド及び標的細胞と結合し得る抗体、並びに該抗体を介して該標的細胞と結合した該磁気微粒子を磁気回収するための手段を含有することを特徴とする、試料中の標的細胞の分離又は検出キット。
前記手段が磁気カラムを含まない、請求項４記載のキット。
有機膜から融合ポリペプチド以外のポリペプチドが除去されてなる請求項４又は５記載のキット。