JP2007526227A - 脳および他の組織への治療化合物の送達 - Google Patents
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Abstract
Description
別段の定義がない限り、本明細書で使用される技術用語および科学用語はいずれも、本発明が属する技術分野の当業者が一般に理解しているものと同じ意味を持つ。当業者は、以下の参考文献により、本明細書で用いられる用語の多くについて、その一般的定義を知ることができる:Singletonら「DICTIONARY OF MICROBIOLOGY AND MOLECULAR BIOLOGY」(第2版,1994)、「THE CAMBRIDGE DICTIONARY OF SCIENCE AND TECHNOLOGY」(Walker編,1988)、「THE GLOSSARY OF GENETICS」第5版,R.Rieger,et al.(eds.)Springer Verlag(1991)、ならびにHaleおよびMarham「THE HARPER COLLINS DICTIONARY OF BIOLOGY」(1991)。
1)アラニン(A)、セリン(S))、スレオニン(T);
2)アスパラギン酸(D)、グルタミン酸(E);
3)アスパラギン(N)、グルタミン(Q);
4)アルギニン(R)、リジン(K);
5)イソロイシン(I)、ロイシン(L)、メチオニン(M)、バリン(V);および
6)フェニルアラニン(F)、チロシン(Y)、トリプトファン(W)。
メガリンはLRP2とも呼ばれ、LRP受容体ファミリーの大きい(600kDa)メンバーである(Hussain et al.,Annu Rev Nutr.,19:141-72 1999、ChristensenおよびBirn Am.J.Physiol.Renal.Physiol.,280:F562-573,2001)。LRPファミリーの全てのメンバーと同様に、メガリンはRAPを高い親和性で結合する(Czekay et al.,Mol.Biol.Cell.8(3):517-32,1997)。しかし、メガリンが、腎臓近位尿細管、甲状腺、精巣上体、肺胞および眼の毛様体中のものを含む限られた一組の上皮細胞層の頂端面でしか発現されない点は、LRPファミリーの中でユニークである(Zheng et al.,J Histochem Cytochem.,42(4):531-42,1994)。メガリンは、古典的扁平上皮細胞層である脳毛細管内皮の管腔表面でも発現される(Chun et al.,Exp Neurol.,157(1):194-201,1999)。脳毛細管内皮上のメガリンは、インビトロで、血液脳関門を横切って、そのリガンドの1つであるapoJのトランスサイトーシスを媒介することが、先に証明されている(Zlokovic et al.,Proc.Nat'l Acad.Sci.,USA 93(9):4229-34 1996、Zlokovic Life Sci.,59(18):1483-97,1996)。メガリンによるリガンドの頂端側から側底側へのトランスサイトーシスは、腎臓および甲状腺でも詳述されている(Marino et al.,J Am Soc Nephrol.,12(4):637-48,2001、Marino et al.,Thyroid,11(1):47-56,2001)。
メガリンは、それを介して活性剤トランスサイトーシスを達成するのに好ましい受容体であるが、それでもなお、他のLRP受容体はそのようなトランスサイトーシスを達成するのに有用だろうと考えられる。「LRP」は、低密度リポタンパク質受容体関連タンパク質1(LRP1)を含む低密度リポタンパク質受容体ファミリーのメンバーを指す。LRP1は4525アミノ酸(600kDa)の大きいタンパク質であり、フリンによって切断されて、非共有結合したままの515(アルファ)kDと85(β)kDaの2つのサブユニットを生じる。LRPはほとんどの組織タイプで発現される。低密度リポタンパク質(LDL)受容体ファミリーの他のメンバーには、LDL−R(132kDa)、LRP/LRP1およびLRP1B(600kDa)、メガリン((LRP2),600kDa)、VLDL−R(130kDa)、ER−2(LRP−8,130kDa)、モザイクLDL−R(LR11,250KDa)、ならびに他のメンバー、例えばLRP3、LRP6、およびLRP−7などがある。このファミリーに特有の特徴としては、細胞表面発現、細胞外リガンド結合ドメインリピート(DxSDE)、リガンド結合にCa++が必要、RAPおよびApoEの認識、EGF前駆体相同ドメインリピート(YWTD)、一回膜貫通領域、細胞質ドメイン中の内在化シグナル(FDNPXY)、および様々なリガンドの受容体介在性エンドサイトーシスが挙げられる。このファミリーの一部のメンバー、例えばLRP1およびVLDLRなどは、シグナル伝達系路に関与する。
本発明の特定の実施形態では、メガリンリガンドまたはそのメガリン結合性断片である第1部分と、メガリンへのメガリンリガンド(またはその断片)の結合によってその送達が媒介される活性剤である第2部分とを含むキメラ分子を製造する。好ましい実施形態では、これらのキメラ分子の一部を形成させるために選択されるリガンドは、インビボでトランスサイトーシスされるものだろう。「RAP」は約39kDaおよび323アミノ酸の周知のタンパク質であり、LRPファミリーのメンバーに特化したシャペロンである。これはインビボでトランスサイトーシスされる。RAPは、LRPなどのLDL受容体ファミリーのメンバーへのリガンドの結合を阻害する(BuおよびRennke,J.Biol.Chem.271:22218-2224(1996)、Willnow et al.,J.Biol.Chem.267:26172-26180(1992)、BuおよびSchwartz,Trends Cell Biol.8:272-276(1998)、ならびにHerzおよびStrickland,J.Clin.Invest.108:779-784(2001)参照)。また、BuおよびSchwartz,Trends Cell Biol.8:272-276(1998)も参照されたい。RAPのさらなる特徴づけは、ヒトRAPの全アミノ酸配列(図15)を含めて、参照によりそのまま本明細書に組み入れられる米国特許第5,474,766号に記載があり、RAPアミノ酸配列および断片についてもそこに詳しく開示されている。28kDaヒトC末端断片(図16)は極めて活性なRAPポリペプチドであり、本発明の好ましい実施形態においては、コンジュゲートが活性剤の担体としてこの断片を含む。
本明細書の全体を通して、出願人はメガリン結合部分に言及する。通例、そのような部分は、上述したリガンドなどの天然メガリン結合リガンドである。別の実施形態では、前記部分が、修飾された、そのようなリガンドである。さらなる実施形態として、メガリン結合部分は、メガリンと免疫反応しそれゆえにメガリンを認識する抗体の全部または一部であることもできる。本発明では、メガリン結合部分が、所定の標的(例えば脳)に送達されるべき薬剤にコンジュゲートされる。本明細書では、メガリンリガンド−活性剤コンジュゲートに言及する。メガリンリガンドには任意の上記メガリン結合実体が包含されうると理解すべきである。
本発明の活性剤には、生物学的過程に影響を及ぼすことができる薬剤が包含される。本発明の化合物、組成物および方法における使用にとりわけ好ましい活性剤は、薬物および診断剤を含む治療剤である。「薬物」または「治療剤」という用語は、治療有効量で投与した場合に、薬理学的活性または薬理学的利益を持つ活性剤を指す。特に好ましい薬剤は天然の生物学的薬剤(例えば酵素、タンパク質、ポリヌクレオチド、抗体、ポリペプチド)である。一部の実施形態では、メガリンリガンドまたはそのメガリン結合性断片(例えば一定の好ましい実施形態ではRAPまたはRAPポリペプチド)にコンジュゲートされる活性剤は、生きている宿主内の生物学的過程を調整する能力を持つ分子ならびにその任意の結合部分もしくは断片である。薬物または治療剤の例には、疾患または状態の防止、診断、改善、処置または治療に用いられる物質が包含される。特に、本薬剤は疾患を引き起こす薬剤ではないと考えられる。具体的には、本薬剤はアミロイドβタンパク質ではない。
活性剤は非タンパク質またはタンパク質であることができる。活性剤はタンパク質もしくは酵素、またはそれらタンパク質もしくは酵素の治療活性もしくは生物学的活性の一部、実質的に全て、もしくは全てをまだ保持しているそれらの任意の断片であることができる。一部の実施形態では、前記タンパク質または酵素は、それが発現または産生されないか、またはその発現量または産生量が実質的に減少すると、リソソーム蓄積症を含む(ただしこれに限定されるわけではない)疾患を生じるであろうものである。好ましくは、前記タンパク質または酵素は、ヒトまたはマウスに由来するかヒトまたはマウスから得られるものである。
一般に、薬物活性剤は任意の大きさを持ちうる。好ましい薬物は、関心対象の標的に結合する能力を持つ小さい有機分子である。コンジュゲートの薬物部分は、それが小分子である場合には、一般に少なくとも約50D、通常は少なくとも約100Dの分子量を持ち、その分子量は500D以上であってもよいが、通常は約2000Dを越えないだろう。
本発明のメガリンリガンドに基づくコンジュゲートにおける使用に好ましい癌化学療法剤には、脳腫瘍または脳内もしくは脳周辺の他の新形成の処置に、遊離型として役立ちうる、またはそのような腫瘍に遊離型で有用でないなら、メガリンリガンドもしくはそのメガリン結合性断片に連結した場合に役立ちうる、あらゆる薬物が包含される。そのような化学療法剤は、好ましくは、例えばアドリアマイシン(ドキソルビシンとも呼ばれる)、シスプラチン、パクリタキセル、その類似体を含む細胞毒性化学療法剤、ならびにエクスビボおよびインビボで腫瘍に対して活性を示す他の化学療法剤である。そのような化学療法剤には、アルキル化剤、代謝拮抗物質、天然物(ビンカアルカロイド類、エピドフィロトキシン(epidophyllotoxin)類、抗生物質、酵素および生物学的応答調整剤)、トポイソメラーゼ阻害剤、微小管阻害剤、紡錘体毒、ホルモンおよびアンタゴニスト、ならびにその他の薬剤、例えば白金配位錯体、アントラセンジオン類、置換尿素類なども包含される。当業者には他の化学療法剤もわかるだろう。
本発明は概して、活性剤に連結されたメガリンリガンドまたはそのメガリン結合性断片を含む方法および組成物を提供する。
活性剤をタンパク質またはペプチドにコンジュゲートする方法は、当業者にはわかるだろう。例えば米国特許第5,981,194号を参照されたい。活性剤と生体ポリマーとのバイオコンジュゲートの製造には、多くの試薬および架橋剤を使用することができる。例えばHermanson et al.,Bioconjugate Techniques,Academic Press(1996)を参照されたい。
キメラタンパク質を製造するために使用される宿主細胞は、細菌、酵母、昆虫、非哺乳類脊椎動物、または哺乳類細胞であり、哺乳類細胞には、例えばハムスター、サル、チンパンジー、イヌ、ネコ、ウシ、ブタ、マウス、ラット、ウサギ、ヒツジおよびヒト細胞が包含されるが、これらに限定されるわけではない。宿主細胞は不死化細胞(細胞株)または非不死化(初代または二次)細胞であることができ、多種多様な細胞タイプ、例えば線維芽細胞、ケラチノサイト、上皮細胞(例えば乳房上皮細胞、腸上皮細胞)、卵巣細胞(例えばチャイニーズハムスター卵巣細胞、すなわちCHO細胞)、内皮細胞、膠細胞、神経細胞、血液の固形成分(例えばリンパ球、骨髄細胞)、筋細胞、肝細胞およびこれら体細胞タイプの前駆体のいずれであってもよい。宿主細胞には、LRPを発現しないCHO細胞の突然変異体、例えばCHO13−5−1などを含めることができる(FitzGerald et al.,J.Biol.Chem.,129(6):1533-41,1995)。
キメラタンパク質を発現させるために用いられる核酸コンストラクトは、トランスフェクトされた哺乳類細胞において染色体外で(エピソームとして)発現されるものであるか、受容細胞のゲノム中にランダムに、または前もって選択された標的部位に相同組換えによって、組み込まれるものであることができる。染色体外で発現されるコンストラクトは、キメラタンパク質コード配列の他に、細胞内でのタンパク質の発現に十分な配列と、任意選択的に、そのコンストラクトの複製に十分な配列とを含む。通例、これは、プロモーター、キメラタンパク質コードDNAおよびポリアデニル化部位を含む。キメラタンパク質をコードするDNAは、その発現がプロモーターの制御を受けるような形で、コンストラクト中に配置される。任意選択的に、コンストラクトは追加成分、例えば以下の成分の1以上を含有してもよい:スプライス部位、エンハンサー配列、適当なプロモーターの制御を受ける選択可能マーカー、および適当なプロモーターの制御を受ける増幅可能マーカー遺伝子。
キメラタンパク質をコードするDNAまたはRNAを含有する哺乳類細胞は、細胞の成長および当該DNAまたはRNAの発現に適した条件下で培養される。キメラタンパク質を発現させる細胞は既知の方法および本明細書に記載されている方法を使って同定することができ、キメラタンパク質産生の増幅を行なって、または行なわずに、既知の方法および同様に本明細書に記載されている方法を使ってキメラタンパク質を単離し精製することができる。同定は、例えば、キメラタンパク質をコードするDNAまたはRNAの存在を示唆する表現型を示す遺伝子改変哺乳類細胞をスクリーニングすることによって、例えばPCRスクリーニング、サザンブロット解析によるスクリーニング、またはキメラタンパク質の発現に関するスクリーニングなどによって、実行することができる。キメラタンパク質コードDNAが組み込まれている細胞の選択は、DNAコンストラクト中に選択可能マーカーを含め、選択可能マーカー遺伝子を含有するトランスフェクト細胞または感染細胞を、その選択可能マーカー遺伝子を発現させる細胞だけの生き残りに適した条件下で培養することによって、行なうことができる。導入されたDNAコンストラクトのさらなる増幅は、増幅に適した条件下で遺伝子改変哺乳類細胞を培養することによって(例えば、増幅可能マーカー遺伝子を含有する遺伝子改変哺乳類細胞を、その増幅可能マーカー遺伝子のコピーを複数含有する細胞だけが生き残りうるような濃度の薬物の存在下で培養することによって)、達成することができる。
一部の実施形態では、メガリンリガンドに基づく活性剤コンジュゲートを、その検出が容易になるように、標識する。「ラベル」または「検出可能部分」とは、分光法的手段、光化学的手段、生化学的手段、免疫化学的手段、化学的手段、または他の物理的手段によって検出することができる組成物である。例えば、本発明での使用に適したラベルには、放射性ラベル(例えば32P)、蛍光物質(例えばフルオレセイン)、高電子密度試薬、酵素(例えばELISAでよく使用されるもの)、ビオチン、ジゴキシゲニン、または例えば放射性ラベルを当該ハプテンもしくはペプチドに組み込むことなどによって検出可能にすることができるハプテンおよびタンパク質、または当該ハプテンもしくはペプチドと特異的に反応する抗体を検出するために用いることができるハプテンおよびタンパク質などがあるが、これらに限定されるわけではない。
本発明は、メガリンリガンドポリペプチド−活性剤コンジュゲートに関するスクリーニングアッセイを提供する。この場合、コンジュゲートは、メガリン受容体(これは全細胞中にあるか、細胞抽出物中にあるか、半精製状態、精製状態またはその活性の測定が可能な他の任意の形式で存在することができる)の測定可能な活性に影響を及ぼすその能力について試験される。活性は、メガリンの発現、機能または分解における任意の活性であることができ、例えばそのような活性の量またはタイミングを含む。そのような活性には、例えば、メガリン遺伝子配列またはmRNA転写物の転写、転写物プロセシング、翻訳または転写物の安定性などが包含される。そのような活性には、例えば、新しいLRPの合成、メガリンの細胞内局在、およびメガリンの生物学的活性の活性化などが包含される。そのような活性には、例えば、メガリンの物質結合能力、コンフォメーション採択能力、反応触媒能力、既知リガンド結合能力などが包含される。そのような活性には、例えばメガリンの量または安定性、メガリンのプロセシングおよび除去または分解などが包含される。好ましい実施形態では、使用されるメガリンリガンドが、改変されたものであるか、元々、他のどのLRP受容体よりもメガリンに対して高い結合親和性を持つもの、特にLRP1よりもメガリンに対して高い結合親和性を持つものである。メガリンに関して上述したものと同様のスクリーニングアッセイは、他のLRP受容体と比較したメガリンに対するメガリンリガンドの相対的結合親和性の比較が得られるように、他のどのLRP受容体についても設定することができる。
例えば脳またはリソソーム(ただしこれらに限定されるわけではない)へのメガリンリガンド−活性剤コンジュゲートの取り込みおよび送達を増加させることが、例えばコンジュゲートが神経学的状態および/またはLSDの処置に使用されていて、送達量の増加が治療上の利益をもたらすなど(ただしこれらに限定されるわけではない)の状況では有用であり、望ましいことは、当業者には理解されるだろう。例えばコンジュゲートがその潜在的心臓保護作用のために用いられているか、または他の(非CNS)器官で使用されていて、脳取り込みの副作用が回避されるべきである場合(ただしこれらに限定されるわけではない)など、様々な理由により、血液脳関門を横切るコンジュゲートの取り込みおよび送達を減少させることが有用であり、望ましいことは、当業者には理解されるだろう。
コンジュゲートおよび調整物質は、様々な経路で投与することができる。経口製剤の場合、コンジュゲートは単独で使用するか、錠剤、散剤、顆粒剤またはカプセル剤を製造するために適当な添加剤と組合せて、例えば、ラクトース、マンニトール、トウモロコシデンプンまたはバレイショデンプンなどの通常の添加剤と組合せて、結晶性セルロース、セルロース誘導体、アラビアゴム、トウモロコシデンプンまたはゼラチンなどの結合剤と組合せて、タルクまたはステアリン酸マグネシウムなどの滑沢剤と組み合わせて、そして所望であれば、希釈剤、緩衝化剤、湿潤剤、保存剤および着香剤と組み合わせて、使用することができる。
本発明では、与えられた活性剤のトランスサイトーシスを容易にするために、数多くのメガリンリガンドを使用することができる。そのようなリガンドの典型例の一つはRAPである。本発明で使用されるRAPおよびRAPポリペプチドには、米国特許第5,474,766号に開示されているものが包含され、この特許はそのようなペプチドを開示すると共に本発明の化合物および組成物で使用するためにそれらを取得する方法を開示する目的で、参照によりそのまま本明細書に組み入れられる。RAPおよびRAPポリペプチドならびに他のメガリンリガンドは、当業者に知られる任意のタンパク質製造および精製法を使って製造することができる。
本発明の好ましい実施形態を実証するために以下の実施例を記載する。以下の実施例に開示する技術は、本発明の実施に際してうまく機能することを本発明者らが発見した技術を表し、それゆえにその実施の好ましい形態を構成するとみなしうることを、当業者は理解すべきである。しかし当業者は、本明細書の開示に照らして、ここに開示する特定の実施形態には数多くの改変を施すことができ、そうしてもなお、本発明の精神および範囲から逸脱することなくよく似たまたは同様の結果が得られることを理解すべきである。以下の実施例は、インビトロでトランスサイトーシスを評価するためのプロトコールならびにRAPなどのメガリンリガンドとメガリンおよび他の受容体との相互作用を特徴づけるためのプロトコールの典型例を提供する。
〔p97のトランスサイトーシス〕
トランスサイトーシス実験は以下のように行なった。ウシ脳毛細管内皮細胞(BBCEC)で覆われた1個のインサートを、2mlのリンゲル/ヘペスが入った6穴マイクロプレートを含有するトランズウェル装置に入れ、37℃で2時間プレインキュベートした。[125I]−p97(250nM)を細胞で覆われたフィルターの上側に加えた。BBCECの管外側によるp97の再エンドサイトーシスを避けるために、様々な時点で、インサートを移動させた。実験の終了時に、TCA沈殿を行なってから、[125I]−p97を測定した。図17にトランスサイトーシスを図示する。
〔RAP融合物の構築、発現、精製および特徴づけ〕
ヒト受容体関連タンパク質(RAP)とヒトアルファ−グルコシダーゼ(GAA)、アルファ−L−イズロニダーゼ(IDU)または膠細胞由来神経栄養因子(GDNF)との融合物をコードする発現コンストラクトを作製した。この目的のために、RAPをコードする配列を、様々な融合パートナーをコードする配列の5’末端に融合した。配列は全て、図2に示す後述のプライマーを使ったヒトcDNAの高忠実度PCR増幅によって取得した。GDNF融合物は細菌での発現用に設計した。そのために、このコンストラクトのRAP増幅では、プライマーRAPFの代わりにプライマーRAPBACFを使用した(図2b)。
培地は、2mM L−グルタミン、ゲンタマイシン、アンホテリシン、800μg/mL G418および2.5%ウシ胎仔血清を添加したJRH302とした。組換えクローンをT225フラスコ中で生育してから、血清の存在下で、1L CorningスピナーフラスコのCytopore 1ビーズ(Amersham)上に播種した。37℃および5%CO2に設定した組織培養インキュベーター中にスピナーフラスコを維持した。培地を2日毎に血清レベルが検出されなくなるまで無血清培地で置き換えた。次に、収穫物を2日毎に収集し、培地を交換した。
スピナーフラスコから培地中に収集したRAP−GAAを、中性pHの低塩緩衝液中のブルーセファロースカラム(Amersham)にかけた。直線的塩勾配で画分を溶出させ、融合物含有画分をヘパリンセファロースカラム(Amersham)に負荷し、再び直線的塩勾配で溶出させた。溶出した活性含有画分をプールし、フェニルセファロースカラム(Amersham)にかけた。そのフェニルセファロースカラムから、塩濃度が低下するステップ勾配を使って、RAP−GAAを溶出させた。溶出した画分をSDS−PAGEゲルで泳動し、染色することによって、相対的パーセント純度を決定した。ゲル解析によれば、ピーク活性画分は約70%純粋だった。画分をプールし、30kD MWCOメンブレン(Millipore)を使って濃縮し、中性pHのリン酸緩衝食塩水に交換した。
アイデンティティ、純度および糖質含量を決定するために、精製RAP−GAAを調べた。アイデンティティ試験では、融合物をSDS−PAGE上で分割し、PVDFにブロットし、抗GAA抗体および抗RAP抗体でプローブした。約150kDの単一バンドが両方の抗体と交差反応した(図6)。融合物純度は、SDS−PAGEゲルのクーマシーブルー染色によって決定し、>95%と推定された。ノイラミニダーゼで消化し、IEFゲルで未消化の試料と比較することにより、複合型オリゴ糖の存在を測定した。ノイラミニダーゼ消化により、複合型オリゴ糖の存在に合致する塩基性pI側への移動度の定量的シフトが起こった(図7)。Endo H消化を使って高マンノース型オリゴ糖の存在について調べた。対照タンパク質とは異なり、Endo H消化後もSDS−PAGEゲル上で融合物の分子量の変化は観察されなかった。これは融合物上に高マンノース型オリゴ糖が存在しないことを示唆している(図8)。
第1精製工程にはブルーセファロース6 Fast Flow樹脂を使用する。収穫した液体をpH7.0に調節し、70mL/mL樹脂の割合でブルーセファロースカラムに負荷した。カラムを75mM NaCl、20mM Na2HPO4(pH7.0)で平衡化した。RAP−IDUは1.2M NaCl、20mM Na2HPO4(pH7.0)でカラムの外に溶出した。次に、溶出したRAP−IDU含有画分(イズロニダーゼ活性アッセイで決定)を、75mM NaCl、20mM Na2PO4(pH7.0)に溶媒交換し、ヘパリンCL 6B樹脂に負荷した。そのヘパリンカラムから0.5M NaCl(pH7.0)でRAP−IDUを溶出させた。次に、溶出した画分を2M NaCl、20mM Na2HPO4(pH7.0)に調節し、フェニルセファロースカラムに直接負荷した。最終工程として、RAP−IDUをこのカラムから0.3〜0.5M NaClで溶出させた。融合物純度はSDS−PAGEで>80%と見積られた(図9)。
〔非コンジュゲートRAPの脳へ取り込みおよび分布〕
マウスインサイチュー灌流モデルを使って脳へのRAPの分布を測定した。RAP、陽性対照トランスフェリンおよび陰性対照アルブミンの分布容積(Vd)を5分間の灌流期間で決定した。また、灌流した脳の血管画分および実質画分における試験タンパク質の相対量を、毛細管消耗技術(capillary depletion technique;Gutierrez et al.,J.Neuroimmunol.,47(2):169-76,1993)を使って決定した。図11に示す結果には、トランスフェリンについて1μL/g/分という観測補正Kinfluxが含まれている。RAPは、2.2μL/g/分という観測補正Kinfluxを持っていた。RAPは脳内に取り込まれる。
〔酵素欠乏患者の線維芽細胞へのRAP−GAAの特異的取り込みの測定〕
GAAが欠乏している細胞へのRAGAの取り込みを特徴づけた。使用した細胞株はGM244(Coriell Cell Repository)である。これはグリコーゲン蓄積症II型(ポンペ病)を持つ患者から単離された初代細胞株である。これらの線維芽細胞はリン酸化組換えGAAをマンノース−6−リン酸受容体によって取り込むが、RAPを結合するLRP1受容体も持っている。様々な試験リガンドの取り込みに関与する受容体を同定するために、過剰量の遊離RAPまたはマンノース−6−リン酸を含有する試料を調製した。
〔様々なLRP受容体ファミリーメンバー(LRP1B、LDLR、VLDLR)を発現させるLRPnull CHO細胞およびLRP2(メガリン、gp330)だけを発現させるBN細胞へのRAP−GAAの取り込みおよびリソソーム局在の測定〕
ヨウ素標識:ヨードジェン(IODO−GEN)試薬を使って、RAP−GAAおよび組換えGAAを125Iで放射標識した。
アッセイの1日前に、12穴プレートに、細胞を200,000細胞/ウェルの密度で播種した。実験当日に、RAP−GAAまたはGAAのみを含有する予め温めておいたアッセイ緩衝液を、非標識500nM RAPまたは10nMマンノース−6−リン酸の存在下または不在下で、細胞単層に加え、次に37℃で4時間インキュベートした。インキュベーション後に、細胞単層を覆っている培地を取り出し、BSAを10mg/mlになるように、そしてトリクロロ酢酸を最終濃度20%になるように添加することによって、タンパク質を沈殿させた。リガンドのリソソーム分解を、20%トリクロロ酢酸中に可溶な放射性断片の培地への出現と定義した。各細胞溶解物のタンパク質濃度は、LRPリガンドを含有していない並行ディッシュで測定した。RAP−GAAおよびGAA分解効率は、分解した放射性物質(可溶性cpm/mg細胞タンパク質)を細胞表面LRPファミリー受容体の数(先にフローサイトメトリーによって決定したもの、非掲載データ)で割った値として計算した。
〔酵素欠乏患者の線維芽細胞におけるRAP−LEの特異的取り込みおよびそれに伴う蓄積グリコサミノグリカンのクリアランスの測定〕
患者線維芽細胞を12穴プレートに播種し、コンフルエントまで生育する。実験当日に、MgSO4を欠き4μCi/mLのNa2 35SO4を含有する新鮮な培地を、細胞に供給する。細胞には、500nM RAPまたは10mMマンノース−6−リン酸の存在下または不在下で、RAP−LE融合物またはLEのみも添加する。細胞を4日間毎日収集する。PBSで濯いだ後、細胞を凍結融解法で溶解する。蓄積GAGを80%エタノールによる沈殿でアッセイし、シンチレーション計数によって定量する。蓄積GAG値を細胞溶解物のタンパク質含量に対して標準化する。
〔GAA欠損マウスにおける静脈内投与されたRAP−GAAのリソソーム分布および蓄積物クリアランスの測定〕
GAAノックアウトマウス(C57Bl/6バックグランド)を4つの処置群にランダムに割り当て、静脈内尾静脈注射により、2日ごとに100μlのリン酸緩衝食塩水、1.3mg/kgまたは0.33mg/kg RAP−GAA融合タンパク質で4回処置した。4回目の注射の48時間後にマウスを二酸化炭素吸入によって安楽死させ、脳、心臓、横隔膜、上半身および下半身骨格筋ならびに肝臓を直ちに収集し、急速冷凍した。3匹の年齢一致野生型マウスも安楽死させ、組織を収集し、凍結した。各組織を、OCTブロックに包埋することによってGAA免疫組織化学染色用に調製し、グルタルアルデヒドで固定しパラフィンに包埋することによってグリコーゲン染色用に調製した。残りの組織は、実施例4に記載の蛍光基質アッセイを使って、GAA活性について試験した。屠殺時に血清を集め、GAA抗体について調べた。
〔MPS−I障害を持つ患者の処置〕
RAPに連結された治療酵素を含むコンジュゲート薬剤を含んでいる薬学的組成物を静脈内投与する。その液体の最終剤形はコンジュゲート薬剤、生理食塩水、pH5.8のリン酸緩衝液および1mg/mlのヒトアルブミンを含む。これらは生理食塩水バッグ中で調製される。
〔対応するRAP−LEコンジュゲートで処置することできるリソソーム蓄積症〕
本発明の方法を使って処置または防止することができる疾患は:ムコ多糖症I(MPS I)、MPS II、MPS IIIA、MPS IIIB、異染性白質ジストロフィー(MLD)、クラッベ病、ポンペ病、セロイドリポフスチノーシス、テイ・サックス病、ニーマン・ピック病AおよびB、ならびに他のリソソーム疾患である。各疾患について、コンジュゲート薬剤は特定の化合物または酵素を含むだろう。MPS Iに関わる方法では、好ましい化合物または酵素はα−L−イズロニダーゼである。MPS IIに関わる方法では、好ましい化合物または酵素はイズロン酸−2−スルファターゼである。MPS IIIAに関わる方法では、好ましい化合物または酵素はヘパランN−スルファターゼである。MPS IIIBに関わる方法では、好ましい化合物または酵素はα−N−アセチルグルコサミニダーゼである。異染性白質ジストロフィー(MLD)に関わる方法では、好ましい化合物または酵素はアリールスルファターゼAである。クラッベ病に関わる方法では、好ましい化合物または酵素はガラクトシルセラミダーゼである。ポンペ病に関わる方法では、好ましい化合物または酵素は酸性α−グリコシダーゼである。CLNに関わる方法では、好ましい化合物または酵素はトリペプチジルペプチダーゼである。テイ・サックス病に関わる方法では、好ましい化合物または酵素はヘキソサミニダーゼ・アルファである。ニーマン・ピック病AおよびBに関わる方法では、好ましい化合物または酵素は酸性スフィンゴミエリナーゼである。
〔RAPとα−L−イズロニダーゼまたは酸性αグルコシダーゼとの融合物の受容体結合、細胞取り込みおよびリソソーム送達のさらなる例証〕
本実施例では、RAPを送達ビヒクルとして使用することによる治療酵素の効率的なLRP受容体結合、細胞取り込みおよびリソソーム送達を実証する追加データを提供する。
アミノ酸35〜353を含むヒトRAPコード配列を、ヒト肝臓cDNAから、PfuTurboポリメラーゼ(Stratagene)ならびにプライマーRAPF 5’−GCGATAGGATCCTACTCGCGGGAGAAGAACCAGCCCAAGCCGTCCCCGA−3’(配列番号12)およびRAPR 5’−GCGATAAACCGGTTTCTGCCTCGGCGCGAGCTCTGGAGATCCTGCCGGACAGGTCCT−3’(配列番号13)を使って増幅した。この断片はシグナルペプチドまたはHNEL ER保持シグナルをコードする配列を含まない。5’−RAPプライマーにはインフレームBamHI部位が5’末端に組み込まれている。3’−RAPプライマーは、インフレームAgeI部位を3’末端に含んでいる6アミノ酸スペーサー(AEAETG;配列番号29)をコードする配列を付加する。この改変RAP配列を、ヒトα−L−イズロニダーゼ(アミノ酸27〜652)またはヒトアルファ−グルコシダーゼ(アミノ酸70〜952)とのインフレーム融合物としてベクターpC3B中にクローニングした。どちらのリソソーム酵素配列も、シグナルペプチドを除去し、インフレームAgeI部位を付加するために、5’部分を改変した。この発現ベクターはpCDNA3.1(+)(Invitrogen)に由来し、ウサギベータ−アクチンIVS2、ラットプレプロインスリン転写物リーダー配列、およびインフレームBamHIで終わるヒトメラノトランスフェリンの最初の18アミノ酸(シグナルペプチド)を含んでいる。
CHOdL−RI7およびCHOdL−RG20を、Tフラスコ中、2.5%ウシ胎仔血清を添加した無タンパク質培地で培養した。産生は、pH、酸素および温度制御した3L Applikonバイオリアクター中、血清の不在下で行なった。産生期は細胞をCytopore 1ビーズ(Amersham)上で生育した。灌流中は内部セトラー(Biotechnology Solutions)を使ってマイクロキャリアを保持した。バイオリアクター灌流速度は、残存グルコースを監視することによって決定した。
SartoPore 1.2デプスフィルターに通し、次に滅菌のために0.2μmPESメンブレンフィルターを通すことによって、RAP−IDU細胞培養培地を清澄化した。その滅菌清澄化培地をpH調節した後、ヘパリンセファロースCL−6B(Amersham)、フェニルセファロースHP(Amersham)およびSPセファロースFast Flow(Amersham)で順次、分割した。酵素活性画分をプールし、濃縮し、必要な場合は、次の工程のために50kDaミニTFFメンブレン(Vivascience)を使って緩衝液交換した。最終緩衝液は10mMリン酸ナトリウム(pH5.8)、150mM塩化ナトリウムとした。DEAE Fast Flow(Amersham)の非結合通過を行なって、または行なわずに、RAP−GAAを精製した。次に、RAP−GAA融合物をヘパリンセファロースCL−6B(Amersham)およびフェニルセファロースHP(Amersham)で順次、分割した。工程内溶出物および最終溶出物を、RAP−IDUについて説明したように処理した。
公表された方法を96穴プレートに適合させたものを使って、小さい蛍光原単糖基質の加水分解により、酵素活性を測定した。RAP−IDU活性の場合は、基質4−メチルウンベリフェリルイズロニド(4−MUI)を2.5mMの濃度で使用した。RAP−GAA活性の場合は、基質4−メチルウンベリフェリル−アルファ−D−グルコシドを5.4mMの濃度で使用した。活性単位は37℃で1分あたりに加水分解される基質のマイクロモル数と定義する。
FACE解析は、基本的に既に記述されているとおりに行なった(Starr et al.,J.Chromatogr.A.,720(1-2):295-321,1996、Hague et al.,Electrophoresis,19(15):2612-20)。簡単に述べると、タンパク質を変性させ、N結合型オリゴ糖を遊離させるために、N−グリカナーゼで処理した。次に、単離したオリゴ糖を、還元的アミノ化により、アミノナフタレン−6−スルホンで蛍光標識し、ポリアクリアミドゲルで分割し、蛍光検出した。バンドのアイデンティティは、移動度を既知標準品と比較して測定することによって推断した。必要な場合は、オリゴ糖のアイデンティティを、特異的エキソグリコシダーゼによる消化後の追加FACE解析によって確認した。
精製融合物を、50mM酢酸ナトリウム緩衝液(pH5)中、37℃で1時間、クロストリジウム・パーフリンジェンス(Clostridium perfringens)ノイラミニダーゼ(Sigma)で処理した。処理した試料および未処理の対照をpH3〜9勾配ゲルでのIEFによって解析した(Amersham Phastgel System)。
リソソームプロテアーゼカテプシンB、DおよびLをCalbiochemから購入し、50mMリン酸ナトリウム(pH5)に再懸濁し、凍結保存した。消化には、各融合物0.5μgを上記カテプシンの等モル混合物(それぞれ最終濃度約300μM)10ngと共に、100mM酢酸ナトリウム、100mM塩化ナトリウム、0.5mM DTT、pH4.5中、37℃で1時間インキュベートした。2%SDSを含有するSDS−PAGE試料ローディング緩衝液で反応を停止させ、95℃で5分間加熱した。試料をNu−PAGE 4〜12%ビス−トリスSDS−PAGEゲルで分割し、クーマシーブルーで染色した。
先に記述されているとおり(BuおよびRennke,J.Biol.Chem.,271(36):22218-24 1996)。
ヒトアルファ−L−イズロニダーゼ(アルドラザイム)はBioMarin PharmaceuticalおよびGenzyme Therapeuticsの厚意で譲り受けた。ヒトリソソームアルファ−グルコシダーゼは、独自の方法を使って発現させ、精製した。精製酵素は純度が95%より高く、タンパク質1分子につき少なくとも1つのビスリン酸化オリゴマンノース構造を持っている(FACE解析およびマンノース−6−リン酸受容体カラムでの保持に基づく、未公表結果)。
PVDFメンブレン(Millipore)をメタノールで予め湿らせておき、PBS(11.9mMリン酸ナトリウム、137mM塩化ナトリウム、2.7mM塩化カリウム、pH7.4)中で平衡化した。次に、メンブレンをBio−Radドットブロット装置にマウントした。LRP1の第2リガンド結合ドメイン(sLRP2、1μg/ウェル)を真空濾過によってメンブレンに適用した。次に、そのメンブレンを細断し、それらを24穴プレートの別々のウェルに入れた。メンブレンを、TBS(20mMトリス(pH7.4)、150mM塩化ナトリウム)中、5mM塩化カルシウムおよび3%脱脂粉乳で30分間ブロックした。リガンドを各メンブレンスポットと共に室温で2時間インキュベートした。個々のブロットをブロッキング緩衝液で2回、それぞれ5分間洗浄した後、結合を検出するために、ブロック緩衝液中の様々な抗体と共に、室温で1時間インキュベートした。
ヒト線維芽細胞はCoriel Cell Repositoryから入手した。ラットC6膠芽腫細胞およびマウスC2C12筋芽細胞はAmerican Type Culture Collectionから入手した。通例、取り込みは、20mMヘペス(pH7.0)および0.5mg/mLウシ血清アルブミンを含有する無血清培地中で行なった。適当な試験タンパク質および阻害剤を同じ培地に希釈し、細胞と共に様々な期間インキュベートした。次に細胞をPBSで濯ぎ、トリプシン処理した。低速遠心分離によってペレットを収集し、PBSで洗浄し、0.1%トリトンX100の存在下に−80℃で凍結することによって溶解した。溶解物を遠心分離によって清澄化した。可溶性溶解物画分を酵素活性についてアッセイすると共に、ビシンコン酸(bicinchonic acid)法を使って総タンパク質量についてアッセイした。
ヒトGM−01391ハーラー線維芽細胞をCoriell Cell Repositoryから入手し、DMEM 10%ウシ胎仔血清および2mMグルタミン中で生育した。クリアランス実験の4日前に、6穴プレートに1ウェルあたり250,000細胞の割合で細胞を播種した。実験当日に細胞に硫酸非含有培地(S−MEM、Irvine Scientific)、15%透析ウシ胎仔血清、5mM塩化カルシウム、110mg/Lピルビン酸ナトリウムを1時間供給した後、4μCi/mL 35S−硫酸ナトリウムおよび5nMのRAP−iduまたはイズロニダーゼのみを含む同じものを供給した。細胞を、5%CO2/95%空気の湿潤細胞培養インキュベーター中、37℃で48時間にわたって、この培地でインキュベートした。トリプシン処理の前後に細胞層をPBSで3回濯いだ。ペレットを0.5N水酸化ナトリウム中で溶解し、1H塩酸で中和した。タンパク質濃度はBioRadプロテインアッセイにより96穴プレートで決定した。溶解物をBeckman Ready Capsでカウントした。
(融合物の発現および特徴づけ)
RAPコード配列がリソソーム酵素コード配列のN末端側に位置するように、RAP融合物を構成した。この配列の順序は、RAPがGSTのC末端側に位置するGST−RAP融合物が、RAPのみの場合と比較して、LRPに対して10分の1までの低い親和性を持つことを示す、先に公表された研究に基づいた(Warshawsky et al.,J Clin Invest 92,937-944,1993)。RAP融合物の製造にはCHO−K1突然変異体(CHOdL)を選択した(FitzGerald et al.,J.Biol.Chem.,129,1533-1541,1995)。CHOdLはLRP受容体を何も発現させず、過剰発現細胞株による分泌タンパク質の再取り込みおよび分解を防ぐ。RAPとIDU(RAP−IDU)およびGAA(RAP−GAA)との融合物を、この系で発現させた。各融合物のクローンを細胞培養培地中の酵素活性に基づいて選択し、バイオリアクターでの製造にスケールアップした。容積生産性値を精製rhIDUまたはrhGAAの活性濃度(U/L)および比活性(U/mg)から計算した。この方法で計算したところ、平均一日リアクター生産性は、RAP−IDUの場合で1〜2mg/L−日、RAP−GAAの場合で10〜15mg/L−日だった。
融合物を通常の樹脂を使って>95%に精製した(図19A、レーン1)。抗RAP抗体(図19A、レーン2)および抗IDUまたは抗GAA抗体(図19A、レーン3)は、調整細胞培養培地のウェスタンブロットで、各融合物の分子量と合致するバンドを同時染色した。融合物は、調整培地中では安定であるが、精製中はタンパク質分解切断事象に対して感受性であり、それが両融合タンパク質のN末端からのRAPの除去をもたらすことが観察された。タンパク質分解は精製に先だって調整培地にプロテアーゼ阻害剤を添加することによって軽減された。
リソソームにおける融合物の挙動をシミュレートするために、RAP−IDUおよびRAP−GAAの調製物をカテプシンD、BおよびLの混合物と共に、pH4.5、37℃で1時間インキュベートした。消化されたタンパク質をSDS−PAGEで解析した。RAPはこれらの条件下で分解されて、完全なリソソーム酵素を残した(図19C、レーン2および5)。上記2つの融合タンパク質のそれぞれについて、残っている主要バンドは、rhIDUおよびrhGAAよりもわずかに大きかった。追加質量は一部のRAPまたはリンカー配列が処理後に残ることを示している可能性がある。N末端配列決定およびペプチドマッピングにより、切断はRAPおよびリンカー配列の最後の20アミノ酸内にある複数部位で起こることが示される。消化物の単位容積あたりのGAA活性は、インビトロタンパク質分解によって有意な影響を受けなかった。この結果は、RAP−GAAおよびrhGAAのモル比活性が類似していることと合致する。消化物の単位容積あたりのIDU活性は、融合物のインビトロ加水分解後に26%増加したことから、rhIDUとの比較で、遊離したIDU部分の酵素活性の部分的な回復が示唆された。リソソームに送達された後の融合物由来のIDUの比活性は決定していない。
オリゴ糖受容体がリソソーム酵素の取り込みにインビボで果たす重要な役割を考慮して、RAP融合物上に存在するオリゴ糖のアイデンティティおよびタイプを決定した。まず、精製融合物をFACE解析にかけて、リン酸化オリゴ糖のレベルをネイティブリソソーム酵素と比較して測定した(図20A)。リン酸化オリゴ糖は、FACEゲルでのそれらの特徴的な移動度によって、容易に同定される。rhIDUとrhGAAはどちらも、かなりの量のビスリン酸化オリゴマンノース7(ビス−7(Bis−7))(これはMPRによって強固に結合される構造である)を持っている(Zhao et al.,J Biol Chem 272,22758-22765,1997;図20A、レーン2、矢印)。各オリゴ糖バンドを蛍光強度によって定量した。ビス−7はrhIDUおよびrhGAA上の全オリゴヌクレオチドのそれぞれ30%および20%を占めていた。どちらの場合も、これらのパーセンテージは、各酵素分子に対して1〜2分子のビス−7に合致する。rhIDUおよびRAP−IDUのオリゴ糖プロファイルはその他の点では類似しているが、融合物は酵素のみの場合と比較してBis−7保持量が60%少ない(図20B、レーン3)。この値はRAP−IDU融合物3分子につきおよそ1分子のBis−7に相当する。rhGAAおよびRAP−GAAのオリゴ糖プロファイルも類似しているが(図20A、レーン2および3を比較されたい)、RAP−IDUとは異なり、リン酸化オリゴ糖はRAP−GAA融合物上に有意な量では見いだされなかった。
ヒトLRP1の第2リガンド結合ドメイン全体である組換え体sLRP2をナイロンメンブレンフィルター上にスポットした(図21)。ブロッキング後に、個々のフィルターを結合緩衝液中でRAP(列B)、RAP−IDU(列C)またはrhIDU(列D)と共にインキュベートした。フィルターを洗浄し、抗RAP(行1)または抗IDU抗体(行2)でプローブした。シグナル強度から判断して、これらの条件下でRAP−IDUはRAPのみの場合と同様に受容体断片に結合した(列BおよびC、行1)。RAPおよびRAP−IDUの結合は、過剰の非放射性RAPによってブロックすることができた(列C、行3)。組換えヒトIDUはsLRP2に結合しなかった(列D)。これらの結果は、RAP−IDU融合物内のRAP部分がLRPに特異的に結合する能力を保っていることを実証している。
RAP融合物が培養細胞に取り込まれうるかどうかを決定するために、ハーラー病患者(IDU欠損性、GM1391)またはポンペ病患者(GAA欠損性、GM244)から単離した初代ヒト線維芽細胞にRAP−IDU、RAP−GAA、rhIDUまたはrhGAAを加えた。取り込み実験用の試験タンパク質濃度をA280測定および理論吸光係数から計算した。取り込ませるための1〜2時間の期間後に、細胞を収集し、溶解し、リソソーム酵素活性についてアッセイした。取り込みシグナルは、溶解物の単位容積あたりの切断された蛍光基質の単位数として報告する。各ウェルで同数の細胞を使用した。そして各試料中の総タンパク質量に対する活性データの標準化は結果を変化させなかった。曲線を双曲線関数に当てはめ、GraphFit(Erithacus Software)を使って取り込みパラメータを求めた。双曲線漸近値をここでは最大取り込み能と定義する。半最大取り込みをもたらす融合物または酵素の濃度を、以前と同様に、Kuptakeと定義する(SandoおよびNeufeld,Cell,12(3):619-27,1977)。
RAP送達されたリソソーム酵素のリソソームにおける安定性を調べるために、RAP−GAAまたはrhGAAをポンペ病患者線維芽細胞(GM244)と共に多穴プレート中で24時間インキュベートし、試験タンパク質を欠く成長培地に移した後、2週間にわたって細胞を収集した。次に、細胞溶解物をGAA活性についてアッセイした。融合物由来のGAAおよびrhGAAは、それぞれ約12日および10日という、ほぼ同一の細胞内半減期を持っていた(図24)。GAAは中性pHでは時間単位で測定される半減期を持つので、rhGAAおよび融合物GAAの複数日という半減期は、両者がエンドサイトーシス後に酸性コンパートメントに、おそらくはリソソームに送達されることを暗示している。リソソームへのリン酸化rhGAAの送達は文献に詳述されており、rhGAAによるERTの根拠になっている(Van der Ploeg et al.,J Clin Invest 87,513-518,1991、Yang et al.,Pediatr Res 43,374-380,1998)。RAPへの融合の結果としてGAAに課せられた変化はいずれも、リソソームにおけるこの酵素の安定性には影響しないようである。
〔メガリンは血液脳関門を横切るトランスサイトーシスを媒介する〕
本実施例では、トランスサイトーシスのモデル系としてトランズウェルプレート中の強固なMDCK細胞単層を使って行なった実験を説明する。このモデルは、LRP1ではなくメガリンがRAPのトランスサイトーシスを媒介することを実証するために用いた。MDCK細胞には、LRP1の第4リガンド結合ドメインおよび膜貫通ドメインとLRP1(mLRP/LRPTmT=LRPt)またはメガリン(mLRP/LRPTmMegT=MEGt)のC末端細胞質テールとからなるミニ受容体をトランスフェクトしておいた。この系は、これらのミニ受容体の優れた発現レベルおよび様々なLRP受容体ドメインのモジュール性を利用している。この系の前提は、LRP1エクトドメインおよびメガリンエクトドメインがRAPを同様に結合すること、ならびにMDCK中でメガリンテールによって媒介される輸送が、脳毛細管内皮を含む他の上皮細胞層におけるものと類似していることである。
安定にトランスフェクトされたMDCK細胞および親MDCK株をMaria-Paz Marzolo博士(チリ・サンチアゴ)から入手した。抗HA抗体を使った間接免疫蛍光法で示されるように、LRPtは側底側に分布し、MEGtはトランスフェクトMDCK細胞の頂端側表面に局在化している(Marzolo et al.,Traffic,4(4):273-88,2003)。0.4μmの均一な孔径を持つトランズウェルシステムのポリアセテートメンブレンインサート(Costar,マサチューセッツ州ケンブリッジ)の表面に、細胞をプレーティングした。細胞を2×105細胞/mlの密度で播種し、10%FBSを添加したDMEM中で、3日ごとに培地を交換しながら培養した。細胞を5%CO2インキュベーター中に37℃で維持した。トランスサイトーシス研究は、3つ一組のトランズウェル6群で、頂端側から側底側への輸送または側底側から頂端側への輸送について、2μg/mlの過剰非標識RAPを含めてまたは過剰非標識RAPを含めずに行なった。
Claims (59)
- 関心対象の薬剤にコンジュゲートされたメガリン結合部分を含む化合物。
- 前記薬剤が、治療剤、診断剤、中枢神経系(CNS)疾患のマーカー、CNS障害のマーカーに結合する標識モノクローナル抗体からなる群より選択される、請求項1に記載の化合物。
- 前記治療剤が、タンパク質、細胞毒性化学療法剤、タンパク質核酸、siRNA分子、アンチセンス分子、および関心対象の治療タンパク質をコードする核酸を含む発現コンストラクトからなる群より選択される、請求項2に記載の化合物。
- 前記メガリン結合部分および前記関心対象の薬剤が互いに直接連結されている、請求項1に記載の化合物。
- 前記メガリン結合部分および前記関心対象の薬剤がリンカーを介して連結されている、請求項1に記載の化合物。
- リンカーがペプチドリンカーである、請求項5に記載の化合物。
- 前記メガリン結合部分がインビボでトランスサイトーシスされる部分である、請求項1に記載の化合物。
- 前記メガリン結合部分が、RAP、チログロブリン、リポタンパク質リパーゼ、ラクトフェリン、アポリポタンパク質J/クラスタリン、アポリポタンパク質B、アポリポタンパク質E、組織型プラスミノゲン活性化因子、uPA、PAI−1、ビタミンD結合タンパク質、ビタミンA/レチノール結合タンパク質、β2−ミクログロビン、α1−ミクログロブリン、ビタミンB12/コバラミン血漿担体タンパク質、トランスコバラミン(TC)−B12、PTH、インスリン、EGF、プロラクチン、アルブミン、apoH、トランスサイレチン、リゾチーム、シトクロム−c、α−アミラーゼ、およびCa2+、およびアプロチニンからなる群より選択される、請求項1に記載の化合物。
- 前記メガリン結合部分が受容体関連タンパク質(RAP)である、請求項8に記載の化合物。
- 血液脳関門を横切って脳内に経細胞的に送達するためのキメラ分子であって、トランスサイトーシスによって血液脳関門を横切って送達されるべき活性剤にコンジュゲートされたメガリンリガンドを含み、前記メガリンリガンドが血液脳関門を横切る前記キメラ分子の輸送を容易にする、キメラ分子。
- 血液脳関門を横切るトランスサイトーシスによって脳内に送達するためのキメラ分子であって、トランスサイトーシスによって血液脳関門を横切って送達されるべき活性剤にコンジュゲートされたLRPリガンドを含み、前記LRPリガンドが、LRP1と比較してメガリンに優先的に結合する、キメラ分子。
- 前記関心対象の薬剤がメガリン結合部分のC末端に結合されている、請求項1〜8のいずれかに記載の化合物、または請求項10もしくは11のいずれかに記載のキメラ分子。
- 前記メガリン結合部分および前記関心対象の薬剤がそれぞれタンパク質であり、メガリン結合部分が関心対象の薬剤のN末端に結合されている、請求項1〜8のいずれかに記載の化合物、または請求項10もしくは11のいずれかに記載のキメラ分子。
- 薬学的に許容できる担体、希釈剤または賦形剤中に、請求項1〜8のいずれかに記載の化合物、または請求項10もしくは11のいずれかに記載のキメラ分子を含む薬学的組成物。
- 薬学的に許容できる担体、希釈剤または賦形剤中に、請求項12に記載の化合物を含む薬学的組成物。
- 薬学的に許容できる担体、希釈剤または賦形剤中に、請求項13に記載の化合物を含む薬学的組成物。
- 薬剤を動物の中枢神経系に送達する方法であって、メガリン結合部分にコンジュゲートされた前記薬剤を前記動物に投与するステップを含み、前記動物の血液脳関門を横切って起こる前記メガリン結合部分にコンジュゲートされた前記薬剤の輸送が、前記メガリン結合部分へのコンジュゲーションが存在しない場合の前記薬剤の輸送よりも多い、方法。
- 薬剤のトランスサイトーシスを増加させる方法であって、前記薬剤をメガリン結合部分にコンジュゲートするステップを含み、前記メガリン結合部分にコンジュゲートした場合に、前記薬剤のトランスサイトーシスが、前記コンジュゲーションが存在しない場合の前記薬剤のトランスサイトーシスよりも多い、方法。
- 哺乳動物における障害を処置する方法であって、前記動物に、メガリン結合部分にコンジュゲートされた治療剤を投与するステップを含む方法。
- 前記障害がCNSの障害である、請求項19に記載の方法。
- 前記障害が、アルツハイマー病、パーキンソン病、多発性硬化症、筋萎縮性側索硬化症、および中枢神経系癌からなる群より選択される、請求項20に記載の方法。
- 前記障害が中枢神経系癌であり、前記薬剤が癌化学療法剤である、請求項21に記載の方法。
- 治療酵素を、メガリンを発現する細胞中のリソソームコンパートメントに送達する方法であって、前記細胞を、メガリン結合部分にコンジュゲートされた前記治療酵素を含む組成物と接触させるステップを含み、前記細胞のリソソームコンパートメントへの前記治療酵素の取り込みが、前記細胞の表面上に存在するメガリンによって媒介される、方法。
- 対象のリソソーム蓄積症(LSD)を処置する方法であって、前記LSDの処置に使用される治療剤にコンジュゲートされたメガリン結合部分を含む組成物を、前記LSDの症状を改善するのに有効な量で、前記対象に投与するステップを含む方法。
- 前記メガリン結合部分がRAPである、請求項24に記載の方法。
- 前記治療剤が前記LSDにおいて欠乏している酵素である、請求項24に記載の方法。
- 前記LSDが、アスパルチルグルコサミン尿症、コレステロールエステル蓄積症、ウォルマン病、シスチノーシス、ダノン病、ファブリ病、ファーバー脂肪肉芽腫症、ファーバー病、フコシドーシス、ガラクトシアリドーシスI/II型、ゴーシェ病I/II/III型、ゴーシェ病、グロボイド細胞型白質ジストロフィー、クラッベ病、グリコーゲン蓄積症II、ポンペ病、GM1−ガングリオシドーシスI/II/III型、GM2−ガングリオシドーシスI型、テイ・サックス病、GM2−ガングリオシドーシスII型、サンドホフ病、GM2−ガングリオシドーシス、α−マンノシドーシスI/II型、β−マンノシドーシス、異染性白質ジストロフィー、ムコリピドーシスI型、シアリドーシスI/II型ムコリピドーシスII/III型I細胞病、ムコリピドーシスIIIC型偽ハーラーポリジストロフィー、ムコ多糖症I型、ムコ多糖症II型、ハンター症候群、ムコ多糖症IIIA型、サンフィリポ症候群、ムコ多糖症IIIB型、ムコ多糖症IIIC型、ムコ多糖症IIID型、ムコ多糖症IVA型、モルキオ症候群、ムコ多糖症IVB型モルキオ症候群、ムコ多糖症VI型、ムコ多糖症VII型、スライ症侯群、ムコ多糖症IX型、多発性スルファターゼ欠損症、神経性セロイドリポフスチノーシス、CLN1バッテン病、ニーマン・ピック病A/B型、ニーマン・ピック病、ニーマン・ピック病C1型、ニーマン・ピック病C2型、ピクノディスオストーシス、シンドラー病I/II型、シンドラー病、およびシアル酸蓄積症からなる群より選択される、請求項24に記載の方法。
- 前記薬剤が、アルパルチルグルコサミニダーゼ、酸性リパーゼ、システイン輸送体、Lamp−2、α−ガラクトシダーゼA、酸性セラミダーゼ、α−L−フコシダーゼ、β−ヘキソサミニダーゼA、GM2−活性化因子欠乏症、α−D−マンノシダーゼ、β−D−マンノシダーゼ、アリールスルファターゼA、サポシンB、ノイラミニダーゼ、α−N−アセチルグルコサミニダーゼホスホトランスフェラーゼ、ホスホトランスフェラーゼγサブユニット、L−イズロニダーゼ、イズロン酸−2−スルファターゼ、ヘパラン−N−スルファターゼ、α−N−アセチルグルコサミニダーゼ、アセチルCoA:N−アセチルトランスフェラーゼ、N−アセチルグルコサミン6−スルファターゼ、ガラクトース6−スルファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、N−アセチルガラクトサミン4−スルファターゼ、ヒアルロノグルコサミニダーゼ、複数のスルファターゼ、パルミトイルタンパク質チオエステラーゼ、トリペプチジルペプチダーゼI、酸性スフィンゴミエリナーゼ、コレステロール輸送、カテプシンK、α−ガラクトシダーゼB、およびシアル酸輸送体からなる群より選択される、請求項26に記載の方法。
- 前記組成物が薬学的組成物であり、前記哺乳動物の脳組織中に存在する蓄積顆粒の量を減少させるのに有効な量で投与される、請求項24に記載の方法。
- 前記投与が、哺乳動物の中枢神経系への髄腔内投与を含む、請求項24に記載の方法。
- 前記組成物が、前記哺乳動物の髄膜組織中に存在する蓄積顆粒の量を減少させるのに有効な量で投与される、請求項24に記載の方法。
- 前記症状が、病歴、理学的検査、心エコー法、心電図検査、磁気共鳴画像、睡眠ポリグラフ、骨格調査、一連の運動計測、角膜写真、および皮膚生検の定型的評価によって監視される、請求項24に記載の方法。
- 疾患がムコ多糖症である、請求項27に記載の方法。
- 疾患がムコ多糖症Iである、請求項33に記載の方法。
- リソソーム蓄積症を持つ前記哺乳動物が、正常α−L−イズロニダーゼの約50%以下の活性を示す、請求項24に記載の方法。
- 前記薬学的組成物が、ヒトα−L−イズロニダーゼとして週に約0.001mg/kg体重〜0.5mg/kg体重の用量で、その欠乏症を患っている対象に投与される、請求項29に記載の方法。
- 前記薬学的組成物が、ヒトα−L−イズロニダーゼとして週に約0.01mg/当該哺乳動物のCSF 15cc〜約5.0mg/当該哺乳動物のCSF 15ccの用量で、その欠乏症を患っている対象に投与される、請求項29に記載の方法。
- 治療剤にコンジュゲートされたメガリン結合部分の前記投与が、前記対象における発育遅延および退行の正常化、高圧水頭症の軽減、前記対象における脊髄圧迫の軽減、ならびに、前記対象の脳血管周辺の血管周囲嚢胞の数および/または大きさの減少をもたらす、請求項24に記載の方法。
- 前記髄腔内投与が、脳室内に前記薬学的組成物を導入することを含む、請求項30に記載の方法。
- 前記髄腔内投与が、腰部または大槽内に前記薬学的組成物を導入することを含む、請求項39に記載の方法。
- 前記髄腔内投与が、注入ポンプを使って達成される、請求項39に記載の方法。
- 前記薬学的組成物が、少なくとも数日間にわたって持続的に髄腔内投与される、請求項24に記載の方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項24に記載の方法。
- 酵素補充療法に先だって抗原特異的寛容を誘導するステップをさらに含む、請求項26に記載の方法。
- 前記抗原特異的寛容が、免疫抑制剤の投与を含む、請求項44に記載の方法。
- 前記免疫抑制剤がシクロスポリンAである、請求項45に記載の方法。
- 前記抗原特異的寛容が、抗増殖剤の投与をさらに含む、請求項45に記載の方法。
- 抗増殖剤が、ヌクレオチド類似体または代謝拮抗物質からなる群より選択される、請求項47に記載の方法。
- 抗増殖剤がアザチオプリンである、請求項47に記載の方法。
- リソソーム蓄積症を有する対象の脳細胞におけるグリコサミノグリカン(GAG)の分解を促進する方法であって、メガリン結合部分にコンジュゲートされた前記リソソーム蓄積症で欠乏している酵素を含む薬学的組成物を、前記脳細胞中に存在するGAGの量を投与前に前記細胞中に存在するGAGの量と比較して減少させるのに有効な量で、前記対象に投与するステップを含む方法。
- 前記脳細胞がニューロンである、請求項50に記載の方法。
- 前記脳細胞が神経膠細胞である、請求項50に記載の方法。
- 前記脳細胞が上衣細胞である、請求項50に記載の方法。
- 前記脳細胞が、ニューロン、膠細胞、小膠細胞、アストロサイト、乏突起膠細胞、血管周囲細胞、血管外皮細胞、髄膜細胞、上衣細胞、くも膜顆粒細胞、くも膜、硬膜、軟膜および脈絡叢細胞からなる群の少なくとも一つから選択される脳細胞である、請求項50に記載の方法。
- 前記細胞が髄膜細胞である、請求項54に記載の方法。
- 前記対象が高圧水頭症を有し、前記投与が前記対象の髄膜組織中のCSF液の量を減少させる、請求項50に記載の方法。
- 前記細胞中のリソソーム蓄積顆粒の数が、前記コンジュゲートの投与を行なわない場合の同様の細胞中に存在するリソソーム蓄積顆粒の数と比べて減少する、請求項50に記載の方法。
- 前記細胞中のリソソーム蓄積顆粒の数が、前記メガリン結合部分にコンジュゲートされていない酵素のみで処置された同様の細胞中に存在するリソソーム蓄積顆粒の数と比べて減少する、請求項50に記載の方法。
- 治療酵素を対象の細胞中のリソソームに送達する方法であって、
(i)治療剤または診断剤にコンジュゲートされたRAPまたはRAPポリペプチドを含む化合物を前記対象に投与するステップと、
(ii)細胞膜を横切って前記化合物を輸送するステップと、
(iii)前記化合物と、前記細胞上のLRP受容体とを接触させるステップと、
(iv)前記細胞への前記化合物の進入を容易にするステップと、
(v)前記細胞中の前記リソソームに前記化合物を送達するステップと
を含む方法。
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